JP2014505869A - 質量分析によるインスリンの定量 - Google Patents
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Abstract
Description
本出願は、その全体として、またすべての目的のために参照により本明細書に組み込まれる、2010年12月28日に出願の米国仮出願第61/427,749号の利益を主張するものである。
本発明は、インスリンの定量的測定に関する。特定の態様において、本発明は、質量分析によるインスリンの定量的測定の方法に関する。
本発明の背景の以下の記述は、単に本発明を理解するうえでの一助として示すものであって、本発明の先行技術を記述又は構成するものと認めるものではない。
本発明は、質量分析により試料中のインスリンの量を決定する方法を提供する。
試料中のインスリンの量を決定する方法を述べる。より具体的には、試料中のインスリンを検出し、定量するための質量分析法を述べる。方法は、選択される被分析物の精製を実施するための固相抽出(SPE)及び/又は液体クロマトグラフィー(LC)を質量分析(MS)の方法と組み合わせて利用し、それにより、試料中のインスリンを検出し、定量するためのアッセイシステムを提供し得る。好ましい実施形態は、自動インスリン定量アッセイへの大規模臨床施設における適用に特に十分に適している。
質量分析のための調製において、例えば、液体クロマトグラフィー、ろ過、遠心分離、薄層クロマトグラフィー(TLC)、毛細管電気泳動を含む電気泳動、免疫アフィニティー分離を含むアフィニティー分離、酢酸エチル若しくはメタノール抽出を含む抽出法及びカオトロピック剤の使用又は上記のもの若しくは同類のもののいずれかの組み合わせを含む当技術分野で公知の様々な方法により、インスリンを試料中の1つ又は複数の他の成分と比べて濃縮することができる。
質量分析は、分別試料をイオン化し、さらなる分析のために荷電分子を生成するためのイオン源を含む質量分析計を用いて実施される。様々な実施形態において、インスリンは、当業者に公知の方法によりイオン化することができる。例えば、インスリンのイオン化は、電子イオン化、化学イオン化、エレクトロスプレーイオン化(ESI)、光子イオン化、大気圧化学イオン化(APCI)、光イオン化、大気圧光イオン化(APPI)、レーザーダイオード熱脱離(LDTD)、高速原子衝撃(FAB)、液体二次イオン化(LSI)、マトリックス支援レーザー脱離イオン化(MALDI)、電界イオン化、電界脱離、サーモスプレー/プラズマスプレーイオン化、表面エンハンス型レーザー脱離イオン化(SELDI)、誘導結合プラズマ(ICP)及び粒子ビームイオン化により行うことができる。当業者は、イオン化法の選択は、測定される被分析物、試料の種類、検出器の種類、ポジティブ対ネガティブモードの選択等に基づいて決定することができることを理解し、インスリンはポジティブモードでイオン化されても、ネガティブモードでイオン化されてもよい。好ましい実施形態において、インスリンは、ESIによりポジティブイオンモードでイオン化される。
他の実施形態において、質量分析の前にインスリンの成分鎖を得るために、インスリンを化学処理に供することができる。インスリンのA鎖及びB鎖は、ジスルフィド還元を引き起こすことが当技術分野で公知である任意の化学的処理により分離することができる。例えば、インスリンをTCEP(トリス(2−カルボキシエチル)ホスフィン)で処理して、インスリンのジスルフィド架橋を還元し、A鎖とB鎖を分離することができる。
代替実施形態において、別個のインスリンA鎖及びB鎖を、イオン化及び/又は精製の前に1つ又は複数の化学的改変ステップに供することができる。例えば、分離されたならば、インスリンA鎖及びB鎖分子は、構成要素であるシステインを完全にアルキル化するためのカルバミドメチル化を受け得る。例えば、カルバミドメチル化は、インスリンA鎖及び/又はB鎖を、DTT(1,4−ジチオトレイトール)による還元の後にヨードアセトアミドとの反応に供することによって達成することができる。インスリンA鎖のカルバミドメチル化は、約228.08amu(システイン当たり約57.02)の質量増加を引き起こす、4個のシステインのアルキル化をもたらす。インスリンB鎖のカルバミドメチル化は、約114.04amu(システイン当たり約57.02)の質量増加を引き起こす、2個のシステインのアルキル化をもたらす。
様々な量のインスリンを含有する模擬血清試料は、直線的な応答を評価するために、模擬血清(0.002%プロテアーゼ阻害剤AEBSFを含むリン酸緩衝生理食塩水(PBS)緩衝液に溶かした牛血清アルブミン(BSA)40mg/mL)にヒトインスリンを様々な濃度でスパイクすることによって調製した(以下の実施例4で述べる)。
前記で調製したヒトインスリンスパイク模擬及びストリップ血清の試料注入は、Cohesive Technologies Aria TX−420システムで、Aria OS V1.6以上のソフトウェアを用いて実施した。
インスリンのイオン化は、ESI源を用いてポジティブイオンモードで行った。ポジティブインスリンイオンを発生させるためにこのイオン化源を使用する間、エレクトロスプレーキャリア溶液のpHが、発生したインスリンイオンの量及び同一性に影響を及ぼすことが観察された。
高分解能/高精度MSは、Agilent TOF MSシステム(Agilent Technologies、Inc.)を使用して実施した。このシステムは、高分解能/高精度MSを可能にするMS分析器を使用する。この機器は、インスリン測定中、約25,000FWHMの分解能及び約1ppmの質量精度を示す。
MS/MSは、Thermo TSQ Vantage MS/MSシステム(Thermo Electron Corporation)を使用して実施した。いずれもThermo Electron製である以下のソフトウェアプログラム、TSQ Vantage V2.0.0以上、Xcalibur V2.0以上及びLCQuan V2.5以上を本明細書で記載した実施例において使用した。分析カラムから排出する液体溶媒/被分析物は、MS/MS分析器のESI源界面に流動した。溶媒/被分析物混合液は、界面の加熱されたチュービング内で蒸気に変換された。被分析物は、ESIによって酸性条件下においてポジティブイオンモードでイオン化された。
実施例1で記載したように調製したインスリンをスパイクした模擬血清及びストリップ血清試料をTCEP(トリス(2−カルボキシエチル)ホスフィンで処理し、インスリンのジスルフィド架橋を還元し、A鎖及びB鎖に分離した。ジスルフィド還元後、分離したA鎖及びB鎖を含有する試料に実施例2で記載した精製手順と同じ手順を行った。得られたインスリンA鎖及びB鎖を、実施例5で記載したようにMS/MS分析に供した。両被分析物は、ESIを用いて酸性条件下においてポジティブモードでイオン化した。
インスリンをスパイクした模擬血清及びストリップ血清試料をDTT(1,4−ジチオスレイトール)で処理して、分離したA鎖及びB鎖を含有する模擬及びストリップ血清試料を生成した。精製する前に、インスリンA鎖及びB鎖分子をカルバミドメチル化し、分子中に存在する構成システインそれぞれを完全にアルキル化した。A鎖において、4個のシステインがこの方法によってアルキル化され、約228.08amuの質量増加が生じた。B鎖において、2個のシステインがこの方法によってアルキル化され、約114.04amuの質量増加が生じた。
2種類の内部標準溶液をヒト試料におけるインスリンの定量で使用した。第1の内部標準溶液は、ウシインスリンを0.2%ギ酸水溶液に10pmol/μLの濃度で溶解して調製した。次に、この溶液30μLを、1.5Mトリス塩基及びエタノールを15:85の比率で含有する塩基/抽出溶液500mLで希釈した。第2の内部標準溶液は、ペプチド1mgを0.2%ギ酸水溶液1mLに溶解することによって、同位体標識したヒトインスリンB鎖(プロリンが5個の13C及び1個の15Nで標識されている)で調製した。この濃縮溶液5μlを水1000μLで希釈して、第2の内部標準溶液を調製した。
実施例8で調製した加工血清試料の試料注入は、Cohesive Technologies Aria TX−420システムで、Aria OS V1.6以上のソフトウェアを用いて実施した。
MS/MSは、Thermo TSQ Vantage MS/MSシステム(Thermo Electron Corporation)を使用して実施した。いずれもThermo Electron製である以下のソフトウェアプログラム、TSQ Vantage V2.0.0以上、Xcalibur V2.0以上及びLCQuan V2.5以上を、本明細書で記載した実施例において使用した。分析カラムから排出する液体溶媒/被分析物は、MS/MS分析器の加熱されたESI源界面に流動した。溶媒/被分析物混合物は、界面の加熱されたチュービング内で蒸気に変換した。被分析物は、ESIを用いて酸性条件下においてポジティブイオンモードでイオン化した。
実施例8〜10で記載したアッセイのアッセイ内及びアッセイ間の精度、再現性及び正確度の試験は、アッセイの報告可能な推定範囲を包含するように、8、12、20、40及び80μIU/mLのヒトインスリンでスパイクしたストリップ血清(Biocell Laboratories Inc.、1131−00、ロットHHP03)から作製した5つのQCプールで実施した。
選択性とは、試料中のその他の成分の存在下で被分析物を区別し定量する分析方法の能力である。LOB及びLODはいずれも、ある測定値がその測定に関連した不確定度よりも大きい指標である。LOBは、ゼロ濃度からの標準偏差の2倍と定義される。LODは、ゼロ濃度からの標準偏差の4倍と定義される。選択性を試験するために、適切な生物学的マトリックス(ストリップ血清)のブランク試料を用意し、干渉を試験し、実施例8〜10で記載した方法によって分析した。ブランクのストリップ血清試料は14回測定した。これらの試験の結果を統計学的に分析すると、LOB1.4μIU/mL及びLOD1.8μIU/mLであった。
実施例8〜10で記載したアッセイの直線範囲を確立するため、8つのスパイクしたストリップ血清試料(ヒトインスリン濃度5、10、15、25、50、100、200及び300μIU/mL)を調製し、別々の日に5回分析した。5回の連続した測定の重み付き(1/X)直線回帰によって、±20%の正確度で0.995以上の相関係数が得られ、定量化できる範囲は5から300μIU/mLであることがわかった。検量線の例を図20に示す。
マトリックス特異性は、10人のヒト患者プールを6つの異なる種類のBD Vacutainer(商標)管(そのままの血清、SST、EDTA血漿、ヘパリンナトリウム血漿、ヘパリンリチウム血漿及びクエン酸ナトリウム血漿)に収集することによって評価した。次に、各プールの試料のインスリンを抽出し、実施例8〜10で記載した方法に従って分析した。これらの試験によって、クエン酸ナトリウム血漿試料は分析に許容されないが、その他の種類の試料はすべて許容可能であることが示された。
インスリン決定に対する溶血干渉の影響は、軽度、中等度及び高度の溶血患者試料において様々なレベルのインスリンをスパイクすることによって評価した。次に、インスリンを抽出し、実施例8〜10で記載した方法に従って分析した。これらの試験のデータによって、許容可能な結果(すなわち、80〜120%内の正確度)が、軽度及び中等度の溶血試料で得られることが示された。高度に溶血した試料は許容されなかった。
Claims (87)
- タンデム質量分析により生物学的試料中のインスリンの量を決定する方法であって、該方法は、
(a)インスリンからインスリンB鎖を得るのに適する条件に試料を供するステップ、
(b)インスリンB鎖濃縮画分を得るために、ステップ(a)からの試料を処理するステップ、
(c)質量分析により検出できる1つ又は複数のインスリンB鎖イオンを発生させるのに適する条件下で、濃縮インスリンB鎖をイオン化源に供するステップ、及び
(d)タンデム質量分析により1つ又は複数のインスリンB鎖イオンの量を決定するステップ
を含み、
ステップ(d)で決定されるイオンの量を前記試料中のインスリンの量に関連付ける、方法。 - ステップ(b)の前記処理するステップが、固相抽出(SPE)によりインスリンB鎖を濃縮するステップを含む、請求項1に記載の方法。
- ステップ(b)の前記処理するステップが、高速液体クロマトグラフィー(HPLC)によりインスリンB鎖を濃縮するステップを含む、請求項1に記載の方法。
- 前記生物学的試料がヒト血漿又は血清試料を含む、請求項1に記載の方法。
- 決定されるインスリンの量がヒトから採取された場合に試料中に存在するインスリンの量である、請求項4に記載の方法。
- 前記イオン化源がエレクトロスプレー(ESI)イオン化源である、請求項1に記載の方法。
- 前記サンプルがポジティブイオンモードでのイオン化の前に酸性条件に供される、請求項1に記載の方法。
- 前記試料を酸性条件に供するステップが前記試料をギ酸に供するステップを含む、請求項7に記載の方法。
- 前記インスリンB鎖がイオン化の前に化学的に改変されていない、請求項1に記載の方法。
- ステップ(d)で決定される前記1つ又は複数のイオンが、1144.2±0.5、858.3±0.5及び686.8±0.5の質量電荷比(m/z)を有するイオンからなる群から選択されるインスリンB鎖前駆イオンを含む、請求項9に記載の方法。
- ステップ(d)で決定される前記1つ又は複数のイオンが、906.0±0.5、825.0±0.5、768.5±0.5、753.0±0.5、703.0±0.5、345.0±0.5及び226.2±0.5の質量電荷比(m/z)を有するイオンからなる群から選択される1つ又は複数のフラグメントイオンを含む、請求項9に記載の方法。
- ステップ(d)で決定される前記1つ又は複数のイオンが、1144.2±0.5の質量電荷比(m/z)を有するインスリンB鎖前駆イオンからのフラグメントイオン、858.3±0.5のm/zを有するインスリンB鎖前駆イオンからのフラグメントイオン及び686.8±0.5のm/zを有するインスリンB鎖前駆イオンからのフラグメントイオンからなる群から選択される1つ又は複数のフラグメントイオンを含む、請求項9に記載の方法。
- 前記タンデム質量分析が、686.8±0.5の質量電荷比(m/z)を有するヒトインスリンB鎖前駆イオンを発生させるステップ、及び、前記前駆イオンを906.0±0.5、825.0±0.5、768.5±0.5、753.0±0.5、703.0±0.5、345.0±0.5及び226.2±0.5のm/zを有するイオンからなる群から選択される1つ又は複数のフラグメントイオンにフラグメント化するステップを含む、請求項1に記載の方法。
- ステップ(d)で決定されるイオンが768.5±0.5及び753.0±0.5のm/zを有するイオンからなる群からの1つ又は複数のイオンを含む、請求項13に記載の方法。
- 前記フラグメント化するステップが10〜25V(端点を含む)の範囲内の衝突エネルギーを用いて行われる、請求項13に記載の方法。
- 前記インスリンB鎖がイオン化の前に化学的に改変される、請求項1に記載の方法。
- 前記化学的改変が前記インスリンB鎖をアルキル化するステップを含む、請求項16に記載の方法。
- ステップ(d)で決定される前記1つ又は複数のイオンが、1181.9±0.5、886.9±0.5及び709.8±0.5の質量電荷比(m/z)を有するイオンからなる群から選択されるアルキル化インスリンB鎖前駆イオンを含む、請求項17に記載の方法。
- ステップ(d)で決定される前記1つ又は複数のイオンが、345.0±0.5及び226.2±0.5の質量電荷比(m/z)を有するイオンの群から選択される1つ又は複数のフラグメントイオンを含む、請求項17に記載の方法。
- ステップ(d)で決定される前記1つ又は複数のイオンが、1181.9±0.5の質量電荷比(m/z)を有するアルキル化インスリンB鎖前駆イオンからのフラグメントイオン、886.9±0.5のm/zを有するアルキル化インスリンB鎖前駆イオンからのフラグメントイオン及び709.8±0.5のm/zを有するアルキル化インスリンB鎖前駆イオンからのフラグメントイオンからなる群から選択される2つ以上のフラグメントイオンを含む、請求項17に記載の方法。
- 各前駆イオンからの前記フラグメントイオンが345.0±0.5及び226.2±0.5のm/zを有するイオンからなる群から選択されるイオンを含む、請求項20に記載の方法。
- タンデム質量分析により、ヒトから採取した場合の生物学的試料中のインスリンの量を決定する方法であって、該方法は、
(a)前記試料からインスリン濃縮画分を得るために、前記試料を固相抽出(SPE)及び高速液体クロマトグラフィー(HPLC)に供するステップ、
(b)質量分析により検出できる1つ又は複数のインスリンイオンを発生させるのに適する条件下で濃縮インスリンをイオン化源に供するステップ、及び
(c)タンデム質量分析により1つ又は複数のインスリンイオンの量を決定するステップ
を含み、
前記試料はイオン化の前に免疫精製に供されず、ステップ(c)で決定されるイオンの量を前記試料中のインスリンの量に関連付ける、方法。 - 前記生物学的試料が血漿又は血清試料を含む、請求項22に記載の方法。
- 前記イオン化源がエレクトロスプレー(ESI)イオン化源である、請求項22に記載の方法。
- 前記試料がポジティブイオンモードでのイオン化の前に酸性条件に供される、請求項22に記載の方法。
- 前記試料を酸性条件に供するステップが前記試料をギ酸に供するステップを含む、請求項25に記載の方法。
- ステップ(c)で決定される前記1つ又は複数のイオンが、1162.5±0.5及び968.9±0.5の質量電荷比(m/z)を有するイオンからなる群から選択されるインスリン前駆イオンを含む、請求項25に記載の方法。
- ステップ(c)で決定される前記1つ又は複数のイオンが、226.2±0.5及び135.9±0.5のm/zを有するイオンからなる群から選択される1つ又は複数のフラグメントイオンを含む、請求項27に記載の方法。
- 前記1つ又は複数のフラグメントイオンが、1162.5±0.5のm/zを有するインスリン前駆イオンからの1つ又は複数のフラグメントイオン及び968.9±0.5のm/zを有するインスリン前駆イオンからの1つ又は複数のフラグメントイオンを含む、請求項27に記載の方法。
- 各前駆イオンからの前記1つ又は複数のフラグメントイオンが、226.2±0.5及び135.9±0.5のm/zを有するイオンからなる群から選択される1つ又は複数のフラグメントイオンを含む、請求項29に記載の方法。
- 前記試料がポジティブイオンモードでのイオン化の前に塩基性条件に供される、請求項21に記載の方法。
- 前記試料を塩基性条件に供するステップが前記試料をアンモニアに供するステップを含む、請求項31に記載の方法。
- ステップ(c)で決定される前記1つ又は複数のイオンが、1453.8±0.5及び1163.0±0.5の質量電荷比(m/z)を有するイオンからなる群から選択されるインスリン前駆イオンを含む、請求項31に記載の方法。
- ステップ(c)で決定される前記1つ又は複数のイオンが、226.2±0.5及び135.9±0.5のm/zを有するイオンからなる群から選択される1つ又は複数のフラグメントイオンを含む、請求項33に記載の方法。
- 前記1つ又は複数のフラグメントイオンが、1163.0±0.5のm/zを有するインスリン前駆イオンからの1つ又は複数のフラグメントイオン及び968.9±0.5のm/zを有するインスリン前駆イオンからの1つ又は複数のフラグメントイオンを含む、請求項33に記載の方法。
- タンデム質量分析により試料中のインスリンの量を決定する方法であって、該方法は、
(a)前記試料からインスリン濃縮画分を得るために前記試料を固相抽出(SPE)及び高速液体クロマトグラフィー(HPLC)に供するステップ、
(b)質量分析により検出できるインスリン前駆イオンを発生させるのに適する条件下で濃縮インスリンをイオン化源に供するステップであって、ここで、前記インスリン前駆イオンは、1162.5±0.5の質量電荷比(m/z)を有する、ステップ、
(c)質量分析により検出できる1つ又は複数のフラグメントイオンを発生させるために前記インスリン前駆イオンを約40〜70eVの範囲内の衝突エネルギーでの衝突誘起解離に供するステップ、及び
(d)質量分析により1つ又は複数の前記フラグメントイオンの量を決定するステップ
を含み、
ステップ(d)で決定されるイオンの量を前記試料中のインスリンの量に関連付ける、方法。 - 前記試料が生物学的試料を含む、請求項36に記載の方法。
- 前記試料が血漿又は血清試料を含む、請求項36に記載の方法。
- 前記試料がヒトから採取される生物学的試料を含み、前記方法がヒトから採取される場合の生物学的試料中のインスリンの量を決定するために用いられる、請求項36に記載の方法。
- 前記イオン化条件が前記試料をイオン化の前に酸性条件に供するステップを含む、請求項36に記載の方法。
- 前記試料を酸性条件に供するステップが前記試料をギ酸に供するステップを含む、請求項40に記載の方法。
- 前記イオン化条件が前記試料をイオン化の前に塩基性条件に供するステップを含む、請求項36に記載の方法。
- 前記試料を塩基性条件に供するステップが前記試料をアンモニアに供するステップを含む、請求項42に記載の方法。
- 前記イオン化がエレクトロスプレーイオン化(ESI)源を用いてポジティブイオンモードで行われる、請求項36に記載の方法。
- 前記衝突エネルギーが約40〜60eVの範囲内にある、請求項36に記載の方法。
- 前記衝突エネルギーが約40〜50eVの範囲内にある、請求項36に記載の方法。
- 前記1つ又は複数のフラグメントイオンが226.2±0.5及び135.9±0.5のm/zを有するイオンからなる群から選択される1つ又は複数のイオンを含む、請求項36に記載の方法。
- タンデム質量分析により、ヒトから採取される場合の生物学的試料中のインスリンの量を決定する方法であって、該方法は、
(a)インスリンからインスリンA鎖を得るのに適する条件に試料を供するステップ、
(b)インスリンA鎖濃縮画分を得るために、ステップ(a)からの試料を固相抽出(SPE)及び高速液体クロマトグラフィー(HPLC)に供するステップ、
(c)質量分析により検出できる1つ又は複数のインスリンA鎖イオンを発生させるのに適する条件下で濃縮インスリンA鎖をイオン化源に供するステップ、及び
(d)タンデム質量分析により1つ又は複数のインスリンA鎖イオンの量を決定するステップ
を含み、
ステップ(d)で決定されるイオンの量を前記試料中のインスリンの量に関連付ける、方法。 - 前記生物学的試料が血漿又は血清試料を含む、請求項48に記載の方法。
- 前記イオン化源がエレクトロスプレー(ESI)イオン化源である、請求項48に記載の方法。
- 前記試料がポジティブイオンモードでのイオン化の前に酸性条件に供される、請求項48に記載の方法。
- 前記試料を酸性条件に供するステップが前記試料をギ酸に供するステップを含む、請求項41に記載の方法。
- ステップ(a)で得られた前記インスリンA鎖がイオン化の前に化学的に改変されていない、請求項48に記載の方法。
- ステップ(d)で決定される前記1つ又は複数のイオンが、1192.9±0.5及び795.4±0.5の質量電荷比(m/z)を有するイオンからなる群から選択されるインスリンA鎖前駆イオンを含む、請求項53に記載の方法。
- ステップ(d)で決定される前記1つ又は複数のイオンが、570.0±0.5、456.0±0.5、293.0±0.5及び133.0±0.5の質量電荷比(m/z)を有するイオンの群から選択される1つ又は複数のフラグメントイオンを含む、請求項53に記載の方法。
- ステップ(d)で決定される前記1つ又は複数のイオンが、1192.9±0.5の質量電荷比(m/z)を有するインスリンA鎖前駆イオンからの1つ又は複数のフラグメントイオン及び795.4±0.5のm/zを有するインスリンA鎖前駆イオンからの1つ又は複数のフラグメントイオンを含む、請求項53に記載の方法。
- 各前駆イオンからの前記1つ又は複数のフラグメントイオンが570.0±0.5、456.0±0.5、293.0±0.5及び133.0±0.5のm/zを有するイオンからなる群から選択される1つ又は複数のフラグメントイオンを含む、請求項56に記載の方法。
- イオン化の前にステップ(a)で得られたインスリンA鎖を化学的に改変するステップをさらに含む、請求項48に記載の方法。
- 前記化学的改変が前記インスリンA鎖をアルキル化するステップを含む、請求項58に記載の方法。
- ステップ(d)で決定される前記1つ又は複数のイオンが、1306.0±0.5及び871.0±0.5の質量電荷比(m/z)を有するイオンからなる群から選択されるアルキル化インスリンA鎖前駆イオンを含む、請求項59に記載の方法。
- ステップ(d)で決定される前記1つ又は複数のイオンが、570.0±0.5、456.0±0.5、293.0±0.5及び133.0±0.5の質量電荷比(m/z)を有するイオンの群から選択される1つ又は複数のフラグメントイオンを含む、請求項59に記載の方法。
- ステップ(d)で決定される前記1つ又は複数のイオンが、1306.0±0.5の質量電荷比(m/z)を有するアルキル化インスリンA鎖前駆イオンからの1つ又は複数のフラグメントイオン及び871.0±0.5のm/zを有するアルキル化インスリンA鎖前駆イオンからの1つ又は複数のフラグメントイオンを含む、請求項59に記載の方法。
- 各アルキル化前駆イオンからの前記1つ又は複数のフラグメントイオンが、570.0±0.5、456.0±0.5、293.0±0.5及び133.0±0.5のm/zを有するイオンからなる群から選択される1つ又は複数のフラグメントイオンを含む、請求項62に記載の方法。
- 高分解能/高精度質量分析により試料中のインスリンの量を決定する方法であって、該方法は、
(a)多価インスリンイオンを発生させるのに適する条件下で前記試料からのインスリンをイオン化源に供するステップであって、ここで、前記多価インスリンイオンは、質量分析により検出できる、ステップ、
(b)高分解能/高精度質量分析により1つ又は複数の多価インスリンイオンの量を決定するステップ
を含み、
ステップ(b)で決定されるイオンの量を前記試料中のインスリンの量に関連付ける、方法。 - 前記高分解能/高精度質量分析が10,000以上のFWHM及び50ppm以下の質量精度で行われる、請求項64に記載の方法。
- 前記高分解能/高精度質量分析が15,000以上のFWHM及び20ppm以下の質量精度で行われる、請求項64に記載の方法。
- 前記高分解能/高精度質量分析が20,000以上のFWHM及び5ppm以下の質量精度で行われる、請求項64に記載の方法。
- 前記高分解能/高精度質量分析が高分解能/高精度飛行時間(TOF)型質量分析計を用いて行われる、請求項64に記載の方法。
- 前記イオン化源がエレクトロスプレー(ESI)イオン化源である、請求項64に記載の方法。
- 前記イオン化条件が酸性条件下でのインスリンのイオン化を含む、請求項64に記載の方法。
- 前記酸性条件がイオン化の前のギ酸による前記試料の処理を含む、請求項69に記載の方法。
- 前記1つ又は複数の多価インスリンイオンが4+、5+及び6+価インスリンイオンからなる群から選択される1つ又は複数のイオンを含む、請求項64に記載の方法。
- 前記1つ又は複数の多価インスリンイオンが6+価インスリンイオンを含む、請求項72に記載の方法。
- 前記1つ又は複数の6+価インスリンイオンが、約968.0±1.5の範囲内の質量電荷比(m/z)を有する1つ又は複数のイオンを含む、請求項73に記載の方法。
- 6+荷電状態の前記1つ又は複数のインスリンイオンが、968.28±0.1、968.45±0.1、968.62±0.1、968.79±0.1、968.95±0.1、968.12±0.1、968.28±0.1、968.45±0.1及び968.61±0.1の質量電荷比(m/z)を有するイオンからなる群から選択される1つ又は複数のイオンを含む、請求項73に記載の方法。
- 前記1つ又は複数の多価インスリンイオンが5+価インスリンイオンを含む、請求項72に記載の方法。
- 5+荷電状態の前記1つ又は複数のインスリンイオンが約1162.5±1.0の範囲内の質量電荷比(m/z)を有する1つ又は複数のイオンを含む、請求項76に記載の方法。
- 5+荷電状態の前記1つ又は複数のインスリンイオンが、1161.72±0.1、1161.92±0.1、1162.12±0.1、1162.32±0.1、1162.52±0.1、1162.72±0.1、1162.92±0.1、1163.12±0.1及び1163.34±0.1の質量電荷比(m/z)を有するイオンからなる群から選択される1つ又は複数のイオンを含む、請求項76に記載の方法。
- 5+荷電状態の前記1つ又は複数のインスリンイオンが1162.54±0.1の質量電荷比(m/z)を有するイオンを含む、請求項76に記載の方法。
- 前記1つ又は複数の多価インスリンイオンが4+価インスリンイオンを含む、請求項72に記載の方法。
- 4+荷電状態の前記1つ又は複数のインスリンイオンが約1452.9±0.8の範囲内の質量電荷比(m/z)を有する1つ又は複数のイオンを含む、請求項80に記載の方法。
- イオン化の前に高速液体クロマトグラフィー(HPLC)により前記試料からインスリンを精製する、請求項64に記載の方法。
- 試料がHPLCの前に固相抽出(SPE)に供される、請求項81に記載の方法。
- 前記試料が生物学的試料を含む、請求項64に記載の方法。
- 前記試料がヒトから得られるものである、請求項64に記載の方法。
- 前記試料が血漿又は血清試料を含む、請求項64に記載の方法。
- 前記試料がヒトからの生物学的試料であり、前記方法がヒトから採取される場合の前記試料中のインスリンの量を決定するために用いられる、請求項64に記載の方法。
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