JP2015007652A - 検体中の測定対象成分の測定方法及び測定用キット - Google Patents

Abstract

【課題】抗原等の検体中の測定対象成分を測定するに際して、反応温度等の影響を受けずに正確な測定を可能とする、検体中の測定対象成分の測定方法及び測定用キットを提供する。
【解決手段】検体中の測定対象成分と、該測定対象成分に結合する第１抗体とを、脂肪酸アルカノールアミド存在下に反応させた後、該測定対象成分に結合する第２抗体に標識が結合した標識化第２抗体を反応させて、第１抗体、該測定対象成分、及び、標識化第２抗体からなる免疫複合体を生成させ、生成した該免疫複合体中の標識量を測定することを特徴とする、測定対象成分の測定方法、及び、当該測定方法に用いる検体中の測定対象成分の測定用キット。
【選択図】なし

Description

本発明は、検体中の測定対象成分の測定方法及び測定用キットに関する。

検体中の成分を測定する方法として、免疫学的な測定法が利用されている。免疫学的測定方法としては、ＲＩＡ法（放射免疫測定法）、ＥＩＡ法（酵素免疫測定法）、ＣＬＩＡ法（化学発光免疫測定法）、ＣＬＥＩＡ（化学発光酵素免疫測定法）、ＬＡ法（ラテックス凝集法）、ＴＩＡ法（免疫比濁法）、イムノクロマトグラフィー法などの多くの方法がある。これらの測定法では、免疫学的手法により測定する場合、検体中の成分（または抗体）とそれに対する抗体（または抗原）との間における抗原抗体反応を利用している。また、これらの免疫学的測定法においては、予め、濃度のわかっている標準物質を測定して得られた数値（吸光度）とそれぞれに対する測定値（濃度）との関係をグラフにプロットした検量線（標準曲線）を作成し、目的とする検体中の成分の測定値を求める。これらの測定において用いる標準物質には、原料の入手が容易であり、多量に調製することが可能なリコンビナント抗原が多く用いられている。

しかしながら、リコンビナント抗原は検体中の成分であるネイティブ抗原と必ずしも免疫反応性が一致しているとは限らず、測定する際の緩衝液や添加剤によっても反応性が異なることがある。特に、抗原抗体反応時の反応温度が変動した場合には両者の反応性の相違が顕著となり、温度による測定値の変動を生じるという問題がある（特許文献１〜２参照）。

ＭｘＡ蛋白質は、Ｉ型インターフェロン（インターフェロンα／β）により誘導される一連のタンパク質の一つで、分子量78kDa、Dynaminスーパーファミリーに属し、GTPase活性を有し、白血球、特に単核球の細胞質内に発現する。機能としては、ウイルスの増殖を阻害することによる抗ウイルス作用を有していることが知られており、ウイルス感染初期における生体の抗ウイルス状態の確立に関与していると言われている（非特許文献１〜４参照）。

いくつかの動物種でもみられるＭｘＡ蛋白質は、そのアミノ酸末端に特徴的なアミノ酸配列をもつ。Ｎ末ＧドメインはGTPaseとしての活性や抗ウイルス作用必須の部分であり、Ｃ末領域は、αヘリックス構造に富み、ロイシンジッパー構造を有する。この両部分は、分子内で相互に反応したり、分子間で相互に結合して自己凝集を引き起こすことが報告されている（非特許文献５参照）。

特開２００８−１０１９２４号公報 国際公開第２００６／０７３０７３号パンフレット

J. Interferon Res., vol.7, p.331-343 (1987). Mol. Cell. Biol., vol.9, p.5062-5072 (1989). J. Virol., vol.64, p.1171-1181 (1990). Traffic, vol.3, p.710-717 (2002). J. Biological Chem., vol.273, p.28365-28370 (1998).

本発明の目的は、抗原等の検体中の測定対象成分を測定するに際して、反応温度等の影響を受けずに正確な測定を可能とする、検体中の測定対象成分の測定方法及び測定用キットを提供することにある。

本発明者らは、本課題を解決すべく鋭意検討し、検体中の測定対象成分の免疫測定法において、検体中の測定対象成分と、該測定対象成分に結合する第１抗体とを、脂肪酸アルカノールアミド存在下に反応させることにより、また、検体中の測定対象成分と、該測定対象成分に結合する第１抗体とを反応させた後、該測定対象成分に結合する第２抗体に標識が結合した標識化第２抗体を、ポリオキシエチレン系非イオン性界面活性剤存在下に反応させることにより、反応温度等の影響を受けずに、正確な測定が可能となることを見出し、本発明を完成させた。すなわち、本発明は以下の［１］〜［２８］に関する。

［１］ 検体中の測定対象成分と、該測定対象成分に結合する第１抗体とを、脂肪酸アルカノールアミド存在下に反応させた後、該測定対象成分に結合する第２抗体に標識が結合した標識化第２抗体を反応させて、第１抗体、該測定対象成分、及び、標識化第２抗体からなる免疫複合体を生成させ、生成した該免疫複合体中の標識量を測定することを特徴とする、測定対象成分の測定方法。
［２］ 標識化第２抗体を、ポリオキシエチレン系非イオン性界面活性剤存在下に反応させる、［１］記載の方法。
［３］ 検体中の測定対象成分と、該測定対象成分に結合する第１抗体とを反応させた後、該測定対象成分に結合する第２抗体に標識が結合した標識化第２抗体を、ポリオキシエチレン系非イオン性界面活性剤存在下に反応させて、第１抗体、該測定対象成分、及び、標識化第２抗体からなる免疫複合体を生成させ、生成した該免疫複合体中の標識量を測定することを特徴とする、測定対象成分の測定方法。
［４］ 脂肪酸アルカノールアミドが、脂肪酸ジエタノールアミドである［１］又は［２］記載の方法。
［５］ ポリオキシエチレン系非イオン性界面活性剤が、ポリオキシエチレンポリオキシプロピレン縮合物、ポリオキシエチレンポリオキシプロピレンアルキルエーテル、及び、エチレンジアミンポリオキシエチレンポリオキシプロピレン縮合物からなる群より選ばれるポリオキシエチレン系非イオン性界面活性剤である［２］又は［３］記載の方法。
［６］ 脂肪酸アルカノールアミドが、脂肪酸ジエタノールアミドであり、ポリオキシエチレン系非イオン性界面活性剤が、ポリオキシエチレンポリオキシプロピレン縮合物、ポリオキシエチレンポリオキシプロピレンアルキルエーテル、及び、エチレンジアミンポリオキシエチレンポリオキシプロピレン縮合物からなる群より選ばれるポリオキシエチレン系非イオン性界面活性剤である［２］記載の方法。

［７］ 胆汁酸誘導体を添加して検体中の測定対象成分と、該測定対象成分に結合する第１抗体とを反応させる［１］〜［６］のいずれかに記載の方法。
［８］ 胆汁酸誘導体が、両性界面活性作用を有する胆汁酸誘導体である［７］記載の方法。
［９］ 両性界面活性作用を有する胆汁酸誘導体が、３−[（３−コールアミドプロピル）ジメチルアンモニオ]プロパンスルホネート又は３−[（３−コールアミドプロピル）ジメチルアンモニオ]−２−ヒドロキシプロパンスルホネートである［８］記載の方法。
［１０］ 胆汁酸誘導体が、非イオン性界面活性作用を有する胆汁酸誘導体である［７］記載の方法。
［１１］ 非イオン性界面活性作用を有する胆汁酸誘導体が、Ｎ，Ｎ−ビス（３−グルコンアミドプロピル）コールアミド又はＮ，Ｎ−ビス（３−Ｄ−グルコンアミドプロピル）デオキシコールアミドである［１０］記載の方法。
［１２］ 第１抗体が、不溶性担体に不動化されている［１］〜［１１］のいずれかに記載の測定方法。
［１３］ 検体が、全血である［１］〜［１２］のいずれかに記載の方法。
［１４］ 測定対象成分が、ＭｘＡ蛋白質である［１］〜［１３］のいずれかに記載の方法。

［１５］ 測定対象成分に結合する第１抗体、及び、脂肪酸アルカノールアミドを含む第１試薬と、測定対象成分に結合する第２抗体に標識が結合した標識化第２抗体を含む第２試薬とを含むことを特徴とする、検体中の測定対象成分の測定用キット。
［１６］ 第２試薬が、更にポリオキシエチレン系非イオン性界面活性剤を含む［１５］記載のキット。
［１７］ 測定対象成分に結合する第１抗体を含む第１試薬と、測定対象成分に結合する第２抗体に標識が結合した標識化第２抗体、及び、ポリオキシエチレン系非イオン性界面活性剤を含む第２試薬とを含むことを特徴とする、検体中の測定対象成分の測定用キット。
［１８］ 脂肪酸アルカノールアミドが、脂肪酸ジエタノールアミドである［１５］又は［１６］記載のキット。
［１９］ ポリオキシエチレン系非イオン性界面活性剤が、ポリオキシエチレンポリオキシプロピレン縮合物、ポリオキシエチレンポリオキシプロピレンアルキルエーテル、及び、エチレンジアミンポリオキシエチレンポリオキシプロピレン縮合物からなる群より選ばれるポリオキシエチレン系非イオン性界面活性剤である［１６］又は［１７］記載のキット。
［２０］ 脂肪酸アルカノールアミドが、脂肪酸ジエタノールアミドであり、ポリオキシエチレン系非イオン性界面活性剤が、ポリオキシエチレンポリオキシプロピレン縮合物、ポリオキシエチレンポリオキシプロピレンアルキルエーテル、及び、エチレンジアミンポリオキシエチレンポリオキシプロピレン縮合物からなる群より選ばれるポリオキシエチレン系非イオン性界面活性剤である［１６］記載のキット。

［２１］ 第１試薬が更に、胆汁酸誘導体を含む［１５］〜［２０］のいずれかに記載のキット。
［２２］ 胆汁酸誘導体が、両性界面活性作用を有する胆汁酸誘導体である［２１］記載のキット。
［２３］ 両性界面活性作用を有する胆汁酸誘導体が、３−[（３−コールアミドプロピル）ジメチルアンモニオ]プロパンスルホネート又は３−[（３−コールアミドプロピル）ジメチルアンモニオ]−２−ヒドロキシプロパンスルホネートである［２２］記載のキット。
［２４］ 胆汁酸誘導体が、非イオン性界面活性作用を有する胆汁酸誘導体である請［２１］記載のキット。
［２５］ 非イオン性界面活性作用を有する胆汁酸誘導体が、Ｎ，Ｎ−ビス（３−グルコンアミドプロピル）コールアミド又はＮ，Ｎ−ビス（３−Ｄ−グルコンアミドプロピル）デオキシコールアミドである［２４］記載のキット。
［２６］ 第１抗体が、不溶性担体に不動化されている［１５］〜［２５］のいずれかに記載のキット。
［２７］ 検体が、全血である［１５］〜［２６］のいずれかに記載のキット。
［２８］ 測定対象成分が、ＭｘＡ蛋白質である［１５］〜［２７］のいずれかに記載のキット。

本発明により、反応温度等の影響を受けずに、正確な測定を可能とする検体中の測定対象成分の測定方法及び測定用キットが提供される。

（１）検体
本発明において使用される検体としては、本発明による測定を可能とする検体であれば特に制限はなく、例えば全血（血液）、血球、血清、血漿、髄液、尿、組織、培養細胞が挙げられる。尚、全血には、全血由来の血球分画に血漿が混合している検体も含まれる。全血としては、被検者より採取した血液そのものでもよいが、採取した血液を処理したものでもよく、処理した血液が好ましい。当該処理としては、例えば抗凝固処理、溶血処理等が挙げられ、これらの処理を組み合わせてもよい。

成分（測定対象物）が血球の細胞内成分である場合は、全血として、溶血処理した血液が好ましく、抗凝固処理と溶血処理の両処理を行った血液が特に好ましい。抗凝固処理としては、例えば採取した血液にＥＤＴＡ、ヘパリン等を添加する処理等が挙げられる。溶血処理としては、例えば界面活性剤またはサポニン類溶液の添加、低張液との混合、凍結融解、超音波処理等が挙げられる。

（２）測定対象成分
本発明における測定対象成分としては、本発明による測定を可能とする測定対象成分であれば特に制限はなく、例えば核酸、蛋白質、脂質、ビタミン、多糖類等が挙げられる。核酸としてはDNA、RNA、ATP、ADP、AMP、サイクリックAMP等が挙げられる。また、蛋白質としては酵素、ホルモン、各種ペプチド等が挙げられる。

本発明において好適な測定対象成分としては、細胞内に含まれる物質、代謝産物等が挙げられ、インターフェロン等の各種サイトカインによって細胞内に誘発される蛋白質等が好ましい。具体的な測定対象成分としては、Ｉ型インターフェロンによって細胞質内に誘導されるＭｘＡ蛋白質（前述の非特許文献２〜３参照）等が挙げられる。

（３）脂肪酸アルカノールアミド
本発明における脂肪酸アルカノールアミドとしては、例えば脂肪酸ジエタノールアミド、脂肪酸モノエタノールアミド、脂肪酸Ｎ−メチルエタノールアミド、脂肪酸モノイソプロパノールアミド、脂肪酸ジイソプロパノールアミド等が挙げられ、脂肪酸ジエタノールアミドが好ましい。脂肪酸ジエタノールアミドとしては、例えばラウリン酸ジエタノールアミド、カプリン酸ジエタノールアミド、カプリル酸ジエタノールアミド、デカン酸ジエタノールアミド、ミリスチン酸ジエタノールアミド、パルミチン酸ジエタノールアミド、ステアリン酸ジエタノールアミド、イソステアリン酸ジエタノールアミド、オレイン酸ジエタノールアミド、リノール酸ジエタノールアミド、オクチルデカン酸ジエタノールアミド、ココナッツ油脂肪酸ジエタノールアミド、ヤシ脂肪酸ジエタノールアミド、牛脂脂肪酸ジエタノールアミド、アルキルアルカノールアミド、パーム核油脂肪酸ジエタノールアミドが挙げられる。これらの中で、オレイン酸ジエタノールアミド、ヤシ脂肪酸ジエタノールアミド、パーム核油脂肪酸ジエタノールアミドが好ましい。オレイン酸ジエタノールアミドの具体例（市販品）としては、例えばスタホームＤＯ、スタホームＤＯＳ（以上、日油社製）等、ヤシ脂肪酸ジエタノールアミドの具体例（市販品）としては、スタホームＦ、スタホームＤＦＣ、スタホームＤＦ４（以上、日油社製）等、パーム核油脂肪酸ジエタノールアミドの具体例（市販品）としては、アミノーンＰＫ−０２Ｓ、アミノーンＰＫ−０３Ｓ（以上、花王社製）等が挙げられる。

脂肪酸アルカノールアミドの抗原抗体反応における濃度としては、本発明の測定方法を可能とする濃度であれば特に制限はないが、例えば０．１〜１．４％である。本発明においては、脂肪酸アルカノールアミドを単独（１種類）で用いることもできるが、２種以上組み合わせて用いることもできる。

（４）ポリオキシエチレン系非イオン性界面活性剤
本発明におけるポリオキシエチレン系非イオン性界面活性剤は、本発明の測定方法を可能とするものであれば特に制限はなく、例えばポリオキシエチレンポリオキシプロピレン縮合物（以下、ＰＯＥ・ＰＯＰ縮合物と記す）、ポリオキシエチレンポリオキシプロピレンアルキルエーテル（以下、ＰＯＥ・ＰＯＰアルキルエーテルと記す）、ポリオキシエチレンポリオキシプロピレンアルキルフェニルエーテル（以下、ＰＯＥ・ＰＯＰアルキルフェニルエーテルと記す）、ポリオキシエチレン多環フェニルエーテル（以下、ＰＯＥ多環フェニルエーテルと記す）、ポリオキシエチレンポリオキシプロピレン多環フェニルエーテル（以下、ＰＯＥ・ＰＯＰ多環フェニルエーテルと記す）、または、エチレンジアミンポリオキシエチレンポリオキシプロピレン縮合物（以下、エチレンジアミンＰＯＥ・ＰＯＰ縮合物と記す）等が挙げられ、ＰＯＥ・ＰＯＰ縮合物、ＰＯＥ・ＰＯＰアルキルエーテル、エチレンジアミンＰＯＥ・ＰＯＰ縮合物が好ましく、ＰＯＥ・ＰＯＰ縮合物が特に好ましい。

ＰＯＥ・ＰＯＰ縮合物は、ブロック共重合体、ランダム共重合体いずれでもよい。ＰＯＥ・ＰＯＰ縮合物の具体例（市販品）としては、例えばプロノン１０２、プロノン１０４、プロノン２０１、プロノン２０２Ｂ、プロノン２０４、プロノン２０８、プロノン４０３（以上、日油社製）、エマルゲンＰＰ−２３０、エマルゲンＰＰ−２５０、エマルゲンＰＰ−２９０（以上、花王社製）、プルロニックＬ−１０１、プルロニックＬ−１０３、プルロニックＬ−１２１、プルロニックＬ−１２２、プルロニックＦ−１０８（以上、旭電化工業社製）等が挙げられる。

ＰＯＥ・ＰＯＰアルキルエーテルの具体例（市販品）としては、例えばユニルーブ５０ＭＢ−１６８、ユニルーブ７５ＤＥ−２５、ユニルーブ７５ＤＥ−３８００、ユニルーブＭＴ−０６２０Ｂ（以上、日油社製）、ユニセーフＰＫＡ−５０１５、ユニセーフＰＫＡ−５０１６（以上、日油社製）、ＥＭＡＬＥＸ ＤＡＰＥ−２２０、ＥＭＡＬＥＸ ＤＡＰＥ−２３０（以上、日本エマルジョン社製）、ノイゲンＸＬ−４００、ノイゲンＸＬ−１０００Ｆ（以上、第一工業製薬社製）等が挙げられる。

ＰＯＥ・ＰＯＰアルキルフェニルエーテルの具体例（市販品）としては、例えばエマルゲンＬ４０（花王社製）、ディスパノールＫＰ１８９−４０、ディスパノールＫＰ１８９Ｒ−４０（以上、日油社製）等が挙げられる。

ＰＯＥ多環フェニルエーテルの具体例（市販品）としては、例えばニューコール７１４、ニューコール７０７、ニューコール２６０９、ニューコール２６１４（以上、日本乳化剤社製）、エマルゲンＡ−６０、エマルゲンＡ−９０、エマルゲンＢ−６６（以上、花王社製）、ＢＬＡＵＮＯＮ ＤＳＰ−９、ＢＬＡＵＮＯＮ ＤＳＰ−１２．５、ＢＬＡＵＮＯＮ ＴＳＰ−５、ＢＬＡＵＮＯＮ ＴＳＰ−１６（以上、青木油脂社製）等が挙げられる。

ＰＯＥ・ＰＯＰ多環フェニルエーテルの具体例（市販品）としては、例えばニューコール２６１６Ｆ、ニューコール７１０−Ｆ、ニューコール２６０８Ｆ、ニューコール７０７−Ｆ（以上、日本乳化剤社製）、ニューカルゲンＣＰ−１６０、ニューカルゲンＧＰ−１２０（以上、竹本油脂社製）等が挙げられる。

エチレンジアミンＰＯＥ・ＰＯＰ縮合物の具体例（市販品）としては、例えばエチレンジアミンＰＯ４０ＥＯ４０（日油社製）、プルロニックＴＲ−７０４（旭電化工業社製）等が挙げられる。

本発明の測定方法におけるポリオキシエチレン系非イオン性界面活性剤の濃度としては、本発明の測定方法を可能とする濃度であれば特に制限はなく、例えば0.01〜1%であり、0.05〜0.2%が好ましい。本発明においては、ポリオキシエチレン系非イオン性界面活性剤を単独（1種類）で用いることもできるが、2種以上組み合わせて用いることもできる。

（５）胆汁酸誘導体
本発明における胆汁酸誘導体としては、本発明の測定を可能とするものであれば特に制限はないが、例えば両性界面活性剤作用を有する胆汁酸誘導体、非イオン性界面活性剤作用を有する胆汁酸誘導体等が挙げられる。両性界面活性剤作用を有する胆汁酸誘導体としては、例えば３−［（３−コールアミドプロピル）ジメチルアンモニオ］プロパンスルホネート{3-[(3-cholamidopropyl)dimethylammonio]propanesulfonic acid}（以下、ＣＨＡＰＳと略記する）、３−［（３−コールアミドプロピル）ジメチルアンモニオ］−２−ヒドロキシプロパンスルホネート{3-[(3-cholamidopropyl)dimethylammonio]-2-hydroxypropanesulfonic acid}（以下、ＣＨＡＰＳＯと略記する｝等が挙げられる。

非イオン性界面活性剤機能を有する胆汁酸誘導体としては、例えばＮ，Ｎ−ビス（３−Ｄ−グルコンアミドプロピル）コールアミド[N,N-Bis(3-D-gluconamidopropyl)cholamide]（以下、ＢＩＧＣＨＡＰと略記する）、Ｎ，Ｎ−ビス（３−Ｄ−グルコンアミドプロピル）デオキシコールアミド[N,N-Bis(3-D-gluconamidopropyl)deoxycholamide]（以下、ｄｅｏｘｙ−ＢＩＧＣＨＡＰと略記する）等が挙げられる。

本発明の測定方法における胆汁酸誘導体の濃度としては、臨界ミセル濃度(cmc)の１倍〜５０倍の範囲の濃度で用いるとよく、特にｃｍｃ濃度の１倍〜１０倍が好ましい。本発明においては、胆汁酸誘導体を単独（１種類）で用いることもできるが、２種以上組み合わせて用いることもできる。

（６）抗体および標識化抗体
本発明における抗体としては、測定対象成分に特異的に結合する抗体であれば特に制限はなく、ポリクローナル抗体、モノクローナル抗体のいずれも使用できるが、モノクローナル抗体が好ましい。また、本発明における抗体としては、抗体をパパイン処理により得られるFab、ペプシン処理により得られるF(ab’)₂、ペプシン処理−還元処理により得られるFab’等のFc部分を除去した抗体フラグメントも使用できる。抗体フラグメントとしては、F(ab’)₂が好ましい。

本発明における抗体は、測定対象成分またはそのエピトープに相当するペプチドを抗原として用いて通常の方法により取得することができるが、市販品としても入手可能である。

測定対象成分がＭｘＡ蛋白質である場合、ＭｘＡ蛋白質に特異的に結合する抗体としては、例えば、国際公開公報ＷＯ９６／０５２３０に記載された、ハイブリドーマ細胞株ＫＭ１１２２、ＫＭ１１２３、ＫＭ１１２４（ＦＥＲＭ ＢＰ−４７２９）、ＫＭ１１２５、ＫＭ１１２６、ＫＭ１１２７、ＫＭ１１２８、ＫＭ１１２９、ＫＭ１１３０、ＫＭ１１３１、ＫＭ１１３２（ＦＥＲＭ ＢＰ−４７３０）、ＫＭ１１３３、ＫＭ１１３４、ＫＭ１１３５（ＦＥＲＭ ＢＰ−４７３１）がそれぞれ産生する抗ヒトＭｘＡ蛋白質モノクローナル抗体ＫＭ１１２２、ＫＭ１１２３、ＫＭ１１２４、ＫＭ１１２５、ＫＭ１１２６、ＫＭ１１２７、ＫＭ１１２８、ＫＭ１１２９、ＫＭ１１３０、ＫＭ１１３１、ＫＭ１１３２、ＫＭ１１３３、ＫＭ１１３４、ＫＭ１１３５等が挙げられる。

本発明における標識化抗体は、本発明の測定方法において使用され得るものであり、上記の抗体と後述の標識物質とを用いて、後述の方法により作製することができる。

（７）測定方法
本発明の測定方法は、検体中の測定対象成分と、該測定対象成分に結合する第１抗体とを、脂肪酸アルカノールアミド存在下に反応させた後、該測定対象成分に結合する第２抗体に標識が結合した標識化第２抗体を反応させて、第１抗体、該測定対象成分、及び、標識化第２抗体からなる免疫複合体を生成させ、生成した該免疫複合体中の標識量を測定することを特徴とする、測定対象成分の測定方法である。また、本発明の測定方法は、検体中の測定対象成分と、該測定対象成分に結合する第１抗体とを反応させた後、該測定対象成分に結合する第２抗体に標識が結合した標識化第２抗体を、ポリオキシエチレン系非イオン性界面活性剤存在下に反応させて、第１抗体、該測定対象成分、及び、標識化第２抗体からなる免疫複合体を生成させ、生成した該免疫複合体中の標識量を測定することを特徴とする、測定対象成分の測定方法である。本発明の測定方法の具体的態様を以下に示す。

(1)該測定対象成分と該測定対象成分に結合する第１抗体とを、脂肪酸アルカノールアミド存在下に反応させ（第１反応工程）、次いで、該測定対象成分に結合する第２抗体に標識が結合した標識化第２抗体を反応させて（第２反応工程）、第１抗体、該測定対象成分、及び、標識化第２抗体からなる免疫複合体を生成させ、生成した該免疫複合体中の標識量を測定する（検出工程）方法。
(2)該測定対象成分と該測定対象成分に結合する第１抗体とを反応させ（第１反応工程）、次いで、該測定対象成分に結合する第２抗体に標識が結合した標識化第２抗体を、ポリオキシエチレン系非イオン性界面活性剤存在下に反応させて（第２反応工程）、第１抗体、該測定対象成分、及び、標識化第２抗体からなる免疫複合体を生成させ、生成した該免疫複合体中の標識量を測定する（検出工程）方法。
(3)該測定対象成分と該測定対象成分に結合する第１抗体とを、脂肪酸アルカノールアミド存在下に反応させ（第１反応工程）、次いで、該測定対象成分に結合する第２抗体に標識が結合した標識化第２抗体を、ポリオキシエチレン系非イオン性界面活性剤存在下に反応させて（第２反応工程）、第１抗体、該測定対象成分、及び、標識化第２抗体からなる免疫複合体を生成させ、生成した該免疫複合体中の標識量を測定する（検出工程）方法。

上記(1)〜(3)において、第１反応工程は、胆汁酸誘導体を添加して行うこともできる。

上記(1)〜(3)において、第１反応工程において、測定対象成分と第１抗体の免疫複合体が生成する。第２反応工程において、第１反応工程で生成した第１抗体と測定対象成分との免疫複合体と、標識化第２抗体とが反応し、第１抗体、測定対象成分及び標識化第２抗体の免疫複合体が生成する。検出工程において、第２反応工程で生成した第１抗体、測定対象成分及び標識化第２抗体の免疫複合体中の標識量が測定される。用いた検体中の測定対象成分の濃度は、既知濃度の測定対象成分である標準物質を用いて同様の測定を行い、濃度と標識由来の情報量との関係を表す検量線を作成し、作成した検量線と検出工程での標識量とを関連付けることにより決定することができる。

標準物質としては生体試料から調製することもできるが、遺伝子組み換え法により作製したリコンビナント抗原を用いて調製することもできる。標準物質は、溶液形態、凍結乾燥形態等のいずれの形態でもよく、形態に応じて、使用時に後述の水性媒体等に溶解させて用いることができる。また、標準物質の調製に際しては、後述の水性媒体、金属イオン、塩類、糖類、界面活性剤、蛋白類、蛋白類安定化剤等を使用することもできる。

上記(1)及び(3)の測定方法においては、予め、検体と脂肪酸アルカノールアミドとを混合、又は、検体と脂肪酸アルカノールアミド、胆汁酸誘導体とを混合して検体を前処理し、その後、前処理された検体を第１抗体との反応に供してもよい。上記(2)の測定方法においては、予め、検体と胆汁酸誘導体とを混合して検体を前処理し、その後、前処理された検体を第１抗体との反応に供してもよい。

本発明の測定方法は、ドライケミストリーでも溶液中の反応でも適用可能である。第１反応工程及び第２反応工程における反応温度としては、本発明の測定方法を可能とする反応温度であれば特に制限はなく、例えば0〜50℃が挙げられ、4℃〜40℃が好ましい。反応時間としては、本発明の測定方法を可能とする反応時間であれば特に制限はなく、例えば1分間〜72時間であり、5分間〜20時間が好ましい。

第１反応工程と第２反応工程との間には、洗浄工程を設けても、設けなくてもよいが、洗浄工程を設けることが好ましい。また、第２反応工程と検出工程との間には、洗浄工程を設けても、設けなくてもよいが、洗浄工程を設けることが好ましい。第１抗体は不溶性担体に不動化（固定化）されていなくても、不動化（固定化）されていてもよいが、不動化（固定化）されていることが好ましい。第１抗体が不溶性担体に不動化（固定化）されている場合、第１反応工程後の不溶性担体を洗浄することにより、第１反応工程で生成した第１抗体と測定対象成分の免疫複合体を、未反応成分（検体由来の成分、過剰の第１抗体等）から分離することができる。同様に、第２反応工程後の不溶性担体を洗浄することにより、第２反応工程で生成した第１抗体、測定対象成分及び標識化第２抗体の免疫複合体を、未反応成分（過剰の標識化第２抗体等）から分離することができる。洗浄液としては、リン酸緩衝化生理食塩水［0.15mol/L塩化ナトリウムを含有する10mmol/L リン酸緩衝液、pH7.2（以下、ＰＢＳと記す）］、界面活性剤を含有するＰＢＳ、後述の水性媒体等をあげることができる。当該界面活性剤としては、例えばツイーン(Tween)２０等の非イオン性界面活性剤等が挙げられる。

不溶性担体としては、第１抗体を不動化（固定化）し、抗原抗体反応、検出反応を可能とするものであれば特に制限はない。不溶性担体の好ましい素材としてはポリスチレン、ポリカーボネート、ポリビニルトルエン、ポリプロピレン、ポリエチレン、ポリ塩化ビニル、ナイロン、ポリメタクリレート、ゼラチン、アガロース、セルロース、ニトロセルロース、セルロースアセテート、酢酸セルロース、ポリエチレンテレフタレート等の高分子素材、ガラス、セラミックス、磁性粒子や金属等が挙げられる。不溶性担体の好ましい形状としてはチューブ、ビーズ、プレート、ラテックス等の微粒子、スティック等が挙げられ、９６ウェル／枚のポリスチレン製マイクロタイタープレート等が好ましい。

第１抗体の不溶性担体への不動化（固定化）方法としては、物理学的結合を利用した方法と化学的結合を利用した方法またはこれらの併用等、公知の方法が用いられる。物理学的結合としては、例えば静電的結合、水素結合、疎水結合等が挙げられる。化学的結合としては、例えば共有結合、配位結合等が挙げられる。例えば、ポリスチレン製マイクロタイタープレートを不溶性担体として使用する場合には、プレート内のウェルに第１抗体の溶液を添加して、1時間から1日間、4℃〜30℃でインキュベートすることにより、物理吸着させ固定化する方法をあげることができる。

第１抗体は、直接、不溶性担体に不動化（固定化）してもよいし、間接的に不溶性担体に不動化（固定化）してもよい。間接的な不動化（固定化）方法としては、例えばアビジンを固定化した不溶性担体に、ビオチン化した第１抗体の溶液を添加し、ビオチンとアビジンとの特異的結合を介して、第１抗体を不溶性担体に固定化する方法が挙げられる。また、不溶性担体に、第１抗体に特異的に結合する抗体を固定化し、この抗体を介して第１抗体を不溶性担体に固定化してもよい。あるいは、第１抗体は、リンカーを介した共有結合により不溶性担体に固定化してもよい。リンカーとしては、例えば、第１抗体の官能基と不溶性担体がその表面に保持している官能基の両者と共有結合できる分子等が挙げられ、第１抗体の官能基と反応することができる第１の反応活性基と、不溶性担体がその表面に保持している官能基と反応することができる第２の反応活性基とを同一分子内に持つ分子が好ましく、その中でも、第１の反応活性基と第２の反応活性基が異なる基である分子が特に好ましい。第１抗体の官能基および不溶性担体がその表面に保持している官能基としては、カルボキシル基やアミノ基、グリシジル基、スルフヒドリル基、水酸基、アミド基、イミノ基、Ｎ−ヒドロキシサクシニル基、マレイミド基等が挙げられる。リンカーにおける活性な反応性基としては、アリルアジド、カルボジイミド、ヒドラジド、アルデヒド、ヒドロキシメチルホスフィン、イミドエステル、イソシアネート、マレイミド、Ｎ−ヒドロキシスクシンイミド（ＮＨＳ）エステル、ペンタフルオロフェニル（ＰＦＰ）エステル、ソラレン、ピリジルジスルフィド、ビニルスルホン等の基が挙げられる。

第１抗体が不溶性担体に不動化（固定化）されていない場合には、第１反応工程後の反応液を、第１抗体と反応し得る物質が不動化（固定化）された不溶性担体に供し、その後、不溶性担体を洗浄することにより、第１抗体と測定対象成分の免疫複合体を未反応成分（検体由来の成分、過剰の第１抗体等）から分離することができる。第１抗体と反応し得る物質の不溶性担体への不動化（固定化）は、前述の第１抗体の不溶性担体への不動化（固定化）と同様の方法により行うことができる。

第２抗体を標識する標識物質としては酵素、蛍光物質、発光物質、放射性同位元素、ビオチン、ジゴキシゲニン、タグ配列を含むポリペプチド、金属コロイド粒子、着色ラテックス粒子等が挙げられる。酵素としては、例えば、アルカリホスファターゼ、ペルオキシダーゼ、ガラクトシダーゼ、グルクロニダーゼ、ルシフェラーゼ等が挙げられる。蛍光物質としては、例えば、FITC（フルオレッセイン イソチオシアナート）、RITC（ローダミンＢ−イソチオシアナート）等が挙げられる。その他の蛍光物質として、例えばquantum dot（Science, 281, 2016-2018, 1998）、フィコエリスリン等のフィコビリ蛋白質、GFP（Green fluorescent Protein）、RFP（Red fluorescent Protein）、YFP（Yellow fluorescent Protein）、BFP（Blue fluorescent Protein）等の蛍光を発する蛋白質が挙げられる。発光物質としては、例えば、アクリジニウムおよびその誘導体、ルテニウム錯体化合物、ロフィン等が挙げられる。またルテニウム錯体化合物としては、電子供与体と共に電気化学的に発光する、Clin. Chem. 37, 9, 1534-1539, 1991に示されたものが好ましい。放射性同位元素としては、例えば、³H、¹⁴C、³⁵S、³²P、¹²⁵I、¹³¹I等が挙げられる。

タグ配列を含むポリペプチドとしては、FLAGペプチド（FLAGタグ、Asp Tyr Lys Asp Asp Asp Asp Lys）、ポリヒスチジン（Hisタグ、His His His His His His）、mycエピトープペプチド（mycタグ、Glu Gln Lys Leu Ile Ser Glu Glu Asp Leu）、ヘマグルチニンエピトープペプチド（HAタグ、Tyr Pro Tyr Asp Val Pro Asp Tyr Ala）等が挙げられる。

第２抗体の標識化は、第２抗体の官能基と標識物質の官能基との間で、リンカーを介してまたは介さず共有結合を生じる反応によって行うことができる。官能基としては、カルボキシル基やアミノ基、グリシジル基、スルフヒドリル基、水酸基、アミド基、イミノ基、ヒドロキシサクシニルエステル基、マレイミド基、イソチオシアナート基等が挙げられる。この官能基同士の間で縮合反応を行わせることが可能である。

リンカーを介さない結合方法としては例えば、EDC等のカルボジイミド化合物を用いる方法等が挙げられる。この場合、NHSまたはその誘導体等の活性エステルを使用することも可能である。イソチオシアナート基とアミノ基の間の縮合反応は、他の試薬を必要とせず、中性〜弱アルカリ性の条件で混合するだけで進行するため、好ましい。

リンカーとしては、例えば、第２抗体の官能基に反応する官能基と、標識物質の官能基に反応する官能基の両方の官能基を分子内に有するものが挙げられ、第２抗体のアミノ酸残基と反応することができる第１の官能基と、標識物質の官能基と反応することができる第２の官能基とを同一分子内に有する分子が好ましく、その中でも、第１の官能基と第２の官能基とが異なる基である分子が特に好ましい。リンカーの官能基としては、例えば前述の官能基が挙げられる。

放射性同位元素を化学的に結合させる方法としては、例えば文献（Antibody Immunoconj. Radiopharm., 3, 60, 1990）記載の方法が挙げられる。
標識物質が酵素、アビジン、蛍光を発する蛋白質、フィコビリ蛋白質、タグ配列を含むポリペプチド等のポリペプチドである場合には、公知の遺伝子組換え技術（Molecular Cloning: A Laboratory Manual, 3rd Edition, Cold Spring Harbor Laboratory Press, 2001）に従って、標識物質と抗体の融合蛋白質をコードするＤＮＡを含む発現ベクターを作製し、発現ベクターを適当な宿主に導入して、宿主を培養することにより製造することができる。融合蛋白質をコードするDNAは、抗体および標識物質をそれぞれコードするDNAをPCR等でクローニングし、それぞれのDNAをリガーゼ反応で連結することにより得ることができる。

検出工程において、第２反応工程で生成した第１抗体、測定対象成分及び標識化第２抗体の免疫複合体中の標識量を測定する。標識量の測定は、標識物質に応じて適切な方法を選択することができる。標識物質が発色物質、すなわち、ある波長の光を吸収する物質の場合には、分光光度計やマルチウェルプレートリーダー等を用いることができる。標識物質が蛍光物質の場合には、蛍光光度計や蛍光マルチウェルプレートリーダー等を用いることができる。標識物質が発光物質の場合には、発光光度計や発光マルチウェルプレートリーダー等を用いることができる。標識物質が放射性同位元素である場合、放射性同位元素の量は、放射活性をシンチレーションカウンター、γ−ウェルカウンター等により測定することができる。

標識が酵素である場合、標識量の測定とは、酵素活性を測定することを意味する。酵素の基質を当該酵素と反応させ、生成した物質を測定することにより、標識量を測定することができる。酵素がペルオキシダーゼである場合には、例えば吸光度法、蛍光法、発光法等によりペルオキシダーゼ活性を測定することができる。吸光度法によりペルオキシダーゼ活性を測定する方法としては、例えばペルオキシダーゼとその基質である過酸化水素および酸化発色型色原体の組み合わせとを反応させ、反応液の吸光度を分光光度計やマルチウェルプレートリーダー等で測定する方法等が挙げられる。酸化発色型色原体としては、例えばロイコ型色原体、酸化カップリング発色型色原体等が挙げられる。

ロイコ型色原体は、過酸化水素およびペルオキシダーゼ等の過酸化活性物質の存在下、単独で色素へ変換される物質である。具体的には、テトラメチルベンジジン、ｏ−フェニレンジアミン、１０−Ｎ−カルボキシメチルカルバモイル−３，７−ビス（ジメチルアミノ）−１０Ｈ−フェノチアジン（ＣＣＡＰ）、１０−Ｎ−メチルカルバモイル−３，７−ビス（ジメチルアミノ）−１０Ｈ−フェノチアジン（ＭＣＤＰ）、Ｎ−（カルボキシメチルアミノカルボニル）−４，４’−ビス（ジメチルアミノ）ジフェニルアミン ナトリウム塩（ＤＡ−６４）、４，４’−ビス（ジメチルアミノ）ジフェニルアミン、ビス〔３−ビス（４−クロロフェニル）メチル−４−ジメチルアミノフェニル〕アミン（ＢＣＭＡ）等が挙げられる。

酸化カップリング発色型色原体は、過酸化水素およびペルオキシダーゼ等の過酸化活性物質の存在下、２つの化合物が酸化的カップリングして色素を生成する物質である。２つの化合物の組み合わせとしては、カプラーとアニリン類（トリンダー試薬）との組み合わせ、カプラーとフェノール類との組み合わせ等が挙げられる。カプラーとしては、例えば４−アミノアンチピリン（４−ＡＡ）、３−メチル−２−ベンゾチアゾリノンヒドラジン等が挙げられる。アニリン類としては、Ｎ−（３−スルホプロピル）アニリン、Ｎ−エチル−Ｎ−（２−ヒドロキシ−３−スルホプロピル）−３−メチルアニリン（ＴＯＯＳ）、Ｎ−エチル−Ｎ−（２−ヒドロキシ−３−スルホプロピル）−３，５−ジメチルアニリン（ＭＡＯＳ）、Ｎ−エチル−Ｎ−（２−ヒドロキシ−３−スルホプロピル）−３，５−ジメトキシアニリン（ＤＡＯＳ）、Ｎ−エチル−Ｎ−（３−スルホプロピル）−３−メチルアニリン（ＴＯＰＳ）、Ｎ−（２−ヒドロキシ−３−スルホプロピル）−３，５−ジメトキシアニリン（ＨＤＡＯＳ）、Ｎ，Ｎ−ジメチル−３−メチルアニリン、Ｎ，Ｎ−ジ（３−スルホプロピル）−３，５−ジメトキシアニリン、Ｎ−エチル−Ｎ−（３−スルホプロピル）−３−メトキシアニリン、Ｎ−エチル−Ｎ−（３−スルホプロピル）アニリン、Ｎ−エチル−Ｎ−（３−スルホプロピル）−３，５−ジメトキシアニリン、Ｎ−（３−スルホプロピル）−３，５−ジメトキシアニリン、Ｎ−エチル−Ｎ−（３−スルホプロピル）−３，５−ジメチルアニリン、Ｎ−エチル−Ｎ−（２−ヒドロキシ−３−スルホプロピル）−３−メトキシアニリン、Ｎ−エチル−Ｎ−（２−ヒドロキシ−３−スルホプロピル）アニリン、Ｎ−エチル−Ｎ−（３−メチルフェニル）−Ｎ’−サクシニルエチレンジアミン（ＥＭＳＥ）、Ｎ−エチル−Ｎ−（３−メチルフェニル）−Ｎ’−アセチルエチレンジアミン、Ｎ−エチル−Ｎ−（２−ヒドロキシ−３−スルホプロピル）−４−フルオロ−３，５−ジメトキシアニリン（Ｆ−ＤＡＯＳ）等が挙げられる。フェノール類としては、フェノール、４−クロロフェノール、３−メチルフェノール、３−ヒドロキシ−２，４，６−トリヨード安息香酸（ＨＴＩＢ）等が挙げられる。

蛍光法によりペルオキシダーゼ活性を測定する方法としては、例えばペルオキシダーゼとその基質である過酸化水素および蛍光物質の組み合わせとを反応させ、蛍光光度計や蛍光マルチウェルプレートリーダー等で生成した蛍光の強度を測定する方法等が挙げられる。当該蛍光物質としては、例えば４−ヒドロキシフェニル酢酸、３−（４−ヒドロキシフェニル）プロピオン酸、クマリン等が挙げられる。

発光法によるペルオキシダーゼ活性を測定する方法としては、例えばペルオキシダーゼとその基質である過酸化水素および発光物質の組み合わせとを反応させ、発光強度計や発光マルチウェルプレートリーダー等で生成した発光の強度を測定する方法等が挙げられる。当該発光物質としては、例えばルミノール化合物、ルシゲニン化合物等が挙げられる。

酵素がアルカリホスファターゼである場合には、例えば発光法等によりアルカリホスファターゼ活性を測定することができる。発光法によりアルカリホスファターゼ活性を測定する方法としては、例えばアルカリホスファターゼとその基質とを反応させ、生成した発光の発光強度を発光強度計や発光マルチウェルプレートリーダー等で測定する方法等が挙げられる。アルカリホスファターゼの基質としては、例えば３−（２'−スピロアダマンタン）−４−メトキシ−４−（３'−ホスホリルオキシ）フェニル−１，２−ジオキセタン・二ナトリウム塩（ＡＭＰＰＤ）、２−クロロ−５−｛４−メトキシスピロ［１，２−ジオキセタン−３，２'−（５'−クロロ）トリシクロ［３．３．１．１３，７］デカン］−４−イル｝フェニルホスフェート・二ナトリウム塩（ＣＤＰ−Ｓｔａｒ^ＴＭ）、３−｛４−メトキシスピロ［１，２−ジオキセタン−３，２'−（５'−クロロ）トリシクロ［３．３．１．１３，７］デカン］−４−イル｝フェニルホスフェート・二ナトリウム塩（ＣＳＰＤ^ＴＭ）、［１０−メチル−９（１０Ｈ）−アクリジニルイデン］フェノキシメチルリン酸・二ナトリウム塩（Ｌｕｍｉｇｅｎ^ＴＭ ＡＰＳ−５）等が挙げられる。

酵素がβ−Ｄ−ガラクトシダーゼである場合には、例えば吸光度法（比色法）、発光法または蛍光法等によりβ−Ｄ−ガラクトシダーゼ活性を測定することができる。吸光度法（比色法）によりβ−Ｄ−ガラクトシダーゼ活性を測定する方法としては、例えばｏ−ニトロフェニル−β−Ｄ−ガラクトピラノシド等が挙げられる。発光法によりβ−Ｄ−ガラクトシダーゼ活性を測定する方法としては、例えばβ−Ｄ−ガラクトシダーゼとその基質とを反応させ、反応液の発光度を発光強度計や発光マルチウェルプレートリーダー等で測定する方法等が挙げられる。β−Ｄ−ガラクトシダーゼの基質としては、例えばガラクトン−プラス［Galacton-Plus、アプライドバイオシステムズ（Applied Biosystems）社製］またはその類似化合物等が挙げられる。蛍光法によりβ−Ｄ−ガラクトシダーゼ活性を測定する方法としては、例えばβ−Ｄ−ガラクトシダーゼとその基質とを反応させ、反応液の蛍光度を蛍光光度計や蛍光マルチウェルプレートリーダー等で測定する方法等が挙げられる。β−Ｄ−ガラクトシダーゼの基質としては、例えば４−メチルウンベリフェリル−β−Ｄ−ガラクトピラノシド等が挙げられる。

酵素がルシフェラーゼである場合には、例えば発光法等によりルシフェラーゼ活性を測定することができる。発光法によりルシフェラーゼ活性を測定する方法としては、例えばルシフェラーゼとその基質とを反応させ、反応液の発光度を発光強度計や発光マルチウェルプレートリーダー等で測定する方法等が挙げられる。ルシフェラーゼの基質としては、例えばルシフェリン、セレンテラジン等が挙げられる。

標識物質が蛍光物質、発光物質、放射性同位元素および酵素以外の物質（物質Ａとする）である場合は、物質Ａに特異的に結合する物質（物質Ｂ）を蛍光物質、発光物質、放射性同位元素、酵素等で標識した標識化物質Ｂと、第２反応工程で生成した第１抗体、測定対象成分及び標識化第２抗体（すなわち、物質Ａで標識化された第２抗体）の免疫複合体とを反応させて、第１抗体、測定対象成分、標識化第２抗体（すなわち、物質Ａで標識化された第２抗体）及び標識化物質Ｂの免疫複合体を生成させて、生成したこの免疫複合体中の標識量を前述の方法により測定することにより、検体中の測定対象成分を測定することができる。物質Ｂとしては、例えば物質Ａに対する抗体、アビジン（物質Ａが、ビオチンの場合）、ストレプトアビジン（物質Ａが、ビオチンの場合）、ビオチン（物質Ａが、アビジン、ストレプトアビジンの場合）等が挙げられる。物質Ａに対する抗体としては、抗体フラグメントでもよく、抗体フラグメントとしては、例えば前述のFab、F(ab’)₂、Fab’等が挙げられる。

尚、本発明の測定方法(1)及び(2)の第１反応工程は、競合法にも適用することができる。競合法としては、具体的には以下の態様が挙げられる。
(4)測定対象成分を、脂肪酸アルカノールアミドの存在下、競合物質に標識が結合した標識化競合物質、及び、該測定対象成分と標識化競合物質の両者に結合する抗体と反応させ（競合反応工程）、生成した該標識化競合物質と該抗体の免疫複合体中の標識量を測定する（検出工程）方法。
(5)測定対象成分を、脂肪酸アルカノールアミドの存在下、競合物質、及び、該測定対象成分と該競合物質の両者に結合する抗体に標識が結合した標識化抗体と反応させ（競合反応工程）、生成した該競合物質と該標識化抗体の免疫複合体中の標識量を測定する（検出工程）方法。

競合反応工程は、胆汁酸誘導体を添加して行ってもよい。また、競合反応工程と検出工程との間に洗浄工程を設けても、設けなくてもよいが、洗浄工程を設けることが好ましい。洗浄工程としては、例えば前述の測定方法(1)〜(3)での洗浄工程等が挙げられる。

上記(4)の方法においては、測定対象成分と標識化競合物質の両者に結合する抗体は、不溶性担体に不動化（固定化）されていても、不動化（固定化）されていなくてもよいが、不動化（固定化）されていることが好ましい。また、上記(5)の方法においては、競合物質は、不溶性担体に不動化（固定化）されていなくても、不動化（固定化）されていてもよいが、不動化（固定化）されていることが好ましい。

競合反応工程は、水性媒体存在下で行っても、水性媒体非存在下で行ってもよいが、水性媒体存在下で行うことが好ましい。水性媒体としては、例えば後述の水性媒体等が挙げられる。ここで、競合物質とは、「測定対象成分に結合する抗体」に結合できる物質であって、かつその結合が、該測定対象成分と競合的であるような物質を意味し、測定対象成分そのものも含まれる。競合物質は、検体中の測定対象成分を競合法により測定する際に使用されるものである。従って、競合法において用いる測定対象成分に結合する抗体は、測定対象成分および競合物質に結合する抗体であり、該測定対象成分と結合して免疫複合体を生成するとともに、競合物質とも結合して免疫複合体を生成する。

競合物質としては、成分に結合する抗体が認識するエピトープの構造と同じ構造を有している物質が好ましく、さらに測定対象成分に結合する抗体に対する結合の強さが、該抗体に対する該成分の結合の強さと同程度であるものが好ましい。測定対象成分そのものは競合物質として好ましい。標識化競合物質は、競合物質と前述の標識物質とを用いて、前述の標識化第２抗体と同様の方法により調製することができる。

本発明において使用される水性媒体としては、例えば脱イオン水、蒸留水、緩衝液等が挙げられ、緩衝液が好ましい。緩衝液の調製に使用される緩衝剤としては、緩衝能を有するものならば特に限定されないが、ｐＨ１〜１１の例えば乳酸緩衝剤、クエン酸緩衝剤、酢酸緩衝剤、コハク酸緩衝剤、フタル酸緩衝剤、リン酸緩衝剤、トリエタノールアミン緩衝剤、ジエタノールアミン緩衝剤、リジン緩衝剤、バルビツール緩衝剤、イミダゾール緩衝剤、リンゴ酸緩衝剤、シュウ酸緩衝剤、グリシン緩衝剤、ホウ酸緩衝剤、炭酸緩衝剤、グリシン緩衝剤、グッド緩衝剤等が挙げられる。

グッド緩衝剤としては、例えば２−モルホリノエタンスルホン酸（ＭＥＳ）緩衝剤、ビス（２−ヒドロキシエチル）イミノトリス（ヒドロキシメチル）メタン（Ｂｉｓ−Ｔｒｉｓ）緩衝剤、トリス（ヒドロキシメチル）アミノメタン（Ｔｒｉｓ）緩衝剤、Ｎ−（２−アセトアミド）イミノ二酢酸（ＡＤＡ）緩衝剤、ピペラジン−Ｎ，Ｎ’−ビス（２−エタンスルホン酸）（ＰＩＰＥＳ）緩衝剤、２−［Ｎ−（２−アセトアミド）アミノ］エタンスルホン酸（ＡＣＥＳ）緩衝剤、３−モルホリノ−２−ヒドロキシプロパンスルホン酸（ＭＯＰＳＯ）緩衝剤、２−［Ｎ，Ｎ−ビス（２−ヒドロキシエチル）アミノ］エタンスルホン酸（ＢＥＳ）緩衝剤、３−モルホリノプロパンスルホン酸（ＭＯＰＳ）緩衝剤、２−｛Ｎ−［トリス（ヒドロキシメチル）メチル］アミノ｝エタンスルホン酸（ＴＥＳ）緩衝剤、Ｎ−（２−ヒドロキシエチル）−Ｎ’−（２−スルホエチル）ピペラジン（ＨＥＰＥＳ）緩衝剤、３−［Ｎ，Ｎ−ビス（２−ヒドロキシエチル）アミノ］−２−ヒドロキシプロパンスルホン酸（ＤＩＰＳＯ）緩衝剤、２−ヒドロキシ−３−｛［Ｎ−トリス（ヒドロキシメチル）メチル］アミノ｝プロパンスルホン酸（ＴＡＰＳＯ）緩衝剤、ピペラジン−Ｎ，Ｎ’−ビス（２−ヒドロキシプロパン−３−スルホン酸）（ＰＯＰＳＯ）緩衝剤、Ｎ−（２−ヒドロキシエチル）−Ｎ’−（２−ヒドロキシ−３−スルホプロピル）ピペラジン（ＨＥＰＰＳＯ）緩衝剤、Ｎ−（２−ヒドロキシエチル）−Ｎ’−（３−スルホプロピル）ピペラジン（ＥＰＰＳ）緩衝剤、トリシン［Ｎ−トリス（ヒドロキシメチル）メチルグリシン］緩衝剤、ビシン［Ｎ，Ｎ−ビス（２−ヒドロキシエチル）グリシン］緩衝剤、３−［Ｎ−トリス（ヒドロキシメチル）メチル］アミノプロパンスルホン酸（ＴＡＰＳ）緩衝剤、２−（Ｎ−シクロヘキシルアミノ）エタンスルホン酸（ＣＨＥＳ）緩衝剤、３−（Ｎ−シクロヘキシルアミノ）−２−ヒドロキシプロパンスルホン酸（ＣＡＰＳＯ）緩衝剤、３−（Ｎ−シクロヘキシルアミノ）プロパンスルホン酸（ＣＡＰＳ）緩衝剤等が挙げられる。

緩衝液の濃度は測定に適した濃度であれば特に制限はされないが、0.001〜2.0mol/Lが好ましく、0.005〜1.0mol/Lがより好ましく、0.01〜0.1mol/Lが特に好ましい。

本発明の測定方法においては、金属イオン、塩類、糖類、防腐剤、蛋白質、蛋白質安定化剤等を共存させることができる。金属イオンとしては、例えばマグネシウムイオン、マンガンイオン、亜鉛イオン等が挙げられる。塩類としては、例えば塩化ナトリウム、塩化カリウム等が挙げられる。糖類としては、例えばマンニトール、ソルビトール等が挙げられる。防腐剤としては、例えばアジ化ナトリウム、抗生物質（ストレプトマイシン、ペニシリン、ゲンタマイシン等）、バイオエース、プロクリン３００、プロキセル（Proxel）ＧＸＬ等が挙げられる。蛋白質としては、例えばウシ血清アルブミン（ＢＳＡ）、ウシ胎児血清（ＦＢＳ）、カゼイン、ブロックエース（大日本製薬社製）等が挙げられる。蛋白質安定化剤としては、例えばペルオキシダーゼ安定化緩衝液［Peroxidase Stabilizing Buffer、ダコサイトメーション（DakoCytomation）社製］等が挙げられる。

（８）測定用キット
本発明の測定用キットは、検体中の測定対象成分の免疫学的測定用キットであって、本発明の測定方法に使用することができる。

本発明の測定用キットは、測定対象成分に結合する第１抗体、及び、脂肪酸アルカノールアミドを含む第１試薬と、測定対象成分に結合する第２抗体に標識が結合した標識化第２抗体を含む第２試薬とを含むことを特徴とする測定用キットである。また、本発明の測定用キットは、測定対象成分に結合する第１抗体を含む第１試薬と、測定対象成分に結合する第２抗体に標識が結合した標識化第２抗体、及び、ポリオキシエチレン系非イオン性界面活性剤を含む第２試薬とを含むことを特徴とする測定用キットである。本発明の測定用キットの具体的態様を以下に示す。

(1)測定対象成分に結合する第１抗体、及び、脂肪酸アルカノールアミドを含む第１試薬と、測定対象成分に結合する第２抗体に標識が結合した標識化第２抗体を含む第２試薬とを含む、検体中の測定対象成分の測定用キット。
(2)測定対象成分に結合する第１抗体を含む第１試薬と、測定対象成分に結合する第２抗体に標識が結合した標識化第２抗体、及び、ポリオキシエチレン系非イオン性界面活性剤を含む第２試薬とを含む、検体中の測定対象成分の測定用キット。
(3)測定対象成分に結合する第１抗体、及び、脂肪酸アルカノールアミドを含む第１試薬と、測定対象成分に結合する第２抗体に標識が結合した標識化第２抗体、及び、ポリオキシエチレン系非イオン性界面活性剤を含む第２試薬とを含む、検体中の測定対象成分の測定用キット。

第１試薬には、胆汁酸誘導体が含まれていてもよい。

上記(1)及び(3)のキットにおいては、第１試薬は、脂肪酸アルカノールアミドを含む試薬［第１試薬（Ａ）］と、測定対象成分に対する第１抗体を含有する試薬［第１試薬（Ｂ）］とが別々に保存される試薬形態を取ることもできる。上記(1)及び(3)のキットにおいて、胆汁酸誘導体が第１試薬に含まれる場合は、第１試薬は、脂肪酸アルカノールアミドと胆汁酸誘導体とを含む試薬［第１試薬（Ａ）］と、測定対象成分に対する第１抗体を含有する試薬［第１試薬（Ｂ）］とが別々に保存される試薬形態を取ることもできる。また、上記(2)のキットにおいて、胆汁酸誘導体が第１試薬に含まれる場合は、第１試薬は、胆汁酸誘導体を含む試薬［第１試薬（Ａ）］と、測定対象成分に対する第１抗体を含有する試薬［第１試薬（Ｂ）］とが別々に保存される試薬形態を取ることもできる。ここで、第１試薬（Ａ）は、検体前処理液として使用することができる。

本発明のキットの形態は、溶液形態、凍結乾燥形態等、いかなる形態でもよい。本発明のキットにおける第１抗体、標識化第２抗体、脂肪酸アルカノールアミド、ポリオキシエチレン系非イオン性界面活性剤、胆汁酸誘導体としては、ぞれぞれ、例えば前述のものが挙げられる。また、本発明のキットは、必要に応じて、前述の水性媒体、金属イオン、塩類、糖類、防腐剤、蛋白質、蛋白質安定化剤等を含有することができる。

以下、実施例により本発明をより詳細に説明するが、これらは本発明の範囲を何ら限定するものではない。

［１］抗ＭｘＡ蛋白質モノクローナル抗体の調製
以下のようにして、エピトープの異なる２種類の抗ヒトＭｘＡ蛋白質モノクローナル抗体ＫＭ１１２４（ＷＯ９６／０５２３０）およびＫＭ１１３５（ＷＯ９６／０５２３０）を調製した。なお、ＫＭ１１２４は、ヒトＭｘＡ蛋白質のアミノ末端から２２０〜２９７残基中に存在するエピトープ、ＫＭ１１３５はヒトＭｘＡ蛋白質のアミノ末端から１０〜２２０残基中に存在するエピトープとそれぞれ結合するマウスモノクローナル抗体である。

プリスタン処理した８週令ヌード雌マウス（Balb／c）に、モノクローナル抗体ＫＭ１１２４を生産するハイブリドーマ株ＫＭ１１２４（ＦＥＲＭ ＢＰ−４７２９）およびモノクローナル抗体ＫＭ１１３５を生産するハイブリドーマ株ＫＭ１１３５（ＦＥＲＭ ＢＰ−４７３１）をそれぞれ5〜20×10⁶細胞／匹ずつ腹腔内注射した。10〜21日後に、ハイブリドーマ株が腹水癌化し、腹水のたまったマウスから腹水を採取した。採取した腹水を3,000rpmで5分間、遠心分離して固形分を除去し、上清を回収した。この上清から、カプリル酸沈殿法（Antibodies-A Laboratory Manual, Cold Spring Harbor Laboratory, 1988）により精製したモノクローナル抗体を、ＭｘＡ蛋白質の免疫測定方法に用いた。

［２］リコンビナントＭｘＡ蛋白質の調製
ヒトＭｘＡ蛋白質をコードするcDNAを含むNdeI-BamHI断片（GenbankにBC032602として登録されている塩基配列を基に調製）を、ベクターpET-14b［ノバジェン（Novagen）、ＥＭＤバイオサイエンシズ（EMD Biosciences）社製］のNdeI-BamHI間に挿入して作製したヒトＭｘＡ蛋白質発現ベクターpET14b-MxA（Nucleic Acids Res, 32, 643-652, 2004）でEscherichia coli BL21 (DE3) pLysS株を形質転換した。この形質転換体は、Ｎ末端にHisタグが付加したＭｘＡ蛋白質を発現する。

得られた形質転換体を、アンピシリンを含むLB培地5mLに植菌し、600nmの吸光度(OD600)が0.5になるまで37℃で振とう培養した。この培養液をアンピシリンを含むLB培地250mLに植菌し、600nmでの吸光度が0.3〜0.5になるまで37℃で振とう培養した。ここに、イソプロピルチオガラクトシド(IPTG)を終濃度0.4mmol/Lになるように添加し、さらに37℃で2時間振とう培養した。得られた培養液を4℃で3,000rpm、10分間遠心分離して菌体を回収した。菌体はＭｘＡ蛋白質の調製まで-80℃で保存した。

ＭｘＡ蛋白質は菌体内に不溶体（inclusion body）の状態で存在していたので、菌体を氷上で融解させ、氷冷した結合緩衝液（5mmol/Lイミダゾール、0.5mol/L塩化ナトリウム、20mmol/L Tris-HCl、pH7.9）20mLを添加し、懸濁させた。菌体懸濁液に30秒ずつ5回の超音波処理をして菌体を破砕した後、4℃で4,000rpmで10分間遠心分離を行った。上清を除き、沈殿に氷冷した結合緩衝液20mLを添加して懸濁させ、再び同様に超音波処理と遠心分離を行った。上清を除き、沈殿に6mol/L尿素を含む結合緩衝液20mLを添加し、懸濁させた。同様に超音波処理を行った後、氷上で30分間静置して不溶体を溶解させ、4℃で10,000rpmで30分間遠心分離を行った。上清を回収して0.45nmミリポアフィルターでろ過した。

得られた溶液にNi-NTA His・Bindレジン（ノバジェン、ＥＭＤバイオサイエンシズ社製）0.5mLを添加し、4℃で2時間回転させながら混和させ、Hisタグを介してレジンにＭｘＡ蛋白質を結合させた。4℃で3,000rpmで2分間遠心分離し、レジンを回収した。レジンに氷冷した6mol/L尿素を含む結合緩衝液10mLを添加した後、4℃で3,000rpmで2分間遠心分離し、レジンを回収した。この洗浄操作を再度繰り返した後、さらにレジンに氷冷した洗浄緩衝液（6mol/L尿素、60mmol/Lイミダゾール、0.5mol/L塩化ナトリウム、20mmol/L Tris-HCl、pH7.9）10mLを添加し、4℃で3,000rpmで2分間遠心分離し、レジンを回収した。

レジンに、氷冷した溶出緩衝液（6mol/L尿素、1mol/Lイミダゾール、0.5mol/L塩化ナトリウム、20mmol/L Tris-HCl、pH7.9）10mLを添加し、4℃で2時間回転させながら混和させ、レジンからＭｘＡ蛋白質を溶出させた。このレジンを含む混合液を4℃、3,000rpmで2分間遠心分離し、上清のＭｘＡ蛋白質溶液を回収した。回収したＭｘＡ蛋白質溶液は、ＭｘＡ蛋白質の測定に用いる標準液を調製するために使用した。

［３］ネイティブＭｘＡ蛋白質の調製
接着性のヒトグリア芽細胞種由来の細胞株T98G（ＤＳファーマバイオメディカル株式会社より購入、J. Cell. Physiol., 99, 43-54, 1979）を、10%ウシ胎児血清（ＦＢＳ）、1%非必須アミノ酸（インビトロジェン社製）、1mmol/Lピルビン酸ナトリウム（インビトロジェン社製）を添加したE-MEM培地（和光純薬工業社製）10mLを添加した細胞培養用の10mLフラスコ内で、コンフルエントになるまで、炭酸ガス培養装置（5%CO₂、37℃）を用いて2〜3日間培養した。細胞がコンフルエントになったところで、細胞を150cm²フラスコに移して同様に培養を行った。150cm²フラスコ内で細胞がコンフルエントになったところで、培地を吸引除去し、ＰＢＳ(−)（カルシウム、マグネシウムを含まないリン酸緩衝液）で洗浄し、0.02%ＥＤＴＡを加え洗浄した。次に0.25%トリプシン溶液を添加して細胞をはがした後、等量の培養用培地を加えてトリプシンの作用を止め、細胞を回収し、25℃3分間遠心分離(1,400rpm)した。細胞数をカウントし、新しい培養用培地を添加した150cm²フラスコに1×10⁵細胞/mL程度に細胞を懸濁し、Interferon alpha A protein（フナコシ）を2,000U/mLになるよう添加した。24時間炭酸ガス培養装置を用いて培養し、培地を吸引除去し、ＰＢＳ(−)洗浄し、0.02%ＥＤＴＡを加え洗浄した。次に0.25%トリプシン溶液を添加して細胞をはがした後、等量の培養用培地を加えてトリプシンの作用を止め、細胞を回収し、25℃3分間遠心分離(1,400rpm)した。上清を除去し、0.5mLの低張緩衝液(10mmol/L ＨＥＰＥＳ、1.5mmol/L MgCl₂、10mmol/L KCl)を添加して細胞を懸濁し溶液を回収し、使用するまで-80℃で保存した。

［４］抗ＭｘＡ蛋白質抗体固相化プレートの調製
［１］で調製した抗ＭｘＡ蛋白質モノクローナル抗体ＫＭ１１３５を5μg/mLになるように100mmol/L塩化ナトリウムを含む100mmol/Lリン酸緩衝液(pH7.5)で希釈し、96ウェルマイクロタイタープレート［ナルジェンヌンクインターナショナル（Nalge Nunc International）社製］に100μL/ウェルの量で分注した。3日間放置後、上清を吸引除去し、1%ブロックエース（大日本製薬社製）、50mmol/L塩化ナトリウムを含むpH7.2リン酸緩衝液300μLを各ウェルに分注し室温で一晩静置しブロッキングした。ブロッキング液を除去した後、ＰＢＳで洗浄した。真空乾燥機で3日間乾燥したものを、抗ＭｘＡ蛋白質モノクローナル抗体固相化プレートとして使用した。

［５］ペルオキシダーゼ標識抗ＭｘＡ蛋白質抗体の調製
［１］で調製した抗ＭｘＡ蛋白質モノクローナル抗体ＫＭ１１２４を以下のようにしてマレイミド法でペルオキシダーゼ（以下、ＰＯＤと略す）と結合させ、ＰＯＤ標識抗ＭｘＡ蛋白質抗体を作製した。

まず、［１］で調製したＫＭ１１２４(2mg)を含むリン酸緩衝液を0.1mol/Lホウ酸緩衝液(pH8.0)に置換し、アミコン（Amicon）攪拌式セル［ミリポア（Millipore）社製］を用いて1mLの容量に濃縮した。濃縮後の溶液に、2.15mg/mLの２−イミノチオラン塩酸塩［ピアース（Pierce）社製］を含む0.1mol/Lホウ酸緩衝液(pH8.0)40μLを添加し、攪拌後、30℃で30分間反応させた。上記の反応において２−イミノチオラン塩酸塩は、ＫＭ１１２４に対しモル比で50倍量を用いた。5mmol/Lエチレンジアミン四酢酸２ナトリウム（ＥＤＴＡ・２Ｎａ）を加えた0.1mol/Lのリン酸緩衝液(pH6.0)で平衡化したセファデックス（Sephadex）Ｇ２５（アマシャム・バイオサイエンス社製）カラム（直径1.5cm×30cm）を用いて、反応後の溶液のゲルろ過を行い、未反応の２−イミノチオラン塩酸塩を除去し、スルフヒドリル化したＫＭ１１２４を回収した。回収した溶液をアミコン攪拌式セルを用いて、5mLの容量に濃縮した。

一方、ＫＭ１１２４に対しモル比で5倍量にあたるＰＯＤ（東洋紡績社製、ペルオキシダーゼＩ−Ｃ）2.5mgを0.1mol/Lリン酸緩衝液(pH7.0)250μLに溶解させた。この溶液を30℃で5分間加温した後、20mg/mLのＮ−（６−マレイミドカプロイルオキシ）スクシンイミド（ＥＭＣＳ、同仁化学研究所社製）のＮ，Ｎ−ジメチルホルムアミド（ナカライテスク社製）溶液36μLを加えて攪拌し、30℃で30分間反応させた。上記の反応においてＥＭＣＳは、ＰＯＤに対しモル比で40倍量を用いた。0.1mol/Lリン酸緩衝液(pH6.0)で平衡化したセファデックスＧ２５カラム（直径1.5cm×30cm）を用いて、反応後の溶液のゲルろ過を行い、未反応のＥＭＣＳを除去し、マレイミド化したＰＯＤを回収した。回収した溶液をアミコン攪拌式セルを用いて濃縮した。

上記で得られたスルフヒドリル化したＫＭ１１２４の溶液とマレイミド化したＰＯＤの溶液を混合し、アミコン攪拌式セルを用いて、さらに容量を2mLに濃縮した後、30℃で1時間反応させた。得られた標識化抗体は、使用するまで-80℃で保存した。

［６］検体希釈液および標準液の調製
以下の組成からなる検体希釈液を調製した。
ＨＥＰＥＳ（同仁化学研究所社製）（ｐＨ８．０） ０．１ｍｏｌ／Ｌ
ＣＨＡＰＳ（同仁化学研究所社製） ４．９％
界面活性剤 （第１表に記載の種類と濃度）
塩化ナトリウム １．５ｍｏｌ／Ｌ
ＢＳＡ［インタージェン（InterGen）社製］ ０．１％
アジ化ナトリウム ０．１％
前記［２］で調製したリコンビナントＭｘＡ蛋白質溶液を上記検体希釈液で希釈し、ＭｘＡ蛋白質の0（検体希釈液のみ）、0.375, 0.75, 1.5, 3, 6, 12, 24ng/mLの各濃度の溶液を調製し、標準液とした。

［７］検量線の作製
前記［４］で作製した抗ＭｘＡ蛋白質抗体（ＫＭ１１３５）固定化プレートに、［６］で作製した標準液100μLを添加し、1時間インキュベートし、抗体にＭｘＡ蛋白質を結合させた。反応液を除去した後、洗浄液［0.05%ツイーン２０（関東化学社製）を含むＰＢＳ］を400μL添加して除去する洗浄操作を5回行った。次いで、［５］で作製したＰＯＤ標識抗ＭｘＡ蛋白質抗体（ＫＭ１１２４）を、ＰＯＤ標識抗体希釈液（液状組成）緩衝液[50mmol/L Ｂｉｓ-Ｔｒｉｓ（同仁化学研究所社製）、0.1%ＢＳＡ（インタージェン（InterGen）社製）、0.01%４−アミノアンチピリン（４−ＡＡ；埼京化成社製）、0.035%プロクリン３００（シグマ社製）、0.1%ノニデットＰ４０]にて800倍に希釈したものを調製し、これを100μL添加して30分間反応させた。反応液を除去し、前述の洗浄液を400μL添加してプレートを洗浄し、洗浄液を除去する洗浄操作を5回行った。暗所で、0.05%テトラメチルベンジジンおよび過酸化水素を含むＰＯＤの発色基質ＴＭＢｌｕｅ［セロロジカル（Serological）社製］を100μL添加し、室温で10分間反応させた。0.5mol/L硫酸を100μL添加して室温で10分間インキュベーションして反応を停止させた。波長450nmでの吸光度をプレートリーダーで測定した。これらの一連の操作により、ＭｘＡ蛋白質濃度と吸光度との関係を表す検量線を作製した。

次に、検体として、先の標準液の代わりに、培養細胞や全血検体を用いて同様の操作を行い、各検体における測定値を得、得られた測定値を予め作製した検量線と関連付け、各検体中のＭｘＡ蛋白質濃度を決定した。

［８］ＭｘＡ蛋白質測定における測定値変動の検討１ （一次反応）
前記[３]で使用した接着性のヒトグリア芽細胞種由来の細胞株Ｔ９８Ｇをインターフェロンで刺激してＭｘＡ蛋白質を誘導させ、ネイティブＭｘＡ蛋白質を得た。得られたネイティブＭｘＡ蛋白質の反応性をリコンビナントＭｘＡ蛋白質と比較することにより、抗体のリコンビナントＭｘＡ蛋白質に対する反応性と、抗体のネイティブＭｘＡ蛋白質に対する反応性との相違について検討した。

前記[３]で作製したネイティブＭｘＡ蛋白質を［６］の検体希釈液で20倍希釈し、30分間静置することで細胞の可溶化を行ない、さらに検体希釈液で8倍に希釈して測定用試料とした。

この試料と実施例の［６］で調製した各濃度の標準液を検体として用いて、［７］に記載された操作に従い測定を行った。但し、一次反応は25℃と37℃の両温度で行い、二次反応および発色反応については25℃で行った。ここで、25℃反応時と37℃反応時におけるネイティブＭｘＡ蛋白質の測定値変動率は、以下の式（Ｉ）により算出した。結果を第１表に示す。

〔比較例１〕
実施例１の[６]の検体希釈液の組成中、界面活性剤を1.2%ノニデットＰ４０（ポリオキシエチレンアルキルフェニルエーテル）とすること以外は同じ組成の検体希釈液を用いて、実施例１と同様の方法により反応温度による測定値変動率を算出した。結果を第１表に示す。

第１表に示すとおり、測定値変動率について、界面活性剤を用いなかった場合(+49.9%)、ＭｘＡ蛋白質の測定における使用が知られているノニデットＰ４０（国際公開公報第２００８／０５３９７３号パンフレット参照）を用いた場合(+45.8%)に比較して、脂肪酸アルカノールアミドを用いた場合、顕著に低下し、温度による測定値への影響が顕著に抑制されることが分かる。

ＭｘＡ蛋白質測定における測定値変動の検討２ （一次反応）
ウイルス感染が認められＭｘＡ蛋白質陽性を示す患者5例からＥＤＴＡ・２Ｎａ採血管を用いて採血した血液を検体として用いた。全血検体は試料希釈液で10倍希釈し、測定試料とした。

検体希釈液として、1.2%スタホームＤＯを含む検体希釈液および1.2%ノニデットＰ４０を含む検体希釈液を用いる以外は実施例１と同様にして１次反応を25℃と37℃で行い、反応温度による測定値変動を検討した。結果を第２表に示す。

第２表に示すように、全血検体を用いた場合でも、測定値変動率は1.2%スタホームＤＯでは0〜+12%以内であり、1.2%ノニデットＰ４０の+8%〜23%に比較して反応温度による測定値への影響が顕著に抑制されていることが分かる。

ＭｘＡ蛋白質測定における測定値変動の検討３ （二次反応）
以下の組成からなるＰＯＤ標識抗体希釈緩衝液を調製した。
Ｂｉｓ−Ｔｒｉｓ（同仁化学研究所社製）（ｐＨ７.０）
５０ｍｍｏｌ／Ｌ
ＢＳＡ（インタージェン（InterGen）社製） ０．１％
プロクリン３００（シグマ社製） ０．０３５％
界面活性剤 （第３表に記載の種類と濃度）
４−ＡＡ（埼京化成社製） ０．０１％
実施例１の[３]で作製したネイティブＭｘＡ蛋白質を実施例１の［６］の検体希釈液［但し、「界面活性剤」としてノニデットＰ４０を使用］で20倍希釈し、30分間静置することで細胞の可溶化を行ない、さらに8倍に希釈して測定用試料とした。

検体として、この試料、及び、実施例１の［６］で調製した各濃度の標準液を用いて、ＰＯＤ標識抗体として、実施例１の［５］で調製したＰＯＤ標識抗ＭｘＡ蛋白質抗体を上記ＰＯＤ標識抗体希釈緩衝液にて800倍希釈したものを用いて、実施例１の［７］に記載された操作に従い測定を行った。但し、一次反応は25℃で、二次反応は25℃と37℃の両温度にて行った。25℃反応時と37℃反応時におけるネイティブＭｘＡ蛋白質の測定値変動率は、以下の式（Ｉ）により算出した。結果を第３表に示す。

〔比較例２〕
実施例３のＰＯＤ標識抗体希釈緩衝液中の界面活性剤を0.1%ノニデットＰ４０とすること以外は実施例３と同様の方法により二次反応温度による測定値変動率を算出した。結果を第３表に記す。

第３表に示すとおり、測定値変動率について、界面活性剤としてノニデットＰ４０を用いた場合(-28.4%)に比較して、ＰＯＥ・ＰＯＰ縮合物、ＰＯＥ・ＰＯＰアルキルエーテル、ＰＯＥ・ＰＯＰアルキルフェニルエーテル、ＰＯＥ多環フェニルエーテル、ＰＯＥ・ＰＯＰ多環フェニルエーテル、エチレンジアミンＰＯＥ・ＰＯＰ縮合物を用いた場合、顕著に低下しており、反応温度の測定値への影響が顕著に抑制されることが分かる。

ＭｘＡ蛋白質測定における測定値変動の検討４ （二次反応）
ウイルス感染が認められＭｘＡ蛋白質陽性を示す患者4例からＥＤＴＡ・２Ｎａ採血管を用いて採血した血液を検体として用いた。全血検体は実施例１の［６］の検体希釈液［但し、「界面活性剤」としてノニデットＰ４０(1.2%)を使用］で10倍希釈し、測定用試料とした。

実施例３のＰＯＤ標識抗体希釈緩衝液中、界面活性剤として0.1%プロノン４０３、0.1%プロノン１０２、0.1%ノニデットＰ４０をそれぞれ含むＰＯＤ標識抗体希釈緩衝液を用いて、実施例３と同様にして測定を行い（但し、一次反応は25℃で、二次反応は25℃と37℃の両温度にて行った）、反応温度による測定値変動を検討した。結果を第４表に記す。

第４表に示すように、全血検体を用いた場合でも、測定値変動率はプロノン４０３では-4.5%〜+0.6%、プロノン１０２では-3.0%〜+2.0%であり、ノニデットＰ４０の-40.1%〜-23.6%に比較して、反応温度の測定値への影響が顕著に抑制されることが分かる。

ＭｘＡ蛋白質測定における測定値変動の検討５ （二次反応）
ウイルス感染が認められＭｘＡ蛋白質陽性を示す患者５例からＥＤＴＡ・２Ｎａ採血管を用いて採血した血液を検体として用いた。全血検体は実施例１の［６］の検体希釈液［但し、「界面活性剤」としてノニデットＰ４０(1.2%)を使用］で10倍希釈し、測定用試料とした。

実施例３のＰＯＤ標識抗体希釈緩衝液中、界面活性剤として0.1%エマルゲンＰＰ−２５０、0.1%ユニルーブ５０ＭＢ−１６８、0.1%ディスパノールＫＰ１８９Ｒ−４０、0.1%ニューコール２６１６Ｆ、0.1%エチレンジアミンＰＯ４０ＥＯ４０をそれぞれ含むＰＯＤ標識抗体希釈緩衝液を用いて、実施例３と同様にして測定を行い（但し、一次反応は25℃で、二次反応は25℃と37℃の両温度にて行った）、反応温度による測定値変動を検討した。結果を第５表に記す。

第５表に示すように、全血検体を用いた場合でも、測定値変動率はエマルゲンＰＰ−２５０では-1%〜-11%、ユニルーブ５０ＭＢ−１６８では0〜-8%、ディスパノールＫＰ１８９Ｒ−４０では-5〜-15％、ニューコール２６１６Ｆでは-7〜-15％、エチレンジアミンＰＯ４０ＥＯ４０では-1〜-12%であり、ノニデットＰ４０の-33%〜-20%に比較して、反応温度の測定値への影響が顕著に抑制されることが分かる。

以下の構成要素（ａ）〜（ｇ）からなるＭｘＡ蛋白質測定用キットを調製した。
（ａ）抗ＭｘＡ蛋白質抗体固定化プレート
実施例１［４］の方法に従い、抗ＭｘＡ蛋白質抗体固定化プレートを次の方法で調製した。先ず、5μg/mLの抗ＭｘＡ蛋白質モノクローナル抗体ＫＭ１１３５の、100mmol/L塩化ナトリウムを含む100mmol/Lリン酸緩衝液(pH7.5)溶液を、96ウェルマイクロタイタープレート［ナルジェンヌンクインターナショナル（Nalge Nunc International）社製］に100μL／ウェルの量で分注し、3日間放置後、上清を吸引除去した。次いで、1％ブロックエース（大日本製薬社製）の、100mmol/L塩化ナトリウムを含む100mmol/Lリン酸緩衝液(pH7.5)溶液を各ウェルに300μL分注し、室温で一晩静置しブロッキングした。ブロッキング液を除去した後、ＰＢＳで洗浄し、真空乾燥機で3日間乾燥し、抗ＭｘＡ蛋白質モノクローナル抗体固相化プレートを調製した。

（ｂ）検体希釈液
以下の組成からなる検体希釈液を調製した。
Ｔｒｉｓ（同仁化学研究所社製）（ｐＨ８．５） ０．１ｍｏｌ／Ｌ
ＣＨＡＰＳ（同仁化学研究所社製） ２．５％
スタホームＤＯ １．２％
塩化ナトリウム ０．１ｍｏｌ／Ｌ
ＢＳＡ（生化学工業社製） ０．１％
アジ化ナトリウム ０．１％

（ｃ）ＰＯＤ標識抗ＭｘＡ蛋白抗体溶液
実施例１［５］の方法で調製されたＰＯＤ標識抗ＭｘＡ蛋白抗体ＫＭ１１２４を、以下の組成からなるＰＯＤ標識抗ＭｘＡ蛋白抗体希釈液で800倍希釈し、ＰＯＤ標識抗ＭｘＡ蛋白抗体溶液を調製した。
Ｂｉｓ−Ｔｒｉｓ（同仁化学研究所社製）（ｐＨ７．０）
０．０５ｍｏｌ／Ｌ
プロノン２０２Ｂ ０．１％
塩化ナトリウム ５０ｍｍｏｌ／Ｌ
ＢＳＡ（生化学工業社製） ０．１％
４−ＡＡ（埼京化成社製） ０．０１％
プロクリン３００ ０．０３５％

（ｄ）発色液
ＴＭＢｌｕｅ（セロロジカル社製）
（ｅ）反応停止液
０．５ｍｏｌ／Ｌ硫酸水溶液
（ｆ）洗浄液
以下の洗浄液を調製した。
リン酸緩衝液（ｐＨ７．２） １０ｍｍｏｌ／Ｌ
ツイーン２０ ０．０５％
塩化ナトリウム ０．１５ｍｏｌ／Ｌ

（ｇ）標準物質と標準液
実施例１［２］で調製したリコンビナントＭｘＡ蛋白質を、リン酸緩衝液で希釈した後、凍結乾燥し、ＭｘＡ蛋白質の標準物質を調製した。
調製した凍結乾燥状態の標準物質を上記（ｂ）の検体希釈液で希釈し、0（検体希釈液のみ）、0.375, 0.75, 1.5, 3, 6, 12, 24 ng/mLの各濃度のＭｘＡ蛋白質溶液を調製し、これらを標準液とした。

〔比較例３〕
以下の構成要素（ａ）〜（ｇ）からなるＭｘＡ蛋白質測定用キットを調製した。
（ａ）抗ＭｘＡ蛋白質抗体固定化プレート
実施例６の（ａ）と同じ抗ＭｘＡ蛋白質抗体固定化プレート。

（ｂ）検体希釈液
以下の組成からなる検体希釈液を調製した。
ＨＥＰＥＳ（同仁化学研究所社製）（ｐＨ８．０） ０．１ｍｏｌ／Ｌ
ＣＨＡＰＳ（同仁化学研究所社製） ４．９％
ノニデットＰ４０ １．２％
塩化ナトリウム ０．１ｍｏｌ／Ｌ
ＢＳＡ（生化学工業社製） ０．１％
アジ化ナトリウム ０．１％

（ｃ）ＰＯＤ標識抗ＭｘＡ蛋白抗体溶液
実施例１［５］の方法で調製されたＰＯＤ標識抗ＭｘＡ蛋白抗体ＫＭ１１２４を、以下の組成からなるＰＯＤ標識抗ＭｘＡ蛋白抗体希釈液で800倍希釈し、ＰＯＤ標識抗ＭｘＡ蛋白抗体溶液を調製した。
Ｂｉｓ−Ｔｒｉｓ（同仁化学研究所社製）（ｐＨ６．０）
５０ｍｍｏｌ／Ｌ
ノニデットＰ４０ ０．１％
塩化ナトリウム ５０ｍｍｏｌ／Ｌ
ＢＳＡ（生化学工業社製） ０．１％
４−ＡＡ（埼京化成社製） ０．０１％
プロクリン３００ ０．０３５％

（ｄ）発色液
ＴＭＢｌｕｅ（セロロジカル社製）
（ｅ）反応停止液
０．５ｍｏｌ／Ｌ硫酸水溶液
（ｆ）洗浄液
以下の洗浄液を調製した。
リン酸緩衝液（ｐＨ７．２） １０ｍｍｏｌ／Ｌ
ツイーン２０ ０．０５％
塩化ナトリウム ０．１５ｍｏｌ／Ｌ

（ｇ）標準物質と標準液
実施例１［２］で調製したリコンビナントＭｘＡ蛋白質を、リン酸緩衝液で希釈した後、凍結乾燥し、ＭｘＡ蛋白質の標準物質を調製した。
調製した凍結乾燥状態の標準物質を上記（ｂ）の検体希釈液で希釈し、0（検体希釈液のみ）、0.375, 0.75, 1.5, 3, 6, 12, 24ng/mLの各濃度のＭｘＡ蛋白質溶液を調製し、これらを標準液とした。

測定用試料として、実施例１［３］で調製した細胞を、実施例６の検体希釈液で20倍希釈し、30分間静置した後、さらに検体希釈液で8倍希釈したものを用い、キットとして、実施例６のキットを用い、次の手順により、測定を行った。

実施例６（ａ）の抗ＭｘＡ蛋白質抗体固定化プレートに、（ｇ）で調製したそれぞれの標準液100μLを添加し、所定の温度（22℃、25℃、28℃、30℃、32℃の各温度）で1時間反応させ、抗体にＭｘＡ蛋白質を結合させた。反応液を除去した後、（ｆ）の洗浄液400μLでプレートを5回洗浄した。次いで、（ｃ）で調製したＰＯＤ標識抗ＭｘＡ蛋白抗体溶液100μL添加し、所定の温度（22℃、25℃、28℃、30℃、32℃の各温度）で0.5時間反応させた。反応後、反応液を除去し、（ｆ）の洗浄液400μLでプレートを5回洗浄した。次いで、暗所にて、0.05%テトラメチルベンジジン及び過酸化水素を含む（ｄ）の発色液100μLを添加し、室温で10分間反応させた後、（ｅ）の反応停止液100μLを添加し、室温で10分間インキュベーションし、反応を停止させた。反応液の450nmでの吸光度をプレートリーダーで測定し、ＭｘＡ蛋白質濃度と吸光度との関係を表す検量線を作製した。

［比較例４］
実施例６のキットの代わりに比較例３のキットを用いる以外は実施例７と同様の方法により測定を行い、ＭｘＡ蛋白質濃度と吸光度との関係を表す検量線を作製した。
実施例７及び比較例４の測定の結果を第６表に示す。

第６表には、各反応温度での反応における測定値と、22℃での反応における測定値を100とした場合の、各温度での測定値の相対値の両者を記載している。相対値が100に近い程、測定が反応温度の影響を受け難いことを意味する。第６表から明らかな様に、スタホームＤＯ（脂肪酸アルカノールアミド）とプロノン２０２Ｂ（ＰＯＥ・ＰＯＰ縮合物）とを含む実施例６のキットを用いる実施例７の測定方法は、ノニデットＰ−４０（ＰＯＥアルキルフェニルエーテル）を含む比較例３のキットを用いる比較例４の測定方法に比較して、顕著に測定値が安定していた。このことから、本発明の測定方法は、反応温度の影響を受け難い方法であることが分かる。

本発明により、感染症の診断等に有用な、検体中の測定対象成分の測定方法および測定用キットが提供される。

Claims (30)

1. 検体中の測定対象成分と、該測定対象成分に結合する第１抗体とを反応させた後、該測定対象成分に結合する第２抗体に標識が結合した標識化第２抗体を、ポリオキシエチレン系非イオン性界面活性剤存在下に反応させて、第１抗体、該測定対象成分、及び、標識化第２抗体からなる免疫複合体を生成させ、生成した該免疫複合体中の標識量を測定することを特徴とする、測定対象成分の測定方法。
2. ポリオキシエチレン系非イオン性界面活性剤が、ポリオキシエチレンポリオキシプロピレン縮合物、ポリオキシエチレンポリオキシプロピレンアルキルエーテル、及び、エチレンジアミンポリオキシエチレンポリオキシプロピレン縮合物からなる群より選ばれるポリオキシエチレン系非イオン性界面活性剤である請求項１記載の方法。
3. 胆汁酸誘導体を添加して検体中の測定対象成分と、該測定対象成分に結合する第１抗体とを反応させる請求項１又は２記載の方法。
4. 胆汁酸誘導体が、両性界面活性作用を有する胆汁酸誘導体である請求項３記載の方法。
5. 両性界面活性作用を有する胆汁酸誘導体が、３−[（３−コールアミドプロピル）ジメチルアンモニオ]プロパンスルホネート又は３−[（３−コールアミドプロピル）ジメチルアンモニオ]−２−ヒドロキシプロパンスルホネートである請求項４記載の方法。
6. 胆汁酸誘導体が、非イオン性界面活性作用を有する胆汁酸誘導体である請求項３記載の方法。
7. 非イオン性界面活性作用を有する胆汁酸誘導体が、Ｎ，Ｎ−ビス（３−グルコンアミドプロピル）コールアミド又はＮ，Ｎ−ビス（３−Ｄ−グルコンアミドプロピル）デオキシコールアミドである請求項６記載の方法。
8. 第１抗体が、不溶性担体に不動化されている請求項１〜７のいずれかに記載の測定方法。
9. 検体が、全血である請求項１〜８のいずれかに記載の方法。
10. 測定対象成分が、ＭｘＡ蛋白質である請求項１〜９のいずれかに記載の方法。
11. 測定対象成分に結合する第１抗体を含む第１試薬と、測定対象成分に結合する第２抗体に標識が結合した標識化第２抗体、及び、ポリオキシエチレン系非イオン性界面活性剤を含む第２試薬とを含むことを特徴とする、検体中の測定対象成分の測定用キット。
12. ポリオキシエチレン系非イオン性界面活性剤が、ポリオキシエチレンポリオキシプロピレン縮合物、ポリオキシエチレンポリオキシプロピレンアルキルエーテル、及び、エチレンジアミンポリオキシエチレンポリオキシプロピレン縮合物からなる群より選ばれるポリオキシエチレン系非イオン性界面活性剤である請求項１１記載のキット。
13. 第１試薬が更に、胆汁酸誘導体を含む請求項１１又は１２記載のキット。
14. 胆汁酸誘導体が、両性界面活性作用を有する胆汁酸誘導体である請求項１３記載のキット。
15. 両性界面活性作用を有する胆汁酸誘導体が、３−[（３−コールアミドプロピル）ジメチルアンモニオ]プロパンスルホネート又は３−[（３−コールアミドプロピル）ジメチルアンモニオ]−２−ヒドロキシプロパンスルホネートである請求項１４記載のキット。
16. 胆汁酸誘導体が、非イオン性界面活性作用を有する胆汁酸誘導体である請求項１３記載のキット。
17. 非イオン性界面活性作用を有する胆汁酸誘導体が、Ｎ，Ｎ−ビス（３−グルコンアミドプロピル）コールアミド又はＮ，Ｎ−ビス（３−Ｄ−グルコンアミドプロピル）デオキシコールアミドである請求項１６記載のキット。
18. 第１抗体が、不溶性担体に不動化されている請求項１１〜１７のいずれかに記載のキット。
19. 検体が、全血である請求項１１〜１８のいずれかに記載のキット。
20. 測定対象成分が、ＭｘＡ蛋白質である請求項１１〜１９のいずれかに記載のキット。
21. 検体中の測定対象成分と、該測定対象成分に結合する第１抗体とを反応させた後、該測定対象成分に結合する第２抗体に標識が結合した標識化第２抗体を反応させて、該測定対象成分に結合した標識量を測定する免疫測定法において、該測定対象成分に結合する第２抗体に標識が結合した標識化第２抗体をポリオキシエチレン系非イオン性界面活性剤存在下に反応させることを特徴とする、免疫測定法における反応温度の影響抑制方法。
22. ポリオキシエチレン系非イオン性界面活性剤が、ポリオキシエチレンポリオキシプロピレン縮合物、ポリオキシエチレンポリオキシプロピレンアルキルエーテル、及び、エチレンジアミンポリオキシエチレンポリオキシプロピレン縮合物からなる群より選ばれるポリオキシエチレン系非イオン性界面活性剤である請求項２１記載の抑制方法。
23. 胆汁酸誘導体を添加して検体中の測定対象成分と、該測定対象成分に結合する第１抗体とを反応させる請求項２１又は２２記載の抑制方法。
24. 胆汁酸誘導体が、両性界面活性作用を有する胆汁酸誘導体である請求項２３記載の抑制方法。
25. 両性界面活性作用を有する胆汁酸誘導体が、３−[（３−コールアミドプロピル）ジメチルアンモニオ]プロパンスルホネート又は３−[（３−コールアミドプロピル）ジメチルアンモニオ]−２−ヒドロキシプロパンスルホネートである請求項２４記載の抑制方法。
26. 胆汁酸誘導体が、非イオン性界面活性作用を有する胆汁酸誘導体である請求項２３記載の抑制方法。
27. 非イオン性界面活性作用を有する胆汁酸誘導体が、Ｎ，Ｎ−ビス（３−グルコンアミドプロピル）コールアミド又はＮ，Ｎ−ビス（３−Ｄ−グルコンアミドプロピル）デオキシコールアミドである請求項２６記載の抑制方法。
28. 第１抗体が、不溶性担体に不動化されている請求項２１〜２７のいずれかに記載の抑制方法。
29. 検体が、全血である請求項２１〜２８のいずれかに記載の抑制方法。
30. 測定対象成分が、ＭｘＡ蛋白質である請求項２１〜２９のいずれかに記載の抑制方法。