JP2013515057A - オキシントモジュリンペプチドアナログ - Google Patents

Abstract

本発明は糖尿病および／または肥満の治療において有用なオキシントモジュリンペプチドアナログを提供する。

Description

本発明は、オキシントモジュリンペプチドアナログ、ならびに糖尿病および／または肥満の治療に使用されるそのＰＥＧ化誘導体に関する。

オキシントモジュリン（ＯＸＭ）は、栄養摂取に応じて小腸のＬ細胞からグルカゴン様ペプチド１（ＧＬＰ−１）と共に放出される３７アミノ酸のペプチドホルモンである。オキシントモジュリンはプレプログルカゴンの組織特異的な代替のプロセッシングの結果としてＣ末端でのオクタペプチド伸長を持つグルカゴン（Ｇｃｇ）の完全な２９残基配列からなる。内在性ＯＸＭは、ジペプチジルペプチダーゼＩＶおよび他のペプチダーゼによって迅速にインビボで分解される。

ＯＸＭについての個別受容体はまだ同定されていない。ＯＸＭは、ＧＬＰ−１受容体（ＧＬＰ−１Ｒ）およびグルカゴン受容体（ＧｃｇＲ）の両方に対して、２つの受容体で類似した力価で、インビトロで結合し完全に活性化する。

ＯＸＭは、食物摂取量および体重の調節に関与する。正常体重ヒト被験体に対するＯＸＭの急性投与は、飢餓感を低下させ、食事のかさを１９％減少させた。過体重および肥満の被験体による４週間の研究において、プラセボ群の０．５ｋｇと比較して、ＯＸＭを毎日３回の食事前に皮下投与することにより２．３ｋｇ体重が減少した。この治験において、ＧＬＰ−１ベースの治療法（エクセナチドおよびリラグルチド等）と関連した最も一般的な副作用である悪心は、有意に低下した。効果の機序は明らかではないが、ＯＸＭは、過体重および肥満のヒトにおける身体活動度亢進の促進を介してエネルギー使用を増加させた。

ＯＸＭは、商業的に実現可能な治療用薬剤への開発について複数の課題を提示する。上で言及されるように、ＯＸＭは、インビボで迅速に分解されるだけでなく、サイズの小ささに起因して迅速な腎臓クリアランスが行われる。それゆえ、改善された代謝的安定性および低下したクリアランス率を持つＯＸＭペプチドアナログを同定することが所望される。さらに、ＯＸＭにおける固有のＧｃｇＲアゴニスト活性は、血糖コントロールにネガティブな影響を与えるリスクを示す。したがって、ＧＬＰ−１ＲおよびＧｃｇＲでの活性の間で適切なバランスを維持しながら、治療用の使用のためにデザインされたＯＸＭペプチドアナログの力価を最適化することも所望される。ＧＬＰ−１Ｒの活性化はインスリン分泌促進効果の原因であるが、ＧＬＰ−１ＲおよびＧｃｇＲの両方の活性化は体重減少効果における役割を果たし得る。それゆえ、インスリン非依存型糖尿病および／または肥満の治療のために使用することができるように、力価の高いインスリン分泌促進活性を有し、体重減少を促進するＯＸＭペプチドアナログを産生することが所望される。

安定性を改善するアミノ酸置換、およびＰＥＧ化または脂質化等のクリアランスを遅らせる追加の修飾を持つＯＸＭペプチドは、特許文献１、特許文献２、特許文献３および非特許文献１中で開示される。ＯＸＭ由来ペプチドは野生型ペプチドを上回る可能性のある改良を示し得るが、食餌誘導性肥満（ＤＩＯ）マウスモデルにおける相当な重量低下を達成するのに必要とされる用量は、医薬用の商業化について実現可能であると判断されるよりも典型的に高い。例えば、非特許文献１は、１９００ｎｍｏｌ／ｋｇ（約８ｍｇ／ｋｇ）で１３日間１日おきの（ＱＯＤ）投薬後に平均１１ｇ（約２５％）の重量減少を報告した。

様々なＯＸＭペプチドおよびそのアナログが利用可能であるにもかかわらず、ペプチドの力価およびインスリン分泌促進の活性が糖尿病、好ましくは２型糖尿病および関連疾患の効果的な治療を提供するように最適化されたＧｃｇＲ／ＧＬＰ−１Ｒ活性の比を有する、より力価の高い安定して長時間作用し良好な耐容性を示すＯＸＭペプチドアナログがまだ必要である。体重を低下させる効果的な治療を提供するＯＸＭペプチドのそのアナログを提供することも所望される。したがって、本発明は、糖尿病および／または肥満の効果的な治療の提供を探索する。

国際公開第２００８１０１０１７号パンフレット 国際公開第２００６１３４３４０号パンフレット 国際公開第２００７１００５３５号パンフレット

Ｐｏｃａｉら，Ｄｉａｂｅｔｅｓ ５８：２２５８−２２６６，２００９

本発明は、全体的な力価を最適化しながら代謝安定性を最適化し相対的ＧｃｇＲ／ＧＬＰ−１Ｒ活性を修飾するように導入したアミノ酸置換を持つＯＸＭペプチドアナログを含む。加えて、本発明のＯＸＭペプチドアナログは時間作用の促進のために選択された位置でＰＥＧ化され、それにより頻繁でない投薬を可能にする。

本発明は、以下のアミノ酸配列を含むオキシントモジュリンペプチドアナログを提供する。

配列中、Ｘａａ_３８は、Ｃｙｓ、Ｃｙｓ−ＰＥＧ、または存在せず、Ｘａａ_３９は、Ｃｙｓ、Ｃｙｓ−ＰＥＧ、または存在せず、配列中、Ｃ末端アミノ酸は任意にアミド化される。

本発明は、以下のアミノ酸配列を含むオキシントモジュリンペプチドアナログを提供する。

さらに、本発明は、以下のアミノ酸配列を含むオキシントモジュリンペプチドアナログを提供する。

配列中、位置３８のＣｙｓ残基は任意にＰＥＧ化され、配列中、位置３９のＣｙｓ残基は任意にＰＥＧ化され、位置３９のＣｙｓのカルボキシル基は任意にアミド化される。

好ましくは、配列番号：２のオキシントモジュリンペプチドアナログは、位置３８のＣｙｓ残基もしくは位置３９のＣｙｓまたは両者のいずれかで、これらの位置のＣｙｓ残基のチオール基に対して共有結合された４０ｋＤａのＰＥＧ分子により、ＰＥＧ化される。より好ましくは、オキシントモジュリンペプチドアナログは、位置３８および位置３９の各Ｃｙｓ残基で、これらの位置の各Ｃｙｓ残基の各チオール基に対して共有結合された２０ｋＤａのＰＥＧ分子により、ＰＥＧ化される。任意に、位置３９のＣｙｓ残基は配列番号：２には存在せずに、ＰＥＧ化のための単一部位を位置３８に残すことができる。

より好ましいオキシントモジュリンペプチドアナログは以下のアミノ酸配列を含む。

配列中、位置３９のＰＥＧ化されたＣｙｓのカルボキシル基は任意にアミド化される。

最も好ましいオキシントモジュリンペプチドアナログは、位置３９のＰＥＧ化されたＣｙｓのカルボキシル基がアミド化された配列番号：３のアミノ酸配列を含む。

本発明中で使用されるＰＥＧ分子は直鎖状または分枝状であり得、好ましくは直鎖状ＰＥＧ分子である。

本発明は、上で定義されるようなオキシントモジュリンペプチドアナログ、および薬学的に許容される担体、希釈剤または賦形剤を含む、医薬組成物を提供する。加えて、本発明は、上で定義されるようなオキシントモジュリンペプチドアナログを、薬学的に許容される担体、希釈剤または賦形剤、および任意に他の治療用成分と共に含む、医薬組成物を提供する。

さらに、本発明は、効果的な量の上で定義されるようなオキシントモジュリンペプチドアナログを、それを必要とする被験体に対して投与することを含む、それを必要とする被験体においてインスリン非依存型（２型）糖尿病を治療する方法を提供する。

加えて、本発明は、効果的な量の上で定義されるようなオキシントモジュリンペプチドアナログを、それを必要とする被験体に対して投与することを含む、それを必要とする被験体においてインスリン依存型（１型）糖尿病を治療する方法を提供する。

本発明は、効果的な量の上で定義されるようなオキシントモジュリンペプチドアナログを、それを必要とする被験体に対して投与することを含む、それを必要とする被験体において肥満を治療する方法を含む。

さらに、本発明は、効果的な量の上で定義されるようなオキシントモジュリンペプチドアナログを、それを必要とする被験体に対して投与することを含む、それを必要とする被験体においてインスリン非依存型糖尿病および肥満を治療する方法を含む。

本発明は医薬品としての使用のための上で定義されるようなオキシントモジュリンペプチドアナログを提供する。

加えて、本発明はインスリン非依存型糖尿病の治療における使用のための上で定義されるようなオキシントモジュリンペプチドアナログを提供する。

さらに、本発明はインスリン依存型糖尿病の治療における使用のための上で定義されるようなオキシントモジュリンペプチドアナログを提供する。

さらに、本発明は肥満の治療における使用のための上で定義されるようなオキシントモジュリンペプチドアナログを提供する。

本発明はインスリン非依存型糖尿病および肥満の治療における使用のための上で定義されるようなオキシントモジュリンペプチドアナログを含む。

本発明は、インスリン非依存型糖尿病の治療のための医薬品の製造における上で定義されるようなオキシントモジュリンペプチドアナログの使用を提供する。

加えて、本発明はインスリン依存型糖尿病の治療のための医薬品の製造における上で定義されるようなオキシントモジュリンペプチドアナログの使用を含む。

さらに、本発明は肥満の治療のための医薬品の製造における上で定義されるようなオキシントモジュリンペプチドアナログの使用を提供する。

さらに、本発明はインスリン非依存型糖尿病および肥満の治療のための医薬品の製造における上で定義されるようなオキシントモジュリンペプチドアナログの使用を提供する。

本発明のＯＸＭペプチドアナログは、ＧＬＰ−１受容体（ＧＬＰ−１Ｒ）およびグルカゴン受容体（ＧｃｇＲ）の両方に対して効果的に結合し活性化する。

本発明のＯＸＭペプチドアナログは、天然のヒトＯＸＭよりもペプチダーゼ（特にジペプチジルペプチダーゼＩＶ）による分解に対してより耐性があることも見出された。結果として、本発明のＯＸＭペプチドアナログは、天然のヒトＯＸＭに対して改善されたインビボの安定性を保持する。

本発明に記載の様々な実施形態は、過体重および肥満の被験体における食物摂取量の低下を引き起こすことができる。

本発明の特定の長所は、ＧＬＰ−１ベースの治療法（エクセナチドおよびリラグルチド等）に一般に関連した悪心等の副作用の頻度が、低下またはなくなるということである。それゆえ、本発明は、ＧＬＰ−１ベースの治療法と比較して、副作用を低下させた。

本発明のＯＸＭペプチドアナログは、野生型ヒトＯＸＭに対して優れた重量減少効果を有する。

本発明の一実施形態によれば、オキシントモジュリンペプチドアナログは、２型糖尿病および／または関連した代謝障害に罹患した被験体に対する改善されたグルコース耐性および脂質プロファイルを保持し、野生型ヒトＯＸＭよりも非常に効果的である。

オキシントモジュリン（ＯＸＭ）は、ｈＧＬＰ−１ＲおよびｈＧｃｇＲに対する完全な有効性およびバランスのとれた力価を持つ弱いコアゴニストであり、それぞれの受容体を安定的に過剰発現するＨＥＫ２９３細胞においてそれぞれ６．７±２．７ｎＭおよび４．１±１．７ｎＭのＥＣ_５０値を持つ。天然のヒトＯＸＭの配列は以下に示される。
Ｈｉｓ−Ｓｅｒ−Ｇｌｎ−Ｇｌｙ−Ｔｈｒ−Ｐｈｅ−Ｔｈｒ−Ｓｅｒ−Ａｓｐ−Ｔｙｒ−Ｓｅｒ−Ｌｙｓ−Ｔｙｒ−Ｌｅｕ−Ａｓｐ−Ｓｅｒ−Ａｒｇ−Ａｒｇ−Ａｌａ−Ｇｌｎ−Ａｓｐ−Ｐｈｅ−Ｖａｌ−Ｇｌｎ−Ｔｒｐ−Ｌｅｕ−Ｍｅｔ−Ａｓｎ−Ｔｈｒ−Ｌｙｓ−Ａｒｇ−Ａｓｎ−Ａｒｇ−Ａｓｎ−Ａｓｎ−Ｉｌｅ−Ａｌａ（配列番号：４）。

位置３９のＣｙｓ（ＰＥＧ２０ｋ）がアミド化された配列番号：３のＯＸＭペプチドアナログは、ｈＧｃｇＲおよびｈＧＬＰ−１Ｒに対してそれぞれ５９．９±４．１４ｎＭおよび２．７５±０．５５ｎＭのＥＣ_５０を持つ完全に有効で力価の高いオキシントモジュリンペプチドアナログである。それゆえ、位置３９のＣｙｓ（ＰＥＧ２０ｋ）がアミド化された配列番号：３のＯＸＭペプチドアナログは、ｈＧＬＰ−１Ｒについて、ｈＧｃｇＲと比較して約２２倍選択的である、インビトロの機能的活性のバランスを有する。同等の結果は結合親和性（Ｋｉ）について観察され、位置３９のＣｙｓ（ＰＥＧ２０ｋ）がアミド化された配列番号：３のＯＸＭペプチドアナログは、ｈＧＬＰ−１Ｒについて、ｈＧｃｇＲと比較して２８倍選択的であり、それぞれ７３±２３ｎＭおよび２０５０±７０ｎＭのＫｉ値である。

ＯＸＭペプチドアナログの特定の残基に対する１つまたは複数のＰＥＧ分子の共有結合による付着は、非ＰＥＧ化ＯＸＭペプチドアナログと比較した場合に延長された半減期および低下したクリアランス率を持ち、天然のヒトＯＸＭに類似するＧＬＰ−１Ｒに対するインビトロの力価を持つＰＥＧ化ＯＸＭペプチドアナログをもたらす。ＯＸＭペプチドアナログが小さなサイズであることおよびＰＥＧ分子（複数可）が比較的大きなサイズであることを考慮すると、いったんＰＥＧ化されると、ＯＸＭペプチドアナログは立体障害の結果として活性を失うことが予想されるだろう。しかしながら、オキシントモジュリンペプチドアナログの中央においてではなく端部に配置されれば、ペプチドアナログの活性がより大きな程度に保たれることが見出された。配列中の複数の置換は力価を促進し、それによってＧＬＰ−１ＲおよびＧｃｇＲの活性の適切な比を維持しながらＰＥＧ化に起因する力価減少を補う。さらに、オキシントモジュリンペプチドアナログのＣ末端における２個のＰＥＧ分子の存在は、単一のＰＥＧよりも望ましいことが見出された。

本発明の配列は、２０個の天然に存在するアミノ酸についての標準的な１文字コードまたは３文字コードを含む。他の使用されるコードは以下のように定義される。
Ａｉｂ＝αアミノイソ酪酸
ＰＥＧ＝ポリエチレングリコール
ＰＥＧ２０Ｋ＝２０，０００Ｄａの平均分子量を持つＰＥＧ分子

本明細書において使用される時「ＰＥＧ」という用語は、ポリエチレングリコール分子を意味する。その典型的な形態において、ＰＥＧは末端水酸基を持つ直鎖状ポリマーであり、化学式ＨＯ−ＣＨ_２ＣＨ_２−（ＣＨ_２ＣＨ_２Ｏ）ｎ−ＣＨ_２ＣＨ_２−ＯＨ（式中、ｎは約８〜約４０００である）を有する。典型的には、ｎは離散値でないが、近似的に平均値の付近でガウス分布を持つ範囲を構成する。末端水素はアルキル基またはアルカノール基等のキャッピング基により置換され得る。好ましくは、ＰＥＧは少なくとも１つの水酸基を有し、より好ましくはそれは末端水酸基である。この水酸基は、好ましくは、ペプチドと反応して共有結合を形成するリンカーモイエティに付着されている。多数のＰＥＧの誘導体が当該技術分野において存在する。（例えば、米国特許第５，４４５，０９０号；第５，９００，４６１号；第５，９３２，４６２号；第６，４３６，３８６号；第６，４４８，３６９号；第６，４３７，０２５号；第６，４４８，３６９号；第６，４９５，６５９号；第６，５１５，１００号および第６，５１４，４９１号ならびにＺａｌｉｐｓｋｙ，Ｓ．Ｂｉｏｃｏｎｊｕｇａｔｅ Ｃｈｅｍ．６：１５０−１６５，１９９５を参照されたい）。本発明のＯＸＭペプチドに対して共有結合で添付されたＰＥＧ分子は、約１０，０００、２０，０００、３０，０００、または４０，０００ダルトンの平均分子量であり得る。ＰＥＧ分子は好ましくは１８，０００〜２２，０００ダルトンである。より好ましくは、１９，０００〜２１，０００ダルトンである。最も好ましくは２０，０００〜２１，０００ダルトンである。さらにより好ましくは約２０，０００ダルトンである。ＰＥＧ化試薬は直鎖状分子または分枝状分子であり得、単独またはタンデムで存在し得る。本発明のＰＥＧ化ＯＸＭペプチドアナログは、好ましくは、ペプチドのＣ末端に対して付着されたタンデムなＰＥＧ分子を有する。ＰＥＧ分子は、好ましくは、ｍＰＥＧ−２０ｋＤａマレイミド（図１）またはｍＰＥＧ−２０ｋＤａヨードアセトアミド（図２）によって、ペプチドのＣ末端の２つのシステイン残基に対して付着される。図１および図２において、ｎは１０〜２５００である。好ましくは、ｎは３５０〜６００である。より好ましくは、ｎは４２５〜４７５である。

特に、ＰＥＧ分子は、好ましくは、ｍＰＥＧ−２０ｋＤａマレイミド（ＣＨ_３Ｏ（ＣＨ_２ＣＨ_２Ｏ）ｎ−（ＣＨ_２）_３ＮＨＣＯ（ＣＨ_２）_２−マレイミド）（ＮＯＦ社、Ｓｕｎｂｒｉｇｈｔ ＭＥ−２００ＭＡ）であり、ペプチドのＣ末端の２個のシステイン残基に対して付着される。最も好ましいオキシントモジュリンペプチドアナログは、配列番号：３のアミノ酸配列を含み、ＰＥＧ分子がｍＰＥＧ−２０ｋＤａマレイミド（ＣＨ_３Ｏ（ＣＨ_２ＣＨ_２Ｏ）ｎ−（ＣＨ_２）_３ＮＨＣＯ（ＣＨ_２）_２−マレイミド）（ＮＯＦ社、Ｓｕｎｂｒｉｇｈｔ ＭＥ−２００ＭＡ）であり、位置３９のＰＥＧ化されたＣｙｓのカルボキシル基がアミド化される（図３）。図３は標準的な１文字アミノ酸コードを含むが、これらのアミノ酸残基についての構造が拡大されているボックス領域は例外である。

本明細書において使用される時、「ＰＥＧ化」という用語は、本発明のＯＸＭペプチドアナログ等の分子に対する上記のような１つまたは複数のＰＥＧ分子の共有結合による付着を意味する。

「インスリン分泌促進活性」とは、グルコースレベルの上昇に応答してインスリン分泌を刺激し、それによって細胞によるグルコース取込みを引き起こし、血漿グルコースレベルを減少させる能力を指す。インスリン分泌促進活性は、インスリノーマ細胞株または膵島によるインスリン分泌を測定するインビトロの実験、または静脈内グルコース耐性試験（ＩＶＧＴＴ）、腹腔内グルコース耐性試験（ＩＰＧＴＴ）および経口グルコース耐性試験（ＯＧＴＴ）等のインビボの実験を含む、当該技術分野において公知の方法により査定することができる。インスリン分泌促進活性は、インスリンレベルまたはＣペプチドレベルの測定によってヒトにおいてルーチンに測定される。本発明のＯＸＭペプチドアナログは着実なインスリン分泌促進活性を保持する。

本明細書において使用される時「インビトロ力価」とは、ＯＸＭペプチドアナログが、細胞ベースのアッセイにおいてＧＬＰ−１ＲまたはＧｃｇＲを活性化する能力の測定値である。インビトロ力価は「ＥＣ_５０」として表わされ、それは用量応答実験において測定された応答（この場合はサイクリックＡＭＰ生産）における最大増加の２分の１をもたらす化合物の有効濃度である。

「血漿半減期」という用語は、関連する分子の２分の１が血漿から取り除かれるのに必要とされる時間を指す。代わりに使用される用語は「排出半減期」である。血漿半減期または排出半減期の文脈中で使用される「延長された」または「より長い」という用語は、同等の条件下で決定される時、参照分子（例えばペプチドの非ＰＥＧ化形態または天然のペプチド）の半減期と比較して、ＰＥＧ化ＯＸＭペプチドアナログの半減期において有意な増加があることを示す。サルにおける天然のＯＸＭの半減期は、例えば１時間未満であると予想される。本発明のＰＥＧ化ＯＸＭペプチドアナログは、サルにおいて少なくとも２４時間および最も好ましくは少なくとも４８時間の排出半減期を有する。本明細書において報告される半減期は排出半減期であり、それは排出の最終対数線形率に相当する。当業者は、半減期がクリアランスおよび分布容積の両方の関数として変化する導出パラメータであることを認識する。

本明細書において使用される時「長時間作用性ＧＬＰ−１Ｒアゴニスト」という用語は、ポリエチレングリコール（ＰＥＧ）の１つまたは複数の分子に対して共有結合で添付されたＧＬＰ−１ペプチドアナログを指す。ＰＥＧ化ＧＬＰ−１化合物は米国特許第７，５５７，１８３号中で開示される。

クリアランスとは、循環から薬物を排出する体の能力の測定値である。薬物に対する修飾に起因してクリアランスが減少するので、半減期は増加することが予想されるだろう。しかしながら、分布容積の変化がない時のみにこの相互関係は正確である。最終対数線形半減期（ｔ_１／２）、クリアランス（Ｃ）および分布容積（Ｖ）との間の有用な近似の相関関係は、以下の等式により与えられる。ｔ_１／２≒０．６９３（Ｖ／Ｃ）。クリアランスは、どれだけの薬物が除去されているかを示さず、むしろ、排出を説明するために薬物が完全に取り除かれなければならない血液または血漿等の生物学的液体の体積を示す。クリアランスは単位時間あたりの体積として表わされる。本発明のＰＥＧ化ＯＸＭペプチドアナログは、サルにおいて好ましくは２００ｍｌ／時間／ｋｇまたはそれ未満、より好ましくは１８０、１５０、１２０、１００、８０、６０ｍｌ／時間／ｋｇまたはそれ未満、および最も好ましくは５０、４０もしくは２０ｍｌ／時間／ｋｇまたはそれ未満のクリアランス値を有する。

本発明のＯＸＭペプチドアナログは典型的には非経口で投与されるだろう。非経口投与は、例えば、筋肉内、静脈内、皮下、皮内、腹腔内の注射等による全身投与を含む。ＯＸＭペプチドアナログは、インスリン非依存型（２型）糖尿病、ＮＩＤＤＭまたは以下で検討される障害の治療のための医薬組成物の一部として許容可能な医薬用の担体、希釈剤または賦形剤と併用して被験体に対して投与される。医薬組成物は溶液または懸濁物等であり得、その中でＯＸＭペプチドアナログは亜鉛等の二価金属カチオンと共に錯体を形成する。ペプチドアナログは、凍結乾燥または噴霧乾燥等によって固体製剤（その後投与前に好適な希釈剤溶液中で再構成される）で製剤化することもできる。好適な医薬用担体は、ペプチドまたはペプチド誘導体と相互作用しない不活性成分を含み得る。非経口投与に好適な医薬用担体は、例えば、滅菌水、生理的食塩水、静菌性食塩水（約０．９％ｍｇ／ｍｌのベンジルアルコールを含む食塩水）、リン酸緩衝食塩水、ハンクス液、乳酸リンゲル液および同種のものを含む。好適な賦形剤のいくつかの例は、ラクトース、デキストロース、スクロース、トレハロース、ソルビトールおよびマンニトール、ならびにフェノールおよびｍ−クレゾール等の防腐剤を含む。

Ｒｅｍｉｎｇｔｏｎ’ｓ Ｐｈａｒｍａｃｅｕｔｉｃａｌ Ｓｃｉｅｎｃｅｓ（Ｍａｃｋ Ｐｕｂｌｉｓｈｉｎｇ社、Ｅａｓｔｏｎ、ＰＡ）中に記載されるもの等の標準的な医薬用製剤技法を用いることができる。本発明のＯＸＭペプチドアナログは、あるいは、頬腔、経口、経皮、鼻腔、肺の経路を介する投与のために製剤化することができる。本発明のＯＸＭペプチドアナログは、血漿レベルが投与後に延長された期間の間で効果的な範囲で維持されるように、延長放出のために製剤化することができる。

本発明のＯＸＭペプチドアナログは、糖尿病、具体的には２型糖尿病（インスリン非依存性糖尿病、ＮＩＤＤＭ）の治療に用いることができる。本発明のＯＸＭペプチドアナログの治療から利益を得てもよいさらなる被験体は、グルコース耐性異常または絶食時グルコース異常のある被験体、体重が被験体の身長および体格に対する正常体重の約２５％以上を超える被験体、ＮＩＤＤＭに罹患した１名または複数名の親を持つ被験体、妊娠性糖尿病を経験した被験体、および内因性インスリン分泌減少から生じたもの等の代謝異常のある被験体を含む。ＯＸＭペプチドアナログは、グルコース耐性異常のある被験体の２型糖尿病発症進行の予防、膵臓のβ細胞の劣化の予防、β細胞の増殖の誘導、β細胞の機能の改善、休止期のβ細胞の活性化、細胞のβ細胞への分化の促進、β細胞の分裂の刺激、β細胞のアポトーシスの阻害に使用することができる。本発明の方法において本発明の化合物を使用して、治療または予防することができる他の疾患および病態は、若年発症成人型糖尿病（ＭＯＤＹ）（Ｈｅｒｍａｎら，Ｄｉａｂｅｔｅｓ ４３：４０，１９９４）；成人性潜伏型自己免疫性糖尿病（ＬＡＤＡ）（Ｚｉｍｍｅｔら，Ｄｉａｂｅｔｅｓ Ｍｅｄ．１１：２９９，１９９４）；グルコース耐性異常（ＩＧＴ）（糖尿病の分類に関する専門委員会、Ｄｉａｂｅｔｅｓ Ｃａｒｅ ２２（Ｓｕｐｐ．１）：Ｓ５，１９９９）；絶食時グルコース異常（ＩＦＧ）（Ｃｈａｒｌｅｓら，Ｄｉａｂｅｔｅｓ ４０：７９６，１９９１）；妊娠性糖尿病（Ｍｅｔｚｇｅｒ，Ｄｉａｂｅｔｅｓ，４０：１９７，１９９１）；代謝Ｘ症候群、異脂肪血症、高血糖、高インスリン血症、高トリグリセリド血症およびインスリン抵抗性を含む。

本発明のＯＸＭペプチドアナログは、糖尿病の二次的原因を治療するためにも本発明の方法において使用することができる（糖尿病の分類に関する専門委員会、 Ｄｉａｂｅｔｅｓ Ｃａｒｅ ２２ （Ｓｕｐｐ． １）：Ｓ５， １９９９）。かかる二次的原因はグルココルチコイド過剰、成長ホルモン過剰、クロム親和性細胞腫および薬物誘導性糖尿病を含む。糖尿病を誘導し得る薬物は、ピリミニル、ニコチン酸、グルココルチコイド、フェニトイン、甲状腺ホルモン、β−アドレナリン作動薬、α−インターフェロンおよびＨＩＶ感染の治療に使用される薬物を含むが、これらに限定されない。

本発明のＯＸＭペプチドアナログは、食物摂取量の抑制および肥満の治療において効果的であり得る。

「効果的な量」のＯＸＭペプチドアナログは、被験体に対して投与された場合、許容できない副作用を引き起こさずに、所望の治療的効果および／または予防効果をもたらす量である。「所望の治療的効果」は、１つまたは複数の以下のものを含む。１）疾患または病態と関連した症状（複数可）の改善；２）疾患または病態と関連した症状の発病の遅延；３）治療が欠如した場合と比較して寿命の増加；および４）治療の欠如した場合と比較してより高い生活の質。例えば、ＮＩＤＤＭの治療について「効果的な量」のＯＸＭペプチドアナログは、治療の欠如よりも血糖濃度をよく制御でき、それによって網膜症、神経病または腎臓病等の糖尿病合併症の開始の遅延をもたらす量である。例えばグルコース耐性異常または空腹時グルコース異常のある被験体におけるＮＩＤＤＭの予防について「効果的な量」のＯＸＭペプチドアナログは、治療の欠如した場合と比較して、スルホニル尿素、チアゾリジンジオン、インスリン、および／またはビスグアニジン等の血糖降下薬による治療を必要とする血糖レベル上昇の開始を遅らせる量である。

被験体に対して投与された「効果的な量」のＯＸＭペプチドアナログは、疾患のタイプおよび重症度、ならびに全体的な健康、年齢、性別、体重および薬物への耐性等の被験体の特徴にも依存するだろう。被験体の血糖を正常化するのに効果的なＯＸＭペプチドアナログの用量は、多数の因子に依存し、その中には、被験体の性別、体重および年齢、血糖調節能異常の重症度、投与経路および生体利用率、ペプチドの薬物動態プロファイル、力価、ならびに製剤が含まれるが、これらに限定されない。

本発明のＰＥＧ化ＯＸＭペプチドアナログのための典型的な週一回の用量は、好ましくは約０．１ｍｇ〜約１０００ｍｇ（コンジュゲートの全重量）にわたるだろう。より好ましくは、週一回の用量は約１ｍｇ〜約１００ｍｇ、または約１ｍｇ〜約３０ｍｇにわたるだろう。最も好ましくは、週一回の用量は約５ｍｇ〜約３０ｍｇ、または約１ｍｇ〜約５ｍｇにわたるだろう。

「被験体」は哺乳類、好ましくはヒトであるが、ペット用動物（例えばイヌ、ネコおよび同種のもの）、家畜（例えばウシ、ヒツジ、ブタ、ウマおよび同種のもの）および実験用の動物（例えばラット、マウス、モルモットおよび同種のもの）を含む動物でもあり得る。

本発明の様々な好ましい特徴および実施形態はここで例示のためだけに記載されるだろう。

実施例１：ペプチド合成
本発明の配列番号：１および配列番号：２に記載のペプチドアナログを、Ｐｒｏｔｅｉｎ Ｔｅｃｈｎｏｌｏｇｉｅｓ社ＳｙｍｐｈｏｎｙまたはＡｐｐｌｉｅｄ Ｂｉｏｓｙｓｔｅｍｓ社４３３Ａ自動化ペプチド合成機にて固相ペプチド合成により生成する。約０．７ｍｍｏｌ／ｇの置換によりＦｍｏｃ−Ｒｉｎｋアミドポリスチレン樹脂（Ｒａｐｐ Ｐｏｌｙｍｅｒｅ社、Ｔｕｂｉｎｇｅｎ、ドイツ）で合成を行う。Ｆｍｏｃ主鎖保護基ストラテジーを使用して合成を行う。使用されるアミノ酸側鎖誘導体は、Ａｒｇ（Ｐｂｆ）、Ａｓｎ（Ｔｒｔ）、Ａｓｐ（ＯｔＢｕ）、Ｃｙｓ（Ｔｒｔ）、Ｇｌｎ（Ｔｒｔ）、Ｇｌｕ（ＯｔＢｕ）、Ｈｉｓ（Ｔｒｔ）、Ｌｙｓ（Ｂｏｃ）、Ｓｅｒ（ＯｔＢｕ）、Ｔｈｒ（ＯｔＢｕ）、Ｔｒｐ（Ｂｏｃ）、およびＴｙｒ（ＯｔＢｕ）である。ジメチルホルムアミド（ＤＭＦ）またはＮ−メチルピロリジノン（ＮＭＰ）中のジイソプロピルカルボジイミド（ＤＩＣ）およびヒドロキシベンゾトリアゾール（ＨＯＢｔ）（１：１：１モル比）により活性化されたアミノ酸の約１０当量により、カップリングを行う。カップリングは室温で４５〜９０分間行った。

同時に起こる樹脂からの切断および側鎖保護基の除去を、室温で１．５〜２時間トリフルオロ酢酸（ＴＦＡ）：トリイソプロピルシラン：３，６−ジオキサ−１，８−オクタン−ジチオール：メタノール：アニソール９０：４：２：２：２（ｖ／ｖ）を含む溶液中で行う。溶液を濾過し、２ｍＬ未満まで濃縮し、ペプチドを冷ジエチルエーテルにより沈殿させ、３０〜４０ｍＬの１０％アセトニトリル中に再溶解し、Ｃ_１８の逆相高速液体クロマトグラフィー（ＨＰＬＣ）カラム（典型的にはＷａｔｅｒｓ社ＳｙｍｍｅｔｒｙＰｒｅｐ ７μｍ、１９×３００ｍｍ）上で１２〜１５ｍＬ／分の流速で精製した。サンプルを、０〜２５％のＢで２０分間、続いて２５〜７５％のＢで１００分間の２相性直線状のＡＢ勾配（ここでＡ＝０．０５％のＴＦＡ／水およびＢ＝０．０５％のＴＦＡ／アセトニトリル）により溶出する。産物は通常３０〜３５％のアセトニトリルで溶出される。ペプチド純度および分子量は、シングル四重極ＭＳ検出器を備えたＡｇｉｌｅｎｔ社１１００シリーズ液体クロマトグラフィー質量分析（ＬＣ−ＭＳ）システム上で確認する。分析的ＨＰＬＣ分離は、６〜６０％のＢで１５分間の直線状ＡＢ勾配（ここでＡ＝０．０５％のＴＦＡ／Ｈ_２ＯおよびＢ＝０．０５％のＴＦＡ／アセトニトリル、ならびに流速は１ｍｌ／分）により、Ｚｏｒｂａｘ Ｅｃｌｉｐｓｅ ＸＤＢ−Ｃ８（５ミクロン、４．６ｍｍの内径×１５ｃｍのカラム）上で行う。ペプチドアナログを９５％を超える純度まで精製し、１原子質量単位（ａｍｕ）内の計算値に対応する分子量を有することを確認する。

実施例２：ｍＰＥＧ−ＭＡＬ−２０ｋＤａによる２個のＣｙｓ残基を含むペプチドのＰＥＧ化
実施例１に従って生成された凍結乾燥ペプチドアナログ（配列番号：２）を秤量する（典型的には３０〜５０ｍｇ）。２．１倍モル当量のｍＰＥＧ−２０ｋＤａマレイミド（ＣＨ_３Ｏ（ＣＨ_２ＣＨ_２Ｏ）ｎ−（ＣＨ_２）_３ＮＨＣＯ（ＣＨ_２）_２−マレイミド）（ＮＯＦ社Ｓｕｎｂｒｉｇｈｔ ＭＥ−２００ＭＡ）を秤量し、ペプチドと組み合わせる。反応物を５０／５０（ｖ／ｖ）水／アセトニトリル混合物中で溶解して、約２０ｍｇ／ｍＬのペプチド濃度にする。ペプチドアナログ溶液を、１００ｍＭ酢酸アンモニウム、１０ｍＭエチレンジアミン四酢酸（ＥＤＴＡ）（ｐＨ７）により２倍に希釈する。次いで生ずる混合物を室温で撹拌する。反応混合物を分析的逆相ＨＰＬＣによってモニタリングし（分析的ＨＰＬＣ分離は、Ｗａｔｅｒｓ社ＳｙｍｍｅｔｒｙＳｈｉｅｌｄ Ｃ１８、３．５ミクロン、４．６ｍｍの内径×１０ｃｍのカラム上で、５０℃で、０〜３０％のＢで５分間および３０〜９０％のＢで次の３０分間の２相性直線状ＡＢ勾配（ここでＡ＝０．０５％のＴＦＡ／Ｈ_２ＯおよびＢ＝０．０５％のＴＦＡ／アセトニトリル、ならびに流速は１ｍｌ／分）により行う）、典型的には１〜２時間の反応時間後に、ペプチドピークがほとんど完全に消失することが示される。モノＰＥＧ化ペプチドおよびジＰＥＧ化ペプチドに起因する２つのピークは、典型的には全ピーク面積の９０〜９５％をジＰＥＧ化ペプチドが構成する。次いでサンプルを水により約２０ｍＬに希釈し、０〜３０％のＢで２０分間、続いて３０〜８０％のＢで１００分間の２相性直線状ＡＢ勾配で実施例１のように精製した。産物は通常３５〜４０％のアセトニトリルで溶出される。精製されたペプチドは、ペプチド配列に基づいた計算されたモル吸光係数を使用して、２８０ｎｍでの紫外線（ＵＶ）吸収によって定量される。精製後の収率は出発ペプチドの量に基づいて７０〜８０％の範囲である。

実施例３：グルカゴン受容体（ｈＧｃｇＲ）結合アッセイ
グルカゴン受容体結合アッセイは、２９３ＨＥＫ膜から単離されたクローン化ヒトグルカゴン受容体（ｈＧｃｇＲ）（Ｌｏｋ Ｓ，Ｋｕｉｊｐｅｒ ＪＬ，Ｊｅｌｉｎｅｋ ＬＪ，Ｋｒａｍｅｒ ＪＭ，Ｗｈｉｔｍｏｒｅ ＴＥ，Ｓｐｒｅｃｈｅｒ ＣＡ，Ｍａｔｈｅｗｅｓ Ｓ，Ｇｒａｎｔ ＦＪ，Ｂｉｇｇｓ ＳＨ，Ｒｏｓｅｎｂｅｒｇ ＧＢらＧ，ｅｎｅ １４０（２），２０３−２０９ （１９９４））を利用する。ｈＧｃｇＲ ｃＤＮＡを、発現プラスミドｐｈＤ（Ｔｒａｎｓ−ａｃｔｉｖａｔｅｄ ｅｘｐｒｅｓｓｉｏｎ ｏｆ ｆｕｌｌｙ ｇａｍｍａ−ｃａｒｂｏｘｙｌａｔｅｄ ｒｅｃｏｍｂｉｎａｎｔ ｈｕｍａｎ ｐｒｏｔｅｉｎ Ｃ， ａｎ ａｎｔｉｔｈｒｏｍｂｏｔｉｃ ｆａｃｔｏｒ． Ｇｒｉｎｎｅｌｌ，Ｂ．Ｗ．，Ｂｅｒｇ，Ｄ．Ｔ．，Ｗａｌｌｓ，Ｊ． ａｎｄ Ｙａｎ，Ｓ．Ｂ．Ｂｉｏ／Ｔｅｃｈｎｏｌｏｇｙ ５：１１８９−１１９２（１９８７））の中にサブクローン化する。このプラスミドＤＮＡを２９３ＨＥＫ細胞の中にトランスフェクションし、２００μｇ／ｍｌのハイグロマイシンにより選択する。

粗製原形質膜は懸濁培養からの細胞を使用して調製する。細胞は、２５ｍＭトリスＨＣｌ（ｐＨ７．５）、１ｍＭ ＭｇＣｌ_２、ＤＮＡｓｅ１、２０μｇ／ｍｌおよびＥＤＴＡ不含有Ｒｏｃｈｅ社Ｃｏｍｐｌｅｔｅ Ｉｎｈｉｂｉｔｏｒｓを含む低張緩衝液中で氷上にて溶解する。細胞懸濁物を、テフロン（登録商標）乳棒を使用するガラスのダウンス型ホモジナイザーにより、２５ストロークで、ホモジナイズする。ホモジネートを４℃で１５分間１８００×ｇで遠心分離する。上清を回収し、ペレットを低張緩衝液中で再懸濁および再ホモジナイズする。混合物を１５分間１８００×ｇで遠心分離する。第２の上清を第１の上清と合わせる。合わせた上清を１５分間１８００×ｇで遠心分離して清澄化する。清澄化した上清を高速チューブへ移し、４℃で３０分間２５０００×ｇで遠心分離する。膜ペレットをホモジナイズ用緩衝液中で再懸濁し、使用まで−８０℃で凍結アリコートとして保存する。

Ｐｅｒｋｉｎ−Ｅｌｍｅｒ／ＮＥＮ社（ＮＥＸ２０７）おいては、グルカゴンは^１２５Ｉ−ラクトペルオキシダーゼ手技によって放射性ヨウ素で標識され、逆相ＨＰＬＣによって精製されている。比放射能は約２２００Ｃｉ／ｍｍｏｌである。Ｋ_Ｄ決定は、^１２５Ｉ−標識グルカゴン材料中での高プロパノール含量のために、飽和結合の代わりに相同競合によって行う。Ｋ_Ｄは２．６２ｎＭであると推測され、試験したすべての化合物についてのＫｉ値の計算に使用する。

１％脂肪酸不含有ウシ血清アルブミン（ＢＳＡ）によりあらかじめブロッキングした小麦胚芽凝集素（ＷＧＡ）ビーズによるシンチレーション近接アッセイ（ＳＰＡ）を使用して、受容体結合アッセイを行う。結合緩衝液は、２５ｍＭ ４−（２−ヒドロキシエチル）−１−ピペラジンエタンスルホン酸（ヘペス）（ｐＨ７．４）、２．５ｍＭ ＣａＣｌ_２、１ｍＭ ＭｇＣｌ_２、０．１％脂肪酸不含有ＢＳＡ、０．００３％ Ｔｗｅｅｎ２０およびＥＤＴＡ不含有Ｒｏｃｈｅ社Ｃｏｍｐｌｅｔｅ Ｉｎｈｉｂｉｔｏｒｓを含む。グルカゴンを１ｍｇ／ｍｌで０．０１Ｎ ＨＣｌ中に溶解し、３０μｌのアリコートで−８０℃で直ちに凍結する。グルカゴンのアリコートを希釈し、１時間以内に結合アッセイにおいて使用する。ＯＸＭペプチドアナログをリン酸緩衝食塩水（ＰＢＳ）中に溶解し、結合緩衝液中で連続的に希釈する。次に、１０μｌの希釈化合物またはＰＢＳを、４０μｌのアッセイ結合緩衝液または非放射性グルカゴン（最終的に１μＭで非特異的結合（ＮＳＢ））を含むＣｏｒｎｉｎｇ ３６３２クリアーボトムのアッセイプレートの中へ移す。次いで９０μｌの膜（３μｇ／ウェル）、５０μｌの^１２５Ｉ−標識グルカゴン（反応中で０．１５ｎＭの最終濃度）、および５０μｌのＷＧＡビーズ（１５０μｇ／ウェル）を添加する。プレートを密封し、転倒して混合し、室温で１２時間の静置時間後にＭｉｃｒｏＢｅｔａシンチレーションカウンターにより読み取る。

結果は、化合物の存在下における^１２５Ｉ−標識グルカゴンの特異的結合のパーセントとして計算される。化合物の絶対ＩＣ_５０濃度は、^１２５Ｉ−標識グルカゴンのパーセント特異的結合ｖｓ添加した化合物の濃度の非線形回帰によって導出される。ＩＣ_５０用量はＣｈｅｎｇ−Ｐｒｕｓｏｆｆ方程式を使用してＫｉに変換する（Ｃｈｅｎｇ Ｙ．，Ｐｒｕｓｏｆｆ Ｗ．Ｈ．，Ｂｉｏｃｈｅｍ．Ｐｈａｒｍａｃｏｌ．２２，３０９９−３１０８，１９７３）。位置３９のＣｙｓ（ＰＥＧ２０ｋ）がアミド化された配列番号：３のＯＸＭペプチドアナログのＫｉはｈＧｃｇＲ結合について２０５０±７０ｎＭであった。

実施例４：グルカゴン様ペプチド１（ｈＧＬＰ−１−Ｒ）受容体結合アッセイ
ＧＬＰ−１受容体結合アッセイは、２９３ＨＥＫ膜から単離されたクローン化ヒトグルカゴン様ペプチド１受容体（ｈＧＬＰ−１Ｒ）（Ｇｒａｚｉａｎｏ ＭＰ，Ｈｅｙ ＰＪ，Ｂｏｒｋｏｗｓｋｉ Ｄ，Ｃｈｉｃｃｈｉ ＧＧ，Ｓｔｒａｄｅｒ ＣＤ，Ｂｉｏｃｈｅｍ Ｂｉｏｐｈｙｓ Ｒｅｓ Ｃｏｍｍｕｎ．１９９３ Ｏｃｔ １５；１９６（１）：１４１−６）を使用する。ｈＧＬＰ−１Ｒ ｃＤＮＡを、発現プラスミドｐｈＤ（Ｔｒａｎｓ−ａｃｔｉｖａｔｅｄ ｅｘｐｒｅｓｓｉｏｎ ｏｆ ｆｕｌｌｙ ｇａｍｍａ−ｃａｒｂｏｘｙｌａｔｅｄ ｒｅｃｏｍｂｉｎａｎｔ ｈｕｍａｎ ｐｒｏｔｅｉｎ Ｃ，ａｎ ａｎｔｉｔｈｒｏｍｂｏｔｉｃ ｆａｃｔｏｒ．Ｇｒｉｎｎｅｌｌ，Ｂ．Ｗ．，Ｂｅｒｇ，Ｄ．Ｔ．，Ｗａｌｌｓ，Ｊ． ａｎｄ Ｙａｎ，Ｓ．Ｂ．Ｂｉｏ／Ｔｅｃｈｎｏｌｏｇｙ ５：１１８９−１１９２（１９８７））の中にサブクローン化する。このプラスミドＤＮＡを２９３ＨＥＫ細胞の中にトランスフェクションし、２００μｇ／ｍｌのハイグロマイシンにより選択する。

粗製原形質膜は懸濁培養からの細胞を使用して調製する。細胞は、２５ｍＭトリスＨＣｌ（ｐＨ７．５）、１ｍＭ ＭｇＣｌ_２、ＤＮＡｓｅ１、２０μｇ／ｍｌおよびＥＤＴＡ不含有Ｒｏｃｈｅ社Ｃｏｍｐｌｅｔｅ Ｉｎｈｉｂｉｔｏｒｓを含む低張緩衝液中で氷上にて溶解する。細胞懸濁物を、テフロン（登録商標）乳棒を使用するガラスのダウンス型ホモジナイザーにより、２５ストロークで、ホモジナイズする。ホモジネートを４℃で１５分間１８００×ｇで遠心分離する。上清を回収し、ペレットを低張緩衝液中で再懸濁および再ホモジナイズする。混合物を１５分間１８００×ｇで遠心分離する。第２の上清を第１の上清と合わせる。合わせた上清を１５分間１８００×ｇで遠心分離して清澄化する。清澄化した上清を高速チューブへ移し、４℃で３０分間２５０００×ｇで遠心分離する。膜ペレットをホモジナイズ用緩衝液中で再懸濁し、使用まで−８０℃で凍結アリコートとして保存する。

Ｐｅｒｋｉｎ−Ｅｌｍｅｒ社／ＮＥＮ（ＮＥＸ３０８）においては、グルカゴン様ペプチド１（ＧＬＰ−１）は^１２５Ｉ−ラクトペルオキシダーゼ手技によって放射性ヨウ素で標識され、逆相ＨＰＬＣによって精製されている。比放射能は約２２００Ｃｉ／ｍｍｏｌである。Ｋ_Ｄ決定は、^１２５Ｉ−標識ＧＬＰ−１材料中での高いプロパノール含量のために、飽和結合の代わりに相同競合によって行う。Ｋ_Ｄは０．９６ｎＭであると推測され、試験したすべての化合物についてのＫｉ値の計算に使用する。

１％脂肪酸不含有ＢＳＡ（ＩＣＮ社）によりあらかじめブロッキングした小麦胚芽凝集素（ＷＧＡ）ビーズによるシンチレーション近接アッセイ（ＳＰＡ）を使用して、受容体結合アッセイを行う。結合緩衝液は、２５ｍＭヘペス（ｐＨ７．４）、２．５ｍＭ ＣａＣｌ_２、１ｍＭ ＭｇＣｌ_２、０．１％脂肪酸不含有ＢＳＡ、０．００３％ Ｔｗｅｅｎ２０およびＥＤＴＡ不含有Ｒｏｃｈｅ社Ｃｏｍｐｌｅｔｅ Ｉｎｈｉｂｉｔｏｒｓを含む。ＧＬＰ−１を１ｍｇ／ｍｌでＰＢＳ中に溶解し、３０μｌのアリコートで−８０℃で直ちに凍結する。ＧＬＰ−１アリコートを解凍し、希釈し、１時間以内に結合アッセイにおいて使用する。ＯＸＭペプチドアナログをＰＢＳ中に溶解し、結合緩衝液中で連続的に希釈する。次に、１０μｌの希釈化合物またはＰＢＳを、４０μｌアッセイ結合緩衝液または非放射性ＧＬＰ−１（最終的に１μＭでＮＳＢ）を含むＣｏｒｎｉｎｇ ３６３２クリアーボトムのアッセイプレートの中へ移す。次いで９０μｌの膜（１μｇ／ウェル）、５０μｌの^１２５Ｉ−標識ＧＬＰ−１（反応中で０．１５ｎＭの最終濃度）、および５０μｌのＷＧＡビーズ（１５０μｇ／ウェル）を添加する。プレートを密封し、転倒して混合し、室温で１２時間の静置時間後にＭｉｃｒｏＢｅｔａシンチレーションカウンターにより読み取る。

結果は、化合物の存在下における^１２５Ｉ−標識ＧＬＰ−１の特異的結合のパーセントとして計算される。化合物の絶対ＩＣ_５０濃度は、^１２５Ｉ−標識ＧＬＰ−１のパーセント特異的結合ｖｓ添加した化合物の濃度の非線形回帰によって導出される。ＩＣ_５０濃度はＣｈｅｎｇ−Ｐｒｕｓｏｆｆ方程式を使用してＫｉに変換する（Ｃｈｅｎｇ Ｙ．，Ｐｒｕｓｏｆｆ Ｗ．Ｈ．，Ｂｉｏｃｈｅｍ．Ｐｈａｒｍａｃｏｌ．２２，３０９９−３１０８，１９７３）。位置３９のＣｙｓ（ＰＥＧ２０ｋ）がアミド化された配列番号：３のＯＸＭペプチドアナログのＫｉはｈＧＬＰ−１Ｒ結合について７３±２３ｎＭであった。

実施例５：グルカゴン受容体（ｈＧｃｇＲ）刺激ｃＡＭＰ機能的アッセイ
グルカゴン刺激ｃＡＭＰ機能的アッセイは、実施例３において上述されたｈＧｌｕｃＲ結合アッセイに使用されたものと同一のクローン化ｈＧｃｇＲ発現細胞株を使用する。細胞をＯＸＭペプチドアナログにより刺激し、細胞内で生成されたｃＡＭＰを、Ｐｅｒｋｉｎ Ｅｌｍｅｒ社からの増幅ルミネッセンス近接ホモジニアスアッセイ（Ａｌｐｈａ Ｓｃｒｅｅｎ）（６７６０６２５Ｒ）を使用して定量する。簡潔には、細胞内で誘導されたｃＡＭＰは、キットからの抗ｃＡＭＰ抗体コートアクセプタービーズおよびストレプトアビジンコートドナービーズに対するビオチン化ｃＡＭＰの結合を競合する。細胞内のｃＡＭＰレベルが増加するにつれて、アクセプタービーズ−ビオチン化ｃＡＭＰ−ドナービーズの複合体の破壊が生じ、観察される信号が減少する。

ｈＧｃｇＲ−ＨＥＫ２９３細胞を、Ｅｎｚｙｍｅ−Ｆｒｅｅ Ｃｅｌｌ Ｄｉｓｓｏｃｉａｔｉｏｎ Ｓｏｌｕｔｉｏｎ（Ｓｐｅｃｉａｌｔｙ Ｍｅｄｉａ社５−００４−Ｂ）によりサブコンフルエントになった組織培養ディッシュから採取する。細胞を低速でペレットにし、アッセイ緩衝液［０．１％脂肪酸不含有ＢＳＡを含有する、ＭｇおよびＣａ含有ハンクス緩衝塩類溶液（ＨＢＳＳ）（ＧＩＢＣＯ社、１４０２５−０９２）中２５ｍＭヘペス］により３回洗浄し、次いで１ｍｌあたり１２５，０００細胞の最終濃度に希釈する。Ａｌｐｈａ Ｓｃｒｅｅｎキットからのビオチン化ｃＡＭＰを、１単位／０．０４ｍｌの最終濃度で希釈細胞へ添加する。ホスホジエステラーゼ阻害薬（ＩＢＭＸ）（ジメチルスルホキシド（ＤＭＳＯ）中で２５０ｍＭ）も５００μＭの最終濃度になるように希釈細胞へ添加する。グルカゴンを最初に１ｍｇ／ｍｌで０．０１Ｎ ＨＣｌ中に溶解し、−８０℃で直ちに凍結する。融解に際しては、グルカゴンは１時間以内に使用するべきである。グルカゴン、ｃＡＭＰスタンダードおよびＯＸＭペプチドアナログを、６×の最終濃度までアッセイ緩衝液の中で連続的に希釈する。機能的アッセイは、９６ウェルの低体積の白色のポリスチレンＣｏｓｔａｒプレート（３６８８）において行う。反応は、０．０１ｍｌの希釈したペプチド、グルカゴンまたはｃＡＭＰを０．０４ｍｌの細胞混合物へ添加することによって開始する。室温で１時間後に、反応は、０．０３ｍｌの溶解緩衝液［Ａｌｐｈａ Ｓｃｒｅｅｎキットからの各々１単位／０．０３ｍｌのアクセプタービーズおよびドナービーズを含む、１０ｍＭヘペス（ｐＨ７．４）、１％ ＮＰ４０、および０．０１％脂肪酸不含有ＢＳＡ］の添加によって停止させる。溶解緩衝液の添加を暗所において行って検出ビーズの脱色を防止する。プレートをフォイル中に包み、穏やかに１分間振盪し、次いで室温で一晩放置して平衡化する。プレートはＰｅｒｋｉｎ−Ｅｌｍｅｒ社Ｅｎｖｉｓｉｏｎ装置で読み取る。Ａｌｐｈａ ｓｃｒｅｅｎ単位を、ｃＡＭＰスタンダードカーブに基づいて、１ウェル当たり生成されたピコモルｃＡＭＰに変換する。各ウェルにおいて生成されたピコモルｃＡＭＰを、グルカゴン対照により観察された最大反応のパーセントに変換する。ＥＣ_５０値は、パーセント最大反応ｖｓ添加したペプチドの濃度を使用して、非線形回帰分析によって導出される。位置３９のＣｙｓ（ＰＥＧ２０ｋ）がアミド化された配列番号：３のＯＸＭペプチドアナログは、野生型ＯＸＭのように、５９．９±４．１４ｎＭのＥＣ_５０を持ち、ｈＧｃｇＲに対して完全に効果的で力価が高かった。

実施例６：グルカゴン様ペプチド１受容体（ｈＧＬＰ−１Ｒ）刺激ｃＡＭＰ機能的アッセイ
ＧＬＰ−１−刺激ｃＡＭＰ機能的アッセイは、実施例４において上述されたｈＧＬＰ−１Ｒ結合アッセイに使用されたものと同一のクローン化ｈＧＬＰ−１Ｒ発現細胞株を使用する。細胞をＯＸＭペプチドアナログにより刺激し、細胞内で生成されたｃＡＭＰを、Ｐｅｒｋｉｎ Ｅｌｍｅｒ社からの増幅ルミネッセンス近接ホモジニアスアッセイ（Ａｌｐｈａ Ｓｃｒｅｅｎ）（６７６０６２５Ｒ）を使用して定量する。簡潔には、細胞内で誘導されたｃＡＭＰは、キットからの抗ｃＡＭＰ抗体コートアクセプタービーズおよびストレプトアビジンコートドナービーズに対するビオチン化ｃＡＭＰの結合を競合する。細胞内のｃＡＭＰレベルが増加するにつれて、アクセプタービーズ−ビオチン化ｃＡＭＰ−ドナービーズの複合体の破壊が生じ、観察される信号が減少する。

ｈＧＬＰ−１Ｒ−ＨＥＫ２９３細胞を、Ｅｎｚｙｍｅ−Ｆｒｅｅ Ｃｅｌｌ Ｄｉｓｓｏｃｉａｔｉｏｎ Ｓｏｌｕｔｉｏｎ（Ｓｐｅｃｉａｌｔｙ Ｍｅｄｉａ社５−００４−Ｂ）によりサブコンフルエントになった組織培養ディッシュから採取する。細胞を低速でペレットにし、アッセイ緩衝液［０．１％脂肪酸不含有ＢＳＡを含有する、ＭｇおよびＣａ含有ＨＢＳＳ（ＧＩＢＣＯ社、１４０２５−０９２）中２５ｍＭヘペス］により３回洗浄し、次いで１ｍｌあたり１２５，０００細胞の最終濃度に希釈する。Ａｌｐｈａ Ｓｃｒｅｅｎキットからのビオチン化ｃＡＭＰを、１単位／０．０４ｍｌの最終濃度で希釈細胞へ添加する。ホスホジエステラーゼ阻害薬（ＩＢＭＸ）（ＤＭＳＯ中で２５０ｍＭ）も５００μＭの最終濃度になるように希釈細胞へ添加する。ＧＬＰ−１を−８０℃で凍結アリコートとしてＰＢＳ中で１ｍｇ／ｍｌで保存する。ＧＬＰ−１、ｃＡＭＰスタンダードおよびＯＸＭペプチドアナログを、６×の最終濃度までアッセイ緩衝液の中で連続的に希釈する。機能的アッセイは、９６ウェルの低体積の白色のポリスチレンＣｏｓｔａｒプレート（３６８８）において行う。反応は、０．０１ｍｌの希釈したＯＸＭペプチドアナログ、ＧＬＰ−１またはｃＡＭＰを０．０４ｍｌの細胞混合物へ添加することによって開始する。室温で１時間後に、反応は、０．０３ｍｌの溶解緩衝液［Ａｌｐｈａ Ｓｃｒｅｅｎキットからの各々１単位／０．０３ｍｌのアクセプタービーズおよびドナービーズを含む、１０ｍＭヘペス（ｐＨ７．４）、１％ ＮＰ４０、および０．０１％脂肪酸不含有ＢＳＡ］の添加によって停止させる。溶解緩衝液の添加は暗所において行って検出ビーズの脱色を防止する。プレートをフォイル中に包み、穏やかに１分間振盪し、次いで室温で一晩放置して平衡化する。プレートはＰｅｒｋｉｎ−Ｅｌｍｅｒ社Ｅｎｖｉｓｉｏｎ装置で読み取る。Ａｌｐｈａ ｓｃｒｅｅｎ単位を、ｃＡＭＰスタンダードカーブに基づいて、１ウェル当たり生成されたピコモルｃＡＭＰに変換する。各ウェルにおいて生成されたピコモルｃＡＭＰを、ＧＬＰ−１対照により観察された最大反応のパーセントに変換する。ＥＣ_５０値は、パーセント最大反応ｖｓ添加したペプチドの濃度を使用して、非線形回帰分析によって導出される。位置３９のＣｙｓ（ＰＥＧ２０ｋ）がアミド化された配列番号：３のＯＸＭペプチドアナログは、野生型ＯＸＭのように、２．７５±０．５５ｎＭのＥＣ_５０を持ち、ｈＧＬＰ−１Ｒに対して完全に効果的で力価が高かった。

実施例７：食餌誘導性肥満（ＤＩＯ）マウスにおける、食物摂取量、体重および身体組成に対する効果
３〜４か月齢のオスの食餌誘導性肥満（ＤＩＯ）Ｃ５７ＢＬ／６マウスを使用する。動物は、１２時間の明／暗周期（２２：００に明るくする）で温度制御された（２４℃）施設中で個別に収容し、食物および水に自由に接近させる。２週間の施設への順化後に、マウスを処理群（ｎ＝８〜１０／群）へ無作為化し、各群は類似した平均体重および脂肪重量である。実験前に、媒質溶液をマウスに皮下（ｓｃ）注射し、２日間計量して、マウスを手技に慣れさせる。

媒質、または媒質中で溶解したＯＸＭペプチドアナログ（用量範囲６．７〜２０ｎｍｏｌｅ／ｋｇ）を、暗周期の開始の３０〜９０分前に不断給餌ＤＩＯマウスへｓｃ注射によって、３日ごとに２〜４週間の間投与する。体重およびホッパー＋食物の重量を同時に測定する。前の２４時間において消費された食物は、前日のホッパー＋食物の重量から現在のホッパー＋食物の重量を引くことによって計算される。体重における絶対的変化は、第１の注射前の動物の体重を引くことによって計算される。１、１４および２８日目の総脂質量を、Ｅｃｈｏ Ｍｅｄｉｃａｌ Ｓｙｓｔｅｍ社（Ｈｏｕｓｔｏｎ、ＴＸ）装置を使用して核磁気共鳴（ＮＭＲ）によって、測定する。除脂肪量は全体重から脂肪量を引くことによって計算される。

研究１：２週間の処理
位置３９のＣｙｓ（ＰＥＧ２０ｋ）がインビボでアミド化された配列番号：３のＯＸＭペプチドアナログを、４か月齢のオスの食餌誘導性肥満（ＤＩＯ）Ｃ５７ＢＬ／６へ皮下注射によって投与する。ＯＸＭペプチドアナログを７．５および１５ｎｍｏｌｅ／ｋｇの用量で３日ごとに１度２週間の間注射し、媒質処理マウスおよび陽性対照（７．５ｎｍｏｌｅ／ｋｇの長時間作用性ＧＬＰ−１Ｒアゴニストを３日ごとを注射した）処理動物と比較する。

位置３９のＣｙｓ（ＰＥＧ２０ｋ）がアミド化された配列番号：３のＯＸＭペプチドアナログによる処理により、食物摂取量および体重で用量依存的低下が生じた。２週間の研究期間の終了時に、媒質群と比較した場合、１５ｎｍｏｌｅ／ｋｇ群における累積食物摂取量は２７％低下した。７．５ｎｍｏｌｅ／ｋｇで処理された群の累積重量減少は陽性対照で観察されたものに類似しており、媒質群と比較した場合約９％の低下であった。１５ｎｍｏｌｅ／ｋｇで処理された群の媒質対照と比較した累積重量減少は１８％であった。身体組成分析から、重量減少が主として脂肪量の減少に起因することが示された（表１）。

表１
１４日間の処理期間にわたるＤＩＯマウスにおける重量変化
（平均±標準誤差；ｎ＝８）

これらのデータは、位置３９のＣｙｓ（ＰＥＧ２０ｋ）がアミド化された配列番号：３のＯＸＭペプチドアナログは、媒質処理マウスと比較して、１４日間のＤＩＯマウス研究において、累積食物摂取量および体重を減少させたことを示す。低下した体重は主として脂肪量における低下に起因していた。＊ｐ＜０．０５ｖｓ媒質（ダネット検定）。

研究２：４週間の処理
位置３９のＣｙｓ（ＰＥＧ２０ｋ）がアミド化された配列番号：３のＯＸＭペプチドアナログ（６．７または２０ｎｍｏｌｅ／ｋｇ）および陽性対照（７．５または２２．５ｎｍｏｌｅ／ｋｇの長時間作用性ＧＬＰ−１Ｒアゴニスト）を、４か月齢のオスの食餌誘導性肥満（ＤＩＯ）Ｃ５７ＢＬ／６へ皮下注射によって３日間ごとに４週間の間投与する。

位置３９のＣｙｓ（ＰＥＧ２０ｋ）がアミド化された配列番号：３のＯＸＭペプチドアナログの高用量による処理は、累積食物摂取量を有意に減少させた。位置３９のＣｙｓ（ＰＥＧ２０ｋ）がアミド化された配列番号：３のＯＸＭペプチドアナログは、より低用量で、陽性対照群で見られるものと類似した程度まで体重を減少させた。陽性対照の２２．５ｎｍｏｌｅ／ｋｇ用量と比較した場合、位置３９のＣｙｓ（ＰＥＧ２０ｋ）がアミド化された配列番号：３のＯＸＭペプチドアナログは、２０ｎｍｏｌｅ／ｋｇ用量で、有意に大きな重量減少を引き起こした。最大の重量低下（初期体重の約２５％）は、１５日間の処理後に達成された。身体組成分析により、ＯＸＭペプチドアナログおよび陽性対照と関連した重量減少が主として脂肪量の減少に起因することが確認された（表２）。

位置３９のＣｙｓ（ＰＥＧ２０ｋ）がアミド化された配列番号：３のＯＸＭペプチドアナログの効果を、２１〜２３日目での間接熱量測定法によりさらに査定する。位置３９のＣｙｓ（ＰＥＧ２０ｋ）がアミド化された配列番号：３のＯＸＭペプチドアナログにより処理された動物（２０ｎｍｏｌｅ／ｋｇ）では、媒質処理対照よりも有意に高いエネルギー消費であった（２１日目の平均化された２４時間のエネルギー消費は１８％増加した）。位置３９のＣｙｓ（ＰＥＧ２０ｋ）がアミド化された配列番号：３のＯＸＭペプチドアナログは、媒質対照と比較して、運動活動性のレベルでは有意な変化をもたらさなかった。

研究の完了時に、血漿インスリンおよびコレステロールレベルは、媒質処理対照よりも、すべての処理群において有意に低かったが、位置３９のＣｙｓ（ＰＥＧ２０ｋ）がアミド化された配列番号：３のＯＸＭペプチドアナログの高用量により処理された群のみで、レプチン値が有意に低下した。すべてのペプチド処理群は媒質処理対照よりも高い血漿アディポネクチンレベルであったが、位置３９のＣｙｓ（ＰＥＧ２０ｋ）がアミド化された配列番号：３のＯＸＭペプチドアナログの高用量により処理された群でのみ、統計的に有意な差があった。

表２
２８日間の処理期間にわたるＤＩＯマウスにおける重量変化
（平均±標準誤差；ｎ＝９）

これらのデータは、位置３９のＣｙｓ（ＰＥＧ２０ｋ）がアミド化された配列番号：３のＯＸＭペプチドアナログが、媒質処理マウスと比較して、２８日間のＤＩＯマウス研究において、累積食物摂取量および体重を減少させたことを示す。低下した体重は主として脂肪量中に低下に起因していた。＊ｐ＜０．０５ｖｓ媒質（ダネット検定）。

実施例８：ＤＩＯマウスにおける２週間または４週間のそれぞれの処理後の、経口グルコース耐性試験または腹腔内グルコース耐性試験の間の血糖エクスカーションに対する効果
ＤＩＯマウスにおける実施例７（研究１）において記載されている最終注射の５６時間後に、グルコース耐性試験の開始の１６時間前にマウスを絶食させる。時刻０で、動物に経口強制投与または腹腔内（ＩＰ）注射によって２ｇ／ｋｇのデキストロースを与える。血液は、グルコースチャレンジ後の０、１５、３０、６０および１２０分で尾静脈採血によって採取する。グルコース濃度はグルコメーターで測定する。すべての用量の位置３９のＣｙｓ（ＰＥＧ２０ｋ）がアミド化された配列番号：３のＯＸＭペプチドアナログは、陽性対照と同様に、媒質処理対照と比較した場合に、経口グルコースチャレンジの前および後に測定されたすべてのタイムポイントで血糖を有意に低くした（表３）。

腹腔内グルコース耐性試験（ＩＰＧＴＴ）を、ＤＩＯマウスにおける実施例７（研究２）において記載されている最終注射の３日間後の２９日目で行う。低用量の位置３９のＣｙｓ（ＰＥＧ２０ｋ）がアミド化された配列番号：３のＯＸＭペプチドアナログは、媒質処理対照と比較して絶食時血糖を減少させたが、ＩＰグルコースチャレンジ後のグルコースレベルに対してはほとんど効果がなかった。高用量の位置３９のＣｙｓ（ＰＥＧ２０ｋ）がアミド化された配列番号：３のＯＸＭペプチドアナログ、および両方の用量の陽性対照は、媒質処理対照と比較した場合、ＩＰグルコースのチャレンジの前および後に測定されたすべてのタイムポイントで、有意に血糖を低くした（表４）。

表３
位置３９のＣｙｓ（ＰＥＧ２０ｋ）がアミド化された配列番号：３のＯＸＭペプチドアナログの経口グルコース負荷の投与後の血糖エクスカーションに対する効果
グルコース曲線下の面積として与えられたデータ
（＝ｔ＋０から１２０分までの積分値）（ｎ＝８）

これらのデータは、位置３９のＣｙｓ（ＰＥＧ２０ｋ）がアミド化されていた配列番号：３のＯＸＭペプチドアナログによるＤＩＯマウスにおける２週間の処理後に、経口グルコース負荷後の血糖エクスカーションの有意な低下があったことを示す。統計的有意性はダネット検定によって評価した。（＊ｐ＜０．０５ｖｓ媒質）。

表４
位置３９のＣｙｓ（ＰＥＧ２０ｋ）がアミド化された配列番号：３のＯＸＭペプチドアナログの腹腔内（ｉｐ）グルコース負荷後の血糖エクスカーションに対する効果
グルコース曲線下の面積として与えられたデータ
（＝ｔ＋０から１２０分までの積分値）（ｎ＝６）

これらのデータは、位置３９のＣｙｓ（ＰＥＧ２０ｋ）がアミド化された配列番号：３のＯＸＭペプチドアナログによるＤＩＯマウスにおける４週間の処理後に、腹腔内（ｉｐ）グルコース負荷後の血糖エクスカーションの有意な低下があったことを示す。統計的有意性はダネット検定によって評価した。（＊ｐ＜０．０５ｖｓ媒質）。

実施例９：痩せ型マウスにおける腹腔内グルコース耐性試験の間の血糖エクスカーションに対する効果
９週齢のオスのＣ５７ＢＬ／６マウスを研究において使用する。動物を、与えられた体重に基づいた群へと無作為化する。試験の開始の１６時間前に、媒質またはＯＸＭペプチドアナログ（用量５．０〜１５．０ｎｍｏｌｅ／ｋｇ）を動物に注射する。ペプチドまたは賦形剤の注射の時に食物を除去する。時刻０で、動物にＩＰ注射によって２ｇ／ｋｇのデキストロースを与える。血液は、グルコースチャレンジ後の０、３、６、１２および３０分で尾静脈出血採血によって採取する。グルコース濃度はグルコメーターによって測定する。インスリンはＭｅｓｏｓｃａｌｅによって測定する。

高用量の位置３９のＣｙｓ（ＰＥＧ２０ｋ）がアミド化された配列番号：３のＯＸＭペプチドアナログは、媒質処理対照と比較した場合、血糖エクスカーションを有意に低くした（表５）。両方の用量の位置３９のＣｙｓ（ＰＥＧ２０ｋ）がアミド化された配列番号：３のＯＸＭペプチドアナログは、媒質処理対照と比較した場合、血漿インスリン濃度を有意に増加させた（表６）。

表５
位置３９のＣｙｓ（ＰＥＧ２０ｋ）がアミド化された配列番号：３のＯＸＭペプチドアナログの痩せ型マウスにおける腹腔内（ｉｐ）グルコース耐性試験後の血糖エクスカーションに対する効果
グルコース曲線下の面積として与えられたデータ
（＝ｔ＋０から３０分までの積分値）（ｎ＝６）

これらのデータは、位置３９のＣｙｓ（ＰＥＧ２０ｋ）がアミド化された配列番号：３のＯＸＭペプチドアナログが、痩せ型マウスにおける腹腔内（ｉｐ）グルコース耐性試験後の血糖エクスカーションを有意に低下させたことを示す。統計的有意性はダネット検定によって評価した。（＊ｐ＜０．０５ｖｓ媒質）。

表６
位置３９のＣｙｓ（ＰＥＧ２０ｋ）がアミド化された配列番号：３のＯＸＭペプチドアナログの痩せ型マウスにおける腹腔内（ｉｐ）グルコース耐性試験後の血漿インスリンレベルに対する効果
インスリン曲線下の面積として与えられたデータ
（＝積分されたｔ＋０から３０分までの血漿インスリン値）（ｎ＝６）

これらのデータは、位置３９のＣｙｓ（ＰＥＧ２０ｋ）がアミド化された配列番号：３のＯＸＭペプチドアナログが、痩せ型マウスにおける腹腔内（ｉｐ）グルコース耐性試験後の血漿インスリンＡＵＣを有意に増加させたことを示す。統計的有意性はダネット検定によって評価した。（＊ｐ＜０．０５ｖｓ媒質）。

実施例１０：ｏｂ／ｏｂマウスにおける経口グルコース耐性試験（ＯＧＴＴ）または腹腔内（ｉｐ）グルコース耐性試験（ＩＰＧＴＴ）の間の血糖エクスカーションに対する効果
２〜３か月齢のオスのｏｂ／ｏｂマウスは、１２時間の明／暗周期（２２：００時に明るくする）で温度制御された（２４℃）施設中で個別に収容し、標準的な餌および水に自由に接近させる。少なくとも２週間の施設への順化後に、３時間の絶食時血糖を午前９時に尾静脈採血によって測定する。１８０ｍｇ／ｄＬ未満の血糖のマウスは使用しない。残りの動物を処理群（Ｎ＝６〜７／群）へ無作為化し、各群は類似した平均血糖値である。マウスは注射の時間まで食物へ接近させる。同じ日の午後４時に、媒質または７．５ｍｏｌｅ／ｋｇのＯＸＭペプチドアナログを動物に注射する。注射の時に食物を除去する。ＯＧＴＴ（表７）またはＩＰＧＴＴ（表８）はペプチド注射の１６時間後に行う。時刻０で、動物に経口強制投与（表７）または腹膜腔内注射（表８）によって２ｇ／ｋｇのデキストロースを与える。血液は、グルコースチャレンジ後の０、１５、３０、６０および１２０分で尾静脈採血によって採取する。グルコース濃度はグルコメーターによって測定する。

位置３９のＣｙｓ（ＰＥＧ２０ｋ）がアミド化された配列番号：３のＯＸＭペプチドアナログの単回注入は、ｏｂ／ｏｂマウスにおける血糖を正常化した。グルコースチャレンジ後に測定されたすべてのタイムポイントで血糖レベルは、媒質対照群におけるものよりも有意に低かった。

表７
位置３９のＣｙｓ（ＰＥＧ２０ｋ）がアミド化された配列番号：３のＯＸＭペプチドアナログのｏｂ／ｏｂマウスにおける経口グルコース耐性試験後の血糖エクスカーションに対する効果
グルコース曲線下の面積として与えられたデータ
（＝ｔ＋０から１２０分までの積分値）（ｎ＝７）

これらのデータは、位置３９のＣｙｓ（ＰＥＧ２０ｋ）がアミド化された配列番号：３のＯＸＭペプチドアナログが、ｏｂ／ｏｂマウスにおける経口グルコース耐性試験後の血糖エクスカーションを有意に低下させたことを示す。統計的有意性はダネット検定によって評価した。（＊ｐ＜０．０５ｖｓ媒質）。

表８
位置３９のＣｙｓ（ＰＥＧ２０ｋ）がアミド化された配列番号：３のＯＸＭペプチドアナログのｏｂ／ｏｂマウスにおける腹腔内（ｉｐ）グルコース耐性試験後の血糖エクスカーションに対する効果
グルコース曲線下の面積として与えられたデータ
（＝ｔ＋０から１２０分までの積分値）（ｎ＝６）

これらのデータは、位置３９のＣｙｓ（ＰＥＧ２０ｋ）がアミド化された配列番号：３のＯＸＭペプチドアナログが、ｏｂ／ｏｂマウスにおける腹腔内（ｉｐ）グルコース耐性試験後の血糖エクスカーションを有意に低下させたことを示す。統計的有意性はダネット検定によって評価した。（＊ｐ＜０．０５ｖｓ媒質）。

実施例１１：オスの食餌誘導性肥満Ｃ５７ＢＬ／６マウスにおける、血漿ＦＧＦ２１、トリグリセリドレベルおよび肝臓の遺伝子発現に対する急性効果
重量減少とは独立して、位置３９のＣｙｓ（ＰＥＧ２０ｋ）がアミド化された配列番号：３のＯＸＭペプチドアナログによる処理によって修飾される代謝経路を調べるために、ＯＸＭペプチドアナログおよび陽性対照（長時間作用性ＧＬＰ−１Ｒアゴニスト）を、３か月齢のオスの食餌誘導性肥満（ＤＩＯ）マウスへ皮下注射によって投与する。研究の前日、マウスを処理群（Ｎ＝７／群）へ無作為化し、各群は類似した平均体重である。その同じ日の夜（およそ午後１０時）に動物を清浄なケージの中へ入れ、皮下注射によって媒質またはＯＸＭペプチドアナログを投薬する。ＯＸＭペプチドアナログおよび対照を２２．５ｎｍｏｌｅ／ｋｇで投与する。ペプチドまたは賦形剤の注射の時に食物を除去する。翌朝（およそ午前１０時）に動物を屠殺し、血漿および肝臓組織を採取する。グルコースおよびトリグリセリドの濃度を、Ｈｉｔａｃｈｉ社血液化学解析器を使用して測定する。遺伝子発現はＲＴ−ＰＣＲによって決定する。マロニルＣｏＡおよびアセチルＣｏＡのレベルをＨＰＬＣによって測定する。

単回注射後に、血漿グルコースは、すべての処理群において媒質対照と比較して有意に減少した。血漿トリグリセリドレベルは、位置３９のＣｙｓ（ＰＥＧ２０ｋ）がアミド化された配列番号：３のＯＸＭペプチドアナログにより処理されたマウスでのみ、媒質対照と比較して減少したが、長時間作用性ＧＬＰ−１Ｒアゴニストにより処理されたマウスでは減少しなかった。肝臓のマロニルＣｏＡおよびアセチルＣｏＡ濃度は、位置３９のＣｙｓ（ＰＥＧ２０ｋ）がアミド化された配列番号：３のＯＸＭペプチドアナログによる処理後に、媒質対照に対して、それぞれ６３％および３９％有意に減少した。位置３９のＣｙｓ（ＰＥＧ２０ｋ）がアミド化された配列番号：３のＯＸＭペプチドアナログによる処理は、ｐｇｃ−１α遺伝子発現の７倍の増加、ならびにＣｈＲＥＢＰおよびＰＣＳＫ９遺伝子発現のそれぞれ５２％および６１％の減少を含んで、複数の肝臓の遺伝子の発現を変化させた。加えて、位置３９のＣｙｓ（ＰＥＧ２０ｋ）がアミド化された配列番号：３のＯＸＭペプチドアナログによる急性処理後に、肝臓のＦＧＦ２１遺伝子発現は１７倍誘導され、循環ＦＧＦ２１の６倍の増加に対応する。これらの変化はすべて、位置３９のＣｙｓ（ＰＥＧ２０ｋ）がアミド化された配列番号：３のＯＸＭペプチドアナログにより処理されたマウスに特異的である。

配列表

Ｈｉｓ−（Ａｉｂ）−Ｇｌｎ−Ｇｌｙ−Ｔｈｒ−Ｐｈｅ−Ｔｈｒ−Ｓｅｒ−Ａｓｐ−Ｔｙｒ−Ｓｅｒ−Ｌｙｓ−Ｔｙｒ−Ｌｅｕ−Ａｓｐ−Ｓｅｒ−Ｌｙｓ−Ｌｙｓ−Ａｌａ−Ｇｌｎ−Ｇｌｕ−Ｐｈｅ−Ｖａｌ−Ｇｌｎ−Ｔｒｐ−Ｌｅｕ−Ｌｅｕ−Ａｓｎ−（Ａｉｂ）−Ｇｌｙ−Ａｒｇ−Ａｓｎ−Ａｒｇ−Ａｓｎ−Ａｓｎ−Ｉｌｅ−Ａｌａ（配列番号：１）

Ｈｉｓ−（Ａｉｂ）−Ｇｌｎ−Ｇｌｙ−Ｔｈｒ−Ｐｈｅ−Ｔｈｒ−Ｓｅｒ−Ａｓｐ−Ｔｙｒ−Ｓｅｒ−Ｌｙｓ−Ｔｙｒ−Ｌｅｕ−Ａｓｐ−Ｓｅｒ−Ｌｙｓ−Ｌｙｓ−Ａｌａ−Ｇｌｎ−Ｇｌｕ−Ｐｈｅ−Ｖａｌ−Ｇｌｎ−Ｔｒｐ−Ｌｅｕ−Ｌｅｕ−Ａｓｎ−（Ａｉｂ）−Ｇｌｙ−Ａｒｇ−Ａｓｎ−Ａｒｇ−Ａｓｎ−Ａｓｎ−Ｉｌｅ−Ａｌａ−Ｃｙｓ−Ｃｙｓ（配列番号：２）

Ｈｉｓ−（Ａｉｂ）−Ｇｌｎ−Ｇｌｙ−Ｔｈｒ−Ｐｈｅ−Ｔｈｒ−Ｓｅｒ−Ａｓｐ−Ｔｙｒ−Ｓｅｒ−Ｌｙｓ−Ｔｙｒ−Ｌｅｕ−Ａｓｐ−Ｓｅｒ−Ｌｙｓ−Ｌｙｓ−Ａｌａ−Ｇｌｎ−Ｇｌｕ−Ｐｈｅ−Ｖａｌ−Ｇｌｎ−Ｔｒｐ−Ｌｅｕ−Ｌｅｕ−Ａｓｎ−（Ａｉｂ）−Ｇｌｙ−Ａｒｇ−Ａｓｎ−Ａｒｇ−Ａｓｎ−Ａｓｎ−Ｉｌｅ−Ａｌａ−Ｃｙｓ（ＰＥＧ２０Ｋ）−Ｃｙｓ（ＰＥＧ２０Ｋ）（配列番号：３）
配列中、位置３９のＣｙｓ（ＰＥＧ２０Ｋ）は任意にアミド化される。

Ｈｉｓ−Ｓｅｒ−Ｇｌｎ−Ｇｌｙ−Ｔｈｒ−Ｐｈｅ−Ｔｈｒ−Ｓｅｒ−Ａｓｐ−Ｔｙｒ−Ｓｅｒ−Ｌｙｓ−Ｔｙｒ−Ｌｅｕ−Ａｓｐ−Ｓｅｒ−Ａｒｇ−Ａｒｇ−Ａｌａ−Ｇｌｎ−Ａｓｐ−Ｐｈｅ−Ｖａｌ−Ｇｌｎ−Ｔｒｐ−Ｌｅｕ−Ｍｅｔ−Ａｓｎ−Ｔｈｒ−Ｌｙｓ−Ａｒｇ−Ａｓｎ−Ａｒｇ−Ａｓｎ−Ａｓｎ−Ｉｌｅ−Ａｌａ（配列番号：４）

Ｈｉｓ−（Ａｉｂ）−Ｇｌｎ−Ｇｌｙ−Ｔｈｒ−Ｐｈｅ−Ｔｈｒ−Ｓｅｒ−Ａｓｐ−Ｔｙｒ−Ｓｅｒ−Ｌｙｓ−Ｔｙｒ−Ｌｅｕ−Ａｓｐ−Ｓｅｒ−Ｌｙｓ−Ｌｙｓ−Ａｌａ−Ｇｌｎ−Ｇｌｕ−Ｐｈｅ−Ｖａｌ−Ｇｌｎ−Ｔｒｐ−Ｌｅｕ−Ｌｅｕ−Ａｓｎ−（Ａｉｂ）−Ｇｌｙ−Ａｒｇ−Ａｓｎ−Ａｒｇ−Ａｓｎ−Ａｓｎ−Ｉｌｅ−Ａｌａ−Ｘａａ_３８−Ｘａａ_３９（配列番号：５）
配列中、Ｘａａ_３８はＣｙｓ、Ｃｙｓ−ＰＥＧ、または存在せず；
Ｘａａ_３９はＣｙｓ、Ｃｙｓ−ＰＥＧ、または存在しない。

Claims (16)

1. アミノ酸配列：
   Ｈｉｓ−（Ａｉｂ）−Ｇｌｎ−Ｇｌｙ−Ｔｈｒ−Ｐｈｅ−Ｔｈｒ−Ｓｅｒ−Ａｓｐ−Ｔｙｒ−Ｓｅｒ−Ｌｙｓ−Ｔｙｒ−Ｌｅｕ−Ａｓｐ−Ｓｅｒ−Ｌｙｓ−Ｌｙｓ−Ａｌａ−Ｇｌｎ−Ｇｌｕ−Ｐｈｅ−Ｖａｌ−Ｇｌｎ−Ｔｒｐ−Ｌｅｕ−Ｌｅｕ−Ａｓｎ−（Ａｉｂ）−Ｇｌｙ−Ａｒｇ−Ａｓｎ−Ａｒｇ−Ａｓｎ−Ａｓｎ−Ｉｌｅ−Ａｌａ−Ｘａａ_３８−Ｘａａ_３９（配列番号：５）
   （配列中、Ｘａａ_３８は、Ｃｙｓ、Ｃｙｓ−ＰＥＧ、または存在せず；Ｘａａ_３９は、Ｃｙｓ、Ｃｙｓ−ＰＥＧ、または存在せず、配列中、Ｃ末端アミノ酸は任意にアミド化される）
   を含む、オキシントモジュリンペプチドアナログ。
2. アミノ酸配列：
   Ｈｉｓ−（Ａｉｂ）−Ｇｌｎ−Ｇｌｙ−Ｔｈｒ−Ｐｈｅ−Ｔｈｒ−Ｓｅｒ−Ａｓｐ−Ｔｙｒ−Ｓｅｒ−Ｌｙｓ−Ｔｙｒ−Ｌｅｕ−Ａｓｐ−Ｓｅｒ−Ｌｙｓ−Ｌｙｓ−Ａｌａ−Ｇｌｎ−Ｇｌｕ−Ｐｈｅ−Ｖａｌ−Ｇｌｎ−Ｔｒｐ−Ｌｅｕ−Ｌｅｕ−Ａｓｎ−（Ａｉｂ）−Ｇｌｙ−Ａｒｇ−Ａｓｎ−Ａｒｇ−Ａｓｎ−Ａｓｎ−Ｉｌｅ−Ａｌａ−Ｃｙｓ−Ｃｙｓ（配列番号：２）
   （配列中、位置３８のＣｙｓ残基は任意にＰＥＧ化され、配列中、位置３９のＣｙｓ残基は任意にＰＥＧ化され；位置３９のＣｙｓのカルボキシル基は任意にアミド化される）
   を含む、請求項１に記載のオキシントモジュリンペプチドアナログ。
3. 前記アナログが、位置３８または位置３９のいずれかのＣｙｓ残基のチオール基に対して付着された約４０ｋＤａのＰＥＧ分子によりＰＥＧ化される、請求項２に記載のオキシントモジュリンペプチドアナログ。
4. 前記アナログが、位置３８および３９の両方のＣｙｓ残基のチオールで各々の場合において約２０ｋＤａのＰＥＧ分子によりＰＥＧ化され、アミノ酸配列：
   Ｈｉｓ−（Ａｉｂ）−Ｇｌｎ−Ｇｌｙ−Ｔｈｒ−Ｐｈｅ−Ｔｈｒ−Ｓｅｒ−Ａｓｐ−Ｔｙｒ−Ｓｅｒ−Ｌｙｓ−Ｔｙｒ−Ｌｅｕ−Ａｓｐ−Ｓｅｒ−Ｌｙｓ−Ｌｙｓ−Ａｌａ−Ｇｌｎ−Ｇｌｕ−Ｐｈｅ−Ｖａｌ−Ｇｌｎ−Ｔｒｐ−Ｌｅｕ−Ｌｅｕ−Ａｓｎ−（Ａｉｂ）−Ｇｌｙ−Ａｒｇ−Ａｓｎ−Ａｒｇ−Ａｓｎ−Ａｓｎ−Ｉｌｅ−Ａｌａ−Ｃｙｓ（ＰＥＧ２０Ｋ）−Ｃｙｓ（ＰＥＧ２０Ｋ）（配列番号：３）
   （配列中、位置３９のＰＥＧ化されたＣｙｓのカルボキシル基は任意にアミド化される）
   を含む、請求項１または２のいずれか一項に記載のオキシントモジュリンペプチドアナログ。
5. 前記ＰＥＧ分子が直鎖状である、請求項１〜４のいずれか一項に記載のオキシントモジュリンペプチドアナログ。
6. 前記位置３９のＣｙｓ残基のカルボキシル基がアミド化される、請求項１〜５のいずれか一項に記載のオキシントモジュリンペプチドアナログ。
7. 前記位置３９のＣｙｓ残基が存在せず、前記位置３８のＣｙｓ残基が約４０ｋＤａのＰＥＧ分子によりＰＥＧ化され、任意にアミド化される、請求項１に記載のオキシントモジュリンペプチドアナログ。
8. 請求項１〜７のいずれか一項に記載のオキシントモジュリンペプチドアナログ、および薬学的に許容される担体、希釈剤または賦形剤を含む、医薬組成物。
9. 請求項１〜７のいずれか一項に記載のオキシントモジュリンペプチドアナログを、薬学的に許容される担体、希釈剤または賦形剤、および任意に他の治療用成分と共に含む、医薬組成物。
10. 効果的な量の請求項１〜７のいずれか一項に記載のオキシントモジュリンペプチドアナログを被験体に対して投与することを含む、それを必要とする被験体においてインスリン非依存型糖尿病を治療する方法。
11. 効果的な量の請求項１〜７のいずれか一項に記載のオキシントモジュリンペプチドアナログを被験体に対して投与することを含む、それを必要とする被験体において肥満を治療する方法。
12. 効果的な量の請求項１〜７のいずれか一項に記載のオキシントモジュリンペプチドアナログを被験体に対して投与することを含む、それを必要とする被験体においてインスリン非依存型糖尿病または肥満を治療する方法。
13. 医薬品としての使用のための、請求項１〜７のいずれか一項に記載のオキシントモジュリンペプチドアナログ。
14. インスリン非依存型糖尿病の治療における使用のための、請求項１〜７のいずれか一項に記載のオキシントモジュリンペプチドアナログ。
15. 肥満の治療における使用のための、請求項１〜７のいずれか一項に記載のオキシントモジュリンペプチドアナログ。
16. インスリン非依存型糖尿病または肥満の治療における使用のための、請求項１〜７のいずれか一項に記載のオキシントモジュリンペプチドアナログ。