JP2012527342A

JP2012527342A - 改良された性能を有する膜

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Publication number: JP2012527342A
Application number: JP2012511269A
Authority: JP
Inventors: クラオゼ、ベルント; ツバイガルト、カリナ; ベーア、ハインリヒ
Original assignee: Gambro Lundia AB
Current assignee: Gambro Lundia AB
Priority date: 2009-05-20
Filing date: 2010-05-19
Publication date: 2012-11-08
Anticipated expiration: 2030-05-19
Also published as: US8771516B2; CN102458623B; WO2010133613A1; JP5694298B2; US20120074064A1; EP2253367A1; JP2014131752A; CN102458623A; ES2528291T3; PL2253367T3; EP2253367B1

Abstract

本発明は、中分子量物質、例えば、分子量２０〜４０ｋＤａの炎症性メディエーターの除去を増大できる改良された性能を有する、例えば、血液の血液透析、血液透析濾過および血液濾過に好適な選択透過性非対称膜に関する。篩い分け特性の改良は、調製方法において生じる膜の狭い細孔径分布による。本発明はまた、前記膜の調製方法、前記膜を備えるデバイス、血液の血液透析、血液透析濾過または血液濾過ならびにバイオ処理、血漿分画およびタンパク質溶液の調製における前記膜の使用に関する。
【選択図】図２

Description

技術分野
本発明は、中分子量物質、例えば、分子量２０〜４０ｋＤａの炎症性メディエーターの除去を増大できる改良された性能を有する、例えば、血液の血液透析、血液透析濾過および血液濾過に好適な選択透過性非対称膜に関する。篩い分け特性の改良は、製造方法において生じる膜の狭い細孔径分布による。本発明はまた、前記膜の調製方法、前記膜を備えるデバイス、血液の血液透析、血液透析濾過または血液濾過ならびにバイオ処理、血漿分画およびタンパク質溶液の調製における前記膜の使用に関する。

発明の背景
ＥＰ０３０５７８７Ａ１は、疎水性の第１のポリマー、例えば、ポリアミドと、親水性の第２のポリマー、例えば、ポリビニルピロリドンと、好適な添加剤とからなる、血液の血液透析、血液透析濾過および血液濾過に好適な選択透過性非対称膜を開示している。これらの膜は、篩い分け特性に関与する、緻密でかなり薄いスキンの形態の第１の層と、拡散透過率が高く、前記第１の層の支持材の働きをする、スポンジ構造の形態の第２の層と、膜に機械的安定性を与える、フィンガー構造の形態の第３の層とを備える３層構造を有する。

ＷＯ２００４／０５６４５９Ａ１は、少なくとも１種の疎水性ポリマー、例えば、ポリエーテルスルホンと、少なくとも１種の親水性ポリマー、例えば、ポリビニルピロリドンとを含む、血液透析に好適な選択透過性非対称膜を開示している。中空糸膜の外表面は０．５〜３μｍの範囲の細孔を有し、外表面の細孔の数は１０，０００〜１５０，０００個／ｍｍ²の範囲である。

これらの膜は従来から、血液透析における非常に良好な性能と優れた生体適合性とを示しているが、中分子量物質、例えば、分子量２０〜４０ｋＤａの炎症性メディエーターの除去を増大させるように性能をさらに改良することが望まれている。今回、改良された性能を有する膜が、膜を乾燥前に塩溶液で処理するステップを備える特定の製造方法によって得られることを発見した。

発明の概要
本発明の目的は、例えば、血液の血液透析、血液透析濾過および血液濾過に好適な特定の選択透過性非対称膜の性能を改良することによって、中分子量物質、例えば、分子量２０〜４０ｋＤａの炎症性メディエーターの除去を増大させることである。

本発明の一態様によれば、改良された性能を有する選択透過性非対称膜が提供される。水溶液中のオボアルブミン（ＭＷ＝４４ｋＤａ）に関する膜の篩係数と、水溶液中のアルブミン（ＭＷ＝６６ｋＤａ）に関する膜の篩係数との差は、少なくとも５０％である。特定の実施形態において、膜は、ポリエーテルスルホンとポリビニルピロリドンと任意選択でポリアミドとを含む。

さらなる態様によれば、本発明は、本発明の選択透過性非対称膜の調製方法に関する。この方法の一実施形態において、中空糸膜は、膜を乾燥前に塩溶液で処理することによって得る。

図１は、細孔入口に塩結晶が存在する本発明の膜の走査電子顕微鏡写真を示す。図２は、例１および比較例１の膜の篩い分けプロフィールを示す。図３は、例２および比較例１の膜の篩い分けプロフィールを示す。図４は、例３および比較例１の膜の篩い分けプロフィールを示す。図５は、例４および比較例１の膜の篩い分けプロフィールを示す。図６は、比較例１〜４（上部）および比較例５〜８（下部）の膜の篩い分けプロフィールを示す。

詳細な説明
本発明の一実施形態において、選択透過性非対称膜は、少なくとも１種の疎水性ポリマーを基材とする。前記の少なくとも１種の疎水性ポリマーは、ポリスルホン、ポリエーテルスルホン、ポリアミドおよびポリアクリロニトリルからなる群から選択される。一実施形態において、前記疎水性ポリマーは、任意選択でポリアミドと組み合わされた、ポリスルホン、ポリエーテルスルホン（ＰＥＳ）またはポリアリールエーテルスルホン（ＰＡＥＳ）である。一実施形態において、膜は、少なくとも１種の親水性ポリマーをさらに含む。一実施形態において、前記の少なくとも１種の親水性ポリマーは、ポリビニルピロリドン（ＰＶＰ）を含む。一実施形態において、膜の調製には、好ましくは１００ｋＤａ未満の分子量を有する低分子量成分と１００ｋＤａ以上の分子量を有する高分子量成分とからなるポリビニルピロリドンを使用する。

一実施形態において、本発明の膜は、ポリエーテルスルホン８０〜９９重量％とポリビニルピロリドン（ＰＶＰ）１〜２０重量％とを含む。

好適なポリエーテルスルホンの一例は、一般式−［Ｏ-Ｐｈ−ＳＯ₂−Ｐｈ−］_n−と、約６０，０００〜６５，０００Ｄａ、好ましくは６３，０００〜６５，０００Ｄａの重量平均分子量と、約１．５〜１．８のＭｗ／Ｍｎとを有するポリマーである。

高分子成分（１００ｋＤａ以上）と低分子成分（１００ｋＤａ未満）とからなる好適なＰＶＰの一例は、膜中のＰＶＰの総重量に基づき１０〜４５重量％の高分子量成分と、膜中のＰＶＰの総重量に基づき５５〜９０重量％の低分子量成分を含む。

一実施形態において、本発明の膜は、極めて特殊な４層構造を有する中空糸膜である。

中空糸膜の４層構造の内層、即ち、血液接触層および内表面は、一実施形態においては１μｍ未満の厚さとナノスケール範囲の細孔径を有する、緻密でかなり薄い層の形態の分離層である。高い選択性を達成するために、関与する細孔径を有する細孔チャンネルは短く、即ち、０．１μｍ未満である。細孔チャンネル径は、大きさの変動が小さい。規定された細孔構造は、ポリマーの組成、中央流体中の沈殿剤の組成および状態の選択と、紡糸ノズルから出ていく繊維の周囲環境の状態および組成とによって達成される。

中空糸膜の次の層は、スポンジ構造の形態を取り、本発明の一実施形態では約１〜１５μｍの厚さを有する第２の層であり、前記第１の層の支持材の働きをする。

次に、フィンガー構造の形態を取る第３の層がある。これは、一方では、機械的安定性を提供し、他方では、大きいボイド容量のために、膜を通る分子の輸送抵抗が極めて低い。このプロセスにおいて、ボイドに水が充填され、この水が、ボイド容量がより小さいスポンジ充填構造を有するマトリックスよりも低い拡散抵抗および対流抵抗を与える。したがって、第３の層は、膜に機械的安定性を与え、本発明の一実施形態においては、２０〜６０μｍの厚さを有する。

本発明のこの実施形態の第４の層は、規定された表面粗さを有する均一な開放細孔構造を特徴とする外層である。細孔の開口径は、０．５〜３μｍの範囲であり、さらに、外面上の細孔の数は、１０，０００〜１５０，０００個／ｍｍ²、例えば１８，０００〜１００，０００個／ｍｍ²、また２０，０００〜１００，０００個／ｍｍ²の範囲でさえある。一実施形態において、この第４の層は約１〜１０μｍの厚さを有する。

この第４の層の設計は、高い選択性を提供する。これは、大きさが近い分子を分離する可能性、例えば、保持されるべきアルブミンを、β₂−ミクログロブリンとＤ因子とから分離する可能性が高いことを意味する。

本発明による膜は、前述のように調製と膜特性とが特殊であるため、対流透過率Ｌｐが高いことと、例えば尿素または塩化物（Ｐ_Cl）などの小分子の拡散透過率が高いこととを特に特徴とする。Ｌｐは、５０×１０^-4〜６００×１０^-4ｃｍ／ｂａｒ・ｓ、例えば６０〜３００×１０^-4ｃｍ／ｂａｒ・ｓまたは１００〜１８０×１０^-4ｃｍ／ｂａｒ・ｓの範囲である。塩化物透過率Ｐ_Clは、１３×１０^-4〜２３×１０^-4ｃｍ／ｓ、例えば、１９×１０^-4〜２２×１０^-4ｃｍ／ｓまたは１３×１０^-4〜１６×１０^-4ｃｍ／ｓの範囲である。拡散透過率は、Ｅ．Ｋｌｅｉｎ、Ｆ．Ｈｏｌｌａｎｄ、Ａ．Ｌｅｂｅｏｕｆ、Ａ．Ｄｏｎｎａｕｄ、Ｊ．Ｋ．Ｓｍｉｔｈ、「ＴｒａｎｓｐｏｒｔａｎｄＭｅｃｈａｎｉｃａｌＰｒｏｐｅｒｔｉｅｓｏｆＨｅｍｏｄｉａｌｙｓｉｓＨｏｌｌｏｗＦｉｂｅｒｓ」、ＪｏｕｒｎａｌｏｆＭｅｍｂｒａｎｅＳｃｉｅｎｃｅ１（１９７６）３７１〜３９６頁、特に３７５〜３７９頁に従って確定できる。

膜は、高い選択性、即ち、中分子の高い除去率をさらに特徴とする。水溶液中のオボアルブミン（ＭＷ＝４４ｋＤａ）に関する本発明の膜の篩係数と、水溶液中のアルブミン（ＭＷ＝６６ｋＤａ）に関する膜の篩係数との差は、少なくとも５０％、例えば、少なくとも５３％、または少なくとも５６％、またはさらには少なくとも５９％である。篩係数は、温度３７±１℃に保持された、ｐＨ７．２のＰＢＳ緩衝液中のタンパク質溶液を用いて確定する。

膜は、
ａ）少なくとも１種の膜形成ポリマーを少なくとも１種の溶媒中に溶解させて、ポリマー溶液を形成するステップと、
ｂ）前記ポリマー溶液を、２つの同心開口部を有するノズルの外輪スリットを通して押出すステップと、
ｃ）中央流体を、前記ノズルの内側開口部を通して押出すステップと、次いで
ｄ）得られた膜を洗浄し、前記膜を乾燥させ、任意選択で前記膜を、例えば、水蒸気、エチレンオキシドまたは放射線による処理によって滅菌するステップと
を備え、前記膜を、乾燥ステップの前に塩溶液で処理する、溶媒相反転紡糸法によって調製できる。一実施形態において、塩溶液は、塩化ナトリウム溶液である。

理論によって拘束されることを望むものではないが、乾燥プロセスにおいて膜の細孔中で塩が結晶化し、それが均一な細孔径を有するより開いた構造をもたらすと考えられる。図１は、本発明の膜の走査電子顕微鏡写真を示している。選択層、即ち、内表面の細孔入口に存在する塩結晶が認められる。塩結晶が乾燥プロセスにおける細孔の収縮を防ぎ、より均一な細孔径を有する膜が得られると推定される。

一実施形態において、本発明による膜を調製するための紡糸溶液は、疎水性ポリマーとしてのポリエーテルスルホン１２〜１６重量％と、ＰＶＰ３〜１２重量％、例えば、５〜８重量％とを含み、前記ＰＶＰは、低分子（１００ｋＤａ未満）ＰＶＰ成分３〜８重量％、例えば、４〜６重量％と、高分子（１００ｋＤａ以上）ＰＶＰ成分０〜４重量％、例えば、１〜３重量％とからなる。一実施形態において、紡糸溶液中に含まれる総ＰＶＰは、高分子量（１００ｋＤａ以上）成分２２〜３４重量％、特に２５〜３０重量％と、低分子量（１００ｋＤａ未満）成分６６〜７８重量％、特に７０〜７５重量％とからなる。高分子量ＰＶＰおよび低分子量ＰＶＰの例はそれぞれ、例えば、ＰＶＰＫ８５／Ｋ９０およびＰＶＰＫ３０である。

特定の実施形態において、本発明の膜の調製方法に使用するポリマー溶液は、溶媒６６〜８６重量％と、好適な添加剤０〜１０重量％、例えば、０〜５重量％とをさらに含む。好適な添加剤は、例えば、水、グリセロールおよび／または他のアルコール類からなる群から選ばれる。水が特に好ましく、紡糸溶液中に０〜８重量％、好ましくは２〜６重量％の量で存在する。一実施形態において、この方法に使用する溶媒は、Ｎ−メチルピロリドン（ＮＭＰ）、Ｎ−エチルピロリドン、Ｎ−オクチルピロリドン、ジメチルアセトアミド（ＤＭＡＣ）、ジメチルスルホキシド（ＤＭＳＯ）、ジメチルホルムアミド（ＤＭＦ）、ブチロラクトンおよび前記溶媒の混合物からなる群から選ばれる。ＮＭＰが特に好ましい。紡糸溶液は、均一に脱気し、濾過しなければならない。

本発明による膜の調製に使用する中央流体またはボア液体は、前記溶媒の少なくとも１種と、水、グリセロールおよび他のアルコール類からなる群から選ばれる沈殿剤とを含む。

一部の実施形態において、膜の性能をさらに向上させるために、中央流体は、膜表面を改質する追加的な添加剤をさらに含む。本発明の一実施形態において、中央流体中の添加剤の量は、中央流体の総重量に基づき、０．０２〜２重量％、例えば、０．０５〜０．５重量％または０．０５〜０．２５重量％である。

好適な添加剤の例としては、ヒアルロン酸および両性イオン性ポリマーならびに分子内に両性イオンを有するビニル重合性モノマーと別のビニル重合性モノマーとのコポリマーが挙げられる。両性イオン性（コ）ポリマーの例としては、ホスホベタイン、スルホベタインおよびカルボキシベタインが挙げられる。

好適なホスホベタインの例としては、ホスホリルコリン基を含むポリマー、例えば、2-メタクリロイルオキシエチルホスホリルコリン（ＭＰＣ）と他のビニル重合性モノマー、例えば、ビニルピリジン、ビニルピロリドン、スチレンまたは（メタ）アクリレート誘導体（例えば、メタクリル酸ブチル、メタクリル酸ｎ−ドデシル、メタクリル酸ｎ−オクタデシル、メタクリル酸ベンジル、メタクリル酸ヒドロキシプロピルおよび（３−トリメトキシシリル）プロピルメタクリレート）とのコポリマーが挙げられる。１つの特定例は、例えば約７６／１８／５の比率のポリ（（２−メタクリロイルオキシエチル−２’−トリメチルアンモニウムエチルホスフェート分子内塩）−ｃｏ−（ヒドロキシプロピルメタクリレート）−ｃｏ−（３−トリメトキシシリルプロピルメタクリレート））である。別の特定例は、例えば約２３／４７／５／２５の比率のポリ（（２−（メタクリロイルオキシエチル）−２’−トリメチルアンモニウムエチル）ホスフェート分子内塩）−ｃｏ−（ｎ−ドデシルメタクリレート）−ｃｏ−（３−（トリメトキシシリル）プロピルメタクリレート）−ｃｏ−（ヒドロキシプロピルメタクリレート））である。他の例は、ホスホリルコリン基を含むジアミンモノマーおよび任意選択で他のジアミンモノマーと、ジカルボン酸またはその誘導体との重縮合生成物、例えば、Ｐｏｌｙｍ．Ｊ．、Ｖｏｌ．３９（２００７）７１２〜７２１（参照により本明細書中に組み入れられている）に記載されているような、２−（３，５−ジアミノフェニルカルボニルオキシ）エチルホスホリルコリンと、４，４’−ジアミノ−３，３’−ジメチルジフェニルメタンと、塩化イソフタロイルとのコポリマーである。

好適なスルホベタインの例としては、スルホベタインアクリレート、スルホベタインアクリルアミド、スルホベタインビニル化合物、スルホベタインエポキシドおよびそれらの混合物からなる群から選択される１種もしくは複数のモノマーから製造されるスルホベタイン；ビニルピロリドンとメタクリルアミドプロピルジメチルアンモニオプロピルスルホベタインとのコポリマー（ＳＰＰ）；ビニルピロリドンと（メタ）アクリロイルオキシアルキルジアルキルアンモニオアルキルスルホネートとのコポリマー；またはポリビニルピリジンもしくはポリビニルピロリドンを基材とするスルホベタインが挙げられる。１つの特定例は、ＲａｓｃｈｉｇＧｍｂＨ、６７０６１Ｌｕｄｗｉｇｓｈａｆｅｎ、Ｇｅｒｍａｎｙから商品名Ｒａｌｕ（登録商標）ＭｅｒＳＰＥとして市販されている、ＳＰＥとしても知られている、ビニルピロリドンと３−（（２−メタクリロイルオキシエチル）ジメチルアンモニオ）プロピル−１−スルホネートとのコポリマー、ポリ（３−（（２−メタクリロイルオキシエチル）ジメチルアンモニオ）プロピル−１−スルホネート−ｃｏ−ビニルピロリドン）である。別の特定例は、ＲａｓｃｈｉｇＧｍｂＨから商品名Ｒａｌｕ（登録商標）ＭｅｒＳＰＤＡとして市販されている、ＳＰＤＡとしても知られている、ビニルピロリドンと３−（（２−アクリロイルオキシエチル）ジメチルアンモニオ）プロピル−１−スルホネートとのコポリマーである。別の特定例は、ピリジン−Ｎ−プロピルスルホネート部分とピリジン−Ｎ−オキシド部分とを含むポリビニルピリジンである。

好適なカルボキシベタインは、カルボキシベタインアクリレート、カルボキシベタインアクリルアミド、カルボキシベタインビニル化合物、カルボキシベタインエポキシドおよびそれらの混合物からなる群から選択される１種または複数のモノマーから製造できる。他の好適なポリカルボキシベタイン化合物は、ポリ（ビニルピロリドン−ｃｏ−ビニルイミダゾール）とビニルカルボン酸またはその誘導体、例えば、アクリル酸およびそのエステル、メタクリル酸およびそのエステル、クロトン酸およびそのエステル、アンゲリカ酸およびそのエステルなどとの反応の生成物である。別の例は、ポリ（ビニルピロリドン−ｃｏ−ビニルイミダゾール）とハロカルボン酸またはその誘導体との反応の生成物である。１つの特定例は、ポリ（ビニルピロリドン−ｃｏ−ビニルイミダゾール）とアクリル酸との反応の生成物であり、ポリ（ビニルピロリドン−ｃｏ−ビニルイミダゾール）は、ビニルピロリドン５０モル％とビニルイミダゾール５０モル％とのコポリマーである。このようなコポリマーは、ＢＡＳＦＳＥから商品名Ｌｕｖｉｔｅｃ（登録商標）ＶＰＩ５５、例えば、Ｌｕｖｉｔｅｃ（登録商標）ＶＰＩ５５Ｋ７２ＷまたはＬｕｖｉｔｅｃ（登録商標）ＶＰＩ５５Ｋ１８Ｐとして市販されている。

中央流体は、一般に沈殿剤４０〜１００重量％と溶媒０〜６０重量％とを含む。一実施形態において、中央流体は、沈殿剤４４〜６９重量％と溶媒２９〜５４重量％とを含む。特定の一実施形態において、中央流体は、水４９〜６１重量％とＮＭＰ３７〜４９重量％とを含む。別の実施形態において、中央流体は、水５３〜５６重量％とＮＭＰ４４〜４７重量％とを含む。中央流体はまた、脱気と濾過とをしなければならない。

ＤＩＮＥＮＩＳＯ１６２８−１に従って２２℃において測定される、ポリマー溶液の粘度は、通常３，０００〜１５，０００ｍＰａ・ｓ、例えば、４，０００〜８，０００ｍＰａ・ｓ、またはさらには４，９００〜５，９００ｍＰａ・ｓの範囲である。

本発明の膜の調製方法の一実施形態において、紡糸口金の温度は、５０〜７０℃、例えば、５５〜６１℃であり、紡糸軸の温度は、２５〜６５℃、特に５０〜６０℃である。ノズルの開口部と沈殿浴との間隔は、３０〜１１０ｃｍ、特に４５〜５５ｃｍである。沈殿浴は、１０〜８０℃、例えば、２０〜４０℃の温度を有する。一実施形態において、紡糸速度は、１５〜１００ｍ／分、特に２５〜４５ｍ／分の範囲である。

紡糸ダイの外側スリット開口部を通って出てくるポリマー溶液は、沈殿繊維の外側が、水分含量に対して０〜１０重量％の含量で溶媒を含む、湿った水蒸気／空気混合物に曝露される。

湿った水蒸気／空気混合物の温度は、少なくとも１５℃、好ましくは少なくとも３０℃であって、７５℃以下であるが、好ましくは６２℃以下である。さらに、湿った水蒸気／空気混合物の相対湿度は６０〜１００％である。

本方法の別の実施形態において、湿った水蒸気／空気混合物は、水分含量に対して０〜５重量％の量の溶媒を含む。好ましくは、湿った水蒸気／空気混合物は、水分含量に対して０〜３重量％の量の溶媒を含む。温度制御された水蒸気雰囲気中の溶媒の効果は、繊維の沈殿速度を制御することである。使用溶媒が少ないほど、外表面は緻密な表面を獲得し、使用溶媒が多いほど、外表面は目の粗い構造を有する。沈殿膜周囲の、温度制御された水蒸気雰囲気内の溶媒量を制御することによって、膜の外表面の細孔の量と大きさとを修正し、制御することができる。

本発明の一実施形態において、沈殿浴は、水８５〜１００重量％と、溶媒例えば、ＮＭＰ０〜１５重量％とを含む。別の実施形態において、沈殿浴は、水９０〜１００重量％とＮＭＰ０〜１０重量％とを含む。

次に、膜は、洗浄して廃棄物成分を除去し、同時にまたは続いて、塩溶液で処理する。一実施形態において、膜は、最初に少なくとも１種の水浴中で洗浄し、次いで塩溶液を含む追加的な浴中で処理する。本発明の膜を製造するための連続法の特定の一実施形態において、膜は、最初に５つの水浴を通るように導き、次いで塩溶液を含む第６の浴を通るように導く。

本発明の一実施形態において、塩水溶液中の塩の濃度は、０．５〜１２重量％、例えば、０．５〜５重量％の範囲である。特定の一実施形態において、等張塩溶液を使用する。

塩水溶液中の塩は、好ましくは生理的に許容され得る塩である。本発明の一実施形態において、塩はアルカリ塩またはアルカリ土類塩、例えば、リチウム、ナトリウム、カリウム、マグネシウムまたはカルシウム塩である。別の実施形態において、塩は亜鉛または鉄塩である。好適な陰イオンの例は、ハロゲン化物イオン、例えば、フッ化物、塩化物もしくは臭化物イオン、炭酸、硫酸、リン酸イオンである。一実施形態において、塩は塩化マグネシウムである。別の実施形態において、塩は硫酸ナトリウムである。さらに別の実施形態において、塩は塩化ナトリウムである。特定の実施形態において、等張生理食塩水を使用する。

次いで、膜を１５０〜２８０℃、好ましくは１８０〜２６０℃の温度で乾燥させる。このような乾燥は、水の適正な蒸発と規定された細孔収縮率をもたらす。膜は、非連続的にまたは連続的に乾燥させることができる。後者は、「オンライン乾燥」とも称される。オンライン乾燥法において、膜は乾燥機に連続供給される。乾燥は、当業界で知られている任意の方法によって実施できる。例えば、膜は熱対流炉中で、または例えばノズルからの高温空気の流れによって、高温表面との接触によって、または例えば赤外線もしくはマイクロ波の照射によって、乾燥させることができる。

最終処理は、５０〜９５℃、好ましくは８０〜９０℃の温度の水中での膜のすすぎと、それに続く、３０〜６５℃、好ましくは５５〜６５℃の温度での乾燥とからなる。別法として、膜束の調製後に膜を乾燥させることもできる。

一実施形態において、膜は１２１℃超の温度において少なくとも２１分間蒸気滅菌する。

一実施形態において、本発明の中空糸膜は、１８０〜２５０μｍ、例えば１８９〜１９４μｍの内径を有する。中空糸の壁厚は、通常１０〜５０μｍ、例えば３４〜３６μｍの範囲である。

本発明の別の態様は、本発明の膜を含む拡散および／または濾過デバイスである。このようなデバイスの例は、透析器、血液濾過器および限外濾過器である。このようなデバイスは一般に、管状部分を備えるケーシングからなり、管状部分はその口をキャップするエンドキャップを有する。ケーシング中における中空糸膜束の配列は通常、繊維キャビティによって形成される第１の流通空間と、外側の、膜を取り囲む第２の流通空間との間にシールが形成されるように行う。このようなデバイスの例は、ＥＰ０８４４０１５Ａ２、ＥＰ０３０５６８７Ａ１およびＷＯ０１／６０４７７Ａ２に開示されており、これらの特許文献は参照により本明細書中に組み入れられている。

本発明の別の態様は、血液の血液透析、血液透析濾過または血液濾過への本発明の膜の使用である。本発明の膜は、このような目的で従来の膜の代わりに同様な方法で使用できる。当業者ならば、必要な操作方法を容易に導き出せる。

本発明の別の態様は、バイオ処理、血漿分画およびタンパク質溶液の調製への本発明の膜の使用である。本発明の膜は、この目的で常用される膜の代わりに、この目的で使用できる。当業者ならば、意図した用途に好適な操作方法を容易に導き出せる。

前記特徴および以下に記載する特徴は、明記された組み合わせだけでなく、本発明の範囲から逸脱しなければ、他の組み合わせでまたは単独で使用できることがわかるであろう。

次に、本発明を以下の例においてより詳細に説明する。例は、本発明の範囲を制限することを意図するものではなく、本発明の特定の実施形態の単なる実例である。

分析方法
ｉ）膜束の調製
［Ａ］ハンドバンドルの調製：
以下の性能試験のための繊維束の調製には、紡糸プロセス後の膜束の調製が必要である。第１のプロセスステップは、２３ｃｍの規定長への繊維束の切断である。次のプロセスステップは、繊維端を溶融させることからなる。光学制御が、全繊維の十分な溶融を確実にする。次に、繊維束の端部をポッティングキャップ中に移す。ポッティングキャップを機械的に固定し、ポッティングチューブをポッティングキャップ上に被せる。次いで、ポリウレタンを用いて繊維をポッティングする。ポリウレタンを硬化させた後、ポッティングされた膜束を規定長に切断し、乾燥貯蔵してから、種々の性能試験に使用する。

［Ｂ］ミニモジュールの調製：
ミニモジュール［＝ハウジング内の繊維束］を、同様にして調製する。ミニモジュールは、繊維の保護を確実にし、残留水を繊維上に保ちながら蒸気滅菌に使用される。ミニモジュールの製造は、以下の点で異なる：
→必要な繊維数を、３６０ｃｍ²の有効表面Ａについて、式（１）

［式中、
ｄ_ｉ＝繊維の内径（ｃｍ）、
ｎ＝繊維の量、
ｌ＝有効繊維長（ｃｍ）］
に従って算出する。

→繊維束を、２０ｃｍの規定長に切断する。

→繊維束を、溶融プロセスの前にハウジング内に移す。

→ポッティングプロセスの前に、ミニモジュールを真空乾燥オーブン中に終夜入れる。

［Ｃ］フィルターの調製：
フィルター（＝透析器）は、有効表面積が１．４ｍ²の繊維を８，０００〜１０，０００本含む。フィルターは、透析流体のための２つのコネクターと、それぞれ１個の中央血液コネクターを有する、両端に適用されたキャップとを有する円筒形ハウジングを特徴とする。製造プロセス（巻き付け後）は、以下の主要ステップに分けられる：
→切断された束（長さ約３０ｃｍ）を、特殊なバンドルクローを備えたハウジング内に移し；
→束の両端を、閉鎖プロセスによって閉鎖し；
→ポリウレタン（ＰＵＲ）を用いて、繊維をハウジング中にポッティングし；
→端部を切断して、繊維を開放し；
→超音波溶着を用いて、キャップを血液コネクターに溶着し；
→最終処理が、すすぎと、完全性試験と、最終乾燥とを含み；
→フィルターを滅菌バッグ中に詰め、蒸気滅菌する。

ｉｉ）ハンドバンドルおよびミニモジュールの透水率（Ｌｐ）
片側がシールされている膜束に、加圧下で規定容量の水を押し通し、所要時間を測定することによって、膜束の透水率を確定する。透水率は、確定された時間、有効膜表面積、適用された圧力、および膜に押し通された水の容量から算出できる。繊維数、繊維長および繊維内径から、有効膜表面積を算出する。膜束は、Ｌｐ試験を行う３０分前に湿らせる必要がある。このために、膜束を、超純水５００ｍＬを含むボックス中に入れる。３０分後、膜束を試験系に移す。試験系は、３７℃に保持された水浴と、膜束を取り付け可能なデバイスとからなる。水浴の充填高さは、膜束が指定デバイス中の水面下に確実に配置される高さでなければならない。膜漏れが誤った試験結果を生じないように、膜束および試験系の完全性試験を予め行う必要がある。完全性試験は、片側が閉鎖されている膜束に、空気を押し通すことによって行う。気泡は、膜束または試験デバイスの漏れを示す。漏れが、試験デバイス中への膜束の正しくない取り付けによるものか、または実際の膜漏れが存在するかを確認しなければならない。膜漏れが検出される場合には、膜束は廃棄しなければならない。適用圧力が過度に高いことによる漏れが透水率の測定中に起こり得ないことを確実にするために、完全性試験において適用する圧力は、透水率確定中の適用圧力と少なくとも同じ値でなければならない。

ｉｉｉ）フィルターの透水率（Ｌｐ）
規定容量の水を、膜を通して流し、膜間圧力差を測定することによって、フィルターの透水率を確定する。測定開始前に、フィルターは試験流体で完全に満たさなければならない（膜の内側、およびハウジングと膜との間のコンパートメント）。そっとたたくことによって、空気を除去する。試験液体である、０．９重量％の濃度の塩化ナトリウム純水液を３８℃に加熱し、次いで、血液出口コネクターと透析接続部の注入口とを閉鎖しながら、フィルターの血液注入口を通してポンプ輸送する。測定には５分を要し、圧力の平均値を算出する。透水率の算出は、ｉｉ）に記載されたようにして行う。

ｉｖ）ハンドバンドルについての拡散実験
等張塩化物溶液（０．９重量％）と、透析流体中で希釈されたビタミンＢ１２（１００ｍｇ／ｌ）と、ＰＢＳ緩衝液中で希釈されたアルブミン（１００ｍｇ／ｌ）とを用いる拡散実験を実施して、膜の拡散特性を確定する。ハンドバンドルを測定セル中に入れる。測定セルは、中空糸の内側における特定の溶液の通過を可能にする。追加的に、測定セルに水を完全に充填し、蒸留水の高いクロスフローを設定して、中空糸の内側から外側へと膜横断面を通過する特定のイオンを取り除く。圧力比を正しく調整することによって、拡散特性と対流特性との組み合わせでなく、膜の拡散特性のみが確定されるように（中空糸内側と中空糸周囲との間に特定イオンの最大濃度勾配を達成することによって）、ゼロ濾過を目指す。最初に、プールからのサンプルを採取し、１０分後および２０分後に、残余分のサンプルを採取する。次に、塩化物サンプルを硝酸銀溶液で滴定して、塩化物濃度を確定する。ビタミンＢ１２サンプルを測光法で分析し、アルブミンサンプルを、Ａｕｔｏ−ａｎａｌｙｚｅｒ（ＭｉｒａＰｌｕｓ、ＡＢＸＤｉａｇｎｏｓｔｉｃｓ、Ｃｏｂａｓ、Ｒｏｃｈｅ）を用いて分析する。確定された濃度、有効膜表面積Ａおよび流動条件から、下記式（２）

［式中、
Ｐ＝拡散透過率（ｃｍ／ｓ）、
ｃ＝濃度（ｍｍｏｌ）、
Ａ＝有効膜表面（ｃｍ²）、
添え字：
ｘ＝物質（ここでは、それぞれ塩化物、ビタミンＢ１２またはアルブミン）、
Ａ＝出発濃度（供給材料）、
Ｄ＝透析物、
Ｒ＝残余分、
Ｑ_B＝血流量（ｍｌ／分）］
に従って、塩化物、ビタミンＢ１２またはアルブミンの透過率Ｐをそれぞれ算出できる。

ｖ）ハンドバンドル、ミニモジュールおよびフィルターの、タンパク質に対する選択性／篩係数（ＳＣ）
篩係数の測定によって、膜の選択性を確定する。このために、タンパク質（ここでは、ウマの心臓からのミオグロビン、ＭＷ＝１７．５ｋＤａ；オボアルブミン、ＭＷ＝４４ｋＤａ；およびアルブミン、ＭＷ＝６６ｋＤａ）を溶解させる媒体が、非常に重要である。この試験手順に使用する媒体は、ｐＨ７．２のＰＢＳ緩衝液である。一般に、特定の分子の篩係数は、以下のようにして得られる：特定のタンパク質溶液を３７．１℃±１℃の温度に保持し、規定条件（血流量（Ｑ_B）、ＴＭＰおよび濾過速度（ＵＦ））下で試験デバイス（ハンドバンドル、ミニモジュールまたはフィルター）を通してポンプ輸送する。次いで、供給材料（ｉｎ）、残余分（ｒ）および濾液（ｆ）中のタンパク質の濃度を確定する。次に、下記式（３）：

に従って、篩係数（ＳＣ）を算出できる。

濾液中のタンパク質の濃度がゼロである場合には、０％の篩係数が得られる。濾液中のタンパク質の濃度が供給材料および残余分中のタンパク質の濃度と等しい場合には、１００％の篩係数が得られる。

［Ａ］ハンドバンドルおよびミニモジュールに関する水溶液中での篩係数
別個の溶液を用いる２つの異なる実験設定を使用して、ミオグロビン、オボアルブミンおよびアルブミンの水溶液中における篩係数実験を行う。最初に、ミオグロビンまたはオボアルブミンの篩係数を確定する。次に、アルブミンの篩係数を確定する。

ＰＢＳ緩衝液中のミオグロビンまたはオボアルブミンの濃度はそれぞれ１００ｍｇ／ｌとする。この水溶液の使用期限は４〜８週間である。この溶液は、冷蔵庫で貯蔵しなければならない。篩係数実験の前に、Ｌｐ試験を前述のようにして行う。ミオグロビンまたはオボアルブミンの篩係数実験はそれぞれ、以下に規定される試験条件を用いて単一パスで実施する：
固有流量（Ｊ_v（ｃｍ／ｓ））および壁剪断速度（γ（ｓ^-1））を一定とし、血流量（Ｑ_B）および濾過速度（ＵＦ）を、それぞれ式（４）および（５）：

［式中、
ｎ＝繊維量、
ｄ_ｉ＝繊維の内径（ｃｍ）、
γ＝剪断速度（ｓ^-1）、
Ａ＝有効膜表面（ｃｍ²）
であり、Ａは式（１）に従って算出される］
を使用して算出する。

ハンドバンドルまたはミニモジュールを試験する場合、剪断速度を５００ｓ^-1に設定し、固有流量を０．３８＊１０^-04ｃｍ／ｓと規定する。

第１のサンプル（プール、残余物および濾液）を１５分後に採取し、２回目は６０分後に採取する。最後に、試験バンドルをＰＢＳ緩衝液で数分間すすいでから、試験を止める。

続いて、アルブミンのＳＣ試験を行う。アルブミン６０ｇをＰＢＳ緩衝液中に溶解させ、アルブミン溶液をマグネチックバースターラーによってゆっくり撹拌し、再循環させながら、実験を実施する。試験の設定において、Ｑ_Bは式（４）に従って算出し、４００ｍｍＨｇの一定ＴＭＰを設定し、ＵＦおよび残余分の流れは、試験条件および膜透過性の結果である。１５分後、流れを単一パスに切り替え、サンプル（プール、残余物および濾液）を採取する。ＳＣ試験後に、試験バンドルをＰＢＳ緩衝液でもう一度すすぎ、それを使用して第２のＬｐ試験を行うことによって、タンパク質に対する膜の吸着容量の指標を得る。

［Ｂ］フィルターに関する水溶液中での篩係数
［Ａ］とは異なり、フィルターに関するミオグロビン、オボアルブミンおよびアルブミンの篩係数の測定は、同じ試験設定を用いるが、別個の溶液を用いて行う。溶液は再循環させる。ミオグロビンおよびオボアルブミンの濃度は、それぞれ１２５ｍｇ／ｌ、アルブミンの濃度は２５０ｍｇ／ｌとする。固有流量（Ｊ_v（ｃｍ／ｓ））および壁剪断速度（γ（ｓ^-1））を一定とし、血流量（Ｑ_B）および濾過速度（ＵＦ）をそれぞれ、式（６）および（５）

［式中、γ＝４６１ｓ^-1およびＪ_V＝０．７０４＊１０^-04ｃｍ／ｓ］
を使用して算出する。

両物質の採取サンプルは、第２のサンプルを３０分後（６０分後ではなく）に採取する点で異なる以外は、［Ａ］の場合と同じである。

ｉｖ）フィルターに関する尿素／ビタミンＢ１２のクリアランス
フィルターに関する尿素（ＭＷ＝６０Ｄａ）およびビタミンＢ１２（ＭＷ＝１，３５５Ｄａ）のクリアランスをそれぞれ、３７℃±１℃に加熱された透析溶液（脱気水中で希釈された透析濃縮物）を用いて透析機で測定する。特定の物質を含む透析溶液が、血液側を通してポンプ輸送され、純粋な透析液が透析物コンパートメント中に流入し、血液側から透析物側への物質移動が確定される。いずれの流れも、単一パスで操作する。尿素の出発濃度は１ｇ／ｌに設定し、ビタミンＢ１２の出発濃度は５０ｍｇ／ｌに設定し、同一透析液で希釈する。以下のパラメーターを設定する：
Ｑ_B＝４００ｍｌ／分
Ｑ_D＝５００ｍｌ／分
ＵＦ＝０ｍｌ／分。

第１のサンプルを１０分後に採取し、Ｑ_B,in、Q_B,outおよびＱ_D,outからのサンプルを（物質収支のプルーフィングのため）を採取する。

クリアランスＣｌは、式（７）：

に従って算出できる。

ｖｉｉ）フィルターに関するＵＦ血漿／タンパク質の損失
この性能試験は、フィルターに関する、一定血流量の血漿のタンパク質損失および濾過速度を確定する。血漿のタンパク質濃度を６０ｇ／ｌ±２ｇ／ｌに設定する。血漿は、１．５９±０．０５ｍｍ²／ｓの粘度（毛細管によって確定）および３０±１％のヘマトクリットを有する必要があり、３７℃±１℃に加熱する。試験の開始前に、フィルターを等張生理食塩水ですすぐ。次いで、血漿を血液側に通して再循環させ、測定が始まる。１０分以内に、Ｑ_B＝３００ｍｌ／分およびＴＭＰ＝３００ｍｍＨｇに設定する。２５分後に濾液のサンプルを採取し、ＵＦを容量分析で確定する。次に、タンパク質損失に関連する濾液のタンパク質濃度Ｐｃｔを分析する。

例
ポリマー溶液の動的粘度ηを、毛細管粘度計（ＶｉｓｃｏＳｙｓｔｅｍ（登録商標）ＡＶＳ３７０、Ｓｃｈｏｔｔ−ＧｅｒａｔｅＧｍｂＨ、Ｍａｉｎｚ、Ｇｅｒｍａｎｙ）を使用して、温度２２℃において、ＤＩＮＩＳＯ１６２８−１に従って確定した。

例１
ポリマー溶液は、ポリエーテルスルホン（Ｕｌｔｒａｓｏｎ（登録商標）６０２０、ＢＡＳＦＡｋｔｉｅｎｇｅｓｅｌｌｓｃｈａｆｔ）およびポリビニルピロリドン（Ｋ３０およびＫ８５、ＢＡＳＦＡｋｔｉｅｎｇｅｓｅｌｌｓｃｈａｆｔ）と蒸留水とをＮ−メチルピロリドン（ＮＭＰ）中に溶解させることによって、調製した。ポリマー紡糸溶液中の種々の成分の重量分率は、以下の通りであった：ＰＥＳ−ＰＶＰＫ８５−ＰＶＰＫ３０−Ｈ₂Ｏ−ＮＭＰ＝１４−２−５−３−７６。ポリマー溶液の粘度は、４，９６７ｍＰａ×ｓであった。

溶媒へのポリマー材料の添加順序、温度および撹拌時間は重要である。続いて、膜の均一な形態および性能に、濁りも気泡もない透明な溶液が必要である。ポリマー溶液中の粒子または気泡は、凝固プロセスを乱し、膜構造に欠陥を生じるおそれがある。

溶液を調製するために、中央の口にフィンガーパドル撹拌機を装着した三口フラスコ中に、最初にＮＭＰと水とを充填した。ＰＶＰをＮＭＰに添加し、均一な透明溶液が得られるまで５０℃において撹拌した。最後に、ポリエーテルスルホンを添加した。高粘度の透明溶液が得られるまで、混合物を５０℃において撹拌した。温かい溶液を２０℃まで冷却し、脱気した。溶液を完全に脱気するために、高粘度のポリマー溶液をステンレス鋼容器に移した。溶液を容器に移した後容器をしっかり閉じ、容器に真空を適用した。溶液を５０ｍｍＨｇにおいて６時間脱気した。この脱気手順中、脱気を改善するために、容器を撹拌して、容器中のポリマー溶液の表面をより大きくし、より薄いフィルム厚が得られるようにした。

ボア液体は、蒸留水とＮ−メチルピロリドン（ＮＭＰ）とを混合することによって調製した。中央流体中の２つの成分の重量分率は、Ｈ₂Ｏ−ＮＭＰ＝５５％−４５％とした。

ボア液体の調製は、以下のようにして行った：
→蒸留水をガラスフラスコ中に充填し、５０℃に加熱した。

→ＮＭＰを添加し、約１時間撹拌した。

→透明な混合物をステンレス鋼容器に移した。

→混合物を濾過し、５０ｍｍＨｇにおいて脱気した。

ポリマー溶液を５０℃に加熱し、この溶液とボア液体とを紡糸ダイに通すことによって、膜を形成した。ダイの温度は５５℃とし、紡糸軸の温度は５３℃とした。中空糸膜を、２５ｍ／分の紡糸速度で形成した。ダイから出た液体毛細管を水浴（周囲温度）中に移した。ダイと沈殿浴との距離は５０ｃｍとした。形成された中空糸膜を、５つの異なる水浴と、０．９重量％ＮａＣｌ溶液を含む追加的な第６の浴とを通るように導き、次いでオンライン乾燥機に供給した。

乾燥中空糸膜は、内径が１９０μｍ、外径が２６２μｍであり、完全に非対称な構造を有していた。膜の活性分離層は内側に存在していた。活性分離層を、最小の細孔を有する層と定義する。膜を巻取車に巻き付け、前記方法に従って、３５６本の繊維を備えるミニモジュールを調製した。

非滅菌膜（ハンドバンドル）：
塩化物、ビタミンＢ１２およびアルブミンの拡散透過率を、前述のようにして、非滅菌ハンドバンドル（ｎ＝２００）について、水溶液中で測定した。結果を表１３に示す。

蒸気滅菌膜（ミニモジュール）：
蒸気滅菌ミニモジュールについて、膜の性能を測定した（前記方法）。水溶液中のミオグロビン、オボアルブミンおよびアルブミンの透水率および篩係数を試験した。結果および比較例１の比較データを表１に示す。

図２は、ＭＷ１００Ｄａの分子の篩係数が１００％であり且つＭＷ１，０００ｋＤａの分子の篩係数が０％であると仮定して、ミオグロビン、オボアルブミンおよびアルブミンの水溶液中で１５分後に測定された篩係数によって作成された、例１および比較例１の膜の篩い分けプロフィールを示している。

例２
例１と同じ組成および５，３７１ｍＰａ×ｓの粘度を有するポリマー溶液を用いて、膜を製造した。ポリマー溶液の調製は、例１に記載されたようにして行った。膜形成手順は以下の点で変更した：
ボア液体の組成：Ｈ₂Ｏ−ＮＭＰ：５６％−４４％；
ダイ／紡糸軸の温度：５７／５５℃。

乾燥中空糸膜は、内径が１９２μｍ、外径が２６２μｍであり、完全に非対称な構造を有していた。膜の活性分離層は内側に存在していた。

蒸気滅菌膜（ミニモジュール）：
蒸気滅菌ミニモジュールについて、膜の性能を測定した（前記方法）。水溶液中のミオグロビン、オボアルブミンおよびアルブミンの透水率および篩係数を試験した。結果および比較例１の比較データを表２に示す。

図３は、ＭＷ１００Ｄａの分子の篩係数が１００％であり、ＭＷ１，０００ｋＤａの分子の篩係数が０％であると仮定して、ミオグロビン、オボアルブミンおよびアルブミンの水溶液中で１５分後に測定された篩係数によって作成された、例２および比較例１の膜の篩い分けプロフィールを示している。

例３
例１と同じ組成および５，３７１ｍＰａ×ｓの粘度を有するポリマー溶液を用いて、膜を製造した。ポリマー溶液の調製は、例１に記載されたようにして行った。膜形成手順は以下の点で変更した：
ボア液体の組成：Ｈ₂Ｏ−ＮＭＰ：５６％−４４％；
ダイ／紡糸軸の温度：５９／５７℃。

蒸気滅菌膜（ミニモジュール）：
蒸気滅菌ミニモジュールについて、膜の性能を測定した（前記方法）。水溶液中のミオグロビン、オボアルブミンおよびアルブミンの透水率および篩係数を試験した。結果および比較例１の比較データを表３に示す。

図４は、ＭＷ１００Ｄａの分子の篩係数が１００％であり且つＭＷ１，０００ｋＤａの分子の篩係数が０％であると仮定して、ミオグロビン、オボアルブミンおよびアルブミンの水溶液中で１５分後に測定された篩係数によって作成された、例３および比較例１の膜の篩い分けプロフィールを示している。

例４
例１と同じ組成および５，８２２ｍＰａ×ｓの粘度を有するポリマー溶液を用いて、膜を製造した。ポリマー溶液の調製は、例１に記載されたようにして行った。膜形成手順は以下の点で変更した：
ボア液体の組成：Ｈ₂Ｏ−ＮＭＰ：５６％−４４％；
回転速度：４５ｍ／ｍｉｎ
ダイ／紡糸軸の温度：５７／５５℃。

乾燥中空糸膜は、内径が１９１μｍ、外径が２６１μｍであり、完全に非対称な構造を有していた。膜の活性分離層は内側に存在していた。

蒸気滅菌膜（ミニモジュール）：
蒸気滅菌ミニモジュールについて、膜の性能を測定した（前記方法）。水溶液中のミオグロビン、オボアルブミンおよびアルブミンの透水率および篩係数を試験した。結果および比較例１の比較データを表４に示す。

図５は、ＭＷ１００Ｄａの分子の篩係数が１００％であり、ＭＷ１，０００ｋＤａの分子の篩係数が０％であると仮定して、ミオグロビン、オボアルブミンおよびアルブミンの水溶液中で１５分後に測定された篩係数によって作成された、例４および比較例１の膜の篩い分けプロフィールを示している。

比較例
比較例１
ポリマー溶液は、ポリエーテルスルホン（ＢＡＳＦＵｌｔｒａｓｏｎ６０２０）とポリビニルピロリドン（ＢＡＳＦＫ３０およびＫ８５）と蒸留水とをＮ−メチルピロリドン（ＮＭＰ）中に溶解させることによって、調製した。ポリマー紡糸溶液中の種々の成分の重量分率は、以下の通りであった：ＰＥＳ−ＰＶＰＫ８５−ＰＶＰＫ３０−Ｈ₂Ｏ−ＮＭＰ：１４−２−５−３−７６。ポリマー溶液の粘度は、５，０１０ｍＰａ×ｓであった。

残りのプロセスステップは、例１と同様に保持した。膜形成手順は以下の点で変更した：
ボア液体の組成：Ｈ₂Ｏ−ＮＭＰ５４．５％−４５．５％；
紡糸速度５０ｍ／分
ダイの温度：５５／５３℃
膜は、オンライン乾燥機中で乾燥させた。

乾燥中空糸膜は、内径が１９０μｍ、外径が２６０μｍであり、完全に非対称な構造を有していた。膜の活性分離層は内側に存在していた。

滅菌膜（ミニモジュール）：
蒸気滅菌ミニモジュールについて、水溶液中のミオグロビン、オボアルブミンおよびアルブミンの篩係数を試験した（前記方法）。結果を表５に示す。

例２
ポリマー溶液は、ポリエーテルスルホン（ＢＡＳＦＵｌｔｒａｓｏｎ６０２０）とポリビニルピロリドン（ＢＡＳＦＫ３０およびＫ８５）と蒸留水とをＮ−メチルピロリドン（ＮＭＰ）中に溶解させることによって、調製した。ポリマー紡糸溶液中の種々の成分の重量分率は、以下の通りであった：ＰＥＳ−ＰＶＰＫ８５−ＰＶＰＫ３０−Ｈ₂Ｏ−ＮＭＰ：１４−２−５−２−７７。ポリマー溶液の粘度は、５，３７８ｍＰａ×ｓであった。

残りのプロセスステップは、例１と同様に保持した。膜形成手順は以下の点で変更した：
ボア液体の組成：Ｈ₂Ｏ−ＮＭＰ５３％−４７％；
紡糸速度４５ｍ／分
ダイの温度：５８／５４℃
膜は、オンライン乾燥機中で乾燥させた。

乾燥中空糸膜は、内径が２１５μｍ、外径が３１５μｍであり、完全に非対称な構造を有していた。膜の活性分離層は内側に存在していた。

滅菌膜（ミニモジュール）：
蒸気滅菌ミニモジュールについて、水溶液中のミオグロビン、オボアルブミンおよびアルブミンの篩係数を試験した（前記方法）。結果を表６に示す。

比較例３
膜は、市販のＮｉｐｒｏＰＥＳ−１５Ｓα（ＮｉｐｒｏＣｏｒｐ．、〒５３１−８５１０大阪市北区本庄西３−９−３、日本）フィルターから切り取り、３３７本の繊維を備えるミニモジュールを調製した（Ａ_eff＝３６０ｃｍ²）。膜は、内径が２００μｍ、幅が４０μｍであった。膜は、γ線滅菌した。

滅菌膜（ミニモジュール）：
滅菌フィルターから取り出した膜を備えるミニモジュールを使用して、水溶液中のミオグロビン、オボアルブミンおよびアルブミンの篩係数を試験した（前記方法）。結果を表７に示す。

比較例４
膜は、市販のＦＸ１００フィルター（ＦｒｅｓｅｎｉｕｓＭｅｄｉｃａｌＣａｒｅＡＧ、６１３４６ＢａｄＨｏｍｂｕｒｇ、Ｇｅｒｍａｎｙ）から切り取り、３８１本の繊維を備えるミニモジュールを調製した（Ａ_eff＝３６０ｃｍ²）。膜は、内径が１７７μｍ、幅が３７μｍであった。

滅菌膜（ミニモジュール）：
滅菌フィルターから取り出した膜を備えるミニモジュールを使用して、水溶液中のミオグロビン、オボアルブミンおよびアルブミンの篩係数を試験した（前記方法）。結果を表８に示す。

比較例５
膜は、市販のＮｉｐｒｏＳｕｒｅｆｌｕｘ（登録商標）１５０ＦＨＧＡ（ニプロ株式会社、〒５３１−８５１０大阪市北区本庄西３−９−３、日本）フィルターから切り取り、３６８本の繊維を備えるミニモジュールを調製した（Ａ_eff＝３６０ｃｍ²）。膜は、内径が１８３μｍ、幅が１７μｍであった。膜は、γ線滅菌した。

滅菌膜（ミニモジュール）：
滅菌フィルターから取り出した膜を備えるミニモジュールを使用して、水溶液中のミオグロビン、オボアルブミンおよびアルブミンの篩係数を試験した（前記方法）。結果を表９に示す。

比較例６
膜は、市販のＢａｘｔｅｒＣＡ１５０Ｇ（ＢａｘｔｅｒＳ．Ａ．、ＲｅｎａｌＤｉｖｉｓｉｏｎ、７８３１０Ｍａｕｒｅｐａｓ、Ｆｒａｎｃｅ）フィルターから切り取り、４５５本の繊維を備えるミニモジュールを調製した（Ａ_eff＝３６０ｃｍ²）。膜は、内径が１４８μｍ、幅が１２μｍであった。

滅菌膜（ミニモジュール）：
滅菌フィルターから取り出した膜を備えるミニモジュールを使用して、水溶液中のミオグロビン、オボアルブミンおよびアルブミンの篩係数を試験した（前記方法）。結果を表１０に示す。

比較例７
膜は、市販のＢａｘｔｅｒＸｅｎｉｕｍ（登録商標）２１０（ＢａｘｔｅｒＳ．Ａ．、ＲｅｎａｌＤｉｖｉｓｉｏｎ、７８３１０Ｍａｕｒｅｐａｓ、Ｆｒａｎｃｅ）フィルターから切り取り、３５１本の繊維を備えるミニモジュールを調製した（Ａ_eff＝３６０ｃｍ²）。膜は、内径が１９２μｍ、幅が３４μｍであった。

滅菌膜（ミニモジュール）：
滅菌フィルターから取り出した膜を備えるミニモジュールを使用して、水溶液中のミオグロビン、オボアルブミンおよびアルブミンの篩係数を試験した（前記方法）。結果を表１１に示す。

比較例８
膜は、市販のＨｏｓｐａｌＮｅｐｈｒａｌ（登録商標）ＡＮ６９ＳＴ（ＧａｍｂｒｏＩｎｄｕｓｔｒｉｅｓ、６９３３０Ｍｅｙｚｉｅｕ、Ｆｒａｎｃｅ）フィルターから切り取った。膜の切り取りの前に、透析物コンパートメントを閉じながら（限外濾過を回避するために）、グリセロール溶液（６０ｗ／ｗ％）１リットルを５０〜１００ｍｌ／分で再循環させることによって、フィルターの血液コンパートメントを１時間すすぎ、続いて血液コンパートメートを２０分間空気でパージした。標準操作手順に従って、３５１本の繊維を備えるミニモジュールを調製した（Ａ_eff＝３６０ｃｍ²）。膜は、内径が１９２μｍ、幅が３８μｍであった。

滅菌膜（ミニモジュール）：
滅菌フィルターから取り出した膜を備えるミニモジュールを使用して、水溶液中のミオグロビン、オボアルブミンおよびアルブミンの篩係数を試験した（前記方法）。結果を１２に示す。

表１３は、比較例１および２ならびに例１〜４に関して、前述のようにして非滅菌ハンドバンドル（ｎ＝２００）について水溶液中で測定された塩化物、ビタミンＢ１２およびアルブミンの拡散透過率を示している。

図６は、ＭＷ１００Ｄａの分子の篩係数が１００％であり、ＭＷ１，０００ｋＤａの分子の篩係数が０％であると仮定して、ミオグロビン、オボアルブミンおよびアルブミンの水溶液中で１５分後に測定された篩係数によって作成された、比較例１〜４（上部）および比較例５〜８（下部）の膜の篩い分けプロフィールを示している。

表１４は、例１〜４および比較例１〜８の膜に関して、水溶液中のオボアルブミン（ＭＷ＝４４ｋＤａ）の篩係数とアルブミン（ＭＷ＝６６ｋＤａ）の篩係数との差の値を要約している。

Claims

ａ）少なくとも１種の膜形成ポリマーを少なくとも１種の溶媒中に溶解させて、ポリマー溶液を形成するステップと、
ｂ）前記ポリマー溶液を、２つの同心開口部を有するノズルの外輪スリットを通して押出すステップと、
ｃ）中央流体を、前記ノズルの内側開口部を通して押出すステップと、次いで
ｄ）得られた膜を洗浄するステップと、
ｅ）前記膜を、洗浄と同時にまたは洗浄後に、塩溶液で処理するステップと、次いで
ｆ）前記膜を乾燥させ、任意選択で、前記膜を水蒸気処理によって滅菌するステップと
を備える方法によって得られる、水溶液中のオボアルブミンに関する膜の篩係数と、水溶液中のアルブミンに関する膜の篩係数との差が少なくとも５０％である、選択透過性非対称中空糸膜。
ポリスルホン、ポリエーテルスルホン、ポリアミドおよびポリアクリロニトリルからなる群から選択される少なくとも１種の疎水性ポリマーを含む、請求項１に記載の膜。
少なくとも１種の親水性ポリマーをさらに含む、請求項２に記載の膜。
前記親水性ポリマーがポリビニルピロリドンを含む、請求項３に記載の膜。
ａ）少なくとも１種の膜形成ポリマーを少なくとも１種の溶媒中に溶解させて、ポリマー溶液を形成するステップと、
ｂ）前記ポリマー溶液を、２つの同心開口部を有するノズルの外輪スリットを通して押出すステップと、
ｃ）中央流体を、前記ノズルの内側開口部を通して押出すステップと、次いで
ｄ）得られた膜を洗浄するステップと、
ｅ）前記膜を、洗浄と同時にまたは洗浄後に、塩溶液で処理するステップと、次いで
ｆ）前記膜を乾燥させ、任意選択で、前記膜を水蒸気処理によって滅菌するステップと
を備える、選択透過性非対称中空糸膜の調製方法。
前記塩溶液が、０．５〜１２重量％の塩を含む、請求項５に記載の方法。
前記塩が塩化ナトリウムである、請求項５または６に記載の方法。
前記膜形成ポリマーが、ポリスルホン、ポリエーテルスルホン、ポリアミドおよびポリアクリロニトリルからなる群から選択される少なくとも１種の疎水性ポリマーを含む、請求項５から７のいずれか一項に記載の方法。
前記膜形成ポリマーが親水性ポリマーを含む、請求項５から８のいずれか一項に記載の方法。
前記親水性ポリマーがポリビニルピロリドンを含む、請求項９に記載の方法。
請求項１から４のいずれか一項に記載の膜または請求項５から１０のいずれか一項に従って調製された膜を備える拡散および／または濾過デバイス。
血液の血液透析、血液透析濾過または血液濾過における、請求項１から４のいずれか一項に記載の膜または請求項５から１０のいずれか一項に従って調製された膜の使用。
バイオ処理、血漿分画またはタンパク質溶液の調製における、請求項１から４のいずれか一項に記載の膜または請求項５から１０のいずれか一項に従って調製された膜の使用。