JP2006512899A - 抗ミエリン関連糖タンパク質(mag)抗体 - Google Patents
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Abstract
Description
a)配列中に、CDRH1、CDRH2およびCDRH3を含む重鎖可変ドメイン(VH)、
ならびに/または
b)配列中に、CDRL1、CDRL2およびCDRL3を含む軽鎖可変ドメイン(VL)。
本発明の変更された抗体は、好ましくは、モノクローナル抗体(mAb)であり、好ましくはキメラ抗体、ヒト化抗体またはリシェイプ(reshaped)抗体であり、これらのうち、ヒト化抗体が特に好ましい。
配列番号13、配列番号14または配列番号15を含む重鎖可変フラグメントおよびヒト重鎖の定常部分またはそのフラグメントと、
配列番号16、配列番号17、配列番号18または配列番号19を含む軽鎖可変フラグメントおよびヒト軽鎖の定常部分またはそのフラグメント。
配列番号13を含む重鎖可変領域および配列番号16を含む軽鎖可変領域;
配列番号13を含む重鎖可変領域および配列番号17を含む軽鎖可変領域;
配列番号13を含む重鎖可変領域および配列番号18を含む軽鎖可変領域;
配列番号13を含む重鎖可変領域および配列番号19を含む軽鎖可変領域;
配列番号14を含む重鎖可変領域および配列番号16を含む軽鎖可変領域;
配列番号14を含む重鎖可変領域および配列番号17を含む軽鎖可変領域;
配列番号14を含む重鎖可変領域および配列番号18を含む軽鎖可変領域;
配列番号14を含む重鎖可変領域および配列番号19を含む軽鎖可変領域;
配列番号15を含む重鎖可変領域および配列番号16を含む軽鎖可変領域;
配列番号15を含む重鎖可変領域および配列番号17を含む軽鎖可変領域;
配列番号15を含む重鎖可変領域および配列番号18を含む軽鎖可変領域;
配列番号15を含む重鎖可変領域および配列番号19を含む軽鎖可変領域。
材料および方法
抗MAGモノクローナル抗体
抗MAGモノクローナル抗体は、Chemicon製のマウス抗ニワトリMAG抗体であるMAB 1567であった。この抗体は、以下の特徴を有する:
抗原:ミエリン関連糖タンパク質(ヒト、マウス、ラット、ウシ、ニワトリ、カエル)
アイソタイプ:IgG1
中和能: DeBellardら(1996) Mol. Cell. Neurosci. 7, 89-101; Tangら(1997) Mol. Cell. Neurosci. 9, 333-346; Torigoe KおよびLundborg G (1997) Exp. Neurology 150, 254-262を参照のこと。
ハロタン麻酔下で、大脳脳室内(i.c.v.)カニューレを、左大脳側脳室に配置した(座標: PaxinosおよびWatson、1986に従って、正中線から1.6mm、ブレグマから0.8mm尾側、頭蓋骨表面から4.1mm、切歯棒は0の下-3.2mm)。全てのラットを1匹ずつ収容して、ガイドカニューレまたはダミーカニューレへの損傷を回避した。手術の7日後、正確なカニューレ配置を、アンギオテンシンII(100ng、Simpsonら、1978)に応答した激しい飲水によって確認した。9日後、動物は大脳虚血を受けた。
一過性(90分)の局所大脳虚血を、オスSprague Dawleyラット(各々、体重300〜350gの間)において誘導した。これらの動物を、5%ハロタン、60%亜酸化窒素および30%酸素の混合物で最初に麻酔し、フェイスマスクに配置し、引き続き1.5%ハロタンで麻酔を維持した。中大脳動脈閉塞(MCAO)を、以前に記載されたように、腔内糸上げ技術を使用して実施した(Zea Longaら、 1989)。手術手順中、動物を常温に維持し、インキュベータ中で1時間回復させ、その後1匹ずつ収容した。閉塞の1時間後に3の神経学的スコアを有する動物のみを、研究に含めた(5点のスコアリングシステムを使用して評価した場合:0、欠損なし;1、対側性反射;2、握力の弱化;3、旋回;4、動けず;5、死亡)。動物を1週間まで維持し、その時点で、0.9%生理食塩水とその後の100mMホスフェート緩衝液中の4%パラホルムアルデヒドの経心的灌流によって屠殺した。脳を4%パラホルムアルデヒド中にて4℃で48時間にわたって後固定し、その時点で、脳を頭蓋骨から取り出して、ラット脳マトリックスを使用して2mmのブロックに切断した。次いで、これらの2mm切片を、Shandon Citadel 1000組織プロセッサを使用してパラフィン包埋し、ミクロトームを使用して6μm切片に切断し、ポリL-リジン被覆したスライドに載せた。次いで、これらの切片を、クレジルファストバイオレット(Cresyl Fast Violet(CFV))染色のために処理した。
抗MAGモノクローナル抗体およびマウスIgG1アイソタイプ対照抗体を、滅菌0.9%塩化ナトリウムに対して一晩透析して、適切に濃縮した。
大脳虚血の誘導前に、研究1用のラットは、梁歩行(beam walking)および粘着ラベル試験の訓練を受けた。両方の試験の基準に達しない動物を、更なる研究から除外した。訓練後、残りの動物を、能力に従って2つのバランスをとった群に層化した。神経学的評価の間、研究者は、動物の処置群について盲検化した。
両側性粘着ラベル試験(Schallertら、Pharmacology Biochemistry and Behaviour 16: 455-462, (1983))を使用して、対側無視/同側注視を評価した。これは、ヒト脳卒中患者において観察される触覚消衰のモデルである(Roseら、1994)。この試験は、以前に詳細に記載されている(Hunterら、Neuropharmacology 39: 806-816 (2000); Virleyら、Journal of Cerebral Blood Flow & Metabolism, 20: 563-582 (2000))。簡潔には、丸い粘着性の紙ラベルを、無作為な配置順序(左、右)で等しい圧力にて前肢の無毛領域の周りに堅固に配置した。訓練セッションを、MCAOの前に6日間にわたって実施し、6日目のデータを、手術前のベースライン(0日目)として利用した。動物に、MCAOの24時間後および7日後に2つの試験を与えた。データは、2つの試験の平均を示す。ラベルを接触させ除去する潜時を記録し、ログランク検定を使用して分析した(Cox, J. Royal Statistical Society B 34: 187-220 (1972))。
梁歩行を、以前に詳細に記載されたように(Virleyら、Journal of Cerebral Blood Flow & Metabolism, 20: 563-582 (2000))、高架梁(100cm)(直径2.3cm、床から48cm)を渡って移動した距離によって、後肢と前肢との協調の測定値として使用した。ラットを、最初から最後まで梁を横切るように訓練した。試験のために、各ラットに、MCAOの24時間後および7日後に2つの試験を与えた。データは、2つの試験の平均を示す。統計的分析はANOVAであり、その後スチューデントt検定を行った。
この研究は、握力測定値(良好な右前肢握力についてスコア2、弱い握力についてスコア1)を加えた、以前に記載されたような(Hunterら、Neuropharmacology 39: 806-816 (2000))、肢の配置、目で見た前肢の伸び、水平バー、対側回転、傾斜平面、正向反射、対側反射、運動性および全体的状態を含む神経学的状態を評価するための一連の試験からなる。正常動物についての合計スコアは27である。
研究1-各動物について、病変面積を、脳における予め決定された3つのレベル(それぞれ、ブレグマから0mm、-2.0mmおよび-0.6mm)由来の切片において評価した。ニューロン損傷は、クレジルファストバイオレット染色を使用して評価し、損傷面積は、Optimas 6.1画像化パッケージを使用して測定した。データは、平均面積(mm2)±標準誤差(sem)として示す。
研究1-抗MAG mabの大脳脳室内(i.c.v.)投与
神経学的スコア
MCAOの1時間後、両方の処置群の動物は、神経学的スコアにおいて顕著な減少を示した(各群におけるスコア中央値12)。この時点で、群間に有意差はなかった。しかし、MCAOの24時間後(p=0.02)、48時間後(p=0.005)および7日後(p=0.006)、抗MAG mab(MCAOの1時間後、24時間後および72時間後に2.5μg)で処置した動物は、対照IgGで処置した動物と比較して、有意に改善された合計神経学的スコアを示した。IgG1処置群におけるMCAOの24時間後、48時間後および7日後の中央神経学的スコアは、抗MAG mab処置した動物における19.5、21.5および22と比較して、それぞれ、15、14および18であった。合計スコアを含む個々の挙動のさらなる分析において、この有意な改善は、以下の試験における改善された能力に主に起因した:肢の配置(24時間、p=0.045;48時間、p=0.016;7日、p=0.008)、握力(24時間、p=0.049;48時間、p=0.0495;7日、p=0.243)、運動性(24時間、p=0.199;48時間、p=0.012;7日、p=0.067)、水平バー(24時間、p=0.065;48時間、p=0.005;7日、p=0.016)、傾斜平面(24時間、p=0.006;48時間、p=0.006;7日、p=0.169)、目で見た前肢の伸び(48時間、p=0.049;7日、p=0.049)および旋回の程度(24時間、p=0.417;48時間、p=0.034;7日、p=0.183)。
手術前に、全ての動物を、梁(100cm)を渡るように訓練した。手術の24時間後に、手術前の値と比較して、抗MAG(50±18cm)およびIgG1(22±14cm)で処置した動物の両方において、梁の上の移動距離について、優位な減少がみられた。有意ではないものの、抗MAG処置した動物がtMCAOの24時間後に、IgG1処置した動物の2倍の距離を移動したという点で、抗MAG処置した動物は、IgG1処置した動物を超える顕著な改善を示した。しかし、手術の7日後、両方の群が経時的に顕著な改善を示したものの、IgGで処置した動物の能力は、ベースラインと比較して、有意に減少したままであった(55±15cm; p=0.005)。しかし対照的に、MCAOの7日後、抗MAG mab(MCAOの1時間後、24時間後および72時間後、大脳脳室内に2.5μg)で処置した動物の能力は、ベースラインから有意には異ならなかった(75±15cm;p=0.07)。このデータは、抗MAG mab処置が、IgG1処置した対照マウスと比較して、梁歩行課題の回復を加速させたことを示す。
手術前に、各処置群の動物で、ラベルを迅速に接触させて各前肢から除去したところ、処置前の群において有意差はなかった(表1)。MCAOの24時間後および7日後に、各処置群における左肢の接触の潜時は、比較的変更されないままで維持されたが、右の潜時は顕著に増加した。しかし、抗MAGで処置した動物での除去時間とIgG1で処置した動物での除去時間との間には、有意差はなかった。さらに、MCAOの24時間後、左前肢および右前肢の両方からの除去の潜時は、ベースラインと比較して両方の処置群において有意に増加したが、抗MAG処置した動物においては、左肢からの除去の潜時は、IgG1処置した動物の潜時よりも有意に短かった(p=0.03)。また、IgG1で処置した動物と比較して、抗MAGで処置した動物における右肢からの除去の潜時は減少する傾向があった(p=0.08)(表1)。7日目に、各前肢についての除去時間の潜時が24時間目での潜時と比較して減少したという点において、IgG1で処置した動物においてある程度の回復がみられた(表1)。このデータは、抗MAG mabでのラットの処置が、tMCAO後のこの粘着ラベル試験における回復を加速することを示唆する。
抗MAG mab i.c.vの投与は、tMCAOの7日後に試験した場合、等量のマウスIgG1で処置した動物と比較して、試験した3つの脳レベルのうち2つにおいて、病変面積を有意に減少させた(表2)。
神経学的スコア
MCAOの1時間後および24時間後に、両方の群の動物は神経学的スコアにおける有意な減少を示した。この時点では群間に有意差はなく、抗MAG mab処置およびIgG1処置の24時間後のスコア中央値は、それぞれ、20および18であった(p=0.5)。MCAOの48時間後、抗MAG mab(MCAOの1時間後および24時間後、静脈内で200μg)で処置した動物は、肢の配置(p=0.048)および握力(p=0.033)において有意な改善を示した。大脳虚血の発症の7日後に、抗MAG mabで処置した動物は、改善し続け(肢の配置p=0.041;握力、p=0.048;運動性、p=0.05)、マウスIgG1で処置した動物(スコア中央値23、p=0.047)と比較して、合計神経学的スコアにおける有意な改善(スコア中央値25)を示した。
MCAOを静脈内投与した場合、抗MAG抗体は、MCAOの7日後に試験した場合、7つの予め決定された脳レベル(+3〜-8 mm w.r.t. ブレグマ)のうち5つにおいて、アイソタイプ対照と比較して、病変面積を有意に減少させた。
ラットにおいて、一過性の中大脳動脈閉塞の後に、CSFに直接にまたは静脈内のいずれかに投与された抗MAGモノクローナル抗体は、対照処置した動物と比較して、細胞死の面積を低減し、かつ機能回復を改善した。これらの研究において見られた神経保護の程度は、この効果が、ニューロン予備を生じないのと同様に、軸索発芽に寄与できないことを示唆する。MCAOの24時間後および48時間後に見られる機能回復の改善は、おそらく、対照処置された動物と比較して、この抗体によって付与された神経保護の程度を反映する。しかし、これらの動物は経時的にさらに改善するようであり、このことは、MAG活性の遮断もまた、経時的に機能回復を増強し得ることを示唆する。
変更された抗体には、別種由来の定常領域に連結された、1つの種由来の可変領域を含むキメラ抗体が含まれる。本発明のマウス-ヒトキメラ抗MAG免疫グロブリン鎖の例は、図1、図2および図3に提供される。ヒトのIgG1、IgG2、IgG3、IgG4、IgA、IgE、IgM、IgDの定常領域を使用するマウス-ヒトキメラが産生され得、マウス可変領域を非ヒト種由来の重鎖または軽鎖定常領域と結合させるキメラであり得る。
本発明の軽鎖および重鎖のCDRを含むキメラ抗MAG抗体を、CHO細胞の一過的トランスフェクションによって産生した。これに関して、Transfastトランスフェクション試薬(Promega; E2431)を使用し、製造業者の指示書に従ってトランスフェクションを実行した。簡潔には、6ウェルの培養プレートの1ウェル当たり約106個のCHO細胞をプレートした。次の日、適切な重鎖または軽鎖をコードする哺乳動物発現ベクターDNAを、培地(Glutamaxを有するOptimem1; Gibco #51985-026)中で1:1の比(合計5μgのDNA)で混合した。Transfastトランスフェクション試薬を添加して、その溶液をコンフルエントな細胞層を有するウェルに移した。細胞インキュベータ中で37℃にて1時間の後、DNA/Transfast混合物を、2mlのOptimem培地と共に重ねて、インキュベータ中で48〜72時間放置した。上清を回収し、遠心分離によって清浄化して、0.2μmのフィルタを通過させた。CHO細胞培養上清中の抗体濃度を、ELISAによって決定し、約0.5μg/mlであると概算した。MAG結合について、市販のラットMAG-Fcを使用した。ヒトFcとの融合に起因して、結合したキメラ抗体は、抗ヒトIgG二次抗体を使用して検出できなかった。その代わり、抗ヒトκ軽鎖特異的抗体を使用した。図4は、このキメラ抗体が、1/64希釈でさえ、MAGに結合することを示す。無関係ヒト化抗体およびモックトランスフェクトした細胞由来の培養上清は、このアッセイにおいてシグナルを全く生じなかった。
ELISAマイクロタイタープレート(Nunc Maxisorp)を、PBS中1μg/mlのラットMAG-Fc融合タンパク質(R&D systems; 538-MG)で、4℃にて一晩被覆した。プレートをPBSで2回洗浄し、次いで、PBS/BSA (1% w/v)で室温(RT)にて1時間ブロッキングした。一過的にトランスフェクトしたCHO細胞由来の培養上清を、0.2μmのフィルタを通過させ、ニート上清で開始して1/64希釈まで、PBS/BSA中に連続希釈した。サンプル希釈物を、室温で1時間放置した。次いで、プレートをPBS/Tween 20 (0.1% v/v)で3回洗浄した。検出抗体は、PBS/BSA中に1/2000で希釈したヤギ抗ヒトκ軽鎖特異的‐ペルオキシダーゼコンジュゲート(Sigma A-7164)であった。この検出抗体を室温で1時間インキュベートし、プレートを上記のように洗浄した。基質溶液(Sigma Fast OPD P-9187)を添加して、適切な発色が検出されるまでインキュベートし、次いで、3M H2SO4を使用して停止させた。発色を、490nmで読み取った。
変更された抗体には、ヒト定常領域に連結されたヒト化可変領域を含むヒト化抗体が含まれる。本発明のヒト化抗MAG免疫グロブリン鎖の例は、図5に提供される。ヒトのIgG1、IgG2、IgG3、IgG4、IgA、IgE、IgM、IgD定常領域を使用したヒト化抗体が産生され得る。
1)9つのヒト化重鎖と軽鎖との組み合わせについて、正規化された量の培養上清のラットMAG-Fc融合タンパク質に対する、直接結合ELISA
本発明の軽鎖および重鎖のCDRを含むヒト化抗MAG抗体を、CHO細胞の一過的トランスフェクションによって産生した。これに関して、Transfastトランスフェクション試薬(Promega; E2431)を使用し、製造業者の指示書に従ってトランスフェクションを実行した。簡潔には、6ウェルの培養プレートの1ウェル当たり約106個のCHO細胞をプレートした。次の日、適切な重鎖または軽鎖をコードする哺乳動物発現ベクターDNAを、培地(Glutamaxを有するOptimem1; Gibco #51985-026)中で1:1の比(合計5μgのDNA)で混合した。Transfastトランスフェクション試薬を添加して、その溶液をコンフルエントな細胞層を有するウェルに移した。細胞インキュベータ中で37℃にて1時間の後、DNA/Transfast混合物を、2mlのOptimem培地と共に重ねて、インキュベータ中で48〜72時間放置した。上清を回収し、遠心分離によって清浄化して、0.2μmのフィルタを通過させた。9つの重鎖可変と軽鎖可変との組み合わせを、以下の表に示される配列から産生し、IgG1重鎖定常領域は、配列番号に従って機能的であった。
96ウェルのNunc Maxisorpプレートを、PBS中のラットMAG-Fc融合タンパク質(1μg/ml; R&D Systems; Cat.No. 538-MG)を用いて、4℃で一晩被覆した。プレートを、Tween20を含むPBS(0.1% v/v; PBST)で2回洗浄し、室温(RT)にて1時間、BSAを含むPBS(1%w/v)でブロッキングした。培養上清の可変量を、ブロッキング緩衝液中で連続希釈し、約500ng/mlまたは250ng/mlで開始して、ブロッキングしたウェルに添加した。上清の抗体濃度は、各培養上清中に存在するヒト化抗体の量を測定する独立したアッセイに基づいた。キメラマウス-ヒト(非ヒト化)抗体もまた、参照として含めた。抗体サンプルを、室温にて1時間インキュベートし、次いでPBSTで3回洗浄した。ブロッキング緩衝液中に1/5000希釈した二次抗体(ヤギ抗ヒト軽鎖特異的‐ペルオキシダーゼコンジュゲート;Sigma A-7164)を添加し、室温で1時間インキュベートした。ウェルを上記のように3回洗浄し、結合を基質(指示に従って溶解させたOPD錠剤;Sigma P-9187)の添加によって検出した。発色をモニタリングし、反応を、3M H2SO4を使用して停止させた。発色を、490nmで読み取った。
重鎖と軽鎖の可変領域の組み合わせ(BVh1/CVl1およびBVh3/CVl3(表図5))と、配列番号30によって例示されるような突然変異IgG1定常領域(これは、BVh1/CVl1突然変異IgG1であり、当業者は、BVh3/CVl3等価物についての配列を容易に導き得る)とからなる2つのヒト化抗体を、実施例3に記載される一過的トランスフェクションのスケールアップ版によって産生し、プロテインAアフィニティクロマトグラフィーを使用して精製した。精製した抗体材料をPBSに対して透析し、濃度をOD280読み取りによって決定した。抗体濃度を5000 ng/mlに調整して、ラットMAG-Fc結合ELISAにおいて連続希釈物として使用した。図7は、精製抗体材料がラットMAG-Fcに結合することを示し、本明細書中で試験した両方の重鎖および軽鎖の可変領域の組み合わせが、非常に類似していることを示す。
96ウェルのNunc Maxisorpプレートを、PBS中のラットMAG-Fc融合タンパク質(2.5μg/ml; R&D Systems; Cat.No. 538-MG)を用いて、4℃で一晩被覆した。プレートを、Tween20を含むPBS(0.1% v/v; PBST)で2回洗浄し、室温(RT)にて1時間、BSAを含むPBS(1%w/v)でブロッキングした。精製したヒト化抗体を、ブロッキング緩衝液中5μg/mlの出発濃度に調整し、次いで連続希釈した。抗体サンプルを、室温にて1時間インキュベートし、次いでプレートをPBSTで3回洗浄した。ブロッキング緩衝液中に1/5000希釈した二次抗体(ヤギ抗ヒト軽鎖特異的‐ペルオキシダーゼコンジュゲート;Sigma A-7164)を添加し、室温で1時間インキュベートした。ウェルを上記のように3回洗浄し、結合を基質(指示に従って溶解させたOPD錠剤;Sigma P-9187)の添加によって検出した。発色をモニタリングし、反応を、3M H2SO4を使用して停止させた。発色を、490nmで読み取った。
フレームワーク突然変異を全く保有しないかまたはいくつかを保有する、両方の精製したヒト化抗体は、ラットMAGに対する非常に類似した結合を示す。これらの結果は、図7に示される。
実施例5の2)に記載される、同じヒト化可変重鎖と軽鎖との組み合わせを、CHO細胞の表面上に発現されたヒトMAGに対して、清浄化した培養上清として試験した。各抗体について使用した培養上清の量を、ELISAによって決定した抗体濃度に基づいて正規化した。これについて、96ウェルプレート(Nunc Maxisorp)を、ヤギ抗ヒトIgG(γ)鎖(Sigma I-3382;重炭酸緩衝液(pH9.6)中;2μg/ml)で、4℃にて一晩被覆した。次の日、プレートを洗浄緩衝液(PBST)で2回洗浄し、少なくとも75μlのブロッキング緩衝液(BSAを含むPBS、1% w/v)の添加によって、室温で1時間ブロッキングした。抗体サンプル溶液を、ブロッキング緩衝液中で二重で連続希釈した(出発希釈はニートまたは1/2)。Ab標準は、無関係の特異性および既知の濃度の、精製されたヒト化IgG1抗体であった。標準溶液もまた、500ng/mlで開始して、プレートにわたって連続希釈した。全ての抗体溶液を、室温にて1時間インキュベートした。プレートを上記のように3回洗浄し、次いで、ブロッキング緩衝液中1/5000のヤギ抗ヒト軽鎖(κ)特異的(遊離および結合)ペルオキシダーゼコンジュゲート(Sigma; A-7164)と共に、室温で1時間インキュベートした。プレートを再度上記のように3回洗浄し、強い発色が生じるまで基質溶液(OPD錠剤; Sigma P-9187)と共にインキュベートした。発色を、25μlの3M H2SO4を添加して停止させ、プレートを、490nmで読み取った。
96ウェルプレート(Costar 3595)を、1ウェル当たり100μlの細胞懸濁液で満たした(1日目、2日目、3日目または4日目に実施するアッセイについての推奨される細胞数については、以下の表を参照のこと)。
方法:
96ウェルのNunc Maxisorpプレートを、PBS中のラットMAG-Fc融合タンパク質(2.5μg/ml; R&D Systems; Cat.No. 538-MG)で4℃にて一晩被覆した。プレートをTween20を含むPBS (0.1% v/v; PBST)で2回洗浄し、BSAを含むPBS(1%w/v)で室温(RT)にて1時間ブロッキングした。精製したヒト化抗体を、200ng/mlの濃度に調整し、ブロッキング緩衝液中で6000〜0ng/mlの範囲にされた競合分子と、等量で混合した。競合物は、同じ濃度の、親マウスモノクローナル抗体(抗MAG)または無関係のマウスモノクローナル抗体(INN1)のいずれかであった(BVh1/CVl1のみ)。抗体/競合物溶液を室温で1時間インキュベートし、次いでプレートをPBSTで3回洗浄した。ブロッキング緩衝液中に1/5000希釈した二次抗体(ヤギ抗ヒト軽鎖特異的‐ペルオキシダーゼコンジュゲート;Sigma A-7164)を添加し、室温で1時間インキュベートした。ウェルを上記のように3回洗浄し、結合を基質(指示に従って溶解させたOPD錠剤;Sigma P-9187)の添加によって検出した。発色を、490nmで読み取った。
両方の精製した抗体調製物は、元のマウスモノクローナル抗体によって同程度に競合されるが、無関係の特異性を有するマウスモノクローナル抗体によっては競合されない。図9を参照のこと。このことは、本明細書中で試験した元のマウスモノクローナル抗体およびヒト化抗体が、おそらく、同じエピトープを認識し、ラットMAGに対する非常に類似した親和性を有する可能性があることを示す。
Claims (26)
- CDRH1、CDRH2およびCDRH3から選択される1つまたは複数のCDRを含む重鎖可変ドメイン、ならびに/またはCDRL1、CDRL2およびCDRL3から選択される1つまたは複数のCDRを含む軽鎖可変ドメインを含む、変更された抗体またはその機能的フラグメント。
- 配列中に超可変領域CDRH1、CDRH2およびCDRH3を含む重鎖可変ドメイン(VH)
ならびに/または、
配列中に超可変領域CDRL1、CDRL2およびCDRL3を含む軽鎖可変ドメイン(VL)
を含む、変更された抗Mag抗体またはその機能的フラグメント。 - モノクローナル抗体である、請求項3に記載の抗体。
- ヒト化抗体である、請求項4に記載の抗体。
- 配列番号13、配列番号14または配列番号15を含む重鎖可変フラグメントおよびヒト重鎖の定常部分またはそのフラグメントと、
配列番号16、配列番号17、配列番号18または配列番号19を含む軽鎖可変フラグメントおよびヒト軽鎖の定常部分またはそのフラグメントと、
を含む、請求項6または7に記載の抗体。 - 配列番号13を含む重鎖可変領域および配列番号16を含む軽鎖可変領域;
配列番号13を含む重鎖可変領域および配列番号17を含む軽鎖可変領域;
配列番号13を含む重鎖可変領域および配列番号18を含む軽鎖可変領域;
配列番号13を含む重鎖可変領域および配列番号19を含む軽鎖可変領域;
配列番号14を含む重鎖可変領域および配列番号16を含む軽鎖可変領域;
配列番号14を含む重鎖可変領域および配列番号17を含む軽鎖可変領域;
配列番号14を含む重鎖可変領域および配列番号18を含む軽鎖可変領域;
配列番号14を含む重鎖可変領域および配列番号19を含む軽鎖可変領域;
配列番号15を含む重鎖可変領域および配列番号16を含む軽鎖可変領域;
配列番号15を含む重鎖可変領域および配列番号17を含む軽鎖可変領域;
配列番号15を含む重鎖可変領域および配列番号18を含む軽鎖可変領域;
配列番号15を含む重鎖可変領域および配列番号19を含む軽鎖可変領域、
を含む抗体から選択される、請求項1〜8のいずれか1項に記載のヒト化抗体。 - 薬学的に許容される希釈剤または担体と共に、請求項1〜8のいずれか1項に記載の変更された抗MAG抗体またはその機能的フラグメントを含む、医薬組成物。
- ヒトにおける脳卒中および他の神経学的疾患/障害の治療または予防の方法であって、このような治療または予防を必要とする前記ヒトに、変更された抗体またはその機能的フラグメントを含む、請求項1〜8のいずれか1項に記載の抗MAG抗体の有効量を投与することを含む、前記方法。
- 脳卒中および他の神経学的疾患/障害の治療または予防のための医薬の調製における、変更された抗体またはその機能的フラグメントを含む、請求項1〜8のいずれか1項に記載の抗MAG抗体の使用。
- 脳卒中または他の神経学的疾患/障害を罹患しているか、あるいはその発症の危険性があるヒト患者において、神経変性を阻害するかつ/または機能回復を促進する方法であって、このような方法を必要とする前記ヒトに、変更された抗体またはその機能的フラグメントを含む、請求項1〜6のいずれか1項に記載の抗MAG抗体の有効量を投与することを含む、前記方法。
- 脳卒中および他の神経学的疾患/障害に罹患しているか、またはその発症の危険性があるヒト患者において、神経変性を阻害するための医薬および/または機能回復を促進するための医薬の調製における、変更された抗体またはその機能的フラグメントを含む、請求項1〜8のいずれか1項に記載の抗MAG抗体の使用。
- ヒトにおける脳卒中または他の神経学的疾患/障害の治療または予防の方法であって、前記ヒトに、抗MAG抗体の治療有効量を非経口で投与するステップを含む、前記方法。
- 上記抗MAG抗体が静脈内投与される、請求項22に記載の方法。
- 上記他の神経学的疾患/障害が、外傷性脳損傷、脊髄損傷、アルツハイマー病、前頭側頭型痴呆(タウオパシー)、末梢神経障害、パーキンソン病、ハンティングトン病および多発性硬化症からなる群より選択される、請求項18、20または24に記載の方法。
- ヒト軸索を、請求項1〜8のいずれか1項に記載の抗MAG抗体と接触させるステップを含む、軸索発芽を促進する方法。
- 上記方法がin vitroである、請求項25に記載の方法。
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