JP2005187456A - ホスホリルコリン基含有化合物及び該化合物からなる表面改質剤 - Google Patents
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Abstract
【解決手段】式(1)で示されるホスホリルコリン基含有化合物。
(1)
式中、mは2〜6、nは1〜4である。 X1、X2、X3は、メトキシ基、エトキシ基またはハロゲンである。ただし、X1、X2、X3のうち、2つまではメチル基、エチル基、プロピル基、イソプロピル基、ブチル基、イソブチル基のいずれでも良い。 Rは(2):−(CH2)L−,(3):−CO−(CH2)L−,(4):−(NH−CH2−CH2)P−の構造のいずれかであり、式(2)〜(4)中、Lは1〜6、Pは1〜3を表す。
【選択図】 なし
Description
また、株式会社ワイエムシィからは、YMC−Pack Diol(製品名)が市販されている。これもシリカゲル系のGFC用カラムであり、ジオール構造を有する官能基をシリカゲル担体に化学結合させたもので、分子量一万から数十万のタンパク質の分離に適用できると説明されている。
一方、生体適合性やタンパク質吸着の抑制を目的としてこれらのシランカップリング剤が、クロマトグラフィー用充填剤やフィルター類及び実験器具類に用いられた例はない。
そして、該化合物からなる表面改質剤により、改質粉体、該改質粉体を担体として利用したクロマトグラフィー用充填剤、該表面改質剤により改質されたフィルター及びガラス製実験器具が容易に製造できることを見出して、本発明を完成するに至った。
式中、mは2〜6、nは1〜4である。
X1、X2、X3は、それぞれ単独に、メトキシ基、エトキシ基またはハロゲンである。ただし、X1、X2、X3のうち、2つまではメチル基、エチル基、プロピル基、イソプロピル基、ブチル基、イソブチル基のいずれでも良い。
Rは下記式(2)〜(4)中の構造のいずれかである(ただし、下記式(2)〜(4)構造において、式(1)の化合物をA−R−Bで表す)。
式(2)〜(4)中、Lは1〜6、Pは1〜3を表す。
式中、mは2〜6、nは1〜4である。X1、X2、X3は、それぞれ単独に、メトキシ基、エトキシ基またはハロゲンである。ただし、X1、X2、X3のうち、2つまではメチル基、エチル基、プロピル基、イソプロピル基、ブチル基、イソブチル基のいずれでも良い。
さらに、イオン交換性や疎水性は移動相の塩濃度やpHに応じて調節することができるために、タンパク質に応じたユニークな分離をすることが可能である。そのうえ、タンパク質が粉体表面に非可逆的吸着を起こすことがないので、タンパク質の変成、失活を伴うことなく分離・分取・分析することが可能である。
式中、mは2〜6、nは1〜4である。
X1、X2、X3は、それぞれ単独に、メトキシ基、エトキシ基またはハロゲンである。ただし、X1、X2、X3のうち、2つまではメチル基、エチル基、プロピル基、イソプロピル基、ブチル基、イソブチル基のいずれでも良い。
Rは下記式(2)〜(4)中の構造のいずれかである(ただし、下記式(2)〜(4)構造において、式(1)の化合物をA−R−Bで表す)。
式(2)〜(4)中、Lは1〜6、Pは1〜3を表す。
式中、mは2〜6、nは1〜4である。X1、X2、X3は、それぞれ単独に、メトキシ基、エトキシ基またはハロゲンである。ただし、X1、X2、X3のうち、2つまではメチル基、エチル基、プロピル基、イソプロピル基、ブチル基、イソブチル基のいずれでも良い。
下記式(7)に示したホスホリルコリン誘導体を蒸留水に溶解させる。下記式(7)のホスホリルコリン誘導体は公知の化合物であり市販品を入手できる。
得られたメタノール溶液を減圧濃縮し、残留物を蒸留水に溶解させる。この水溶液を試料とする。疎水性相互作用とカチオン交換能を有する高速液体クロマトグラフィー用カラムである、カプセルパックSCX UG80 S−5 (サイズ:4.6mmi.d.×250mm)(株式会社資生堂)をHPLC装置に接続し、0.2mmol/Lのリン酸緩衝液(pH3.5)を1mL/分の流速で流して平衡化させたのちに、試料を10μL注入する。検出器として示差屈折計を用いることでクロマトグラムを得られ、目的とする化合物を単離することができる。
ただし、本発明の化合物からなる表面改質剤は、精製前のメタノール溶液の段階で、そのまま用いることが可能である。
また、式(5)または(6)中のメトキシ基(OCH3)がエトキシ基(OC2H5)である場合にはメタノールをエタノールに変えて反応を行い、Clの場合はジメチルホルムアミドやジメチルスルホキシドに変更する。
さらには、Siと結合するメトキシ基またはエトキシ基またはClの内、2つまたは1つがメチル基、エチル基、プロピル基、イソプロピル基、ブチル基、イソブチル基のいずれかで置換されている場合も上記の手法と同様に製造することができる。
上記式(5)および(6)の化合物は物質の表面改質剤として有用である。すなわち、物質表面に容易に希望する量のホスホリルコリン基を導入して改質するものである。具体的には、水酸基を表面に有している物質の場合、その物質表面の水酸基と式(5)および(6)の化合物のSi−OCH3から脱水反応によって化学結合を形成させる。この化学反応はほとんどの有機溶媒中で、10℃から250℃の温度範囲で極めて容易に定量的に進行する。この脱水反応によって化学的、物理的に極めて安定なホスホリルコリン基による表面改質を施すことができる。
また、本発明の表面改質剤は、分離若しくは分析装置用の配管、配管接続部品、サンプリングのためのニードル、サンプルバイアル、検出器セル等の試験液が接触する部材の改質方法として有用であり、特には、HPLC、MS、NMRの接続配管や電気泳動装置のキャピラリー配管等の素材が好ましく改質される。テフロン(登録商標)管、テフゼル管、ピーク樹脂管、フューズドシリカ管等の素材である。
ホスホリルコリンの誘導体は極めて親水性が高く、有機溶媒への溶解度が極端に低い。ホスホリルコリンの誘導体の合成はジオキサホスホラン類を出発物質とする全合成法と、大豆などに含まれるリン脂質であるホスファチジルコリンの加水分解によって得られるグリセロホスホリルコリンを出発物質とする合成法に大別される。ホスホリルコリンの誘導体は溶解する有機溶媒が限られるために合成ルートが複雑になり、製造にかかるコストが高く実用化の障壁となっている。この合成の複雑さとコストの問題は全合成法において顕著に現れるが、本発明の製造方法によればホスホリルコリンの誘導体にとっての良溶媒中で極めて簡便かつ高収率でカルボキシル基を有するホスホリルコリン誘導体を製造することができ、加えて安価で大量に入手することのできるホスファチジルコリン由来のグリセロホスホリルコリンから製造することが可能であって、コストの面でも優れている。最終的に式(6)記載の化合物についても簡便かつ高収率で得ることができる。
なお、反応溶媒は水でも可能であり、また、過ヨウ素酸以外にも他の過ヨウ素酸塩や過ヨウ素酸などを用いることも可能であり、三塩化ルテニウム以外にも、他の二価及び/または三価のルテニウム化合物やそれらの水和物などを用いることも可能である。
なお、反応溶媒はN,N−ジメチルホルムアミド、ジメチルスルホキシド、クロロホルムなどメタノール以外でも可能であり、また、NHS、EDC以外にも、ジシクロカルボジイミド(DCC)、カルボキシジイミダゾール(CDI)などを用いることも可能である。
上記の手順は、式(6)に示した化合物中のm、nが変わっても全く同様に行うことができる。ここで示した手順はm=3、n=2の場合である。ただし、反応中の有機シラン化合物の重合を防ぐためには脱水溶媒が好ましい。
また、式(6)中のメトキシ基(OCH3)がエトキシ基(OC2H5)である場合にはメタノールをエタノールに変えて反応を行い、Clの場合はジメチルホルムアミドやジメチルスルホキシドに変更する。
さらには、Siと結合するメトキシ基またはエトキシ基またはClの内、2つまたは1つがメチル基、エチル基、プロピル基、イソプロピル基、ブチル基、イソブチル基のいずれかで置換されている場合も上記の手法と全く同様に製造することができる。
本発明の表面改質剤は水酸基を有する粉体を改質するために好ましく使用できる。
本発明の改質粉体は以下の方法にて製造される。この方法により、ホスホリルコリン基を粉体表面に直接的に有する改質粉体、すなわち、ホスホリルコリン基が粉体表面に化学的な結合にて導入されている改質粉体が容易に製造できる。
式(5)または(6)の化合物の0.3mmol/mLの濃度のメタノール溶液20mLに、蒸留水20mLを加え、表面改質を施す粉体を添加する。粉体の質量はその比表面積によって調整する必要がある。例えば、100m2/gの粉体の場合、その添加量は10g程度が適当である。この粉体分散液をオイルバス中80℃で還流し、5時間後に粉体をろ過し、メタノールで洗浄し、80℃で3時間減圧乾燥することで改質粉体を得る。
本発明の表面改質剤により、担体表面を改質して容易に希望する量のホスホリルコリン基を有するクロマトグラフィー用充填剤を製造することが出来る。
具体的には、担体表面に存在する水酸基と、式(5)および(6)の化合物のSi−OCH3との脱水反応によってホスホリルコリン基を担体表面に導入する。
反応溶媒は水−メタノール混合溶媒以外にも、水、エタノール、2−プロパノール等のプロトン性溶媒や、ジメチルスルホキシド、ジメチルホルムアミド、トルエン、ジエチルエーテル等の非プロトン性溶媒を使用でき、これらを単一、または組み合わせて用いることができる。
すなわち、本発明による表面改質剤を用いた場合は、物質表面に未反応のアミノ基を混在させることなくホスホリルコリン基だけを導入することができる。先にアミノ基を粉体表面に導入する場合は、2段階目のホスホリルコリン基を導入させる反応が、液相中のグリセロホスホリルコリンのアルデヒド体と固相表面のアミノ基とが反応しなければならないために拡散律速や固相表面の立体構造による立体障害、ホスホリルコリン基自体の立体性等によって反応率が低い。約30%のアミノ基にしかホスホリルコリン基を導入することができない。残存したアミノ基は別の低分子化合物を結合させることによってある程度封鎖することが可能であるが、物体表面の親水性を維持することが困難であるうえに全てを封鎖することはできない。
したがって、本発明による表面改質剤には未反応のアミノ基は検出されない。このために本発明による表面改質剤を用いることで、物体表面に未反応のアミノ基を混在させることなくホスホリルコリン基だけを導入することができる。このことにより、固相上で2段階の反応を行う方法よりも、極めて生体適合性に優れ、タンパク質の吸着の少ない粉体を得ることができる。
すなわち、タンパク質およびポリペプチドの吸着を抑制することに優れたカラム充填剤である。したがって、タンパク質およびポリペプチドを分子量の違いによって分離するモード(GFCモード)に適用することが可能である。
GFCモードはタンパク質や酵素を失活させずにこれらを分離、精製できることから、未知生体試料の単離や医療用途の面でも本発明のカラム充填剤の高分離能が役立つことが期待される。
生体試料中に含まれるタンパク質等を分析する場合、生体由来の夾雑物を除去する前処理が必要となる。具体的には、血液中のタンパク質濃度を測定する場合、タンパク質が溶解している血清を得るために、血球や血小板などをろ過、もしくは遠心分離等を用いてあらかじめ除去する必要がある。血液などのろ過では、用いられるフィルターにタンパク質が吸着するためにタンパク質の定量性が低下するという問題がある。この他にも、遠心力を用いて細孔の空いた膜を通過させる2層構造の容器がタンパク質試料の濃縮や脱塩、溶媒置換等の目的で汎用されている。例えばUltrafree−MC 遠心式フィルターユニット(製品名)(日本ミリポア株式会社)が挙げられる。このフィルターユニットは上部に濃縮前の試料を入れ、下部が遠心分離器の外側を向くように設置し、5000Gほどの遠心力を加えることによりろ過を達成する。このような器具のろ過膜についてもタンパク質の回収率が50%近くまで下がる場合があり、良好ではないという課題がある。
ガラス製実験器具とは、保存容器、計量用器具、セル、分取用チップ、サンプル分取用シリンジ等の実験器具である。本発明の表面改質剤を用いて処理した場合は、タンパク質吸着が極めて少ない実験器具を得ることができる。
限定されるものではない。
L−α−グリセロホスホリルコリン(450mg)を蒸留水15mlに溶解し、氷水浴中で冷却した。過ヨウ素酸ナトリウム(750mg)(和光純薬工業株式会社)を添加し、5時間攪拌した。反応液を減圧濃縮、減圧乾燥し、メタノールにより目的物を抽出した。下記化合物(8)に構造を示す。式(8)の化合物の1H NMRスペクトルを図1に、Massスペクトルを図18に示す。
合成例1の化合物7.5gを脱水したメタノール30mL に溶解させ、容器内を乾燥窒素で置換する。次に、化合物1のメタノール溶液に3−アミノプロピルトリメトキシシラン(信越化学工業株式会社)を3.6g添加した。この混合溶液を、室温で5時間撹拌したのち、氷冷し、シアノヒドロホウ素化ナトリウム(和光純薬工業株式会社)2.5gを添加し、室温に戻して16時間撹拌した。この間も反応容器には乾燥窒素を流し続けた。沈殿をろ過した後、目的物質である下記式(10)および(11)の化合物のメタノール溶液を得た。
実施例1で製造した式(10)および(11)の化合物を含むメタノール溶液に蒸留水35mLを加え、さらに平均粒子径5μm、平均細孔径30nmで比表面積が140m2/gのシリカゲルを14g添加した。この粉体分散溶液を80℃で5h還流した。還流の後メタノール100mLでろ過洗浄し、目的物質を得た。
実施例2で製造した改質粉体を、担体として、通常のスラリー法により、内径4.6mm、長さ250mmのエンプティカラムに充填した。クロマトグラムの取得条件は次の通りである。
移動相:50mmol/L リン酸バッファー + 500mmol/L NaCl pH6.8
流速:100μL/min
温度:25℃
検出:UV 280nm
試料として用いたのはコンセーラN(製品名)を蒸留水により2倍希釈したもので、2μLを注入した。ヒト血清のような実試料でも分子量順のGFCモードでの分離が行われており、大変実用性が高いことが分かる。
次に、市販品のクロマトグラフィー用カラム(Shodex PROTEIN KW803、昭和電工株式会社製)を市販の状態のまま用いてヒト血清試料(コンセーラN(製品名)を蒸留水にて二倍に希釈した)中のタンパク質の分離を試みた。比較例で挙げた本カラムは、実施例3で述べたカラムと同じ内径と長さである。
この充填剤は多孔性シリカゲルの表面に、親水性基を化学結合させたサイズ排除モード用の充填剤であると説明されている。平均細孔径300オングストローム、平均粒子径5μmであり、実施例1で述べた充填剤との比較に好適である。分子量1万から数十万のタンパク質の分離に適していると説明されている。
Shodex PROTEIN KW803は、非解離性の親水性基を用いているために、本願発明の表面改質剤を用いて調製した充填剤と違って電荷を帯びた官能基を有していない。したがってタンパク質とのイオン的な相互作用はほとんど無いと考えられる。
実施例3と同様に、50mmol/lリン酸バッファー(Na2HPO4およびKH2PO4から調製)に500mmol/lの塩化ナトリウムを加えた移動相を用い、流速を0.1ml/min、カラムオーブン温度25℃にてヒト血清試料(コンセーラN(製品名)を純粋にて二倍に希釈した)のタンパク質の分離を試みた。検出はUV280nmで行った。結果を図7(b)に示す。
なお、比較のために、図7(a)には実施例3で得た本願発明の表面改質剤を用いて調製した充填剤での同条件、同試料でのクロマトグラムを示した。
さらに図8(a)に、本願発明の表面改質剤を用いて調製した充填剤を、塩濃度150mMで適用した場合のクロマトグラムを、図8(b)にはShodex PROTEIN KW803を塩濃度150mMで適用した場合のクロマトグラムを示す。図8での塩濃度以外の条件は図7と同様である。
アルブミンとトランスフェリンの分子量はそれぞれ、約69,000と75,000であり、非常に似通っている。従来のGFC用カラムではアルブミンとトランスフェリンのような分子量の近い試料を分離することはできない。本願発明の表面改質剤を用いて調製した充填剤はタンパク質の吸着が極めて少ないだけでなく、ホスホリルコリン基の持つ双電荷によってタンパク質と微弱なイオン的相互作用を持つために、分子量の近いタンパク質についても等電点や疎水性の違いに基づいて分離することができることが分かる。
すなわち、本発明のクロマトグラフィー用充填剤はGFCモードにおいて、分子量の違いだけでなくタンパク質の持つ等電点や疎水性の違いに応じて試料を分離することができることが分かる。
移動相の塩濃度が500mMである図7(a)では、本願発明の表面改質剤を用いて調製した充填剤でもトランスフェリンはアルブミンのピークのショルダーとして認識される程度であるが、移動相の塩濃度を150mMに下げた図8(a)ではトランスフェリンとアルブミンのピークはベースライン分離を達成している。
さらに、図8(a)では数多くのタンパク質によるピークを確認することができる。一般に、充填剤表面と移動相内の物質間に働くイオン交換相互作用は、移動相の塩濃度が小さくなるほど強くなることが知られている。これは、移動相の塩濃度が小さくなることで、イオン交換相互作用を受ける物質は強く保持されることを意味している。本願発明の表面改質剤を用いて調製した充填剤は、移動相の塩濃度を小さくすることで特にアルブミンに強い保持を生じさせ、トランスフェリンとの完全分離を達成した。
図7、図8のような中性pH下で負に帯電しているアルブミンを低塩濃度にて保持したことから、本願発明の表面改質剤を用いて調製した充填剤がアニオン交換モードを有していることが推察される。
カラム:4.6×150mm
移動相:50mmol/L リン酸バッファ(pH6.8)
流速:1000mL/min
検出:UV 210nm
具体的には、5種のカルボン酸に起因する各ピークを帰属すると、カルボン酸を1つ持つ有機酸2種が最も早く溶離し、次にカルボン酸を2つ持つ有機酸2種が溶離し、最後にカルボン酸を3つ持つクエン酸が溶離している。カルボン酸の数が増えるほど保持が大きくなる傾向が認められることから、この充填剤がアニオン交換能を有していることは明確である。したがって、本願発明の表面改質剤によって処理された粉体はアニオン交換用充填剤としても非常に有効であると言える。以上に示したイオン交換性はタンパク質を吸着、変性させるほどの強さは無く、回収率良くユニークな分離をするために適している。
本願発明の表面改質剤を用いて調製した充填剤は、タンパク質の吸着を抑制するという優れた機能によるGFCモード(サイズ排除モード)に加え、イオン交換モードも存在する極めてユニークな充填剤である。タンパク質の吸着が極めて少ないことから、タンパク質が変性することなく、酵素の活性を保ったままでのタンパク質の分離、精製が可能である。しかも、GFCモードだけではなくイオン交換モードが混在するために、移動相の塩濃度やpHに応じて分離を制御することができる極めて画期的な充填剤である。
(ケイ素原子とホスホリルコリン基の間に窒素原子を二つ有する、式(1)中Rが式(4)p=1で表される化合物での表面改質)
合成例1の化合物7.5gを脱水したメタノール30mL に溶解させ、容器内を乾燥窒素で置換する。次に、化合物1のメタノール溶液に3−(2−アミノエチルアミノプロピル)トリメトキシシラン(信越化学工業株式会社)を3.6g添加した。
この混合溶液を、室温で5時間撹拌したのち、氷冷し、シアノヒドロホウ素化ナトリウム2.5gを添加し、室温に戻して16時間撹拌した。この間も反応容器には乾燥窒素を流し続けた。
沈殿をろ過した後、目的物質である下記式(12)、(13)の化合物のメタノール溶液を得た。
図10(a)は実施例3で調整した粉体を用いた場合のクロマトグラムである。
実施例3と本実施例の違いは、表面改質剤のスペーサー部分の2級アミンの数が異なることである。なお、図10(a)と(b)で使用したシリカゲルは同一の物である。
ケイ素原子とホスホリルコリン基の間に2級アミンを図10(a)よりも一つ多く持つ図10(b)では、トランスフェリンとアルブミンの分離がさらに改善されていることが分かる。これはケイ素原子とホスホリルコリン基の間に2級アミンが挿入されたことで修飾基の塩基性が増大し、酸性タンパク質であるアルブミンがより強く保持されたためであると考えられる。
このように、本願発明の表面改質剤は、ホスホリルコリン基によるタンパク質吸着抑制効果に加え、ケイ素原子とホスホリルコリン基の間のスペーサーの性質を変えることで、イオン交換性、疎水性、親水性、水素結合性といった相互作用を付与させることが可能である。
<ホスホリルコリン基結合ホウケイ酸ガラス繊維フィルター材料の調製>
100mL三角フラスコに蒸留水20g、実施例1で製造した式(10)および(11)の化合物(約0.4mmol)を含むメタノール溶液1.0mLを入れ振り混ぜた。これにワットマンジャパン株式会社製ホウケイ酸ガラス繊維フィルター(ガラス繊維ろ紙グレードGF/F、直径25mmφ、1枚あたり約0.070g)8枚を添加後、100℃に加熱し5時間還流煮沸した。室温に冷却後、フィルターをろ過、洗浄し、80℃で3時間減圧乾燥してホスホリルコリン基を表面に直接有するホウケイ酸ガラス繊維フィルターを得た。
ウシ血清アルブミン(BSA)10mgをリン酸緩衝液100mL(タカラバイオ社製PBSタブレット1錠を蒸留水に溶解し、全量を100mLとしたもの。pH7.4〜7.5)に溶解しBSA溶液とした。ポリプロピレン製30mLサンプル管3本に調製したBSA溶液を2.0gずつ取り、このうち1本のサンプル管に実施例6で調製したホウケイ酸ガラス繊維フィルターを、別の1本のサンプル管に未処理のホウケイ酸ガラス繊維フィルターを入れ浸漬させた。これを24時間室温(25℃)で放置し、Lowry法にてそれぞれ3本のサンプル管中のBSA溶液を発色、吸光光度分析することによりフィルター1枚あたりのBSA吸着量を定量分析した(表2)。
本発明のホウケイ酸ガラス繊維フィルターは未処理品と比較してBSA吸着量が低減されていることがわかった。
本発明のフィルター材料は、抗体、酵素などの分離、濃縮や血液透析、血液フィルターなどの血液浄化、分析等の広範囲な生体物質のろ過に有用である。
<ホスホリルコリン基結合ガラスバイアルの調製>
100mL三角フラスコに蒸留水20g、実施例1で製造した式(10)および(11)の化合物(約0.4mmol)を含むメタノール溶液1.0mLを入れ振り混ぜた。これに日本ウォーターズ株式会社製ガラス製バイアルである、12×32mmガラスバイアル スクリュー式 10個を添加後、100℃に加熱し5時間還流煮沸した。室温に冷却後、バイアルをメタノールで洗浄し、80℃で3時間減圧乾燥してホスホリルコリン基を表面に直接有するガラスバイアルを得た。
このように、本発明の表面改質剤により、タンパク質吸着が極めて少ないガラス製実験器具実験器具を得ることができる。タンパク質の吸着を抑制できない一般的なバイアルでは、実験操作中にタンパク質の試料濃度が経時で減少することが知られている。具体的には、保存容器から液体高速クロマトグラフィーに試料を注入する場合、毎回同量の体積を注入しているにもかかわらず経時でピーク面積が減少するという現象が知られている。本実施例で製造したガラス製バイアルは、タンパク質の吸着抑制に優れているためにこのような現象を回避することが可能である。
なお、高分子を容器内面に吸着させてタンパク質の吸着を抑制する場合は、試料に有機溶媒が含まれると高分子の脱着が起こり、耐久性に問題があることが知られている。高分子による表面被覆は、高分子とポリプロピレン容器のような基材との間の疎水性相互作用による吸着により実現している。試料溶媒中に有機溶媒が含まれると高分子と基材の間の疎水性相互作用が弱まり、高分子が剥離する。一方、本発明の表面改質剤(シランカップリング剤)は、化学結合にて表面修飾を行えるので、試料中の溶媒の影響を実質的に受けることなく、効果を持続することができる。
200mlフラスコ内に、グリセロホスホリルコリン5g(19.4mmol)、過ヨウ素酸ナトリウム17g(79.7mmol、4.1eq)(和光純薬工業株式会社)、3塩化ルテニウム(水和物)81mg(0.39mmol、0.02moleq)(和光純薬工業株式会社)、および、イオン交換水70g、アセトニトリル30gを加える。室温にて2時間攪拌した後、ろ過し、濾液から溶媒を除去する。得られた固形物からメタノールにて目的物を抽出、続いてメタノールを除去することによって式(9)に示すカルボキシル基を有するホスホリルコリン誘導体を得た。式(9)の化合物の1H NMRスペクトルを図16に、Massスペクトルを図17に示す。
上記式(9)の化合物3g(12.4mmol)を脱水したメタノールに100mlに溶解させ、容器内を乾燥窒素で置換する。次に、3−アミノプロピルトリメトキシシラン1.1g(6.2mmol)、N−ヒドロキシスクシンイミド1.4g(12.4mmol)およびN-エチル-N'-3-ジメチルアミノプロピルカルボジイミド2.4g(12.4mmol)を添加し、−10℃で16時間反応させ、下記式(11)に示すアミド結合をスペーサーに有し、ホスホリルコリン基を末端に有する有機シラン化合物含む溶液を得た。
また、上記式(9)に示した化合物の代わりに、ホスホリルコリン基とカルボキシル基の間に炭素数5の飽和アルキル鎖を有するO−ホスホリルコリンヒドロキシヘキサン酸を用いることで、同様の手順により式(1)中Rが式(3)L=6で示される化合物を得ることができる。
<精製方法>
得られた溶液を減圧濃縮し、これを蒸留水に溶解させる。この水溶液を試料とする。疎水性相互作用とカチオン交換能を有する高速液体クロマトグラフィー用カラムである、カプセルパックSCX UG80 S−5(サイズ:4.6mmi.d.×250mm)(株式会社資生堂)をHPLC装置に接続し、0.2mmol/Lのリン酸緩衝液(pH3.5)を1mL/分の流速で流して平衡化させたのちに、試料を10μL注入する。検出器として示差屈折計を用いることでクロマトグラムを得られ、目的とする化合物を単離することができる。
実施例8で製造した式(11)の化合物を含む溶液30mL(0.25mmol/mL)に蒸留水35mLを加え、さらに平均粒子径5μm、平均細孔径30nmで比表面積が140m2/gのシリカゲルを14g添加した。この粉体分散溶液を80℃で5h還流した。還流の後メタノール100mLでろ過洗浄し、目的物質を得た。以上の手順で得られた実施例8の表面改質剤で処理した改質粉体(処理前の炭素含有量0.15%)の炭素含有量は2.49%であった。
実施例9で製造したホスホリルコリン基を表面に有する改質粉体のリン元素の定量を行った。本発明の製造方法においてリン元素はホスホリルコリン基固有の元素であり、粉体表面に存在するリン元素を定量することで実際にホスホリルコリン基の導入を確認することができる。
リン元素の定量はモリブデン酸発色法によって行った。以下に定量方法を説明する。
(1) 所定量の粉体を十分洗浄した試験管に計りとる。
(2) 1の粉体に60%過塩素酸水溶液(和光純薬工業株式会社)を3mL添加する。
(3) 液の気散を避けるため、2の試験管上部に冷却管を取り付け、120℃で1時間、次いで180℃で2時間加熱する。本操作にて粉体表面の修飾鎖をすべて酸化させ、特にリン元素についてはリン酸として遊離させる。
(4) 3の溶液を遠心分離機にかけ(3000rpm、5分)、上清を1mLサンプルチューブに移す。
(5) 4の溶液に蒸留水1mLと0.5Mのモリブデン酸ナトリウム(和光純薬工業株式会社)を500μL、および0.5Mのアスコルビン酸を500μL添加する。
(6) 5の溶液を95℃の湯浴にて5分間熱し、その後冷水で冷却する。
(7) 6の発色済み溶液を96穴プレートに200μL滴下し、プレートリーダにて710nmにおける発色強度を測定する
(8) あらかじめ既知の濃度のリン酸溶液の発色強度から得た検量線を元に、サンプルに含まれるリン元素の量を定量する。リン酸の標準溶液は和光純薬工業株式会社より入手できる。
1650cm-1付近にアミド結合に特有の吸収を観測することができた。
実施例9で合成した改質粉体を担体として、通常のスラリー法により、内径4.6mm、長さ250mmのエンプティカラムに充填した。クロマトグラムの取得条件は次の通りである。
移動相:50mmol/L リン酸バッファー + 500mmol/L NaCl pH6.9
流速:200μL/min
温度:25℃
検出:UV 280nm
アミド結合は親水性が良好である。タンパク質の吸着を抑制するという観点では物質表面を親水性で、かつ非イオン性の官能基で覆うことが望ましい。ホスホリルコリン基は双性イオン固有の極めて優れた親水性と、双性イオンの電荷バランスの釣り合いから実質的なイオン性は非常に微弱であり、タンパク質の吸着抑制に優れた官能基であるといえる。しかしながら、ホスホリルコリン基を物質表面に固定化させるために用いるスペーサーの疎水性が高いとタンパク質の非特異的不可逆吸着を誘発する。したがって、スペーサーにアミド結合が存在することは極めて重要で、より親水的な表面改質を実現するものである。このスペーサーまでも含めた親水性がタンパク質の吸着抑制において極めて効果的である。
「比較例2」
ホスホリルコリン基とは異なるベタイン構造を有する有機シラン系表面改質剤について、特開平5−222064号公報には式(14)に示すスルホベタインを有するシラン化合物が開示されている。また、特開昭63−295593号公報には、式(15)に示すカルボキシベタインを有するシラン化合物が開示されている。
式(14)および(15)のシラン化合物と、実施例1の式(10)および(11)の化合物との比較を行った。
次に、式(14)の化合物2.0gにメタノール20mLと蒸留水20mLを加え、さらに平均粒子径5μm、平均細孔径30nmで比表面積が140m2/gのシリカゲルを5.0g添加した。この粉体分散溶液を80℃で5h還流させ、式(14)に示した化合物のシリカゲル上への固定化を行った。還流の後メタノール50mLでろ過洗浄し、式(14)に示した化合物によって表面改質されたシリカゲルを得た。
式(15)に示した化合物についても同様の操作を行い、式(15)に示した化合物によって表面改質されたシリカゲルを得た。
続いて、得られた表面改質シリカゲルをそれぞれ通常のスラリー法により、内径4.6mm、長さ250mmのエンプティカラムに充填した。クロマトグラムの取得条件は次の通りである。
移動相:50mmol/L リン酸バッファー + 500mmol/L NaCl
pH6.9
流速:200μL/min
温度:25℃
検出:UV 280nm
5本のメインピークが明確に確認され、これらを単品試料の溶出時間から同定したところ、溶出順序の早い順にα2M、γG、HSA、LYZ、Uであった。これまで述べてきたように分子量の大きい物から溶出するGFCモードである。5本のピーク以外に観測された小さなピークは市販されている標準タンパク質に含まれる不純物である。
以上から、これまで報告例がない、ホスホリルコリン基を有する有機シラン系表面改質剤(シランカップリング剤)は、タンパク質非吸着を目的とした物質表面改質に極めて有効であると言える。本発明の表面改質剤を用いることで、タンパク質の吸着が少なく生体適合性に優れた表面改質を施すことができる。
Claims (8)
- 請求項1または2記載のホスホリルコリン基含有化合物からなる表面改質剤。
- グリセロホスホリルコリンの過ヨウ素酸ナトリウムと三塩化ルテニウムによる酸化反応によってカルボキシル基を有するホスホリルコリン誘導体を合成し、アミノ基を有する有機シラン化合物とカルボキシル基を有するホスホリルコリン誘導体から縮合剤によって合成されることを特徴とする前記式(6)記載の化合物の製造方法。
- 請求項3記載の表面改質剤で処理された改質粉体。
- 請求項3記載の表面改質剤で処理された改質担体からなるクロマトグラフィー用充填剤。
- 請求項3記載の表面改質剤で処理されたフィルター。
- 請求項3記載の表面改質剤で表面処理されたガラス製実験器具。
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