JP2006282548A - クロチアニジンおよびジノテフランのハプテン化合物、抗体、ハイブリドーマおよびその測定手段、測定キットまたは測定方法 - Google Patents
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Description
具体的には、本発明においては、前記ハイブリドーマがCTN−16A3−13であることが好ましい。
(1)工程1
出発原料として1、5−ジメチル−2−ニトロイミノヘキサヒドロ−1、3、5−トリアジン(a)および2−ブロモ−5−ブロモメチルチアゾールを用い、塩基の存在下に反応させて1−(2−ブロモチアゾール−5−イルメチル)−2−ニトロイミノ−3、5−ジメチルヘキサヒドロ−1、3、5−トリアジン(b)を得る。
この反応で塩基としては特に限定されないが、例えば水酸化ナトリウム、水酸化カリウムなどの水酸化アルカリ金属類、水素化ナトリウム、水素化カリウムなどの水素化アルカリ金属類、ナトリウムメチラート、ナトリウムエチラートなどのアルカリ金属アルコラート類、炭酸カリウム、炭酸ナトリウムなどの炭酸塩類、トリエチルアミン、ピリジン、DBUなどの有機塩基類などを使用することができる。溶媒としては、例えばメタノール、エタノールなどのアルコール類、ベンゼン、トルエンなどの芳香族炭化水素類、ジエチルエーテル、ジプロピルエーテル、テトラヒドロフランなどのエーテル類、アセトン、メチルエチルケトンなどのケトン類、アセトニトリル、プロピオニトリルなどのニトリル類、ジメチルホルムアミド、ジメチルアセトアミドなどの酸アミド類、ジメチルスルホキシドなどのスルホキシド類、水およびそれらの混合溶媒などを挙げることができる。反応温度は通常室温から溶媒の沸点の温度で、30分から10時間程度行う。
得られた化合物を塩基の存在下、3−メルカプトアルキルカルボン酸と反応させて1−(2−カルボキシエチアルキルチオチアゾール−5−イルメチル)−2−ニトロイミノ−3,5−ジメチルヘキサヒドロ−1,3,5−トリアジン(c)を得る。
得られた化合物を酸の存在下、必要により触媒の存在下反応させることにより1−[2−(2−カルボキシアルキルチオ)−5−イルメチル]−2−メチル−3−ニトログアニジン(d)を得る。
前記のように調製した抗原を2mg/mL程度になるように生理的リン酸緩衝液に溶解し、アジュバントと等量混合した後、BaLb/cマウスの腹腔内に投与する。その後、約2週間毎に追加免疫する。尾血管から採取した血液の血清中の抗体力価が高くなった前記マウスの脾臓を摘出し、無血清DMEM培地(ダルベッコ改変イーグル培地)中で、組織片等を取り除いた後に新しい培地中に移し、脾細胞を完全に培地中に浮遊させる。遠心、上清除去を数回繰り返し、細胞を洗った後、マウスのミエローマ細胞(P3X63Ag8.653)と細胞数の比5:1〜10:1(脾細胞:ミエローマ)で混合する。細胞を沈殿させ上清を取り除いたあと、攪拌しながら50%ポリエチレングリコール(分子量1500)をゆっくり加え細胞融合を行う。細胞融合後、遠心分離によって集めた細胞に、細胞数が5×105個/mLになるようにHAT培地を加えて懸濁し、細胞懸濁液を96穴プラスチックプレートに250μL/ウェルの量で分注して、37℃、5%炭酸ガス、加湿条件下のインキュベーター中で培養する。1週間後、ウェル中の培地の半量をHAT培地で置換して、10日から14日間培養する。培養液中の抗体の活性をELISAで調べ、目的とする抗体を産生しているウェルの細胞について、限界希釈法によりハイブリドーマのクローニングを行う。クローニングにより、抗クロチアニジンおよび抗ジノテフラン抗体を産生している安定なハイブリドーマ株を得る。
用いる担体は、96穴、48穴、192穴等のマイクロタイタープレートが好ましい。固相化は、例えば、固相化用抗体を含む緩衝液を担体上に載せ、インキュベーションすればよい。緩衝液中の抗体の濃度は、通常0.01μg/mLから100μg/mL程度である。緩衝液としては、検出手段に応じて公知のものを使用することができる。
クロチアニジンまたはジノテフランと酵素結合ハプテンとの競合阻害反応により、これらと固相化担体との複合体が生成する。反応は例えば、約25℃で約1時間行う。反応終了後、緩衝液で担体を洗浄し、固相化抗体と結合しなかった酵素結合ハプテンを除去する。
標識酵素としてペルオキシダーゼを使用する場合には、例えば、過酸化水素と、3,3’,5,5’−テトラメチルベンジジンまたはo−フェニレンジアミンを含む発色基質溶液を使用することができる。通常、発色基質溶液を加えて室温で約10分程度反応させた後、硫酸を加えることにより酵素反応を停止させる。3,3’,5,5’−テトラメチルベンジジンを使用する場合、450nmの吸光度を測定する。o−フェニレンジアミンを使用する場合、492nmの吸光度を測定する。なお、バックグランド値を補正するため、630nmの吸光度も同時に測定することが望ましい。
用いる担体は、通常のELISAに用いる担体であれば特に制限されないが、96穴等のマイクロタイタープレートが好ましい。固相化は、例えば、固相化用抗原を含む緩衝液を担体上に載せ、インキュベーションすればよい。緩衝液中の抗原の濃度は、通常0.01μg/mLから100μg/mL程度である。緩衝液としては、検出手段に応じて公知のものを使用することができる。
反応は、通常室温、1〜2時間程度で行うことができる。
クロチアニジンまたはジノテフランは、水に不溶性であるため、反応溶液中には各種有機溶媒を含有することができる。前記有機溶媒としては、クロチアニジンまたはジノテフランを溶解させ、かつ抗原−抗体反応を阻害しない範囲で有機溶媒およびその含有量を選択すればよい。具体的には、メタノール、ジメチルスルホキシドなどがあげられ、含有量は、5〜50重量%程度である。
固相化抗原−抗体複合体の量は、酵素標識した二次抗体(マウス抗体を認識する抗体)を添加して測定することができる。例えばクロチアニジンおよびジノテフランに対する抗体としてマウスモノクローナル抗体を用いる場合、酵素標識(例えば、ペルオキシダーゼまたはアルカリホスファターゼ等)した抗マウス−ヤギ抗体を用いて、担体に結合したクロチアニジンおよびジノテフランに対する抗体と反応させるのが望ましい。反応は、前記(3)と同様の条件下で行えばよい。反応後、緩衝液で洗浄する。
(1)1−(2−ブロモチアゾール−5−イルメチル)−2−ニトロイミノ−3,5−ジメチルヘキサヒドロ−1,3,5−トリアジンの合成
1,5−ジメチル−2−ニトロイミノヘキサヒドロ−1,3,5−トリアジン3.4g (19.7mmol)をアセトニトリル65mLに溶解し、炭酸カリウム3.0g(21.7mmol)、2−ブロモ−5−ブロモメチルチアゾール5.6g(21.7mmol)を加え、3時間加熱還流させた。反応液を濃縮し、残渣にメタノールを加えろ過した。ろ液をさらに濃縮し、メタノールを加えろ過した。ろ液を濃縮して褐色の液体として、1−(2−ブロモチアゾール−5−イルメチル)−2−ニトロイミノ−3,5−ジメチルヘキサヒドロ−1,3,5−トリアジン1.8g(収率26.2%)を得た。
エタノール10mLに1−(2−ブロモチアゾール−5−イルメチル)−2−ニトロイミノ−3,5−ジメチルヘキサヒドロ−1,3,5−トリアジン1.2g(3.4mmol)を溶解し、3−メルカプトプロピオン酸0.43g(4.1mmol)、炭酸カリウム1.1g (7.9mmol)を加え、45℃で1時間、80℃で4時間反応させ、その後10.5時間加熱還流を行った。反応液を濃縮し、残渣に水を加えて1N塩酸でpH3にし、酢酸エチルで抽出した。酢酸エチル層を無水硫酸マグネシウムで脱水、ろ過、濃縮して粗1−(2−カルボキシエチルチオチアゾール−5−イルメチル)−2−ニトロイミノ−3,5−ジメチルヘキサヒドロ−1,3,5−トリアジン0.69g(収率68.3%)を得た。
1−(2−カルボキシエチルチオチアゾール−5−イルメチル)−2−ニトロイミノ−3,5−ジメチルヘキサヒドロ−1,3,5−トリアジン0.45g(1.12mmol)をエタノール 10mLに溶解し、1N塩酸6.0mLを加え、40℃で5時間反応した。反応液を濃縮し、残渣をシリカゲルカラム(酢酸エチル:メタノール=95:5)で精製し、油状黄色液体の1−[2−(2−カルボキシエチルチオ)−5−イルメチル]−2−メチル−3−ニトログアニジン0.19g(収率54.5%)を得た。
免疫原としてスカシ貝へモシアニン(KLH)と本発明クロチアニジンハプテンとの結合体を、活性エステル法を用いて作製した。
固相化抗原としてウシ血清アルブミン(BSA)とクロチアニジンハプテンとの結合体を、活性エステル法を用いて作製した。
実施例2で調製した免疫源を2mg/mLとなるようにPBFに溶解し、これに等量の完全アジュバント(商品名:フロイント完全アジュバント;FCA)を等量混合しエマルジョン化し、その100μLを6〜7週齢のメスのBALB/Cマウスに腹腔投与した。これと同様の手順で、不完全アジュバント(商品名:フロイント不完全アジュバント;FICA)を等量混合した0.5mg/mLの免疫原100μLを2週間毎に追加免疫した。4回の免疫後、眼底から採血し、血清中の抗体力価を間接競合法で確認した。十分に力価が高くなったことを確認し、1週間後に最終免疫として免疫原10μg/100μL・PBSを尾静脈から投与した。その3日後に当該マウスから脾臓を摘出し細胞融合に供した。
実施例4で得られたハイブリドーマ株を10%牛胎児血清入りDMEMで培養し、
約2×106個の細胞をBALB/C メスRetire マウスの腹腔内に注射し、腹水液を採取した。得られた腹水はプロテインG カラムによりIgG精製を行った。
直接競合ELISAにおいてトレーサーとして用いるため、活性エステル法によりクロチアニジンハプテンと西洋ワサビペルオキシダーゼとの結合体を調製した。 クロチアニジンハプテン1.5mg、N−ヒドロキシスクシンイミド1.2mgおよび1−エチル−3−(3−ジメチルアミノプロピル)−カルボジイミド塩酸塩1.9mgを、N,N−ジメチルホルムアミド200μLに溶解し、この溶液を25℃の暗所に1.5時間放置しクロチアニジンハプテン溶液とした。
このBSA溶液に、先に調製したクロチアニジンハプテン溶液を徐々に滴下し、暗所にて室温で1.5時間攪拌した。反応終了後、4℃で一晩生理的リン酸緩衝液(PBS、10mMリン酸緩衝液、150mM NaCl、pH7.0)に対して透析した後、30℃で貯蔵した。ゲル濾過で精製を行い、濃度の測定はDCプロテインアッセイで行った。
(1)抗マウスIgGヤギ抗体をPBS緩衝液(10mM NaPB、150mM NaCl)で10μg/mLに希釈し、96穴マイクロプレートに100μg/ウェルづつ分注し、4℃で一晩放置することにより固相化した。次に液を吸引除去後、PBS緩衝液(0.4%BSA、10mM NaPB、150mM NaCl、pH7.0)を300μg/ウェル分注し、4℃で一晩静置することによりブロッキングを行った後、ブロッキング液を吸引除去した。
クロチアニジンと化学構造が類似している農薬について抗体NPR−1H12−15の交差反応性を調べた。交差反応性は、実施例6に記載の方法と同様にして試験化合物のIC50値を求め、次式により計算し交差反応率を算出した。
その結果、殺虫剤ジノテフランに対しては交差反応率75%の高い値を示したのに対し、殺虫剤のアセタミプリド、イミダクロプリド、ニテンピラム、チアクロプリド、チアメトキサム、硫酸ニコチンおよび殺菌剤のピリフェノックスに対しいずれも交差反応性は0.1%以下であり、抗体NPR−1H12−15はクロチアニジンおよびジノテフランに特異的な抗体であった。
Claims (9)
- Aが硫黄原子、Lがカルボキシル基、nが2である請求項1記載の化合物。
- 請求項1または2記載の化合物をハプテンとし、当該ハプテンと高分子化合物との複合体を抗原として用いることにより得られるクロチアニジンおよびジノテフランに対する抗体またはそのフラグメント。
- 前記抗体がモノクローナル抗体またはそのフラグメントであることを特徴とする請求項3または4記載の抗体またはそのフラグメント。
- 請求項3〜4のいずれかに記載の抗体を産生するハイブリドーマ。
- 前記ハイブリドーマがCTN−16A3−13である請求項5記載のハイブリドーマ。
- 請求項3または4記載の抗体またはそのフラグメントを含んでなるクロチアニジンまたはジノテフランの測定手段。
- 請求項3または4記載の抗体またはそのフラグメントを含んでなるクロチアニジンまたはジノテフランの測定キット。
- 請求項3または4記載の抗体、請求項7記載の測定手段または請求項8記載の測定キットを用いることを特徴とするクロチアニジンまたはジノテフランの測定方法。
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