JP2013189438A - 改良されたマイコプラズマ・ハイオニューモニエバクテリンワクチン - Google Patents

Abstract

【課題】本発明は、単回投与後に感染に対する免疫を提供する、改良されたマイコプラズマ・ハイオニューモニエバクテリンワクチン組成物の提供に関する。
【解決方法】不活化されたマイコプラズマ・ハイオニューモニエバクテリンおよびアジュバント混合物を含み、これが組み合わされて、単回投与後にマイコプラズマ・ハイオニューモニエ感染に対する免疫を提供して、マイコプラズマ・ハイオニューモニエバクテリンに対して細胞媒介性免疫および局所（分泌IｇA）免疫を含む特異的な免疫応答を誘発する組成物の提供。
【選択図】なし

Description

本発明は、詳細には、単回用量でマイコプラズマ・ハイオニューモニエ（Mycoplasma hyopneumoniae）による感染に対してレシピエント動物を免疫するのに有効な量の不活化マイコプラズマ・ハイオニューモニエバクテリンを使用する、マイコプラズマ・ハイオニューモニエに対する防御免疫を誘導するための改良方法に関する。

マイコプラズマ・ハイオニューモニエは、ブタのマイコプラズマ肺炎の病原因子である。この疾患は、体重増加の減少および飼料効率の悪化に起因して養豚業における経済的損失の重要な原因である。この疾患は、慢性の咳、被毛のくすみ、成長の鈍化および発育不全（数週間続く）を生じる。特に腹側尖端および心臓葉における紫から灰色の硬化領域の特徴的な病変が感染動物で観察される。疾患はほとんど死亡を生じないが、感染したブタはしばしば、日和見病原体による二次感染に罹り易く、その結果として死亡またはストレスが生じる。経済的な損失だけでも、毎年２億〜２億５千万ドルと見積もられている。

マイコプラズマ・ハイオニューモニエは、増殖の遅い選好性の細菌であって、細胞壁を欠く。呼吸管（気道）にやはり位置する共通の二次因子である、Mycoplasma hyorhinisに起因して、マイコプラズマ・ハイオニューモニエをこの呼吸管から単離することはしばしば困難である。この疾患は、咳き込みによって生じるエアロゾルによって、そして罹患したまたは回復期のキャリアのブタからの直接の接触によって、伝播される。感染した動物と未感染の動物の混在は、早期でかつ頻繁な再感染を生じる。感染は頻繁に、分娩の際のキャリアのメスブタによる子ブタの感染で開始する。家畜の群管理の技術によっては、感染は高齢になるまで明らかにはならない場合もある。さらなる感染は、通常、離乳後、ブタが集められる場合に観察される。顕在性の疾患は通常６週齢以上のブタで観察される。成長速度および飼料転換速度は感染動物では顕著に低下する。抗生物質を用いる処置は高価であって、長期の使用が必要である。再感染も問題である。ワクチンは現在、感染およびその結果を回避するための最も有効な方法である。

フォートドッジアニマルヘルス（Fort Dodge Animal Health）（FDAH）は、マイコプラズマ・ハイオニューモニエによって生じる臨床症状に対して健康なブタを防御するためのワクチンとして使用するために、マイコプラズマ・ハイオニューモニエバクテリンを、Suvaxyn（登録商標）Respifend（登録商標）ＭＨの商品名で市販している。当該ワクチンは、アジュバントとしてカルボポール（Carbopol）を含み、そして１週齢以上のブタについて２回投与ワクチンとして推奨され、この二回目の投与は、最初のワクチン接種後２〜３週である。しかし、２回投与ワクチンは、疾患に拮抗して完全な保護を得るには、動物を２回処理する必要があるという明白な不利な点を有する。

従って、本発明の目的は、ワクチンの単回用量の投与を用いて、防御免疫を誘発して、マイコプラズマ・ハイオニューモニエによって生じる疾患を防御する、この生物体に対する有効なワクチンを提供することである。

本発明の別の目的は、マイコプラズマ・ハイオニューモニエによって生じる感染および疾患に対するブタにおける使用に適切した、そして他のバクテリンおよび／またはトキソイドと組み合わせて用いられ得るワクチン組成物を提供することである。

本発明のなおさらなる目的は、ワクチンの単回投与後に防御免疫を誘発するために、バクテリンの免疫原性を増強するアジュバント処方物を利用することによって、疾患（この疾患の原因の生物体は、マイコプラズマ・ハイオニューモニエである）の予防または緩和のための方法を提供することである。

本発明の他の目的および特徴は、本明細書において以下に記載される詳細な説明から明らかになる。

本発明は、マイコプラズマ・ハイオニューモニエによる感染に対して動物を免疫するためのワクチン組成物であって、免疫量の不活化マイコプラズマ・ハイオニューモニエバクテリンと；アクリル酸ポリマー、ならびに代謝性オイルとポリオキシエチレン−ポリオキシプロピレンブロックコポリマーの混合物を含むアジュバント混合物と；医薬上許容される担体とを含み、単回投与後にマイコプラズマ・ハイオニューモニエからの防御免疫を誘発する、ワクチン組成物に関する。

別の局面において、本発明は、マイコプラズマ・ハイオニューモニエによる感染に対して動物を免疫するための免疫原性組成物を提供し、この免疫原性組成物は、不活化マイコプラズマ・ハイオニューモニエバクテリンを、上記のアジュンバント混合物および医薬上許容される安定化剤、担体または希釈剤と一緒に組み合わせて含む。このアジュバントは通常、このワクチン組成物中に約１〜２５（ｖ／ｖ）％の最終濃度で、そして好ましくは約５〜１２（ｖ／ｖ）％の最終濃度で存在する。当組成物はまた、１またはそれ以上の病原体（このような病原体の１またはそれ以上の株、タイプ、血清型などを含む）、例えば、Haemonphilus parasuis、Pasteurella multiocida、Streptococcum suis、Actinobacillus pleuropneumoniae、Bordetella bronchiseptica、Salmonella choleraesuis、Erysipelothrix rhusiopathiae、レプトスピラ属、およびウイルス抗原、例えば、ブタインフルエンザウイルス（ＳＩＶ）、ブタ繁殖呼吸症候群ウイルス（ＰＲＲＳＶ）およびブタサーコウイルス（ＰＣＶ）由来の、不活性化バクテリンまたは精製トキソイドを含む他のワクチン成分を含んでもよく、そして筋肉内、皮下、経口、エアロゾル、または経鼻の経路によって投与されてよい。本発明の他の実施形態において、他のワクチン成分は、ＳＩＶ；Haemonphilus parasuis；ＰＲＲＳＶおよびＰＣＶからなる群；ＳＩＶおよびErysipelothrix rhusiopathiaeからなる群：Pasteurella multiocidaおよびBordetella bronchisepticaからなる群から選択される１またはそれ以上の抗原を含む。本発明のさらに別の態様において、本発明の他のワクチン成分は、ＳＩＶから選択される場合、ＳＩＶ−Ｈ１Ｎ１株、ＳＩＶ−Ｈ１Ｎ２株およびＳＩＶ−Ｈ３Ｎ２株からの選択を含む。

さらに別の局面では、本発明は、不活化マイコプラズマ・ハイオニューモニエバクテリンおよびアジュバント混合物を含む上記のワクチンの単回用量を投与することによって、マイコプラズマ・ハイオニューモニエによって生じる疾患に対して動物を防御するための方法を提供する。

本発明のなおさらなる局面では、本発明は、マイコプラズマ・ハイオニューモニエによる感染に対して動物を免疫するための免疫原性組成物またはワクチンを提供するが、これはアジュバントまたはアジュバント混合物と組み合わせた、不活性なマイコプラズマ・ハイオニューモニエバクテリン（このアジュバントまたはアジュバント混合物が、単独でまたは混合物で、この組成物またはワクチンに対する細胞媒介性免疫応答および局所（分泌型ＩｇＡ）免疫応答を提供する）と；少なくとも１つのさらなる細菌性抗原および／またはウイルス抗原を含む他のワクチン成分と；医薬上許容される担体とを含み、このワクチン組成物は、単回投与後にマイコプラズマ・ハイオニューモニエからの防御免疫を誘発する。この組成物またはワクチンにおいて、他のワクチン成分は、１またはそれ以上の病原体（このような病原体の１またはそれ以上の株、タイプ、血清型などを含む）、例えば、Haemonphilus parasuis、Pasteurella multiocida、Streptococcum suis、Actinobacillus pleuropneumoniae、Bordetella bronchiseptica、Salmonella choleraesuis、Erysipelothrix rhusiopathiae、レプトスピラ属の細菌、およびウイルス抗原（このようなウイルス抗原の１またはそれ以上の株、タイプ、血清型などを含む）、例えば、ブタインフルエンザウイルス（ＳＩＶ）、ブタ繁殖呼吸症候群ウイルス（ＰＲＲＳＶ）およびブタサーコウイルス（ＰＣＶ）由来の不活化バクテリンまたは精製トキソイドを含んでもよく、そして筋肉内、皮下、経口、エアロゾル、または経鼻の経路によって投与されてもよい。

本発明のなお別の局面において、本発明は、マイコプラズマ・ハイオニューモニエおよびウイルス病原体による感染に対して動物を免疫するためのワクチン組成物を提供する。このワクチン組成物は、免疫量のマイコプラズマ・ハイオニューモニエバクテリンと；ブタインフルエンザウイルス（ＳＩＶ）、ブタ繁殖呼吸症候群ウイルス（ＰＲＲＳＶ）およびブタサーコウイルス（ＰＣＶ）からなる群より選択される少なくとも１つの免疫量のウイルス抗原と；アクリル酸ポリマー、代謝性オイルおよびポリオキシエチレン−ポリオキシプロピレンブロックコポリマーを水中油型エマルジョンの形態で含むアジュバント系とを含み；このワクチン組成物は、単回投与後にマイコプラズマ・ハイオニューモニエからの防御免疫を誘発する。

本発明のなおさらなる局面において、本発明は、マイコプラズマ・ハイオニューモニエおよび少なくとも１つのウイルス病原体、そして必要に応じてさらなるウイルスおよび／または細菌の病原体、による感染に対して動物を免疫するためのワクチン組成物および方法を提供する。このワクチン組成物（単数または複数）および方法（単数または複数）は、単回投与後に、マイコプラズマ・ハイオニューモニエからの防御免疫を誘発する。

本明細書に引用される全ての特許、特許出願、および他の文献は、その出典を明示することにより本明細書の一部とする。矛盾がある場合には、本発明の開示が優先する。

本明細書において用いる場合、「バクテリン（bacterin）」とは、不活化された細菌の集合であって、これは特定のアジュバントと組み合わされて、動物に投与された場合に疾患または感染に対して防御するための防御免疫を誘発し得る。

「アジュバント（Adjuvant）」とは、ワクチン組成物においてマイコプラズマ・ハイオニューモニエバクテリンの免疫原性および有効性を増強する１またはそれ以上の物質からなる組成物を意味する。

本明細書および請求の範囲において用いる場合、ＭＨＤＣＥという用語は、マイコプラズマ・ハイオニューモニエのＤＮＡ細胞等価物（マイコプラズマ・ハイオニューモニエ DNA cell equivalents）を意味する。

「免疫量（immunizing amount）」とは、マイコプラズマ・ハイオニューモニエに対する免疫を提供するバクテリンの量である。「免疫量」は、種、血統、年齢、大きさ、健康状態およびその動物が同じ生物体に対するワクチンを以前に与えられているかどうかに依存する。

本発明は、単回投与免疫に適切なマイコプラズマ・ニューモニエ（Mycoplasma pneumoniae）に対するワクチンを提供する。本発明のワクチンは、バクテリンの免疫原性を増強し、それによって単回投与で防御免疫を誘発するアジュバント混合物を含む。

ワクチンは、当該分野で標準的な方法によって、新鮮に回収された培養物から調製されてよい（例えば、米国特許第５,３３８,５４３号または米国特許第５,５６５,２０５号、および以下の実施例２を参照のこと）。すなわち、生物体は、ＰＰＬＯ（プレウロニューモニエ様生物（pleuropneumonia-like organism））完全培地［Difco. Laboratories］等の培養培地中で増殖され得る。この生物体の増殖は、色調変化単位（color changing units）（ＣＣＵ）を決定するような標準的技術によってモニターされ、十分高い力価が達成されたときに回収される。このストックは、処方のためにワクチン中に入れられる前に、さらに濃縮される、または従来の方法で凍結乾燥されてもよい。Thomasら、Agri-Practice，Vol.７ No.５，２６〜３０頁に記載される方法のような他の方法を使用してもよい。

本発明のワクチンは、アジュバント混合物および１またはそれ以上の医薬上許容される担体と組み合わされた不活化マイコプラズマ・ハイオニューモニエバクテリンを含む。使用に適した担体としては、水性媒体、例えば、生理食塩水、リン酸緩衝化生理食塩水、最小必須培地（ＭＥＭ）、またはＨＥＰＥＳ緩衝液を有するＭＥＭが含まれる。

本発明のワクチン組成物における使用のためのアジュバント混合物は免疫応答を増強し、代謝性オイル（例えば不飽和テルペン炭化水素またはその水素化生成物、好ましくはスクアラン（２，３，１０，１５，１９，２３−ヘキサメチルテトラコサン）またはスクアレン）とポリオキシエチレン−ポリオキシプロピレンブロックコポリマーの混合物とのアクリル酸ポリマーの混合物を含む。このようなアクリル酸ポリマーは、ホモポリマーであってもまたはコポリマーであってもよい。アクリル酸ポリマーは好ましくは、カルボマーである。カルボマーは商品名カルボポール（Carbopol）で市販されている。アクリル酸ポリマーは、例えば、米国特許第２,９０９,４６２号および同第３,７９０,６６５号に記載されており、その内容を出典明示により本明細書の一部とする。ポリオキシエチレン−ポリオキシプロピレンブロックコポリマーは、固体および液体成分を懸濁することを補助する、界面活性剤、好ましくは液体界面活性剤である。界面活性剤は、商品名プルロニック（Pluronic）（登録商標）でポリマーとして市販されている。好ましい界面活性剤は、ポロキサマー４０１であって、これはプルロニック（登録商標）Ｌ１２１の商品名で市販されている。

免疫原性の刺激性アジュバント混合物は代表的に、本発明のワクチン組成物中に、ｖ／ｖ量として約１％〜２５％、好ましくは約２％〜１５％、さらに好ましくは約５％〜１２（ｖ／ｖ）％の量で存在する。アジュバント混合物使用の量およびアジュバントの２つの成分の比は、他のバクテリンまたは精製トキソイドの添加に依存して変化し得る。このアジュバント混合物は一般に、水性媒体中にエマルジョンとして処方された、代謝性オイルと、アクリル酸ポリマーと、ポリオキシエチレン−ポリオキシプロピレンブロックコポリマーとを含む。

このアジュバント混合物において代謝性オイルおよびアクリル酸ポリマーは、それぞれ、約１０〜１５０ｍＬ／Ｌおよび約０.５〜１０ｇ／Ｌの範囲の量で存在してもよい。このアジュバント混合物の好ましい態様において、代謝性オイルおよびポリオキシエチレン−ポリオキシプロピレンブロックコポリマー成分の混合物は、スクアランおよびプルロニック（登録商標）Ｌ１２１（ポロキサマー４０１）の混合物であって、これは約５０〜１００ｍＬ／Ｌの量で存在してもよく、そしてカルボキシメチレンポリマーは、カルボポール９３４Ｐ（Carbomer ９３４Ｐ）であって、約２ｍＬ／Lの量で存在してもよい。典型的には、このアジュバント混合物は、アクリル酸ポリマーを代謝性オイル／ポリオキシエチレン−ポリオキシプロピレンブロックコポリマー混合物に対して約１：２５〜１：５０の比で含む。

好ましいアクリル酸ポリマーは、ポリアリルスクロースとアクリル酸架橋したポリマーであるカルボポール９３４Ｐ ＮＦおよび９４１ ＮＦとしてB.F.Goodrichによって市販されるものであって、化学式（ＣＨ_２ＣＨＯＯＯＨ）_ｎを有する。これらのポリマーは、水性担体とともに適切に処方する水性ゲルを形成する。好ましいポリオキシエチレン−ポリオキシプロピレンブロックコポリマーはプルロニック（登録商標）Ｌ１２１、Ｌ６１、Ｌ８１またはＬ１０１としてＢＡＳＦから市販される非イオン性界面活性剤である。

不活化マイコプラズマ・ハイオニューモニエバクテリンの免疫量と；細菌性抗原および／またはウイルス抗原から選択された他のワクチン成分と；医薬上許容される担体との組み合わせに関する、単回投与後にマイコプラズマ・ハイオニューモニエからの防御免疫を誘発する、本発明のワクチン組成物において、このワクチン組成物はさらに、アジュバントまたはアジュバント混合物を含み、これが単一でまたは組み合わされて、細胞媒介性免疫および局所（分泌型ＩｇＡ）免疫を提供する。これらのアジュバントまたはアジュバントは、例えば、サポニン、例えば、クイル（QUIL）（登録商標）Ａ；サイトカイン、例えばＩＬ−１２およびＩＬ−１８および局所（分泌型ＩｇＡ）免疫；水酸化アルミニウム、代謝性オイル、ポリオキシエチレン−ポリオキシプロピレンブロックコポリマーおよび水中油型エマルジョンの形態のアクリル酸ポリマー、エチレンマレイン酸コポリマー；別のアジュバントを有するアクリル酸ポリマー、DEAEデキストラン、ミコバクテリア（放線菌）細胞壁由来アジュバントなどのアジュバントからさらに選択されてもよい。本発明のこの組成物における他のワクチン成分としては、１またはそれ以上の病原体（このような病原体の１またはそれ以上の株、タイプ、血清型などを含む）、例えば、Haemonphilus parasuis、Pasteurella multiocida、Streptococcum suis、Actinobacillus pleuropneumoniae、Bordetella bronchiseptica、Salmonella choleraesuis、Erysipelothrix rhusiopathiae、レプトスピラ属に由来する、不活化バクテリンまたは精製トキソイドを含む細菌抗原、ならびにウイルス抗原（このような病原体の１またはそれ以上の株、タイプ、血清型などを含む）、例えば、ブタインフルエンザウイルス（ＳＩＶ）、ブタ繁殖呼吸症候群ウイルス（ＰＲＲＳＶ）およびブタサーコウイルス（ＰＣＶ）を挙げることができる。本発明の他の態様では、他のワクチン成分としては、ＳＩＶ；Haemonphilus parasuis；ＰＲＲＳＶおよびＰＣＶからなる群；ＳＩＶおよびErysipelothrix rhusiopathiaeからなる群；Pasteurella multiocidaおよびBordetella bronchisepticaからなる群より選択される１またはそれ以上の抗原が挙げられる。本発明のなお別の態様では、本発明の他のワクチン成分は、ＳＩＶから選択される場合、ＳＩＶ−Ｈ１Ｎ１株、Ｈ１Ｎ２およびＳＩＶ−Ｈ３Ｎ２株からの選択が挙げられる。

本発明のワクチンは、筋肉内、皮下、経鼻、腹腔内、または経口の経路によって、好ましくは筋肉内または皮下の経路によって投与されてよい。

本発明のワクチンは一般に、不活化マイコプラズマ・ハイオニューモニエと、代謝性オイルと、ポリオキシエチレン−ポリオキシプロピレンブロックコポリマーと、アクリル酸ポリマーとを水中油型エマルジョンの形態で含む。このワクチンは好ましくは、アクリル酸ポリマーを０.５〜１０ｇ／Ｌの範囲内の濃度で含んでいる。ワクチンは好ましくは、代謝性オイルを２〜６ｍＬ／Ｌの範囲内の濃度で含む。ワクチンは好ましくは、ポリオキシエチレン−プロピレンブロックコポリマーを１〜３ｍＬ／Ｌの範囲内の濃度で含む。

単回投与のために、当ワクチンは好ましくは、約１×１０^８〜３×１０^１１ＭＨＤＣＥ／ｍＬ、好ましくは約１×１０^９〜３×１０^９ＭＨＤＣＥ／ｍＬに相当する量のマイコプラズマ・ニューモニエバクテリンを含む。約１〜５ｍＬ、好ましくは２ｍＬが動物１匹あたりに、筋肉内、皮下、または腹腔内に投与され得る。１〜１０ｍＬ、好ましくは２〜５ｍＬが経口または経鼻的に投与され得る。

以下の実施例は、その範囲を限定することなく本発明をさらに例示することを意図している。

実施例１
マイコプラズマ・ハイオニューモニエバクテリン
ワクチン組成物の調製
（ウイルスストックの説明）マイコプラズマ・ハイオニューモニエは、多数の容易に利用可能な供給源から得ることができる。一の態様では、マイコプラズマ・ハイオニューモニエのＰ−５７２２−３株を用いてもよい。この培養物は、C.Armstrong，Purdue University，West Lafayette，Indianaから入手した。マイコプラズマ・ハイオニューモニエの培養物の受け取り後、これをマイコプラズマ・ハイオニューモニエのブロスで７回継代してマスターシードを確立した。

（細胞培養）Bacto PPLO粉末、酵母エキス、グルコース、Ｌ−システイン塩酸塩、アンピシリン、酢酸タリウム、フェノールレッド、消泡剤、正常滅菌ブタ血清および水を含む培地中で、１８〜１４４時間にわたってマイコプラズマ・ハイオニューモニエを増殖させた。不活化のために、バイナリーエチレンイミン（ＢＥＩ）を、発酵容器内の産生培養物に添加する。ｐＨを７.４に調節し、次いで従来の手順に従って回収して、マイコプラズマ・ハイオニューモニエバクテリンを得る。

（ワクチン組成物の調製）
（用いられる防腐剤の組成および割合）収集したバクテリンを、それぞれ０.０１％および０.０７％以下のチメロサールおよびエチレンジアミン四酢酸・四ナトリウム塩（ＥＤＴＡ）の添加によって保存する。アンピシリン（米国薬局方）は、増殖培地中に０.２５０グラム／リットルで存在する。残留アンピシリン濃度は、収集液の体積に依存して最終生成物中で変化するが、最終生成物の残留アンピシリンの濃度は３０μｇ／ｍＬを超えない。

（この生成物の標準化）
マイコプラズマ濃縮物をＤＮＡ蛍光アッセイによって定量する。

１またはそれ以上のテルペン炭化水素を含む代謝性オイルとポリオキシエチレン−ポリオキシプロピレンブロックコポリマーの混合物、例えば、スクアラン／プルロニック Ｌ１２１混合物は、１０ｇの塩化ナトリウム、０.２５ｇの塩化カリウム、２.７２二塩基性リン酸ナトリウム、０.２５一塩基性リン酸カリウム、２０ｍＬプルロニック Ｌ１２１（BASF Corporation）、４０ｍＬスクアラン（Kodak）、３.２ｍＬ Tween ８０を９００ｍＬの精製水に溶解して１０００ｍＬにすることによって調製される。混合後、この成分をオートクレーブに付してもよい。次いで、この混合物を安定なエマルジョンが形成されるまでホモジナイズする。ホルマリンを０.２％の最終濃度まで添加してもよいし、またはチメロサールを１：１０,０００の最終濃度まで添加してもよい。

（シリアルをつくるための単位の組み立て）
満足なマイコプラズマ・ハイオニューモニエ濃縮物を無菌的にアジュバント、防腐剤および希釈剤と合わせて、撹拌装置を備えた無菌容器中にいれて３０分以上混合する。

シリアルのｐＨを７.０±０.２に調節する
ＭＨＤＣＥ＝マイコプラズマ・ハイオニューモニエ ＤＮＡ細胞等価物

（最終容器の充填および密閉の方法および技術）
この生成物を、２００〜５００ミクロンの滅菌フィルターエレメントを通じて全体的に濾過して、充填操作のために指定された室内で、９ＣＦＲ１１４.６に明記された条件下で滅菌最終容器中に充填しうる。このガラス容器またはプラスチック容器を、ゴム栓で閉じて、アルミニウムのシールで圧着密閉する。各々２.０ｍＬの用量は、２×１０^９個以上のマイコプラズマ・ハイオニューモニエＤＮＡ細胞等価物を含む。

（効力についての試験）完成した生成物のバルクまたは最終容器サンプルは、以下のように効力を試験することができる：
効力試験のためのアッセイ法：Harlan Sprague Dawleyまたは他の許容される供給業者からの１つの搬送物のうち６〜７週齢のICR雌性マウスを用いる。未知および参照のバクテリンを用いる免疫のためには各々最低２０匹のマウスが必要である。最低５匹のマウスを非接種対照としておいておく。試験バクテリンおよび参照バクテリンを個々に完全に混合する。２５ゲージで５／８インチの針を取り付けた滅菌の使い捨てシリンジを用いて、宿主動物用量の十分の一（０.２ｍＬ）をマウスの鼠径部に皮下接種する。各群のマウスを１４日間、個々の単位として飼育して、食物および水には自由に接近可能にさせる。次いで各々のマウスを麻酔する。麻酔されたマウスをあおむけに置く。片手で頭を下に保ち片方の前脚を体から離して伸ばさせる。円刃刀を用いて、伸ばした前脚と胸部との間で、皮膚切開を約１／２インチ長行い、上腕動脈を切断する。針のない３.０ｍＬのシリンジを用いて、切れ目にたまった血液を収集する。この血液を表示付の試験管に放出させて凝固させる。この凝固した試験管を１,０００×ｇで遠心分離して、凝血塊から血清を分離する。試験するまで個々の血清を−２０℃以下で保管する。

（血清学的試験）
ＥＬＩＳＡ手順を用いて、参照バクテリンおよび／または未知のバクテリンに対するマウスの抗体応答を測定する。DynatechのDisposable Immulon II Flat-Bottom Microtiter Platesまたは等価のもの、およびELISA Plate Readerを用いて、ＥＬＩＳＡ手順を行なう。

（試験試薬）
リン酸緩衝化生理食塩水−ツィーン（Tween）（ＰＢＳＴ）（５Ｎ ＮａＯＨまたは５Ｎ ＨＣｌを用いてｐＨを７.２〜７.４に調整）

グリシン緩衝化生理食塩水（ＧＢＳ）（Glycine Buffered Saline）（５Ｎ ＮａＯＨまたは５Ｎ ＨＣｌを用いてｐＨを９.５〜９.７に調整）

陽性対照血清：陽性対照血清は、マイコプラズマ・ハイオニューモニエバクテリンを用いてワクチン接種したマウスからの血清のプールである。

（結合体および基質）
アフィニティー精製した抗マウスＩｇＧペルオキシダーゼ標識結合体は、Kirkegaard and Perry Laboratories, Inc.（カタログ番号０７４−１８０２）から入手する。結合体の最適希釈を決定するための手順は以下に詳述する。ペルオキシダーゼ基質溶液（Peroxidase Substrate Solutions）（ＡＢＴＳ）は、Kirkegaard and Perry, Inc.から入手する。
結合体の滴定：１０ｍＭ ＧＢＳに希釈した２０μｇ／ｍＬのマイコプラズマ・ハイオニューモニエの全細胞抗原を１ウェルあたり１００μl用いて、Immulon II Flat-Bottom Plateをコーティングする。プレートを３７℃＋２℃で１時間以上インキュベートして、２〜７℃に少なくとも１８時間以上、１週間以内移す。使用の前にプレートをＰＢＳＴで３回洗浄し、このとき各洗浄の間で浸漬時間を１分とり、タッピングして乾燥させる。ＰＢＳＴでの１：４０希釈の陽性対照血清を調製して、この希釈された陽性血清（１００μＬ／ウェル）をプレートのウェルの半分に添加する。ＰＢＳＴをもう半分のウェルに添加する。プレートを室温で１時間インキュベートして、その後にこのプレートを３回洗浄する。結合体化した血清をＰＢＳＴを用いて２倍に連続希釈するが、これは１：１００希釈で開始して１：１０,２４０希釈で終わる。各々の結合体希釈の１００μＬを陽性血清の４つのウェルに、そしてＰＢＳＴの４つのウェルに添加して、室温で３０分間反応させる。このプレートを４回洗浄して、１００μlのペルオキシダーゼ基質溶液（ABTS）を各ウェルに添加する。このプレートをＴλ＝４５０の二重波長設定で読み取る。ＰＢＳＴ対照の値を陽性対照血清の値から差引いた場合に、陽性対照血清について０.８５０〜１.０５０の読み取りが得られる結合体の希釈を選択する。

（試験抗原）
マイコプラズマ・ハイオニューモニエ抗原は、全細胞調製物であって、Fort Dodge Animal Healthから供給される。

ＥＬＩＳＡは以下のとおり行なわれる：Dynatech Immulon II Flat-Bottom Microtiter Platesを用いる。１バイアルの凍結乾燥マイコプラズマ・ハイオニューモニエ全細胞抗原をグリシン緩衝化生理食塩水（ＧＢＳ）を用いて１０ｍＬに復元する。この復元したマイコプラズマタンパク質の濃度は２０μｇ／ｍＬである。次いで、１００μl（２μｇ）の希釈抗原をプレートの全ウェルに添加する。このプレートを３７℃±２℃で１時間以上インキュベートし、次いで最低１８時間かつ最大１週間、２〜７℃に移す。このプレートをＰＢＳＴで３回洗浄し、このとき各洗浄の間で１分浸漬し、次いでタッピング乾燥させる。血清をＰＢＳＴで１：４０に希釈する。陽性対照血清をあらゆるプレートに四連で入れる。１ウェルあたりのサンプル溶液は１００μlである。連続試験血清サンプルおよび参照血清サンプルを同じプレートの上で二連で試験する。このプレートを室温で１時間インキュベートして、ＰＢＳＴを用いて３回洗浄する。抗マウスＩｇＧペルオキシダーゼ標識結合体（Kirkegaard and Perry）をＰＢＳＴで希釈して、全てのウェルに１００μl加え、このウェルを室温で３０分間インキュベートさせる。このプレートをＰＢＳＴを用いて４回洗浄する。１００μlのペルオキシダーゼ基質溶液（ＡＢＴＳ）を全てのウェルに添加して、ＰＢＳＴ対照ウェルを機械がブランクとしている場合に、陽性血清対照が０.８５０〜１.０５０のＯＤ_４０５（４５０）に達するまでこのプレートをインキュベートする。このプレートを読み取るが、これはＰＢＳＴウェルをブランクとしている。試験を確証するために、参照バクテリンを接種されたマウスの血清は、０.５００の最小平均値を生じなければならず、そしてワクチン接種されていない対照マウスの血清は０.１００の最大平均値を超えてはならない。あるいは、参照バクテリンを接種されたマウスの血清の平均値と非ワクチン接種の対照マウスの血清の平均値との差は、０.４００以上でなければならない。

連続ワクチン接種、参照ワクチン接種および対照についての平均値を以下のように算出して評価する：良好とみなされるためには、試験バクテリンは参照以上の平均中央光学密度を示さなければならない。あるいは、片側スチューデントＴ検定を用いた場合は、試験バクテリンは参照バクテリンよりも有意に（ｐ≦０.０５信頼水準）低くてはならない。１.６８６以上の算出された任意のＴ値は、参照バクテリンと試験バクテリンとの間で有意な差を示し、試験バクテリンが却下される。１.６８６未満の算出された任意のＴ値は、満足なシリアルを示す。生成物の効率とは関連のない任意の理由のために不満足であることが試験によって決定された任意の試験バクテリンを再試験して、最初の試験を無効であるとみなす。

実施例２
（試験ワクチン）
試験のためのワクチンを、１またはそれ以上のテルペン炭化水素およびポリオキシエチレン−ポリオキシプロピレンブロックコポリマーを含む代謝性オイルの混合物（スクアラン／プルロニック Ｌ１２１混合物）の５％、ならびに０.２％アクリル酸ポリマー（カルボポール）をアジュバントとして、および１用量あたり２×１０^９個のエム・ハイオニューモニエ（M．hyopneumoniae）ＤＮＡ細胞等価物（ＭＨＤＣＥ）を用いて、実施例１に詳述されている手順に従って調製した。

実施例３
この試験は、３週齢で実施例２のワクチンの１用量のワクチン接種によって誘導されたブタにおける４ヶ月の免疫期間（duration of immunity）（ＤＯＩ）を実証するために計画した。

この研究のために、２つの別の動物実験を行なった。両方の実験における全てのブタは、ワクチン接種の時点で血清陰性（抗体力価＜１０）であって、このことはこの動物がマイコプラズマ・ハイオニューモニエに感受性であったことを示した。対照群における全てのブタはチャレンジの前に血清陰性のままであった。これによってワクチン接種されたブタにおける免疫応答がワクチンに起因しており、いかなる環境曝露にも起因していなかったことが示される。

最初の実験では、実施例２のワクチンをBoehringer Ingelheim（ＢＩ）が製造した市販の製品であるIngelvac M. hyo（登録商標）と一緒に、高レベルの病原性エム・ハイオニューモニエ（０.４×１０^６個の生物体）のチャレンジによって評価した。１８〜２１日齢の２２匹のブタに実施例２のワクチンを筋肉内（ＩＭ）接種し、そして８匹のブタにはIngelvac M．hyo（登録商標）［シリアル２７１ ０３２］を接種した。２２匹のブタをチャレンジの対照として、１０匹のブタを非チャレンジの対照として用いた。ワクチン接種群およびチャレンジ対照群のブタを、ワクチン接種後４ヶ月で病原性エム・ハイオニューモニエを用いてチャレンジした。実施例２のワクチンをワクチン接種されたブタは、平均の肺病変が１５.９％であり、チャレンジ対照群のブタは平均の肺病変が１９.６％であった。Iowa State University（アイオワ州立大学）（ＩＳＵ）の推奨よりも高い用量でチャレンジされていたにもかかわらず、実施例２のワクチンをワクチン接種された群での平均肺病変は、対照群よりも少なかった。ただしその差は有意ではなかった（ｐ＝０.１９）。同様に、市販品であるIngelvac M．hyo（登録商標）を、同じ用量のチャレンジを用いて同じ群の動物において評価した場合、やはり同様のレベルの肺病変が観察された（１４.６％）。また、Ingelvac M．hyo（登録商標）ワクチン接種群と対照群（ｐ＝０.２７）との間、そしてIngelvac M．hyo（登録商標）ワクチン接種群と実施例２のワクチンをワクチン接種された群との間にも有意な差はなかった。

第二の実験では、実施例２のワクチンを、ワクチン接種後４ヶ月の時点で、ＩＳＵによって示唆されるレベル（１.０×１０^６個の生物体）での病原性エム・ハイオニューモニエチャレンジによって評価した。２３匹のブタを２１日齢の時点で１用量のワクチンでワクチン接種し、２５匹のブタをチャレンジ対照として、７匹のブタを非チャレンジ対照として用いた。ワクチン接種した群およびチャレンジ対照群のブタを、ワクチン接種後４ヶ月で病原性エム・ハイオニューモニエを用いてチャレンジした。対照群は平均の肺病変が１０.４％で、ワクチン接種された群は平均の肺病変が５.５％であった。ワクチン接種群と対照群との間に有意な差があった（ｐ＝０.０３１）。これによって、実施例２のワクチンは、防御免疫を刺激するのに有効であり、これは３週齢のブタに単回用量のワクチン接種後、少なくとも４ヶ月持続し得るということが示される。

この２つの実験における実施例２のワクチンに関するデータを組み合わせて解析した場合、ワクチン接種群の平均の肺病変は対照群の肺病変よりも有意に低かった。

結論として、実施例２のワクチンは、３週齢のブタにおける１用量のワクチン接種後４ヶ月での病原性エム・ハイオニューモニエチャレンジに対する防御免疫を誘導する。

（実験データ）
２つの別個の実験をこの研究において行なった。実験１では、Microsoft Excelの無作為化プログラムを用いて、６７匹のブタを４つの群に割り当てた。２４匹のブタを、１８〜２１日齢の時点で実施例２によって調製したワクチンの１用量を用いて筋肉内（ＩＭ）にワクチン接種した。２４匹のブタをチャレンジの対照として、１０匹のブタを非チャレンジの対照として用いた。９匹のブタには市販品Ingelvac M．hyo（登録商標）［シリアル２７１ ０３２、Boehringer Ingelheim（BI）製造］を表記の指示どおりＩＭ（筋肉内）ワクチン接種した。５匹のブタ（２匹のブタは実施例２のワクチンをワクチン接種、１匹はBIワクチンを接種、そして２匹は対照）が、ワクチン接種とは無関係の理由でワクチン接種の保持期間に死んだ。ワクチン接種した群およびチャレンジ対照群における残りのブタを、ワクチン接種の４ヵ月後に、１４ｍＬの病原性エム・ハイオニューモニエ（１.４×１０^６個の生物体）を用いてチャレンジした。４つ全ての群においてブタをチャレンジ後３０日で安楽死させて、実験における各ブタについて肺病変をスコア付けした。

第二の実験では、２５匹のブタを２１日齢の時点で、実施例２によって調製したワクチンの１用量を用いて筋肉内（ＩＭ）にワクチン接種した。２５匹のブタをチャレンジの対照として、１０匹のブタを非チャレンジの対照として用いた。ワクチン接種保持期間に、２匹のブタがワクチン接種とは無関係の理由で死に、１匹のブタが誤って販売された。ワクチン接種した群およびチャレンジ対照群における残りのブタを、ワクチン接種の４ヵ月後に、１０ｍＬの病原性エム・ハイオニューモニエ（１.０×１０^６個の生物体）を用いてチャレンジした。２匹のブタが、チャレンジ後の観察期間中にワクチン接種／チャレンジとは無関係の理由で死んだ。３つ全ての群において残りのブタをチャレンジ後３０日で安楽死させて、実験における各ブタについて肺病変をスコア付けした。

（ワクチン接種）
ワクチン接種群における各ブタには２ｍＬ用量の試験ワクチンを首の横のＩＭ（筋肉内）に与えた。

（チャレンジおよび剖検）
病原性エム・ハイオニューモニエチャレンジストック、凍結（−７０℃）肺ホモジネートは、Iowa State University（ＩＳＵ）のEileen Thacker博士によって調製された。このチャレンジストックは純粋であることが確認されており、１ｍＬあたり約１０^７個のエム・ハイオニューモニエ生物体を含んでいた。推奨されるチャレンジ用量は１０ｍＬの１：１００希釈ストック（すなわち、１.０×１０^６個の生物体）である。

最初の実験において、ワクチン接種群およびチャレンジ対照群におけるブタを１４ｍＬの１：１００希釈されたストック（すなわち、１.４×１０^６個の生物体）を用いてチャレンジした。第二の実験におけるブタを、推奨されるとおり１０ｍＬの１：１００希釈されたストック（すなわち、１.０×１０^６個の生物体）を用いてチャレンジした。

チャレンジの日に、温水の中でホモジネートを急速に解凍して、滅菌のエム・ハイオニューモニエ増殖培地を用いてＩＳＵによる推奨に従って希釈した。５０ｍｇ／ｍＬキシラジン、５０ｍｇ／ｍＬケタミンおよび１００ｍｇ／ｍＬテラゾールからなるXylazine−Katamine−Telazol^TMの混合物を用いてブタを鎮静させた。この麻酔用混合物を体重１ポンドあたり０.０１〜０.０２ｍＬで筋肉内（ＩＭ）に与えた。各々のブタに単回の１４ｍＬ（第一の実験）または１０ｍＬの用量（第二の実験）のチャレンジ物質を気管内に投与した。ニードルの位置が正しいことを確認するために、チャレンジ用量の投与の前にシリンジに空気を吸引した。ワクチン接種されていない非チャレンジ対照のブタは、別の部屋で飼育してチャレンジはしなかった。

チャレンジ後（ＤＰＣ）３０日で、全てのブタを安楽死させた。肺を取り出して、試験群について情報のない個人が肺病変全体をスコア付けした。

（サンプル収集および試験）
競合的ＥＬＩＳＡキット（DAKO Co.が製造）によって検出されるエム・ハイオニューモニエに対する血清抗体について、ワクチン接種の日（０ ＤＰＶ）、ワクチン接種後１ヶ月（１ ＭＰＶ）、４ ＭＰＶ／０ ＤＰＣ、および３０ ＤＰＣの時点で、全てのブタから血液サンプルを収集した。血清サンプルは試験する前は−２０℃で保管した。

（データ解析）
ワクチン接種群と非ワクチン接種群との間で分散分析（ANOVA）によって肺病変スコアを比較した。肺スコアをアークサイン変換して、残差の分布を改善した。

（結果および考察）
（血清学）
両方の実験における全てのブタを、市販の競合的ＥＬＩＳＡキットによって、全ての試験について１：１０血清希釈を用い、エム・ハイオニューモニエに対する血清抗体について試験した。全てのブタが、ワクチン接種の時点で血清陰性（抗体力価＜１０）であって、このことはこの動物がエム・ハイオニューモニエに対して感受性であったことを示す。対照群における全てのブタは、チャレンジの前に血清陰性のままであった。これによって、ワクチン接種されたブタにおける免疫応答がワクチンに起因しており、いかなる外部環境への曝露にも起因するものでなかったことが示される。ワクチン接種された群における全てのブタ、およびチャレンジ対照群におけるほとんどのブタ（実験１における２２匹のブタのうち１８匹、および実験２における２５匹のブタのうち１５匹）が、チャレンジの後にエム・ハイオニューモニエに対して抗体陽転（セロコンバート）したが、非チャレンジ動物の全てが血清陰性のままであった。このことは、このチャレンジがエム・ハイオニューモニエ特異的であったことを意味する。この試験動物の血清学的状態を表１にまとめている。

（第一の実験における免疫原性試験）
実施例２のワクチンが、ワクチン接種後４ヶ月で、ＩＳＵによって推奨されるよりも高レベルのチャレンジに対して防御できる強力な免疫を刺激し得るか否かを決定するために、第一の実験を行なった。この実験ではまた、ワクチン接種の４ヶ月後に防御免疫を刺激する能力について、実施例２のワクチンと市販のIngelvac M．hyo（登録商標）とを比較した。

FDAH Suvaxyn MH−Oneを用いてワクチン接種した２２匹のブタおよび、認可された製品であるIngelvac M．hyo（登録商標）（シリアル２７１,０３２）を用いた８匹のブタを、ブタ１匹あたり１.４×１０^６生物体というチャレンジ物質を用いてチャレンジした（ブタ１匹あたり１.０×１０^６個の生物体がＩＣＵによって推奨される、セクション５．５を参照のこと）。２２匹のブタをチャレンジ対照として、１０匹のブタを非チャレンジ対照として用いた。肺病変の割合を表２にまとめる。実施例２のワクチンでワクチン接種されたブタは、１５.９％の平均肺病変を有し、チャレンジされた対照ブタは１９.６％の平均肺病変を有した。実施例２のワクチンをワクチン接種された群における肺病変は、そのブタをさらに高用量のエム・ハイオニューモニエでチャレンジした場合でも対照よりも少なかった。しかし、その差は有意ではなかった（ｐ＝０.１９）。同様に、市販の製品であるIngelvac M．hyo（登録商標）を同じ用量のチャレンジで同じ群の動物で評価した場合、また同様のレベルの肺病変が得られた（１４.６％）。Ingelvac M．hyp（登録商標）ワクチン接種群と対照群との間（ｐ＝０.２７）、そしてIngelvac M．hyp（登録商標）ワクチン接種群と実施例２のワクチンを用いてワクチン接種した群との間（ｐ＝０.８８）に有意な差はなかった。

実施例２のワクチンを受けた群において、病変に有意な数字上の減少は記録されなかったが、この実験で得られたデータによって、この実験で用いたさらに高いチャレンジ用量（１.４×１０^６個の生物体）は、市販のIngelvac製品によって刺激されたブタの免疫に対してさえおそらく圧倒的であったということが示唆される。このチャレンジレベルはおそらく、２０〜２５匹の動物の群サイズを用いるワクチン接種／チャレンジ研究の評価には適切ではないが、さらに大きい群サイズを用いれば、有意さを証明することが可能である。

（第二の実験における免疫原性試験）
実験２では、ワクチン接種した群およびチャレンジ対照群におけるブタを、４ヶ月ＤＯＩを実証するために、ワクチン接種後４ヶ月で、ＩＳＵによって推奨されるチャレンジ用量（１.０×１０^６個の生物体）を用いて評価した。肺病変の割合を表３にまとめている。この対照群は、１０.４％の平均肺病変を有した。ワクチン接種群は５.５％の平均肺病変を有した。ワクチン接種群と対照群との間に有意な差がある（ｐ＝０.０３１）。これによって、実施例２のワクチンは、３週齢のブタにおいて単回用量のワクチン接種後少なくとも４ヶ月持続し得る防御免疫を刺激するのに有効であるということが示される。

（両方の実験の組み合わせた結果の評価）
２つの実験は有意に異なるが、群に対する実験の影響は有意ではなかった。群の影響の大きさは、２つの実験の間で同様であった。従って、群の影響は、実験を考慮することなく評価できる。フルモデル（full model）の解析によって、群と実験との間の相互作用は有意でないことが示されたので、これによって群の影響は両方の実験で同じであるという概念が補強され、２つの実験からのデータを１つの解析に組み合わせることが正当化される。従って、２つの実験由来の実施例２のワクチンに関するデータを組み合わせて、肺病変についてのアークサイン変換された変数を、独立した変数として群および実験を用いて解析した場合（還元モデル（reduced model））、この群は統計学的に有意である（ｐ＝０.０１３）。

^＊ブタをブタ１匹あたり１.４×１０^６個の生物体でチャレンジした（ＩＳＵ推奨用量はブタ１匹あたり１.０×１０^６個の生物体）。
^＊＊FDAHワクチン群と対照群との比較
^＊＊＊BIワクチン群と対照群との比較
^＊＊＊＊BIワクチン群とFDAH群との比較

^＊ブタをＩＳＵ推奨用量を用いてチャレンジした（ブタ１匹あたり１.０×１０^６個の生物体）。
^＊＊FDAHワクチン群と対照群との比較

実施例４
（単回用量投与６ヶ月後の病原性チャレンジに対する本発明のワクチン組成物によって誘導される長期免疫の評価）
実施例１および２に記載されるのと本質的に同じ手順を用い、そして以下に示される量を用いて、試験ワクチンＡを調製した。

シリアルのｐＨを７.０±０.２に調節
ＭＨＤＣＥ＝マイコプラズマ・ハイオニューモニエ ＤＮＡ細胞等価物

（まとめ）
３３匹の２１日齢のブタをこの評価に入れた。２０匹のブタを、３週齢の時点でワクチンＡの１用量を用いて筋肉内（ＩＭ）にワクチン接種した。１０匹のブタを非ワクチン接種対照として、３匹のブタを非チャレンジの環境対照として使用した。

全てのブタは、ワクチン接種の時点で血清陰性（抗体力価＜１０）であって、このことは、この動物がエム・ハイオニューモニエに対して感受性であったことを示した。対照群の全てのブタはチャレンジの前に血清陰性のままであった。これによって、ワクチン接種されたブタにおける免疫応答は、ワクチンに起因しており、環境への曝露に何ら起因するものではなかったということが示される。

ワクチン接種６ヵ月後、２０匹のワクチン接種ブタおよび１０匹の非ワクチン接種の対照ブタに病原性エム・ハイオニューモニエ（ブタ１匹あたり１.０×１０^６個の生物体）をチャレンジした。３匹のブタを非チャレンジ対照として用いた。ワクチン接種したブタは、３.６％の平均肺病変スコアを有し、そしてチャレンジされた対照ブタは１４.６％の平均肺病変スコアを有した。ワクチン接種群における肺病変は、対照群よりも有意に少なかった（ｐ＝０.０２１５）。

この評価で得られたデータによって、試験ワクチンＡは、単回用量のワクチン接種後６ヶ月の時点で病原性エム・ハイオニューモニエチャレンジに対して長期の防御免疫を誘導したことが示される。

（実験のデザイン）
３３匹の２１日齢のブタを同腹の仔ごとにMicrosoft Excelの無作為化プログラムを用いて３つの群（ワクチン接種群、チャレンジ対照群および非チャレンジ環境対照群）に無作為に割り当てた。２０匹のブタを３週齢で、１用量の試験ワクチンＡを用いて筋肉内にワクチン接種した。１０匹のブタをチャレンジ対照として、３匹のブタを非チャレンジの環境対照として用いた。ワクチン接種した群およびチャレンジ対照のブタに、ワクチン接種後６ヶ月で、ブタ１匹あたり病原性エム・ハイオニューモニエの培養物（１.０×１０^６個の生物体）の１０ｍＬをチャレンジした。３匹の非ワクチン接種ブタを非チャレンジ対照として用いた。このチャレンジしたブタおよび非チャレンジ対照を、チャレンジ後２６日で安楽死させて、各々のブタについて肺病変をスコア付けした。

ワクチン接種群における各々のブタに、１回の２ｍＬ用量の試験ワクチンを首の横のＩＭ（筋肉内）に与えた。

（チャレンジおよび剖検）
病原性エム・ハイオニューモニエチャレンジストック、凍結（≦−７０℃）肺ホモジネートは、Iowa State University（ＩＳＵ）のEileen Thacker博士によって調製された。このチャレンジストックは純粋であることが確認され、１ｍＬあたり約１０^７個のエム・ハイオニューモニエ生物体を含んだ。

ブタを１０ｍＬの１：１００希釈のストック（すなわち、１.０×１０^６個の生物体）を用いてチャレンジした。

チャレンジの日に、温水の中でホモジネートを急速に解凍して、滅菌のエム・ハイオニューモニエ増殖培地を用いてＩＳＵによる推奨に従って希釈した。５０ｍｇ／ｍＬ キシラジン、５０ｍｇ／ｍＬ ケタミンおよび１００ｍｇ／ｍＬ テラゾールからなるXylazine−Katamine−Telazol^TMの混合物を用いてブタを鎮静させた。麻酔混合物は、体重１ポンドあたり０.０１〜０.０２ｍＬで筋肉内に（ＩＭ）投与した。各々のブタに単回の１０ｍＬ用量のチャレンジ物質（１.０×１０^６個の生物体）を気管内に与えた。ニードルの位置が正しいことを確認するために、チャレンジ用量の投与の前にシリンジに空気を吸引した。ワクチン接種されていない非チャレンジ対照のブタは、別の部屋で飼育してチャレンジはしなかった。

チャレンジ後（ＤＰＣ）２６日の時点で、全てのブタを安楽死させた。肺を取り出して、実施例３に記載のとおり肺病変全体をスコア付けした。

（サンプル収集および試験）
競合的ＥＬＩＳＡキット（DAKO Co.が製造）によって検出される、エム・ハイオニューモニエに対する血清抗体の決定のために、ワクチン接種の日（０ＤＰＶ）、３５ＤＰＶ、−１ＤＰＣ、および２６ＤＰＣの時点で、全てのブタから血液サンプルを収集した。血清サンプルを試験する前は−２０℃以下で保管した。

（データ解析）
ワクチン接種群と対照群との間で一元分散分析（ANOVA）によって肺病変スコアを比較した。肺病変スコアをアークサイン変換して、残差の分布を改善した。肺病変スコアについての正規性の仮定は疑わしかったので、肺病変スコアおよびアークサイン変換した肺病変スコアの両方をウィルコクソン順位和検定によって解析した。有意さのレベルをp＜０.０５に設定した。ノンパラメトリックなウィルコクソン順位和検定からの結果を報告の目的で用いた。

（結果および考察）
（血清学）
全てのブタを、全ての試験について１：１０の血清希釈を用い、市販の競合的ＥＬＩＳＡキットによって、エム・ハイオニューモニエに対する血清抗体について試験した。キットの使用説明書に従って疑わしい試験結果のサンプルは、データ解析において陽性として処理した。全てのブタは、ワクチン接種の時点で血清陰性（抗体力価＜１０）であって、これによって、この動物がエム・ハイオニューモニエに対して感受性であったことが示される。対照群における全てのブタは、チャレンジの前に血清陰性のままであった。ワクチン接種後、２０匹のワクチン接種のうち１５匹（１５／２０）が、少なくとも１回エム・ハイオニューモニエに対して血清陽性になった（３５ＤＰＶおよび−１ＤＰＣで収集したサンプル）。これによって、ワクチン接種されたブタにおける免疫応答がワクチンに起因しており、外部環境への曝露に何ら起因するものではなかったことが示される。ワクチン接種された全てのブタ、およびチャレンジ対照群における１０匹のブタのうち４匹は、チャレンジの後にエム・ハイオニューモニエに対して血清陽性になったが、非チャレンジ動物の全てが血清陰性のままであった。この試験動物の血清学的状態を表４にまとめている。

（肺病変スコア）
試験ワクチンＡを用いてワクチン接種された２０匹のブタおよび１０匹の非ワクチン接種の対照ブタに、ワクチン接種後６ヶ月の時点で病原性エム・ハイオニューモニエ（ブタ１匹あたり１.０×１０^６個の生物体）をチャレンジした。３匹のブタを非チャレンジ対照として用いた。２０匹のワクチン接種のうち８匹（４０％）は、チャレンジ後、肺病変を発症しなかったが、対照群で１０匹のブタのうち肺病変を有さなかったのは１匹だけであった（１０％）。肺病変の割合を表５にまとめる。ワクチン接種したブタは、３.６％の平均肺病変スコアを有し、そしてチャレンジされた対照ブタは１４.６％の平均肺病変スコアを有した。ワクチン接種群における肺病変は、対照群よりも有意に少なかった（ｐ＝０.０２１５）。

^＊市販のキットを用い、ＥＬＩＳＡによって、エム・ハイオニューモニエに対する血清抗体について血清サンプルを試験した。
全てのサンプルを血清希釈１：１０で試験した。結果をキットの使用説明書に従って解釈した。
１：１０で疑わしいサンプルは陽性と解釈した。
^＊＊DPV＝ワクチン接種後日数
^＊＊＊DPC＝チャレンジ後日数

^＊CL＝信頼水準
^＊＊P値は１群および２群の比較からであった。

表４および５に示されるデータからわかるとおり、試験ワクチンＡは、３週齢の時点でワクチン接種されたブタでの単回投与後に６ヶ月間、病原性エム・ハイオニューモニエに対する防御免疫を誘導する。

実施例５
ブタインフルエンザウイルスワクチンは、当該分野で周知の方法によって調製できる。また、ＳＩＶ株、例えばＨ１Ｎ１およびＨ３Ｎ２もまた、当該分野で周知であって、例えば、Ames，IowaにあるUSDAのNVSLおよび他のいずれかから容易に入手可能である。これらの株は代表的には、例えば、ウシ胎仔血清、ウシ血清アルブミン、ラクトアルブミン、ヒドロシレート（hydrosylate）および炭酸水素ナトリウムのうちの１またはそれ以上を用いてふさわしいように補充されたOpti−Mem（登録商標）増殖培地を用いて、例えば、Maidin Darby Canine Kidney（MDCK）細胞株上で増殖され得る。１つの実施例では、最適なウイルス増殖を促進するために、Ｈ１Ｎ１株の増殖のための増殖培地を適切な量のトリプトースリン酸ブロス、酪酸ナトリウムおよびトリプシンでさらに補充する。そしてＨ３Ｎ２株の増殖のための増殖培地をさらに適切な量のトリプシンで補充する。収集の際、収集されたウイルス液をホルマリンで不活化してもよい。次いで、これらのワクチン株を含むＳＩＶワクチン組成物を代表的には以下のとおり処方してもよい：

３つの異なる研究を使用して、種々の画分の組み合わせの有効性を実証した。各々の研究において、適切な年齢の無作為に割り当てられたブタを３つの群、ワクチン接種群、試験されている画分についてのチャレンジ対照群、および環境対照群にわけた。

これらの研究の結果は以下のとおりであった。

（研究のまとめ−M．hyo．画分）
この動物実験は、本発明による、ブタインフルエンザワクチン、Ｈ１Ｎ１およびＨ３Ｎ２、不活化ウイルス−マイコプラズマ・ハイオニューモニエバクテリンのマイコプラズマ・ハイオニューモニエ画分の効能およびＳＩＶ画分による抗原ブロックがないことを実証するために計画された。

全てのブタがワクチン接種の時点で血清陰性（抗体力価＜１０）であって、これによって、この動物がエム・ハイオニューモニエに対して感受性であったことが示される。対照群における全てのブタは、チャレンジの前に血清陰性のままであった。これによって、ワクチン接種されたブタにおける免疫応答がワクチンに起因しており、いかなる外部環境への曝露にも起因するものでなかったことが示される。

２２匹のブタを、１週齢でＳＩＶワクチン（ワクチンＡ）を用いてワクチン接種して、最初のワクチン接種から３週後、ＭＨ／ＳＩＶワクチン（ワクチンＢ）を用いて再ワクチン接種した。２２匹のブタをエム・ハイオニューモニエチャレンジの対照として、３匹のブタを環境の対照として用いた。２回目のワクチン接種の４週後、ワクチン接種した群およびチャレンジ対照群のブタを、病原性エム・ハイオニューモニエを用いてチャレンジした。ブタをチャレンジ後２８日で安楽死させて、各ブタについて肺病変をスコア付けした。

対照群の２０匹のブタのうち１８匹（９０％）が５％より大きい肺病変スコアを発症したが、ワクチン接種群においては２１匹のブタのうち５％より大きい肺病変にスコア付けされたのは８匹（３８％）だけであった。ワクチン接種群は平均１０.２％の肺病変を有し、チャレンジ対照ブタは平均１６.９％の肺病変を有した。ワクチン接種群と対照群との間に有意な差があった（ｐ＝０.０２）。これによって、１週齢でＳＩＶワクチンをワクチン接種されたブタおよび３週間後にＭＨ／ＳＩＶワクチンをワクチン接種されたブタは、病原性エム・ハイオニューモニエチャレンジに対して防御免疫を発達させたことが示される。これはまた、ＭＨ−ＳＩＶ併用ワクチンにおいては、ＳＩＶ画分によるエム・ハイオニューモニエ画分に対する抗原ブロックの効果はないことを示す。

（研究のまとめ−ＳＩＶ Ｈ１Ｎ１画分）
この動物実験は、本発明によるブタインフルエンザワクチン、Ｈ１Ｎ１およびＨ３Ｎ２、不活化ウイルス−マイコプラズマ・ハイオニューモニエバクテリンのブタインフルエンザウイルス（ＳＩＶ）Ｈ１Ｎ１画分の効能を実証するために計画された。

全てのブタがワクチン接種の時点でＳＩＶ Ｈ１Ｎ１に対して血清陰性（抗体力価＜１０）であった。全ての対照は、チャレンジ前に血清陰性のままであったが、全てのワクチン接種されたブタはＳＩＶ−Ｈ１Ｎ１に対して抗体陽転した。これによって、チャレンジによって実証されるように、ワクチン接種されたブタにおける防御的な免疫応答がワクチンに起因しており、いかなる外部環境への曝露にも起因するものでなかったことが示される。

２５匹のブタを、１週齢でＳＩＶワクチン（ワクチンＡ）を用いてワクチン接種して、最初のワクチン接種２週後、ＳＩＶ／ＭＨＰワクチン（ワクチンＢ）を用いて再ワクチン接種した。２４匹のブタをチャレンジの対照として、５匹のブタを環境の対照として用いた。２回目のワクチン接種の３週後、ブタをチャレンジした。ブタを臨床兆候について観察して、直腸温度を、チャレンジの２日前に開始してチャレンジの５日後（５ＤＰＣ）まで毎日記録した。５ＤＰＣの時点でブタを安楽死させて、各ブタについて肺病変をスコア付けした。０ＤＰＣ、３ＤＰＣおよび５ＤＰＣで収集した鼻腔用綿棒および剖検によって収集した肺組織サンプルを用いてウイルス単離を試みた。

チャレンジの前（０ＤＰＣ）にブタから収集した鼻腔用綿棒からはウイルスは全く単離されなかった。チャレンジの後（３ＤＰＣおよび５ＤＰＣ）収集した鼻腔用綿棒から、ワクチン接種群では２５匹のうち１匹だったのに比べて、対照群においては２４匹のブタのうち１０匹からウイルスが単離された。チャレンジ後の鼻腔のウイルス排出において、ワクチン接種群と対照群との間には有意な差がある（ｐ＝０.００１１）。ウイルスはまた、２４匹の対照ブタのうち１４匹から、そして２５匹のワクチン接種ブタのうち１匹から、剖検で収集された肺組織サンプルより単離された。ワクチン接種群と対照群との間には有意な差がある（p＜０.０００１）。まとめると、チャレンジ後、ウイルスは、２４匹の対照のうち１９匹（７９％）から単離され、そして２５匹のワクチン接種のうちでは２匹しか（８％）単離されなかった。さらに、ＳＩＶ Ｈ１Ｎ１チャレンジはまた、発熱性の応答を誘発した。ワクチン接種と対照との間で全体的な発熱性応答は有意ではなかった（ｐ＝０.０７）が、対照は、ワクチン接種に比べて、２ＤＰＣで有意に高い温度上昇を有した（ｐ＝０.０３５５）。チャレンジによって誘発された臨床兆候は極めて穏やかであり、個々の兆候の発生率は、これらのデータをチャレンジ評価に用いるのが不適切なほど低かった。ワクチン接種群は、平均６.９％の肺病変スコアを有し、チャレンジ対照群は平均９.２％の肺病変スコアを有した。

まとめると、鼻腔のウイルス排出の発生率および頻度、ならびに肺組織からのウイルス単離の罹患率は、対照に比べてワクチン接種群では有意に低かった。ワクチン接種されたブタはまた、チャレンジ後発熱性応答を被ることが少なく、また対照ブタに比べて肺病変が低かった。これによってワクチン接種ブタは、ＳＩＶ Ｈ１Ｎ１チャレンジに対して防御されたことが示される。

（研究のまとめ−ＳＩＶ Ｈ３Ｎ２画分）
この動物実験は、本発明によるブタインフルエンザワクチン、Ｈ１Ｎ１およびＨ３Ｎ２、不活化ウイルス−マイコプラズマ・ハイオニューモニエバクテリンのブタインフルエンザウイルス（ＳＩＶ）Ｈ３Ｎ２画分の有効性を実証するために計画された。

全てのブタが、最初のワクチン接種の日（０ＤＰＶ１）に血清陰性（抗体力価＜１０）であるか、またはＳＩＶ Ｈ３Ｎ２に対する移行抗体（maternal antibody）が低かった。それらのブタにおけるこの低い移行抗体力価は、チャレンジの時点までに血清陰性に低下した。対照群における全てのブタはチャレンジの前に血清陰性のままであった。これによって、チャレンジによって実証されるような、ワクチン接種されたブタにおける防御的免疫応答がワクチンに起因しており、いかなる外部環境への曝露にも起因するものでなかったことが示される。

２２匹のブタを、１週齢でＳＩＶワクチン（ワクチンＡ）を用いてワクチン接種して、最初のワクチン接種から３週後、ＳＩＶ−ＭＨＰワクチン（ワクチンＢ）を用いて再ワクチン接種した。１８匹のブタをチャレンジの対照として、５匹のブタを環境の対照として用いた。ブタを臨床兆候について観察して、直腸温度を、チャレンジ３日前からチャレンジ後５日目（５ＤＰＣ）まで記録した。５ＤＰＣの時点でブタを安楽死させて、各ブタについて肺病変をスコア付けした。０ＤＰＣ、３ＤＰＣおよび５ＤＰＣで収集した鼻腔用綿棒および肺組織サンプルを用いてウイルス単離を試みた。

ＳＩＶ Ｈ３Ｎ２病原性チャレンジは、対照のブタにおいて発熱性応答を誘発した。対照の７８％が発熱したが、ワクチン接種群では１８％しか発熱しなかった。ワクチン接種群と対照との間には発熱性応答に有意な差があった（ｐ＝０.０００２）。チャレンジによって誘発された臨床兆候は軽度であって、個々の兆候の発生率は低かった。チャレンジされた対照群においては６匹のブタ（３３％）が１〜２日間咳をしたが、ワクチン接種群で咳をしたのは２匹（９.１％）だけであった。同様に、ワクチン接種群と対照との間で他の臨床兆候に有意な差はなかった。対照群における１８匹のブタのうち１５匹（８３％）が５％より大きい肺病変スコアを発症したが、ワクチン接種群においては２２匹のブタのうち、５％より大きい肺病変にスコア付けされたのは５匹（２３％）だけであった。ワクチン接種群は平均４.９％の肺病変スコアを有し、チャレンジ対照群は平均２３.２％の肺病変スコアを有した。ワクチン接種群と対照群との間に肺病変スコアにおいて有意な差があった（ｐ＝０.０００３）。チャレンジの前（０ＤＰＣ）にブタから収集した鼻腔用綿棒からはウイルスは単離されなかった。３ＤＰＣの時点で収集した鼻腔用綿棒からウイルスが単離されたのは、ワクチン接種群では２２匹のうち５匹（２３％）だったのに比べて、対照群においては１８匹のブタのうち１２匹（６７％）だった。ウイルスは、５ＤＰＣの時点で収集した鼻腔用綿棒からは、対照群では１８匹のブタのうち３匹において単離されたが、ワクチン接種ブタでは単離されなかった。ウイルスはまた、剖検（５ＤＰＣ）から収集した肺組織サンプルから、対照群では、１８匹のブタのうち５匹で単離されたが、ワクチン接種ブタでは単離されなかった。チャレンジ後の鼻腔用綿棒から（個々の日についてはｐ＝０.００３５、３ＤＰＣおよび５ＤＰＣを合わせたウイルス排出についてはｐ＝０.０００８）および肺組織から（ｐ＝０.０１３）のウイルス単離において、ワクチン接種群と対照群との間には有意な差がある。

まとめると、ワクチン接種されたブタは、チャレンジ後発熱性応答を被ることが有意に少なく、また対照のブタに比べて肺病変スコアがかなり低かった。鼻腔におけるウイルス排出において、および肺組織サンプルからのウイルス回収において、ワクチン接種と対照との間に有意な差があった。これによって、１週齢でＳＩＶワクチンをワクチン接種されて、３週後にＳＩＶ−ＭＨＰワクチンを追加免疫されたブタは、病原性ＳＩＶ Ｈ３Ｎ２チャレンジに対して防御免疫を生じたことが示される。

Claims (22)

1. マイコプラズマ・ハイオニューモニエおよびウイルス病原体による感染に対して動物を免疫するためのワクチン組成物であって、
   マイコプラズマ・ハイオニューモニエバクテリンの免疫量と
   ブタインフルエンザウイルス（ＳＩＶ）、ブタ繁殖呼吸症候群ウイルス（ＰＲＲＳＶ）およびブタサーコウイルス（ＰＣＶ）からなる群より選択される少なくとも１つのウイルス抗原の免疫量と
   アクリル酸ポリマー、ならびに代謝性オイルおよびポリオキシエチレン−ポリオキシプロピレンブロックコポリマーの混合物を含むアジュバント混合物と
   医薬上許容される担体と
   を含み、単回投与後にマイコプラズマ・ハイオニューモニエからの防御免疫を誘発する、ワクチン組成物。
2. アジュバント混合物が、アクリル酸ポリマーと、１またはそれ以上のテルペン炭化水素を含む代謝性オイルおよびポリオキシエチレン−ポリオキシプロピレンブロックコポリマーの混合物とからなり、アクリル酸ポリマーの代謝性オイル／ポリオキシエチレン−ポリオキシプロピレンブロックコポリマー混合物に対する割合が約１：２５ないし１：５０である、請求項１記載のワクチン組成物。
3. アジュバント混合物がワクチン組成物の約１−２５（ｖ／ｖ）％からなる、請求項１記載のワクチン組成物。
4. アクリル酸ポリマーが約１（ｖ／ｖ）％の最終濃度で存在し、テルペン炭化水素／ポリオキシエチレン−ポリオキシプロピレンブロックコポリマー混合物が約５（ｖ／ｖ）％ないし１０（ｖ／ｖ）％の最終濃度で存在する、請求項３記載のワクチン組成物。
5. アジュバント混合物がワクチン組成物の約２−１５（ｖ／ｖ）％からなる、請求項３記載のワクチン組成物。
6. アジュバント混合物がワクチン組成物の約５−１２（ｖ／ｖ）％からなる、請求項５記載のワクチン組成物。
7. 代謝性オイルがスクアランまたはスクアレンである、請求項１記載のワクチン組成物。
8. アクリル酸ポリマーがカルボマーである、請求項６または請求項７記載のワクチン組成物。
9. Haemonphilus parasuis、Pasteurella multiocida、Streptococcum suis、Actinobacillus pleuropneumoniae、Bordetella bronchiseptica、Salmonella choleraesuis、Erysipelothrix rhusiopathiaeおよびレプトスピラ属の細菌からなる群より選択される、少なくとも１つのバクテリンまたは精製トキソイドをさらに含む、請求項１−８のいずれかに記載のワクチン組成物。
10. 以下の群、ＳＩＶ、Haemonphilus parasuis、ＰＲＲＳＶとＰＣＶからなる群、ＳＩＶとErysipelothrix rhusiopathiaeからなる群、Pasteurella multiocidaとBordetella bronchisepticaからなる群のうち１つ以上から選択される細菌性抗原またはウイルス抗原をさらに含む、請求項１−８のいずれかに記載のワクチン組成物。
11. マイコプラズマ・ハイオニューモニエおよび少なくとも１つのウイルス抗原によって惹起される疾患に対して動物を防御するための方法であって、該動物に対してワクチン組成物を投与する工程を含み、該ワクチン組成物が、
    マイコプラズマ・ハイオニューモニエバクテリンの免疫量と、
    ブタインフルエンザウイルス（ＳＩＶ）、ブタ繁殖呼吸症候群ウイルス（ＰＲＲＳＶ）およびブタサーコウイルス（ＰＣＶ）からなる群より選択される少なくとも１つのウイルス抗原の免疫量と、
    アクリル酸ポリマー、ならびに代謝性オイルおよびポリオキシエチレン−ポリオキシプロピレンブロックコポリマーの混合物を含むアジュバント混合物と、
    医薬上許容される担体と
    を含み、単回投与後にマイコプラズマ・ハイオニューモニエ感染からの防御免疫を誘発する、方法。
12. 細菌の免疫量が約１×１０^８〜３×１０^１１ＭＨＤＣＥ／ｍＬである、請求項１１記載の方法。
13. 細菌の免疫量が約１×１０^９〜３×１０^９ＭＨＤＣＥ／ｍＬである、請求項１２記載の方法。
14. 投与工程の投与の様式が、筋肉内、皮下、腹腔内、エアロゾル、経口または経鼻である、請求項１１記載の方法。
15. アジュバント混合物が、アクリル酸ポリマー、ならびに１またはそれ以上のテルペン炭化水素を含む代謝性オイルおよびポリオキシエチレン−ポリオキシプロピレンブロックコポリマーの混合物からなり、約１〜２５（ｖ／ｖ）％の最終濃度にて存在する、請求項１１記載の方法。
16. アジュバント混合物のアクリル酸ポリマーがカルボマーである、請求項１５記載の方法。
17. アジュバント混合物の代謝性オイルがスクアレンまたはスクアランからなる群より選択されるテルペン炭化水素である、請求項１５記載の方法。
18. Haemonphilus parasuis、Pasteurella multiocida、Streptococcum suis、Actinobacillus pleuropneumoniae、Bordetella bronchiseptica、Salmonella choleraesuis、Erysipelothrix rhusiopathiaeおよびレプトスピラ属の細菌からなる群より選択される、少なくとも１つのさらなるバクテリンを同時投与することをさらに含む、請求項１１−１７のいずれかに記載の方法。
19. マイコプラズマ・ハイオニューモニエおよび少なくとも１つのウイルス病原体および少なくとも１つのさらなる病原体によって惹起される疾患に対して動物を防御するための請求項１１−１７に記載の方法であって、１またはそれ以上の以下の群、ＳＩＶ、Haemonphilus parasuis、ＰＲＲＳＶとＰＣＶからなる群、ＳＩＶとErysipelothrix rhusiopathiaeからなる群、Pasteurella multiocidaとBordetella bronchisepticaからなる群から選択される１またはそれ以上の細菌性抗原またはウイルス抗原から選択される少なくとも１つのさらなる細菌性抗原およびウイルス抗原を同時投与することをさらに含む、請求項１１−１７記載の方法。
20. マイコプラズマ・ハイオニューモニエおよびウイルス病原体による感染に対して動物を免疫処理するためのワクチン組成物であって、
    マイコプラズマ・ハイオニューモニエバクテリンの免疫量と、
    Haemonphilus parasuis、Pasteurella multiocida、Streptococcum suis、Actinobacillus pleuropneumoniae、Bordetella bronchiseptica、Salmonella choleraesuis、Erysipelothrix rhusiopathiae、レプトスピラ属の細菌、ブタインフルエンザウイルス（ＳＩＶ）、ブタ繁殖呼吸症候群ウイルス（ＰＲＲＳＶ）およびブタサーコウイルス（ＰＣＶ）からなる群より選択される少なくとも１つの細菌性抗原またはウイルス抗原の免疫量と、
    少なくとも１つのアジュバントと、
    医薬上許容される担体と
    を含み、単回投与後にマイコプラズマ・ハイオニューモニエからの防御免疫を誘発する、ワクチン組成物。
21. １またはそれ以上の以下の群、ＳＩＶ、Haemonphilus parasuis、ＰＲＲＳＶとＰＣＶからなる群、ＳＩＶとErysipelothrix rhusiopathiaeからなる群、Pasteurella multiocidaとBordetella bronchisepticaからなる群から選択される細菌性抗原またはウイルス抗原をさらに含む、請求項２０記載のワクチン組成物。
22. マイコプラズマ・ハイオニューモニエおよびウイルス病原体による感染に対して動物を免疫処理するためのワクチン組成物であって、
    マイコプラズマ・ハイオニューモニエバクテリンの免疫量と、
    ブタインフルエンザウイルス（ＳＩＶ）、ブタ繁殖呼吸症候群ウイルス（ＰＲＲＳＶ）およびブタサーコウイルス（ＰＣＶ）からなる群より選択される少なくとも１つのウイルス抗原の免疫量と、
    アクリル酸ポリマー、代謝性オイルおよびポリオキシエチレン−ポリオキシプロピレンブロックコポリマーを水中油型エマルジョンの形態で含むアジュバント系と
    を含み、単回投与後にマイコプラズマ・ハイオニューモニエからの防御免疫を誘発する、ワクチン組成物。