JP2005035893A - アラクロールハプテン、アラクロールに対する抗体およびそれを用いる免疫学的測定方法 - Google Patents

Abstract

【課題】アラクロールに対して高感度かつ他の類似化合物に対する交差反応性の明確なアラクロール抗体を作製するためのハプテン、アラクロール抗体ならびに当該抗体を用いるアラクロールの免疫学的測定キットおよび免疫学的測定方法を提供する。
【解決手段】下記式（ＩＶ）：
【化１】

（式中、ｎは１〜５の整数）で表わされる構造を有する化合物、前記化合物をハプテンとし、当該ハプテンと高分子化合物との複合体を抗原として用いることにより得られるアラクロールに対するモノクローナル抗体、前記抗体を産生するハイブリドーマ、前記抗体を含んでなるアラクロールの測定キット、および前記抗体または前記キットを用いることを特徴とするアラクロールの測定方法。
【選択図】 なし

Description

【０００１】
【発明の属する技術分野】
本発明は、除草剤アラクロールのハプテン化合物、抗体およびそれを用いる免疫学的測定方法等に関する。
【０００２】
【従来の技術】
除草剤２−クロロ−２’，６’−ジエチル−Ｎ−メトキシメチルアセトアニリド（本明細書中ではアラクロール（一般名）とも記載し、以下単にアラクロールと略す） は、下記式Ｉ：
【化２】

で表される構造を有するアセトアニリド系除草剤である。アラクロールは、イネ科雑草から広葉雑草の発芽前の防除に広く使用されている。アラクロールに構造が類似するアセトアニリド系除草剤としてプレチラクロールやメトラクロールも広く使用されている。
【０００３】
近年、土壌、水、大気等の環境中での残留農薬や輸入農作物のポストハーベスト農薬の残留等に関心が高まっており、環境、食物、および生体における農薬のモニタリングが重要な課題となっている。除草剤アラクロールは、食品衛生法に基づく食品・食品添加物等規格基準の中で食品中の残留濃度が規定されている。各基準値は、トウモロコシ・大豆が０． ２ｐｐｍ、小豆類・そら豆が０． １ｐｐｍ、らっかせいが０． ０５ｐｐｍ、日本なし・いちご・ぶどう・キャベツ・だいこん類の根・だいこん類の葉・はくさい・芽キャベツ・ばれいしょ・さとうきび・てんさい・ほうれんそうが０．０１ｐｐｍである。
【０００４】
従来、アラクロールを始めとする化学物質の測定には化学分析法が用いられてきた。例えば、アラクロールの農作物中の量をモニタリングする場合には、試料から抽出・精製後、ガスクロマトグラフィーを用いて測定されてきた。化学分析は、精度の点では問題はないものの操作が煩雑で測定に時間がかかるため、より迅速、簡便かつ経済的にモニタリングすることのできる新しい測定法の開発が求められていた。
【０００５】
一方、免疫学的測定法は、抗原抗体反応を利用して抗原の測定を行うもので、測定精度が優れているばかりでなく、迅速、簡便かつ経済的な測定法である。従来、免疫学的測定法は、臨床診断の分野で患者の病態解析法の一つとして大きな役割を担ってきたが、農薬のような環境負荷化学物質の測定へも適用が進んでいる。プレチラクロールにおいてはすでにモノクローナル抗体が調製され、免疫学的測定法の開発が行われている（特許文献１を参照）。アラクロールにおいても免疫学的測定法が報告されている（非特許文献１および２を参照）が、モノクローナル抗体を用いる測定法は知られていない。
【０００６】
抗体には、一般に免疫したウサギやヤギなどから血液を採取後その中に含まれる抗体を分離・精製するいわゆるポリクローナル抗体や、抗体産生能を持つクローン化ハイブリドーマの分泌する抗体を分離・精製するいわゆるモノクローナル抗体がある。これらの抗体は反応性において十分な性能を持つが、類似の構造を有する化学物質間で交差反応が起きる問題点があった。
【０００７】
【特許文献１】
特開２０００−２７０８６２
【非特許文献１】
Ｅｎｖｉｒｏｎｍｅｎｔｅｌ Ｓｃｉｅｎｃｅ ＆ Ｔｅｃｈｎｏｌｏｇｙ， ３５，４１１１−４１１９ （２００１）
【非特許文献２】
Ｊｏｕｒｎａｌ ｏｆ Ｃｈｒｏｍａｔｏｇｒａｐｈｙ Ａ， ９６３， １２５−１３６ （２００２）
【０００８】
【発明が解決しようとする課題】
そこで、本発明の目的は、アラクロールに対して高感度かつ他の類似化合物に対する交差反応性の明確なアラクロール抗体を作製するためのハプテン、アラクロール抗体ならびに当該抗体を用いるアラクロールの免疫学的測定キットおよび免疫学的測定方法を提供することにある。
【０００９】
【課題を解決するための手段】
本発明者らは、下記要件を満たすことにより上記目的を達成できることを見出し、本発明を完成するに至った。
【００１０】
すなわち、本発明は、下記式（ＩＶ）：
【化３】

（式中、ｎは１〜５の整数である）
で表わされる構造を有する化合物に関する。
前記式（ＩＶ）で表わされる化合物において、前記ｎが２であることが好ましい。
【００１１】
本発明は、前記化合物をハプテンとし、当該ハプテンと高分子化合物との複合体を抗原として用いることにより得られるアラクロールに対する抗体に関する。前記抗体は、モノクローナル抗体が好ましい。
前記モノクローナル抗体は、アラクロール、アセトクロール、ブタクロールおよびプレチラクロールからなる除草剤群の測定方法に使用されることが好ましい。
前記モノクローナル抗体は、アラクロールおよびブタクロールからなる除草剤群の測定方法に使用されることが好ましい。
本発明は、前記モノクローナル抗体を産生するハイブリドーマに関する。
前記ハイブリドーマは、ＡＲ２０１（ＦＥＲＭ Ｐ−１９３０３）、ＡＲ２０３またはＡＲ３０６であることが好ましい。
【００１２】
本発明は、前記モノクローナル抗体を含んでなるアラクロールの測定キットに関する。
本発明は、前記モノクローナル抗体または前記キットを用いることを特徴とするアラクロールの測定方法に関する。
【００１３】
［作用効果］
本発明の化合物は、アラクロールハプテンとして好適に用いられるものである。当該ハプテンと高分子化合物との複合体を抗原として用いることにより、動物においてアラクロールに対する免疫応答を良好に惹起することができ、特異的かつ高感度なアラクロール抗体を得ることができる。前記式（ＩＶ） においてｎが２の場合、アラクロールハプテンとして特に優れた効果を奏する。
【００１４】
本発明の抗体は、特異的かつ高感度にアラクロールを検出することができる。当該抗体がモノクローナル抗体の場合、アラクロールに対して高感度であり、しかも他の類似化合物に対する交差反応性が明確である。前記モノクローナル抗体を交差反応性により単独または組み合わせて用いることにより、アラクロールに構造が類似するアセトアニリド系除草剤をも同時に検出することができるとともに、それらの類似化合物を分別して検出することもできる。本発明のハイブリドーマは、前記モノクローナル抗体を安定して産生することができ、当該ハイブリドーマを培養することにより、大量のモノクローナル抗体を製造することができる。本発明のキットは、本発明のモノクローナル抗体を含むことにより、アラクロールの免疫学的測定方法に好適に用いられ、アラクロールを特異的、高感度および簡便に測定することのできる手段を提供することができる。本発明のアラクロールの測定方法は、本発明のモノクローナル抗体またはキットを用いることにより感度、特異性および操作の簡便性にすぐれた効果を奏する。
【００１５】
【発明の実施の形態】
本発明は、下記式（ＩＶ）：
【化４】

（式中、ｎは１〜５の整数である）
で表わされる構造を有する化合物を提供する。前記化合物は、アラクロールハプテンとして好適に使用される。
【００１６】
前記式（ＩＶ）において、−Ｓ−（ＣＨ_２ ）_ｎ −はアラクロールの部分に導入したスペーサーアームを表わし、ｎは１〜５の整数である。前記ｎは、アラクロールと結合対象の高分子化合物との間に適度なスペースを有するためには２〜４であることが好ましく、２がより好ましい。
【００１７】
前記式（ＩＶ）において、前記スペーサーアームに隣接するカルボキシ基が、後述する高分子化合物と共有結合することにより、複合体を形成する。
【００１８】
前記アラクロールハプテンの製造は、公知の合成方法により行なうことができ、特に限定されるものではない。例えば実施例１に記載された製造方法として、アラクロールとスルファニルアルキルカルボン酸エステルとを有機溶媒に溶解して、塩基の存在下反応させ、アラクロールの塩素基の位置にスペーサーアームが導入された化合物、アラクロールとカルボン酸エステルのスルフィドを合成し、次いで前記エステルを加水分解して式（ＩＶ） の化合物を得る方法について説明する。
【００１９】
前記スルファニルアルキルカルボン酸エステルとしては、例えばエチルエステルとして２−スルファニル酢酸エチル、３−スルファニルプロピオン酸エチル、４−スルファニル酪酸エチル、５−スルファニル吉草酸エチル、６−スルファニルヘキサン酸エチル等があげられるが、これらに限定されるものではない。
【００２０】
前記有機溶媒としては、アセトン、アセトニトリル、ヘキサン、ペンタン、ベンゼン、トルエン、ジクロロメタン、クロロホルム、酢酸エチル、ジメチルホルムアミド、またはこれらの混合溶媒等があげられる。
【００２１】
前記塩基としては、炭酸水素ナトリウム、炭酸カリウム、炭酸ナトリウム、炭酸リチウム、炭酸水素カリウム、水酸化ナトリウム、水酸化カリウム等があげられる。
【００２２】
アラクロールとスルファニルアルキルカルボン酸エステルの合成反応は、通常、室温から前記有機溶媒の沸点以下、３０分ないし１０時間程度行なう。
【００２３】
次に、得られたアラクロールとカルボン酸エステルのスルフィドを加水分解し、遊離のカルボキシ基を有する化合物（ＩＶ）を得る。
【００２４】
エステルの加水分解は、アルカリ加水分解、酸加水分解等の公知の方法により行なうことができ、特に限定されるものではない。例えばアルカリ加水分解の場合、前記カルボン酸エステルを、メタノール、エタノール、テトラヒドロフラン、エチレングリコール等の有機溶媒またはこれら有機溶媒と水との混合溶媒に溶解し、次いで水酸化ナトリウム、水酸化カリウム、炭酸ナトリウム、炭酸水素ナトリウム、炭酸カリウム等のアルカリ水溶液を加えて、０℃〜５０℃程度で、３０分〜３時間程度反応させることにより行なうことができる。
【００２５】
このようにして得られたアラクロールハプテンは、牛血清アルブミン（ＢＳＡ）、ウサギ血清アルブミン（ＲＳＡ） 、オボアルブミン（ＯＶＡ） 、スカシ貝ヘモシアニン（ＫＬＨ） 、チログロブリン（ＴＧ）、免疫グロブリン等の高分子化合物（タンパク質）との複合体を形成させた後、免疫原として用いる。
【００２６】
複合体の形成方法は、公知の方法により行なうことができ、特に限定されるものではない。例えば、混合酸無水物法または活性エステル法等により前記アラクロールハプテンのカルボキシ基と前記高分子化合物の官能基とを反応させて、複合体を形成することができる。
【００２７】
本発明は、前記ハプテンと高分子化合物との複合体を抗原として用いることにより得られるアラクロールに対する抗体を提供する。
【００２８】
アラクロールとは、下記式（Ｉ）：
【化５】

で表わされるアセトアニリド系除草剤２−クロロ−２’，６’−ジエチル−Ｎ−メトキシメチルアセトアニリドである。
【００２９】
アセトアニリド系除草剤としては、前記アラクロールの他、アセトクロール、ブタクロール、メトラクロール、メタザクロール、プレチラクロールおよびプロパクロールなどの構造類似化合物が知られており、これら化合物の構造式は表１に記載されている。本発明の抗体は、アラクロールに対する特異性を有する抗体である。
【００３０】
本明細書でいう「抗体」には、ポリクローナル抗体またはモノクローナル抗体が包含され、ＦａｂフラグメントやＦ（ａｂ’）_２ フラグメントなどのように抗原結合性を有する抗体の一部も包含される。これら抗体の中でも、モノクローナル抗体が好ましい。
【００３１】
前記モノクローナル抗体は、アラクロールに対する特異性と類似化合物に対する交差反応性とを明確にするため、下記のようなＩＣ_５０値を有することが好ましい。ここでＩＣ_５０値とは、間接競合ＥＬＩＳＡまたは直接競合ＥＬＩＳＡにより標準阻害曲線を求めて、５０％阻害を示す抗体の濃度をいう。
【００３２】
すなわち、本抗体は、間接競合ＥＬＩＳＡによるアラクロールに対するＩＣ_５０が１０ｎｇ／ｍｌ未満であることが好ましく、７．５ｎｇ／ｍｌ以下がより好ましい。また、本抗体は、直接競合ＥＬＩＳＡによるアラクロールに対するＩＣ_５０が７．５ｎｇ／ｍｌ未満であることが好ましく、５ｎｇ／ｍｌ以下がより好ましい。
【００３３】
本抗体は、間接競合ＥＬＩＳＡによるアセトクロールに対するＩＣ_５０が５０ｎｇ／ｍｌ以上であることが好ましく、６０ｎｇ／ｍｌ以上がより好ましい。
【００３４】
本抗体は、間接競合ＥＬＩＳＡによるブタクロールに対するＩＣ_５０が１０ｎｇ／ｍｌ以上であることが好ましく、２０ｎｇ／ｍｌ以上がより好ましい。
【００３５】
本抗体は、間接競合ＥＬＩＳＡによるプレチラクロールに対するＩＣ_５０が５０ｎｇ／ｍｌ以上であることが好ましく、６０ｎｇ／ｍｌ以上がより好ましい。
【００３６】
前記抗体の製造方法は、公知であり、本発明の抗体も常法に従って製造することができる（Ｃｕｒｒｅｎｔ Ｐｒｏｔｏｃｏｌ ｉｎ Ｍｏｌｅｃｕｌａｒ Ｂｉｏｌｏｇｙ， Ｃｈａｐｔｅｒ １１．１２〜１１．１３（２０００） ）。具体的には、本発明の抗体がポリクローナル抗体の場合には、常法に従って前記アラクロールハプテンと高分子化合物との複合体を形成させた後、当該複合体を家兎等の非ヒト動物に免疫し、該免疫動物の血清から常法に従って得ることが可能である。一方、モノクローナル抗体の場合には、前記複合体を常法に従ってマウス等の非ヒト動物に免疫し、得られた脾臓細胞と骨髄腫細胞とを細胞融合させて調製したハイブリドーマ細胞をスクリーニングし、モノクローナル抗体産生ハイブリドーマを培養することにより得ることができる（Ｃｕｒｒｅｎｔ ｐｒｏｔｏｃｏｌｓ ｉｎ Ｍｏｌｅｃｕｌａｒ Ｂｉｏｌｏｇｙ ｅｄｉｔ． Ａｕｓｕｂｅｌ ｅｔ ａｌ． （１９８７） Ｐｕｂｌｉｓｈ． Ｊｏｈｎ Ｗｉｌｅｙ ａｎｄ Ｓｏｎｓ． Ｓｅｃｔｉｏｎ １１．４ 〜１１．１１ ）。
【００３７】
抗体の調製は、限外ろ過、硫安分画、イオン交換クロマトグラフィー、ゲルろ過クロマトグラフィー、アフィニテイークロマトグラフィーなどの濃縮・精製法を適宜組み合わせて行うことができる。
【００３８】
また、本発明は、前記モノクローナル抗体を産生するハイブリドーマを提供する。以下、マウスでのハイブリドーマの作製方法についてより詳細に説明する。
【００３９】
（１）モノクローナル抗体産生ハイブリドーマの作製
以下、Ｂａｌｂ／ｃマウスを例にして説明する。前記のように調製した免疫原を２ｍｇ／ｍｌ程度になるように生理的リン酸緩衝液に溶解し、アジュバントと等量混合した後、Ｂａｌｂ／ｃマウスに腹腔内に投与する。その後、約２週間毎に追加免疫する。尾血管から採取した血液の血清中の抗体力価が高くなった前記マウスの脾臓を摘出し、ＤＭＥＭ培地（ダルベッコ改変イーグル培地）を入れたシャーレ内で前記脾臓から細胞を取り出す。培地を遠沈管に移し、大きな組織片を沈降させ、脾臓細胞が浮遊している上清を静かに取り、単細胞の懸濁液を低速で遠心分離して細胞を集め、脾臓細胞を調製する。マウスのミエローマ細胞（Ｐ３×６３Ａｇ８．６５３）を細胞数の比で５：１（ミエローマ細胞：脾臓細胞）になるように混合し、低速で遠心分離して細胞を集める。沈殿細胞をほぐした後、３７℃に温めておいた５０％ポリエチレングリコール（分子量１，５００）溶液１ｍｌをゆっくり加え細胞融合を行う。細胞融合後、ＤＭＥＭ培地９ｍｌを加え、さらに含牛胎児血清ＤＭＥＭ培地４０ｍｌを添加する。遠心分離によって集めた細胞に、細胞数が５×１０^５ 個／ｍｌになるようにＨＡＴ培地を加えて懸濁し、細胞懸濁液を９６穴プラスチックプレートに２５０μｌ／ウェルの量で分注して、３７℃、５％炭酸ガス、加湿条件下のインキュベーター中で培養する。１週間後、ウェル中の培地の半量をＨＡＴ培地で置換して、１０日から１４日間培養する。培養液中の抗体の活性をＥＬＩＳＡで調べ、目的とする抗体を産生しているウェルの細胞について、限界希釈法によりハイブリドーマのクローニングを行う。クローニングにより、抗アラクロール抗体を産生している安定なハイブリドーマ株を得る。
【００４０】
本発明では、前記方法によりハイブリドーマを作製し、ＡＲ２０１、ＡＲ２０３、ＡＲ３０６等のハイブリドーマ株を樹立した。このうち、ＡＲ２０１について、寄託番号ＦＥＲＭ Ｐ−１９３０３の下、２００３年４月１１日に独立行政法人産業技術総合研究所、特許生物寄託センター（郵便番号３０５−００４６、茨城県つくば市東１丁目１番３号）に寄託した。
【００４１】
本発明のハイブリドーマは、培地（例えば、１０％牛胎児血清を含むＤＭＥＭ）を用いて培養し、その培養液の遠心上清をモノクローナル抗体溶液とすることができる。また、本ハイブリドーマを由来する動物の腹腔に注入することにより、腹水を生成させ、得られた腹水をモノクローナル抗体溶液とすることができる。これらの抗体溶液は、さらに上述のように精製・濃縮することができる。
【００４２】
また、本発明は、前記抗体を含むアラクロールの測定キットに関する。本発明の測定キットは、アラクロールに特異的に結合する抗体を含むことにより、アラクロールを簡便に測定することができ、後述のアラクロールの測定方法に好適に使用することができる。前記キットは、さらに、測定法に応じて、標識された二次抗体もしくは標識されたアラクロールハプテン（抗原）、緩衝液、検出試薬および／またはアラクロール標準溶液等を含む。好ましいキットは、下記ＥＬＩＳＡ法に用いられうるものであり、固相化抗原を保持する担体、アラクロール抗体、酵素標識された二次抗体および検出試薬などを含む。
【００４３】
さらに、本発明は、前記抗体またはキットを用いることを特徴とするアラクロールの測定方法に関する。測定方法としては、通常の抗原−抗体反応を利用する方法であれば特に制限されず、放射性同位元素免疫測定法（ＲＩＡ）、酵素免疫測定法（ＥＬＩＳＡ）、蛍光もしくは発光測定法、凝集法、イムノブロット法、イムノクロマト法等（Ｍｅｔｈ． Ｅｎｚｙｍｏｌ．， ９２， １４７−５２３ （１９８３）， Ａｎｔｉｂｏｄｉｅｓ Ｖｏｌ．ＩＩ ＩＲＬ Ｐｒｅｓｓ Ｏｘｆｏｒｄ （１９８９）） が挙げられるが、感度や簡便性等の点からＥＬＩＳＡが好ましい。ＥＬＩＳＡに用いる酵素としては、ペルオキシダーゼ、アルカリホスファターゼ、β−ガラクトシダーゼ、ルシフェラーゼ等が挙げられる。
【００４４】
ＥＬＩＳＡによる測定法は、間接競合ＥＬＩＳＡまたは直接競合ＥＬＩＳＡなどがあげられる。例えば、間接競合ＥＬＩＳＡは、以下のような手順により行うことができる。
【００４５】
（１）固相化用抗原であるアラクロールハプテンと高分子化合物との結合体を担体に固相化する。
用いる担体は、９６穴、４８穴、１９２穴等のマイクロタイタープレートが好ましい。固相化は、例えば、固相化用抗原を含む緩衝液を担体上に載せ、インキュベーションすればよい。緩衝液中の抗原の濃度は、通常０．０１μｇ／ｍｌから１００μｇ／ｍｌ程度である。緩衝液としては、検出手段に応じて公知のものを使用することができる。
【００４６】
（２）担体の固相表面へのタンパク質の非特異的吸着を防止するため、固相化用抗原が吸着していない固相表面部分を、抗原と無関係なタンパク質等によりブロッキングする。
ブロッキング剤としては、ＢＳＡもしくはスキムミルク溶液、または市販のブロックエース（大日本製薬社製）等を使用することができる。ブロッキングは、前記ブロッキング剤を担体に添加し、例えば、約４℃で一晩インキュベーションした後、洗浄液で洗浄することにより行われる。洗浄液としては特に制限はないが、前記（１）と同じ緩衝液を使用することができる。
【００４７】
（３）前記（１）および（２）で処理された固相表面に各種濃度のアラクロールを含む試料および抗体溶液を加え、該抗体を前記固相化抗原およびアラクロールに競合的に反応させて、固相化抗原−抗体複合体およびアラクロール−抗体複合体を生成させる。
反応は、１０〜４０℃、好ましくは２５〜３７℃で０．５〜数時間程度で行うことができる。
【００４８】
（４）固相化抗原−抗体複合体の量を測定することにより、予め作成した検量線から試料中のアラクロールの量を決定することができる。
固相化抗原−抗体複合体の量は、酵素標識した二次抗体（アラクロール抗体を認識する抗体）を添加して測定することができる。例えばアラクロール抗体としてマウスモノクローナル抗体を用いる場合、酵素標識（例えば、ペルオキシダーゼまたはアルカリホスファターゼ等）した抗マウス−ヤギ抗体を用いて、担体に結合したアラクロール抗体と反応させるのが望ましい。反応は、前記（３）と同様の条件下で行えばよい。反応後、緩衝液で洗浄する。
【００４９】
（５）担体に結合した二次抗体の標識酵素と反応する発色基質溶液を加え、吸光度を測定することによって検量線からアラクロールの量を算出することができる。
二次抗体に結合する酵素としてペルオキシダーゼを使用する場合には、例えば、過酸化水素と、３，３’，５，５’−テトラメチルベンジジンまたはｏ−フェニレンジアミンを含む発色基質溶液を使用することができる。通常、発色基質溶液を加えて室温で約１０分程度反応させた後、硫酸を加えることにより酵素反応を停止させる。３，３’，５，５’−テトラメチルベンジジンを使用する場合、４５０ｎｍの吸光度を測定する。ｏ−フェニレンジアミンを使用する場合、４９２ｎｍの吸光度を測定する。なお、バックグランド値を補正するため、６３０ｎｍの吸光度も同時に測定することが望ましい。
【００５０】
二次抗体に結合する酵素としてアルカリホスファターゼを使用する場合には、例えばｐ−ニトロフェニルリン酸を基質として発色させ、ＮａＯＨ溶液を加えて酵素反応を止め、４１５ｎｍでの吸光度を測定する方法があげられる。
【００５１】
アラクロールを添加しない反応溶液の吸光度に対して、アラクロールを添加して抗体と反応させた溶液の吸光度の減少率を阻害率として計算する。既知の濃度のアラクロールを添加した反応液の阻害率により予め作成しておいた検量線を用いて、試料中のアラクロールの濃度を算出することができる。
【００５２】
別の態様として、アラクロールの測定は、例えば以下に述べるような本発明のモノクローナル抗体を用いた直接競合ＥＬＩＳＡによって行うこともできる。
【００５３】
（１）本発明のモノクローナル抗体を、担体に固相化する。
用いる担体は、９６穴、４８穴、１９２穴等のマイクロタイタープレートが好ましい。固相化は、例えば、固相化用抗体を含む緩衝液を担体上に載せ、インキュベーションすればよい。緩衝液中の抗体の濃度は、通常０．０１μｇ／ｍｌから１００μｇ／ｍｌ程度である。緩衝液としては、検出手段に応じて公知のものを使用することができる。
【００５４】
（２）担体の固相表面へのタンパク質の非特異的吸着を防止するため、固相化用抗体が吸着していない固相表面部分を、抗体と無関係なタンパク質等によりブロッキングする。
ブロッキング剤としては、ＢＳＡもしくはスキムミルク溶液、または市販のブロックエース（大日本製薬社製）等を使用することができる。ブロッキングは、前記ブロッキング剤を担体に添加し、例えば、約４℃で一晩インキュベーションした後、洗浄液で洗浄することにより行われる。洗浄液としては特に制限はないが、前記（１）と同じ緩衝液を使用することができる。
【００５５】
（３）各種濃度のアラクロールを含む試料に、アラクロールハプテンと酵素を結合させた酵素結合ハプテンを加えた混合物を調製する。
酵素結合ハプテンの調製は、アラクロールハプテンを酵素に結合する方法であれば特に制限なく、いかなる方法で行ってもよい。
【００５６】
（４）工程（３）の混合物を工程（２）で得られた抗体固相化担体と反応させる。
アラクロールと酵素結合ハプテンとの競合阻害反応により、これらと固相化担体との複合体が生成する。反応は例えば、約４℃で約１時間行う。反応終了後、緩衝液で担体を洗浄し、固相化抗体と結合しなかった酵素結合ハプテンを除去する。
【００５７】
固相化抗体−酵素結合ハプテン複合体の量を測定することにより、予め作成した検量線から試料中のアラクロールの量を決定する。
本工程において酵素結合ハプテンの酵素に反応する発色基質溶液を前述の間接競合阻害ＥＬＩＳＡ法と同様に加え、吸光度を測定することにより検量線からアラクロールの量を算出することができる。
【００５８】
前記本発明の測定方法においては、測定対象物に応じた前処理をして試料とした後、前記間接競合ＥＬＩＳＡまたは直接競合ＥＬＩＳＡの工程（３）に供せられる。
【００５９】
測定対象物が食品の場合、例えば、トウモロコシなどの農産物をミキサーでペースト状にする。ペースト状になった農産物５ｇを秤量しメタノール２５ｍｌと混和する。振とう機で３０分間振とうし、農産物中に含まれるアラクロールを抽出する。抽出液を濾過し、１０％メタノールとなるように蒸留水で希釈する。この希釈液を試料として測定する。
【００６０】
測定範囲は、実施例７に記載されているように直接競合ＥＬＩＳＡで０． ２ｎｇ／ｍｌ〜１０ｎｇ／ｍｌが例示される。前処理による希釈率が農産物の水分含量をほぼ１００％として計算すると５１倍希釈なので、農産物中の農薬残留濃度に換算した測定範囲は０． ０１ｐｐｍ〜０． ５ｐｐｍになる。したがって、本発明の測定方法は、基準のある農産物、特にトウモロコシと豆類の迅速簡便な測定に好適であるといえる。
【００６１】
測定対象物が環境水の場合、環境水中のアラクロールは、サンプルの濾過のみで０． ２ｎｇ／ｍｌ〜１０ｎｇ／ｍｌの範囲で測定することができる。さらに、Ｃ１８固相抽出法等によりサンプル中のアラクロールを濃縮することによって、０． ０１ｎｇ／ｍｌ程度の濃度でも測定することができる。
【００６２】
本発明のモノクローナル抗体ＡＲ２０１、ＡＲ２０３およびＡＲ３０６を用いて、以下のようなアセトアニリド系除草剤の測定方法を実施することができる。ＡＲ２０１を用いた場合、表１に示すように間接競合ＥＬＩＳＡによるＩＣ_５０値が５ｎｇ／ｍｌと小さく、より高感度にアラクロールを測定することができる。ＡＲ３０６を用いた場合、アラクロールとブタクロールをほぼ同等の感度で測定することができる。また、ＡＲ２０１とＡＲ３０６を組み合わせて用いた場合、ＡＲ２０１はアラクロールに対する感度とブタクロールに対する感度が４〜５倍の差があり、ＡＲ３０６は両者に対する感度が同等であることから、このような感度の差を利用してアラクロールとブタクロールを同時に分別することができる。ＡＲ２０１、ＡＲ２０３およびＡＲ３０６の感度の差を利用したアラクロールとプレチラクロールの分別測定は難しいが、施用される農作物や周辺環境が異なることから測定試料中に両者が混在することは少ないと考えられる。また、プレチラクロールに対する交差反応性の低い本発明のモノクローナル抗体を別途準備してＡＲ２０１、ＡＲ２０３およびＡＲ３０６のいずれかと組み合わせることにより、アラクロールとプレチラクロールの分別測定が可能である。
【００６３】
アセトアニリド系除草剤の内、日本においてはアラクロールの他プレチラクロールとメトラクロールが農薬登録され、日本国内でも使用されている。プレチラクロールは水田用の除草剤なので、米と周辺環境の残留濃度を調べる必要がある。一方、アラクロールとメトラクロールは畑作用の除草剤であり、施用される農産物およびその周辺環境で各々残留濃度を調べる必要がある。したがって、本発明の測定方法によりアラクロールを測定する場合、使用する本抗体がメトラクロールと交差反応しないことで前記農産物中のアラクロールを特異的に測定することができる。あるいは、使用する本抗体がアラクロール、アセトクロール、ブタクロールおよびプレチラクロールからなる除草剤群を認識することで広範囲のアセトアニリド系除草剤の測定に用いることができる。例えば、玄米について除草剤の残留濃度を測定する場合は、本発明の測定方法により実質的にプレチラクロールの残留濃度を測定することも可能である。
【００６４】
測定対象であるアラクロールには、前記式Ｉで表される化合物そのものばかりでなく、環境または生体中で分解された分解産物、例えば２，６−ジエチルアニリン、 ２−クロロ−２’，６’−ジエチルアセトアニリドなども含まれる。
【００６５】
【実施例】
以下、実施例によって本発明を具体的に説明するが、これらは本発明の技術的範囲を限定するためのものではない。当業者は本明細書の記載に基づいて容易に本発明に修飾、変更を加えることができ、それらは本発明の技術的範囲に含まれる。
【００６６】
実施例１
アラクロールハプテンの合成
下記合成スキームにしたがって、アラクロールハプテン（ＩＩＩ） を合成した。
【００６７】
【化６】

ｉ）２−エトキシカルボニルエチルスルファニル−２’，６’−ジエチル−Ｎ−メトキシエチルアセトアニリド（ＩＩ）の合成
２．７ｇ（１０ｍｍｏｌ）の２−クロロ−２’，６’−ジエチル−Ｎ−メトキシメチルアセトアニリド（アラクロール（Ｉ））と１．４ｇ（１０ｍｍｏｌ）の３−スルファニルプロピオン酸エチル、および４．１ｇ（３０ｍｍｏｌ）の炭酸カリウムをジメチルホルムアミド １００ｍｌに加え、１００ ℃で５時間撹拌した。反応混合物を水中に注ぎ込み、ジエチルエーテル ３０ｍｌ で２回抽出した。合わせたジエチルエーテル抽出液を飽和食塩水で洗浄、無水硫酸マグネシウムで乾燥後、減圧下濃縮した。残渣をシリカゲルカラムクロマトグラフィー（ヘキサン：酢酸エチル＝９：１〜４：１）で精製し、無色油状物として３．１３ｇ （収率８５％）の標題化合物アラクロールハプテン中間体（ＩＩ）を得た。
【００６８】
ｉｉ） ２−カルボキシエチルスルファニル−２’，６’−ジエチル−Ｎ−メトキシエチルアセトアニリド（ＩＩＩ）の合成
３．１ｇ（８．４ｍｍｏｌ ）の（ＩＩ）をエタノール：水（２：１）１５０ｍｌ に溶解し、１ｇ（２５ｍｍｏｌ）の水酸化ナトリウムを加えて室温で２時間撹拌した。反応混合物を減圧下濃縮し、残液を濃塩酸でｐＨを約２に調整し、酢酸エチル３０ｍｌで２回抽出した。合わせた酢酸エチル抽出液を飽和食塩水で洗浄、無水硫酸マグネシウムで乾燥後、減圧下濃縮した。残渣をシリカゲルカラムクロマトグラフィー（ヘキサン：酢酸エチル＝４：１〜１：１〜１：２）で精製し、無色油状物として２．８ｇ（収率９５％）の標題化合物アラクロールハプテン（ＩＩＩ）を得た。
【００６９】
実施例２
アラクロールハプテンと担体タンパク質との結合体の調製
免疫原として、実施例１で合成したアラクロールハプテンとウサギ血清アルブミン（ＲＳＡ ）との結合体を混合酸無水物法を用いて作製した。
【００７０】
上記実施例１で合成したアラクロールハプテン（ＩＩＩ）の１２．５ｍｇを１ｍｌ の無水ジオキサンに溶解し、２５μｌ のＮ−メチルモルホリンを加えて１０℃で２０分間撹拌し、更に１０μｌ のクロロ蟻酸イソブチルを少しずつ添加し２０分撹拌して、アラクロールハプテンの混合酸無水物を調製した。一方、４０ｍｇのＲＳＡ を１ｍｌ の蒸留水に溶解した後、１ＮのＮａＯＨ溶液でｐＨ９．０ に調製し、更に１０℃でジオキサン１．３ｍｌ を滴下した。このＲＳＡ 溶液に、１ＮのＮａＯＨ溶液でｐＨ９．０ に保ちながら先に調製したアラクロールハプテンの混合酸無水物を徐々に滴下し、４ ℃で４ 時間撹拌した。反応終了後、４ ℃で一晩蒸留水に対して透析した後、凍結乾燥して−３０ ℃で貯蔵した。こうして得られたアラクロールハプテンとＲＳＡ との結合体を免疫原として使用した。
【００７１】
また、コーティング抗原として用いるために、アラクロールハプテン（ＩＩＩ）とオボアルブミン（ＯＶＡ ）との結合体も同様の方法で調製した。
【００７２】
実施例３
モノクローナル抗体産生ハイブリドーマの作製と抗体の調製
実施例２で調製した免疫原を２ｍｇ／ｍｌになるように生理的リン酸緩衝溶液（１０ｍＭリン酸、１５０ｍＭ ＮａＣｌ ｐＨ７．０ ）に溶解し、フロイントコンプリートアジュバントと等量混合した後、４ 〜５ 週齢のメスのＢａｌｂ／ｃマウスに１００ μｌ を腹腔内に投与した。その後、同様の手順で、フロイントインコンプリートアジュバントで等量混合した０．５ｍｇ／ｍｌの免疫原１００ μｌ を２ 週間毎に追加免疫した。尾血管から採取した血液の血清中の抗体力価が高くなったマウスの脾臓を摘出し、ＤＭＥＭ培地（ダルベッコ改変イーグル培地）を入れたシャーレ内で摘出した脾臓をハサミで傷をつけ、注射筒で培地を脾臓内に注入して細胞を取り出した。培地を遠沈管に移し、大きな組織片を沈降させるために５ 分間静置した。脾細胞が浮遊している上清を静かに取り、単細胞の懸濁液を１，２５０ｒｐｍ、５ 分間遠心分離して細胞を集め、脾細胞を調製した。マウスのミエローマ細胞（Ｐ３Ｘ６３ Ａｇ８．６５３ ）を細胞数の比で５：１ （ミエローマ細胞：脾細胞）になるように脾細胞と混合し、３００ ×ｇ 、５ 分間遠心分離して細胞を集めた。上清を除去し、遠心管をはじいて沈殿した細胞をほぐした後、３７℃に温めておいた５０％ ポリエチレングリコール（分子量１，５００ ）溶液１ｍｌ を６０秒かけてゆっくり加え細胞融合を行った。ＤＭＥＭ培地９ｍｌ を加えた後、牛胎児血清を１０％含むＤＭＥＭ培地４０ｍｌを添加した。遠心分離によって集められた細胞を細胞数が５ ×１０^５ 個／ｍｌ になるようにＨＡＴ 培地を加えた。細胞懸濁液を９６穴細胞培養プレートに２５０ μｌ／ウェルの量を分注して、３７℃にて５％二酸化炭素の気相中でインキュベーションした。一週間後、ウェル中の培地の半量を新鮮なＨＡＴ 培地で置換して、計１０日から１４日間培養した。培養上清中の抗体の活性をＥＬＩＳＡ法で調べ、目的とする抗体を産生しているウェルの細胞について、９６穴細胞培養プレートで、１０％牛胎児血清と８ μｇ／ｍｌのインシュリンを含むＨＡＴ 培地を用い、限界希釈法によりハイブリドーマのクローニングを二度行った。クローニングした結果、最終的に抗アラクロール抗体を産生する安定なハイブリドーマ３株を得た。これらの株をそれぞれＡＲ２０１、ＡＲ２０３およびＡＲ３０６と名付け、このハイブリドーマ株を、１０％ 牛胎児血清を含むＤＭＥＭ培地で培養した。培養上清をモノクローナル抗体溶液とし、それぞれ「モノクローナル抗体ＡＲ２０１」（以下単に「抗体ＡＲ２０１」という）、「モノクローナル抗体ＡＲ２０３」（以下単に「抗体ＡＲ２０３」という）および「モノクローナル抗体ＡＲ３０６」（以下単に「抗体ＡＲ３０６」という）とした。調製したモノクローナル抗体溶液は、競合間接ＥＬＩＳＡ法の一次抗体として用い、アラクロールとの反応性を調べた。
【００７３】
実施例４
最適化した間接競合ＥＬＩＳＡ法によるアラクロールの測定
１）９６穴マイクロプレートにアラクロールハプテンとＯＶＡ との結合体（２５０ｎｇ／ｍｌ）を１００ μｌ／ウェルの量を加えて４ ℃で一晩インキュベーションしてプレートに吸着させた。ＰＢＳ で４ 回洗浄後、ＰＢＳ で４ 倍希釈したブロックエース（Ｂｌｏｃｋ−Ａｃｅ 、大日本製薬株製）溶液の２５０ μｌ／ウェル量を加え、４ ℃で一晩インキュベーションした後、プレートを洗浄した。
【００７４】
２）モノクローナル抗体を２ ×ＰＢＳ で希釈した溶液とアラクロール標準溶液の各々５０μｌ をウェルに加え、２５℃で１ 時間インキュベーションした後、プレートを洗浄した。
【００７５】
３）西洋ワサビペルオキシダーゼを結合した抗マウスＩｇＧ ヤギ抗体（第二抗体）をＰＢＳ で２，０００ 倍に希釈し、１００ μｌ／ウェルを加え、２５℃で１ 時間インキュベーションした後、プレートを洗浄した。
【００７６】
４）０．２％のｏ−フェニレンジアミン発色溶液（１００ｍＭ リン酸クエン酸緩衝液（ｐＨ５．０ ）、０．００３％過酸化水素水）の１００ μｌ／ウェルを加え、２５℃で１０分間インキュベーションした後、４Ｎ硫酸５０μｌ／ウェルを加えて酵素反応を止め、４９２ｎｍ および６３０ｎｍ の吸光度をマイクロプレートリーダーで測定した。
【００７７】
アラクロールハプテンとＯＶＡ との結合体を２５０ｎｇ／ｍｌで固相化し、抗体ＡＲ２０１の６００ 倍希釈溶液と、メタノールに溶解したアラクロール標準ストック溶液を２００ｎｇ／ｍｌから蒸留水で段階的に希釈した溶液をウェルに加え、第二抗体を２，０００ 倍希釈したものを用いることにより作成したアラクロールの標準阻害曲線を図１に示す。Ｂ／Ｂｏは次式より算出して示した。
Ｂ／Ｂｏ（％）＝（アラクロール標準溶液の吸光度／コントロールの吸光度）×１００
測定の結果、抗体ＡＲ２０１を用いた間接競合ＥＬＩＳＡによるアラクロールの測定範囲は０．５ 〜２０ｎｇ／ｍｌ であり、５０％阻害を示す値（ＩＣ_５０値）は５．１ｎｇ／ｍｌであった。
【００７８】
実施例５
Ｂａｌｂ／ｃマウスの腹水からの精製抗体の調製
直接競合ＥＬＩＳＡにおいてプレートに固相化する抗体を調製するために、抗アラクロール抗体産生細胞を１０〜１５週齢のオスのＢａｌｂ／ｃマウスの腹腔に注射し、得られた腹水からモノクローナル抗体を精製した。
【００７９】
Ｂａｌｂ／ｃマウスの腹腔に０．５ｍｌ／匹になるようプリスタンを注射した。１０日後、一匹あたり１ ×１０^６ 〜１×１０^７ 個の増殖期のＡＲ２０１を産生するハイブリドーマ細胞を０．５ｍｌ の滅菌ＰＢＳ に浮遊させてＢａｌｂ／ｃマウスの腹腔に注射した。その７ 日から１０日後、マウスの腹部が肥大した事を確認し、注射針を腹腔に刺して腹水を採取した。それを１，６００ ×ｇ で３０分間遠心分離した後、三層に分離した中間層を取り、充分量採取できた後、飽和硫酸アンモニウム水溶液を用いた塩析による精製を行った。
【００８０】
硫酸アンモニウム８００ｇを加温しながら蒸留水１Ｌに溶解し、その後室温にまで冷却した後、結晶が析出したことを確認し、ｐＨ７．０ 〜７．２ に調製した。得られた腹水を１００ｍｌ とＰＢＳ を１００ｍｌ 混合し、飽和硫酸アンモニウム溶液２００ｍｌ を加えた（終濃度５０％）。４℃で１ 時間撹拌した後、４ ℃、４，０００ 〜７，０００ ×ｇ で３０分間遠心分離を行った。沈殿を回収し全体量が１００ｍｌ になるようにＰＢＳ に溶解させ、飽和硫酸アンモニウム溶液を２５ｍｌ加えた（終濃度２０％）。４℃で１ 時間撹拌した後、４ ℃、４，０００ 〜７，０００ ×ｇ で３０分間遠心分離を行った後、上清を回収し、２５ｍｌの硫酸アンモニウム溶液を加えた（終濃度３３％）。その溶液を４ ℃で１ 時間撹拌した後、４ ℃、４，０００ 〜７，０００ ×ｇ で３０分間遠心分離を行った。沈殿に全体量が１００ｍｌ になるようにＰＢＳ に溶解させ、飽和硫酸アンモニウム溶液を５０ｍｌ加えた後（終濃度３３％）、４ ℃で１ 時間撹拌した後、４ ℃、４，０００ 〜７，０００ ×ｇ で３０分間遠心分離を行い、これを計２ 、３ 度繰り返し行った。その後４ ℃、４，０００ 〜７，０００ ×ｇ で３０分間遠心分離した後の沈殿を少量のＰＢＳ に溶解させ、４ ℃で一晩ＰＢＳ に対して透析を行いＡＲ２０１の精製抗体を得た。
【００８１】
実施例６
アラクロール化合物と西洋ワサビペルオキシダーゼとの結合体の調製
直接競合ＥＬＩＳＡにおいてトレーサーとして用いるため、活性エステル法によりアラクロールハプテンと西洋ワサビペルオキシダーゼとの結合体を調製した。
【００８２】
アラクロールハプテン４．２４ｍｇを１ｍｌ のＤＭＳＯで溶解し、その溶液に２１０．８ｍｇ／ｍｌになるようにＤＭＳＯに溶解したＮ−ヒドロキシスクシンイミド溶液３ μｌ と９５．９ｍｇ／ｍｌ になるようにＤＭＳＯに溶解した１−エチル‐３−（３− ジメチルアミノプロピル） カルボジイミド塩酸塩溶液７ μｌ を加えた。その混合液を室温において１ 時間、暗所で混和しながら反応させた。反応後、１Ｍの炭酸水素ナトリウム溶液４０μｌ と、１０ｍｇ／ｍｌ になるように蒸留水に溶解させた西洋ワサビペルオキシダーゼ溶液５００ μｌ を混和しながら少量ずつ加えた。混合した溶液を室温において３ 時間暗所でインキュベーションをした後ＰＤ−１０ カラムを用いて精製を行った。
【００８３】
ＰＤ−１０ カラムはあらかじめ２５ｍｌのＰＢＳ でコンディショニングしておいた後、全体量が２．５ｍｌ になるようにＰＢＳ で希釈した反応液をカラムに通し、その後３．５ｍｌ のＰＢＳ で溶出させた。溶出液を約３００ μｌ ずつ集め、その中から西洋ワサビペルオキシダーゼを含む画分のみ回収した。
【００８４】
実施例７
最適化した直接競合ＥＬＩＳＡ法によるアラクロールの測定
１）９６穴マイクロプレートに抗体ＡＲ２０１（５ μｇ／ｍｌ）を１００ μｌ／ウェルの量を加えて４ ℃で一晩インキュベーションしてプレートに吸着させた。ＰＢＳ で４ 回洗浄後、０．５％のウシ血清アルブミン（ＢＳＡ） を２５０ μｌ／ ウェル量を加え、２５℃で２ 時間インキュベーションした後、プレートを洗浄した。
【００８５】
２）アラクロールハプテンと西洋ワサビペルオキシダーゼとの結合体を２ ×ＰＢＳ で１０，０００倍に希釈した溶液とアラクロール標準溶液の各々５０μｌ をウェルに加え、４ ℃で１ 時間インキュベーションした後、プレートを洗浄した。
【００８６】
３）０．２％のｏ−フェニレンジアミン発色溶液（１００ｍＭ リン酸クエン酸緩衝液（ｐＨ５．０ ）、０．００３％過酸化水素水）の１００ μｌ／ウェルを加え、２５℃で１０分間インキュベーションした後、４Ｎ硫酸５０μｌ／ウェルを加えて酵素反応を止め、４９２ｎｍ および６３０ｎｍ の吸光度をマイクロプレートリーダーで測定した。
【００８７】
抗体ＡＲ２０１を５ μｇ／ｍｌの濃度でプレートに固相化し、アラクロールハプテンと西洋ワサビペルオキシダーゼとの結合体の２ ×ＰＢＳ で１０，０００倍希釈した溶液と、メタノールに溶解したアラクロール標準ストック溶液を１００ｎｇ／ｍｌから蒸留水で段階的に希釈した溶液を用いることにより作成したアラクロールの標準阻害曲線を図２に示す。
【００８８】
抗体ＡＲ２０１を用いた直接競合ＥＬＩＳＡによるアラクロールの測定範囲は０．２ 〜１０ｎｇ／ｍｌ であり、ＩＣ_５０値は２．８ｎｇ／ｍｌであった。
【００８９】
実施例８
抗体のアラクロール構造類似化合物に対する交差反応性
アラクロールと化学構造が類似している化合物について抗体ＡＲ２０１、ＡＲ２０３およびＡＲ３０６の交差反応性を調べた。交差反応性は試験化合物のＩＣ_５０値を求め、次式により計算した。
【００９０】
交差反応率（％）＝（アラクロールのＩＣ_５０値／ 試験化合物のＩＣ_５０値）×１００
上記式を用いて交差反応率を算出した結果を表１ に示す。
【００９１】
【表１】

表１より、抗体ＡＲ２０１、ＡＲ２０３およびＡＲ３０６はメタザクロール、メトラクロールおよびプロパクロールとは殆ど反応しなかった。またアセトクロールおよびプレチラクロールとわずかに反応した。ブタクロールについては抗体により反応性の違いが見られた。抗体ＡＲ２０３およびＡＲ３０６はブタクロールに強く反応したが、抗体ＡＲ２０１の反応性は比較的低かった。この結果から、特に抗体ＡＲ２０１はアラクロールに対して特異性が高いことがわかった。
【００９２】
以上の結果から、次のことが明らかになった。アラクロールハプテンと担体タンパク質との結合体をマウスに免疫して得られた脾臓細胞とミエローマ細胞を融合することにより、アラクロールと結合する抗体を産生する融合細胞を選抜した。この細胞を培養した培養上清を抗体として用い、アラクロールを測定するためのＥＬＩＳＡ法の最適条件を決定した。このＥＬＩＳＡ法によって、食品および環境中に存在するアラクロールをモニタリングするにあたっては、本ＥＬＩＳＡ法による簡便、迅速な方法が適していることが判明した。
【図面の簡単な説明】
【図１】図１は、抗体ＡＲ２０１を用いた間接競合ＥＬＩＳＡ法におけるアラクロールに対する標準曲線を示す。
【図２】図２は、抗体ＡＲ２０１を用いた直接競合ＥＬＩＳＡ法におけるアラクロールに対する標準曲線を示す。

Claims (10)

1. 下記式（ＩＶ）：
   

   

   （式中、ｎは１〜５の整数である）
   で表わされる構造を有する化合物。
2. 前記ｎが２である請求項１に記載の化合物。
3. 請求項１または２に記載の化合物をハプテンとし、当該ハプテンと高分子化合物との複合体を抗原として用いることにより得られるアラクロールに対する抗体。
4. 前記抗体がモノクローナル抗体である請求項３に記載の抗体。
5. アラクロール、アセトクロール、ブタクロールおよびプレチラクロールからなる除草剤群の測定方法に使用される、請求項４に記載のモノクローナル抗体。
6. アラクロールおよびブタクロールからなる除草剤群の測定方法に使用される、請求項４に記載のモノクローナル抗体。
7. 請求項４〜６いずれかに記載のモノクローナル抗体を産生するハイブリドーマ。
8. 前記ハイブリドーマがＡＲ２０１（ＦＥＲＭ Ｐ−１９３０３）、ＡＲ２０３またはＡＲ３０６である請求項７に記載のハイブリドーマ。
9. 請求項４〜６いずれかに記載のモノクローナル抗体を含んでなるアラクロールの測定キット。
10. 請求項４〜６いずれかに記載のモノクローナル抗体または請求項９に記載のキットを用いることを特徴とするアラクロールの測定方法。

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