JP2003524782A - 核酸の分析のための容器 - Google Patents

核酸の分析のための容器

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Abstract

(57)【要約】 本発明は、核酸安定化溶液および核酸結合性固相を含む、試料を受容するための容器に関する。本容器は、核酸を検査するための血液の回収に特に適している。

Description

【発明の詳細な説明】
【０００１】 本発明は、試料を受容するため、好ましくは、血液を回収するための容器に関
し、それにより回収された血液は、特に、核酸の安定化、単離、および分析に適
用することができる。
【０００２】 回収の間、血液は、通常、ヘパリン、クエン酸、またはEDTAのような抗凝血物
質をすでに含む容器中に採取される。それにより、血液の凝固が妨げられる。こ
のようにして得られた血液試料は、適した温度で、より長い期間保存することが
できる。しかしながら、血液を得る方法は、mRNAまたはDNAのような核酸を分析
しなければならない場合には、かなりの障害を含んでいる。そのような目的のた
めには、試料に含まれる核酸は、回収の時、最良に安定化されていなければなら
ず、換言すれば、現存する核酸の分解だけではなく、mRNAの新しい合成もまた妨
げなければならない。
【０００３】 回収の瞬間から試料材料に含まれる核酸を安定的に保存することに関するこの
目的は、血液の保存のために、以下の理由でこれまで達成が実際上不可能であっ
た。
【０００４】 細胞は、ヌクレアーゼ、すなわち酵素を含んでおり、それらの基質(RNA、DNA)
に接触すると、その核酸が破壊される。細胞内および細胞外のヌクレアーゼの影
響は、通常、細胞が通常の環境にある限り、生理学的制御下にある。血液の回収
は、多少なりとも細胞に含まれる核酸に強い変化を生じさせる。その後、ヌクレ
アーゼは、細胞の内部に、および/または細胞の溶解により外部に放出される。
さらに、核酸が多少なりとも強く合成される。具体的には、血液の永続的な長期
保存は、細胞の老化および破壊を生じる。
【０００５】 通常の回収方法により得られる血液試料の長期保存に関与するもう一つの問題
は、試料材料の強い形質転換にある。細胞の強い溶解のような変化では、核酸の
単離のための標準的な方法は、満足な効率性および再現性をもって働かないとい
うことに必然的に導かれるものと思われる。
【０００６】 試料材料に含まれる核酸の安定的保存に関する問題は別としても、血液を回収
する通常の方法では、さらなる困難を伴う。核酸の単離の間、通常の抗凝血物質
は、しばしば充分な効率性では分離されず、PCR法(ポリメラーゼ連鎖反応)によ
る増幅のような、その後の核酸分析を妨害する影響を与える。例えば、ヘパリン
は一般的に知られたPCR法の阻害剤である。
【０００７】 最後に、量的核酸分析では、試料の回収に始まり核酸の測定までの全過程を、
標準化された条件の下でどのようにして制御できるかについての問題が生じる。
理想的には、量的および質的に関して定められた標準核酸を、試料の回収段階お
よび試料の測定段階の全過程にかけるために、回収の間に試料材料にすでに加え
ておくべきである。これはまた、通常の回収系では不可能である。
【０００８】 通常での血液を回収するためのもう一つの障害として、これまで核酸を単離す
るのに手作業で行う工程の段階が必要とされるため、感染性物質を伝染させると
いうリスクがある。潜在的な感染性病原菌との接触は排除することができない。
【０００９】 当技術分野の現状における方法を記載すると、血液試料は患者から回収後、直
接、グアニジウム塩と混合される(欧州特許第0 818 542 A1号)。この方法を使用
する場合、グアニジウム塩は、グアニジウム塩のより高い安定性を活用するため
に粉末状である。しかしながら、この方法は重大な欠点を包含しており、例えば
、その塩を最初に、加えられる血液に溶解しなければならないためである。その
溶解過程は特に温度に依存し、使用された不透明な試料材料のために制御するこ
とができない。従って、診断的/医学的目的のために対応する生成物の使用には
非常に問題がある。
【００１０】 ヌクレアーゼは極めて活性のある酵素であり、厳しい変性条件下においてのみ
阻害することができる。変性は溶解されたグアニジウム塩の濃度に依存する。欧
州特許第0 818 542号において記載された方法によれば、溶解されたグアニジウ
ム塩の阻害する濃度は、全く最初から提供されていない。このように、溶解過程
の間、核酸の分解は非制御状態で起こっている。さらに、この方法によれば還元
剤は添加されず、それなしでは効果的な抑制、特にRNアーゼの抑制は通常は保証
されない。
【００１１】 さらに、通常の方法により得られた試料は、固相における核酸の追加的な単離
に直接使用することができない。さらに、グアニジウム塩の使用により、内部核
酸標準を添加することができない。しかし、そのような標準はその過程を制御す
る段階および正確な定量のためには必要不可欠である。
【００１２】 本発明は、当技術分野の現状から知られている欠点を含まない容器を提供する
という技術的目的に基づいた。特に、その容器で回収された試料は、試料を処理
する追加的な段階を実施する必要もなく、直接、最新の核酸分析方法にかけるこ
とができる。
【００１３】 本発明によれば、該目的は、核酸を安定化させるための溶液および核酸を結合
させるための固相を含む、試料を受容するための容器によって提供される。
【００１４】 付加的な好ましい態様は添付の特許請求の範囲において記載されている。
【００１５】 本発明に係る容器は以下の利点を有する：1. 試料、好ましくは血液が、回収
時にすでに溶解されている、すなわち回収容器が対応する溶解溶液（それは同時
に核酸安定化溶液である）をすでに含んでいるためである。2. 核酸安定化溶液
は、試料材料、特にそこに含まれる核酸が、溶液に接触した後に直接的に安定化
されるという効果を有する。3. さらに、核酸安定化溶液は、試料材料がその後
の単離方法に直接使用することができるように選択されている。4. 核酸安定化
溶液は、例えばPCR法などの阻害を防ぐのに十分効率的に、その後の単離の間に
分離させることができる。5. 内部標準を核酸安定化溶液に添加してもよく、そ
れにより、試料の回収から核酸の検出まで、全過程の制御が可能になる。6. 容
器に含まれる固相は、特に、後にそこに結合された核酸を単離するために適して
いる。さらに、好ましい核酸が固相に結合することにより、核酸と試料の付加的
な成分の最初の分離はすでに容器の中で起こっていることから、その後の単離を
容易にする。
【００１６】 核酸安定化溶液は、核酸が細胞溶解直後または追加的な試薬の添加後のみに、
対応する表面に結合されるように選択されてもよい。前者の場合は、例えば、グ
アニジウム塩の存在下のガラス表面があらかじめ供給されている場合に与えられ
る。第二の場合は、例えば、あらかじめビオチンでコーティングされた表面を供
給し、その後、核酸結合性を有するストレプトアビジンを添加することにより達
成することができる。
【００１７】 容器は、基本的に任意の体液を受容するために使用することができる。特に、
それは、骨髄のような細胞構成要素を含む体液を受容するために適している。し
かしながら、好ましくは、供給者に由来する全血液の直接的回収のための容器に
関する。
【００１８】 容器は、好ましくは、通常の血液回収容器(例えば、小型試験管)のように形成
され、その中に定められた量の核酸安定化溶液および核酸結合性固相を含む。小
型試験管は、その後、好ましくは、定められた低圧で調製され、血液の特定容量
のみを回収することが可能になる。小型試験管は、血液の回収のための通常の方
法によって操作してもよい。小型試験管に含まれる溶液は、その好ましい態様に
よれば、以下の試薬を含む：グアニジウム塩(例えば、グアニジンチオシアネー
ト)、界面活性剤(例えば、トライトン-X-100)、還元剤(例えば、ジチオスレイト
ール)、およびクエン酸、トリス、MESまたはHEPESのような適当な緩衝液系。記
載された構成において、溶液は小型真空試験管に適合性を有する。溶液は、小型
真空試験管の中で如何なる問題もなく、望ましい安定化作用に反する影響を及ぼ
すこともなく保存することができる。特に、血液供給者にとって全ての系は、血
液の回収について問題のない安全なものである。
【００１９】 溶解および物質の安定化として作用するグアニジウム塩、核酸結合性固相、緩
衝液物質、還元剤、および界面活性剤を含む溶液は、保存において安定であり、
加えられた新鮮な回収血液を物質へ形質転換する。この物質はまた、保存におい
て安定であり、追加的な分析、および核酸の単離のために、直接使用することが
できる。
【００２０】 グアニジンチオシアネートおよび/または塩化グアニジウムは、好ましくは、
グアニジウム塩として使用される。
【００２１】 グアニジウム塩は、好ましくは、1 M〜8.0 Mの濃度で存在する。
【００２２】 トリスおよびクエン酸は、好ましくは、緩衝液物質として使用され、それによ
り、正確なpHは、好ましくは、HClで調整する。しかしながら、他の可能な緩衝
液は、HEPES、MOPS、MES、クエン酸、および例えばPBSのようなリン酸緩衝液が
ある。
【００２３】 固相としてあらゆる核酸結合性物質を使用してもよい。特に適するものは、ガ
ラス粒子、核酸結合性ポリマー、それによりコーティングされた粒子、回収系の
核酸結合性コーティング、またはシリカでコーティングされた粒子である。また
は、核酸結合性固相の表面に特異的結合性分子(例えば、ストレプトアビジン、
オリゴヌクレオチド、ペプチド核酸(PNAs)など)でコーティングしてもよく、そ
れらは核酸上のマーカー分子と、または直接核酸と相互作用する。物質の形成は
、回収系およびその後の単離方法の形式に依存するのみである。特に適するもの
は、核酸を追加として処理する場合、後に直接使用されうる形態である。特に適
するものは、磁気粒子またはフリースのような、通常の単離方法と適合性を有す
る表面である。
【００２４】 適した固相は市販されており、例えば、血液/骨髄のためのmRNA単離キット(ロ
シュ(Roche))に含まれているような、シリカでコーティングされた磁気粒子があ
る。
【００２５】 緩衝液の濃度は、好ましくは、10 mM〜300 mMの範囲、さらにより好ましくは
、10 mM〜100 mMの範囲である。
【００２６】 トライトン-X-100は、界面活性剤として好ましい。他の可能な界面活性剤は、
NP-40、ツウィーン20、ポリドカノール、または他の界面活性剤である。
【００２７】 界面活性剤の濃度は、好ましくは、5％(W/V)〜30％(W/V)の範囲であり、さら
により好ましくは、10％(W/V)〜20％(W/V)の範囲である。
【００２８】 還元剤DTTが好ましいが、β-メルカプトエタノール、TCEP(トリス(2-カルボキ
シエチル)フォスフィン)または他の還元剤も使用することができる。
【００２９】 還元剤の好ましい濃度は、0.1％(W/V)〜10％(W/V)の範囲であり、さらにより
好ましくは、0.5％(W/V)〜2％(W/V)である。
【００３０】 溶液のpHは、好ましくは、3.0〜9.0の範囲であり、さらにより好ましくは、4.
0〜7.5の範囲である。
【００３１】 溶液のpHは、特に、試料材料の添加の際に、pH値を5.0〜7.5の範囲に調整する
。低圧をあらかじめ定め、それに従って試料容量が回収されることにより確実に
なるのだが、望ましい緩衝液濃度またはそれぞれ対応する溶液容量をあらかじめ
用いることにより、完全な試料容量を受容する際に、望ましいpHが実際に得られ
ることが保証されうる。特に好ましくは、試料の受け入れ後、pHが6.3〜6.9の範
囲となる。
【００３２】 特に好ましい溶液は、4.5 Mグアニジンチオシアネート、50 mMトリス/HCl、15
％(W/V)トライトン-X-100、100 mM DTT、ガラス粒子またはシリカでコーティン
グされた磁気粒子の固相を含み、それにより、血液の添加後、pH 6〜7.5が得ら
れるようにpHを調整する。
【００３３】 付加的な好ましい態様によれば、血液試料を受容するための容量は、低圧にし
、血液容器に穴をあけた後、あらかじめ定められた血液容量が容器へ引き込まれ
るように調整することができる。それに相当するものとして、真空容器は市場で
入手可能である。
【００３４】 回収血液を含む容器は、その直後に、追加的な分析にかけることができ、また
は試料の品質に如何なる損傷もなく、より長い期間(数日または数週間まで)保存
することもできる。
【００３５】 本発明の基礎をなす方法によれば、新鮮な回収された血液は、血液回収容器の
中で、上記の溶液と直接接触するため、試料の核酸パターンを変化させる可能性
のあるすべての処理が停止される。核酸は、好ましくは、容器の中ですでに固相
に結合されて存在してもよく、または、追加的な反応段階において固相へ結合さ
れてもよい。
【００３６】 証明された核酸に関連するデータは、核酸分析の力が及ぶ範囲で、後で測定さ
れるのだが、血液回収の時点での実際の状態をこのように正確に構成している、
すなわち、量的および核酸の型を考慮している。
【００３７】 血液の回収された容量は、好ましくは、容器に存在する溶液の容量の0.1倍〜4
倍に一致する。後者では、好ましくは、0.5 ml〜5.0 mlになる。このように、血
液の添加後、グアニジウム塩の最終濃度は、好ましくは、1.0 M〜5 Mの範囲であ
り、さらにより好ましくは、1.0 M〜3.0 Mの範囲である。
【００３８】 本発明に係る容器は、好ましくは、血液試料が核酸分析のために使用されるこ
とになっている場合に、血液を回収する目的で使用される。
【００３９】 記載された回収系の一部として上述した溶液の使用は、細胞の迅速な溶解、お
よび同時に起こるヌクレアーゼの直接的不活性化による試料の安定化を単独で保
証している。そのように得られた血液試料は、驚くべきことに、室温でさえ、数
日以上保存することができる。回収系はさらに、血液の回収から始まり核酸の単
離を経て分析までの間、非感染的操作、汚染に対する安全性を保証している。核
酸の単離について通常の方法によれば、添加の操作段階(核酸単離のために回収
された血液試料を試薬の中へ移す段階など)が通常必要である限りでは、感染の
付加的なリスクまたは試料の汚染を生じる。
【００４０】 固相に結合された核酸は驚くべきことに、簡単な方法で、より長い保存の後で
さえも、試料材料から単離することができる。試料溶解の間、固相の存在により
その表面に核酸が即座に結合する。このように、実際には定量的方法において表
面に結合されている核酸と共に表面をその系から容易に除去できるので、例えば
、より長い保存の後に生じる可能性のある沈殿の形成により引き起こされる収量
の損失を避けることができる。
【００４１】 血液回収系で得られた試料は、核酸を単離するための最新の方法にかけること
ができる。シリカでコーティングされた磁気粒子を使用する場合、核酸を単離す
るための最新の標準的方法を使用することが可能である(磁気的分離、洗浄、核
酸の溶離)。
【００４２】 本発明は、このように、試料受容系を含み、以下の条件を満たすように構成さ
れる：1. 制御された試料の回収および同時に起こる試料材料に含まれる核酸(DN
A、RNA)の安定化。2. 抗凝血物質を完全に使用することなしに行うことができる
試料の回収。3. 系に含まれる固相と核酸との(直接的または追加的な処理段階の
後の)結合。4. 記載された系で得られた試料は、容易に現存する核酸の単離系へ
統合することができる。5. 含まれる試料を包含した系は保存において安定であ
る。
【００４３】 さらに、驚くべきことに、記載された回収系で得られた試料は、核酸を分解す
ることなく、より長い期間に渡って容器中での保存において安定であることが見
出された。
【００４４】 以下の実施例は、本発明を説明するためのものである。
【００４５】 実施例1血液回収系 好ましい態様によれば、血液回収系は以下のように構成されてもよい(図1参照
)：小型試験管は、核酸安定化溶液の定められた容量で満たされ、核酸結合性固
相および定められた真空度を提供され、その後、隔壁で密閉される。その隔壁は
、最新の試料回収キット(カニューレなど)と適合性を有するように構成される。
本実施例においては、予め2.2 mlの試薬が供給され、および真空度は、試料の回
収の間、血液の流入量が正確に2.2 mlであるように調整された。流入する血流に
含まれる核酸は、即座に、安定的形態へと移行された。
【００４６】 一般的な準備は以下の実施例で述べる。
【００４７】 他の方法は記載しないが、本明細書で以下に記載された全ての実施例において
、核酸安定化物質(N-sS)は以下のように構成される：45 mMトリス、5 Mグアニジ
ンチオシアネート、0.8％(W/V)ジチオスレイトール、18％(W/V)トライトン-X-10
0、pH 6.0。
【００４８】 記載される全ての実施例において、核酸安定化物質は、試料と1:1の割合(1容
積のN-sSと1容積の試料材料)で混合された。
【００４９】 全ての実施例において、血液は、回収の間にN-sSを含む小型試験管中に血液を
直接満たすことによって安定化された。
【００５０】 実施例2試料材料およびN-sSの混合後の核酸の安定性 シリカ誘導体表面での試料溶解物のRNAおよびDNAの単離 材料および方法： DNAおよびRNAの単離のための試料材料は、回収後、4℃で6日間保存し、-20℃
で1ヶ月間保存した後に直接使用された。ハイピュアRNA単離キット(HighPure RN
A Isolation Kit)(ベーリンガーマンハイム(Boehringer Mannheim)、カタログ番
号：1828665)をRNAの単離のために使用した(図2)。同封されている情報説明書に
ある準備を以下のように改変した。2.4 mlの試料溶解物の容量を4等分してそれ
ぞれ600 μlをカラムに添加し、2.4 ml溶解物の総試料溶解物を使用した。他の
すべての段階は、同封された情報説明書に沿って行った。RNAは、最終的には100 μlの溶離緩衝液で溶離された。
【００５１】 QiaAmp血液キット(QiaAmp Blood Kit)(キアゲン(Qiagen)カタログ番号：29104
)をDNAを単離するために使用した(図3)。同封された情報説明書に記載されてい
る標準工程は様々な点で改変された：400 μlの試料容量を直接カラムに添加し
、そのためキットに含まれる結合試薬は使用しなかった。25 μlのプロテイナー
ゼKストック溶液を添加し、試料を室温で、10分間インキュベーションした。そ
の後、カラムを収集タンクに置き、同封の情報説明書に従って、遠心分離した。
すべての追加的な段階は、エタノールの使用を除いて、同封の情報説明書に提供
されている記載に従って行われた。溶離容量は200 μlであった。
【００５２】 実施例3RNAの長期安定化のための安定化溶液における還元試薬(例えばDTT)の重要性 材料および方法 使用された安定化溶液： 4.0 M GTC；13.5％トライトン-X-100；45 mMトリス/HCl；各々120 mM DTT含有ま
たは非含有。700 μlの血清を700 μlの安定化溶液と混合した。2分間のインキ
ュベーション後、20 μlのMS2-RNA(0.8 μg/μlロシュダイアグノスティック(Ro
che Diagnostics))を添加した。試料は40℃で、180分間インキュベーションされ
、その後、実施例1に従い、ロシュからのハイピュアトータルRNAキット(HiguPur
e Total RNA Kit)に、等分にした400 μlを適用した。試料を50 μlで溶離し、-
20℃で凍結した。分析はアガロースゲルで行われた(図4参照)。
【００５３】 結果：安定化溶液に還元剤の添加なしで、RNAの長期安定化は得ることができな
い。
【００５４】 実施例4血清/安定化溶液におけるMS2-RNAの安定性：GTC濃度による依存性 材料および方法 使用された安定化溶液：3 M〜5 M GTC；13.5％トライトン-X-100；50 mM DTT；4
2 mMトリス/HCl； 溶液のpH：約4.0、 血清添加後の溶液のpH：約6.7。
【００５５】 2 mlの血清をそれぞれの安定化溶液の2.5 mlと混合した。2分〜5分間のインキ
ュベーション後、90 μlのMS2-RNA(0.8 μg/μl、ロシュ)を添加し、40℃でイン
キュベーションした。400 μlの試料を通例の間隔で回収し、実施例1に従い、ロ
シュのハイピュアトータルRNAキットに適用した。試料を50 μlで溶離し、-20℃
で凍結した。RNAの完全性の分析については、溶離物の20 μlを1.5％のアガロー
スゲルへかけた(図5)。RT-PCR分析法は、AMV-RT法およびPCR法により行われた。
溶離物の10 μlをAMV-RT(ロシュ)法により逆転写し、その後、ライトサイクラー
で定量的PCR法によって分析した。
【００５６】 RTのための混合物： (42℃、1時間) 4.0 μl AMV-RT緩衝液 2.0 μl dNTP's(最終濃度10 mM) 0.5 μl RNアーゼ阻害剤(ロシュ、20ユニット) 1.0 μl プライマー2827(最終濃度1 μM) 1.9 μl DMPC-水 0.6 μl AMV-RT(ロシュ、15ユニット) 10 μl 鋳型RNA 20 μl
【００５７】 PCRは、検出系としてSYBR-グリーンを使用し、61℃のアニーリング温度で行わ
れた。20以上の限界サイクルをもつすべての試料は陰性であると考えられるが、
検出されるシグナルがプライマー二量体の形成にのみ起因するためである。これ
は、ライトサイクラー(ロシュ)における融解曲線の分析により、明らかに証明さ
れうる。RT産物は1:50の割合で二度蒸留化された水で希釈され、その1 μlを以
下のスキームに従って、10 μlのPCRのために使用した：
【００５８】 PCRのための混合物： 1.6 μl MgCl２(ストック溶液25 mM) 5.9 μl DMPC-水 0.25 μl プライマー2827(ストック溶液20 mM) 0.25 μl プライマー2335(ストック溶液20 mM) 1.0 μl SYBR-グリーン-マスターミックス(ロシュ) 1.0 μl RT混合物 10 μl
【００５９】 PCR増幅産物を完全に2％のアガロースゲルにかけた(図6参照)。
【００６０】 結果： 図5は、溶離されたMS2-RNAが、40℃で3日間のインキュベーション後にアガロ
ースゲルで検出されたことを示す。すべてのRNA試料も依然として増幅可能であ
り、かつ40℃で8日間後に明らかに同定され、GTC含量に応じてRNAの完全性に明
らかな差があることを3日間後にすでに認めることができる。したがって、血清/
安定化溶液において、2 Mより低い塩含量が、RNAの完全性のためには有利である
。
【００６１】 血清添加後2分ですでに、MS2-RNAがRNアーゼによって完全に分解され、RNAが
もはや同定することができないという事実は示されていない。血清への安定化溶
液の添加によって、RNAの分解を明らかに遅らせることができることを該実施例
によって証明することができた。MS2-RNAは、血清/安定化溶液において、40℃で
8日間後、何ら問題もなくPCRによって検出することができる(図6)。
【００６２】 実施例5血清/安定化溶液におけるMS2-RNAの安定性：安定化溶液を含む試料のpH値への依 存性 材料および方法 使用された溶液： 4 M(5 M) GTC 14.4％ トライトン-X-100 50 mM DTT 45 mM トリスHCl 血清添加後のpHは6.7と8.0の間。
【００６３】 2.5 mlの安定化溶液を2.0 mlの血清と混合した。90 μlのMS2 RNA(0.8 μg/ml
、ロシュ)の添加後、試料を室温でインキュベーションした。500 μlの試料に由
来するRNAは、実施例4に従い、通例の間隔で、ロシュのウイルスRNAキットに使
用し、50 μlの溶離緩衝液で単離された。溶離物の20 μlは、アガロースゲルに
よって分析された(図7参照)。
【００６４】 結果： 血清/安定化溶液のpHおよび、このように、安定化溶液のpHおよび緩衝液部分
もまた、RNAの長期安定化について決定的要素である。pH値を8.0とすると、2日
間後すでに完全なRNAを同定することができなかったが、pH値が6.6〜7.0の範囲
であれば、室温で13日間インキュベーションした後も依然として完全なRNAを同
定することができる。しかしながら、pH値に加えて、最適に調整されたGTC濃度
もまた、RNAの長期安定化にとって重要である(実施例4)。安定化された試料にお
ける2.2 M GTCのGTC最終濃度が、長期安定化については2.8 Mより良好であるこ
とを図示された実施例により明らかにされている。
【００６５】 実施例6シリカでコーティングされた磁気粒子の使用により示される、安定化溶液の存在 下における核酸結合性表面の安定性 材料および方法 使用された溶液： 4.5 M GTC 15％トライトン-X-100 100 mM DTT 50 mM MES
【００６６】 シリカでコーティングされた磁気粒子は、血液/骨髄のためのmRNA単離キット(
ロシュモレキュラーバイオケミカルズ(Roche Molecular Biochemicals))から得
た。1ml当たりで使用される粒子の量は約35 mgであった。小型回収試験管、安定
化溶液、および磁気粒子から構成される血液回収系は、室温で14日間保存された
。その後、全血液はこの系で回収された。新鮮な回収系(小型試験管、安定化溶
液、磁気粒子)は、対照としての目的で使用された。試料材料に含まれる核酸の
単離は、両方の混合物から行った。磁気粒子は磁石で分離され、その余剰分は除
去された。その粒子を50％エタノール、10 mMトリス、pH 7.0中に再懸濁し、同
溶液で数回洗浄した。粒子は最終的には、10 mMトリス/HCl pH 7.0中で70℃まで
加熱され、それにより、核酸を磁気粒子から遊離させた。粒子は、磁気的に分離
され、核酸を含むその余剰分を標準アガロースゲルで分析した。
【００６７】 結果：
【表１】 14日間の保存後、固相の核酸結合性は変化しなかった。対照と同様に、試料も
同じ核酸結合性を示す。
【００６８】 実施例7シリカでコーティングされた磁気粒子に同時に結合させて7日間保存した後のDNA およびRNAの安定性、単離、ならびに証明 材料および方法 使用された懸濁液： 4.5 M GTC 15％トライトン-X-100 100 mM DTT 50 mM MES 35 mg/ml 粒子
【００６９】 上記の懸濁液の1 mlを含む4つの血液回収系(小型試験管)を、1 mlの全血液と
混合した。小型試験管(全血液溶解物)の2つに25 μgのMS2 RNAを追加的に添加し
た。その2種類の混合物(全血液溶解物+/-MS2 RNA)各々の1つの小型試験管では、
核酸の単離をその直後に行った(操作は実施例6を参照)。残りの2つの小型試験管
は室温で7日間保存した。核酸の単離はこの期間の後に行った。溶離容量は200
μlの全血液容量あたり200 μlになった。核酸は標準アガロースゲルで分析され
た。
【００７０】 結果： 染色体DNAおよびMS2-RNAの安定性は、試料回収系(溶液、固相)中で7日間保存
した後同定することができる(図8)。
【図面の簡単な説明】
【図１】 核酸安定化物質(N-sS)を有し、真空度を既定され、固相を含み、
且つ隔壁で密閉された試料回収容器。
【図２】 異なる期間について試料回収容器中で保存された28S rRNAおよび
18S rRNAのゲル分析(1％アガロース)の図。カラム1：試料の回収直後にRNAの単
離および分離(保存していない)、カラム2：-20℃で1ヶ月間保存、カラム3：4℃
で6日間保存。適用したRNAの量は、血液容量120 μlに対応した。
【図３】 異なる期間について試料回収容器中で保存されたDNAのゲル分析(
1％アガロース)の図。 カラム1：試料の回収直後に単離(保存していない)、カラム2：-20℃で1ヶ月間保
存、カラム3：4℃で6日間保存。適用したDNAの量は血液容量10 μlに対応した。
【図４】 40℃で180分間、DTTを含有または非含有の血清/安定化溶液中で
インキュベーション後に単離されたMS2-RNAにおけるゲル分析の図。 カラム1：陽性対照：MS-2 RNA；カラム2：DNAマーカー；カラム3〜カラム5：DTT
含有安定化溶液中でインキュベーション後のMS-2 RNA(3回の測定)；カラム6〜カ
ラム8：DTT非含有安定化溶液中でインキュベーション後のMS-2 RNA(3回の測定)
。
【図５】 40℃で3日間、血清/安定化溶液中でインキュベーション後に単離
されたMS2-RNAにおけるゲル分析の図。血清添加後の安定化溶液中のグアニジン
チオシアネート含量(GTC含量)は、対応するカラムに示され、該溶液中で対象と
なるRNAはインキュベーションされた。 カラム1：2.70 M GTC、カラム2：2.5 M GTC、カラム3：2.36 M GTC、カラム4：2
.2 M GTC、カラム5：2.08 M GTC、カラム6：1.94 M GTC、カラム7：1.80 M GTC
、カラム8：1.66 M GTC。
【図６】 40℃で1日〜8日間、血清/安定化溶液中でインキュベーション後
に単離されたMS2-RNAのPCR増幅産物におけるゲル分析の図。 カラム1：1日後に単離されたRNAの増幅産物、カラム2：8日後に単離されたRNAの
増幅産物、カラム3：DNAマーカー、カラム4：MS2-RNA陽性対照：10 μl中に0.8
μgをRTで、1:50に希釈、1 μlを増幅。
【図７】 室温で、血清/安定化溶液中で、各々、6日間(カラム2〜カラム12
)および13日間(カラム14〜カラム19)のインキュベーション後に単離されたMS2-R
NAにおけるゲル分析の図。血清と安定化溶液を混合した後に得られるpH値は対象
となるカラムの後ろに示されている。 カラム1、カラム13、カラム20：DNAマーカー、カラム2：pH 8.0、カラム3：pH 7
.7、カラム4：pH 7.5、カラム5：pH 7.35、カラム6：pH 7.18、カラム7、カラム
14：pH 7.07、カラム8、カラム15：pH 6.94、カラム9、カラム16：pH 6.8、カラ
ム10、カラム17：pH 6.72、カラム11、カラム18：pH 6.68、カラム12、カラム19
：pH 6.7。カラム12、カラム19のRNAの安定化溶液は、カラム11のRNAの安定化溶
液と同じpH値であったが、4 Mの代わりに5 M GTCを含んでいた。
【図８】 標準アガロースゲル(1％アガロース)でのRNAおよびDNAの証明の
図。カラム1：分子量マーカー、カラム2〜カラム4：単離された核酸、カラム2：
MS2 RNAを含む全血液溶解物からの核酸(7日間)、カラム3：MS2 RNAを含む全血液
溶解物からの核酸(0日間、対照)、カラム4：全血液溶解物からの核酸(7日間)、
カラム5：全血液溶解物からの核酸(0日間、対照)。上部のバンドは染色体DNA(す
べての4試料において明瞭に認識できる)、カラム2およびカラム3における下部の
バンドは添加して単離されたMS2 RNAを示す。
───────────────────────────────────────────────────── フロントページの続き (81)指定国 ＥＰ(ＡＴ，ＢＥ，ＣＨ，ＣＹ， ＤＥ，ＤＫ，ＥＳ，ＦＩ，ＦＲ，ＧＢ，ＧＲ，ＩＥ，Ｉ Ｔ，ＬＵ，ＭＣ，ＮＬ，ＰＴ，ＳＥ，ＴＲ)，ＯＡ(ＢＦ ，ＢＪ，ＣＦ，ＣＧ，ＣＩ，ＣＭ，ＧＡ，ＧＮ，ＧＷ， ＭＬ，ＭＲ，ＮＥ，ＳＮ，ＴＤ，ＴＧ)，ＡＰ(ＧＨ，Ｇ Ｍ，ＫＥ，ＬＳ，ＭＷ，ＭＺ，ＳＤ，ＳＬ，ＳＺ，ＴＺ ，ＵＧ，ＺＷ)，ＥＡ(ＡＭ，ＡＺ，ＢＹ，ＫＧ，ＫＺ， ＭＤ，ＲＵ，ＴＪ，ＴＭ)，ＡＥ，ＡＧ，ＡＬ，ＡＭ， ＡＴ，ＡＵ，ＡＺ，ＢＡ，ＢＢ，ＢＧ，ＢＲ，ＢＹ，Ｂ Ｚ，ＣＡ，ＣＨ，ＣＮ，ＣＲ，ＣＵ，ＣＺ，ＤＥ，ＤＫ ，ＤＭ，ＤＺ，ＥＥ，ＥＳ，ＦＩ，ＧＢ，ＧＤ，ＧＥ， ＧＨ，ＧＭ，ＨＲ，ＨＵ，ＩＤ，ＩＬ，ＩＮ，ＩＳ，Ｊ Ｐ，ＫＥ，ＫＧ，ＫＰ，ＫＲ，ＫＺ，ＬＣ，ＬＫ，ＬＲ ，ＬＳ，ＬＴ，ＬＵ，ＬＶ，ＭＡ，ＭＤ，ＭＧ，ＭＫ， ＭＮ，ＭＷ，ＭＸ，ＭＺ，ＮＯ，ＮＺ，ＰＬ，ＰＴ，Ｒ Ｏ，ＲＵ，ＳＤ，ＳＥ，ＳＧ，ＳＩ，ＳＫ，ＳＬ，ＴＪ ，ＴＭ，ＴＲ，ＴＴ，ＴＺ，ＵＡ，ＵＧ，ＵＳ，ＵＺ， ＶＮ，ＹＵ，ＺＡ，ＺＷ

Claims (24)

    【特許請求の範囲】
  1. 【請求項１】 核酸を安定化させるための溶液および核酸を結合することが
    可能な固体基部を含む、試料を受容するための容器。
  2. 【請求項２】 溶液が水溶液であり、且つ以下の成分を含むことを特徴とす
    る、請求項1記載の容器： グアニジウム塩； 緩衝液物質； 還元剤；および/または 界面活性剤。
  3. 【請求項３】 グアニジウム塩がグアニジンチオシアネートおよび塩化グア
    ニジウムより選択されることを特徴とする、請求項2記載の容器。
  4. 【請求項４】 グアニジウム塩が1 M〜8 Mの濃度で存在することを特徴とす
    る、請求項2または3記載の容器。
  5. 【請求項５】 溶液が試料材料の添加後にpH 4〜7.5の値を有し、且つ緩衝
    液物質がトリス、HEPES、MOBS、MES、クエン酸、およびリン酸緩衝液より選択さ
    れることを特徴とする、請求項2から4のいずれか一項記載の容器。
  6. 【請求項６】 固相がフリース、フィルター、粒子、ゲル、ボール、栓、お
    よび/または棒として別々に供給され、および/または容器と直接接続されること
    を特徴とする、請求項1から5のいずれか一項記載の容器。
  7. 【請求項７】 緩衝液物質が10 mM〜300 mMの濃度で存在することを特徴と
    する、請求項2から6のいずれか一項記載の容器。
  8. 【請求項８】 界面活性剤がトライトン-X-100、NP-40、ポリドカノール、
    およびツウィーン20より選択されることを特徴とする、請求項2から7のいずれか
    一項記載の容器。
  9. 【請求項９】 界面活性剤が5重量％〜30重量％の濃度で存在することを特
    徴とする、請求項2から8のいずれか一項記載の容器。
  10. 【請求項１０】 還元剤がジチオスレイトール、β-メルカプトエタノール
    、およびTCEPより選択されることを特徴とする、請求項2から9のいずれか一項記
    載の容器。
  11. 【請求項１１】 還元剤が0.1重量％〜10.0重量％の濃度で存在することを
    特徴とする、請求項2から10のいずれか一項記載の容器。
  12. 【請求項１２】 溶液のpHが4.0〜7.5の範囲であることを特徴とする、請求
    項2から11のいずれか一項記載の容器。
  13. 【請求項１３】 溶液が以下の成分を含み、且つ血液の添加後にpHが6.0〜7
    .5であるようにpHを調整することを特徴とする、請求項2から12のいずれか一項
    記載の容器： 4.5 Mグアニジンチオシアネート； 50 mM MES； 15 ％(W/V)トライトン-X-100； 100 mM DTT。
  14. 【請求項１４】 試料を受容するために、好ましくは血液を受容するために
    、空間において低圧で提供されることを特徴とする、請求項2から13のいずれか
    一項記載の容器。
  15. 【請求項１５】 試料として全血液を含むことを特徴とする、請求項2から1
    4のいずれか一項記載の容器。
  16. 【請求項１６】 全血液を請求項1から14のいずれか一項記載の容器へ直接
    導入する段階を含む、血液を回収する方法。
  17. 【請求項１７】 容器の溶液の容量の0.1倍〜4倍に対応する血液量が回収さ
    れることを特徴とする、請求項16記載の方法。
  18. 【請求項１８】 容器に血液を受容した後に、グアニジウム塩の最終濃度が
    1.0 M〜5 Mの範囲であることを特徴とする、請求項17記載の方法。
  19. 【請求項１９】 全血液を請求項1から14のいずれか一項記載の容器へ導入
    する段階、および必要な場合には、固相に結合された核酸を単離する段階を含む
    、全血液に由来する核酸を安定化させる方法、および/または単離する方法。
  20. 【請求項２０】 試料材料の添加後にpHが4.5〜7.5の範囲の値が得られるこ
    とを特徴とする、請求項16から19のいずれか一項記載の方法。
  21. 【請求項２１】 全血液を、好ましくはヒトから、回収するための請求項1
    から14のいずれか一項記載の容器の使用。
  22. 【請求項２２】 試料容器、好ましくは血液を回収するための容器における
    、核酸結合性固相と同様にグアニジウム塩、緩衝液物質、界面活性剤および/ま
    たは還元剤を含む溶液の使用。
  23. 【請求項２３】 試料容器、好ましくは血液を回収するための容器における
    、核酸結合性固相の使用。
  24. 【請求項２４】 試料容器、好ましくは血液を回収するための容器における
    、請求項22記載の溶液の使用、および請求項23記載の固相の使用。
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