JP7399200B2 - 質量分析によるインスリンの定量 - Google Patents

Description

関連特許出願
本出願は、その全体として、またすべての目的のために参照により本明細書に組み込ま
れる、２０１０年１２月２８日に出願の米国仮出願第６１／４２７，７４９号の利益を主
張するものである。

発明の分野
本発明は、インスリンの定量的測定に関する。特定の態様において、本発明は、質量分
析によるインスリンの定量的測定の方法に関する。

発明の背景
本発明の背景の以下の記述は、単に本発明を理解するうえでの一助として示すものであ
って、本発明の先行技術を記述又は構成するものと認めるものではない。

インスリンは、システイン残基の間のジスルフィド架橋により連結されたＡ鎖及びＢ鎖
と表される２つの鎖における５１個のアミノ酸からなる小ペプチドである。ヒトインスリ
ンは、約５６０７．４ａｍｕの分子質量を有する。Ａ鎖は、２１個のアミノ酸を有し、Ｂ
鎖は、３０個のアミノ酸を有する。

インスリンは、体内の脂肪及びステロイド代謝を調節する中心的なホルモンである。血
糖値が食後に上昇するとき、インスリンが血流中に放出され、グルコースの循環から細胞
内への輸送を可能にする。

インスリンの産生又は利用の欠如により、糖尿病がもたらされる。インスリンは、糖尿
病の治療のためにしばしば投与される。糖尿病及びその合併症は、重大な公衆衛生上の問
題である。したがって、糖尿病及び糖尿病前症（pre-diabetic）患者の試料中のインスリ
ンの定量は、診断ツールとしてもまた患者の治療をモニタリングするためにも重要である
。

免疫学的技術がインスリンの定量に広く用いられ（例えば、Manleyら、Clin Chem.、20
07年、53巻、922～32頁参照）、インスリンの検出及び／又は定量のためのいくつかの質
量分析法が報告された。例えば、Stocklin R.ら、Diabetes、1997年、46巻、44～50頁（
免疫アフィニティークロマトグラフィー－固相抽出－ＨＰＬＣ－シングル質量分析による
血清試料中のインスリンの定量を報告している）、Darby S. M.ら、J. Anal Toxicol、20
01年、25巻、8～14頁（生理的レベル超の血漿中インスリンのＳＰＥ－ＨＰＬＣ－ＭＳ定
量を報告している）、Fierens C.ら、Rapid Commun. Mass Spectrom.、2001年、15巻、14
33～41頁（ＨＰＬＣ－（ＥＳＩ）ＭＳ／ＭＳによる水溶液中のインスリンの検出を報告し
ている）、Magnes, C.ら、52^nd ASMS Conference、2004年5月（高分解能／高精度質量分
析による血清中のインスリンの定量を報告している）、Thevis, M.ら、Anal. Chem.、200
5年、77巻、3579～85頁（血漿からのインスリンの定量及びインスリンＢ鎖の検出のため
の免疫アフィニティークロマトグラフィー－固相抽出－ＨＰＬＣ－タンデム質量分析法を
報告している）、Thevis, M.ら、Anal. Chem.、2006年、77巻、3579～85頁及びThomas, A
.ら、Anal. Chem.、2007年、79巻、2518～24頁（血漿からのインスリンの定量及びインス
リンＢ鎖の検出のための固相抽出－免疫アフィニティークロマトグラフィー－固相抽出－
ＨＰＬＣ－タンデム質量分析法を報告している）、Uytfanghe, K.ら、Rapid Comm Mass S
pectrom.、2007年、21巻、819～821頁（血清からのインスリンの定量のための免疫アフィ
ニティークロマトグラフィー－固相抽出－ＨＰＬＣ－タンデム質量分析法を報告している
）、Rodriguez-Cabaleiro D.ら、Clin Chem.、2007年、53巻、1462～69頁（血漿からのイ
ンスリンの定量及びインスリンＢ鎖の検出のための免疫アフィニティークロマトグラフィ
ー－固相抽出－ＨＰＬＣ－タンデム質量分析法を報告している）、Thevis, M.ら、Mass S
pectrom. Reviews、2008年、27巻、35～50頁（血漿からのインスリンの定量及びインスリ
ンＢ鎖の検出のための免疫アフィニティークロマトグラフィー－固相抽出－ＨＰＬＣ－タ
ンデム質量分析法を報告している）並びにGuedes, S.、J. Am Soc Mass Spectrom、2009
年、20巻、1319～26頁を参照のこと。

発明の要旨
本発明は、質量分析により試料中のインスリンの量を決定する方法を提供する。

１つの態様において、本方法は、タンデム質量分析を用いる。いくつかのタンデム質量
分析実施形態において、本方法は、ヒトから採取した場合の生物学的試料中のインスリン
の量を決定するためのものである。いくつかの実施形態において、本方法は、（ａ）試料
からインスリン濃縮画分を得るために、試料を固相抽出（ＳＰＥ）及び高速液体クロマト
グラフィー（ＨＰＬＣ）に供するステップ；（ｂ）質量分析により検出できる１つ又は複
数のインスリンイオンを発生させるのに適する条件下で濃縮インスリン（enriched insul
ine）をイオン化源（ionization source）に供するステップ；（ｃ）タンデム質量分析に
より１つ又は複数のインスリンイオンの量を決定するステップとを含み、前記試料は、イ
オン化の前に免疫精製に供されていない。これらの実施形態において、ステップ（ｃ）で
決定される１つ又は複数のイオンの量を用いて、試料中のインスリンの量を決定する。

いくつかの実施形態において、ポジティブイオンモードでのイオン化の前に、試料は酸
性条件に供される。いくつかの関連実施形態において、試料を酸性条件に供するステップ
は、濃縮インスリンをギ酸に供するステップを含む。いくつかの関連実施形態において、
ステップ（ｃ）で決定される１つ又は複数のイオンは、１１６２．５±０．５及び９６８
．９±０．５の質量電荷比（mass to charge ratio）（ｍ／ｚ）を有するイオンからなる
群から選択されるインスリン前駆イオンを含む。さらなる関連実施形態において、ステッ
プ（ｃ）で決定される１つ又は複数のイオンは、２２６．２±０．５及び１３５．９±０
．５のｍ／ｚを有するイオンからなる群から選択される１つ又は複数のフラグメントイオ
ンを含む。他の関連実施形態において、１つ又は複数のフラグメントイオンは、１１６２
．５±０．５のｍ／ｚを有するインスリン前駆イオンからの１つ又は複数のフラグメント
イオン及び９６８．９±０．５のｍ／ｚを有するインスリン前駆イオンからの１つ又は複
数のフラグメントイオンを含む。関連実施形態において、各前駆イオンからの１つ又は複
数のフラグメントイオンは、２２６．２±０．５及び１３５．９±０．５のｍ／ｚを有す
るイオンからなる群から選択される１つ又は複数のフラグメントイオンを含む。

いくつかの実施形態において、ポジティブイオンモードでのイオン化の前に、試料は塩
基性条件に供される。いくつかの関連実施形態において、試料を塩基性条件に供するステ
ップは、試料をアンモニアに供するステップを含む。いくつかの関連実施形態において、
ステップ（ｃ）で決定される１つ又は複数のイオンは、１４５３．８±０．５及び１１６
３．０±０．５のｍ／ｚを有するイオンからなる群から選択されるインスリン前駆イオン
を含む。さらなる関連実施形態において、ステップ（ｃ）で決定される１つ又は複数のイ
オンは、２２６．２±０．５及び１３５．９±０．５のｍ／ｚを有するイオンからなる群
から選択される１つ又は複数のフラグメントイオンを含む。他の関連実施形態において、
１つ又は複数のフラグメントイオンは、１４５３．８のｍ／ｚを有するインスリン前駆イ
オンからの１つ又は複数のフラグメントイオン及び１１６３．０±０．５の質量電荷比を
有するインスリン前駆イオンからの１つ又は複数のフラグメントイオンを含む。

試料中のインスリンの量を決定するためにタンデム質量分析を用いるいくつかの実施形
態において、方法は、（ａ）抽出技術により試料中のインスリンを濃縮するステップ；（
ｂ）試料からインスリン濃縮画分（fraction enriched in insulin）を得るためにステッ
プ（ａ）からの精製インスリンを高速液体クロマトグラフィー（ＨＰＬＣ）に供するステ
ップ；（ｃ）質量分析により検出できるインスリン前駆イオンを発生させるのに適する条
件下で濃縮インスリンをイオン化源に供するステップであって、ここでインスリン前駆イ
オンは１１６２．５±０．５のｍ／ｚを有する、ステップ；（ｄ）質量分析により検出で
きる１つ又は複数のフラグメントイオンを発生させるためにインスリン前駆イオンを約４
０～７０ｅＶの範囲内の衝突エネルギーでの衝突誘起解離に供するステップ；（ｅ）質量
分析により１つ又は複数の前記フラグメントイオンの量を決定するステップを含む。これ
らの実施形態において、ステップ（ｅ）で決定されるイオンの量を前記試料中のインスリ
ンの量に関連付ける。いくつかの実施形態において、抽出技術は、固相抽出（ＳＰＥ）で
ある。

いくつかの実施形態において、ポジティブイオンモードでのイオン化の前に試料を酸性
条件に供する。いくつかの関連実施形態において、試料を酸性条件に供するステップは、
試料をギ酸に供するステップを含む。代替実施形態において、イオン化の前に試料を塩基
性条件に供する。いくつかの関連実施形態において、試料を塩基性条件に供するステップ
は、アンモニアを含む。

いくつかの実施形態において、衝突エネルギーは、例えば、約４０～５０ｅＶの範囲内
などの約４０～６０ｅＶの範囲内にある。いくつかの実施形態において、ステップ（ｄ）
で発生する１つ又は複数のフラグメントイオンは、２２６．２±０．５及び１３５．９±
０．５のｍ／ｚを有するイオンからなる群から選択される１つ又は複数のイオンを含む。

ヒトから採取した場合の生物学的試料中のインスリンの量を決定するためにタンデム質
量分析を用いるいくつかの実施形態において、方法は、（ａ）試料を、インスリンからイ
ンスリンＡ鎖を得るのに適する条件に供するステップ；（ｂ）インスリンＡ鎖濃縮画分を
得るために、ステップ（ａ）からの試料を固相抽出（ＳＰＥ）及び高速液体クロマトグラ
フィー（ＨＰＬＣ）に供するステップ；（ｃ）質量分析により検出できる１つ又は複数の
インスリンＡ鎖イオンを発生させるのに適する条件下で濃縮インスリンＡ鎖をイオン化源
に供するステップ；（ｄ）タンデム質量分析により１つ又は複数のインスリンＡ鎖イオン
の量を決定するステップを含む。これらの実施形態において、ステップ（ｄ）で決定され
るイオンの量を、前記試料中のインスリンの量に関連付ける。

いくつかの関連実施形態において、ポジティブイオンモードでのイオン化の前に試料を
酸性条件に供する。いくつかの関連実施形態において、試料を酸性条件に供するステップ
は、前記試料をギ酸に供するステップを含む。いくつかの実施形態において、ステップ（
ａ）で得られるインスリンＡ鎖は、イオン化の前に化学的に改変されない。いくつかの関
連実施形態において、ステップ（ｄ）で決定される１つ又は複数のイオンは、１１９２．
９±０．５及び７９５．４±０．５のｍ／ｚを有するイオンからなる群から選択されるイ
ンスリンＡ鎖前駆イオンを含む。いくつかの関連実施形態において、ステップ（ｄ）で決
定される１つ又は複数のイオンは、５１３．０±０．５、３９９．０±０．５、２３６．
０±０．５及び１３３．０±０．５のｍ／ｚを有するイオンの群から選択される１つ又は
複数のフラグメントイオンを含む。いくつかの関連実施形態において、ステップ（ｄ）で
決定される１つ又は複数のイオンは、１１９２．９±０．５のｍ／ｚを有するインスリン
Ａ鎖前駆イオンからの１つ又は複数のフラグメントイオン及び７９５．４±０．５のｍ／
ｚを有するインスリンＡ鎖前駆イオンからの１つ又は複数のフラグメントイオンを含む。
いくつかの関連実施形態において、各前駆イオンからの１つ又は複数のフラグメントイオ
ンは、５１３．０±０．５、３９９．０±０．５、２３６．０±０．５及び１３３．０±
０．５のｍ／ｚを有するイオンからなる群から選択される１つ又は複数のフラグメントイ
オンを含む。

代替実施形態において、方法は、イオン化の前にステップ（ａ）で得られるインスリン
Ａ鎖を化学的に改変するステップをさらに含む。いくつかの実施形態において、化学的改
変は、インスリンＡ鎖をアルキル化するステップを含む。さらなる関連実施形態において
、ステップ（ｄ）で決定される１つ又は複数のイオンは、１３０６．０±０．５及び８７
１．０±０．５のｍ／ｚを有するイオンからなる群から選択されるアルキル化インスリン
Ａ鎖前駆イオンを含む。他の関連実施形態において、ステップ（ｄ）で決定される１つ又
は複数のイオンは、５７０．０±０．５、４５６．０±０．５、２９３．０±０．５及び
１３３．０±０．５のｍ／ｚを有するイオンの群から選択される１つ又は複数のフラグメ
ントイオンを含む。他の関連実施形態において、ステップ（ｄ）で決定される１つ又は複
数のイオンは、１３０６．０±０．５のｍ／ｚを有するアルキル化インスリンＡ鎖前駆イ
オンからの１つ又は複数のフラグメントイオン及び８７１．０±０．５のｍ／ｚを有する
アルキル化インスリンＡ鎖前駆イオンからの１つ又は複数のフラグメントイオンを含む。
いくつかの関連実施形態において、各アルキル化前駆イオンからの１つ又は複数のフラグ
メントイオンは、５７０．０±０．５、４５６．０±０．５、２９３．０±０．５及び１
３３．０±０．５のｍ／ｚを有するイオンからなる群から選択される１つ又は複数のフラ
グメントイオンを含む。

いくつかの実施形態において、生物学的試料中のインスリンの量を決定するためにタン
デム質量分析を用いる。これらの実施形態において、方法は、（ａ）試料を、インスリン
からインスリンＢ鎖を得るのに適する条件に供するステップ；（ｂ）インスリンＢ鎖濃縮
画分を得るためにステップ（ａ）からの試料を処理するステップ；（ｃ）質量分析により
検出できる１つ又は複数のインスリンＢ鎖イオンを発生させるのに適する条件下で濃縮イ
ンスリンＢ鎖をイオン化源に供するステップ；（ｄ）タンデム質量分析により１つ又は複
数のインスリンＢ鎖イオンの量を決定するステップを含む。これらの実施形態において、
ステップ（ｄ）で決定されるイオンの量を、試料中のインスリンの量に関連付ける。

いくつかの実施形態において、ステップ（ｂ）の処理は、固相抽出（ＳＰＥ）、高速液
体クロマトグラフィー（ＨＰＬＣ）又は両方によりインスリンＢ鎖を濃縮するステップを
含む。ＳＰＥ及びＨＰＬＣの両方を用いるいくつかの関連実施形態において、２つの濃縮
技術は、オンライン式で実施することができる。

いくつかの実施形態において、生物学的試料は、ヒト血漿又は血清試料を含む。いくつ
かの関連実施形態において、決定されるインスリンの量は、ヒトから採取した場合の試料
中に存在するインスリンの量である。

いくつかの実施形態において、イオン化源は、加熱ＥＳＩ源などのエレクトロスプレー
イオン化（ＥＳＩ）源である。

いくつかの実施形態において、ポジティブイオンモードでのイオン化の前に試料を酸性
条件に供する。いくつかの関連実施形態において、試料を酸性条件に供するステップは、
前記試料をギ酸に供するステップを含む。

いくつかの実施形態において、インスリンＢ鎖をイオン化の前に化学的に改変しない。
いくつかの関連実施形態において、ステップ（ｄ）で決定される１つ又は複数のイオンは
、１１４４．２±０．５、８５８．３±０．５及び６８６．８±０．５のｍ／ｚを有する
イオンからなる群から選択されるインスリンＢ鎖前駆イオンを含む。いくつかの関連実施
形態において、ステップ（ｄ）で決定される１つ又は複数のイオンは、９０６．０±０．
５、８２５．０±０．５、７６８．５±０．５、７５３．０±０．５、７０３．０±０．
５、３４５．０±０．５及び２２６．２±０．５のｍ／ｚを有するイオンからなる群、例
えば、７６８．５±０．５、７５３．０±０．５、３４５．０±０．５及び２２６．２±
０．５のｍ／ｚを有するイオンからなる群など、例えば、７６８．５±０．５及び７５３
．０±０．５のｍ／ｚを有するイオンからなる群などから選択される１つ又は複数のフラ
グメントイオンを含む。いくつかの実施形態において、ステップ（ｄ）で決定される１つ
又は複数のイオンは、１１４４．２±０．５のｍ／ｚを有するインスリンＢ鎖前駆イオン
からのフラグメントイオン、８５８．３±０．５のｍ／ｚを有するインスリンＢ鎖前駆イ
オンからのフラグメントイオン及び６８６．８±０．５のｍ／ｚを有するインスリンＢ鎖
前駆イオンからのフラグメントイオンからなる群から選択される２つ以上のフラグメント
イオンを含む。

いくつかの実施形態において、タンデム質量分析は、６８６．８±０．５の質量電荷比
（ｍ／ｚ）を有するヒトインスリンＢ鎖前駆イオンを発生させるステップと、前駆イオン
を９０６．０±０．５、８２５．０±０．５、７６８．５±０．５、７５３．０±０．５
、７０３．０±０．５、３４５．０±０．５及び２２６．２±０．５のｍ／ｚを有するイ
オンからなる群から選択される１つ又は複数のフラグメントイオン、例えば、７６８．５
±０．５及び７５３．０±０．５からなる群から選択される１つ又は複数のフラグメント
イオンなどにフラグメント化するステップとを含む。

いくつかの実施形態において、タンデム質量分析は、１０～２５Ｖ（端点を含む）の範
囲内の衝突エネルギーを用いて前駆イオンをフラグメント化するステップを含む。

代替実施形態において、インスリンＢ鎖をイオン化の前に化学的に改変する。いくつか
の実施形態において、化学的改変は、前記インスリンＢ鎖をアルキル化するステップを含
む。いくつかの実施形態において、ステップ（ｄ）で決定される１つ又は複数のイオンは
、１１８１．９±０．５、８８６．９±０．５及び７０９．８±０．５のｍ／ｚを有する
イオンからなる群から選択されるアルキル化インスリンＢ鎖前駆イオンを含む。いくつか
の実施形態において、ステップ（ｄ）で決定される１つ又は複数のイオンは、３４５．０
±０．５及び２２６．２±０．５のｍ／ｚを有するイオンの群から選択される１つ又は複
数のフラグメントイオンを含む。いくつかの実施形態において、ステップ（ｄ）で決定さ
れる１つ又は複数のイオンは、１１８１．９±０．５の質量電荷比（ｍ／ｚ）を有するア
ルキル化インスリンＢ鎖前駆イオンからのフラグメントイオン、８８６．９±０．５のｍ
／ｚを有するアルキル化インスリンＢ鎖前駆イオンからのフラグメントイオン及び７０９
．８±０．５のｍ／ｚを有するアルキル化インスリンＢ鎖前駆イオンからのフラグメント
イオンからなる群から選択される２つ以上のフラグメントイオンを含む。いくつかの関連
実施形態において、各前駆イオンからのフラグメントイオンは、３４５．０±０．５及び
２２６．２±０．５のｍ／ｚを有するイオンからなる群から選択されるイオンを含む。

第２の態様において、本明細書に示す特定の方法は、試料中のインスリンの量を決定す
るために高分解能／高精度質量分析を利用する。高精度／高分解能質量分析を利用するい
くつかの実施形態において、方法は、（ａ）多価インスリンイオンを発生させるのに適す
る条件下で試料からのインスリンをイオン化源に供するステップであって、ここでインス
リンイオンは質量分析により検出できる、ステップ；および（ｂ）高分解能／高精度質量
分析により１つ又は複数の多価インスリンイオンの量を決定するステップを含む。これら
の実施形態において、ステップ（ｂ）で決定される１つ又は複数のイオンの量を前記試料
中のインスリンの量に関連付ける。いくつかの実施形態において、高分解能／高精度質量
分析を１０，０００のＦＷＨＭ及び５０ｐｐｍの質量精度（mass accuracy）で行う。い
くつかの実施形態において、高分解能／高精度質量分析を高分解能／高精度飛行時間（Ｔ
ＯＦ）型質量分析計を用いて行う。いくつかの実施形態において、イオン化条件は、酸性
条件下でのインスリンのイオン化を含む。いくつかの関連実施形態において、酸性条件は
、イオン化の前のギ酸による前記試料の処理を含む。いくつかの実施形態において、多価
インスリンイオンは、４＋、５＋及び６＋価インスリンイオン（4+, 5+, and 6+ charged
insulin ions）からなる群から選択される。

いくつかの実施形態において、６＋荷電状態の１つ又は複数のインスリンイオンは、約
９６８．８±１．５の範囲内のｍ／ｚを有する１つ又は複数のイオンを含む。いくつかの
実施形態において、６＋荷電状態の１つ又は複数のインスリンイオンは、９６８．２８±
０．１、９６８．４５±０．１、９６８．６２±０．１、９６８．７９±０．１、９６８
．９５±０．１、９６９．１２±０．１、９６９．２８±０．１、９６９．４５±０．１
、９６９．６１±０．１のｍ／ｚを有するイオンからなる群から選択される１つ又は複数
のイオン、例えば、９６８．９５±０．１のｍ／ｚを有するイオンなどを含む。

いくつかの実施形態において、５＋荷電状態の１つ又は複数のインスリンイオンは、約
１１６２．５±１．０の範囲内のｍ／ｚを有する１つ又は複数のイオンを含む。いくつか
の実施形態において、５＋荷電状態の１つ又は複数のインスリンイオンは、１１６１．７
２±０．１、１１６１．９２±０．１、１１６２．１２±０．１、１１６２．３２±０．
１、１１６２．５２±０．１、１１６２．７２±０．１、１１６２．９２±０．１、１１
６３．１２±０．１、１１６３．３２±０．１のｍ／ｚを有するイオンからなる群から選
択される１つ又は複数のイオン、例えば、１１６２．５４±０．１のｍ／ｚを有するイオ
ンなどを含む。

いくつかの実施形態において、４＋荷電状態の１つ又は複数のインスリンイオンは、約
１４５２．９±０．８の範囲内のｍ／ｚを有する１つ又は複数のイオンを含む。

本明細書で述べる方法のいずれかにおいて、試料は、生物学的試料を含み得る。いくつ
かの実施形態において、生物学的試料は、尿、血漿又は血清などの生体液を含み得る。い
くつかの実施形態において、生物学的試料は、ヒト、例えば、成人男性若しくは女性、又
は若年男性若しくは女性からの試料を含み得る。ここで、若年は、１８歳未満、１５歳未
満、１２歳未満又は１０歳未満である。ヒト試料は、病状若しくは状態を診断若しくはモ
ニターするために、又は病状若しくは状態の治療効力をモニターするために分析すること
ができる。いくつかの関連実施形態において、本明細書で述べる方法は、ヒトから採取し
た場合の生物学的試料中のインスリンの量を決定するために用いることができる。

タンデム質量分析を利用する実施形態において、タンデム質量分析は、例えば、多重反
応モニタリング、前駆イオンスキャニング又はプロダクトイオンスキャニングを含む、当
技術分野で公知の方法により実施することができる。

いくつかの実施形態において、タンデム質量分析は、前駆イオンを１つ又は複数のフラ
グメントイオンにフラグメント化するステップを含む。２つ以上のフラグメントイオンの
量を決定する実施形態において、測定されたイオン量を試料中のインスリンの量に関連付
けるために、該量を当技術分野で公知の任意の数学的操作に供することができる。例えば
、試料中のインスリンの量を決定するステップの一部として、２つ以上のフラグメントイ
オンの量を合計することができる。

本明細書で述べる方法のいずれかにおいて、対象の被分析物（analyte）（例えば、イ
ンスリン、化学的に改変された若しくは改変されていないインスリンＡ鎖又は化学的に改
変された若しくは改変されていないインスリンＢ鎖）は、イオン化の前に高速液体クロマ
トグラフィー（ＨＰＬＣ）により試料から精製することができる。本明細書で述べる方法
のいずれかにおいて、対象の被分析物は、例えば、試料を固相抽出（ＳＰＥ）カラムに供
することなどの抽出技術により試料から精製することができる。いくつかの実施形態にお
いて、抽出技術は、免疫精製技術でない。具体的には、いくつかの実施形態において、Ｓ
ＰＥカラムは、免疫アフィニティーカラムでない。いくつかの実施形態において、免疫精
製は、方法のいずれの段階においても用いない。いくつかの実施形態において、抽出技術
及びＨＰＬＣは、自動化された試料の処理及び分析を可能にするためにオンライン式で実
施することができる。

いくつかの実施形態において、高分解能／高精度質量分析は、約１０，０００以上、例
えば、約１５，０００以上など、例えば、約２０，０００以上など、例えば、約２５，０
００以上などの分解能（ＦＷＨＭ）で実施する。いくつかの実施形態において、高分解能
／高精度質量分析は、約５０ｐｐｍ以下、例えば、約２０ｐｐｍ以下など、約１０ｐｐｍ
以下など、約５ｐｐｍ以下など、約３ｐｐｍ以下などの精度で実施する。いくつかの実施
形態において、高分解能／高精度質量分析は、約１０，０００以上の分解能（ＦＷＨＭ）
及び約５０ｐｐｍ以下の精度で実施する。いくつかの実施形態において、分解能は、約１
５，０００以上であり、精度は、約２０ｐｐｍ以下である。いくつかの実施形態において
、分解能は、約２０，０００以上であり、精度は、約１０ｐｐｍ以下であり、好ましくは
、分解能は、約２０，０００以上であり、精度は、約５ｐｐｍ以下、例えば、約３ｐｐｍ
以下などである。

いくつかの実施形態において、高分解能／高精度質量分析は、オービトラップ型質量分
析計、飛行時間（ＴＯＦ）型質量分析計又はフーリエ変換イオンサイクロトロン共鳴型質
量分析計（時としてフーリエ変換質量分析計として公知である）を用いて実施することが
できる。

いくつかの実施形態において、高分解能／高精度質量分析により検出できる１つ又は複
数のインスリンイオンは、約１４５２．９±０．８、１１６２．５±１及び９６８．８±
１．５の範囲内のｍ／ｚを有するイオンからなる群から選択される１つ又は複数のイオン
である。これらの範囲内のイオンは、それぞれ４＋、５＋及び６＋の電荷を有するインス
リンイオンに相当する。これらの電荷を有する単一同位体イオンは、列挙した範囲内のｍ
／ｚに主としておさまる。しかし、より低い存在度の天然に存在する同位元素変異体がこ
の範囲外に存在し得る。１１６２．５±１の範囲内のインスリンイオンは、好ましくは約
１１６１．７２±０．１、１１６１．９２±０．１、１１６２．１２±０．１、１１６２
．３２±０．１、１１６２．５２±０．１、１１６２．７２±０．１、１１６２．９２±
０．１、１１６３．１２±０．１、１１６３．３２±０．１のｍ／ｚを有するインスリン
イオン、例えば、１１６２．５４±０．１のｍ／ｚを有するイオンなどを含む。９６８．
８±１．５の範囲内のインスリンイオンは、好ましくは約９６８．２８±０．１、９６８
．４５±０．１、９６８．６２±０．１、９６８．７９±０．１、９６８．９５±０．１
、９６９．１２±０．１、９６９．２８±０．１、９６９．４５±０．１、９６９．６１
±０．１のｍ／ｚを有するインスリンイオン、例えば、９６８．９５±０．１のｍ／ｚを
有するイオンなどを含む。いくつかの実施形態において、質量分析により検出される１つ
又は複数のインスリンイオンの量を試料中のインスリンタンパク質の量に関連付けるステ
ップは、ヒト又は非ヒトインスリンタンパク質などの内部標準との比較を含む。内部標準
は、場合によって同位体標識することができる。

本明細書で述べる方法のいずれかにおいて、試料は、生物学的試料、好ましくは、例え
ば、血漿又は血清を含む体液試料を含み得る。

質量分析（タンデム又は高分解能／高精度）は、ポジティブイオンモードで実施するこ
とができる。或いは、質量分析は、ネガティブイオンモードで実施することができる。例
えば、大気圧化学イオン化（ＡＰＣＩ）又はエレクトロスプレーイオン化（ＥＳＩ）を含
む、様々なイオン化源を用いてインスリンをイオン化することができる。いくつかの実施
形態において、インスリン及び／又は化学的に改変された若しくは改変されていないイン
スリンＡ鎖若しくはインスリンＢ鎖は、ＥＳＩによりポジティブイオンモードでイオン化
する。

本明細書で述べる方法のいずれかにおいて、単独で検出できる内部標準を試料に加える
ことができ、その量も試料中で決定される。単独で検出できる内部標準を利用する実施形
態において、試料中に存在する対象の被分析物及び内部標準の両方のすべて又は一部がイ
オン化されて、質量分析計で検出できる複数のイオンを生成し、それぞれから生成した１
つ又は複数のイオンが質量分析により検出される。これらの実施形態において、対象の被
分析物から生成したイオンの存在又は量は、検出された内部標準イオンの量との比較によ
り試料中の対象の被分析物の量の存在に関連付けることができる。

或いは、試料中のインスリンの量は、１つ又は複数の外部参照標準との比較により決定
することができる。具体例としての外部参照標準は、ヒト若しくは非ヒトインスリン、合
成インスリン類似体又はその同位体標識変異体を添加したブランク血漿又は血清などであ
る。

いくつかの実施形態において、方法は、約１０μＩＵ／ｍＬ～５００μＩＵ／ｍＬ（約
６０ｐｍｏｌ／Ｌ～３０００ｐｍｏｌ／Ｌ又は約０．３５ｎｇ／ｍＬ～１７．４ｎｇ／ｍ
Ｌに相当する）（端点を含む）の範囲内のレベルの試料中のインスリンの量を決定するこ
とができる。

本明細書で用いる場合、特に示さない限り、単数形「ａ」、「ａｎ」及び「ｔｈｅ」は
、複数の指示対象を含む。したがって、例えば、「ａ ｐｒｏｔｅｉｎ」への言及は、複
数のタンパク質分子を含む。

本明細書で用いる場合、「精製」、「精製する」及び「濃縮する」という用語は、対象
の被分析物（単数又は複数）以外のすべての物質を試料から除去することを意味しない。
それよりも、これらの用語は、対象の被分析物の検出を妨害する可能性がある試料中の他
の成分と比較して対象の１つ又は複数の被分析物の量を高くする手順を意味する。様々な
手段による試料の精製は、１つ又は複数の妨害物質、例えば、質量分析による選択される
親又は娘イオンの検出を妨害する可能性がある又は妨害しない可能性がある１つ又は複数
の物質の相対的な減少を可能にする。この用語を用いるときの相対的な減少は、精製すべ
き材料中に対象の被分析物とともに存在する物質が精製により完全に除去されることを必
要としない。

本明細書で用いる場合、「免疫精製」又は「免疫精製する」という用語は、対象の１つ
又は複数の被分析物を濃縮するためにポリクローナル又はモノクローナル抗体を含む抗体
を利用する精製手順を意味する。免疫精製は、当技術分野で周知の免疫精製法のいずれか
を用いて実施することができる。しばしば免疫精製手順は、固体担体、例えば、カラム、
ウエル、チューブ、ゲル、カプセル、粒子又は同類のものに結合した、コンジュゲートし
た又は別の状態で結合した抗体を利用するものである。免疫精製は、本明細書で用いる場
合、当技術分野でしばしば免疫沈降と呼ばれる手順、並びに当技術分野でしばしばアフィ
ニティークロマトグラフィー又は免疫アフィニティークロマトグラフィーと呼ばれる手順
を制限なしに含む。

本明細書で用いる場合、「免疫粒子」という用語は、その表面（粒子上及び／又は内）
に結合した、コンジュゲートした又は別の状態で結合した抗体を有するカプセル、ビーズ
、ゲル粒子又は同類のものを意味する。特定の好ましい実施形態において、免疫粒子は、
セファロース又はアガロースビーズである。好ましい代替実施形態において、免疫粒子は
、ガラス、プラスチック若しくはシリカビーズ又はシリカゲルを含む。

本明細書で用いる場合、「抗インスリン抗体」という用語は、インスリンに対する親和
性を有する任意のポリクローナル又はモノクローナル抗体を意味する。種々の実施形態に
おいて、インスリン以外の化学種に対するインスリン抗体の特異性は、異なる可能性があ
り、例えば、特定の好ましい実施形態において、抗インスリン抗体は、インスリンに対し
て特異的であり、したがって、インスリン以外の化学種に対する親和性をほとんど又は全
く有さないが、他の好ましい実施形態において、抗インスリン抗体は、非特異的であり、
インスリン以外の特定の化学種に結合する。

本明細書で用いる場合、「試料」という用語は、対象の被分析物を含み得る任意の試料
を意味する。本明細書で用いる場合、「体液」という用語は、個人の身体から分離するこ
とができる任意の流体を意味する。例えば、「体液」は、血液、血漿、血清、胆汁、唾液
、尿、涙液、汗及び同類のものを含み得る。好ましい実施形態において、試料は、ヒトか
らの体液試料、好ましくは血漿又は血清を含む。

本明細書で用いる場合、「固相抽出」又は「ＳＰＥ」という用語は、溶液が通過又は周
りに流れる固体（すなわち、固相）に対する溶液（すなわち、移動相）中に溶解又は懸濁
した成分の親和性の結果として化学物質の混合物を成分に分離する方法を意味する。場合
によっては、移動相が固相を通過又はその周りに流れるとき、移動相の望ましくない成分
が固相により保持されて、移動相中の被分析物の精製がもたらされる可能性がある。他の
場合には、被分析物が固相により保持されて、移動相の望ましくない成分が固相を通過又
はその周りに流れることが可能になり得る。これらの場合、さらなる処理又は分析のため
に次に第２の移動相を用いて、保持された被分析物を固相から溶出する。ＴＦＬＣを含む
ＳＰＥは、単一又は混合モード機構により機能し得る。混合モード機構は、同じカラムに
おいてイオン交換と疎水性保持を利用するものであり、例えば、混合モードＳＰＥカラム
の固相は、強い陰イオン交換及び疎水性保持を示し得る、又は強い陽イオン交換及び疎水
性保持を示し得る。

一般的に、被分析物に対するＳＰＥカラム充填物質の親和性は、１つ又は複数の化学的
相互作用又は免疫親和性相互作用などの様々な機構のいずれかに起因し得る。いくつかの
実施形態において、インスリンのＳＰＥは、免疫親和性カラム充填物質を用いずに行われ
る。すなわち、いくつかの実施形態において、インスリンは、免疫親和性カラムでないＳ
ＰＥカラムにより試料から精製される。

本明細書で用いる場合、「クロマトグラフィー」という用語は、液体又は気体により運
ばれる化学物質の混合物が、静止液体又は固相の周り又は上に流れるときに化学物質の差
別的分配の結果として成分に分離される方法を意味する。

本明細書で用いる場合、「液体クロマトグラフィー」又は「ＬＣ」という用語は、流体
が微細な物質のカラム又は毛細管通路に均一に浸透するときに流体溶液の１つ又は複数の
成分が選択的に遅延する方法を意味する。遅延は、１つ又は複数の固定相とバルク流体（
すなわち、移動相）との間のこの流体が固定相（単数又は複数）に対して移動するときの
混合物の成分の分配に起因する。「液体クロマトグラフィー」の例としては、逆相液体ク
ロマトグラフィー（ＲＰＬＣ）、高速液体クロマトグラフィー（ＨＰＬＣ）及び乱流液体
クロマトグラフィー（ＴＦＬＣ）（時に高乱流液体クロマトグラフィー（ＨＴＬＣ）又は
高処理液体クロマトグラフィーとして公知である）などがある。

本明細書で用いる場合、「高速液体クロマトグラフィー」又は「ＨＰＬＣ」（時に「高
圧液体クロマトグラフィー」として公知である）という用語は、移動相を加圧下で固定相
、一般的に密に充填されたカラムに強制的に通すことによって分離の程度を増大させる液
体クロマトグラフィーを意味する。

本明細書で用いる場合、「乱流液体クロマトグラフィー」又は「ＴＦＬＣ」（時に高乱
流液体クロマトグラフィー又は高処理液体クロマトグラフィーとして公知である）という
用語は、カラム充填剤に通すアッセイされる物質の乱流を、分離を行う基盤として利用す
るクロマトグラフィーの形態を意味する。ＴＦＬＣは、質量分析による分析の前に２つの
無名の薬物を含む試料の調製に適用された。例えば、Zimmerら、J Chromatogr、A854巻、
23～35頁（1999年）を参照のこと。ＴＦＬＣをさらに説明している、米国特許第５，９６
８，３６７号、第５，９１９，３６８号、第５，７９５，４６９号及び第５，７７２，８
７４号も参照のこと。当業者は、「乱流」を理解している。流体がゆっくりと滑らかに流
れている場合、その流れは、「層流」と呼ばれる。例えば、ＨＰＬＣカラム中を低流速で
移動している流体は、層流である。層流において、流体の粒子の運動は規則的であり、粒
子が一般的に実質的に直線的に移動する。より速い速度では、水の慣性が流体の摩擦力に
打ち勝ち、乱流が生ずる。不規則な境界と接触していない流体は、それを「追い越し」、
摩擦により遅くなるか、又は平坦でない表面により偏向させられる。流体が乱れて流れて
いる場合、それは、流れが層流である場合より大きい「抵抗」により渦状に旋回して（又
は渦巻き状で）流れる。流体の流れが層流又は乱流である場合を判断するうえで助けとす
るための多くの参考文献が入手可能である（例えば、Turbulent Flow Analysis: Measure
ment and Prediction、P.S. Bernard & J.M. Wallace、John Wiley & Sons, Inc.(2000年
)、An Introduction to Turbulent Flow、Jean Mathieu & Julian Scott、Cambridge Uni
versity Press (2001年)）。

本明細書で用いる場合、「ガスクロマトグラフィー」又は「ＧＣ」という用語は、試料
混合物を蒸発させ、液体又は粒子状固体から構成される固定相を含むカラム中を移動する
キャリヤーガス（窒素又はヘリウムとしての）の流れに注入し、固定相に対する化合物の
親和性に従ってその成分化合物に分離するクロマトグラフィーを意味する。

本明細書で用いる場合、「大粒子カラム」又は「抽出カラム」という用語は、約５０μ
ｍより大きい平均粒子直径を含むクロマトグラフィーカラムを意味する。この文脈におい
て用いる場合、「約」という用語は、±１０％を意味する。

本明細書で用いる場合、「分析カラム」という用語は、被分析物の存在又は量の決定を
可能にするのに十分なカラムから溶出する試料中の物質の分離を達成するのに十分なクロ
マトグラフ段（plate）を有するクロマトグラフィーカラムを意味する。そのようなカラ
ムは、さらなる分析のための精製試料を得るために保持されない物質から保持される物質
を分離又は抽出するという一般的な目的を有する「抽出カラム」としばしば区別される。
この文脈において用いる場合、「約」という用語は、±１０％を意味する。好ましい実施
形態において、分析カラムは、直径が約５μｍの粒子を含む。

本明細書で用いる場合、「オンライン」及び「インライン」という用語は、例えば、「
オンライン自動式（on-line automated fashion）」又は「オンライン抽出」に用いられ
ているように、操作者の介入の必要なしに実施される手順を意味する。対照的に、「オフ
ライン」という用語は、本明細書で用いる場合、操作者の手作業による介入を必要とする
手順を意味する。したがって、試料を沈殿に供し、次いで、上清を手作業でオートサンプ
ラーに装填する場合、沈殿及び装填ステップは、その後のステップからオフラインである
。方法の様々な実施形態において、１つ又は複数のステップをオンライン自動式で実施す
ることができる。

本明細書で用いる場合、「質量分析」又は「ＭＳ」という用語は、化合物をそれらの質
量により同定するための分析技術を意味する。ＭＳは、イオンの質量電荷比又は「ｍ／ｚ
」に基づいてイオンをフィルタリングし、検出し、測定する方法を意味する。ＭＳ技術は
、一般的に（１）化合物をイオン化して、荷電化合物を生成するステップと、（２）荷電
化合物の分子量を検出し、質量電荷比を計算するステップとを含む。化合物は、適切な手
段によりイオン化し、検出することができる。「質量分析計」は、一般的にイオン化装置
、質量分析計及びイオン検出器を含む。一般的に、対象の１つ又は複数の分子がイオン化
され、その後イオンが質量分析装置に導入され、そこでは、磁界と電界の組み合わせによ
り、イオンが質量（「ｍ」）及び電荷（「ｚ」）に依存する空間内の経路をたどる。例え
ば、「表面からの質量分析（Mass Spectrometry From Surfaces）」と題する米国特許第
６，２０４，５００号、「タンデム質量分析の方法及び装置（Methods and Apparatus fo
r Tandem Mass Spectrometry）」と題する第６，１０７，６２３号、「質量分析に基づく
ＤＮＡ診断（DNA Diagnostics Based On Mass Spectrometry）」と題する第６，２６８，
１４４号、「被分析物の脱離及び検出のための表面増強光感受性結合及び放出（Surface-
Enhanced Photolabile Attachment And Release For Desoption And Detection Of Analy
tes）」と題する第６，１２４，１３７号、Wrightら、Prostate Cancer and Prostatic D
iseases、1999年、2巻、264～76頁並びにMerchant及びWeinberger、Electrophoresis、20
00年、21巻、1164～67頁を参照のこと。

本明細書で用いる場合、「高分解能／高精度質量分析」は、固有の化学イオン（unique
chemical ion）を確認するのに十分な精度及び正確度（precision and accuracy）で荷
電種の質量電荷比を測定することができる質量分析計を用いて実施される質量分析を意味
する。固有の化学イオンの確認は、当該イオンの個々の同位体ピークが容易に識別できる
場合のイオンについて可能である。固有の化学イオンを確認するために必要な特定の分解
能及び質量正確度は、イオンの質量及び電荷状態によって異なる。

本明細書で用いる場合、「分解能」又は「分解能（ＦＷＨＭ）」（当技術分野で「ｍ／
Δｍ_５０％」としても公知である）という用語は、最大高さの５０％における質量ピーク
の幅（半値全幅、「ＦＷＨＭ」）で割った観測質量電荷比を意味する。分解能の差の効果
を、約１０９３のｍ／ｚを有するイオンの理論的な質量スペクトルを示す図１Ａ～Ｃに示
す。図１Ａに約３０００の分解能（通常の四重極型質量分析計の一般的な操作条件）を有
する質量分析計による理論的質量スペクトルを示す。図１Ａにおいてわかるように、個々
の同位体ピークは識別できない。比較すると、図１Ｂに約１０，０００の分解能を有する
質量分析計による理論的質量スペクトルを示すが、個々の同位体ピークが明確に識別でき
る。図１Ｃに約１２，０００の分解能を有する質量分析計による理論的質量スペクトルを
示す。この最高の分解能では、個々の同位体ピークは、ベースラインからの１％未満の寄
与を含む。

本明細書で用いる場合、質量分析に関する「固有の化学物質イオン」は、単一原子構成
を有する単一イオンを意味する。単一イオンは、１価又は多価であり得る。

本明細書で用いる場合、質量分析に関する「正確度」（又は「質量正確度」）という用
語は、検討されるイオンの真のｍ／ｚからの機器の応答の生じ得る偏りを意味する。正確
度は、一般的に百万分の１（ｐｐｍ）で表される。質量の正確度の差の効果を、１０９３
．５２０９４のｍ／ｚの理論的ピークについて検出されるｍ／ｚと実際のｍ／ｚとの間の
生じ得る差の境界を示す図２Ａ～Ｄに示す。図２Ａに１２０ｐｐｍの正確度での検出され
るｍ／ｚの生じ得る範囲を示す。対照的に図２Ｂに５０ｐｐｍの正確度での検出されるｍ
／ｚの生じ得る範囲を示す。図２Ｃ及び２Ｄに２０ｐｐｍ及び１０ｐｐｍの正確度での検
出されるｍ／ｚのより狭い生じ得る範囲を示す。

本発明の高分解能／高精度質量分析法は、１０，０００、１５，０００、２０，０００
、２５，０００、５０，０００、１００，０００又はさらにより大きい値より大きいＦＷ
ＨＭで質量分析を行うことができる機器で実施することができる。同様に、本発明の方法
は、５０ｐｐｍ、２０ｐｐｍ、１５ｐｐｍ、１０ｐｐｍ、５ｐｐｍ、３ｐｐｍ未満又はさ
らにより小さい値の正確度で質量分析を行うことができる機器で実施することができる。
これらの性能特性の能力がある機器は、特定のオービトラップ質量分析計、飛行時間（「
ＴＯＦ」）型質量分析計又はフーリエ変換イオンサイクロトロン共鳴質量分析計を組み込
み得る。好ましい実施形態において、方法は、オービトラップ質量分析計又はＴＯＦ型質
量分析計を含む機器により実施される。

「オービトラップ」という用語は、たる様の外側電極と同軸の内側電極からなるイオン
トラップを記述する。イオンは、電極間の電界に接線方向に注入され、イオンと電極との
間の静電相互作用がイオンが同軸内側電極を周回するときの遠心力と釣り合うためにトラ
ップされる。イオンが同軸内側電極を周回するとき、トラップされたイオンの軌道がイオ
ンの質量電荷比に応じた調和振動数で中心電極の軸に沿って振動する。軌道振動数の検出
により、オービトラップを高精度（１～２ｐｐｍと低い）及び高分解能（ＦＷＨＭ）（最
大約２００，０００）を有する質量分析計として用いることが可能になる。オービトラッ
プに基づく質量分析計は、参照によりその全体として本明細書に組み込まれる、米国特許
第６，９９５，３６４号に詳細に記載されている。オービトラップ分析計の使用は、様々
な被分析物の定性及び定量分析について報告された。例えば、米国特許出願公開第２００
８／０１１８９３２号（２００７年１１月９日出願）、Bredehoftら、Rapid Commun. Mas
s Spectrom.、2008年、22巻、477～485頁、Le Bretonら、Rapid Commun. Mass Spectrom.
、2008年、22巻、3130～36頁、Thevisら、Mass Spectrom. Reviews、2008年、27巻、35～
50頁、Thomasら、J. Mass Spectrom.、2008年、43巻、908～15頁、Schenkら、BMC Medica
l Genomics、2008年、1巻、41頁及びOlsenら、Nature Methods、2007年、4巻、709～12頁
を参照のこと。

本明細書で用いる場合、「ネガティブイオンモードで動作する」という用語は、負イオ
ンを発生させ、検出する質量分析法を意味する。「ポジティブイオンモードで動作する」
という用語は、本明細書で用いる場合、正イオンを発生させ、検出する質量分析法を意味
する。好ましい実施形態において、質量分析をポジティブイオンモードで行う。

本明細書で用いる場合、「イオン化」又は「イオン化する」という用語は、１以上の電
子単位に等しい正味の電荷を有する被分析物イオンを発生させる方法を意味する。負イオ
ンは、１以上の電子単位の正味の負電荷を有するものであり、一方、正イオンは、１以上
の電子単位の正味の正電荷を有するものである。

本明細書で用いる場合、「電子イオン化」又は「ＥＩ」という用語は、気相又は蒸気相
中の対象の被分析物が電子の流れと相互作用する方法を意味する。電子と被分析物との衝
突が、次に質量分析技術に供され得る被分析物イオンを生成する。

本明細書で用いる場合、「化学イオン化」又は「ＣＩ」という用語は、試薬ガス（例え
ば、アンモニア）が電子衝撃に供され、試薬ガスイオンと被分析物分子との相互作用によ
り被分析物イオンが生じる方法を意味する。

本明細書で用いる場合、「高速原子衝撃」又は「ＦＡＢ」という用語は、高エネルギー
原子（しばしばＸｅ又はＡｒ）のビームが不揮発性試料に衝突し、試料に含まれている分
子を脱離させ、イオン化する方法を意味する。試験試料をグリセロール、チオグリセロー
ル、ｍ－ニトロベンジルアルコール、１８－クラウン－６クラウンエーテル、２－ニトロ
フェニルオクチルエーテル、スルホラン、ジエタノールアミン及びトリエタノールアミン
などの粘性液体マトリックスに溶解する。化合物又は試料に対する適切なマトリックスの
選択は、経験的過程である。

本明細書で用いる場合、「マトリックス支援レーザー脱離イオン化」又は「ＭＡＬＤＩ
」という用語は、不揮発性試料を、光イオン化、プロトン化、脱プロトン化及びクラスタ
崩壊を含む様々なイオン化経路により試料中の被分析物を脱離させ、イオン化するレーザ
ー照射にさらす方法を意味する。ＭＡＬＤＩのために、試料を、被分析物分子の脱離を促
進するエネルギー吸収マトリックスと混合する。

本明細書で用いる場合、「表面エンハンス型レーザー脱離イオン化」又は「ＳＥＬＤＩ
」という用語は、不揮発性試料を、光イオン化、プロトン化、脱プロトン化及びクラスタ
崩壊を含む様々なイオン化経路により試料中の被分析物を脱離させ、イオン化するレーザ
ー照射にさらす他の方法を意味する。ＳＥＬＤＩのために、試料を一般的に、対象の１つ
又は複数の被分析物を優先的に保持する表面に結合させる。ＭＡＬＤＩと同様に、この方
法は、イオン化を促進するエネルギー吸収物質も用いることができる。

本明細書で用いる場合、「エレクトロスプレーイオン化」又は「ＥＳＩ」という用語は
、末端に高い正又は負電位を印加した短い毛細管に溶液を通す方法を意味する。管の末端
に到達した溶液は、蒸発して（霧化）、溶媒蒸気中溶液の非常に小さな液滴のジェット又
は噴霧体（spray）になる。この液滴の噴霧体（mist）は、蒸発チャンバー中を流れる。
液滴がより小さくなるとき、電荷の間の自然反発力によってイオン並びに中性分子が放出
されるような時点まで表面電荷密度が増加する。

本明細書で用いる場合、「大気圧化学イオン化」又は「ＡＰＣＩ」という用語は、ＥＳ
Ｉと同様な質量分析法を意味するが、ＡＰＣＩは、大気圧のプラズマ内で起こるイオン－
分子反応によりイオンを生成する。プラズマは、噴霧毛細管と対極との間の放電により維
持される。次いで、イオンは、一般的に一組の差動排気スキマーステージを用いることに
より質量分析計内に抽出される。向流の乾燥および予熱されたＮ_２ガスを用いて、溶媒の
除去を改善することができる。ＡＰＣＩにおける気相イオン化は、極性がより低い種を分
析するのにＥＳＩより有効であり得る。

「大気圧光イオン化」又は「ＡＰＰＩ」という用語は、本明細書で用いる場合、分子Ｍ
のイオン化の機構が分子イオンＭ＋を生成する光子の吸収及び電子の放出である質量分析
の形態を意味する。光子エネルギーが一般的にイオン化電位の直上であるため、分子イオ
ンは解離を受けにくい。多くの場合に、クロマトグラフィーの必要なしに試料を分析する
ことが可能であり、それによりかなりの時間と費用の節約となり得る。水蒸気又はプロト
ン性溶媒の存在下では、分子イオンは、Ｈを引き抜いてＭＨ＋を形成し得る。Ｍが高いプ
ロトン親和性を有する場合、これが起こる傾向がある。Ｍ＋とＭＨ＋の合計が一定である
ため、これは、定量の正確度に影響を与えない。プロトン性溶媒中の薬物化合物は、通常
ＭＨ＋として観測されるが、ナフタレン又はテストステロンなどの非極性化合物は、通常
Ｍ＋を形成する。例えば、Robbら、Anal. Chem.、2000年、72巻(15号)、3653～3659頁を
参照のこと。

本明細書で用いる場合、「誘導結合プラズマ」又は「ＩＣＰ」という用語は、大部分の
元素が原子化され、イオン化されるような十分に高い温度で試料が部分的にイオン化され
たガスと相互作用する方法を意味する。

本明細書で用いる場合、「電界脱離」という用語は、不揮発性試験試料をイオン化表面
上にのせ、強い電界を用いて被分析物イオンを発生させる方法を意味する。

本明細書で用いる場合、「脱離」という用語は、表面からの被分析物の除去及び／又は
被分析物の気相への侵入を意味する。レーザー脱離熱脱離は、被分析物を含む試料をレー
ザーパルスにより気相中に熱的に脱離させる技術である。レーザーは、金属基部を備えた
特製の９６ウエルプレートの裏面を照射する。レーザーパルスが底部を加熱し、熱が試料
を気相に移行させる。気相試料が次に質量分析計に引き込まれる。

本明細書で用いる場合、「選択イオンモニタリング」という用語は、比較的狭い質量範
囲内、一般的に約１質量単位の範囲内のイオンのみが検出される質量分析機器の検出モー
ドである。

本明細書で用いる場合、「選択反応モニタリング」として時として公知である「多重反
応モード」は、前駆イオン及び１つ又は複数のフラグメントイオンが選択的に検出される
質量分析機器の検出モードである。

本明細書で用いる場合、「定量化下限」、「定量下限」又は「ＬＬＯＱ」という用語は
、測定が定量的に意味があるようになるポイントを意味する。このＬＯＱにおける被分析
物の応答は、特定可能であり、個別的であり、２０％未満の相対標準偏差（ＲＳＤ％）及
び８５％～１１５％の正確度で再現性がある。

本明細書で用いる場合、「検出限界」又は「ＬＯＤ」という用語は、測定値がそれに関
連する不確実さより大きいポイントである。ＬＯＤは、値がその測定に関連する不確実さ
を超えるポイントであり、ゼロ濃度における平均値のＲＳＤの３倍と定義される。

本明細書で用いる場合、体液試料中の被分析物の「量」は、一般的に試料の体積におい
て検出できる被分析物の質量を反映する絶対値を意味する。しかし、量は、他の被分析物
の量と比較した相対量も意図する。例えば、試料中の被分析物の量は、試料中に通常存在
する被分析物の対照又は正常レベルより大きい量であり得る。

「約」という用語は、イオンの質量の測定を含まない定量的測定に関して本明細書で用
いる場合、表示値プラス又はマイナス１０％を意味する。質量分析機器は、所定の被分析
物の質量を決定することについてわずかに異なり得る。イオンの質量又はイオンの質量／
電荷比に関する「約」という用語は、＋／－０．５０原子質量単位を意味する。

上述の本発明の概要は、非限定的なものであり、本発明の他の特徴及び利点は、本発明
の以下の詳細な説明及び特許請求の範囲から明らかである。

約３０００の分解能を有する質量分析計により分析するときの約１０９３のｍ／ｚを有するイオンの理論的質量スペクトルを示す図である。 約１０，０００の分解能を有する質量分析計により分析するときの約１０９３のｍ／ｚを有するイオンの理論的質量スペクトルを示す図である。 約１２，０００の分解能を有する質量分析計により分析するときの約１０９３のｍ／ｚを有するイオンの理論的質量スペクトルを示す図である １２０ｐｐｍの質量精度での１０９３．５２０９４のｍ／ｚにおける理論的ピークについて検討したイオンの真のｍ／ｚからの機器の応答の生じ得る偏りを示す図である。 ５０ｐｐｍの質量精度での１０９３．５２０９４のｍ／ｚにおける理論的ピークについて検討したイオンの真のｍ／ｚからの機器の応答の生じ得る偏りを示す図である。 ２０ｐｐｍの質量精度での１０９３．５２０９４のｍ／ｚにおける理論的ピークについて検討したイオンの真のｍ／ｚからの機器の応答の生じ得る偏りを示す図である。 １０ｐｐｍの質量精度での１０９３．５２０９４のｍ／ｚにおける理論的ピークについて検討したイオンの真のｍ／ｚからの機器の応答の生じ得る偏りを示す図である。 図３Ａ及びＢは、酸性条件下でポジティブイオンモードでのＥＳＩによるヒトインスリンのイオン化で収集された具体例としてのスペクトルを示す図である。詳細は実施例３で述べる。 図３Ａ及びＢは、塩基性条件下でポジティブイオンモードでのＥＳＩによるヒトインスリンのイオン化で収集された具体例としてのスペクトルを示す図である。詳細は実施例３で述べる。 図４Ａは、ＱＴＯＦ質量分析計により得られたヒトインスリンの約９００～１２００のｍ／ｚ範囲にわたる具体例としてのスペクトルを示す図である。図４Ｂは、ＱＴＯＦ質量分析計により得られたストリップ血清試料マトリックスからの混入物ピークを示す図である。詳細は実施例４で述べる。 図５Ａは、ＱＴＯＦ質量分析計により得られたヒトインスリンの約１１５４～１１７７のｍ／ｚ範囲にわたる具体例としての高分解能／高精度スペクトルを示す図である。図５Ｂは、約１１５９～１１６６のｍ／ｚ範囲の拡大図である。詳細は実施例４で述べる。 図６Ａは、ＱＴＯＦ質量分析計により得られたヒトインスリンの約９６４～９７３のｍ／ｚ範囲にわたる具体例としての高分解能／高精度スペクトルを示す図である。図６Ｂは、約９６７～９７１のｍ／ｚ範囲の拡大図である。詳細は実施例４で述べる。 図７は、インスリンの高分解能／高精度ＭＳにより測定したスパイクした模擬血清標準中のヒトインスリンの定量の直線性プロットを示す図である。詳細は実施例４で述べる。 図８は、インスリンの高分解能／高精度ＭＳにより測定したスパイクしたストリップ血清標準中のヒトインスリンの定量の直線性プロットを示す図である。詳細は実施例４で述べる。 図９は、５＋及び６＋荷電状態のヒトインスリン前駆イオンの生成を示すタンデム質量分析Ｑ１スキャンを示す図である。詳細は実施例５で述べる。 図１０は、６＋荷電状態のヒトインスリン前駆イオンのフラグメント化によるプロダクトイオンスキャンを示す図である。詳細は実施例５で述べる。 図１１は、５＋荷電状態のヒトインスリン前駆イオンのフラグメント化によるプロダクトイオンスキャンを示す図である。詳細は実施例５で述べる。 図１２は、各種衝突エネルギーで６＋及び５＋ヒトインスリン前駆イオンをフラグメント化することにより生成した選択したフラグメントイオンの相対強度を示す図である。詳細は実施例５で述べる。 図１３は、２つの可能なヒトインスリンＡ鎖前駆イオン（２＋及び３＋荷電状態の）及び２つの可能なヒトインスリンＢ鎖前駆イオン（３＋及び４＋荷電状態の）を示す複合スペクトルを示す図である。詳細は実施例６で述べる。 図１４は、ｌ３＋、４＋及び５＋荷電状態の可能なヒトインスリンＢ鎖前駆イオンの生成を示すタンデム質量分析Ｑ１スキャンを示す図である。詳細は実施例６で述べる。 図１５は、各種衝突エネルギーで３＋ヒトインスリンＡ鎖前駆イオンをフラグメント化することにより生成した選択したフラグメントイオンの相対強度を示す図である。詳細は実施例６で述べる。 図１６は、４＋荷電状態のヒトインスリンＢ鎖前駆イオンのフラグメント化によるプロダクトイオンスキャンを示す図である。詳細は実施例６で述べる。 図１７は、３＋荷電状態のヒトインスリンＢ鎖前駆イオンのフラグメント化によるプロダクトイオンスキャンを示す図である。詳細は実施例１０で述べる。 図１８は、各種衝突エネルギーで３＋ヒトインスリンＢ鎖前駆イオンをフラグメント化することにより生成した選択したフラグメントイオンの相対強度を示す図である。詳細は実施例１０で述べる。 図１９は、ヒトインスリンＢ鎖のタンデム質量分析による患者血清試料中のヒトインスリンのＬＬＯＱを評価するために用いたプロットを示す図である。詳細は実施例１２で述べる。 図２０は、ヒトインスリンＢ鎖のタンデム質量分析により測定したスパイクしたストリップ血清試料中のヒトインスリンの定量の直線性のプロットを示す図である。詳細は実施例１３で述べる。

発明の詳細な説明
試料中のインスリンの量を決定する方法を述べる。より具体的には、試料中のインスリ
ンを検出し、定量するための質量分析法を述べる。方法は、選択される被分析物の精製を
実施するための固相抽出（ＳＰＥ）及び／又は液体クロマトグラフィー（ＬＣ）を質量分
析（ＭＳ）の方法と組み合わせて利用し、それにより、試料中のインスリンを検出し、定
量するためのアッセイシステムを提供し得る。好ましい実施形態は、自動インスリン定量
アッセイへの大規模臨床施設における適用に特に十分に適している。

本発明の方法に用いる適切な試験試料は、対象の被分析物を含み得る試験試料である。
いくつかの好ましい実施形態において、試料は、生物学的試料、すなわち、動物、細胞培
養、器官培養等などの生物学的源から得られる試料である。特定の好ましい実施形態にお
いて、試料は、イヌ、ネコ、ウマ等などの哺乳動物から得られる。特に好ましい哺乳動物
は、霊長類、最も好ましくは男性又は女性ヒトである。好ましい試料は、血液、血漿、血
清、唾液、脳脊髄液などの体液又は組織試料、好ましくは血漿及び血清を含む。そのよう
な試料は、例えば、患者、すなわち、疾患又は状態の診断、予後診断又は治療のために臨
床施設に出頭する男性又は女性の生者から得ることができる。試料が生物学的試料を含む
実施形態において、方法は、試料が生物学的源から得られた場合の試料中のインスリンの
量を決定するために用いることができる。

本発明はまた、インスリンの定量アッセイ用のキットを企図する。インスリンの定量ア
ッセイ用のキットは、本明細書で提供する組成物を含むキットを含み得る。例えば、キッ
トは、包装材料及び少なくとも１回のアッセイに十分な量の一定量の同位体標識内部標準
を含み得る。一般的に、インスリンの定量アッセイ用の包装済み試薬の使用についての有
形の形式で記録された（例えば、紙又は電子媒体上に含まれた）取扱説明書も含む。

本発明の実施形態に用いる較正及びＱＣプールは、好ましくは、インスリンが本質的に
存在しないという条件で、対象とする試料マトリックスと同様なマトリックスを用いて調
製する。

質量分析用の試料の調製
質量分析のための調製において、例えば、液体クロマトグラフィー、ろ過、遠心分離、
薄層クロマトグラフィー（ＴＬＣ）、毛細管電気泳動を含む電気泳動、免疫アフィニティ
ー分離を含むアフィニティー分離、酢酸エチル若しくはメタノール抽出を含む抽出法及び
カオトロピック剤の使用又は上記のもの若しくは同類のもののいずれかの組み合わせを含
む当技術分野で公知の様々な方法により、インスリンを試料中の１つ又は複数の他の成分
と比べて濃縮することができる。

質量分析の前に用いることができる試料の精製の１つの方法は、対象の被分析物はカラ
ム充填剤に可逆的に保持されるが、１つ又は複数の他の物質は保持されない条件下で試料
を固相抽出（ＳＰＥ）カラムに加えることである。この技術において、対象の被分析物が
カラムにより保持される場合に、第１の移動相条件を用いることができ、保持されない物
質が洗い流されたならば、保持された物質をカラムから除去するためにその後に第２の移
動相条件を用いることができる。

いくつかの実施形態において、試料中のインスリンは、アルキル結合表面を含む充填剤
を含むＳＰＥカラムに可逆的に保持させることができる。例えば、いくつかの実施形態に
おいて、Ｃ－８オンラインＳＰＥカラム（Ｐｈｅｎｏｍｅｎｅｘ，Ｉｎｃ．製のＯａｓｉ
ｓ ＨＬＢオンラインＳＰＥカラム／カートリッジ（２．１ｍｍｘ２０ｍｍ）又は同等物
など）は、質量分析の前にインスリンを濃縮するために用いることができる。いくつかの
実施形態において、ＳＰＥカラムの使用は、洗浄溶液としてのＨＰＬＣ用０．２％水性ギ
酸及び溶出溶液としてのアセトニトリル中０．２％ギ酸を用いて行われる。

いくつかの実施形態において、インスリンは、免疫アフィニティー技術により精製しな
い。これらの実施形態のいくつかは、ＳＰＥカラムを利用する。これらの実施形態におい
て、ＳＰＥカラムは、免疫アフィニティーカラムでない。

他の実施形態において、方法は、質量分析の前のインスリンを免疫精製するステップを
含む。免疫精製ステップは、当技術分野で周知の免疫精製法のいずれかを用いて実施する
ことができる。しばしば免疫精製手順は、固体担体、例えば、カラム、ウエル、チューブ
、カプセル、粒子又は同類のものに結合した、コンジュゲートした、固定化された又は別
の状態で結合した抗体を利用するものである。一般的に、免疫精製法は、（１）被分析物
が抗体に結合するように対象の被分析物を含む試料を抗体とともにインキュベートするス
テップと、（２）１又は複数回の洗浄ステップを実施するステップと、（３）抗体から被
分析物を溶出するステップとを含む。

特定の実施形態において、免疫精製のインキュベーションステップは、溶液中の遊離の
抗体を用いて実施し、抗体は、その後、洗浄ステップの前に固体表面に結合又は付着させ
る。特定の実施形態において、これは、抗インスリン抗体である一次抗体及び一次抗イン
スリン抗体に対する親和性を有する固体表面に結合させた二次抗体を用いて達成すること
ができる。代替実施形態において、インキュベーションステップの前に一次抗体を固体表
面に結合させる。

適切な固体担体は、制限なしに、チューブ、スライド、カラム、ビーズ、カプセル、粒
子、ゲル及び同類のものを含む。いくつかの好ましい実施形態において、固体担体は、例
えば、９６ウエルプレート、３８４ウエルプレート及び同類のものなどの多ウエルプレー
トである。いくつかの実施形態において、固体担体は、セファロース若しくはアガロース
ビーズ又はゲルである。抗体（例えば、インスリン抗体又は二次抗体）を固体担体に結合
、付着、固定化又は連結することができる当技術分野で周知の多くの方法、例えば、共有
結合又は非共有結合吸着、親和性結合、イオン結合などがある。いくつかの実施形態にお
いて、抗体は、ＣＮＢｒを用いて連結させる。例えば、抗体は、ＣＮＢｒ活性化セファロ
ースに連結させることができる。他の実施形態において、抗体は、プロテインＡ、プロテ
インＧ、プロテインＡ／Ｇ又はプロテインＬなどの抗体結合タンパク質を介して固体担体
に付着させる。

免疫精製法の洗浄ステップは、一般的に、インスリンが固体担体上の抗インスリン抗体
に結合したままであるように固体担体を洗浄することを必要とする。免疫精製法の溶出ス
テップは、一般的に、抗インスリン抗体へのインスリンの結合を破壊する溶液の添加を必
要とする。具体例としての溶出溶液は、有機溶液、塩溶液及び高又は低ｐＨ溶液を含む。

質量分析の前に用いることができる試料の精製の他の方法は、液体クロマトグラフィー
（ＬＣ）である。液体クロマトグラフィー技術において、対象の被分析物が１つ又は複数
の他の物質と比べて異なる速度で溶出する移動相条件下で試料をクロマトグラフ分析カラ
ムに加えることによって、被分析物を精製することができる。そのような手順は、試料の
１つ又は複数の他の成分と比べて対象の１つ又は複数の被分析物の量を高め得る。

ＨＰＬＣを含む液体クロマトグラフィーの特定の方法は、比較的に遅い層流技術に依拠
している。伝統的なＨＰＬＣ分析は、カラム中を通る試料の層流が試料からの対象の被分
析物の分離の基礎であるカラム充填に依拠している。当業者は、そのようなカラムにおけ
る分離が分配過程であることを理解し、Ｃペプチドとともに用いるのに適切であるＨＰＬ
Ｃを含むＬＣ、機器及びカラムを選択することができる。クロマトグラフ分析カラムは、
一般的に化合物構成成分の分離（すなわち、分別）を促進するための媒体（すなわち、充
填剤）を含む。媒体は、微細な粒子を含み得る。粒子は、一般的に、様々な化合物構成成
分と相互作用して化合物構成成分の分離を促進する結合表面を含む。１つの適切な結合表
面は、アルキル結合又はシアノ結合表面などの疎水性結合表面である。アルキル結合表面
は、Ｃ－４、Ｃ－８、Ｃ－１２又はＣ－１８結合アルキル基を含み得る。いくつかの実施
形態において、クロマトグラフ分析カラムは、モノリスＣ－１８カラムである。クロマト
グラフ分析カラムは、試料を受け入れる入口部及び分別試料を含む溶出物を排出するため
の出口部を含む。試料は、入口部に直接、又はオンラインＳＰＥカラムなどのＳＰＥカラ
ム若しくはＴＦＬＣカラムから供給することができる。いくつかの実施形態において、試
料がＳＰＥ及び／又はＴＦＬＣ及び／又はＨＰＬＣカラムに達する前に試料中の粒子及び
リン脂質を除去するために、オンラインフィルターをＳＰＥカラム及び又はＨＰＬＣカラ
ムの前に用いることができる。

１つの実施形態において、試料は、入口部においてＬＣカラムに加え、溶媒又は溶媒混
合物により溶出し、出口部において排出することができる。対象の被分析物（単数又は複
数）を溶出するための各種溶媒モードを選択することができる。例えば、液体クロマトグ
ラフィーは、勾配モード、無勾配モード又は多型的（すなわち、混合）モードを用いて実
施することができる。クロマトグラフィー中、物質の分離は、溶出液（「移動相」として
も公知）、溶出モード、勾配条件、温度の選択等などの変数による影響を受ける。

いくつかの実施形態において、試料中のインスリンをＨＰＬＣにより濃縮する。このＨ
ＰＬＣは、モノリスＣ－１８カラムクロマトグラフシステム、例えば、Ｐｈｅｎｏｍｅｎ
ｅｘ Ｉｎｃ．製のＯｎｙｘモノリスＣ－１８カラム（５０ｘ２．０ｍｍ）又は同等物を
用いて実施することができる。特定の実施形態において、ＨＰＬＣは、溶媒ＡとしてのＨ
ＰＬＣ用０．２％水性ギ酸及び溶媒Ｂとしてのアセトニトリル中０．２％ギ酸を用いて実
施する。

弁及び継手配管の注意深い選択により、手作業によるステップの必要なく１つのクロマ
トグラフィーカラムから次のカラムに物質が通るように２つ以上のクロマトグラフィーカ
ラムを必要に応じて接続することができる。好ましい実施形態において、弁及び配管の選
択は、必要なステップを実施するようにあらかじめプログラムされたコンピュータにより
制御される。最も好ましくは、クロマトグラフィーシステムは、そのようなオンライン式
で検出システム、例えば、ＭＳシステムにも接続されている。したがって、操作者が試料
のトレーをオートサンプラーに取り付けることができ、残りの操作は、コンピュータ制御
のもとに実施されて、選択されるすべての試料の精製及び分析が行われる結果となる。

いくつかの実施形態において、質量分析の前のインスリンの精製のためにＴＦＬＣを用
いることができる。そのような実施形態において、被分析物を捕捉するＴＦＬＣカラムを
用いて試料を抽出することができる。次いで、被分析物を溶出し、オンラインで分析ＨＰ
ＬＣカラムに移す。例えば、試料の抽出は、大粒子径（５０μｍ）充填剤を含むＴＦＬＣ
抽出カートリッジを用いて達成することができる。このカラムから溶出した試料は、質量
分析の前のさらなる精製のためにオンラインで分析ＨＰＬＣカラムに移すことができる。
これらのクロマトグラフィー手順に含まれるステップを自動式で連結することができるの
で、被分析物の精製中の操作者の関与の必要性を最小限にすることができる。この特徴に
より、時間と費用の節約がもたらされ、操作者の誤りの機会が排除される可能性がある。

いくつかの実施形態において、１つ又は複数の上述の精製技術は、複数の試料の同時処
理を可能にするために、インスリンの精製のために並行して用いることができる。いくつ
かの実施形態において、用いられる精製技術は、免疫アフィニティークロマトグラフィー
などの免疫精製技術を除く。

質量分析によるインスリンの検出及び定量
質量分析は、分別試料をイオン化し、さらなる分析のために荷電分子を生成するための
イオン源を含む質量分析計を用いて実施される。様々な実施形態において、インスリンは
、当業者に公知の方法によりイオン化することができる。例えば、インスリンのイオン化
は、電子イオン化、化学イオン化、エレクトロスプレーイオン化（ＥＳＩ）、光子イオン
化、大気圧化学イオン化（ＡＰＣＩ）、光イオン化、大気圧光イオン化（ＡＰＰＩ）、レ
ーザーダイオード熱脱離（ＬＤＴＤ）、高速原子衝撃（ＦＡＢ）、液体二次イオン化（Ｌ
ＳＩ）、マトリックス支援レーザー脱離イオン化（ＭＡＬＤＩ）、電界イオン化、電界脱
離、サーモスプレー／プラズマスプレーイオン化、表面エンハンス型レーザー脱離イオン
化（ＳＥＬＤＩ）、誘導結合プラズマ（ＩＣＰ）及び粒子ビームイオン化により行うこと
ができる。当業者は、イオン化法の選択は、測定される被分析物、試料の種類、検出器の
種類、ポジティブ対ネガティブモードの選択等に基づいて決定することができることを理
解し、インスリンはポジティブモードでイオン化されても、ネガティブモードでイオン化
されてもよい。好ましい実施形態において、インスリンは、ＥＳＩによりポジティブイオ
ンモードでイオン化される。

質量分析技術において、一般的に、試料をイオン化した後、それにより生成した正又は
負に荷電したイオンを分析して、質量電荷比（ｍ／ｚ）を決定することができる。ｍ／ｚ
を決定するための種々の分析計は、四重極型分析計、イオントラップ型分析計、飛行時間
型分析計、フーリエ変換イオンサイクロトロン共鳴質量分析計及びオービトラップ型分析
計を含む。いくつかの具体例としてのイオントラップ方法は、Bartolucciら、Rapid Comm
un. Mass Spectrom.、2000年、14巻、967～73頁に記載されている。

イオンは、数種の検出モードを用いて検出することができる。例えば、選択されるイオ
ンは、すなわち、選択イオンモニタリングモード（ＳＩＭ）を用いて検出することができ
、又は代わりになるべきものとして、衝突誘起解離若しくはニュートラルロスに起因する
質量遷移を例えば、多重反応モニタリング（ＭＲＭ）若しくは選択反応モニタリング（Ｓ
ＲＭ）によりモニターすることができる。いくつかの実施形態において、質量電荷比を四
重極型分析計を用いて決定する。「四重極」又は「四重極型イオントラップ」機器におい
て、振動高周波電界におけるイオンは、電極間に印加されたＤＣ電位、ＲＦシグナルの振
幅及び質量／電荷比に比例する力を受ける。電圧及び振幅は、特定の質量／電荷比を有す
るイオンのみが四重極を縦断するが、他のすべてのイオンは偏向させられるように選択で
きる。したがって、四重極機器は、機器に注入されるイオンの「マスフィルター」及び「
質量検出器」の両方として機能し得る。

イオンが検出器に衝突するとき、それらは、デジタル信号に変換される電子のパルスを
生じる。取得されたデータは、コンピュータに転送され、コンピュータは、収集されたイ
オンの計数を時間に対してプロットする。得られる質量クロマトグラムは、伝統的なＨＰ
ＬＣ－ＭＳ法で得られるクロマトグラムに類似している。特定のイオンに対応するピーク
下面積又はそのようなピークの振幅を測定し、対象の被分析物の量と関連させることがで
きる。特定の実施形態において、フラグメントイオン（単数又は複数）及び／又は前駆イ
オンのピークの曲線下面積又は振幅を測定して、インスリンの量を決定する。所定のイオ
ンの相対存在量（relative abundance）は、内部又は外部分子標準の１つ又は複数のイオ
ンのピークに基づく較正標準曲線を用いて最初の被分析物の絶対量に変換することができ
る。

特定の質量分析計を用いるＭＳ技術の分解能を「タンデム質量分析」又は「ＭＳ／ＭＳ
」により向上させることができる。この技術において、対象の分子から得られる前駆イオ
ン（親イオンとも呼ばれる）は、ＭＳ機器によりフィルターすることができ、前駆イオン
は、その後フラグメント化されて、第２のＭＳ手順で分析される１つ又は複数のフラグメ
ントイオン（娘イオン又はプロダクトイオンとも呼ばれる）を生じる。前駆イオンの注意
深い選択により、特定の被分析物により生成するイオンのみがフラグメント化チャンバー
に通され、そこでの不活性ガスの原子との衝突により、フラグメントイオンが生成する。
前駆及びフラグメントイオンの両方が一連の所定のイオン化／フラグメント化条件下で再
現性よく生成するので、ＭＳ／ＭＳ技術は、極めて強力な分析ツールとなり得る。例えば
、フィルトレーション／フラグメンテーションの組み合わせは、妨害物質を除去するため
に用いることができ、生物学的試料のような複雑な試料に特に有用であり得る。特定の実
施形態において、マルチプル四重極型分析計を含む質量分析機器（トリプル四重極型機器
など）を用いてタンデム質量分析を行う。

ＭＳ／ＭＳ技術を用いる特定の実施形態において、前駆イオンをさらなるフラグメント
化のために単離し、衝突活性化解離（ＣＡＤ）を用いて、後続の検出のために前駆イオン
からフラグメントイオンを生成する。ＣＡＤにおいて、前駆イオンは、不活性ガスとの衝
突によりエネルギーを獲得し、その後「単分子分解」と呼ばれる過程によりフラグメント
になる。振動エネルギーの増加によりイオン内の特定の結合を切断できるように、十分な
エネルギーが前駆イオンに蓄積されなければならない。

いくつかの実施形態において、試料中のインスリンは、次のようにＭＳ／ＭＳを用いて
検出され、及び／又は定量される。最初に試料をＳＰＥに、次いで、液体クロマトグラフ
ィー、好ましくはＨＰＬＣに供することにより、試料中のインスリンが濃縮され、クロマ
トグラフ分析カラムからの液体溶媒の流れがＭＳ／ＭＳ分析計の加熱ネブライザーインタ
ーフェースに入り、溶媒／被分析物混合物がインターフェースの加熱荷電チューブ中で蒸
気に変換される。これらの過程において、被分析物（すなわち、インスリン）がイオン化
される。イオン、例えば、前駆イオンは、機器の開口部を通過し、第１の四重極に入る。
四重極１及び３（Ｑ１及びＱ３）は、イオンの質量電荷比（ｍ／ｚ）に基づいてイオンの
選択（すなわち、Ｑ１及びＱ３におけるそれぞれ「前駆」及び「フラグメント」イオンの
選択）を可能にするマスフィルターである。四重極２（Ｑ２）は、イオンがフラグメント
化されるコリジョンセルである。質量分析計の第１の四重極（Ｑ１）は、インスリンイオ
ンのｍ／ｚを有する分子を選択する。正しいｍ／ｚを有する前駆イオンは、コリジョンチ
ャンバー（Ｑ２）内に通されるが、他のｍ／ｚを有する不要なイオンは、四重極の側面に
衝突し、除去される。Ｑ２に入った前駆イオンは、中性ガス分子（アルゴン分子など）と
衝突し、フラグメントになる。生成したフラグメントイオンは、四重極３（Ｑ３）に通さ
れ、ここでフラグメントイオンが検出のために選択される。

インスリンのイオン化は、多価前駆イオン（４＋、５＋、６＋等の前駆イオンのような
）をもたらし得る。イオン化条件、特にエレクトロスプレー技術に用いられる緩衝液のｐ
Ｈは、生成したインスリン前駆イオンの同一性及び量に著しい影響を与える。例えば、酸
性条件下では、ポジティブエレクトロスプレーイオン化は、主として、それぞれ１１６２
．５±０．５及び９６８．５±０．５のｍ／ｚを有する５＋及び６＋価インスリン前駆イ
オンを発生させ得る。しかし、塩基性条件下では、ポジティブエレクトロスプレーイオン
化は、主として、それぞれ１４５３．７５±０．５及び１１６２．９４±０．５のｍ／ｚ
を有する４＋及び５＋価インスリン前駆イオンを発生させ得る。本方法は、酸性又は塩基
性条件、好ましくは酸性条件を利用し得る。

本方法は、ポジティブ又はネガティブイオンモード、好ましくはポジティブイオンモー
ドで実施されるＭＳ／ＭＳを含み得る。特定の実施形態において、エレクトロスプレー緩
衝液は、酸性であり、Ｑ１は、約１１６２．５±０．５又は９６８．５±０．５のｍ／ｚ
を有するインスリン前駆イオンを選択する。これらのインスリン前駆イオンのいずれかの
フラグメント化により、約２２６．２１±０．５及び／又は１３５．６±０．５のｍ／ｚ
を有するフラグメントイオンが生成する。したがって、Ｑ１が、約１１６２．５±０．５
及び９６８．５±０．５のｍ／ｚを有するイオンからなる群から選択される１つ又は複数
のインスリン前駆イオンを選択する実施形態において、Ｑ３は、約２２６．２１±０．５
及び１３５．６±０．５のｍ／ｚを有するイオンの群から選択される１つ又は複数のフラ
グメントイオンを選択し得る。特定の実施形態において、単一前駆イオンからの単一フラ
グメントイオンの相対存在量を測定することができる。或いは、単一前駆イオンからの２
つ以上のフラグメントイオンの相対存在量を測定することができる。これらの実施形態に
おいて、各フラグメントイオンの相対存在量を任意の公知の数学的処理に供し、試料中の
最初のインスリンを定量的に評価することができる。他の実施形態において、２つ以上の
前駆イオンからの１つ又は複数のフラグメントイオンを測定し、上述のように利用して試
料中の最初のインスリンを定量的に評価することができる。

特定の実施形態において用いることができるタンデム質量分析機器を操作する代替モー
ドは、プロダクトイオンスキャン法及び前駆イオンスキャン法を含む。これらの操作モー
ドの説明については、例えば、E. Michael Thurmanら、Chromatographic-Mass Spectrome
tric Food Analysis for Trace Determination of Pesticide Residues、Chapter 8 (Ama
deo R. Fernandez-Alba編、Elsevier 2005)(387)を参照のこと。

他の実施形態において、高分解能／高精度質量分析計は、本発明の方法によるインスリ
ンの定量的分析に用いることができる。定量的結果の容認できる精度を達成するために、
質量分析計は、対象のイオンについて約５０ｐｐｍ又はそれ以下の正確度で１０，０００
又はそれ以上の分解能（ＦＷＨＭ）を示すことができなければならない。好ましくは質量
分析計は、約５ｐｐｍ又はそれ以下の正確度で１８，０００又はそれ以上の分解能（ＦＷ
ＨＭ）、例えば、２０，０００又はそれ以上の分解能（ＦＷＨＭ）と約３ｐｐｍ又はそれ
以下の正確度など、例えば、２５，０００又はそれ以上の分解能（ＦＷＨＭ）と約３ｐｐ
ｍ又はそれ以下の正確度などを示す。インスリンイオンについて必要なレベルの性能を示
すことができる３つの具体例としての分析計は、オービトラップ質量分析計、特定のＴＯ
Ｆ質量分析計及びフーリエ変換イオンサイクロトロン共鳴質量分析計である。

炭素、酸素及び窒素などの生物学的活性分子に見いだされる元素は、多種の同位体で天
然に存在する。例えば、ほとんどの炭素は、^１２Ｃとして存在するが、すべての天然に存
在する炭素の約１％は、^１３Ｃとして存在する。したがって、少なくとも１つの炭素原子
を含有する天然に存在する分子の一部分は、少なくとも１つの^１３Ｃ原子を含有すること
になる。天然に存在する元素同位体が分子に含まれることにより、複数の分子同位体が生
じる。分子同位体の質量の差は、少なくとも１原子質量単位（ａｍｕ）である。これは、
元素同位体が少なくとも１つの中性子異なるからである（１つの中性子の質量≒１ａｍｕ
）。分子同位体が多荷電状態にイオン化される場合、質量分析での検出が質量電荷比（ｍ
／ｚ）に基づいているため、同位体の間の質量の差異は、識別することが困難になり得る
。例えば、両方が５＋状態にイオン化される、質量が１ａｍｕ異なる２つの同位体は、わ
ずか０．２のそれらのｍ／ｚの差を示す。高分解能／高精度質量分析は、高度に多荷電イ
オン（±２、±３、±４、±５又はより高度の電荷を有するイオンなど）の同位体を識別
することができる。

天然に存在する元素同位体のため、すべての分子イオン（十分に感度の高い質量分析機
器により分析した場合、それぞれが個別に検出できるスペクトルピークを生じ得る）につ
いて複数の同位体が一般的に存在する。複数の同位体のｍ／ｚ比及び相対存在量は、分子
イオンの同位体シグニチャを集合的に含む。いくつかの実施形態において、２つ以上の分
子同位体のｍ／ｚ比及び相対存在量は、検討中の分子イオンの同一性を確認するために利
用することができる。いくつかの実施形態において、１つ又は複数の同位体の質量分析ピ
ークを用いて分子イオンを定量する。いくつかの関連実施形態において、１つの同位体の
単一質量分析ピークを用いて分子イオンを定量する。他の関連実施形態において、複数の
同位体ピークを用いて分子イオンを定量する。これらの後者の実施形態において、複数の
同位体ピークは、任意の適切な数学的処理に供することができる。いくつかの数学的処理
は、当技術分野で公知であり、多重ピーク下面積の合計又は多重ピークによる応答の平均
を含むが、これらに限定されない。５＋及び６＋インスリンイオンの多重同位体を示す具
体例としてのスペクトルは、図４～６に見られる。図５Ａ～Ｂに認められるように、５＋
インスリンイオンの種々の同位体のピークは、約１１６１．７２、１１６１．９２、１１
６２．１２、１１６２．３２、１１６２．５２、１１６２．７２、１１６２．９２、１１
６３．１２及び１１６３．３２に認められる。図６Ａ～Ｂに認められるように、６＋イン
スリンイオンの種々の同位体のピークは、約９６８．２８、９６８．４５、９６８．６２
、９６８．７９、９６８．９５、９６９．１２、９６９．２８、９６８．４５及び９６９
．６１に認められる。しかし、イオンの同位体の変異体について観測される正確な質量は
、機器の変動のためにわずかに変化し得ることを注意すること。

いくつかの実施形態において、試料中のインスリンの量を定性的に評価するために１つ
又は複数のイオンの相対存在量を高分解能／高精度質量分析計により測定する。いくつか
の実施形態において、高分解能／高精度質量分析により測定される１つ又は複数のイオン
は多価インスリンイオンである。これらの多価イオンは、約１４５３±０．８（すなわち
、４＋イオンの１つ又は複数の単一同位体ピーク）及び／又は１１６２±１（すなわち、
５＋イオンの１つ又は複数の単一同位体ピーク）及び／又は９６８．８±１．５（すなわ
ち、６＋イオンの１つ又は複数の単一同位体ピーク）の範囲内のｍ／ｚを有する１つ又は
複数のイオンを含み得る。

高分解能オービトラップ分析計の使用は、様々な被分析物の定性及び定量分析について
報告された。例えば、米国特許出願公開第２００８／０１１８９３２号（２００７年１１
月９日出願）、Bredehoftら、Rapid Commun. Mass Spectrom.、2008年、22巻、477～485
頁、Le Bretonら、Rapid Commun. Mass Spectrom.、2008年、22巻、3130～36頁、Thevis
ら、Mass Spectrom. Reviews、2008年、27巻、35～50頁、Thomasら、J. Mass Spectrom.
、2008年、43巻、908～15頁、Schenkら、BMC Medical Genomics、2008年、1巻、41頁及び
Olsenら、Nature Methods、2007年、4巻、709～12頁を参照のこと。

被分析物アッセイの結果は、当技術分野で公知の多くの方法により最初の試料中の被分
析物の量に関連付けることができる。例えば、サンプリング及び分析パラメーターが注意
深く管理されているならば、所定のイオンの相対存在量は、当該相対存在量を最初の分子
の絶対量に換算する表と比較することができる。或いは、外部標準を試料とともに実施す
ることができ、標準曲線をそれらの標準から得たイオンに基づいて作成する。そのような
標準曲線を用いて、所定のイオンの相対存在量を最初の分子の絶対量に換算することがで
きる。特定の好ましい実施形態において、内部標準を用いてインスリンの量を計算するた
めの標準曲線を作成する。そのような標準曲線を作成し、用いる方法は、当技術分野で周
知であり、当業者は適切な内部標準を選択することができる。例えば、好ましい実施形態
において、１つ又は複数の形の同位体標識インスリンを内部標準として用いることができ
る。イオンの量を最初の分子の量に関連させる多くの他の方法は、当業者に周知である。

本明細書で用いる場合、「同位体標識」は、質量分析技術により分析するとき、非標識
分子と比べて標識分子の質量シフトをもたらす。適切な標識の例としては、重水素（^２Ｈ
）、^１３Ｃ及び^１５Ｎなどがある。１つ又は複数の同位体標識を分子における１つ又は複
数の位置に組み込むことができ、１つ又は複数の種類の同位体標識を同じ同位体標識分子
に用いることができる。

質量分析による未改変インスリンＡ及び／又はＢ鎖の定量によるインスリンの定量
他の実施形態において、質量分析の前にインスリンの成分鎖を得るために、インスリン
を化学処理に供することができる。インスリンのＡ鎖及びＢ鎖は、ジスルフィド還元を引
き起こすことが当技術分野で公知である任意の化学的処理により分離することができる。
例えば、インスリンをＴＣＥＰ（トリス（２－カルボキシエチル）ホスフィン）で処理し
て、インスリンのジスルフィド架橋を還元し、Ａ鎖とＢ鎖を分離することができる。

Ａ鎖及びＢ鎖は、次にインスリンの精製のための上述のいずれか１つ又は複数の精製ス
テップに供することができる。好ましい実施形態において、Ａ鎖及び／又はＢ鎖を質量分
析の前にＨＰＬＣによる精製に供する。

精製されたならば、Ａ鎖及び／又はＢ鎖を次にイオン化源に供する。インスリンの場合
と同様に、当業者は、イオン化法の選択は、測定される被分析物、試料の種類、検出器の
種類、ポジティブ対ネガティブモードの選択等に基づいて決定することができることを理
解する。インスリンＡ鎖及びＢ鎖は、ポジティブ又はネガティブモードでイオン化され得
る。好ましい実施形態において、インスリンＡ鎖及び／又はＢ鎖は、ＥＳＩによりポジテ
ィブモードでイオン化される。

インスリンＡ鎖のイオン化は、多価Ａ鎖前駆イオン（２＋、３＋等の前駆イオンのよう
な）をもたらし得る。例えば、インスリンＡ鎖分子のポジティブエレクトロスプレーイオ
ン化は、それぞれ１１９２．０±０．５及び７９５．０±０．５のｍ／ｚを有する２＋及
び３＋価Ａ鎖前駆イオンを発生させ得る。インスリンと同様に、インスリンＡ鎖のイオン
化により生成する多価種の同一性及び量は、用いられるイオン化条件による影響を受ける
。好ましい実施形態において、インスリンＡ鎖を酸性条件下でイオン化する。

インスリンＡ鎖をタンデム質量分析に供する実施形態において、Ｑ１は、約１１９２．
０±０．５及び７９５．０±０．５のｍ／ｚを有する１つ又は複数のインスリンＡ鎖前駆
イオンを選択し得る。これらのインスリンＡ鎖前駆イオンのいずれかのフラグメント化に
より、約５１３．０±０．５、３９９．０±０．５、２３６．０±０．５及び１３３．０
±０．５のｍ／ｚを有するフラグメントイオンが生成し得る。したがって、Ｑ１が約１１
９２．０±０．５及び７９５．０±０．５のｍ／ｚを有するイオンからなる群から選択さ
れる１つ又は複数のインスリンＡ鎖前駆イオンを選択する実施形態において、Ｑ３は、約
５１３．０±０．５、３９９．０±０．５、２３６．０±０．５及び１３３．０±０．５
のｍ／ｚを有するイオンの群から選択される１つ又は複数のフラグメントイオンを選択し
得る。特定の実施形態において、単一前駆イオンからの単一フラグメントイオンの相対存
在量を測定することができる。或いは、単一前駆イオンからの２つ以上のフラグメントイ
オンの相対存在量を測定することができる。これらの実施形態において、各フラグメント
イオンの相対存在量を任意の公知の数学的処理に供し、試料中の最初のインスリンを定量
的に評価することができる。他の実施形態において、２つ以上の前駆イオンからの１つ又
は複数のフラグメントイオンを測定し、上述のように利用して試料中の最初のインスリン
を定性的に評価することができる。

同様に、インスリンＢ鎖のイオン化は、多価Ｂ鎖前駆イオン（３＋、４＋、５＋等の前
駆イオンのような）をもたらし得る。例えば、インスリンＢ鎖分子のポジティブエレクト
ロスプレーイオン化は、それぞれ１１４４．２±０．５、８５８．３±０．５及び６８６
．８±０．５のｍ／ｚを有する３＋、４＋及び５＋価Ｂ鎖前駆イオンを発生させ得る。イ
ンスリンと同様に、インスリンＢ鎖のイオン化により生成する多価種の同一性及び量は、
用いられるイオン化条件による影響を受ける。好ましい実施形態において、インスリンＢ
鎖を酸性条件下でイオン化する。

インスリンＢ鎖をタンデム質量分析に供する実施形態において、Ｑ１は、約１１４４．
２±０．５、８５８．３±０．５及び６８６．８±０．５のｍ／ｚを有する１つ又は複数
のインスリンＢ鎖前駆イオンを選択し得る。これらの３つのインスリンＢ鎖前駆イオンの
フラグメント化により、約８２５．４±０．５、７６８．５±０．５、７５３．２±０．
５、３４５．０±０．５及び２２６．２±０．５のｍ／ｚを有するフラグメントイオンが
生成し得る。したがって、Ｑ１が約１１４４．２±０．５、８５８．３±０．５及び６８
６．８±０．５のｍ／ｚを有するイオンからなる群から選択される１つ又は複数のインス
リンＢ鎖前駆イオンを選択する実施形態において、Ｑ３は、約８２５．４±０．５、７６
８．５±０．５、７５３．２±０．５、３４５．０±０．５及び２２６．２±０．５のｍ
／ｚを有するイオンの群から選択される、好ましくは約３４５．０±０．５及び２２６．
２±０．５のｍ／ｚを有するイオンの群から選択される１つ又は複数のフラグメントイオ
ンを選択し得る。特定の実施形態において、単一前駆イオンからの単一フラグメントイオ
ンの相対存在量を測定することができる。或いは、単一前駆イオンからの２つ以上のフラ
グメントイオンの相対存在量を測定することができる。これらの実施形態において、各フ
ラグメントイオンの相対存在量を任意の公知の数学的処理に供し、試料中の最初のインス
リンを定量的に評価することができる。他の実施形態において、２つ以上の前駆イオンか
らの１つ又は複数のフラグメントイオンを測定し、上述のように利用して試料中の最初の
インスリンを定性的に評価することができる。

質量分析による化学的に改変されたインスリンＡ及び／又はＢ鎖の定量によるインスリ
ンの定量
代替実施形態において、別個のインスリンＡ鎖及びＢ鎖を、イオン化及び／又は精製の
前に１つ又は複数の化学的改変ステップに供することができる。例えば、分離されたなら
ば、インスリンＡ鎖及びＢ鎖分子は、構成要素であるシステインを完全にアルキル化する
ためのカルバミドメチル化を受け得る。例えば、カルバミドメチル化は、インスリンＡ鎖
及び／又はＢ鎖を、ＤＴＴ（１，４－ジチオトレイトール）による還元の後にヨードアセ
トアミドとの反応に供することによって達成することができる。インスリンＡ鎖のカルバ
ミドメチル化は、約２２８．０８ａｍｕ（システイン当たり約５７．０２）の質量増加を
引き起こす、４個のシステインのアルキル化をもたらす。インスリンＢ鎖のカルバミドメ
チル化は、約１１４．０４ａｍｕ（システイン当たり約５７．０２）の質量増加を引き起
こす、２個のシステインのアルキル化をもたらす。

精製されたならば、化学的に改変された（例えば、アルキル化）Ａ鎖及び／又はＢ鎖を
イオン化源に供される。インスリンの場合と同様に、当業者は、イオン化法の選択は、測
定される被分析物、試料の種類、検出器の種類、ポジティブ対ネガティブモードの選択等
に基づいて決定することができることを理解する。アルキル化インスリンＡ鎖及びＢ鎖は
、ポジティブ又はネガティブモードでイオン化することができる。好ましい実施形態にお
いて、アルキル化インスリンＡ鎖及び／又はＢ鎖は、ＥＳＩによりポジティブモードでイ
オン化される。

アルキル化インスリンＡ鎖のイオン化は、多価アルキル化Ａ鎖前駆イオン（２＋、３＋
等の前駆イオンのような）をもたらし得る。例えば、アルキル化インスリンＡ鎖分子のポ
ジティブエレクトロスプレーイオン化は、それぞれ１３０６．０±０．５及び８７１．０
±０．５のｍ／ｚを有する２＋及び３＋価アルキル化Ａ鎖前駆イオンを発生させ得る。イ
ンスリンと同様に、アルキル化インスリンＡ鎖のイオン化により生成する多価種の同一性
及び量は、用いられるイオン化条件による影響を受ける。好ましい実施形態において、ア
ルキル化インスリンＡ鎖を酸性条件下でイオン化する。

アルキル化インスリンＡ鎖をタンデム質量分析に供する実施形態において、Ｑ１は、約
１３０６．０±０．５及び８７１．０±０．５のｍ／ｚを有する１つ又は複数のアルキル
化インスリンＡ鎖前駆イオンを選択し得る。これらのアルキル化インスリンＡ鎖前駆イオ
ンのいずれかのフラグメント化により、約５７０．０±０．５、４５６．０±０．５、２
９３．０±０．５及び１３３．０±０．５のｍ／ｚを有するフラグメントイオンが生成し
得る。したがって、Ｑ１が約１１９２．０±０．５及び７９５．０±０．５のｍ／ｚを有
するイオンからなる群から選択される１つ又は複数のアルキル化インスリンＡ鎖前駆イオ
ンを選択する実施形態において、Ｑ３は、約５７０．０±０．５、４５６．０±０．５、
２９３．０±０．５及び１３３．０±０．５のｍ／ｚを有するイオンの群から選択される
１つ又は複数のフラグメントイオンを選択し得る。特定の実施形態において、単一前駆イ
オンからの単一フラグメントイオンの相対存在量を測定することができる。或いは、単一
前駆イオンからの２つ以上のフラグメントイオンの相対存在量を測定することができる。
これらの実施形態において、各フラグメントイオンの相対存在量を任意の公知の数学的処
理に供し、試料中の最初のインスリンを定量的に評価することができる。他の実施形態に
おいて、２つ以上の前駆イオンからの１つ又は複数のフラグメントイオンを測定し、上述
のように利用して試料中の最初のインスリンを定性的に評価することができる。

同様に、アルキル化インスリンＢ鎖のイオン化は、多価アルキル化Ｂ鎖前駆イオン（３
＋、４＋、５＋等の前駆イオンのような）をもたらし得る。例えば、アルキル化インスリ
ンＢ鎖分子のポジティブエレクトロスプレーイオン化は、それぞれ１１８１．９±０．５
、８８６．９±０．５及び７０９．８±０．５のｍ／ｚを有する３＋、４＋及び５＋価ア
ルキル化Ｂ鎖前駆イオンを発生させ得る。インスリンと同様に、アルキル化インスリンＢ
鎖のイオン化により生成する多価種の同一性及び量は、用いられるイオン化条件による影
響を受ける。好ましい実施形態において、アルキル化インスリンＢ鎖を酸性条件下でイオ
ン化する。

アルキル化インスリンＢ鎖をタンデム質量分析に供する実施形態において、Ｑ１は、約
１１８１．９±０．５、８８６．９±０．５及び７０９．８±０．５のｍ／ｚを有する１
つ又は複数のインスリンＢ鎖前駆イオンを選択し得る。これらの３つのアルキル化インス
リンＢ鎖前駆イオンのフラグメント化により、約３４５．０±０．５及び２２６．２±０
．５のｍ／ｚを有するフラグメントイオンが生成し得る。したがって、Ｑ１が約１１４４
．２±０．５、８５８．３±０．５及び６８６．８±０．５のｍ／ｚを有するイオンから
なる群から選択される１つ又は複数のアルキル化インスリンＢ鎖前駆イオンを選択する実
施形態において、Ｑ３は、約３４５．０±０．５及び２２６．２±０．５のｍ／ｚを有す
るイオンの群から選択される１つ又は複数のフラグメントイオンを選択し得る。特定の実
施形態において、単一前駆イオンからの単一フラグメントイオンの相対存在量を測定する
ことができる。或いは、単一前駆イオンからの２つ以上のフラグメントイオンの相対存在
量を測定することができる。これらの実施形態において、各フラグメントイオンの相対存
在量を任意の公知の数学的処理に供し、試料中の最初のインスリンを定量的に評価するこ
とができる。他の実施形態において、２つ以上の前駆イオンからの１つ又は複数のフラグ
メントイオンを測定し、上述のように利用して試料中の最初のインスリンを定性的に評価
することができる。

上述の方法のいずれかの１つ又は複数のステップは、自動装置を用いて実施することが
できる。特定の実施形態において、１つ又は複数の精製ステップをオンラインで実施し、
より好ましくは精製及び質量分析ステップのすべてをオンライン式で実施することができ
る。

以下の実施例は、本発明を説明する役割を果たす。これらの実施例は、本方法の範囲を
制限するものではない。

実施例１： 試料の調製
様々な量のインスリンを含有する模擬血清試料は、直線的な応答を評価するために、模
擬血清（０．００２％プロテアーゼ阻害剤ＡＥＢＳＦを含むリン酸緩衝生理食塩水（ＰＢ
Ｓ）緩衝液に溶かした牛血清アルブミン（ＢＳＡ）４０ｍｇ／ｍＬ）にヒトインスリンを
様々な濃度でスパイクすることによって調製した（以下の実施例４で述べる）。

ヒトインスリンはまた、応答の直線性を評価するために、Ｇｏｌｄｅｎ Ｗｅｓｔ Ｂ
ｉｏｌｏｇｉｃａｌｓ，Ｉｎｃ．から入手した２回活性炭処理した血清に様々な濃度でス
パイクした（以下の実施例４で述べる）。

実施例２： 質量分析前のインスリンの濃縮
前記で調製したヒトインスリンスパイク模擬及びストリップ血清の試料注入は、Ｃｏｈ
ｅｓｉｖｅ Ｔｅｃｈｎｏｌｏｇｉｅｓ Ａｒｉａ ＴＸ－４２０システムで、Ａｒｉａ
ＯＳ Ｖ１．６以上のソフトウェアを用いて実施した。

試料７５μＬを、オンライン固相抽出（ＳＰＥ）カラム、Ｗａｔｅｒｓ Ｏａｓｉｓ
ＨＬＢ（２５μｍ、２．１×２０ｍｍ）に導入した。ＳＰＥカラムはヒトインスリンを保
持したが、その他の血清タンパク質及び高分子は流出させた。

インスリンは、抽出カラムから４０％アセトニトリルに溶かした０．２％ギ酸で溶出し
、分析カラム（Ｐｈｅｎｏｍｅｎｅｘ Ｉｎｃ．製の一体型Ｃ１８分析カラム（粒径５μ
ｍ、５０×２．１ｍｍ））に添加した。試料中に含有されるその他の被分析物からインス
リンを分離するために、ＨＰＬＣ勾配を分析カラムに適用した。移動相Ａは、０．２％ギ
酸水溶液で、移動相Ｂはアセトニトリルに溶かした０．２％ギ酸であった。ＨＰＬＣ勾配
は２８．５％有機勾配で開始し、約９０秒で３７％まで増加させた。

次に、インスリン濃縮試料を、インスリン定量のために高分解能／高精度ＭＳ又はＭＳ
／ＭＳに供した。

実施例３： インスリンのイオン化に対するｐＨの影響
インスリンのイオン化は、ＥＳＩ源を用いてポジティブイオンモードで行った。ポジテ
ィブインスリンイオンを発生させるためにこのイオン化源を使用する間、エレクトロスプ
レーキャリア溶液のｐＨが、発生したインスリンイオンの量及び同一性に影響を及ぼすこ
とが観察された。

酸性条件下では、多価インスリンイオンが９６８．５±０．５０（６＋イオン）及び１
１６２．３±０．５０（５＋イオン）のｍ／ｚで観察された。酸性条件下でのインスリン
のイオン化から収集されたスペクトル例を図３Ａに示す。

塩基性条件下では、多価インスリンイオンが１１６３．０±０．５０（５＋イオン）及
び１４５３．８±０．５０（４＋イオン）のｍ／ｚで観察された。塩基性条件下でのイン
スリンのイオン化から収集されたスペクトル例を図３Ｂに示す。

酸性及び塩基性の両方の条件下で十分なシグナルが発生し、定量的分析を両条件下で実
施することができた。

実施例４： 高分解能／高精度ＭＳによるインスリンの検出及び定量
高分解能／高精度ＭＳは、Ａｇｉｌｅｎｔ ＴＯＦ ＭＳシステム（Ａｇｉｌｅｎｔ
Ｔｅｃｈｎｏｌｏｇｉｅｓ、Ｉｎｃ．）を使用して実施した。このシステムは、高分解能
／高精度ＭＳを可能にするＭＳ分析器を使用する。この機器は、インスリン測定中、約２
５，０００ＦＷＨＭの分解能及び約１ｐｐｍの質量精度を示す。

イオン化は、ＥＳＩ源を用いてポジティブイオンモードで行った。実施例３で述べたよ
うに、エレクトロスプレーキャリア溶液のｐＨは、発生したインスリンイオンの量及び同
一性に影響を及ぼした。実施例１で調製した試料は、ＳＰＥカラムからギ酸溶液によって
溶出したので、試料は、イオン化の前に酸性化された。実施例３で記載したように、多価
インスリンイオンは６＋及び５＋の荷電状態であることが観察された。

ストリップ血清試料から混入ピークが溶出することが観察された。図４Ａは、ＱＴＯＦ
質量分析器で発生した模擬血清試料中のインスリンの約９００から１２００のｍ／ｚ範囲
にわたるスペクトル例を示す。図４Ｂは、ＱＴＯＦ質量分析器で発生したストリップ血清
試料マトリックスの混入ピークを示す。混入ピーク源は、インスリンピークとは異なる時
間に溶出することが認められた（データは示さず）。

５＋イオンの個々の同位体ピークを示す約１１５５から１１７６のｍ／ｚ範囲にわたる
高分解能／高精度スペクトル例を図５Ａに示す。約１１５９と１１６６の間のスペクトル
部分を拡大したものを図５Ｂに示す。スペクトルに見られるように、個々の同位体ピーク
例は、約１１６１．７２、１１６１．９２、１１６２．１２、１１６２．３２、１１６２
．５２、１１６２．７２、１１６２．９２、１１６３．１２及び１１６３．３４のｍ／ｚ
に認められる。

６＋イオンの個々の同位体ピークを示す約９６４から９７３のｍ／ｚ範囲にわたる高分
解能／高精度スペクトル例を図６Ａに示す。約９６７と９７１．４の間のスペクトル部分
を拡大したものを図６Ｂに示す。スペクトルに見られるように、個々の同位体ピーク例は
、約９６８．２８、９６８．４５、９６８．６２、９６８．７９、９６８．９５、９６８
．１２、９６８．２８、９６８．４５及び９６８．６１のｍ／ｚに観察される。

定量の直線性を評価するために、スパイクした模擬及びストリップ血清試料におけるイ
ンスリン定量について１１６２．５４±０．１０のｍ／ｚを有するイオンのデータを収集
した。いずれの種類の試料も約１．２２ｎｇ／ｍＬから１２５０ｎｇ／ｍＬの濃度範囲に
わたって直線性を示した。スパイクした模擬血清試料及びスパイクしたストリップ血清試
料におけるインスリン検出のデータの直線性を示すグラフを図７及び８それぞれに示す。
高分解能／高精度質量分析定量によるインスリンの適合度検定（Ｒ^２）を決定すると、ス
パイクした模擬血清では０．９９８１、スパイクしたストリップ血清では０．９９７９で
あった。

実施例５： タンデムＭＳによるインスリンの検出及び定量
ＭＳ／ＭＳは、Ｔｈｅｒｍｏ ＴＳＱ Ｖａｎｔａｇｅ ＭＳ／ＭＳシステム（Ｔｈｅ
ｒｍｏ Ｅｌｅｃｔｒｏｎ Ｃｏｒｐｏｒａｔｉｏｎ）を使用して実施した。いずれもＴ
ｈｅｒｍｏ Ｅｌｅｃｔｒｏｎ製である以下のソフトウェアプログラム、ＴＳＱ Ｖａｎ
ｔａｇｅ Ｖ２．０．０以上、Ｘｃａｌｉｂｕｒ Ｖ２．０以上及びＬＣＱｕａｎ Ｖ２
．５以上を本明細書で記載した実施例において使用した。分析カラムから排出する液体溶
媒／被分析物は、ＭＳ／ＭＳ分析器のＥＳＩ源界面に流動した。溶媒／被分析物混合液は
、界面の加熱されたチュービング内で蒸気に変換された。被分析物は、ＥＳＩによって酸
性条件下においてポジティブイオンモードでイオン化された。

イオンは、最初の四重極（Ｑ１）を通過した。いくつかの可能なインスリン前駆イオン
が、Ｑ１で観察された。Ｑ１スペクトルの例は図９に見られる。フラグメンテーションの
試験は、約１１６３．３２±０．５０（５＋イオン）及び約９６９．５６±０．５０（６
＋イオン）のｍ／ｚを有する多価インスリン前駆イオンで実施した。各前駆イオンのフラ
グメンテーションからのプロダクトイオンスキャンの例を図１０及び１１のそれぞれに示
す。

５＋及び６＋前駆イオンからのフラグメンテーションパターンに対する衝突エネルギー
の影響を調べた。各前駆イオンは、約７ｅＶから約８０ｅＶの範囲の衝突エネルギーでフ
ラグメント化し、３種類の選択されたフラグメントイオン（約１３５．９±０．５０、２
２６．２±０．５０及び３４５．３±０．５０のｍ／ｚ）の相対強度をモニターした。こ
れらの試験の結果を図１２に示す。図１２に示したように、フラグメントイオンの相対強
度は、衝突エネルギーに応じて著しく変化する。それぞれモニターした遷移に最適な衝突
エネルギー値を表１に示す。

６＋イオンのフラグメンテーションによってインスリンを定量するために、四重極２（
Ｑ２）に入ってくる前駆イオンはアルゴンガスと３０ｅＶの衝突エネルギーで衝突してイ
オンフラグメントを発生し、このイオンフラグメントはさらに選択するために四重極３（
Ｑ３）を通過した。以下の質量遷移が９６９．５６±０．５０前駆イオンのフラグメンテ
ーションで認められた。Ｑ３スキャン（プロダクトイオンスキャン）から収集されたフラ
グメンテーションスペクトルの例を図１０に示す。

観察された遷移のうち２つをＭＲＭモードでモニターし、定量分析用に合計した：９６
９．５６±０．５０から１３５．９±０．５０及び２２６．２±０．５０の前駆イオン（
表２を参照のこと）。定量は、２つの質量遷移をモニターすることによって遂行したが、
定量は１つだけの質量遷移をモニターすることによって遂行してもよい。逆に、前記のモ
ニターした遷移のいずれかを任意の組み合わせで置換又は増大するために、追加の質量遷
移（例えば、図１０で認められた任意のその他のフラグメントイオンを含む）を選択する
ことができる。同様に、定量は３０ｅＶの衝突エネルギーで遂行したが、十分なイオンシ
グナルを生じる任意の衝突エネルギーを使用してもよく、モニターするフラグメントイオ
ン（単数又は複数）の同一性に依存してもよい。例えば、前記で示した２つのフラグメン
トイオンでは、衝突エネルギーは約２０から約５０ｅＶの範囲、例えば、約２５から約４
０ｅＶの範囲、例えば、約２８から３２ｅＶであってもよい。

５＋イオンのフラグメンテーションによってインスリンを定量するために、四重極２（
Ｑ２）に入ってくる前駆イオンはアルゴンガスと４９ｅＶの衝突エネルギーで衝突してイ
オンフラグメントを発生し、このイオンフラグメントはさらに選択するために四重極３（
Ｑ３）を通過した。以下の質量遷移が１１６３．３２±０．５０前駆イオンのフラグメン
テーションで観察された。Ｑ３スキャン（プロダクトイオンスキャン）から収集されたフ
ラグメンテーションスペクトルの例を図１１に示す。

観察された遷移のうち２つをＭＲＭモードでモニターし、定量分析用に合計した：１１
６３．３２±０．５０から１３５．９±０．５０及び２２６．２±０．５０の前駆イオン
（表２を参照のこと）。定量は、２つの質量遷移をモニターすることによって遂行したが
、定量は１つだけの質量遷移をモニターすることによって遂行してもよい。逆に、前記の
モニターした遷移のいずれかを任意の組み合わせで置換又は増大するために、追加の質量
遷移（例えば、図１０で認められた任意のその他のフラグメントイオンを含む）を選択し
てもよい。同様に、定量は４９ｅＶの衝突エネルギーで遂行したが、十分なイオンシグナ
ルを生じる任意の衝突エネルギーを使用してもよく、モニターするフラグメントイオン（
単数又は複数）の同一性に依存してもよい。例えば、前記で示した２つのフラグメントイ
オンでは、衝突エネルギーは約２５から約７０ｅＶの範囲、例えば、約３０から約６０ｅ
Ｖの範囲、例えば、約３５から５０ｅＶであってもよい。

実施例６： タンデムＭＳによるインスリンＡ鎖及びＢ鎖の検出及び定量
実施例１で記載したように調製したインスリンをスパイクした模擬血清及びストリップ
血清試料をＴＣＥＰ（トリス（２－カルボキシエチル）ホスフィンで処理し、インスリン
のジスルフィド架橋を還元し、Ａ鎖及びＢ鎖に分離した。ジスルフィド還元後、分離した
Ａ鎖及びＢ鎖を含有する試料に実施例２で記載した精製手順と同じ手順を行った。得られ
たインスリンＡ鎖及びＢ鎖を、実施例５で記載したようにＭＳ／ＭＳ分析に供した。両被
分析物は、ＥＳＩを用いて酸性条件下においてポジティブモードでイオン化した。

いくつかの可能なインスリンＡ鎖及びＢ鎖前駆イオンが、Ｑ１で観察された。２つの可
能なＡ鎖前駆イオン（２＋及び３＋荷電状態）及び２つの可能なＢ鎖前駆イオン（３＋及
び４＋荷電状態）を示す複合スペクトルを図１３に示す。これらの２つのＡ鎖前駆イオン
は、約１１９２．８６±０．５０（２＋イオン）及び７９５．４３±０．５０（３＋イオ
ン）のｍ／ｚで観察された。これらの２つのＢ鎖前駆イオンは、約１１４４．０９±０．
５０（３＋イオン）及び８５８．４０±０．５０（４＋イオン）のｍ／ｚで観察された。
第３の可能なＢ鎖前駆イオン（図１４に示す）はまた、約６８６．８３±０．５０（５＋
イオン）のｍ／ｚで観察された。フラグメンテーションの試験は、前記のＡ鎖及びＢ鎖前
駆イオンすべてで実施した。

Ａ鎖３＋前駆イオン（約７９５．４３±０．５０のｍ／ｚ）からのフラグメンテーショ
ンパターンに対する衝突エネルギーの影響を調べた。前駆イオンは、約７ｅＶから約８０
ｅＶの範囲の衝突エネルギーでフラグメント化し、４種類の選択されたフラグメントイオ
ン（約５１３．０±０．５０、３９９．０±０．５０、２３６．０±０．５０及び１３３
．０±０．５０のｍ／ｚ）の相対強度をモニターした。これらの試験の結果を図１５に示
す。図１５に示したように、フラグメントイオンの相対強度は、衝突エネルギーに応じて
著しく変化する。それぞれモニターした遷移に最適な衝突エネルギー値を表３に示す。

インスリンの定量は、約１１９２．８６±０．５０（２＋イオン）及び７９５．４３±
０．５０（３＋イオン）のｍ／ｚを有するＡ鎖前駆イオンで実施した。定量実験は、前駆
イオンのそれぞれで実施した。これらの定量実験では、２＋イオン（約１１９２．８６±
０．５０のｍ／ｚ）又は３＋イオン（約７９５．４３±０．５０のｍ／ｚ）を前駆イオン
として選択して、表３に示したような衝突エネルギーでフラグメント化した。以下のフラ
グメントイオン、５１３．０±０．５０、３９９．０±０．５０、２３６．０±０．５０
及び１３３．０±０．５０は、選択した前駆イオンに関わらずモニターされた。定量は、
４つの質量遷移をモニターすることによって遂行したが、定量は１つだけの質量遷移をモ
ニターすることによって遂行してもよい。逆に、前記のモニターした遷移のいずれかを任
意の組み合わせで置換又は増大するために、追加の質量遷移（例えば、観察された任意の
その他のフラグメントイオンを含む）を選択してもよい。

インスリンの定量はまた、約１１４４．０９±０．５０（３＋イオン）、８５８．４０
±０．５０（４＋イオン）及び６８６．８３±０．５０（５＋イオン）のｍ／ｚを有する
Ｂ鎖前駆イオンで実施した。定量実験は、前駆イオンのそれぞれで実施した。これらの定
量実験では、３＋イオン（約１１４４．０９±０．５０のｍ／ｚ）又は４＋イオン（約７
９５．４３±０．５０のｍ／ｚ）又は５＋イオン（約６８６．８３±０．５０のｍ／ｚ）
を前駆イオンとして選択して、３０ｅＶの衝突エネルギーでフラグメント化した。以下の
フラグメントイオン、２２６．２±０．５０及び３４５．０±０．５０は、選択した前駆
イオンに関わらずモニターされた。３０ｅＶの衝突エネルギーでのＢ鎖４＋イオンのフラ
グメンテーションからのスペクトル例（すなわち、プロダクトイオンスキャン）を図１６
に示す。定量は、２つの質量遷移をモニターすることによって遂行したが、定量は１つだ
けの質量遷移をモニターすることによって遂行してもよい。逆に、前記のモニターした遷
移のいずれかを任意の組み合わせで置換又は増大するために、追加の質量遷移（例えば、
図１６で観察された任意のその他のフラグメントイオンを含む）を選択してもよい。

実施例７ タンデムＭＳによるインスリンＡ鎖（アルキル化）及びＢ鎖（アルキル化）の
検出及び定量
インスリンをスパイクした模擬血清及びストリップ血清試料をＤＴＴ（１，４－ジチオ
スレイトール）で処理して、分離したＡ鎖及びＢ鎖を含有する模擬及びストリップ血清試
料を生成した。精製する前に、インスリンＡ鎖及びＢ鎖分子をカルバミドメチル化し、分
子中に存在する構成システインそれぞれを完全にアルキル化した。Ａ鎖において、４個の
システインがこの方法によってアルキル化され、約２２８．０８ａｍｕの質量増加が生じ
た。Ｂ鎖において、２個のシステインがこの方法によってアルキル化され、約１１４．０
４ａｍｕの質量増加が生じた。

システインをアルキル化した後、アルキル化されたＡ鎖及びアルキル化されたＢ鎖を含
有する試料に、実施例２で記載した精製手順と同じ手順を行った。得られたアルキル化Ａ
鎖及びアルキル化Ｂ鎖を、実施例５で記載したようにＭＳ／ＭＳ分析に供した。両被分析
物は、ＥＳＩを用いて酸性条件下においてポジティブモードでイオン化した。

いくつかの可能なアルキル化Ａ鎖及びアルキル化Ｂ鎖前駆イオンが、Ｑ１で観察された
。約１３０６．０±０．５０（２＋イオン）及び８７１．０±０．５０（３＋イオン）の
ｍ／ｚを有する２個の可能なＡ鎖前駆イオンをフラグメンテーション及び定量のために選
択した。約１１８１．９±０．５０（３＋イオン）及び８８６．４０±０．５０（４＋イ
オン）及び７０９．８０±０．５０（５＋イオン）のｍ／ｚを有する３個の可能なアルキ
ル化Ｂ鎖前駆イオンをフラグメンテーション及び定量のために選択した。

インスリンの定量は、約１３０６．０±０．５０（２＋イオン）及び８７１．０±０．
５０（３＋イオン）のｍ／ｚを有するアルキル化Ａ鎖前駆イオンで実施した。定量実験は
、前駆イオンのそれぞれで実施した。これらの定量実験では、２＋イオン（約１３０６．
０±０．５０のｍ／ｚ）又は３＋イオン（約８７１．０±０．５０のｍ／ｚ）を前駆イオ
ンとして選択して、３０ｅＶの衝突エネルギーでフラグメント化した。以下のフラグメン
トイオン、１３３．０±０．５０、２９３．０±０．５０、４５６．０±０．５０及び５
７０．０±０．５０は、選択した前駆イオンに関わらずモニターされた。定量は、４つの
質量遷移をモニターすることによって遂行したが、定量は１つだけの質量遷移をモニター
することによって遂行してもよい。逆に、前記のモニターした遷移のいずれかを任意の組
み合わせで置換又は増大するために、追加の質量遷移を選択してもよい。

インスリンの定量はまた、約１１８１．９±０．５０（３＋イオン）、８８６．９±０
．５０（４＋イオン）及び７０９．８±０．５０（５＋イオン）のアルキル化Ｂ鎖前駆イ
オンで実施した。定量実験は、前駆イオンのそれぞれで実施した。これらの定量実験では
、３＋イオン（約１１８１．９±０．５０のｍ／ｚ）、４＋イオン（約８８６．９±０．
５０のｍ／ｚ）又は５＋イオン（約７０９．８±０．５０のｍ／ｚ）を前駆イオンとして
選択して、３０ｅＶの衝突エネルギーでフラグメント化した。以下のフラグメントイオン
、２２６．２±０．５０及び３４５．０±０．５０は、選択した前駆イオンに関わらずモ
ニターされた。定量は、２つの質量遷移をモニターすることによって遂行したが、定量は
１つだけの質量遷移をモニターすることによって遂行してもよい。逆に、前記のモニター
した遷移のいずれかを任意の組み合わせで置換又は増大するために、追加の質量遷移を選
択してもよい。

実施例８： インスリンＢ鎖の定量によるインスリン定量用のヒト試料の調製
２種類の内部標準溶液をヒト試料におけるインスリンの定量で使用した。第１の内部標
準溶液は、ウシインスリンを０．２％ギ酸水溶液に１０ｐｍｏｌ／μＬの濃度で溶解して
調製した。次に、この溶液３０μＬを、１．５Ｍトリス塩基及びエタノールを１５：８５
の比率で含有する塩基／抽出溶液５００ｍＬで希釈した。第２の内部標準溶液は、ペプチ
ド１ｍｇを０．２％ギ酸水溶液１ｍＬに溶解することによって、同位体標識したヒトイン
スリンＢ鎖（プロリンが５個の^１３Ｃ及び１個の^１５Ｎで標識されている）で調製した。
この濃縮溶液５μｌを水１０００μＬで希釈して、第２の内部標準溶液を調製した。

以前に凍結したヒト血清試料を解凍し、室温に戻し、十分に撹拌した。一旦解凍したら
、各試料１５０μＬをウシインスリンでスパイクした塩基／抽出溶液３５０μＬに添加し
た。得られた混合物を１０００ｒｐｍの速度で２分間撹拌し、－２０℃冷凍庫内で６０±
５分間インキュベートして、沈殿物を形成させた。インキュベーション後、試料を５５０
０ｒｐｍで１０分間遠心した。次に、各試料の上清２５０μＬを９６マイクロリットルプ
レートに移した。その後、ＴＣＥＰ還元溶液（Ｔｈｅｒｍｏ Ｓｃｉｅｎｔｉｆｉｃカタ
ログ番号７７７２０）２ｍＬを第２の内部標準溶液１００μＬとともに混合し、この混合
液２０μＬを９６マイクロリットルプレートの各試料に添加した。試料を再度１０００ｒ
ｐｍの速度で２分間撹拌し、３７℃のインキュベーターで６０±５分間インキュベートし
て、試料中のインスリンの還元を起こさせ、試料中に存在するいかなる完全なインスリン
もＡ及びＢ鎖に分離させた。次に、試料を－２０℃冷凍庫内で１０分間インキュベートし
て、沈殿物を形成させた。沈殿した試料を再度５５００ｒｐｍで１０分間遠心した。次に
、各試料の上清の２２５を、ＭＳ／ＭＳ分析の前にＳＰＥ及びＨＰＬＣで濃縮した。

実施例９： 質量分析前のヒト試料のインスリンＢ鎖の濃縮
実施例８で調製した加工血清試料の試料注入は、Ｃｏｈｅｓｉｖｅ Ｔｅｃｈｎｏｌｏ
ｇｉｅｓ Ａｒｉａ ＴＸ－４２０システムで、Ａｒｉａ ＯＳ Ｖ１．６以上のソフト
ウェアを用いて実施した。

各試料の２２５μＬを、Ｗａｔｅｒｓ Ｏａｓｉｓ ＨＬＢ（２５μｍ、２．１×２０
ｍｍ）、オンライン固相抽出（ＳＰＥ）カラムに導入した。ＳＰＥカラムはインスリンＢ
鎖を保持したが、その他のタンパク質及び高分子は流出させた。保持されたインスリンＢ
鎖は０．２％ギ酸で洗浄した。

次に、インスリンＢ鎖は０．０２５％イソプロパノールを含む０．２％ギ酸に溶かした
３５％アセトニトリルで抽出カラムから溶出し、ガードカートリッジを備えた分析カラム
（Ｍｉｃｈｒｏｍ Ｂｉｏｒｅｓｏｕｒｃｅｓ ３００ Ａｒｍｓｔｒｏｎｇ Ｍａｇｉ
ｃ Ｃ４（２．１×５０ｍｍ、粒径５μｍ）分析カラム及びＰｈｅｎｏｍｅｎｅｘ Ｓｅ
ｃｕｒｉｔｙガードカラムカートリッジ（Ｐｈｅｎｏｍｅｎｅｘ Ｐ／Ｎ ＡＨＯ－４２
８６））に添加した。試料中に含有されるその他の被分析物からインスリンを分離するた
めに、ＨＰＬＣ勾配をガード／分析カラムに適用した。移動相Ａは、０．２％ギ酸水溶液
で、移動相Ｂは２．５％イソプロパノールを含むアセトニトリルに溶かした０．２％ギ酸
であった。ＨＰＬＣ勾配は１２．０％有機勾配で開始し、約９０秒で４２％まで増加させ
た。

次に、インスリン濃縮試料を、インスリン定量のためにＭＳ／ＭＳに供した。

実施例１０： タンデムＭＳによるヒト血清のインスリンＢ鎖の検出及び定量
ＭＳ／ＭＳは、Ｔｈｅｒｍｏ ＴＳＱ Ｖａｎｔａｇｅ ＭＳ／ＭＳシステム（Ｔｈｅ
ｒｍｏ Ｅｌｅｃｔｒｏｎ Ｃｏｒｐｏｒａｔｉｏｎ）を使用して実施した。いずれもＴ
ｈｅｒｍｏ Ｅｌｅｃｔｒｏｎ製である以下のソフトウェアプログラム、ＴＳＱ Ｖａｎ
ｔａｇｅ Ｖ２．０．０以上、Ｘｃａｌｉｂｕｒ Ｖ２．０以上及びＬＣＱｕａｎ Ｖ２
．５以上を、本明細書で記載した実施例において使用した。分析カラムから排出する液体
溶媒／被分析物は、ＭＳ／ＭＳ分析器の加熱されたＥＳＩ源界面に流動した。溶媒／被分
析物混合物は、界面の加熱されたチュービング内で蒸気に変換した。被分析物は、ＥＳＩ
を用いて酸性条件下においてポジティブイオンモードでイオン化した。

実施例６で前述したように、いくつかの可能なインスリンＢ鎖前駆イオンが、Ｑ１で観
察された。約６８６．８３±０．５０（５＋イオン）のｍ／ｚを有するインスリンＢ鎖前
駆イオンをフラグメンテーションのために選択した。フラグメンテーション試験によって
、いくつかのインスリンＢ鎖フラグメントイオンが示された。フラグメンテーションスペ
クトルの１例を図１７に示す。

ヒトインスリンＢ鎖５＋前駆イオン（約６８６．９±０．５０のｍ／ｚ）のフラグメン
テーションパターンに対する衝突エネルギーの影響を調べた。前駆イオンは、約７Ｖから
約８０Ｖの範囲の衝突エネルギーでフラグメント化し、５種類の選択されたフラグメント
イオン（約９０６．０±０．５０、８２５．０±０．５０、７６８．５±０．５０、７５
３．０±０．５０及び７０３．０±０．５０のｍ／ｚ）の相対強度をモニターした。これ
らの試験の結果を図１８に示す。図１８に示したように、フラグメントイオンの相対強度
は、衝突エネルギーに応じて著しく変化する。それぞれモニターした遷移にほぼ最適な衝
突エネルギー値を表８に示す。

約７６８．５±０．５０及び７５３．２±０．５０のｍ／ｚを有するヒトインスリンＢ
鎖フラグメントイオンを定量で使用するために選択した。同様の試験を、いずれも実施例
８で記載したウシインスリン（内部標準１）及び同位体標識インスリンＢ鎖（内部標準２
）で実施した。さらなる定量試験で使用するために選択した各種のインスリンＢ鎖につい
てモニターした質量遷移を表９に示す。

定量は、表８で示したインスリンＢ鎖それぞれの２つの質量遷移をモニターすることに
よって遂行したが、指示した被分析物のいずれかの定量は１つだけの質量遷移をモニター
することによって遂行してもよい。逆に、前記のモニターした遷移のいずれかを任意の組
み合わせで置換又は増大するために、追加の質量遷移（例えば、図１７で認められた任意
のその他のヒトインスリンＢ鎖フラグメントイオンを含む）を選択してもよい。

実施例１１： アッセイ内及びアッセイ間の精度、再現性及び正確度の試験
実施例８～１０で記載したアッセイのアッセイ内及びアッセイ間の精度、再現性及び正
確度の試験は、アッセイの報告可能な推定範囲を包含するように、８、１２、２０、４０
及び８０μＩＵ／ｍＬのヒトインスリンでスパイクしたストリップ血清（Ｂｉｏｃｅｌｌ
Ｌａｂｏｒａｔｏｒｉｅｓ Ｉｎｃ．、１１３１－００、ロットＨＨＰ０３）から作製
した５つのＱＣプールで実施した。

５つのＱＣプールそれぞれの複製物８つを１回のアッセイで分析して、アッセイ内の試
料の変動係数（ＣＶ）を決定した。これらの試験から得られたデータを表１０に示す。結
果に行った統計処理によって、５つのＱＣプールの再現性（ＣＶ）は３．０から７．９％
の範囲で、いずれも許容可能なレベル内である（すなわち、≦１５％ＣＶ、≦２０％ＣＶ
が許容可能なＬＯＱレベルは除く）ことが示された。表１０で示したデータのさらなる分
析によって、各プールのアッセイ内正確度は８０～１２０％の許容範囲内であることが明
らかになった。

アッセイ間変動を調べるために、５つのＱＣプールそれぞれの８つの複製物を、別々の
日に５回分析した。これらの試験から得られたデータを表１１に示す。プールのアッセイ
間変動（％ＣＶ）は７．１から１４．０％の範囲であった。８、１２、２０、４０及び８
０μＩＵ／ｍＬの標的インスリンレベルの全体的な変動は、それぞれ１４．０％、１０．
２％、１０．０％、７．５％及び７．１％であった。全プールの分析は、≦２０％ＣＶが
許容可能なＬＯＱレベル以外は、≦１５％ＣＶの許容可能な再現性の必要条件を満たして
いた。表１１で示したデータのさらなる分析によって、各プールのアッセイ間正確度は８
０～１２０％の許容範囲内であることが明らかになった。

実施例１２： 分析感度：ブランク上限（ＬＯＢ）、検出限界（ＬＯＤ）及び定量限界（
ＬＯＱ）
選択性とは、試料中のその他の成分の存在下で被分析物を区別し定量する分析方法の能
力である。ＬＯＢ及びＬＯＤはいずれも、ある測定値がその測定に関連した不確定度より
も大きい指標である。ＬＯＢは、ゼロ濃度からの標準偏差の２倍と定義される。ＬＯＤは
、ゼロ濃度からの標準偏差の４倍と定義される。選択性を試験するために、適切な生物学
的マトリックス（ストリップ血清）のブランク試料を用意し、干渉を試験し、実施例８～
１０で記載した方法によって分析した。ブランクのストリップ血清試料は１４回測定した
。これらの試験の結果を統計学的に分析すると、ＬＯＢ１．４μＩＵ／ｍＬ及びＬＯＤ１
．８μＩＵ／ｍＬであった。

ＬＬＯＱは、測定値が定量的に有意義になる点である。このＬＬＯＱでの被分析物応答
は、精度２０％及び正確度８０％から１２０％で、同定可能で、明確に区別され、再現性
がある。ＬＬＯＱは、予測されたＬＬＯＱ（１．２５、２．５、５、１０、１５及び２５
μＩＵ／ｍＬに近い濃度のヒトインスリンでスパイクした６つのストリップ血清標本をア
ッセイし、次いで７回の測定のアッセイ内再現性を評価することによって決定された。こ
れらの試験のデータを分析し、プロットすると（図１９に示す）、ＬＬＯＱは曲線から３
μＩＵ／ｍＬであると決定され、許容される性能を生じる最低濃度はＣＶの９５％信頼区
間で２０％未満のままであった。

実施例１３： アッセイの報告可能な範囲及び直線性
実施例８～１０で記載したアッセイの直線範囲を確立するため、８つのスパイクしたス
トリップ血清試料（ヒトインスリン濃度５、１０、１５、２５、５０、１００、２００及
び３００μＩＵ／ｍＬ）を調製し、別々の日に５回分析した。５回の連続した測定の重み
付き（１／Ｘ）直線回帰によって、±２０％の正確度で０．９９５以上の相関係数が得ら
れ、定量化できる範囲は５から３００μＩＵ／ｍＬであることがわかった。検量線の例を
図２０に示す。

実施例１４： 標本種類の試験
マトリックス特異性は、１０人のヒト患者プールを６つの異なる種類のＢＤ Ｖａｃｕ
ｔａｉｎｅｒ（商標）管（そのままの血清、ＳＳＴ、ＥＤＴＡ血漿、ヘパリンナトリウム
血漿、ヘパリンリチウム血漿及びクエン酸ナトリウム血漿）に収集することによって評価
した。次に、各プールの試料のインスリンを抽出し、実施例８～１０で記載した方法に従
って分析した。これらの試験によって、クエン酸ナトリウム血漿試料は分析に許容されな
いが、その他の種類の試料はすべて許容可能であることが示された。

実施例１５： 干渉試験
インスリン決定に対する溶血干渉の影響は、軽度、中等度及び高度の溶血患者試料にお
いて様々なレベルのインスリンをスパイクすることによって評価した。次に、インスリン
を抽出し、実施例８～１０で記載した方法に従って分析した。これらの試験のデータによ
って、許容可能な結果（すなわち、８０～１２０％内の正確度）が、軽度及び中等度の溶
血試料で得られることが示された。高度に溶血した試料は許容されなかった。

インスリン決定に対する脂肪血症干渉の影響は、軽度、中等度及び高度の脂肪血症患者
試料において様々なレベルのインスリンをスパイクすることによって評価した。次に、イ
ンスリンを抽出し、実施例８～１０で記載した方法に従って分析した。これらの試験のデ
ータによって、許容可能な結果（すなわち、８０～１２０％内の正確度）が、全レベルの
脂肪血症で得られることが示された。

インスリン決定に対するビリルビン干渉の影響は、軽度、中等度及び高度の黄疸患者試
料において様々なレベルのインスリンをスパイクすることによって評価した。次に、イン
スリンを抽出し、実施例８～１０で記載した方法に従って分析した。これらの試験のデー
タによって、許容可能な結果（すなわち、８０～１２０％内の正確度）が、全レベルのビ
リルビンで得られることが示された。

本明細書で言及又は引用した論文、特許及び特許出願、並びにその他の全文献及び電子
的に入手できる情報の内容は、各個別の刊行物が参照により具体的及び個別に組み入れら
れるように示される場合と同程度に参照により本明細書に全体として組み入れられる。出
願人らは、任意のこのような論文、特許、特許出願又はその他の物理的及び電子的文献か
らのありとあらゆる材料及び情報を本出願に物理的に組み入れる権利を保持する。

本明細書で例示的に記載した方法は、本明細書に具体的に開示していない任意の要素又
は要素（複数）、限定又は限定（複数）の非存在下で適切に実施することができる。した
がって、例えば、用語「ｃｏｍｐｒｉｓｉｎｇ（含む）」、「ｉｎｃｌｕｄｉｎｇ（含む
）」、「ｃｏｎｔａｉｎｉｎｇ（含有する）」などは、広範に、限定されることなく読み
取られるべきである。さらに、本明細書で使用した用語及び表現は、限定ではなく説明の
ために使用されており、このような用語及び表現の使用において、示された、及び説明さ
れた特徴の任意の同等物又はその一部を排除するものではない。請求した本発明の範囲内
において様々な変更が可能であることは認識されている。したがって、本発明を好ましい
実施形態及び任意選択の特徴によって具体的に開示してきたが、本明細書で開示しその中
で実施される本発明の変更及び変形は当業者であれば用いることができ、このような変更
及び変形は本発明の範囲内であると見なされることを理解されたい。

本発明は、本明細書において広範及び一般的に記載してきた。一般的な開示に含まれる
より狭い種及び亜種のそれぞれも本方法の一部を形成する。これには、部類から任意の対
象物を削除する条件又は消極的限定を有する方法の一般的説明が、削除された材料が本明
細書に具体的に記載されているか否かに関わらず、含まれる。

その他の実施形態は、以下の特許請求の範囲に含まれる。さらに、方法の特徴又は態様
がマーカッシュ群によって記載されている場合は、当業者であれば、本発明はまた、マー
カッシュ群の任意の個々の構成要素又は構成要素の亜群によって記載されることを理解す
るであろう。

本発明は、以下の態様を包含し得る。
［１］
タンデム質量分析により生物学的試料中のインスリンの量を決定する方法であって、該
方法は、
（ａ）インスリンからインスリンＢ鎖を得るのに適する条件に試料を供するステップ、
（ｂ）インスリンＢ鎖濃縮画分を得るために、ステップ（ａ）からの試料を処理するス
テップ、
（ｃ）質量分析により検出できる１つ又は複数のインスリンＢ鎖イオンを発生させるの
に適する条件下で、濃縮インスリンＢ鎖をイオン化源に供するステップ、及び
（ｄ）タンデム質量分析により１つ又は複数のインスリンＢ鎖イオンの量を決定するス
テップ
を含み、
ステップ（ｄ）で決定されるイオンの量を前記試料中のインスリンの量に関連付ける、
方法。
［２］
ステップ（ｂ）の前記処理するステップが、固相抽出（ＳＰＥ）によりインスリンＢ鎖
を濃縮するステップを含む、上記［１］に記載の方法。
［３］
ステップ（ｂ）の前記処理するステップが、高速液体クロマトグラフィー（ＨＰＬＣ）
によりインスリンＢ鎖を濃縮するステップを含む、上記［１］に記載の方法。
［４］
前記生物学的試料がヒト血漿又は血清試料を含む、上記［１］に記載の方法。
［５］
決定されるインスリンの量がヒトから採取された場合に試料中に存在するインスリンの
量である、上記［４］に記載の方法。
［６］
前記イオン化源がエレクトロスプレー（ＥＳＩ）イオン化源である、上記［１］に記載
の方法。
［７］
前記サンプルがポジティブイオンモードでのイオン化の前に酸性条件に供される、上記
［１］に記載の方法。
［８］
前記試料を酸性条件に供するステップが前記試料をギ酸に供するステップを含む、上記
［７］に記載の方法。
［９］
前記インスリンＢ鎖がイオン化の前に化学的に改変されていない、上記［１］に記載の
方法。
［１０］
ステップ（ｄ）で決定される前記１つ又は複数のイオンが、１１４４．２±０．５、８
５８．３±０．５及び６８６．８±０．５の質量電荷比（ｍ／ｚ）を有するイオンからな
る群から選択されるインスリンＢ鎖前駆イオンを含む、上記［９］に記載の方法。
［１１］
ステップ（ｄ）で決定される前記１つ又は複数のイオンが、９０６．０±０．５、８２
５．０±０．５、７６８．５±０．５、７５３．０±０．５、７０３．０±０．５、３４
５．０±０．５及び２２６．２±０．５の質量電荷比（ｍ／ｚ）を有するイオンからなる
群から選択される１つ又は複数のフラグメントイオンを含む、上記［９］に記載の方法。
［１２］
ステップ（ｄ）で決定される前記１つ又は複数のイオンが、１１４４．２±０．５の質
量電荷比（ｍ／ｚ）を有するインスリンＢ鎖前駆イオンからのフラグメントイオン、８５
８．３±０．５のｍ／ｚを有するインスリンＢ鎖前駆イオンからのフラグメントイオン及
び６８６．８±０．５のｍ／ｚを有するインスリンＢ鎖前駆イオンからのフラグメントイ
オンからなる群から選択される１つ又は複数のフラグメントイオンを含む、上記［９］に
記載の方法。
［１３］
前記タンデム質量分析が、６８６．８±０．５の質量電荷比（ｍ／ｚ）を有するヒトイ
ンスリンＢ鎖前駆イオンを発生させるステップ、及び、前記前駆イオンを９０６．０±０
．５、８２５．０±０．５、７６８．５±０．５、７５３．０±０．５、７０３．０±０
．５、３４５．０±０．５及び２２６．２±０．５のｍ／ｚを有するイオンからなる群か
ら選択される１つ又は複数のフラグメントイオンにフラグメント化するステップを含む、
上記［１］に記載の方法。
［１４］
ステップ（ｄ）で決定されるイオンが７６８．５±０．５及び７５３．０±０．５のｍ
／ｚを有するイオンからなる群からの１つ又は複数のイオンを含む、上記［１３］に記載
の方法。
［１５］
前記フラグメント化するステップが１０～２５Ｖ（端点を含む）の範囲内の衝突エネル
ギーを用いて行われる、上記［１３］に記載の方法。
［１６］
前記インスリンＢ鎖がイオン化の前に化学的に改変される、上記［１］に記載の方法。
［１７］
前記化学的改変が前記インスリンＢ鎖をアルキル化するステップを含む、上記［１６］
に記載の方法。
［１８］
ステップ（ｄ）で決定される前記１つ又は複数のイオンが、１１８１．９±０．５、８
８６．９±０．５及び７０９．８±０．５の質量電荷比（ｍ／ｚ）を有するイオンからな
る群から選択されるアルキル化インスリンＢ鎖前駆イオンを含む、上記［１７］に記載の
方法。
［１９］
ステップ（ｄ）で決定される前記１つ又は複数のイオンが、３４５．０±０．５及び２
２６．２±０．５の質量電荷比（ｍ／ｚ）を有するイオンの群から選択される１つ又は複
数のフラグメントイオンを含む、上記［１７］に記載の方法。
［２０］
ステップ（ｄ）で決定される前記１つ又は複数のイオンが、１１８１．９±０．５の質
量電荷比（ｍ／ｚ）を有するアルキル化インスリンＢ鎖前駆イオンからのフラグメントイ
オン、８８６．９±０．５のｍ／ｚを有するアルキル化インスリンＢ鎖前駆イオンからの
フラグメントイオン及び７０９．８±０．５のｍ／ｚを有するアルキル化インスリンＢ鎖
前駆イオンからのフラグメントイオンからなる群から選択される２つ以上のフラグメント
イオンを含む、上記［１７］に記載の方法。
［２１］
各前駆イオンからの前記フラグメントイオンが３４５．０±０．５及び２２６．２±０
．５のｍ／ｚを有するイオンからなる群から選択されるイオンを含む、上記［２０］に記
載の方法。
［２２］
タンデム質量分析により、ヒトから採取した場合の生物学的試料中のインスリンの量を
決定する方法であって、該方法は、
（ａ）前記試料からインスリン濃縮画分を得るために、前記試料を固相抽出（ＳＰＥ）
及び高速液体クロマトグラフィー（ＨＰＬＣ）に供するステップ、
（ｂ）質量分析により検出できる１つ又は複数のインスリンイオンを発生させるのに適
する条件下で濃縮インスリンをイオン化源に供するステップ、及び
（ｃ）タンデム質量分析により１つ又は複数のインスリンイオンの量を決定するステッ
プ
を含み、
前記試料はイオン化の前に免疫精製に供されず、ステップ（ｃ）で決定されるイオンの
量を前記試料中のインスリンの量に関連付ける、方法。
［２３］
前記生物学的試料が血漿又は血清試料を含む、上記［２２］に記載の方法。
［２４］
前記イオン化源がエレクトロスプレー（ＥＳＩ）イオン化源である、上記［２２］に記
載の方法。
［２５］
前記試料がポジティブイオンモードでのイオン化の前に酸性条件に供される、上記［２
２］に記載の方法。
［２６］
前記試料を酸性条件に供するステップが前記試料をギ酸に供するステップを含む、上記
［２５］に記載の方法。
［２７］
ステップ（ｃ）で決定される前記１つ又は複数のイオンが、１１６２．５±０．５及び
９６８．９±０．５の質量電荷比（ｍ／ｚ）を有するイオンからなる群から選択されるイ
ンスリン前駆イオンを含む、上記［２５］に記載の方法。
［２８］
ステップ（ｃ）で決定される前記１つ又は複数のイオンが、２２６．２±０．５及び１
３５．９±０．５のｍ／ｚを有するイオンからなる群から選択される１つ又は複数のフラ
グメントイオンを含む、上記［２７］に記載の方法。
［２９］
前記１つ又は複数のフラグメントイオンが、１１６２．５±０．５のｍ／ｚを有するイ
ンスリン前駆イオンからの１つ又は複数のフラグメントイオン及び９６８．９±０．５の
ｍ／ｚを有するインスリン前駆イオンからの１つ又は複数のフラグメントイオンを含む、
上記［２７］に記載の方法。
［３０］
各前駆イオンからの前記１つ又は複数のフラグメントイオンが、２２６．２±０．５及
び１３５．９±０．５のｍ／ｚを有するイオンからなる群から選択される１つ又は複数の
フラグメントイオンを含む、上記［２９］に記載の方法。
［３１］
前記試料がポジティブイオンモードでのイオン化の前に塩基性条件に供される、上記［
２１］に記載の方法。
［３２］
前記試料を塩基性条件に供するステップが前記試料をアンモニアに供するステップを含
む、上記［３１］に記載の方法。
［３３］
ステップ（ｃ）で決定される前記１つ又は複数のイオンが、１４５３．８±０．５及び
１１６３．０±０．５の質量電荷比（ｍ／ｚ）を有するイオンからなる群から選択される
インスリン前駆イオンを含む、上記［３１］に記載の方法。
［３４］
ステップ（ｃ）で決定される前記１つ又は複数のイオンが、２２６．２±０．５及び１
３５．９±０．５のｍ／ｚを有するイオンからなる群から選択される１つ又は複数のフラ
グメントイオンを含む、上記［３３］に記載の方法。
［３５］
前記１つ又は複数のフラグメントイオンが、１１６３．０±０．５のｍ／ｚを有するイ
ンスリン前駆イオンからの１つ又は複数のフラグメントイオン及び９６８．９±０．５の
ｍ／ｚを有するインスリン前駆イオンからの１つ又は複数のフラグメントイオンを含む、
上記［３３］に記載の方法。
［３６］
タンデム質量分析により試料中のインスリンの量を決定する方法であって、該方法は、
（ａ）前記試料からインスリン濃縮画分を得るために前記試料を固相抽出（ＳＰＥ）及
び高速液体クロマトグラフィー（ＨＰＬＣ）に供するステップ、
（ｂ）質量分析により検出できるインスリン前駆イオンを発生させるのに適する条件下
で濃縮インスリンをイオン化源に供するステップであって、ここで、前記インスリン前駆
イオンは、１１６２．５±０．５の質量電荷比（ｍ／ｚ）を有する、ステップ、
（ｃ）質量分析により検出できる１つ又は複数のフラグメントイオンを発生させるため
に前記インスリン前駆イオンを約４０～７０ｅＶの範囲内の衝突エネルギーでの衝突誘起
解離に供するステップ、及び
（ｄ）質量分析により１つ又は複数の前記フラグメントイオンの量を決定するステップ
を含み、
ステップ（ｄ）で決定されるイオンの量を前記試料中のインスリンの量に関連付ける、
方法。
［３７］
前記試料が生物学的試料を含む、上記［３６］に記載の方法。
［３８］
前記試料が血漿又は血清試料を含む、上記［３６］に記載の方法。
［３９］
前記試料がヒトから採取される生物学的試料を含み、前記方法がヒトから採取される場
合の生物学的試料中のインスリンの量を決定するために用いられる、上記［３６］に記載
の方法。
［４０］
前記イオン化条件が前記試料をイオン化の前に酸性条件に供するステップを含む、上記
［３６］に記載の方法。
［４１］
前記試料を酸性条件に供するステップが前記試料をギ酸に供するステップを含む、上記
［４０］に記載の方法。
［４２］
前記イオン化条件が前記試料をイオン化の前に塩基性条件に供するステップを含む、上
記［３６］に記載の方法。
［４３］
前記試料を塩基性条件に供するステップが前記試料をアンモニアに供するステップを含
む、上記［４２］に記載の方法。
［４４］
前記イオン化がエレクトロスプレーイオン化（ＥＳＩ）源を用いてポジティブイオンモ
ードで行われる、上記［３６］に記載の方法。
［４５］
前記衝突エネルギーが約４０～６０ｅＶの範囲内にある、上記［３６］に記載の方法。
［４６］
前記衝突エネルギーが約４０～５０ｅＶの範囲内にある、上記［３６］に記載の方法。
［４７］
前記１つ又は複数のフラグメントイオンが２２６．２±０．５及び１３５．９±０．５
のｍ／ｚを有するイオンからなる群から選択される１つ又は複数のイオンを含む、上記［
３６］に記載の方法。
［４８］
タンデム質量分析により、ヒトから採取される場合の生物学的試料中のインスリンの量
を決定する方法であって、該方法は、
（ａ）インスリンからインスリンＡ鎖を得るのに適する条件に試料を供するステップ、
（ｂ）インスリンＡ鎖濃縮画分を得るために、ステップ（ａ）からの試料を固相抽出（
ＳＰＥ）及び高速液体クロマトグラフィー（ＨＰＬＣ）に供するステップ、
（ｃ）質量分析により検出できる１つ又は複数のインスリンＡ鎖イオンを発生させるの
に適する条件下で濃縮インスリンＡ鎖をイオン化源に供するステップ、及び
（ｄ）タンデム質量分析により１つ又は複数のインスリンＡ鎖イオンの量を決定するス
テップ
を含み、
ステップ（ｄ）で決定されるイオンの量を前記試料中のインスリンの量に関連付ける、
方法。
［４９］
前記生物学的試料が血漿又は血清試料を含む、上記［４８］に記載の方法。
［５０］
前記イオン化源がエレクトロスプレー（ＥＳＩ）イオン化源である、上記［４８］に記
載の方法。
［５１］
前記試料がポジティブイオンモードでのイオン化の前に酸性条件に供される、上記［４
８］に記載の方法。
［５２］
前記試料を酸性条件に供するステップが前記試料をギ酸に供するステップを含む、上記
［４１］に記載の方法。
［５３］
ステップ（ａ）で得られた前記インスリンＡ鎖がイオン化の前に化学的に改変されてい
ない、上記［４８］に記載の方法。
［５４］
ステップ（ｄ）で決定される前記１つ又は複数のイオンが、１１９２．９±０．５及び
７９５．４±０．５の質量電荷比（ｍ／ｚ）を有するイオンからなる群から選択されるイ
ンスリンＡ鎖前駆イオンを含む、上記［５３］に記載の方法。
［５５］
ステップ（ｄ）で決定される前記１つ又は複数のイオンが、５７０．０±０．５、４５
６．０±０．５、２９３．０±０．５及び１３３．０±０．５の質量電荷比（ｍ／ｚ）を
有するイオンの群から選択される１つ又は複数のフラグメントイオンを含む、上記［５３
］に記載の方法。
［５６］
ステップ（ｄ）で決定される前記１つ又は複数のイオンが、１１９２．９±０．５の質
量電荷比（ｍ／ｚ）を有するインスリンＡ鎖前駆イオンからの１つ又は複数のフラグメン
トイオン及び７９５．４±０．５のｍ／ｚを有するインスリンＡ鎖前駆イオンからの１つ
又は複数のフラグメントイオンを含む、上記［５３］に記載の方法。
［５７］
各前駆イオンからの前記１つ又は複数のフラグメントイオンが５７０．０±０．５、４
５６．０±０．５、２９３．０±０．５及び１３３．０±０．５のｍ／ｚを有するイオン
からなる群から選択される１つ又は複数のフラグメントイオンを含む、上記［５６］に記
載の方法。
［５８］
イオン化の前にステップ（ａ）で得られたインスリンＡ鎖を化学的に改変するステップ
をさらに含む、上記［４８］に記載の方法。
［５９］
前記化学的改変が前記インスリンＡ鎖をアルキル化するステップを含む、上記［５８］
に記載の方法。
［６０］
ステップ（ｄ）で決定される前記１つ又は複数のイオンが、１３０６．０±０．５及び
８７１．０±０．５の質量電荷比（ｍ／ｚ）を有するイオンからなる群から選択されるア
ルキル化インスリンＡ鎖前駆イオンを含む、上記［５９］に記載の方法。
［６１］
ステップ（ｄ）で決定される前記１つ又は複数のイオンが、５７０．０±０．５、４５
６．０±０．５、２９３．０±０．５及び１３３．０±０．５の質量電荷比（ｍ／ｚ）を
有するイオンの群から選択される１つ又は複数のフラグメントイオンを含む、上記［５９
］に記載の方法。
［６２］
ステップ（ｄ）で決定される前記１つ又は複数のイオンが、１３０６．０±０．５の質
量電荷比（ｍ／ｚ）を有するアルキル化インスリンＡ鎖前駆イオンからの１つ又は複数の
フラグメントイオン及び８７１．０±０．５のｍ／ｚを有するアルキル化インスリンＡ鎖
前駆イオンからの１つ又は複数のフラグメントイオンを含む、上記［５９］に記載の方法
。
［６３］
各アルキル化前駆イオンからの前記１つ又は複数のフラグメントイオンが、５７０．０
±０．５、４５６．０±０．５、２９３．０±０．５及び１３３．０±０．５のｍ／ｚを
有するイオンからなる群から選択される１つ又は複数のフラグメントイオンを含む、上記
［６２］に記載の方法。
［６４］
高分解能／高精度質量分析により試料中のインスリンの量を決定する方法であって、該
方法は、
（ａ）多価インスリンイオンを発生させるのに適する条件下で前記試料からのインスリ
ンをイオン化源に供するステップであって、ここで、前記多価インスリンイオンは、質量
分析により検出できる、ステップ、
（ｂ）高分解能／高精度質量分析により１つ又は複数の多価インスリンイオンの量を決
定するステップ
を含み、
ステップ（ｂ）で決定されるイオンの量を前記試料中のインスリンの量に関連付ける、
方法。
［６５］
前記高分解能／高精度質量分析が１０，０００以上のＦＷＨＭ及び５０ｐｐｍ以下の質
量精度で行われる、上記［６４］に記載の方法。
［６６］
前記高分解能／高精度質量分析が１５，０００以上のＦＷＨＭ及び２０ｐｐｍ以下の質
量精度で行われる、上記［６４］に記載の方法。
［６７］
前記高分解能／高精度質量分析が２０，０００以上のＦＷＨＭ及び５ｐｐｍ以下の質量
精度で行われる、上記［６４］に記載の方法。
［６８］
前記高分解能／高精度質量分析が高分解能／高精度飛行時間（ＴＯＦ）型質量分析計を
用いて行われる、上記［６４］に記載の方法。
［６９］
前記イオン化源がエレクトロスプレー（ＥＳＩ）イオン化源である、上記［６４］に記
載の方法。
［７０］
前記イオン化条件が酸性条件下でのインスリンのイオン化を含む、上記［６４］に記載
の方法。
［７１］
前記酸性条件がイオン化の前のギ酸による前記試料の処理を含む、上記［６９］に記載
の方法。
［７２］
前記１つ又は複数の多価インスリンイオンが４＋、５＋及び６＋価インスリンイオンか
らなる群から選択される１つ又は複数のイオンを含む、上記［６４］に記載の方法。
［７３］
前記１つ又は複数の多価インスリンイオンが６＋価インスリンイオンを含む、上記［７
２］に記載の方法。
［７４］
前記１つ又は複数の６＋価インスリンイオンが、約９６８．０±１．５の範囲内の質量
電荷比（ｍ／ｚ）を有する１つ又は複数のイオンを含む、上記［７３］に記載の方法。
［７５］
６＋荷電状態の前記１つ又は複数のインスリンイオンが、９６８．２８±０．１、９６
８．４５±０．１、９６８．６２±０．１、９６８．７９±０．１、９６８．９５±０．
１、９６８．１２±０．１、９６８．２８±０．１、９６８．４５±０．１及び９６８．
６１±０．１の質量電荷比（ｍ／ｚ）を有するイオンからなる群から選択される１つ又は
複数のイオンを含む、上記［７３］に記載の方法。
［７６］
前記１つ又は複数の多価インスリンイオンが５＋価インスリンイオンを含む、上記［７
２］に記載の方法。
［７７］
５＋荷電状態の前記１つ又は複数のインスリンイオンが約１１６２．５±１．０の範囲
内の質量電荷比（ｍ／ｚ）を有する１つ又は複数のイオンを含む、上記［７６］に記載の
方法。
［７８］
５＋荷電状態の前記１つ又は複数のインスリンイオンが、１１６１．７２±０．１、１
１６１．９２±０．１、１１６２．１２±０．１、１１６２．３２±０．１、１１６２．
５２±０．１、１１６２．７２±０．１、１１６２．９２±０．１、１１６３．１２±０
．１及び１１６３．３４±０．１の質量電荷比（ｍ／ｚ）を有するイオンからなる群から
選択される１つ又は複数のイオンを含む、上記［７６］に記載の方法。
［７９］
５＋荷電状態の前記１つ又は複数のインスリンイオンが１１６２．５４±０．１の質量
電荷比（ｍ／ｚ）を有するイオンを含む、上記［７６］に記載の方法。
［８０］
前記１つ又は複数の多価インスリンイオンが４＋価インスリンイオンを含む、上記［７
２］に記載の方法。
［８１］
４＋荷電状態の前記１つ又は複数のインスリンイオンが約１４５２．９±０．８の範囲
内の質量電荷比（ｍ／ｚ）を有する１つ又は複数のイオンを含む、上記［８０］に記載の
方法。
［８２］
イオン化の前に高速液体クロマトグラフィー（ＨＰＬＣ）により前記試料からインスリ
ンを精製する、上記［６４］に記載の方法。
［８３］
試料がＨＰＬＣの前に固相抽出（ＳＰＥ）に供される、上記［８１］に記載の方法。
［８４］
前記試料が生物学的試料を含む、上記［６４］に記載の方法。
［８５］
前記試料がヒトから得られるものである、上記［６４］に記載の方法。
［８６］
前記試料が血漿又は血清試料を含む、上記［６４］に記載の方法。
［８７］
前記試料がヒトからの生物学的試料であり、前記方法がヒトから採取される場合の前記
試料中のインスリンの量を決定するために用いられる、上記［６４］に記載の方法。

Claims (15)

1. タンデム質量分析により、ヒトから採取される場合の生物学的試料中のインスリンの量を決定する方法であって、該方法は、
   （ａ）インスリンからインスリンＡ鎖を得るのに適する条件に試料を供するステップ、
   （ｂ）インスリンＡ鎖濃縮画分を得るために、ステップ（ａ）からの試料を固相抽出（ＳＰＥ）及び高速液体クロマトグラフィー（ＨＰＬＣ）に供するステップ、
   （ｃ）質量分析により検出できる１つ又は複数のインスリンＡ鎖イオンを発生させるのに適する条件下で濃縮インスリンＡ鎖をイオン化源に供するステップ、及び
   （ｄ）タンデム質量分析により１つ又は複数のインスリンＡ鎖イオンの量を決定するステップであって、ここで、前記１つ又は複数のインスリンＡ鎖イオンは、１１９２．９±０．５及び７９５．４±０．５の質量電荷比（ｍ／ｚ）を有するイオンからなる群から選択されるインスリンＡ鎖前駆イオンを含む、ステップ
   を含み、
   ステップ（ｄ）で決定されるイオンの量を前記試料中のインスリンの量に関連付ける、方法。
2. 前記生物学的試料が血漿又は血清試料を含む、請求項１に記載の方法。
3. 前記イオン化源がエレクトロスプレー（ＥＳＩ）イオン化源である、請求項１に記載の方法。
4. 前記試料がポジティブイオンモードでのイオン化の前に酸性条件に供される、請求項１に記載の方法。
5. 前記試料を酸性条件に供するステップが前記試料をギ酸に供するステップを含む、請求項４に記載の方法。
6. ステップ（ａ）で得られた前記インスリンＡ鎖がイオン化の前に化学的に改変されていない、請求項１に記載の方法。
7. ステップ（ｄ）で決定される前記１つ又は複数のイオンが、５１３．０±０．５、３９９．０±０．５、２３６．０±０．５及び１３３．０±０．５の質量電荷比（ｍ／ｚ）を有するイオンの群から選択される１つ又は複数のフラグメントイオンを含む、請求項６に記載の方法。
8. ステップ（ｄ）で決定される前記１つ又は複数のイオンが、１１９２．９±０．５の質量電荷比（ｍ／ｚ）を有するインスリンＡ鎖前駆イオンからの１つ又は複数のフラグメントイオン及び７９５．４±０．５のｍ／ｚを有するインスリンＡ鎖前駆イオンからの１つ又は複数のフラグメントイオンを含む、請求項６に記載の方法。
9. 各前駆イオンからの前記１つ又は複数のフラグメントイオンが、５１３．０±０．５、３９９．０±０．５、２３６．０±０．５及び１３３．０±０．５のｍ／ｚを有するイオンからなる群から選択される１つ又は複数のフラグメントイオンを含む、請求項８に記載の方法。
10. イオン化の前にステップ（ａ）で得られたインスリンＡ鎖を化学的に改変するステップをさらに含む、請求項１に記載の方法。
11. 前記インスリンＡ鎖を化学的に改変するステップが、前記インスリンＡ鎖をアルキル化するステップを含む、請求項１０に記載の方法。
12. ステップ（ｄ）で決定される前記１つ又は複数のイオンが、１３０６．０±０．５及び８７１．０±０．５の質量電荷比（ｍ／ｚ）を有するイオンからなる群から選択されるアルキル化インスリンＡ鎖前駆イオンを含む、請求項１１に記載の方法。
13. ステップ（ｄ）で決定される前記１つ又は複数のイオンが、５７０．０±０．５、４５６．０±０．５、２９３．０±０．５及び１３３．０±０．５の質量電荷比（ｍ／ｚ）を有するイオンの群から選択される１つ又は複数のフラグメントイオンを含む、請求項１１に記載の方法。
14. ステップ（ｄ）で決定される前記１つ又は複数のイオンが、１３０６．０±０．５の質量電荷比（ｍ／ｚ）を有するアルキル化インスリンＡ鎖前駆イオンからの１つ又は複数のフラグメントイオン及び８７１．０±０．５のｍ／ｚを有するアルキル化インスリンＡ鎖前駆イオンからの１つ又は複数のフラグメントイオンを含む、請求項１１に記載の方法。
15. 各アルキル化前駆イオンからの前記１つ又は複数のフラグメントイオンが、５７０．０±０．５、４５６．０±０．５、２９３．０±０．５及び１３３．０±０．５のｍ／ｚを有するイオンからなる群から選択される１つ又は複数のフラグメントイオンを含む、請求項１４に記載の方法。