CN112698026B - 一种检测噻虫胺的试纸条及其应用 - Google Patents

Abstract

本发明公开了一种检测噻虫胺的试纸条及其应用。试纸条包括样品吸收垫(1)、结合物释放垫(2)、反应膜(3)、吸水垫(4)和底板(7)，所述反应膜上具有包被有噻虫胺半抗原‑载体蛋白偶联物的检测线(5)和包被有羊抗鼠抗抗体的质控线(6)，所述结合物释放垫(2)喷涂有噻虫胺单克隆抗体‑胶体金标记物。本发明还提供了一种应用上述噻虫胺试纸条检测农作物中噻虫胺残留的方法。本发明所提供的试纸条具有操作简单、灵敏度高、检测速度快、成本低等特点，适合大量样本的筛查和现场监控。

Description

一种检测噻虫胺的试纸条及其应用

技术领域

本发明涉及一种检测噻虫胺的试纸条及其应用，具体涉及一种用于检测噻虫胺的胶体金试纸条，其特别适用于农作物中噻虫胺残留的检测。

背景技术

噻虫胺是新烟碱类中的一种杀虫剂，是一类高效安全、高选择性的新型杀虫剂，其作用与烟碱乙酰胆碱受体类似，具有触杀、胃毒和内吸活性。主要用于水稻、蔬菜、果树及其他作物上防治蚜虫、叶蝉、蓟马、飞虱等半翅目、鞘翅目、双翅目和某些鳞翅目类害虫的杀虫剂，具有高效、广谱、用量少、毒性低、药效持效期长、对作物无药害、使用安全、与常规农药无交互抗性等优点，有卓越的内吸和渗透作用，是替代高毒有机磷农药的又一品种。其结构新颖、特殊，性能与传统烟碱类杀虫剂相比更为优异，有可能成为世界性的大型杀虫剂品种。

检测噻虫胺的方法有高效液相色谱-串联质谱法、液相色谱-串联质谱法、气相色谱法等。与上述方法相比，免疫化学检测法对药物检测具有快速、特异、灵敏、准确、可以批量监测、样品处理简单、能实现自动化操作等优点。而免疫化学法检测噻虫胺的前提是需要具备针对噻虫胺的抗体，本申请发明了噻虫胺人工抗原制备方法，并将其应用于快速检测试纸条中，用时短，操作简单，成本较低，适用于基层单位大批量地检测样品。

发明内容

本发明的目的是提供一种灵敏度高、操作简单、成本低、检测时间短的噻虫胺残留检测试纸条。

本发明所提供的检测噻虫胺残留的试纸条，包括样品吸收垫(1)、结合物释放垫(2)、反应膜(3)、吸水垫(4)和底板(7)；所述反应膜上具有包被有噻虫胺半抗原-载体蛋白偶联物的检测线(5)和包被有羊抗鼠抗抗体的质控线(6)，所述结合物释放垫(2)喷涂有噻虫胺单克隆抗体-胶体金标记物。

所述噻虫胺半抗原-载体蛋白偶联物是由噻虫胺半抗原与载体蛋白偶联得到，所述载体蛋白为牛血清白蛋白、卵清蛋白、血蓝蛋白、甲状腺蛋白、人血清白蛋白。

所述噻虫胺单克隆抗体是以噻虫胺半抗原-载体蛋白偶联物作为免疫原制备获得，是由噻虫胺单克隆抗体杂交瘤细胞株分泌获得；所述羊抗鼠抗抗体是将鼠源抗体免疫羊得到。

所述样品吸收垫(1)、结合物释放垫(2)、反应膜(3)、吸水垫(4)依次粘贴在底板(7)上，所述结合物释放垫1/3～1/2被覆盖于样品吸收垫下。

所述底板可为PVC底板或其他硬质不吸水的材料；所述样品吸收垫可为吸滤纸或滤油纸；所述结合物释放垫可为玻璃棉或聚酯材料；所述吸水垫为吸水纸；所述反应膜可为硝酸纤维素膜或醋酸纤维素膜。

本发明的另一个目的是提供一种制备上述试纸条的方法，其包括步骤：

1)制备喷涂有噻虫胺单克隆抗体-胶体金标记物的结合物释放垫；

2)制备具有包被有噻虫胺半抗原-载体蛋白偶联物的检测线和包被有羊抗鼠抗抗体的质控线的反应膜；

3)将1)和2)制备好的结合物释放垫、反应膜与样品吸收垫、吸水垫和底板组装成试纸条。

具体地说，步骤包括：

1)半抗原制备：将噻虫胺与氨基丁酸等物质经过一系列化学反应得到噻虫胺半抗原；

2)将噻虫胺半抗原与载体蛋白偶联，得到噻虫胺半抗原-载体蛋白偶联物；

3)用噻虫胺半抗原-载体蛋白偶联物免疫小鼠，将小鼠脾细胞和骨髓瘤细胞通过融合、筛选，得到噻虫胺单克隆杂交瘤细胞株；

4)提取小鼠IgG免疫健康山羊，得到羊抗鼠抗抗体；

5)用柠檬酸三钠与氯金酸反应制备胶体金；

6)将步骤3)制备的噻虫胺单克隆抗体加入步骤5)制备的胶体金中，得到噻虫胺单克隆抗体-胶体金标记物；

7)将噻虫胺单克隆抗体-胶体金标记物喷涂在结合物释放垫上，37℃烘1h后取出，置于干燥环境中保存备用；

8)将噻虫胺半抗原-载体蛋白偶联物包被在反应膜上构成检测线，将羊抗鼠抗抗体包被在反应膜上构成质控线；

9)将样品吸收垫用含0.5％牛血清白蛋白(体积分数)、pH为7.2、0.1mol/L磷酸盐缓冲液浸泡2h，37℃下烘干2h；

10)在底板上按顺序粘贴上样品吸收垫、结合物释放垫、反应膜、吸水垫，样品吸收垫盖住结合物释放垫，最后切成3mm宽的小条，加塑料盒，真空包装，4～30℃条件下可保存12个月。

本发明的另一个目的是提供一种应用上述试纸条检测农作物中噻虫胺残留的方法，它包括步骤：

(1)用试纸条进行检测；

(2)分析检测结果。

本发明的噻虫胺快速检测试纸条采用高度特异性的抗体抗原反应及竞争抑制免疫层析分析技术，将噻虫胺单克隆抗体-胶体金标记物固定于结合物释放垫上，样品中的噻虫胺在流动过程中，与结合物释放垫上的噻虫胺单克隆抗体-胶体金标记物结合，形成药物-抗体-胶体金标记物。样本中的药物与反应膜检测线上的噻虫胺半抗原-载体蛋白偶联物竞争结合噻虫胺单克隆抗体-胶体金标记物，根据检测线红色条带有无或颜色深浅来判断待测样品液中是否含有噻虫胺残留。

检测时，样品经处理后滴入试纸条孔内，当噻虫胺在样品中的浓度低于检测限或为零时，单克隆抗体-胶体金标记物在层析过程中会与固定在反应膜上的噻虫胺半抗原-载体蛋白偶联物结合，在检测线(T)和质控线(C)内各出现一条红色条带；如果噻虫胺在样品中的浓度等于或高于检测限，单克隆抗体-胶体金标记物会与噻虫胺全部结合，从而在T线处因为竞争反应不会与噻虫胺半抗原-载体蛋白偶联物结合而不出现红色条带。

本发明的试纸条具有灵敏度高、特异性强、成本低、操作简单、检测时间短、适合各种单位使用、储存简单、保质期长的优点。用本发明试纸条检测噻虫胺残留的方法简便、快速、直观、准确、适用范围广、成本低、易推广使用。

附图说明

图1为噻虫胺半抗原合成图。

图2为试纸条剖面结构示意图。

具体实施方式

下面结合具体的实施例来进一步阐述本发明。应理解，这些实施例仅用于说明本发明，而不用来限制本发明的范围。

实施例1噻虫胺检测试纸条的制备

该试纸条的制备方法主要包括以下步骤：

1)制备喷涂有噻虫胺单克隆抗体-胶体金标记物的结合物释放垫；

2)制备具有包被有噻虫胺半抗原-载体蛋白偶联物的检测线和包被有羊抗鼠抗抗体的质控线的反应膜；

3)将1)和2)制备好的结合物释放垫、反应膜与样品吸收垫、吸水垫和PVC底板组装成试纸条。

下面分步详细叙述：

1、噻虫胺半抗原的制备

取噻虫胺2.49g，加甲醇200ml溶解，取37％甲醛1.2ml，加纯水20ml稀释，加1mol/L盐酸3ml，充分搅拌1h，加入到噻虫胺溶液中，充分混匀，继续搅拌2h，得到A液；取氨基丁酸1.03g，加水10ml溶解，滴加到A液中，油浴加热，回流反应3h，停止反应，加水200ml，加乙酸乙酯200ml，萃取，有机相加水100ml×3洗涤三次，有机相蒸干，上硅胶柱，二氯甲烷/甲醇(v/v,10/1)洗脱分离，得到丁酸-噻虫胺半抗原产物0.63g，收率17.3％。

2、免疫原的制备

取丁酸-噻虫胺半抗原14mg，加DMF 1ml溶解,加三乙胺20微升，加氯甲酸异丁酯95微升，冷却至0-5℃，反应3h，得到半抗原溶液A液；取牛血清白蛋白(BSA)50mg，加0.05M PB缓冲液溶解，得到B液，将A液滴加到B液中，4℃反应12h，0.02M PBS透析纯化3天，每天换液三次，得到噻虫胺-BSA偶联物，即为免疫原，-20℃保存，备用。

3、包被原的制备

取丁酸-噻虫胺半抗原8mg，加DMSO 1ml溶解,加NHS 7.1mg，DCC 16mg，室温反应3h，得到半抗原溶液A液；取卵血清白蛋白(OVA)50mg，加0.05M PB缓冲液溶解，得到B液，将A液滴加到B液中，4℃反应12h，0.02M PBS透析纯化3天，每天换液三次，得到噻虫胺-OVA偶联物，即为包被原，-20℃保存，备用。

4、噻虫胺单克隆抗体的制备

(1)动物免疫

将步骤2得到的免疫原注入Balb/c小鼠体内，免疫剂量为150μg/只，使其产生抗血清。

(2)细胞融合和克隆化

取免疫Balb/c小鼠脾细胞，按8:1(数量配比)比例与SP2/0骨髓瘤细胞融合，采用间接竞争ELISA法测定细胞上清液，筛选阳性孔。利用有限稀释法对阳性孔进行克隆化，直到得到稳定分泌单克隆抗体的杂交瘤细胞株。

(3)细胞冻存和复苏

将杂交瘤细胞用冻存液制成1×10⁶个/ml的细胞悬液，在液氮中长期保存。复苏时取出冻存管，立即放入37℃水浴中速融，离心去除冻存液后，移入培养瓶内培养。

(4)单克隆抗体的制备与纯化

增量培养法：将杂交瘤细胞置于细胞培养基中，在37℃条件下进行培养，用辛酸-饱和硫酸铵法将得到的培养液进行纯化，得到单克隆抗体，-20℃保存。

所述细胞培养基为向RPMI1640培养基中添加小牛血清和碳酸氢钠，使小牛血清在细胞培养基中的终浓度为20％(质量分数)，碳酸氢钠在细胞培养基中的终浓度为0.2％(质量分数)；所述细胞培养基的pH为7.4。

5、羊抗鼠抗抗体的制备

以羊作为免疫动物，以鼠源抗体为免疫原对无病原体羊进行免疫，得到羊抗鼠抗抗体。

6、噻虫胺单克隆抗体-胶体金标记物的制备

(1)胶体金的制备

用双蒸去离子水将1％氯金酸稀释成0.01％(质量分数)，取100ml置于锥形瓶中，用恒温电磁搅拌器加热至沸腾，在持续高温、持续搅拌下加入2.5ml 1％柠檬酸三钠，继续匀速搅拌加热至溶液呈透亮的红色时停止，冷却至室温后用去离子水恢复到原体积，4℃保存。制备好的胶体金外观纯净、透亮、无沉淀和漂浮物。

(2)噻虫胺单克隆抗体-胶体金标记物的制备

在磁力搅拌下，用0.2mol/L碳酸钾溶液调胶体金的pH值至7.0，按每毫升胶体金溶液中加入20～50μg的标准向胶体金溶液中加入噻虫胺单克隆抗体，继续搅拌混匀30min，加入10％BSA，使其在胶体金溶液中的终浓度为1％(体积分数)，静置10min。12000r/min、4℃离心40min，弃上清液，沉淀用复溶缓冲液洗涤两次，用体积为初始胶体金体积1/10的复溶缓冲液将沉淀重悬，置4℃备用。

复溶缓冲液：含酪蛋白0.02％～0.1％(质量分数)、吐温-80 0.05％～0.2％(质量分数)、pH7.2的0.02mol/L磷酸盐缓冲液。

7、结合物释放垫的制备

将结合物释放垫浸泡于含有牛血清白蛋白(牛血清白蛋白在缓冲液中的浓度为0.5％)、pH为7.2、0.5mol/L的磷酸盐缓冲液中，均匀浸湿1h，37℃烘3h备用。用Isoflow喷膜仪将制备好的噻虫胺单克隆抗体-胶体金标记物均匀喷涂在结合物释放垫上，每1cm结合物释放垫喷涂0.01ml噻虫胺单克隆抗体-胶体金标记物后，置于37℃环境中(湿度＜20％)60min后取出，置于干燥环境(湿度＜20％)中保存备用。

8、反应膜的制备

将噻虫胺半抗原-卵清蛋白偶联物包被到反应膜上构成检测线，将羊抗鼠抗抗体包被在反应膜上构成质控线。

包被过程：用磷酸缓冲液将噻虫胺半抗原-卵清蛋白偶联物稀释到10mg/ml，用Isoflow点膜仪将其包被于硝酸纤维素膜上的检测线(T线)，包被量为0.8μl/cm；用0.01mol/L、pH7.4的磷酸盐缓冲液将羊抗鼠抗抗体稀释到200μg/ml，用Isoflow点膜仪将其包被于硝酸纤维素膜上的质控线(C线)，包被量为1.0μl/cm。将包被好的反应膜置于37℃条件下干燥2h，备用。

9、样品吸收垫的制备

将样品吸收垫置于含0.5％牛血清白蛋白(体积分数)、pH7.2、0.1mol/L磷酸盐缓冲液中浸泡2h，37℃烘2h备用。

10、试纸条的组装

将样品吸收垫、结合物释放垫、反应膜、吸水垫依次按顺序粘贴在PVC底板上；结合物释放垫从起始端有1/3区域被样品吸收垫覆盖，结合物释放垫的末端与反应膜的始端连接，反应膜的末端与吸水垫的始端相连，样品吸收垫的始端与PVC底板的始端对齐，吸水垫的末端与PVC底板的末端对齐；所述反应膜上有检测线和质控线，检测线(T线)和质控线(C线)均为与所述试纸条的长相垂直的条状带；检测线位于靠近结合物释放垫的末端的一侧；质控线位于远离结合物释放垫的末端的一侧；将试纸条用机器切成3mm宽的小条，装在特制的塑料制卡中，4～30℃条件下可保存12个月。

实施例2样品中噻虫胺残留的检测

1、用试纸条进行检测

用吸管吸取待检样品溶液垂直滴加3滴于加样孔，液体流动时开始计时，反应5～10min，判定结果。

2、分析检测结果

通过胶体金分析仪(简称“分析仪”)读取结果：

阴性(-)：表示样品中待测物质浓度低于检测限；

阳性(+)：表示样品中待测物质浓度等于或高于检测限；

无效：表示需要重新测试。

实施例3样品检测实例

1、检测限试验

取空白水稻样本，在其中分别添加噻虫胺至终浓度为2.5、5、10μg/kg，取试纸条进行检测，每个样本重复测定三次。

用试纸条检测水稻样本时，当其中噻虫胺添加浓度为2.5μg/kg时，分析仪显示为阴性；当其中噻虫胺添加浓度为5、10μg/kg时，分析仪显示为阳性。

2、假阳性率、假阴性率试验

取已知噻虫胺含量为5μg/kg的水稻阳性样本各20份和含量小于2.5μg/kg的水稻阴性样本各20份，用三批试纸条进行检测，计算其阴阳性率。结果见表1。

表1水稻检测样本结果

结果表明：用3个批次生产的试纸条检测阳性水稻样本时，结果全为阳性，可知阳性样本符合率为100％，假阴性率为0；检测20份阴性水稻样本时，结果全为阴性，可知阴性符合率为100％，假阳性率为0。说明本发明的检测噻虫胺的试纸条可以对水稻中噻虫胺残留进行快速检测。

3、特异性试验

分别配制100μg/L的吡虫啉、三唑磷等药物，用此试纸条检测，重复3次，判断试纸条的特异性。结果显示，试纸条均显示阴性，即与上述药物均无交叉，说明该试纸条特异性良好。

Claims (6)

1.一种检测噻虫胺的试纸条，包括样品吸收垫（1）、结合物释放垫（2）、反应膜（3）、吸水垫（4）和底板（7），其特征在于所述反应膜上具有包被有噻虫胺半抗原-载体蛋白偶联物的检测线（5）和包被有羊抗鼠抗抗体的质控线（6），所述噻虫胺半抗原-载体蛋白偶联物由噻虫胺半抗原与载体蛋白偶联得到，所述载体蛋白为牛血清白蛋白、卵清蛋白、血蓝蛋白、甲状腺蛋白、人血清白蛋白；所述结合物释放垫（2）喷涂有噻虫胺单克隆抗体-胶体金标记物，所述噻虫胺半抗原的制备方法如下：

取噻虫胺2.49g，加甲醇200ml溶解，取37%甲醛1.2ml，加纯水20ml稀释，加1mol/L盐酸3ml，充分搅拌1h，加入到噻虫胺溶液中，充分混匀，继续搅拌2h，得到A液；取氨基丁酸1.03g，加水10ml溶解，滴加到A液中，油浴加热，回流反应3h，停止反应，加水200ml，加乙酸乙酯200ml，萃取，有机相加水100ml×3洗涤三次，有机相蒸干，上硅胶柱，二氯甲烷与甲醇的体积比为10:1洗脱分离，得到丁酸-噻虫胺半抗原产物0.63g，收率17.3%；

所述噻虫胺半抗原的制备反应式如下：

。

2.如权利要求1所述的试纸条，其特征在于所述样品吸收垫（1）、结合物释放垫（2）、反应膜（3）、吸水垫（4）依次粘贴在底板（7）上。

3.如权利要求1-2任一项所述的试纸条，其特征在于所述结合物释放垫1/3~1/2被覆盖于样品吸收垫下。

4.如权利要求1所述的试纸条，其特征在于所述噻虫胺单克隆抗体是以噻虫胺半抗原-载体蛋白偶联物作为免疫原制备获得，所述羊抗鼠抗抗体是将鼠源抗体免疫羊得到。

5.一种制备权利要求1-4任一项所述试纸条的方法，其包括步骤：

1）制备喷涂有噻虫胺单克隆抗体-胶体金标记物的结合物释放垫；

2）制备具有包被有噻虫胺半抗原-载体蛋白偶联物的检测线和包被有羊抗鼠抗抗体的质控线的反应膜；

3）将1）和2）制备好的结合物释放垫、反应膜与样品吸收垫、吸水垫和底板组装成试纸条。

6.一种检测农作物中噻虫胺残留的方法，其包括步骤：

1）用权利要求1-4任一项所述的试纸条进行检测；

2）分析检测结果。