JP2003521243A - ヘテロクリティックアナログおよび関連方法 - Google Patents
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Abstract
Description
/166,529(1999年11月18日に出願)および同60/239,0
08(2000年10月6日に出願)に対する優先権を主張する。これらはその
全体が参照として援用される。
テロクリティック(heteroclitic)アナログを生成するための方法
に関係する。
およびガンの根絶に中心的な役割を果たすことを示唆する(Byrneら、J.
Immumol.51:682(1984)、McMichealら、N.En
glnd J.Med.,309:13(1983))。CTLはエピトープを
含むペプチドにより刺激されると、CTL応答を刺激するエピトープに基づくワ
クチンの開発においてかなりの努力が進められている。ヘテロクリティックアナ
ログと命名したエピトープの一つのクラスは、ワクチン成分としての利点を提供
する。なぜならこれらのアナログは、ネイティブエピトープによって誘導される
T細胞応答よりも強力なT細胞応答を誘導するからである。ヘテロクリティック
アナログは、所定の用量に対する応答の増加もしくは同じ応答を達成するための
より少ない必要量によって測定されるような、特定のT細胞に対する増加した刺
激能力もしくは刺激効力を有するペプチドと定義される。
のとおりである。第一に、ヘテロクリティックアナログは、T細胞アネルギーの
状態を逆転することによってか、T細胞の非寛容化交差反応クローンを活性化す
ることによってか、または、「免疫偏向」(すなわち、産生されるCTLの型(
例えば、Th1またはTh2))を媒介することによって、寛容を崩壊/克服す
る能力を有する。最近の研究は、ヘテロクリティックアナログが内因的にプロセ
シングされたエピトープを認識するCTLを誘導し得るという点で、ヘテロクリ
ティックアナログが免疫原であることを示す(Zarembaら、Cancer
Research、57:4570(1997);Rivoltoniら、C
ancer Research、59:301(1999);Selbyら、1
62(2):669(1999))。これは異なる免疫系における研究によって
確認される(Zugelら、J.Immunol.、161:1705(199
8)、Wangら、J.Exp.Med.、190:983(1999)、Me
nら、J.Immunol.、162:3566(1999)。例えば、Zug
elらの研究(Zugelら、前出)は、成体マウスにおいて免疫優性のT細胞
エピトープに対するT細胞寛容が、ペプチドのそのヘテロクリティック交差反応
性ペプチドアナログで免疫することによって克服され得ることを示す。
プの大部分が、自己抗原から誘導される。ガン関連抗体が、しばしば、自己抗原
であるという事実に起因して、これらの抗原に対する既存の寛容が存在し得ると
いう対応した現象が存在し、それによって、そのようなエピトープに対するT細
胞応答の発生が課題である。ヘテロクリティックアナログによる寛容の崩壊は、
マウスクラスII系における最近の研究で示されている(Wangら、J.Ex
p.Med.190:983(1999)。この研究では、寛容の崩壊に関与す
るメカニズムがアネルギーの逆転よりむしろ、寛容化の低親和性クローンの刺激
であった。本明細書中で実証されるヘテロクリシティーは、高いアビディティの
CTLの誘導に関連しており、これは重要な差異を表す。
が示されている(Pfeifferら、J.Exp.Med.、181:156
9(1995)、Taoら、J.Immunol.、158:4237(199
7)、Salazarら、Int.J.Cancer 85(6):829−3
8(2000)、Nicholsonら、Int.Immunol.12(2)
:205−13(2000))。そのようなアナログによって誘導される免疫偏
向は、Th細胞応答の特定のサブセットの発生が腫瘍退行に相関する、(Zit
vogelら、J.Exp.Med.、183:87(1996)、Cellu
zziら、J.Exp.Med.、183:283(1996))または、自己
免疫疾患もしくは感染性の疾患の臨床結果に影響を与える(Romagnani
ら、Annu.Rev.Immumol.、12:227−57(1994))
数々の疾患状態と関連を有する。従って、ヘテロクリティックアナログを伴う免
疫は、エフェクターT細胞の特定のサブセットの誘導によってサイトカイン産生
を調節する能力を提供し、それによって、疾患の経過を変化させる。
なぜなら、それらは強力な生物学的効力により、有意により少量のペプチドが、
処置用量に必要とされるからである。この特徴は、特定の製造および毒性の懸念
を克服する。この事については、黒色腫患者において抗原特異的T細胞を生じた
、MART−1ペプチドのヘテロクリティックアナログが、ネイティブエピトー
プよりはるかに低濃度で活性であることが示されている(Rivoltiniら
、Cancer Research 59:301(1999)。同様の結果が
、CEA由来CAP1エピトープのヘテロクリティックアナログに関して、Sc
hlomおよび共同研究者によって報告された。(Zarembaら、Canc
er Research 57:4570(1997))。しかし、野生型ペプ
チドに対する並行したprecursor frequency分析もしくはT
CRアビディティ分析は、行われなかった。
ィック活性を与えるアミノ酸置換を予測することが非常に有用である。しかしな
がら、本開示以前では、そのような置換を予想するための簡単な方法は存在しな
い。しかし、以前の研究では(Selbyら、J.Immunol.、162(
2):669(1999)、Skipperら、J.Exp.Med.183:
527(1996))、黒色腫細胞から天然に存在する変異ペプチドを溶出する
ことによってか、または、エピトープ内のほとんど全ての位置での変異からなる
多くのアナログを系統的にスクリーニングすることによって、ヘテロクリティッ
クエピトープが、偶発的に同定された(Zarembaら、Cancer Re
search 57:4570(1997)、Loftusら、Cancer
Research 58:2433(1998)、Blakeら、J.Exp.
Med.18:121(1996))。あるいは、ヘテロクリティックアナログ
は、ランダムコンビナトリアムペプチドライブラリーをスクリーニングすること
によって同定された。このライブラリーはまた、多くのペプチドの困難な合成お
よびスクリーニングを必要であった(Pinillaら、Current Op
inion in Immunology 11:193−202(1999)
)。DNA発現ライブラリーのスクリーニングのような、遺伝学的なアプローチ
が、CTLエピトープおよびアナログの生成のための別の方法を提供する(Bo
onら、Annu.Rev.Immunol.12:337−65(1994)
、Gavinら、Eur.J.Immunol.24(9):2124−33(
1994))。しかし、このアプローチは、生成されるエピトープの潜在的な少
ない量および複雑性が問題になり得る。
増強された能力を有するエピトープを含むペプチドを、調製する方法を提供する
。この得られた「ヘテロクリティックアナログ」は、ウイルス性疾患、ガン、お
よび標的細胞上の提示された抗原によって特徴付けられる他の疾患の処置のため
の、免疫学的組成物として有用である。
性を増強するための方法に関する。この方法は、以下の工程を包含する:I)第
一のクラスIエピトープを含むペプチドを提供する工程であって、ここで、この
エピトープは、本質的に、N末端およびC末端ならびに少なくとも一つの一次ア
ンカー残基を有するアミノ酸配列からなり、ここで、このエピトープのアミノ酸
残基は連続的に番号付けられ、そして、このエピトープのN末端に最も近い一次
アンカー残基は、位置2または位置3である工程;II)一次アンカー残基を含
まない位置3および/または5および/または7で、このエピト−プのN末端と
C末端との間に一つ以上の保存的または半保存的な置換を導入する工程で、これ
により、増強された第一のクラスIエピトープと比較される抗原原性を示す第二
のクラスIエピトープを含むペプチドを構成する工程。
と称する。
生型クラスIエピトープに比較して、特定のT細胞に対する少なくとも約50%
増加した効力を示す。このアナログは、1つの置換のみを含み得るか、または2
もしくは3つの置換を含み得、そしてこの置換は、保存的または半保存的であり
得る。このヘテロクリティックアナログは、HLAクラスI分子に結合され、そ
して関連する細胞傷害性T細胞と接触された場合、Th1およびTh2サイトカ
インの両方を誘導し得る。好ましくは、クラスIエピトープは、A1、A2、A
3、A24、B7、B27、B44、B58およびB62からなる群から選択さ
れたスーパーモチーフを含み、より好ましくは、クラスIエピトープは、A2ス
ーパーモチーフ、最も好ましくは、A2.1モチーフを含む。
傷害性T細胞応答を誘導する方法を提供する。この方法は、以下の工程を包含す
る:上記のヘテロクリティックアナログを提供する工程;および、ヒトCTLに
このヘテロクリティックアナログを接触させる工程。
つかの局面において、この接触の工程は、このヘテロクリティックアナログペプ
チドエピトープをコードする配列を含む核酸分子を、被験者に投与することによ
って実施される。
グエピトープを含むペプチドに関する。特に、そして、好ましくは、そのような
ペプチドとしては、そのエピトープが、配列番号2、配列番号3、配列番号5、
配列番号6、配列番号8、配列番号9、配列番号11、配列番号12、配列番号
14、配列番号15、配列番号17、配列番号19、および配列番号20からな
る群から選択されるアミノ酸の配列からなる、ペプチドが挙げられる。このペプ
チドは、9〜20アミノ酸、好ましくは、9〜16アミノ酸、より好ましくは9
〜15アミノ酸を含み得るが、また、全部で9、10、11、12、13または
14アミノ酸のみを含み得る。定義されたヘテロクリティックアナログエピトー
プは、より長いポリペプチドまたはタンパク質に含まれ得、このタンパク質また
ポリペプチドは、同じエピトープのホモポリマーであるか、あるいは、種々のこ
のようなエピトープを含むかまたは野生型ペプチドと組み合わせてヘテロクリテ
ィックアナログエピトープを含む、ヘテロポリマーである。これらペプチドおよ
びタンパク質は、薬学的使用のために設計される組成物に含まれ得る。
もしくはホモポリマーは、他の成分を結合させ、免疫応答の誘発におけるそれら
の活性をさらに増強し得るか、または調節し得る。これらさらなる変更物は、共
有結合的に結合され得るか、または混合物中に非共有結合的に含まれ得る。従っ
て、ヘテロクリティックアナログエピトープは、CTLエピトープまたはこのH
TLエピトープに混合され得るか、または投与され得る。特にHTLエピトープ
は、pan−DR結合分子である。ヘテロクリティックアナログエピトープを含
む組成物は、さらにリポソームを含み得る。ここで、このエピトープは、リポソ
ーム上もしくはリポソーム中に存在するか、またはこのエピトープは、脂質に結
合され得る。このヘテロクリティックエピトープは、HLA重鎖、β2−ミクロ
グロブリンおよびストレプトアビジン(strepavidin)複合体に結合
され得、それによって、4量体が形成される。さらに、このヘテロクリティック
エピトープは、抗原提示細胞を含む組成物において改変され得る。ここで、この
エピトープは、抗原提示細胞上または抗原提示細胞中にあり、ここで、このエピ
トープは、抗原提示細胞上のHLA分子に結合される。従って、HLA分子に制
限される細胞傷害性リンパ球(CTL)が存在する場合、CTLのレセプターは
、HLA分子とそのエピトープの複合体に結合する。抗原提示細胞は、樹状細胞
であり得る。この組成物はまた、単にHLA分子を含み得る。ここで、このエピ
トープを含むペプチドは、HLA分子に結合される。この組成物は、モノクロー
ナル抗体が結合する標識(例えば、ビオチン)、蛍光部分、非哺乳動物性の糖、
放射標識または小さい分子をまた含み得る。
いて有用である。代表的には、ヘテロクリティックアナログは、適切な賦形剤を
さらに含むそのような組成物に含まれる。活性な成分であるヘテロクリティック
エピトープは、投薬形態単位で存在し得る。被験体の処置に有用な組成物はまた
、これらの核酸分子は、上記のペプチドをコードする核酸分子を含み得、それら
の発現のための制御配列を必要に応じて含む。 (発明を実施するための形態) (1.概要) 本発明は、HLAクラスI分子に結合するヘテロクリティックアナログの設計
の方法に関連する。本明細書中に記載される「ヘテロクリティックアナログ」は
、特定のT細胞に対する増強された効力を持つエピトープを含むペプチドである
。それは、所定の投与量に対する増強された応答によって、または相同性のある
クラスIペプチドとして同じ応答を達成するより少ないの必要量によって測定さ
れる。本発明の方法は、特に、ヒトの癌および前癌性の状態に関連する、ウイル
ス、細菌、真菌および原生動物の寄生虫のような感染性の病原体に由来する、な
らびに任意のクラスIペプチドの改変に有用である。
合するHLA分子にわたってあてはまる。例えば、A2スーパーモチーフを有す
るヘテロクリティックアナログペプチドは、HLA−スーパータイプ(例えば、
A0201、A0202、A0203、A0204、A0205、A0206、
A0207など)における全てのHLA分子にわたって、ヘテロクリティック(
すなわち、より高い効力を有する)である。同様に、異なる配列モチーフ(例え
ば、A1、A3、A24、B7、B27、B44、B58、B62など)を有す
るヘテロクリティックアナログペプチドは、その特定のHLA−スーパーファミ
リーにおける全てのHLA分子にわたって、免疫応答をより強力にする。
ティックアナログを設計する特定の法則を見つけた。これらの法則は、任意のク
ラスI対立遺伝子によってコードされるHLA分子に結合するモチーフ、または
ス−パーモチーフを有するエピトープに関して適応できる。従って、これらの法
則の使用によって、任意の「野生型」または「ネイティブ」クラスIエピトープ
の免疫原性を高めることが可能である。
よび/または位置5および/または位置7として保存的または半保存的なアミノ
酸の置換によって改変されることを述べる。置換されるべき保存的または半保存
的アミノ酸の性質は、本明細書以下の、調製Bの記載によって定義され、この結
果は表2に要約される。従って、表2を参照すれば、これらの位置での置換のた
めの適した候補を決め得る。表2に示されるように、表の最上段にわたって示さ
れるそれぞれのアミノ酸は、残存する19の遺伝的にコードされるアミノ酸と数
値的に規定された関係を有する。指標がより低いほど、保存性はより高く;同じ
アミノ酸は、1.0の類似性の割当を有し;最も大きく異なるアミノ酸は、20
に近い類似割当を有する。調製B中で示す方法を使用すると、遺伝子コードされ
ないアミノ酸もまた、類似性の指標を割り当てられ得、そして保存的または半保
存的(または非保存的)として、任意に天然に存在するアミノ酸について、分類
され得る。
る抗原に対する免疫応答を誘導するのに特に有用である。ヒト被験体は、特に好
ましいが、この方法はまた、これらの被験体に関して、対応するHLAモチーフ
を考慮にいれることにより、他の哺乳動物、例えば実験室マウスにも適用し得る
。耐性は、先立つ抗体への曝露によって誘導される特定の免疫学的な非反応性を
いう。耐性は、患者が耐性である特定のクラスIペプチドエピトープを同定する
ことによって、本発明の方法に従ってペプチドエピトープ配列を改変することに
よって、および寛容化エピトープ(抗原)に対する交差反応をする免疫反応を誘
導することによって、克服され得る。例えば、被験体の免疫系がウイルス抗原ま
たは腫瘍関連抗原に耐性である場合、耐性の克服は特に望ましく、後者の抗原は
、細胞の形質転換の結果として、しばしば過剰発現する自己タンパク質である。
CTL株がアナログパネルに対する反応性によりスクリーニングされた。T細胞
刺激容量の改変は一次MHCアンカーの変更なしに達成された。
、そして免疫原性であることが示された自己抗原に由来する腫瘍エピトープが挙
げられる。HIVおよびHBVのポリメラーゼ遺伝子由来のエピトープのような
使用されるウイルスのエピトープは、同様に免疫原性であることが示された。
の基盤を提供し、そうでなければ要求されるスクリーニングを劇的に減少させ、
そして癌および感染性疾患のためのエピトープを基礎としたワクチンの設計に非
常に有用である。
テロクリティックの法則に適合する)総アナログの17%がヘテロクリティック
であった(16/95)。これは、二つの理由において有意である:第1に、ヘ
テロクリティック置換の法則に従ったアナログを使用することでヘテロクリティ
ック検出の効率が2.2%から17%まで上昇した;第2に、合成されることが
必要なペプチドの数が一つのエピトープあたり約100アナログから約15アナ
ログに劇的に減少され、この工程費用を効果的にし、高い処理能力に耐えられる
ようにする。本発明のヘテロクリティック置換の法則の適用を通して、ヘテロク
リティックアナログが生じる効率は、100から1000倍近く、0.2%(2
33のCEA.691およびMAGE3.112アナログのスクリーニングから
4つが同定された)から30%(9つの予測されたアナログのスクリーニングか
ら3つが同定された)まで増加した。後者の頻度は、最初のアッセイにおいて潜
在的なヘテロクリティック活性を示した6つのアナログのうちの4つのみをさら
なる分析に供したので、ひどい過小評価でありうる。
R接触残基を含むことを示した(Byrneら、 J. Immunol. 5
1:682(1984)、 McMichaelら、 N. England.
J. Med. 309:13(1983)、 Zugelら、 J. Im
munol. 161:1705(1998)、 Rivoltiniら、 C
ancer Research 59:301(1999)、 Parhurs
tら、 J. Immunol. 157:2539(1996))が、本研究
ではこれを発見しなかった。例えば、CEA.691エピトープに対しては、T
CR接触残基が8位であり、一方で、ヘテロクリティックは、3および5位でア
ナログ置換が認められた。いかなる仮定によっても束縛されることを意図しない
が、MHC結合の変更は機構となり得る。このアナログに対して実施された結合
分析は、大多数の場合(80%)において好むと好まざるとにかかわらずMHC
結合における変更があることを示した。HLA−A2結合について試験された1
3アナログのうち10アナログはMHC結合の変更を持ち、6アナログは、野生
型のペプチドおよび野生型より結合の悪い4アナログよりも良好に結合するが、
まだ実質的に増加した生物学的応答を生じた。いくつかの研究ではMHC結合を
増強するために一次のMHCアンカー残基を修飾する(この手段は、アナログを
生じるためにいくつかのグループによって用いられた(Pfeifferら、
J. Exp. Med. 181:1569(1995)、 Valmori
ら、J.Immunol.160:1750−1758(1998))。一次の
TCRの接触残基あるいは一次のMHCアンカー残基の変化無しに生物学的応答
の増加は本研究においては認められなかった。応答の増加がMHC結合における
変更にともない媒介されるので、その効果は二次アンカーの位置の変化により媒
介しうることを前提とする。これを支持するさらなる証拠は、ヘテロクリティッ
クの置換がそのペプチドの中間における奇数位置(3、5、7)で起こるという
発見から生じる。3、5および7のこれらの位置全ては、HLA−A2分子に対
する結合にとって二次アンカー位置であると示された(Boonら、 Annu
. Rev. Immunol. 12:337−65 (1994)、 Is
hiokaら、 J. Immunol. 162(7):3915−25 (
1999) )。
るための二次アンカー位置であることがいくつかのグループにより示された(R
uppertら、 Cell 74:929(1993)、 Madden、
Annu. Rev. Immunol. 13:587−622(1995)
)。そのような二次アンカー位置の変更は、T細胞認識差異に転換しうる(Va
lmoriら、 J. Immnol. 160:1750(1998); D
avisら、 Annu. Rev. Immnol. 16:523 (19
98))が、これらの研究では、T細胞の認識差異は、MHC結合における変化
に付随し、ヘテロクリティックの獲得に関与するアミノ酸置換の種類に関する法
則は規定されなかった。二次アンカーの変化からT細胞の認識の変化へのこのよ
うな転換が生じる機構は現在不明瞭である。しかし、いくつかのモデルは、二次
アンカーの位置の残基がMHCと結合する様式の変化がTCR接触残基の配向に
おける変更あるいは増加した可撓性を引き起こし得ることを示唆しており、それ
は、TCRに対するこれらのアナログの結合の増加に帰着する(Kershら、
J. Exp. Med. 184:1259(1996)、 Evavol
dら、 J. Immunol. 148:347(1992)、 Alamら
、 Immunity 10:227(1999)、 Hamplら、 Imm
unity 7:379−85(1997))。また、いくつかの以前の研究で
は、ヘテロクリティックアナログによるT細胞応答の調節が主なTCR接触残基
に直接関与することを意味していた(Zarembaら、 Cancer Re
search 57:4570(1997)、 Loftusら、 Cance
r Research 58:2433(1998)、 Dresselら、
J. Immunol. 159:4943(1997))。けれどもこの発見
は、現在の体系的解析により実証されない。本研究において同定されたアナログ
に対して増加したT細胞認識は、おそらくMHC結合容量の増加に起因しないが
、増加される結合は、おそらく一次アンカーの位置が最適化されたアナログの場
合において、重要な役割を果たす。本研究は、ヘテロクリティックアナログが、
おそらくTCRあるいはMHCの結合容量の大きな変更によるよりもむしろ構造
における微妙な変更により生じることを示唆する。
どころか、本データは、ヘテロクリティックアナログがTh1およびTh2両応
答の産生を増加することを示唆したが、その増加の大きさおよび動力学が異なり
得る。事実、いくつかのグループ(Nicholsonら、 Int. Imm
unol. 12(2):205−13(2000)、 Parhurstら、
J. Immunol. 157:2539(1996))は、最近ペプチド
アナログによるそのような全体刺激を報告した。これは、アナログによって誘起
されるより強いTCRのシグナルに起因するが、そのような全体刺激の機構は、
今後解明されるべきである。
るインビボでのヘテロクリティックアナログの効力は評価される。従って、効果
的なCTLを生じさせることが攻撃であるとこれまで判明している腫瘍に対する
ワクチン化として、ヘテロクリティックアナログでの免疫化がより効果的で有効
な戦略であることが見出される。
Lエピトープのいくつもの異なるヘテロクリティックアナログを同定した。その
適切な野生型エピトープは表1に示される。全てのこれらのエピトープは本発明
者らのより早い報告において免疫原性であることが示された(Kawashim
aら、 Human Immunology 59:1−14(1998)、
Ishiokaら、 J. Immunol. 162(7):3915−25
(1999))。最初の実験の中で、CEA.691およびMAGE3.112
CTLエピトープの233のアナログの抗原性が調査された。同定された4つの
ヘテロクリティックアナログの性質は、ヘテロクリティック置換が3、5および
7の位置で保存的な置換を含むことを示した。この仮説は、3つのさらなるエピ
トープであるMAGE2.157、HIVPol.476およびHBVPol.
455が関与する引き続きの研究において試験された。このように同定された全
てのヘテロクリティックアナログは、提案した本法則、すなわちヘテロクリティ
ックアナログが3、5および/または7の位置での保存的あるいは半保存的な置
換に付随されることに一致した。
倣するため、マウスのエピトープ、p53.261もまた修飾された。T細胞寛
容の部分的な状態はこのエピトープに関して報告された(Theobaldら、
Proc.Natl. Acad. Sci. 92:11993−1199
7(1995)、 Theobaldら、 J. Exp. Med., 18
5(5):833−841(1997))。予想された9つのp53.261ア
ナログのうち4つは、未変性ペプチドにより誘導されるCTL応答に比べてイン
ビボでのアナログ特異的CTLの応答をより強く誘導することが発見された。よ
り顕著に、ヘテロクリティックアナログによる免疫化により生じたCTLの交差
反応性が解析された場合に、3つのp53.261アナログが未変性のp53.
261エピトープに対して活発に応答するCTLを誘導した。最終的に、ヒトC
TLについてこれらの発見の妥当性はMAGE3.112エピトープのヘテロク
リティックアナログがインビトロでのヒトT細胞に対して免疫原性であることを
実証することにより考慮された。帰着するCTLは腫瘍細胞株の形態において自
然に作用される野生型抗原を認識しうる。
されたので、本明細書に示した研究は、ヘテロクリシティーが全世界的な現象で
あることを証明する。加えて、本願は、クローンのT細胞集団(以前の研究で明
示されたような)およびインビボでの免疫化の後の大部分のT細胞集団の両方に
おけるヘテロクリティックアナログを検出することが可能であることを示す。さ
らに、本明細書において、ヘテロクリシティー(HLA A2.1系におけるも
のと他のクラスIスーパーモチーフに関するものとの両方)が、合理的なヘテロ
クリシティーの予測を見込む別々の構造上の特徴に付随することが実証される。
によりCTLを誘導し、また、野生型ペプチドにより誘導されるより多数の(前
駆体出現率)これらの細胞を誘導することが実証される;インビボでのヘテロク
リティックCTLの誘導およびT細胞の寛容を中断するためのその適用は実証さ
れる。
なT細胞集団を生じるのに効果的であった。多数のTCR遺伝子由来のTCRを
提示するポリクローナルの応答は臨床背景で疾患状態を治療するのにより有効で
ある。最終的に、野生型エピトープに対する強い交差反応性のアビディティを有
するCTLの高い前駆体出現率を生じるための能力が、通常は免疫系に対して寛
容であるエピトープに対する効果的なCTL応答が要求される例において重要で
ある。
る認識に関与するアミノ酸残基のセットであるか、またはT細胞の状況において
は、主要組織適合遺伝子複合体(MHC)によりコードされるHLAの状況に提
示される場合にT細胞レセプタータンパク質による認識にとって必要な残基であ
る。インビトロまたはインビボでの免疫系の設定において、エピトープは、一次
、二次および三次ペプチド構造、ならびに電荷のような分子の集団的特徴であり
、これらは一緒になって、免疫グロブリン、T細胞レセプターまたはHLA分子
によりコードされる部位を形成する。本開示を通してエピトープおよびペプチド
は、しばしば交換可能に使用される。しかし、本発明のエピトープより大きくか
つ本エピトープを含む、分離または精製されたタンパク質またはペプチド分子が
、まだ本発明の範囲内にあることは、評価されることである。
をいう。本明細書において記載されたように、クラスIエピトープは代表的に約
8から約13アミノ酸長である。HLA分子に対する結合は、2つの一次アンカ
ー残基により主に調節され、このうちの一方はエピトープのC末端にあり、そし
て他方は、2または3位にある。結合は、また、1つ以上の二次アンカー残基に
より補助されうる。読み手の利便性のために、様々な一次HLAクラスI結合ア
ンカーは、表4にて示される。アンカーのパターンは、「モチーフ」と称される
。「スーパーモチーフ」は、2つ以上のHLA対立遺伝子によりコードされるH
LA分子により共有されるペプチド結合の特異性である。好ましくは、スーパー
モチーフ保有ペプチドは、高いまたは中間の親和性(本明細書で定義されるよう
な)で2つ以上のHLA抗原により認識される。クラスIスーパーモチーフの例
としては、例えば、A1、A2、A3、A24、B7、B27、B44、B58
およびB62が挙げられる。
表す。IC50は、参照ペプチドの結合の50%阻害が認められる、結合アッセイ
におけるペプチドの濃度である。アッセイを行う条件(すなわち、制限HLAタ
ンパク質濃度および標識ペプチド濃度)が付与されると、これらの値は、Kd値
を概算する。結合を測定するためのアッセイは、例えば、参考として本明細書に
援用される、PCT公開WO94/20127およびWO94/03205に、
詳細に記載される。IC50値が、アッセイ条件が変化する場合、そして使用する
特定の試薬(例えば、HLA調製物など)に依存して、(しばしば、劇的に)変
化し得ることに留意する。例えば、過剰濃度のHLA分子は、所定のリガンドの
見かけの測定されたIC50を増加する。あるいは、結合は、参照ペプチドと関連
して表される。特定のアッセイが、より高感度またはより低感度になるにつれて
、試験するペプチドのIC50は、幾分変化し得るが、参照ペプチドに関連する結
合は、有意には変化しない。例えば、参照ペプチドのIC50が10倍増加するよ
うな条件下で行うアッセイにおいて、試験ペプチドのIC50値もまた、約10倍
シフトする。従って、あいまい性を回避するために、ペプチドが良好、中程度、
弱いあるいはネガティブな結合因子であるかの評価は、一般に、標準ペプチドの
IC50に対する、そのペプチドのIC50に基づく。結合はまた、当該分野におい
て公知の他のアッセイ系を使用して測定され得る。
、ペプチドのカルボキシル末端に最も近いエピトープの末端の残基の位置をいい
、これは以下に定義したような従来の命名法を使用して指定される。エピトープ
の「C末端」は、ペプチドあるいはポリペプチドの末端に実際に対応してもよい
し、対応しなくてもよい。
の指定は、ペプチドのN末端に最も近いエピトープの末端の残基の位置をいい、
これは以下に定義したような従来の命名法を使用して指定される。エピトープの
「N末端」は、ペプチドあるいはポリペプチドの末端に実際に対応してもよいし
、対応しなくてもよい。
える:プロセッサー;少なくとも1つの情報記憶/検索装置、例えば、ハードド
ライブ、ディスクドライブまたはテープドライブなど;少なくとも1つの入力装
置、例えば、キーボード、マウス、タッチスクリーン、またはマイクロホンなど
;およびディスプレイ構造。さらに、コンピューターは、ネットワークと連絡す
る通信チャネルを備え得る。このようなコンピューターは、多かれ少なかれ、上
記に列挙したものを備え得る。
または「半保存的」であるアミノ酸は、調製Bに従って定義され、表2に示され
る。
は、50nM以下のIC50またはKD値での結合として定義され;「中程度の親
和性」とは、約50nMと約500nMとの間のIC50またはKD値での結合で
ある。HLAクラスII分子への結合に関する「高い親和性」とは、100nM
以下のIC50またはKD値での結合として定義され;「中程度の親和性」とは、
約100nMと約1000nMとの間のIC50またはKD値での結合である。
LA分子を結合し、そしてCTL応答および/またはHTL応答を誘導するよう
な、対立遺伝子特異的モチーフまたはスーパーモチーフを含むペプチドである。
従って、本発明の免疫原性ペプチドは、適切なHLA分子に結合し、そしてその
後、免疫原性ペプチドが由来する抗原に対する、細胞傷害性T細胞応答またはヘ
ルパーT細胞応答を誘導し得る。
て見い出されるような通常その材料に付随する成分を、実質的または本質的に含
まない材料をいう。従って、本発明に従う単離されたペプチドは、好ましくは、
そのインサイチュ環境下でそのペプチドに通常会合する物質を含まない。
例えば、PADRETMペプチド、Epimmune Inc.、San Die
go、CA)を結合する分子ファミリーのメンバーである。PADRETMファミ
リーの分子を定義するパターンは、HLAクラスIIスーパーモチーフとして考
えられ得る。PADRETM分子に見い出されたパターンを含むペプチドは、大部
分HLA−DR分子に結合し、インビトロおよびインビボでヒトヘルパーTリン
パ球(HTL)応答を刺激する。
理学的に適合性の組成物をいう。
いは天然腫瘍あるいは病原性生物のような天然源から合成的に調製されうる。ペ
プチドエピトープは、個々にまたはポリエピトープペプチドとして合成され得る
。ペプチドは、好ましくは、他の天然に存在する宿主細胞のタンパク質およびそ
のフラグメントを実質的に有しないが、いくつかの実施形態において、ペプチド
は、天然フラグメントまたは粒子に合成的に結合体化され得る。
子に結合するペプチドとして定義される。本発明に従うペプチドは、様々な長さ
であり、そしてそれらの中性(非荷電)形態または塩である形態のいずれかであ
り得る。本発明に従うペプチドは、グリコシル化、側鎖酸化、もしくはリン酸化
反応のような修飾を有しないか、またはそれらは修飾が本明細書中に記載される
ようなペプチドの生物学的活性を破壊しない条件を前提としてこれらの修飾を含
むかのいずれかである。
ク質源に由来し得る。例えば、クラスIペプチドは、ウイルス性抗原、腫瘍付随
抗原、寄生物抗原、細菌抗原、または真菌抗原由来であり得る。本発明のいくつ
かの好ましい局面において、クラスIペプチドは、被験体の免疫系が寛容(すな
わち先の抗原に対する曝露により引き起こされる特異的免疫学的非応答性)を発
現する抗原に由来する。
グは、本発明にて利用され得る。適合した腫瘍付随抗原の例としては、前立腺特
異的抗原(PSA)、黒色腫抗原MAGE1、MAGE2、MAGE3、MAG
E−11、MAGE−A10、並びにBAGE、GAGE、RAGE、MAGE
−C1、LAGE−1、CAG−3、DAM、MUC1、MUC2、MUC18
、NY−ESO−1、CDK4、BRCA2、NY−LU−1、NY−LU−7
、NY−LU−12、CASP8、RAS、KIAA−2−5、SCCs、p5
3、p73、CEA、Her2/neu、Melan−A、gp100、チロシ
ナーゼ、TRP2、gp75/TRP1、カリクレイン、前立腺特異的膜抗原(
PSM)、前立腺酸性ホスファターゼ(PAP)、前立腺特異的抗原(PSA)
、PT1−1、B−カテニン、PRAME、テロメラーゼ、FAK、サイクリン
D1タンパク質、NOEY2、EGF−R、SART−1、CAPB、HPVE
7、p15、葉酸レセプターCDC27、PAGE−1、そしてPAGE−4が
挙げられる。適合した感染症付随抗原の例としては、B型肝炎コア抗原および表
面抗原(HBVc、HBVs)、C型肝炎抗原、エプスタイン−バーウイルス抗
原、ヒト免疫不全症ウイルス(HIV)抗原、そしてヒトパピローマウイルス(
HPV)抗原、Mycobacterium tuberculosisおよび
Chlamydiaが挙げられる。適合する真菌抗原の例としては、Candi
da albicans、Cryptococcus neoformans、
Coccidoides spp.、Histoplasma spp.および
Aspergillus fumigatisに由来する抗原が挙げられる。適
合する原性動物の寄生物抗原の例としては、P. falciparum、Tr
ypanosoma spp.、Schistosoma spp.、Leis
hmania sppなどを含む、Plasmodium spp.由来のもの
が挙げられる。
れる野生型の配列として用いられ得るエピトープは、任意のクラスIエピトープ
に対応することが見出され得る。上に記載されるもののような任意の抗原に対し
て、特定のクラスI対立遺伝子に付随するモチーフは、このようなエピトープが
備わっている抗原のアミノ酸配列中の位置を決定する指針として利用され得る。
この決定は、視覚的にかまたは好ましくはコンピューター技術および関連のソフ
トウェアを使用して行われ得る。従って、例えば2位のバリンおよびC末端のア
ルギニンを含むような、例えばA3スーパーモチーフの認識により、要求される
任意の抗原のアミノ酸配列は、このモチーフを保有するエピトープについて調査
され得る。次いで、そのエピトープは、要求されるアナログを獲得するために本
発明に記載される法則に従って修飾され得る。
され得、例えばこれは、約8から約13、しばしば8から11、好ましくは9か
ら10アミノ酸残基長に対するポリエピトープの構築に利用され得る。好ましく
は、ペプチドエピトープは、内在的に処理される関連するHLA分子に対して結
合される病原体由来ペプチドまたは腫瘍細胞ペプチドとサイズにおいて同一基準
であるが、本発明のエピトープを含むペプチドの同定および調製は、また、本明
細書に記載された技術を利用して行われ得る。
して、または、ポリエピトープペプチドをコードするミニ遺伝子として関連づけ
られ得る。
Iエピトープを含む天然のペプチド領域を同定することが好ましい。そのような
配列は、1つのアミノ酸長に対して最大のエピトープ数を含むことを基として通
常選択される。エピトープが、ネスティングされるか、もしくは重なる様式で存
在し得ることは、評価されることであり、例えば、10アミノ酸長ペプチドは、
2つの9アミノ酸長エピトープならびに1つの10アミノ酸長エピトープを含み
得た;細胞内のプロセシングにおいて、それぞれのエピトープは、そのようなペ
プチドの投与の際にHLA分子により曝露および結合されうる。このより大きく
、好ましいマルチ−エピトープのペプチドは、合成的、組換え、あるいは天然素
材からの切断を経て生じ得る。
サイズに関しては、ペプチドは、従来の技術に従って溶液中あるいは固体支持体
上で合成され得る。種々の自動合成機は、市販されており、公知のプロトコール
に従って使用され得る。(例えば、Stewart & Young、SOLI
D PHASE PEPTIDE SYNTHESIS、第2版、Pierce
Chemical Co.、1984年を参照)。さらに、個々のペプチドエ
ピトープは、いまだ本発明の範囲内であるより大きなペプチドを作製するために
化学連結を使用して結合され得る。
ベクターに挿入され、適切な宿主細胞に形質転換またはトランスフェクトされ、
そして発現のために適切な条件下で培養される、組換えDNAの技術が利用され
得る。これらの製法は、Sambrookら、Molecular Cloni
ng、A LABORATORY MANUAL、Cold Spring H
arbor Press、Cold Spring Harbor、 New
York(1989)に一般に記載されるように、当該分野において一般的に公
知である。従って、1つ以上の本発明のペプチド配列を含む組換えポリペプチド
は、適切なT細胞エピトープを提示するために使用され得る。
クレオチドがコードする配列は、例えば、Matteucciら、J.Am.C
hem.Soc.103:3185(1981)のホスホトリエステル法のよう
な化学技術により合成され得る。ペプチドアナログは、天然ペプチド配列をコー
ドする核酸塩基を、適切で、また要求される核酸塩基で置換することにより簡単
に作製され得る;典型的な核酸の置換は、本明細書において、モチーフ/スーパ
ーモチーフにより定義されるアミノ酸をコードするものである。次いで、コード
配列は、適切なリンカーに供され、また当該分野において通例利用可能な発現ベ
クター中に連結され得、そしてそのベクターは、要求される融合タンパク質を作
製するために適切な宿主を形質転換するために使用され得る。いくつものそのよ
うなベクターおよび適切な宿主系は現在使用可能である。融合タンパク質の発現
のために、コードする配列は、作動可能に連結される開始および終止コドン、プ
ロモーターおよびターミネータ領域、ならびに通例要求される細胞の宿主での発
現のための発現ベクターを提供する複製系を提供される。例えば、細菌の宿主と
の適合性を持つプロモーター配列は、要求されるコード配列の挿入のための便利
な制限部位を含むプラスミドに提供される。得られる発現ベクターは、適切な細
菌の宿主に形質転換される。もちろん、酵母、昆虫あるいは哺乳動物の細胞の宿
主はまた、適切なベクター、ならびに制御配列を用いて使用され得る。
解性)を修飾するための置換を含むペプチドが含まれ得る。例えば、ペプチドは
システイン(C)のα−アミノ酪酸での置換によって修飾され得る。この化学的
特質に起因して、システインはジスルフィド架橋を形成する傾向を有し、そして
結合能力を減らすようにペプチド構造を十分に変化させる。Cの代わりにα−ア
ミノ酪酸を用いることは、この問題を緩和させるだけでなく、実際に特定の例に
おいて結合および交差結合能力を改善する。システインをα−アミノ酪酸と置換
することは、ペプチドエピトープの任意の残基で、すなわちアンカー位置または
非アンカー位置のいずれかで起こり得る。
特に有用である。なぜならそれらはインビボにおいて増加した安定性を表す傾向
があるからである。このようなアナログはまた、改善された貯蔵寿命または製造
の特性を有し得る。より詳細には、重要ではないアミノ酸はタンパク質中の天然
に存在するアミノ酸(例えばL−α−アミノ酸またはそれらのD−異性体)に制
限される必要はないが、非天然のアミノ酸、例えばアミノ酸の模倣物(例えばD
−ナフチルアラニン(naphylalanin)またはL−ナフチルアラニン
;D−フェニルグリシンまたはL−フェニルグリシン;D−2−チエニルアラニ
ン(thieneylalanine)またはL−2−チエニルアラニン;D−
1、−2、3−もしくは4−ピレネイルアラニン(pyreneylalani
n)またはL−1、−2、3−もしくは4−ピレネイルアラニン;D−3−チエ
ニルアラニンまたはL−3チエニルアラニン;D−(2−ピリジニル)−アラニ
ンまたはL−(2−ピリジニル)−アラニン;D−(3−ピリジニル)−アラニ
ンまたはL−(3−ピリジニル)−アラニン;D−(2−ピラジニル)−アラニ
ンまたはL−(2−ピラジニル)−アラニン;D−(4−イソプロピル)−フェ
ニルグリシンまたはL−(4−イソプロピル)−フェニルグリシン;D−(トリ
フルオロメチル)−フェニルグリシン;D−(トリフルオロメチル)−フェニル
アラニン;D−ρ−フルオロフェニルアラニン;D−ρ−ビフェニルフェニルア
ラニンまたはL−ρ−ビフェニルフェニルアラニン;D−ρ−メトキシビフェニ
ルフェニルアラニンまたはL−ρ−メトキシビフェニルフェニルアラニン;D−
インドール(アルキル)アラニンまたはL−2−インドール(アルキル)アラニ
ンおよびD−2−アルキルアラニンまたはL−アルキルアラニン(ここでアルキ
ル基はメチル、エチル、プロピル、ヘキシル、ブチル、ペンチル、イソプロピル
、イソブチル、sec−イソチル、イソ−ペンチルまたは酸性ではないアミノ酸
に置換され得るかまたは置換されない)が挙げられ得る。非天然のアミノ酸の芳
香環として、例えばチアゾリル、チオフェニル、ピラゾリル、ベンジミダゾリル
、ナフチル、フラニル、ピロリル、およびピリジル芳香環が挙げられる。
よびヒト血漿および血清のような種々の生物学的培地は安定性を試験するために
用いられている。例えば、Verhoefら、Eur.J.Drug Meta
b.Pharmacokinetics 11:291(1986)を参照のこ
と。本発明のペプチドの半減期は25%ヒト血清(v/v)アッセイを用いて簡
便に決定される。そのプルトコールは一般的に以下のようである:プールしたヒ
ト血清(AB型、熱で不活性化されていない)を使用する前に遠心分離により脱
脂する。次いで血清をRPMI−1640または別の適切な組織培養培地で25
%に希釈する。予め決定された時間間隔で、少量の反応溶液が取り出され、そし
て6%のトリクロロ酢酸水溶液(TCA)またはエタノールのいずれかを加えら
れる。濁った反応サンプルは4℃に15分間冷却され、その後スピンして沈殿し
た血清タンパク質をペレットにする。次いでペプチドの存在は安定性特異的なク
ロマトグラフィ条件を用いて逆相HPLCによって決定される。
プに分類され得、それぞれは広く重複するペプチド結合のレパートリーおよび主
なペプチド結合ポケットのコンセンサス構造によって特徴付ける、ということを
実証する証拠が集まってきている。従って本発明のペプチドは、いくつかのHL
A特異的アミノ酸モチーフのうちのいずれか1つによってか(例えば表3〜4を
参照のこと)、またはモチーフの存在がいくつかの対立遺伝子特異的HLA抗原
に結合する能力に対応する場合はスーパーモチーフによって同定されている。特
定のアミノ酸スーパーモチーフを有するペプチドに結合するHLA分子は、集合
的にHLA「スーパータイプ」という。
ーフおよびスーパーモチーフは同定のための手引きおよび発明に従うペプチドエ
ピトープの用途を提供する。これは、アナログを構築するための本明細書中に示
される法則を適用するために、以下の実施例に示されるものとは異なる種々のク
ラスIモチーフに対応する候補野生型エピトープまたは以下に示されるものを保
有するが異なる抗原の中にあるエピトープの同定を可能にする。
チーフに関わり無く、そのペプチドから発明の方法に従って設計され得る。下記
に描いたHLAクラスIペプチドエピトープのスーパーモチーフおよびモチーフ
の一次アンカー残基を表3に要約する。表3(a)で述べたHLAクラスIモチ
ーフは、ここで主張される本発明に最も著しい関連のモチーフである。HLAク
ラスIスーパータイプファミリーを含む対立遺伝子特異的なHLA分子を表4に
列挙する。いくつかの例において、ペプチドエピトープはモチーフおよびスーパ
ーモチーフの両方に列挙され得る。特定のモチーフとそれぞれのスーパーモチー
フとの関係は、個々のモチーフの説明中に示される。
水性(L、I、VまたはM)の一次アンカー残基のペプチドリガンド中の存在、
そしてエピトープのC末端位置における芳香族(Y、FまたはW)の一次アンカ
ー残基の存在により特徴付けられる。A1スーパーモチーフに結合するHLA分
子の対応するファミリー(すなわち、HLA−A1スーパータイプ)は、少なく
ともA*0101、A*2601、A*2602、A*2501、およびA*320
1を含む(例えば、DiBrino,M.ら、J.Immunol.151:5
930,1993;DiBrino,M.ら、J.Immunol.152:6
20,1994;Kondo,A.ら、Immunogenetics 45:
249,1997を参照のこと)。A1スーパーファミリーのメンバーであると
推定される他の対立遺伝子特異的HLA分子は、表4に示される。
ば、Falkら、Nature 351:290−296,1991;Hunt
ら、Science 255:1261−1263,1992;Parkerら
、J.Immunol.149:3580−3587,1992;Rupper
tら、Cell 74:929−937,1993を参照のこと)およびHLA
−A2およびHLA−A28分子の間での交差反応性結合が記載される(例えば
、関連データの総説については、Fruciら、Human Immunol.
38:187−192,1993;Tanigakiら、Human Immu
nol.39:155−162,1994;Del Guercioら、J.I
mmunol.154:685−693,1995;Kastら、J.Immu
nol.152:3904−3912,1994を参照のこと)。これらの一次
アンカー残基は、HLA−A2スーパーモチーフを規定し;ペプチドリガンド中
の存在は、いくつかの異なるHLA−A2およびHLA−A28分子を結合する
能力に対応する。HLA−A2スーパーモチーフは、2位に一次アンカー残基と
してL、I、V、M、A、TまたはQを有するペプチドリガンド、およびエピト
ープのC末端位置に一次アンカー残基としてL、I、V、M、AまたはTを有す
るペプチドリガンドを含む。
LA−A2スーパータイプ)は、少なくとも以下を含む:A*0201、A*02
02、A*0203、A*0204、A*0205、A*0206、A*0207、
A*0209、A*0214、A*6802およびA*6901。A2スーパーファ
ミリーのメンバーであると推定される他の対立遺伝子特異的HLA分子は、表4
に示される。
、I、V、M、SまたはTのペプチドリガンド中の存在、そしてエピトープのC
末端位置における(例えば、9マーの9位に)正に荷電した残基RまたはKの存
在により特徴付けられる(例えば、Sidneyら、Hum.Immunol.
45:79,1996を参照のこと)。A3スーパーモチーフを結合するHLA
分子の対応するファミリー(HLA−A3スーパータイプ)の例示的メンバーと
しては、少なくとも:A*0301、A*1101、A*3101、A*3301お
よびA*6801が挙げられる。A3スーパータイプのメンバーであると推定さ
れる他の対立遺伝子特異的HLA分子は、表3に示される。
残基(F、W、またはY)または疎水性脂肪族残基(L、I、V、M、またはT
)がペプチドリガンド中に存在し、そしてエピトープのC末端位置に一次アンカ
ーとしてのY、F、W、L、IまたはMの存在により特徴付けられる(例えば、
SetteおよびSidney,Immunogenetics(印刷中)19
99を参照のこと)。A24スーパーモチーフに結合するHLA分子の対応する
ファミリー(すなわち、A24スーパータイプ)としては、少なくともA*24
02、A*3001およびA*2301が挙げられる。A24スーパータイプのメ
ンバーであると推定される他の対立遺伝子特異的HLA分子は、表3に示される
。
るペプチド、およびエピトープのC末端位置における一次アンカーとして疎水性
アミノ酸または脂肪族アミノ酸(L、I、V、M、A、F、W、またはY)によ
り特徴付けられる。B7スーパーモチーフを結合するHLA分子の対応するファ
ミリー(すなわち、HLA−B7スーパータイプ)は、少なくとも26のHLA
−Bタンパク質を含み、これらとしては以下が挙げられる:B*0702、B*0
703、B*0704、B*0705、B*1508、B*3501、B*3502
、B*3503、B*3504、B*3505、B*3506、B*3507、B*3
508、B*5101、B*5102、B*5103、B*5104、B*5105
、B*5301、B*5401、B*5501、B*5502、B*5601、B*5
602、B*6701、およびB*7801(例えば、関連データの総説について
は、Sidneyら、J.Immunol.154:247,1995;Bar
berら、Curr.Biol.5:179,1995;Hillら、Natu
re 360:434,1992;Rammenseeら、Immunogen
etics 41:178,1995を参照のこと)。B7スーパータイプのメ
ンバーであると推定される他の対立遺伝子特異的HLA分子は、表3に示される
。
荷電した残基(R、H、またはK)のペプチドリガンド中の存在、そしてエピト
ープのC末端位置における一次アンカーとして疎水性残基(F、Y、L、W、M
、I、A、またはV)の存在により特徴付けられる(例えば、Sidneyおよ
びSette,Immunogenetics(印刷中)1999を参照のこと
)。B27スーパーモチーフに結合するHLA分子の対応するファミリー(すな
わち、B27スーパータイプ)の例示的なメンバーとしては、少なくとも:B*
1401、B*1402、B*1509、B*2702、B*2703、B*270
4、B*2705、B*2706、B*3801、B*3901、B*3902、お
よびB*7301が挙げられる。B27スーパータイプのメンバーであると推定
される他の対立遺伝子特異的HLA分子は、表3に示される。
荷電した残基(DまたはE)のペプチドリガンド中の存在、そしてエピトープの
C末端位置における一次アンカーとしての疎水性残基(F、W、Y、L、I、M
、V、またはA)の存在により特徴付けられる(例えば、Sidneyら、Im
munol.Today 17:261,1996参照のこと)。B44スーパ
ーモチーフに結合するHLA分子の対応するファミリー(すなわち、B44スー
パータイプ)の例示的なメンバーとしては、少なくとも以下が挙げられる:B*
1801、B*1802、B*3701、B*4001、B*4002、B*400
6、B*4402、B*4403、およびB*4006。
な脂肪族残基(A、S、またはT)のペプチドリガンド中の存在、およびエピト
ープのC末端位置における一次アンカー残基としての芳香族または疎水性の残基
(F、W、Y、L、I、V、M、またはA)の存在によって、特徴付けられる(
例えば、関連するデータの総説についてはSidneyおよびSette,Im
munogenetics,印刷中、1999を参照のこと)。B58スーパー
モチーフに結合するHLA分子の対応するファミリー(すなわち、B58スーパ
ータイプ)の例示的なメンバーとしては、少なくとも以下が挙げられる:B*1
516、B*1517、B*5701、B*5702、およびB*5801。B58
スーパータイプのメンバーであると推定される他の対立遺伝子特異的HLA分子
は、表3に示される。
族残基Qまたは疎水性脂肪族残基(L、V、M、I、またはP)のペプチドリガ
ンド中の存在、およびエピトープのC末端位置における一次アンカーとして疎水
性残基(F、W、Y、M、I、V、L、またはA)の存在によって、特徴付けら
れる(例えば、SidneyおよびSette,Immunogenetics
,印刷中、1999を参照のこと)。B62スーパーモチーフに結合するHLA
分子の対応するファミリー(すなわち、B62スーパータイプ)の例示的なメン
バーとしては、少なくとも以下が挙げられる:B*1501、B*1502、B*
1513、およびB5201。B62スーパータイプのメンバーであると推定さ
れる他の対立遺伝子特異的HLA分子は、表3に示される。
Mのペプチドリガンド中の存在、およびエピトープのC末端位置における一次ア
ンカー残基としてのYの存在によって、特徴付けられる。代替の対立遺伝子特異
的A1モチーフは、2位よりむしろ3位における、一次アンカー残基によって特
徴付けられる。このモチーフは、D、E、A、またはSの一次アンカー残基とし
ての3位における存在、および、エピトープのC末端位置における一次アンカー
残基としてのYの存在によって、特徴付けられる(例えば、関連するデータの総
説については、DiBrinoら、J.Immunol.,152:620、1
994;Kondoら、Immunogenetics 45:249、199
7;およびKuboら、J.Immunol.152:3913、1994を参
照のこと)。
またはMのペプチドリガンドにおける存在、およびLまたはVの9残基ペプチド
のC末端位置での一次アンカー残基としての存在によって特徴付けられることが
決定され(例えば、Falkら、Nature 351:290−296、19
91を参照のこと)、そしてさらに、9アミノ酸ペプチドの2位にIを含み、そ
してC末端位置にIまたはAを含むことが、見出された(例えば、Huntら、
Science 255:1261−1263、3月6日、1992;Park
erら、J.Immunol.149:3580−3587、1992を参照の
こと)。A*0201対立遺伝子特異的モチーフはまた、本発明者らによって、
さらにV、A、T、またはQを、一次アンカー残基としてこのエピトープの2位
に含み、そしてMまたはTを、一次アンカー残基としてこのエピトープのC末端
位置に含むことが規定された(例えば、Kastら、J.Immunol.15
2:3904−3912、1994を参照のこと)。従って、HLA−A*02
01モチーフは、2位に一次アンカー残基としてL、I、V、M、A、T、また
はQを有し、そしてこのエピトープのC末端位置に一次アンカー残基としてL、
I、V、M、A、またはTを有する、ペプチドリガンドを含む。HLA−A*0
201モチーフの一次アンカー位置を特徴付ける、好ましい許容される残基は、
A2スーパーモチーフを記載する残基と同一である。
、S、A、T、F、C、G、またはDのペプチドリガンドにおける存在、および
エピトープのC末端位置における一次アンカー残基としてのK、Y、R、H、F
、またはAの、存在によって、特徴付けられる(例えば、DiBrinoら、P
roc.Natl.Acad.Sci.USA 90:1508、1993;お
よびKuboら、J.Immunol.152:3913−3924、1994
を参照のこと)。
L、I、S、A、G、N、C、D、またはFのペプチドリガンド中の存在、およ
びエピトープのC末端位置における一次アンカー残基としてのK、R、Y、また
はHの存在によって、特徴付けられる(例えば、Zhangら、Proc.Na
tl.Acad.Sci.USA 90:2217−2221、1993;およ
びKuboら、J.Immunol.152:3913−3924、1994を
参照のこと)。
またはMのペプチドリガンド中の存在、およびエピトープのC末端位置における
一次アンカー残基としてのF、L、I、またはWの存在によって、特徴付けられ
る(例えば、Kondoら、J.Immunol.155:4307−4312
、1995;およびKuboら、J.Immunol.152:3913−39
24、1994を参照のこと)。
胞応答を誘発する能力について試験され得る。モチーフ保有ペプチド(例えば、
ヘテロクリティックアナログ)の調製および評価は、PCT公報WO94/20
127およびWO94/03205に記載される。簡単に述べると、特定の抗原
由来のエピトープを含むペプチドが合成され、適切なHLAタンパク質に結合す
るそれらの能力について試験される。これらのアッセイは、放射性ヨウ素標識し
た参照ペプチドの結合に関して、精製されるHLAクラスI分子への本発明のペ
プチドの結合を評価する工程を包含し得る。あるいは、空のクラスI分子を発現
する細胞(すなわち、その中にペプチドを含まない)は、免疫蛍光染色およびフ
ローマイクロ蛍光定量法によってペプチド結合について評価され得る。ペプチド
結合を評価するために使用され得る他のアッセイは、ペプチド依存クラスIアセ
ンブリアッセイおよび/またはペプチド競合によるCTL認識の阻害を含む。代
表的に、500nM以下の親和性でクラスI分子に結合するそれらのペプチドは
、感染された個体または免疫化された個体から誘導体化されたCTLに対する標
的として作用する能力について、および、疾患に関連する選択された標的細胞と
反応し得るCTL集団を引き起こし得る一次インビトロCTL応答または一次イ
ンビボCTL応答を誘発する能力について、さらに評価される。
イ、リンホカイン分泌アッセイ、直接細胞傷害性アッセイ、および限界希釈アッ
セイが挙げられる。このようなアッセイは、ヘテロクリティックアナログのペプ
チドによる免疫応答の誘導を、非ヘテロクリティックアナログのクラスIペプチ
ド(例えば、ここからヘテロクリティックアナログ配列が基礎にされた)により
誘導される応答と比較する際に有用である。例えば、ペプチドを用いてインキュ
ベートされた抗原提示細胞は、応答細胞集団(responder cell
population)においてCTL応答を誘導する能力についてアッセイさ
れ得る。抗原提示細胞は、末梢血単核細胞または樹状細胞のような正常細胞であ
り得る。あるいは、内部的にプロセスされたペプチドを有するクラスI分子を装
填するそれらの能力が欠乏し、そして適切なヒトクラスI遺伝子でトランスフェ
クトされた変異体非ヒト哺乳動物細胞株が、インビトロで一次CTL応答を誘発
するペプチドの能力について試験するために使用され得る。
る。適切な抗原提示細胞は、ペプチドと共にインキュベートされ、次いでこの後
、ペプチド装填した抗原提示細胞が、最適な培養条件下で応答細胞集団と共にイ
ンキュベートされる。陽性CTL活性化は、放射性標識した標的細胞(特定のペ
プチドをパルスされた標的およびペプチド配列が誘導される内因的にプロセスさ
れた形態の抗原を発現する標的細胞)を殺傷するCTLの存在について培養物を
アッセイすることによって決定され得る。
抗原特異的T細胞の直接的定量を可能にする方法が、もたらされた(Altma
n,J.D.ら、Proc.Natl.Acad.Sci.USA 90:10
330、1993;Altman,J.D.ら、Science 274:94
,1996)。他の比較的最近の技術的開発としては、細胞内リンホカインの染
色、およびインターフェロン−γ放出アッセイまたはElispotアッセイが
挙げられる。四量体染色、細胞内リンホカイン染色およびElispotアッセ
イは全て、さらなる従来のアッセイより少なくとも10倍より感度が高いようで
ある(Lalvani,Aら、J.Exp.Med.186:859、1997
;Dunbar、P.R.ら、Curr.Biol.8:413、1998;M
urali−Krishna,K.ら、Immunity 8:177、199
8)。
細胞増殖およびリンホカイン(例えば、IL−2)の分泌)を使用して評価され
得る(例えば、Alexanderら、Immunity 1:751〜761
、1994を参照のこと)。
の免疫原性を決定するために使用され得る。いくつかのトランスジェニックマウ
スモデル(ヒトA2.1、A11(これはHLA−A3エピトープを分析するた
めにさらに使用され得る)、およびB7対立遺伝子を有するマウスを含む)が特
徴付けられ、そして他のマウス(例えば、HLA−A1およびA24に対するト
ランスジェニックマウス)が開発されている。HLA−DR1およびHLA−D
R3マウスモデルもまた開発されている。他のHLA対立遺伝子を有するさらな
るトランスジェニックマウスモデルが、必要な場合作製され得る。マウスは、不
完全フロイトアジュバント中の乳化したペプチドで免疫化され得、そして得られ
るT細胞は、ペプチドをパルスされた標的細胞および適切な遺伝子でトランスフ
ェクトされた標的細胞を認識するそれらの能力について試験される。CTL応答
は、上記の細胞傷害性アッセイを使用して分析され得る。同様に、HTL応答は
、T細胞増殖またはリンホカインの分泌のようなアッセイを使用して分析され得
る。
よびTh2サイトカイン応答の両方を誘導する。それゆえ、ヘテロクリティック
な候補物を予め選択されたクラスIペプチドと比較するための1つの方法は、T
h1サイトカインおよびTh2サイトカインの誘導を試験するための方法である
。予め選抜したクラスIペプチドは、代表的にヘテロクリティックアナログに誘
導されるペプチド、または、そのようなペプチドが存在しない場合は候補物に対
して最も高い類似性を有するクラスIペプチドである。本発明のヘテロクリティ
ックアナログは、代表的にTh1サイトカイン応答およびTh2サイトカイン応
答の両方を誘導するが、これはアナログが誘導されたクラス1ペプチドに比較し
て非常に増強されたレベルにおいてである。例えば、所定のヘテロクリティック
アナログは、等しいレベルのTh1サイトカインまたはTh2サイトカイン(5
0〜100pg/ml)を、このアナログが誘導された野生型ペプチドと比較し
て10倍以下の用量で刺激する。さらに、クラスIペプチドがTh1応答または
Th2応答のどちらかのみ、またはいずれかを主に誘導する場合、ヘテロクリテ
ィックアナログはTh1応答およびTh2応答の両方を誘導し得る。Th1サイ
トカインとしては、例えばIFNγ、IL−2およびIL3が挙げられる。Th
2サイトカインとしては、例えばIL−4、IL−5、IL−6およびIL−1
0が挙げられる。サイトカインの産生は、例えばELISA法または他の免疫学
的定量法を用いて測定される。(例えば、McKinneyら、Journal
of Immunological Methods 237:105〜11
7、2000を参照のこと) (6.診断薬としておよび免疫応答を評価するためのペプチドエピトープの使
用) 本発明の一実施形態において、本明細書中に記載されるようなヘテロクリティ
ックアナログペプチドが、免疫応答を評価するための試薬として使用される。評
価される免疫応答は、免疫原として任意の因子を使用することによって、誘導さ
れ、この因子は、試薬として用いられるペプチドエピトープを認識し、そしてこ
れに結合する抗原特異性CTLまたはHTLの誘導を生成し得る。ペプチド試薬
は、免疫原として使用される必要はない。このような分析のために使用され得る
アッセイシステムとしては、比較的最近の技術開発(例えば、細胞内リンホカイ
ンに関する四量体染色およびインターフェロン放出アッセイ、またはElisp
otアッセイ)が挙げられる。
的CTLの存在について末梢血単核細胞を評価するために、四量体染色アッセイ
において使用される。HLA四量体複合体を使用して、抗原特異性CTLを直接
可視化し(例えば、Oggら、Science 279:2103〜2106、
1998;およびAltmanら、Science 174:94〜96、19
96を参照のこと)、そして末梢血単核細胞のサンプル中の抗原特異的CTL集
団の頻度を決定する。本発明のペプチドを使用する四量体試薬は、以下のように
生成され得る:HLA分子に結合するペプチドは、三分子複合体を生成するため
に、対応するHLA重鎖およびβ2−ミクログロブリンの存在下で再折り畳まれ
る。この複合体は、先にタンパク質中の操作された部位において重鎖のカルボキ
シル末端でビオチン化される。四量体形成は、次いで、ストレプトアビジンの付
加によって誘導される。蛍光標識されたストレプトアビジンを用いて、抗原特異
的細胞を染色するために四量体が使用され得る。これらの細胞は、次いで、例え
ば、フローサイトメトリーによって同定され得る。このような分析は、診断目的
または予後目的のために使用され得る。この手順によって同定された細胞はまた
、治療目的のために使用され得る。
される(例えば、Bertoniら、J.Clin.Invest.100:5
03〜513、1997、およびPennaら、J.Exp.Med.174:
1565〜1570、1991を参照のこと)。例えば、癌を有する個体由来の
患者のPBMCサンプルは、特定のペプチドを使用して、抗原特異的CTLまた
はHTLの存在について分析され得る。単核細胞を含む血液サンプルは、PBM
Cを培養し、そして本発明のペプチドでその細胞を刺激することによって評価さ
れ得る。適切な培養期間の後、拡大された細胞集団は、例えば、CTLまたはH
TL活性について分析され得る。
疫原をワクチン接種された患者から得たPBMCは、例えば、上記の方法のいず
れかを使用して分析され得る。患者は、HLA型であり、そしてその患者に存在
する対立遺伝子特異的分子を認識するペプチドエピトープ試薬が、分析のために
選択される。ワクチンの免疫原性は、PBMCサンプル中のエピトープ特異的C
TLおよび/またはHTLの存在によって示される。
ために使用され(例えば、CURRENT PROTOCOLS IN IMM
UNOLOGY、Wiley/Greene、NY;およびAntibodie
s A Laboratory Manual 、Harlow and La
ne、Cold Spring Harbor Laboratory Pre
ss、1989を参照のこと)、これは癌を診断またはモニターするための試薬
として有用であり得る。このような抗体としては、HLA分子の状況においてペ
プチドを認識する抗体(すなわち、ペプチド−MHC複合体に結合する抗体)が
挙げられる。
クチンおよびそのワクチンを準備する方法は、本発明のさらなる実施形態である
。一旦、適切な免疫原性エピトープが規定されると、それらは様々な手段により
分類され送達され得るが、本明細書中ではこれらを「ワクチン」組成物と呼ぶ。
このようなワクチン組成物は、例えば以下のようなものが挙げられる:リポペプ
チド(例えば、Vitiello、A.ら、J.Clin.Invest.95
:341,1995)、ポリ(DL−ラクチド−co−グリコリド)(「PLG
」)ミクロスフィアに封入されたペプチド組成物(例えば、Eldridgeら
、Molec.Immunol.28:287−294,1991:Alons
oら、Vaccine 12:299−306,1994;Jonesら、Va
ccine 13:675−681,1995)、免疫刺激複合体(ISCOM
S)により包まれたペプチド組成物(例えば、Takahashiら、Natu
re, 344:873−875,1990;Huら、Clin Exp Im
munol.113:235−243,1998)、多抗原ペプチドシステム(
MAPs)(例えば、Tam,J.P.、Proc.Natl.Acad.Sc
i.USA 85:5409−5413,1988;Tam、J.P.,J.
Immunol.Methods 196:17−32,1996)、多価のペ
プチドとして処方されるペプチド;銃式送達システム(ballistic d
elivery system)に処方されるペプチド、代表的には結晶化され
たペプチド、ウイルス送達ベクター(Perkus,M.E.ら、In:Con
cepts in vaccine development,Kaufman
,S.H.E.,編 p.379,1996;Chakrabarti,S.ら
、Nature 320:535,1986、Hu,S.L.ら、Nature
320:537,1986;Kiney,M.−P.ら、AIDS Bio/
Technology 4:790,1986;Top,F.H.ら、J.In
fect.Dis. 124:148,1971;Chanda,P.K.ら、
Virology 175;535,1990),ウイルス性もしくは合成起源
の粒子(例えば、Kofler,N.ら、J.Immunol.Methods
192:25,1996;Eldridge、J.H.ら、Sem.Hema
tol.30:16,1993;Falo,L.D.,Jr.ら、Nature
Med.7:649,1995)、アジュバント(Warren,H.S.,
Vogel,F.R.および Chedid,L.A.Annu.Rev.Im
munol.4:369,1986;Gupta,R.K.ら、Vaccine
11:293,1993)、リポソーム(Reddy,R.ら、J.Immu
nol.148:1585,1992;Rock,K.L.,Immunol.
Today 17:131,1996)、あるいは裸または粒子吸着されたcD
NA(Ulmer,J.B.ら、Science 259:1745,1993
;Robinson,H.L.,Hunt,L.A.,およびWebster,
R.G.,Vaccine 11:957,1993;Shiver,J.W.
ら、Concepts in vaccine development, K
aufmann,S.H.E.編、p.423,1996;Cease, K.
B.,およびBerzofsky,J.A.,Annu.Rev.Immuno
l.12:923,1994 および Eldridge, J. H. ら、
Sem. Hematol.30:16,1993)。Avant Immun
otherapeutics,Inc(Needham,Massachuse
tts)の技術のようなレセプター媒介標的化(recepter media
ted targeting)として公知の毒素標的とする送達技術もまた使用
され得る。
をコードしているDNAまたはRNAはまた患者に投与され得る。このアプロー
チは、例えば、Wolff ら、Science 247:1465 (199
0)ならびに米国特許第5,580,859号;同第5,589,466号;同
第5,804,566号;同第5,739,118号;同第5,736,524
号;同第5,679,647号;WO 98/04720に記載され、さらに詳
細は以下に記載される。DNAに基づく送達技術の例としては、「裸のDNA」
、促進(ブピバカイン、ポリマー、ペプチド介在)送達、陽イオン性液体複合体
、粒子媒介(「遺伝子銃」)もしくは圧力媒介送達(例えば米国特許第5,92
2,687号を参照のこと)が挙げられる。
クターまたは細菌ベクターによって発現され得る。発現ベクターの例としては、
痘疹や鶏痘などの弱毒化したウイルス宿主が挙げられる。このアプローチの例の
ように、ワクシニアウイルスは本発明のペプチドをコードするヌクレオチド配列
を発現するベクターとして使用される。腫瘍を保有する宿主に導入する際、組換
え型ワクシニアウイルスは免疫原性のペプチドを発現し、それによってCTLお
よび/またはHTLを誘発する。ワクシニアベクターおよび免疫処置プロコトル
において有用な方法は、例えば米国特許第4,722,848号に記載されてい
る。別のベクターは、BCG(Bacille Calmette Gueri
n)である。BCGベクターについてはStover ら、Nature 35
1:456−460(1991)に記載されている。アデノウイルスベクターお
よびアデノ随伴ウイルスベクター、レトロウイルスベクター、Salmonel
la typhiベクター、無毒化した炭疽毒素ベクターなど発明のペプチドの
治療的投与または免疫処置に有用な幅広い種々の他のベクターは、本明細書中の
記載から当業者にとっては明白である。
成物を包含する。ペプチドは個々にワクチン中に存在し得る。あるいは、このペ
プチドは同一のペプチドの複数のコピーから構成されるホモポリマーまたは様々
なペプチドのヘテロポリマーとして存在し得る。ポリマーは免疫反応を増大する
という利点を有し、そしてこのポリマーをつくるために異種のペプチドエピトー
プが使われる場合、免疫応答の標的となる病原体生物または腫瘍関連ペプチドの
異なる抗原性決定因子と反応する抗体および/またはCTLを誘導する更なる能
力という利点を持つ。本組成物は抗原の天然に存在する領域であり得るか、ある
いは例えば組換えまたは化学合成によって調製され得る。
ば、サイログロブリン、ヒト血清アルブミンのようなアルブミン、破傷風トキソ
イド、ポリL−ロイシン、ポリL−グルタミン酸のようなポリアミノ酸、インフ
ルエンザ、B型肝炎ウイルスコアタンパク質などが挙げられる。本ワクチンは水
または食塩水、好ましくはリン酸緩衝化食塩水のような生理学的に耐性な(すな
わち、受容されうる)希釈剤を含み得る。本ワクチンは、代表的なものにまたア
ジュバントを含む。フロイントの不完全アジュバント、リン酸アルミニウム、水
酸化アルミニウム、またはミョウバンのようなアジュバントは当該分野で周知の
材料例である。加えて、本明細書中で開示したように、CTL応答はトリパルミ
トイル−S−グリセリルシステイニルセリル−セリン(P3CSS)のような本
発明のペプチドの脂質への結合によって開始され得る。
ル的、経口的、経皮的、経粘膜的、胸膜内腔的、クモ膜下腔的、またはその他の
適切な経路を介して、宿主の免疫系は、所望の抗原に特異的な多量のCTLおよ
び/またはHTLを産生することにより本ワクチンに応答する。結果として、宿
主はその後の感染に対して少なくとも部分的に免疫されるか、または現在進行中
の慢性的な感染が進展することに対して少なくとも部分的に耐性をもつか、ある
いは抗原が腫瘍関連の場合は少なくとも治療的利益を導き出す。
を、中和抗体およびまたはヘルパーT細胞の興味ある標的抗原に対する応答を誘
導するか、あるいは促進する成分と結合することは望ましいことであり得る。こ
のような組成物の好ましい実施形態は本発明に従って、クラスIエピトープとク
ラスIIエピトープを包含する。このような組成物の代替の実施形態は、PAD
RETM(Epimmune,San Diego,CA)分子(例えば、米国特
許第5,736,142号に記載されている)のようなpan−DR結合ペプチ
ドに加え、本発明に従ったクラスIエピトープおよび/またはクラスIIエピト
ープを包含する。
を本発明のペプチドを提供するための媒体として包含する。ワクチン組成物は樹
状細胞の動員および採取につづいてインビトロでつくられ得、これによって樹状
細胞の負荷がインビトロで生じる。例えば、樹状細胞は例えば、本発明に従った
ミニ遺伝子(minigene)を伴ってトランスフェクションされるかまたは
ペプチドとともにパルスされる。それから、樹状細胞は、インビボで免疫応答を
誘発するために患者に投与され得る。
動員と組み合わせてインビボに投与され得、これによって樹状細胞の負荷がイン
ビボで生じる。
発するために用いられる。結果として生じるCTLまたはHTL細胞は、他の従
来の治療形式では応答しないか、あるいは本発明の治療的なワクチンペプチドま
たは核酸に応答しない患者の腫瘍を処置するのに使われ得る。エキソビボでのあ
る特定の腫瘍関連する抗原に対するCTLまたはHTL応答は、患者または遺伝
的に適合性のあるCTLもしくはHTL前駆細胞を樹状細胞のような抗原提示細
胞の供給源と適切な免疫原性のペプチドとともに組織培養中でインキュベートす
ることにより誘導される。適切なインキュベーション時間(代表的には約7〜2
8日)経過後、この期間中この前駆細胞は活性化され効果細胞へと発展するが、
この細胞は患者に再注入され、ここでこれらは特定の標的細胞(感染した細胞ま
たは腫瘍細胞)を破壊するか(CTL)またはその破壊の促進を行う(HTL)
。トランスフェクションされた樹状細胞はまた抗原提示細胞として使われ得る。
ような免疫アジュバントと組み合わせる使用法を含む、癌に対する他の処置と組
み合わせて使用され得る。
ープを封入のために選択する場合に、またはワクチンに取り込むため、および/
またはミニ遺伝子のように核酸にコードされるために別個のエピトープを選択す
る場合、次の原則が利用される。選択を行うために、以下の原則のそれぞれのバ
ランスを保つことが好ましい。所定のワクチン組成物に組み込まれた複数のエピ
トープは、エピトープが誘導される天然の抗原の配列と隣接し得るが、しかしな
がらこれは隣接する必要はない。
模倣するエピトープが選択される。HLA I型について、これは少なくとも1
つの腫瘍関連抗原(TTA)に由来する3〜4個のエピトープを含む。HLA
II型について、類似の原理が採用される;再び、3〜4個のエピトープは、少
なくとも1つのTTAから選択される(例えば、Rosenbergら、Sci
ence 278:1447〜1450を参照のこと)。一つのTAAからのエ
ピトープは一つ以上のさらなるTAAからのエピトープとの組み合わせで使用さ
れ得、頻出発現TAA(frequently−expressed TAA)
の様々な発現パターンを持つ腫瘍を標的とするワクチンを産生する。
が選択される:HLA I型は、500nM以下しばしば200nM以下のIC 50 を有し、II型については、1000nM以下のIC50を有する。
有ペプチドの十分なアレイは、広い集団適用範囲を与えるように選択される。例
えば、少なくとも80%の集団適用範囲を有することが好ましい。モンテカルロ
解析(当該分野で公知の統計的評価)を使用して、集団適用範囲の広さまたは冗
長性を評価し得る。
対して寛容性を発達し得ているため、アナログを選択することがしばしば有用で
ある。感染疾患関連性抗原についてエピトープを選択する場合、天然のエピトー
プまたはアナログのエピトープのいずれかを選択することが好ましい。
関連性を有する。少なくとも2つのエピトープが所定のペプチド配列において重
複している場合、入れ子状エピトープが生じる。入れ子状ペプチド配列は、HL
AクラスIとHLAクラスIIエピトープの両方を包含する。入れ子状エピトー
プを提供する場合、一般的な目的は、一配列あたりの最多数のエピトープを提供
することである。従って、1つの局面は、ペプチド中のアミノ末端エピトープの
アミノ末端およびカルボキシル末端エピトープのカルボキシル末端より長いペプ
チドを提供しないようにすることである。多重エピトープ性配列(例えば、入れ
子状エピトープを含む配列)を提供する場合、一般的にこれが病理学的または他
の有害な生物学的特性を有さないことを保証するために、この配列をスクリーニ
ングすることが重要である。
る場合、目的のエピトープを含む最小のペプチドを生成することが目的である。
入れ子状エピトープを含むペプチドを選択する場合に用いられるものと同じでは
ない場合、この原理は類似している。しかし、人工ポリエピトープペプチドを用
いて、サイズ最小化の目的は、ポリエピトープタンパク質中のエピトープ間の任
意のスペーサー配列を組み込む必要性に対してバランスを保たれる。スペーサー
アミノ酸残基は、例えば、接合部エピトープ(免疫系により認識されるエピトー
プであって、標的抗原には存在せず、そしてエピトープの人工並列によってのみ
作製される)を回避するため、またはエピトープ間の切断を促進し、それにより
エピトープ提示を増大するために導入され得る。接合部エピトープは一般的に回
避されるべきである。なぜなら、レシピエントは、非ネイティブのエピトープに
対する免疫応答を生成し得るからである。「優性エピトープ」である接合部エピ
トープは特に関心をもたれる。優性エピトープは、他のエピトープに対する免疫
応答が減少または抑制されるこのような強力な応答を導き得る。
る。本発明のペプチドをコードする核酸は、本発明の特に有用な実施形態である
。ミニ遺伝子に含まれるエピトープは、好ましくは、前の章に記載されるガイド
ラインに従って選択される。本発明のペプチドをコードする核酸を投与する好ま
しい手段は、本発明の1つまたは複数のエピトープを含むペプチドをコードする
ミニ遺伝子構築物(minigene construct)を使用する。
出願U.S.S.N.09/311,784;Ishioka ら、J.Imm
unol.162:3915−3925,1999;An,L.およびWhit
ton,J.L.,J.Virol.71:2292,1997;Thomso
n,S.A.ら、J.Immunol.157:822,1996;Whitt
on,J.L.ら、J.Virol.67:348,1993;Hanke,R
ら、Vaccine 16:426,1998)。例えば、TAA、PADR
ETM汎用ヘルパーT細胞エピトープのようなpan_DR結合ペプチドおよび小
胞体トランスロケイティングシグナル(endoplasmic reticu
lum−translocating signal)配列の複数の領域に由来
する、スーパーモチーフおよび/またはモチーフを保有するエピトープ(例えば
、PSA、PSM、PAP、およびhK2)をコードする多重エピトープ性DN
Aプラスミドが操作され得る。ワクチンはまた、他のTAA由来のエピトープを
包含し得る。
て、この試験したエピトープに対するCTL誘導応答の大きさを評価し得る。さ
らに、インビボにおいてDNAでコードされたエピトープの免疫原性を、DNA
プラスミドでトランスフェクションした標的細胞に対する特異的CTL株のイン
ビトロ応答と相関させ得る。従って、これらの実験は、このミニ遺伝子が以下の
両方に有用であることを示し得る:1)CTL応答を発生させること、および2
)誘導CTLがコードされたエピトープを発現する細胞を認識すること。
コードするDNA配列を産生するために、このエピトープのアミノ酸配列は、逆
翻訳され得る。ヒトのコドン使用表を利用して、各アミノ酸に対するコドン選択
を誘導し得る。これらのエピトープをコードするDNA配列は、直接隣接されて
もよく、その結果、翻訳される場合、連続するポリペプチド配列を産生する。発
現および/または免疫原性を最適にするために、さらなるエレメントがミニ遺伝
子の設計に取り込まれ得る。逆翻訳され得、そしてミニ遺伝子配列に含まれ得る
アミノ酸配列の例としては、以下が挙げられる:HLAクラスIエピトープ、H
LAクラスIIエピトープ、ユビキチン結合シグナル配列、および/または小胞
体標的シグナル。さらに、CTLおよびHTLエピトープのHLA提示は、合成
(例えば、ポリ−アラニン)または天然に存在する、CTLエピトープまたはH
TLエピトープに隣接する隣接配列(flanking sequences)
を含むことによって改良され得;エピトープ(単数または複数)を含むこれらの
より大きなペプチドは、本発明の範囲内である。
ゴヌクレオチドを構築することによってDNAに変換され得る。重複性オリゴヌ
クレオチド(30〜100の塩基長)を、周知の技術を使用する適切な条件下で
、合成、リン酸化、精製およびアニールし得る。オリゴヌクレオチドの末端を、
例えば、T4 DNAリガーゼを使用して結合し得る。この合成ミニ遺伝子(エ
ピトープポリペプチドをコードする)を、所望の発現ベクターにクローニングし
得る。
ためにベクター中に含まれる。いくつかのベクターエレメントが所望される:ミ
ニ遺伝子の挿入のための下流クローニング部位を有するプロモーター;効果的な
転写終結のためのポリアデニル化シグナル;E.coliの複製起点;およびE
.coli 選択マーカー(例えば、アンピシリンまたはカナマイシン耐性)。
多数のプロモーター(例えば、ヒトサイトメガロウイルス(hCMV)プロモー
ター)が、この目的のために使用され得る。他の適切なプロモーター配列につい
て、例えば、米国特許第5,580,859号および同第5,589,466号
を参照のこと。
めに所望され得る。いくつかの場合において、イントロンは、効果的な遺伝子発
現のために必要とされ、そして1つ以上の合成イントロンまたは天然に存在する
イントロンは、ミニ遺伝子の転写領域に取り込まれ得る。ミニ遺伝子の発現を増
加させるために、mRNA安定化配列(mRNA stabilization
sequence)および哺乳動物細胞中での複製のための配列の封入がまた
考慮され得る。
リリンカー領域にクローニングされる。このプラスミドを、適切なE.coli
株に形質転換し、そしてDNAを標準的な技術を使用して調製する。ミニ遺伝子
の方向およびDNA配列、ならびにベクター中に含まれる他の全エレメントは、
制限マップおよびDNA配列解析を使用して確認される。正確なプラスミドを有
する細菌細胞は、マスター細胞バンク(master cell bank)お
よび作業用細胞バンク(working cell bank)として保存され
得る。
の役割を果たすようである。これらの配列は、所望の場合、免疫原性を増強する
ために、ミニ遺伝子コード配列の外側のベクター中に含まれ得る。
(免疫原性を増強または減少させるために含まれる)との両方の産生を可能にす
るbi−シストロン(bi−cistronic)発現ベクターを使用し得る。
同時発現する場合、免疫応答を有利に増強し得るタンパク質またはポリペプチド
の例としては、サイトカイン(例えば、IL−2、IL−12、GM−CSF)
、サイトカイン誘導分子(例えば、LeIF)、同時刺激分子(costimu
latory molecule)、またはHTL応答、pan−DR結合タン
パク質(例えば、PADRETM,Epimmune,San Diego,CA
)が挙げられる。ヘルパー(HTL)エピトープを細胞内標的シグナルに結合し
、そして発現したCTLエピトープから別個に発現し得る。これにより、HTL
エピトープをCTLエピトープとは異なる細胞画分に指向させることを可能にす
る。必要である場合、これにより、HTLエピトープのHLAクラスII経路へ
のより効果的な参加を可能にし、これによりHTL誘導を改良する。HTLまた
はCTL誘導に対して、免疫抑制性の分子(例えば、TGF−β)の同時発現に
よる免疫応答を特異的に減少させることは、特定の疾患において有用であり得る
。
り産生され得る。作業用細胞バンクからのアリコートを、増殖培地に接種するた
めに使用し、周知の技術に従って、振盪フラスコまたはバイオリアクター中で飽
和まで増殖させる。プラスミドDNAを、標準的なバイオ分離技術(例えば、Q
IAGEN,Inc.(Valencia,California)によって供
給される固相陰イオン交換樹脂)を使用して精製し得る。必要とされる場合、ス
ーパーコイルDNAを、ゲル電気泳動または他の方法を使用して開環形態および
線状形態から単離し得る。
る。これらの最も単純なものは、滅菌リン酸緩衝化生理食塩水(PBS)中の凍
結乾燥したDNAの再構成物である。「裸のDNA」として公知のこのアプロー
チは、現在、臨床試験において筋内(IM)投与のために使用されている。ミニ
遺伝子のDNAワクチンの免疫療法的効果を最大にするために、精製したプラス
ミドDNAを処方するための代替方法が所望され得る。種々の方法が記載され、
そして新規の技術が利用可能になり得る。カチオン性脂質、糖脂質、およびフソ
ジェニック(fusogenic)リポソームがまた処方物中で使用され得る(
例えば、WO93/24640;Mannino & Gould−Foger
ite,BioTechnisques6(7):682(1988);米国特
許第5,279,833号;WO91/06309号;およびFelgerら、
Proc.Nat’l Acad.Sci.USA 84:7413(1987
)を参照のこと)。さらに、保護的、相互作用的、非縮合(non−conde
nsing)化合物(PINC)として集合的に言及されるペプチドおよび化合
物はまた、精製されたプラスミドDNAに複合体化されて、安定性、筋内分散、
または特定の器官もしくは細胞型への輸送のような変数に影響を与える。
クラスI提示のための機能的アッセイとして使用され得る。例えば、プラスミド
DNAは、標準的CTLのクロム放出アッセイ(standard CTL c
hromium release assay)に対する標的として適切である
哺乳動物細胞株に導入される。使用されるトランスフェクションの方法は、最終
の処方物に依存する。エレクトロポレーションが「裸の」DNAのために使用さ
れ、一方、カチオン性脂質は、直接的なインビトロでのトランスフェクションを
可能にする。緑色蛍光タンパク質(GFP)を発現するプラスミドは同時にトラ
ンスフェクションされて、蛍光活性化細胞分類(FACS)を使用してトランス
フェクションされた細胞の濃縮を可能にし得る。次いで、これらの細胞は、クロ
ミウム−51(51Cr)で標識され、エピトープ特異的CTL株のための標的細
胞として使用される;51Cr放出によって検出された細胞溶解は、ミニ遺伝子コ
ード化CTLエピトープの産生とミニ遺伝子コード化CTLエピトープのHLA
提示との両方を示す。HTLエピトープの発現は、HTL活性を評価するための
アッセイを使用して、類似様式で評価され得る。
第2のアプローチである。適切なヒトHLAタンパク質を発現するトランスジェ
ニックマウスは、DNA産物で免疫される。投与の用量および経路は、処方物に
依存する(例えば、PBS中でのDNAに対するIM、脂質複合体化DNAに対
する腹腔内(IP))。免疫の21日後、脾細胞を収集し、そして試験される各
エピトープをコードするペプチドの存在下で1週間、再刺激した。その後、CT
Lエフェクター細胞について、標準的な技術を使用してペプチド負荷した51Cr
で標識した標的細胞の細胞溶解についてアッセイを行う。ミニ遺伝子コード化エ
ピトープに対応する、ペプチドエピトープで負荷したHLAによって感作された
標的細胞の溶解は、CTLのインビボでの誘導についてDNAワクチン機能を証
明する。HTLエピトープの免疫原性を、類似の様式でトランスジェニックマウ
スにおいて評価する。
されるような銃式送達によって、核酸を皮内に投与し得る。この技術を使用して
、単独でDNAを含む粒子を投与する。さらなる代替の実施形態において、DN
Aは、粒子(例えば、金粒子)に接着され得る。
テムを使用して送達され得る。例えば本発明のエピトープをコードしている発現
構築物はワクシニアのようなウイルスベクターに組み込まれ得る。
期のような所望の性質を与えるため、または免疫原性を増大させるために改変さ
れ得る。
ペプチドを結合させることにより、CTL活性を誘導するペプチドの能力は増大
され得る。免疫原性を増大させるための、CTLエピトープと組み合わせたTヘ
ルパーエピトープの使用の例が、例えば以下の同時係属中出願、U.S.S.N
.08/820,360、U.S.S.N.08/197,484、およびU.
S.S.N.08/464,234に記載されている。
ピトープ/HTLエピトープ結合体はスペーサー分子により連結される。スペー
サーは、代表的に生理的条件下において、実質的に荷電を帯びていないアミノ酸
またはアミノ酸ミメティックのような、比較的小さな中性の分子を含む。スペー
サーは、代表的に、例えばAla、Gly、またはその他の中性の非極性アミノ
酸および中性の極性アミノ酸の中性スペーサーから選択される。必要に応じて存
在するスペーサーは同じ残基から構成される必要はなく、ヘテロオリゴマーまた
はホモオリゴマーであり得ることと理解される。スペーサーが存在する場合、通
常、スペーサーは少なくとも1つまたは2つの残基であるが、さらに通常には3
〜6つの残基、時には10残基以上になる。CTLペプチドエピトープはTヘル
パーペプチドエピトープと直接またはスペーサーを介してのどちらかで、CTL
ペプチドのアミノ末端またはカルボキシ末端のいずれかで結合され得る。免疫原
性ペプチドまたはTヘルパーペプチドのいずれかのアミノ末端はアシル化され得
る。
ヘルパー細胞により認識されるものである。これは、多数の、ほとんどの、ある
いは全てのHLA クラスII分子と結合するアミノ酸配列の選択によって達成
され得る。これらのことは「ゆるいHLA制限」、または「乱雑な」Tヘルパー
配列として、公知である。乱雑なペプチドの例としては、破傷風毒の位置830
〜843(QYIKANSKFIGITE)、Plasmodium falc
iparum circumsporozoite(CS)タンパク質の位置3
78〜398(DIEKKIAKMEKASSVFNVVNS)およびStre
ptococcus 18kD タンパク質の位置116(GAVDSILGG
VATYGAA)のような抗原由来の配列が挙げられる。その他の例としては、
DR1−4−7スーパーモチーフ、もしくはDR3モチーフのいずれかを保有す
るペプチドが挙げられる。
列を使用して、Tヘルパーリンパ球を刺激し得る合成ペプチドを調製することが
可能である(例えば、PCT刊行物WO95/07707を参照)。Pan−D
R結合エピトープ(例えば、PADRETM、Epimmune,Inc.,Sa
n Diego,CA)と呼ばれるこれらの合成化合物はほとんどのHLA−D
R(ヒトHLAクラスII)分子に、最も優先的に結合するよう設計されている
。例えば、式:aKXVAAWTLKAAa(ここで、「X」はシクロヘキシル
アラニン、フェニルアラニン、またはチロシンのいずれかであり、「a」はD−
アラニンまたはL−アラニンのいずれかである)を有するpan−DR結合エピ
トープペプチドは、それらのHLA型に関わらずほとんどのHLA−DR対立遺
伝子(allele)と結合すること、およびほとんどの個体由来のTヘルパー
リンパ球の応答を刺激することが見出されている。Pan−DR結合エピトープ
の代替物は、全て「L」の天然アミノ酸を含み、エピトープをコードする核酸の
形態で提供され得る。
され得る。例えば、それらはD−アミノ酸を含むように修飾されて、それらのプ
ロテアーゼ耐性を増大させ、そしてそれらの血清中半減期を延長させ得、または
、それらを例えば、脂質、タンパク質、炭水化物などのような他の分子と結合さ
せて、それらの生物学的活性を増大し得る。例えば、Tヘルパーペプチドは、ア
ミノ末端またはカルボキシ末端のいずれかにおいて1以上のパルミチン酸鎖と結
合され得る。
激する成分が、本発明の薬学的組成物に含まれることが所望され得る。脂質は、
インビボでウイルス抗原に対し、CTL刺激をなし得る因子として同定されてい
る。例えば、パルミチン酸残基は、リジン残基のε−アミノ基およびα−アミノ
基に結合され得、次いで、例えば1つ以上の連結した残基(例えばGly、Gl
y−Gly−、Ser、Ser−Serなど)を介して免疫原性ペプチドに結合
され得る。次いで、脂質化ペプチドは、直接にミセルまたは微粒子のいずれかで
投与され得るか、リポソームへ組み込まれ得るか、またはアジュバント(例えば
不完全フロイントアジュバント)へ乳化され得る。好ましい免疫原性組成物は、
Lysのε−アミノ基およびα−アミノ基と結合したパルミチン酸を含み、この
Lysは、例えばSer−Serのような結合を介して、免疫原性ペプチドのア
ミノ末端と結合している。
ク質、例えばトリパルミトイル−S−グリセリルシステイニルセリル−セリン(
tripalmitoyl−S−glycerylcysteinlysery
l−serine:P3CSS)は、ある適切なペプチドに共有結合した場合に
、ウイルス特異的CTLを刺激することに使用され得る(例えば、Deres,
ら、Nature 342:561,1989を参照)。本発明のペプチドは、
例えば、P3CSSに結合され得、標的抗原に対するCTL応答を特異的に刺激
するため、個体に投与され得る。さらに、中和抗体の誘導もまた、P3CSS結
合エピトープにより刺激され得るため、2つのそのような組成物は、組み合わさ
れて、体液性および細胞媒介性応答の両方をさらに効果的に誘発し得る。
加によっても修飾され、あるペプチドをもう1つのペプチドへ結合することの容
易さ、キャリア支持体またはより大きなペプチドへの結合、ペプチド、オリゴペ
プチドなどの物理学的または化学的特性の修飾を提供し得る。アミノ酸(例えば
チロシン、システイン、リジン、グルタミン酸、アスパラギン酸など)は、ペプ
チドまたはオリゴペプチド、特にクラスIペプチドのC−末端またはN−末端に
導入され得る。しかしながら、CTLエピトープのカルボキシ末端においての修
飾が、いくつかの場合において、ペプチドへの結合特性を変化させ得ることは注
意されるべきである。さらに、ペプチド配列またはオリゴペプチド配列は末端の
NH2アシル化(例えば、アルカノイル(C1〜C20)またはチオグリコリルアセ
チル化)による、末端カルボキシルアミド化(例えば、アンモニア、メチルアミ
ンなど)によって修飾されることによって天然の配列と異なり得る。いくつかの
例において、これらの修飾は、支持体または他の分子との結合のための部位を提
供し得る。
れたDCを含むワクチン組成物) 本発明に従うワクチン組成物の実施形態は、患者の血液由来のPBMCへのエ
ピトープ保有ペプチドのカクテル、またはPBMCから単離したDCへのエピト
ープ保有ペプチドのカクテルのエキソビボ投与を包含する。DCの採取を容易に
する薬(例えばProgenipoietinTM(Monsanto,St.L
ouis,MO)またはGM−CSF/IL−4)が使用され得る。ペプチドで
DCをパルス化した後でかつ、患者に再注入する前に、DCは結合していないペ
プチドを除くため洗浄される。この実施形態において、ワクチンは、HLA分子
とその表面で複合体になった、パルス化されたペプチドエピトープを提示するペ
プチドパルス化DCを包含する。
1つ以上の抗原に対するCTL応答を刺激する)でパルス化され得る。必要に応
じて、ヘルパーT細胞ペプチド(例えば、PADRETMファミリー分子)は、C
TL応答を容易にするするため、含有され得る。
癌の処置のために治療的に使用される。本発明のペプチドを含有したワクチン組
成物は、代表的に、1つ以上の抗原の発現に関連した悪影響を有する癌患者へ投
与される。あるいは、ワクチン組成物は、癌の進行に対して影響を受けやすい、
さもなくば癌の進行の危険にある個人に対し投与され得る。
に対する効果的なCTL応答および/もしくはHTL応答を誘発するため、そし
て症状および/もしくは合併症を治癒するか、少なくとも部分的に止める、もし
くは遅らせるために十分な量で患者に投与される。これを満たすのに十分な量は
、「治療的有効用量」と定義される。この使用に十分な量は、例えば、投与され
る特定の組成物、投与方法、治療される疾患の段階および重篤度、患者の体重お
よび全般的な健康状態、ならびに処方医の判断に依存する。
トープを含むペプチドは、CTLまたはHTL特異的にHLA分子によって提示
される場合、およびこのペプチドに含まれるエピトープに特異的なCTLまたは
HTLと接触される場合に、免疫応答を誘導する。ペプチド(またはそれらをコ
ードするDNA)は、個別に、または1つ以上のペプチド配列の融合物として投
与され得る。ペプチドがCTLまたはHTLと接触される方法は、本発明には重
要でない。例えば、ペプチドは、インビボもしくはインビトロのいずれかで、C
TLまたはHTLと接触し得る。接触が、インビボで起きる場合、ペプチド自体
が患者に投与され得るか、または他のビーイクル(例えば、1つ以上のペプチド
をコードしたDNAベクター、ペプチドをコードしたウイルスベクター、リポソ
ームなど)が、本明細書中に記載されるように使用され得る。
ば、ペプチドパルス化樹状細胞)、または抗原提示細胞をペプチドでパルス化す
ること、もしくは本発明品のミニ遺伝子を抗原提示細胞にトランスフェクトする
ことによって誘導されたTAA特異的CTLを含有し得る。そのような細胞集団
は、続いて、治療的有効用量で患者に投与される。
である。これに続いて、少なくとも実質的に症状がやわらげられるまで、そして
その後ある期間にわたって追加抗原投与量がブーストされる。患者に送達される
ワクチン組成物の実施形態(すなわち、例えばペプチドカクテル、ポリエピトー
プ性ポリペプチド、ミニ遺伝子、またはTAA特異的CTL、またはパルス化さ
れた樹状突起細胞のような実施形態を含むが、これらに限定されない)は、疾患
の段階、あるいは患者の健康状態によって変り得る。例えば、TAA特異的CT
Lを含むワクチンは、進行した疾患を有する患者中において、腫瘍細胞を殺傷す
る際に、代変の実施形態より効果的であり得る。
的に用いられ得る。1つの例は、患者が、原発性腫瘍を取り除くための手術を受
けており、次いで、ワクチンが、再発および/もしくは転移を、遅らせるか、ま
たは予防するために使用される状況である。
され得る個体)が、癌の診断に先立って特定される場合、組成物が、彼らに対し
て標的化され得、したがってより大きな集団への投与の必要性を最小にす得る。
50、500、または1,000μgであり、そして上限の値が、約10,00
0;20,000;30,000;または50,000μgの単位投薬範囲にあ
る。ヒトについての投薬量の値は、典型的に、70キログラムの患者あたり約5
00μg〜約50,000μgの範囲である。確立された間隔(例えば、4週間
から6ヶ月)で、ブースト投薬前の、最初の投薬は、患者を効果的に処置するた
め、ことによると長期の時間の間、必要とされ得る。ブーストレジメンに従って
、数週間から数ヶ月にわたる、ペプチドの約1.0μg〜約50,000μgの
間のブースト投薬は、患者の血液から得られるCTLおよびHTLの特異的活性
を測定することによって決定される患者の応答および状態に依存して投与され得
る。
胞荷重が実質的に減少したことを示すまでそしてその後のある期間の間、投薬が
続けられるべきである。投薬、投与の経路、および投薬スケジュールは、当該分
野で公知の方法論に従って調節される。
すなわち、生命を危うくする状況または潜在的に生命を危うくする状況で使用さ
れる。このような場合において、最小量の外来の物質および本発明の好ましい組
成物におけるペプチドの比較的非毒性の性質の結果として、これらの記述された
投薬量に対して実質的に過剰のこれらのペプチド組成物を投与することが、可能
であり、そして処置する医師によって望ましいと感じられ得る。
は、前立腺癌進行の危険性を有する個体に投与され得る。一般的に、最初の予防
的免疫のための一般的な投与量は、下限の値が約1、5、50、500、または
1000μgであり、そして上限の値が約10,000;20,000;30,
000;または50,000μgである単位投薬範囲にある。ヒトについての投
薬量の値は、典型的に、70キログラムの患者あたり約500μg〜約50,0
00μgの範囲である。これに続いて、最初のワクチン投与後、約4週間〜約6
ヶ月の規定された間隔で投与される、約1.0μg〜約50,000μgの間の
ペプチドがブースト投薬される。ワクチンの免疫原性は、患者の血液のサンプル
から得られたCTLおよびHTLの特異的活性を測定することによって評価され
得る。
くも膜下投与、または局所投与に意図される。好ましくは、薬学的組成物は、非
経口的に、例えば、静脈内に、皮下に、皮内に、または筋内に投与される。従っ
て、本発明は、受容可能なキャリア(好ましくは、水性キャリア)に溶解される
かまたは懸濁される免疫原性ペプチドの溶液を含む非経口投与のための組成物を
提供する。種々の水性キャリアは、例えば、水、緩衝化水、0.8%生理食塩水
、0.3%グリシン、ヒアルロン酸などが使用され得る。これらの組成物は、従
来の周知の滅菌化技術によって滅菌化され得るか、または滅菌濾過され得る。得
られる水溶液は、そのままでの使用のためにパッケージングされ得るか、または
凍結乾燥され得、この凍結乾燥された調製物は、投与の前に滅菌溶液と組み合わ
せられる。この組成物は、およそ生理学的条件に必要とされる薬学的に受容可能
な補助物質、例えば、pH調節剤、緩衝化剤、張性調節剤、湿潤剤、保存剤など
(例えば、酢酸ナトリウム、乳酸ナトリウム、塩化ナトリウム、塩化カリウム、
塩化カルシウム、ソルビタンモノラウレート、オレイン酸トリエタノールアミン
など)を含み得る。
量%未満、通常、約2重量%または少なくとも約2重量%から、20重量%〜5
0重量%以上の多さまでで変化し得、主に、選択される投与の特定の様式に従っ
て、流体容積、粘度などによって選択される。
キャリア(好ましくは、水性キャリア)を含む薬学的組成物中に含まれ、そして
このような組成物のヒトへの投与に使用されるための当業者によって公知の流体
の容積で投与される(例えば、Remington’s Pharmaceut
ical Sciences、17th Edition、A.Gennaro、
Editor、Mack Publishing Co.、Easton、Pe
nnsylvania、1985を参照)。
プチドを特定の組織(例えば、リンパ組織)に標的化させるために、または感染
した細胞に選択的に標的化させるために、そしてペプチド組成物の半減期を増加
させるために役立つ。リポソームには、エマルジョン、泡状物、ミセル、不溶性
単層、液晶、リン脂質分散物、層状層などが挙げられる。この調製物において、
送達されるべきペプチドは、リポソームの一部として、単独であるいはリンパ系
細胞に広く行き渡るレセプターに結合する分子(例えば、CD45抗原に結合す
るモノクローナル抗体)とともに、または他の治療組成物もしくは免疫原性組成
物とともに組み込まれる。従って、本発明の所望のペプチドで負荷されるかまた
は装飾(decorated)されるかのいずれかのリポソームが、リンパ系細
胞の部位に指向され得、ここで、そのときリポソームがペプチド組成物を送達す
る。本発明に従う使用のためのリポソームは、標準的な小胞形成脂質から形成さ
れ、これには、一般的に、中性および陰性に荷電されたリン脂質およびステロー
ル(例えば、コレステロール)が挙げられる。脂質の選択は、一般的に、例えば
、リポソームサイズ、酸不安定性および血流中のリポソームの安定性を考慮して
ガイドされる。種々の方法が、リポソームを調製するために利用可能であり、例
えば、Szokaら、Ann.Rev.Biophys.Bioeng.9:4
67(1980)および米国特許第4,235,871号、同第4,501,7
28号、同第4,837,028号、および同第5,019,369号に記載さ
れる。
例えば、所望の免疫系細胞の細胞表面決定基に特異的な抗体またはそのフラグメ
ントが挙げられ得る。ペプチドを含むリポソーム懸濁物は、静脈内、局所的(l
ocally、topically)などで、特に投与の方法、送達されるペプ
チド、および処置される疾患の段階に従って変化する用量で投与され得る。
えば、薬学的等級のマンニトール、ラクトース、デンプン、ステアリン酸マグネ
シウム、サッカリンナトリウム、タルク、セルロース、グルコース、スクロース
、炭酸マグネシウムなどが挙げられる。経口投与のために、薬学的に受容可能な
非毒性組成物は、任意の通常使用される賦形剤(例えば、先に列挙されたもの)
および一般的に10〜95%の活性成分(すなわち、本発明の1つ以上のペプチ
ド)、より好ましくは、25%〜75%の濃度で組み込むことによって形成され
る。
び噴霧剤とともに細かく分割された形態で供給される。ペプチドの代表的な割合
は、0.01重量%〜20重量%、好ましくは、1重量%〜10重量%である。
界面活性剤は、もちろん非毒性でなければならず、そして好ましくは噴霧剤に可
溶である。このような薬剤の代表は、6〜22個の炭素原子を含む脂肪酸のエス
テルまたは部分エステル、例えば、カプロン酸、オクタン酸、ラウリン酸、パル
ミチン酸、ステアリン酸、リノール酸、リノレン酸、オレステリン酸(oles
teric acid)およびオレイン酸と、脂肪族多水酸基アルコールまたは
その環式無水物である。混合エステル(例えば、混合または中性グリセリド)が
使用され得る。界面活性剤は、組成物の0.1重量%〜20重量%、好ましくは
、0.25〜5重量%を構成し得る。組成物の残りは、通常、噴霧剤である。キ
ャリアはまた、望ましいならば、例えば、鼻腔内送達のためのレシチンとともに
含まれ得る。
キットの形態で提供され得る。代表的なキットは、容器内に、好ましくは、単位
用量形態の所望のペプチド組成物および投与のための指示書を含む。代替的なキ
ットは、投与のための指示書とともに、容器内に、好ましくは単位用量形態で、
本発明の所望の核酸を伴うミニ遺伝子構築物を含む。IL−2またはIL−12
のようなリンホカインもまた、キットに含まれ得る。所望であり得る他のキット
構成要素には、例えば、滅菌シリンジ、ブースター投薬、および他の所望の賦形
剤が挙げられる。
これらのエピトープを用いる免疫応答は、種々の形態においてエピトープを投与
することによって導入された。エピトープは、ペプチドとして、核酸として、そ
して本発明のエピトープをコードする核酸を含むウイルスベクターとして投与さ
れた。ペプチドに基づくエピトープ形態の投与において、免疫応答は、エピトー
プを細胞で発現される空のHLA分子上に直接負荷することによって、そしてエ
ピトープのインターナリゼーションを介して、そしてHLA I型経路を介して
プロセスすることによって導入された;いずれの場合においても、エピトープを
発現するHLA分子は、次いで、相互作用し得、そしてCTL応答を誘導し得た
。ペプチドは、直接的に、またはリポソームのような薬剤を使用して送達され得
る。これらは、さらに、銃式送達(ballistic delivery)(
ここで、ペプチドは、代表的には、結晶形態である)を使用して送達され得る。
DNAが免疫応答を誘導するために使用される場合、裸のDNAとして(一般的
に、約1〜5mgの投薬範囲)または銃式「遺伝子銃」送達を介して(代表的に
、約10〜100μgの投薬範囲)のいずれかで投与される。DNAは、種々の
コンホメーション(例えば、線状、環状など)で送達され得る。種々のウイルス
ベクターもまた、本発明に従ってエピトープをコードする核酸を含んで首尾良く
使用されている。
れらの組成物形態のそれぞれの実施形態は、免疫応答を誘導するために首尾良く
使用されている。
ルのペプチドは、一般的に、1つ以上の薬学的に受容可能な賦形剤と混合される
。ペプチドカクテルは、同じペプチドの複数のコピーを含み得るか、またはペプ
チドの混合物を含み得る。ペプチドは、天然のエピトープのアナログであり得る
。ペプチドは、人工のアミノ酸および/または化学的改変(例えば、脂質化;ア
セチル化、グリコシル化、ビオチニル化、リン酸化のような表面活性分子の添加
)を含み得る。ペプチドは、CTLまたはHTLエピトープであり得る。好まし
い実施形態において、ペプチドカクテルは、複数の異なるCTLエピトープおよ
び少なくとも1つのHTLエピトープを含む。HTLエピトープは、天然または
非天然(例えば、PADRE(登録商標)、Epimmune Inc.,Sa
n Diego、CA)であり得る。本発明の実施形態における異なるエピトー
プの数は、一般的に、1〜150の整数(whole unit intege
r)である(例えば、1、2、3、4、5、6、7、8、9、10、11、12
、13、14、15、16、17、18、19、20、21、22、23、24
、25、26、27、28、29、30、31、32、33、34、35、36
、37、38、39、40、41、42、43、44、45、46、47、48
、49、50、51、52、53、54、55、56、57、58、59、60
、61、62、63、64、65、66、67、68、69、70、71、72
、73、74、75、76、77、78、79、80、81、82、83、84
、85、86、87、88、89、90、91、92、93、94、95、96
、97、98、99、100、・・・、150)。
築物(すなわち、ポリエピトープペプチド)を含む。本発明に従うポリエピトー
プペプチドは、当該分野において周知の技術の使用によって調製される。これら
の公知の技術の使用によって、本発明に従うエピトープは、互いに接続される。
ポリエピトープペプチドは、線状または非線状(例えば、多価)であり得る。こ
れらのポリエピトープ構築物は、人工アミノ酸、スペーシングまたはスペーサー
アミノ酸、隣接アミノ酸(flanking amino acids)、また
は隣接エピトープユニット間の化学改変を含み得る。ポリエピトープ構築物は、
ヘテロポリマーまたはホモポリマーであり得る。ポリエピトープ構築物は、一般
的に、2〜150の間の任意の整数の量(例えば、2、3、4、5、6、7、8
、9、10、11、12、13、14、15、16、17、18、19、20、
21、22、23、24、25、26、27、28、29、30、31、32、
33、34、35、36、37、38、39、40、41、42、43、44、
45、46、47、48、49、50、51、52、53、54、55、56、
57、58、59、60、61、62、63、64、65、66、67、68、
69、70、71、72、73、74、75、76、77、78、79、80、
81、82、83、84、85、86、87、88、89、90、91、92、
93、94、95、96、97、98、99、100、・・・、150)でエピ
トープを含む。ポリエピトープ構築物は、CTLおよび/またはHTLエピトー
プを含み得る。構築物中の1つ以上のエピトープは、例えば、表面活性物質(例
えば、脂質)の付加によって改変され得るか、または化学的に改変され得る(例
えば、アセチル化など)。さらに、多重エピトープ性構築物における結合は、ペ
プチド結合以外(例えば、共有結合、エステルまたはエーテル結合、ジスルフィ
ド結合、水素結合、イオン結合など)であり得る。
(すなわち、対応するかまたは接触(contiguous)する)アミノ酸の
系列、配列、ストレッチ(stretch)を含む構築物を含む。このアミノ酸
のストレッチは、より長い系列のアミノ酸から切断されるかまたは単離される場
合、本発明に従って、HLA I型エピトープまたはHLA II型エピトープ
として機能するアミノ酸の少なくとも1つのサブ配列(subsequence
)を含む。この実施形態において、ペプチド配列は、当該分野で公知であるかま
たは提供される多数の技術を使用することによって、本明細書中に規定されるよ
うな構築物になるように改変される。ポリエピトープ構築物は、70〜100%
(例えば、70、71、72、73、74、75、76、77、78、79、8
0、81、82、83、84、85、86、87、88、89、90、91、9
2、93、94、95、96、97、98、99、または100%)の任意の整
数の増分でネイティブな配列に対して相同性を含み得る。
プを含む抗原提示細胞である。抗原提示細胞は、「専門的」抗原提示細胞(例え
ば、樹状細胞)であり得る。抗原提示細胞は、当該分野において公知の任意の手
段または当該分野において決定された任意の手段によって本発明のエピトープを
含み得る。このような手段には、樹状細胞を1つ以上の個々のエピトープまたは
複数のエピトープを含む1つ以上のペプチドで、銃式核酸送達のような核酸投与
によって、または核酸の投与について当該分野の他の技術(ベクターに基づく(
例えば、ウイルスベクター)核酸の送達を含む)によって適用することを含む。
ードする核酸、または本発明に従うポリエピトープペプチドをコードする核酸を
含む。当業者によって理解されるように、種々の核酸組成物が、遺伝子コードの
冗長性に起因して同じペプチドをコードする。これらの核酸組成物のそれぞれは
、本発明の範囲内に含まれる。本発明のこの実施形態は、DNAまたはRNAを
含み、特定の実施形態において、DNAおよびRNAの組み合わせを含む。本発
明に従うペプチドをコードする核酸を含む任意の組成物または本発明に従う任意
の他のペプチドに基づく組成物が、本発明の範囲内であることが理解される。
いる全ての野生型ヒトCTLエピトープならびにHIVおよびB型肝炎ウイルス
(HBV2)のポリメラーゼ遺伝子に由来している野生型ウイルスエピトープは
、ヒトおよびトランスジェニックマウスの系における免疫原性が示されている(
Kawashima,I.ら、Human Immunol.(1998)59
:1;Ishioka,G.ら、J.Immunol.(1999)162:3
915)。
n Technologies(Victor、Australia)によって
合成された。さらなる生物学的特徴付けを必要としているペプチドは、(Rup
pert,J.ら、Cell(1993)74:929)の方法を用いてEpi
mmuneにて合成され、分析用逆相HPLCによって決定された場合に、これ
らのペプチドの純度は通常95%より高かった。後者のペプチドの正体を質量ス
ペクトル分析によって確認した。
置換であるとして特徴付けし得るように、任意の所定のアミノ酸対の間の類似性
の割り当てを示す。
する順位係数スコア(rank coefficient score)、疎水
性度および以下に述べるような側鎖の体積を平均化することによって定量した。
これらの複合した順位の平均値に基づいて、この表は各対が保存されているか、
半保存されているか、または保存されていないかを示す。
as of Protein Sequence and Structure
,第5巻,補遺3.(1978)M.O.Dayhoff編.National
Biomedical Research Foundation,Wash
ington DC,345頁;Creighton,T.E.,Protei
ns:structures and molecular properti
es(1993)(第2版)W.H.Freeman and Company
,NY;http://prowl.rockefeller.edu/aai
nfo/pam250.html)は、規定された時間枠の範囲内で受容可能な
点変異(PAM)の百分率を測定する、一般的に利用されるタンパク質アライン
メントスコア付けマトリクスである。これらの変異の頻度はランダム変異の確率
から予想されるものとは異なり、恐らく、置換に関与するアミノ酸対の物理的お
よび化学的類似性の程度に起因する偏向を反映する。類似性の他の尺度を用いて
標準化され得るアミノ酸類似性のスコアを得るために、PAM250スコアを順
位値(rank value)に変換した。ここで、1は受容された変異である
という最も高い確率を示している。
般的に利用されるスケール(Cornette,J.ら、J.Mol.Biol
(1987)195:659)は、KyteおよびDoolittle(Kyt
e,J.およびR.F.Doolittle,J.Mol.Biol.(198
2)157:105)、ならびにFauchereおよびPliska(Fau
chere,J.およびV.Pliska,Eur.J.Med.Chem.(
1983)18:369)による実験データを基礎として発展したものである。
Kyte/Doolittleスケールは個々のアミノ酸のH2O/有機溶媒分
配を測定する。このスケールは折り畳まれたタンパク質のアミノ酸の位置を考慮
するので、このスケールは、タンパク質の状況下におけるネイティブな疎水性度
を最も正確に反映し得る。Fauchere/PliskaスケールはN−アセ
チルアミノ酸アミドのオクタノール/H2O分配を測定し、変性タンパク質およ
び/または、低分子合成ペプチドの状況下における疎水性度を最も正確に反映す
る。疎水性度についてのスコアを得るために、各アミノ酸残基をKyte/Do
olittleおよびFauchere/Pliska疎水性度スケールの両方
において順位付けした。2つのスケール間の平均順位を計算し、各対についての
疎水性度の差の平均を計算した。
れかのアミノ酸残基を添加した後の水の体積の増加を留意することによって得ら
れる溶液中の分体積を考慮した。(Zamyatnin,A.A.,Ann.R
ev.Biophys.Bioeng.(1984)13:145;Zamya
tnin,A.A.,Prog.Biophys.Mol.Biol.(197
2)24:107)。20個の天然に存在するアミノ酸に関して可能な各対の分
体積の絶対的差異を計算し、そして順位付けた。ここで、1は最も類似する体積
を有する残基、そして20は最も異なる体積を有する残基を示した。
れた: .221A2.1細胞株は、HLA−A2.1遺伝子をHLA−A、−B、−
C−ヌル変異体EBV−形質転換ヒトB−リンパ芽球細胞株3A4−721.2
21(Kawashima,I.ら、Human Immunol.(1998
)59:1)にトランスフェクションすることによって生成した。
誘導性肉腫であるMeth A細胞のトランスフェクションによって調製した。
そして、Jurkat細胞株ではHLA−A2.1またはHLA−A2.1/K b 導入遺伝子のトランスフェクションを、他(Vitiello,A.らJ.E
xp.Med.(1991)173:1007)で述べた方法を用いて行った。
HLA型黒色腫細胞株624mel(A2.1+,MAGE+)および888me
l(A2.1-,MAGE-)の組み合わせはY.KawakamiおよびS.R
osenberg(National Cancer Institute)の
御好意により提供され、そして内因的にプロセシングされたMAGE3エピトー
プの提示を測定するために用いられた。(Boon,T.ら,Ann.Rev.
Immunol.(1994)12:337)。その黒色腫細胞株をAPCとし
て使用する前に、100IU/mlヒトIFNγ(Genzyme,Cambr
idge,MA)で48時間、37℃で処理した。
ノ酸および10%(v/v)熱不活化FBSを補充したRPMI−1640培地
で増殖させた。
誘導体化) MAGE3.112および癌胎児抗原(CEA)エピトープであるCEA.6
91に対するペプチド特異的なCTL株を生成するために、インビトロにおいて
正常な被験体からのPBMCを、(Kawashima,I.らHuman I
mmunol.(1998)59:1)に記載のようなペプチドを用いて繰り返
し刺激した。簡潔には、ペプチドを適用した(pulsed)樹状細胞(GM−
CSFおよびIL4中で培養することによって接着性PBMCから区別した)を
、抗体でコーティングしたビーズ(Dynal A.S.,Oslo,Nowa
y)を用いたポジティブ選択によって得られた自己CD8+T細胞とともに、4
8ウェルプレート中で共存培養した。IL2、IL7およびIL10の存在下で
の培養の7日目後、インビトロにおいて、ペプチドを適用した(pulsed)
接着性PBMCを用いて各PBMC培養物(ウェル)を再刺激した。次いで、ペ
プチドの存在下または非存在下において、腫瘍APC.221A2.1を用いて
刺激した後のIFNγ生成を測定することによって、CTL活性について培養物
を試験した。CTL株はペプチド特異的なIFNγ応答を示したPBMC培養物
から、ペプチドを適用した接着性PBMCを用いたさらなるインビトロ刺激よっ
て増殖した。
対するCTL株を、他(Ishioka、G.らJ.Immunol.(199
9)162:3915)に記載されているようなDNA免疫によって、HLA−
A2.1/KbXSトランスジェニックマウス中で産生した。HLA−A2.1/
KbXSおよびHLA−A2.1/KbXdトランスジェニックマウスはEpimmu
neで飼育された。これらの株は、C57BL/6のバックグラウンド(Vit
iello,A.らJ.Exp.Med.(1991)173:1007)にお
いて作製されたHLA−A2.1/Kbトランスジェニック株と、それぞれSJ
LまたはBALB/cマウス(Jackson Laboratories、B
ar Harbor、ME)との間の交雑のF1世代を表す。MAGE2.15
7エピトープに対するCTL株は、8〜12週齢HLA−A2.1/KbXSマウ
スの尾部の基部に、IFA中で乳化された50μgのペプチドおよび140μg
のHBV Core.128ThエピトープであるTPPAYRPPNAPIL
(配列番号30)を免疫し、そしてインビトロでペプチドを用いて繰り返し初回
刺激した脾細胞を再刺激することよって生じた。
試験ペプチドによって誘導される競合のレベルを決定することによって、試験ペ
プチドのHLA−A2.1への結合を測定した。ゲル濾過によってMHC結合性
放射能の百分率を決定し、そして、標識された標準ペプチドの結合の50%を阻
害した試験ペプチドの濃度(IC50)を計算した(Ruppert,J.ら、C
ell(1993)74:929;Sette,A.ら、Mol.Immuno
l.(1994)31:813)。標準ペプチドはHBV Core.18エピ
トープであった(配列FLPSDFFPSV)。
の測定) インサイチュの捕捉ELISAを、CTLからのIFNγ放出を測定するため
に使用した(McKinney,D.ら、J.Immunol.Methods
(2000)237:105)。簡潔には、CTLを抗マウスIFNγ(クロー
ンR4−6A2,Pharmingen,San Diego,CA)または抗
ヒトIFNγ mAb(クローンNIB42,Pharmigen)のいずれか
をプレコーティングしたELISA等級の96ウェル平底ウェル中においてAP
Cおよびペプチドを用いて刺激した。細胞培養後、ウェルを洗浄し、ビオチン化
した抗マウスIFNγ(クローンXMG1.2,Pharmingen)mAb
または抗ヒトIFNγ(クローン4S.B3,Pharmingen)mAbを
加えた後、酵素結合体化ストレプトアビジン(Zymed,South San
Francisco,CA)および3,3',5,5'テトラメチルベンジジン
基質(ImmunoPure TMB基質キット、Pierce,Rockfo
rd,IL)を加えることによって現像した。各ウェルの吸光度は450nmで
Labsystems Multiskan RC ELISAプレートリーダ
ーにおいて測定した。各ウェルで生成されたIFNγのレベルを、同じアッセイ
方法で確立されたマウスまたはヒトのIFNγの検量線から外挿することによっ
て決定づけた。
osystems、Minneapolis、MN)を用いて培養上清中で測定
した。これらのアッセイを定量的サンドイッチELISA技術を用い、製造業者
のプロトコールに従って行った。
yme−liked immunospot)(Elispot)アッセイ) Elispotアッセイを標準プロトコール(Murali−Krishna
,K.ら、Immunity(1998)8:177;Lewis,J.J.ら
、Int.J.Cancer(2000)87:391)に従って行った。簡潔
には、平底96ウェルニトロセルロースプレート(Immobilon−Pメン
ブレン,Millipore,Bedford,MA)を抗IFNγmAb(1
0μg/ml,クローンR4−6A2)でコーティングし、4℃で一晩中インキ
ュベートした。PBSで洗浄した後、プレートを10%FBSを含むRPMI培
地で37℃で1時間でブロックした。磁気ビーズ(Miltenyi,Aubu
rn,CA)によって単離された4×105個の脾性CD8+細胞および10μg
/mlのペプチドを適用された5×104個のJurkat−A2.1/Kb細胞
を各ウェルに加え、細胞を10%FBSを含むRPMI培地で20時間インキュ
ベートした。インキュベーション後、PBS/0.05%Tweenを用いてプ
レートを徹底的に洗浄した後、ビオチン化した抗IFNγ mAb(2μg/m
l,クローン XMG1.2)を各プレートに加え、プレートを37℃で4時間
インキュベートした。次いで、プレートをPBS(0.1%Tween−20を
含む)およびVectastain ABCペルオキシダーゼ(Vectast
ain Elite キット;Vector Laboratories,Bu
rlingame,CA)で4回洗浄した。室温で1時間インキュベートした後
、プレートを1×PBS/0.05%Tweenを用いて3回洗浄し、次いでさ
らに3回1×PBSで洗浄した。スポットを現像するために100μlのAEC
溶液(Sigma Chemical,St.Louis,MO)を加えた。反
応は流水している水道水のもとで4−6分後に停止した。スポットをコンピュー
ター支援画像分析(Zeiss KS Elispot Reader,Jen
a,Germany)を用いてカウントした。106個のCD8+細胞あたりの正
味のスポット数を、以下[(関連ペプチドに対するスポット数)−(非関連ペプ
チドに対するスポット数)]×2.5として計算した。
112アナログの同定) アナログのスクリーニングの前に、広範囲な野生型ペプチド用量にわたってC
TL株からのIFNγ生成のペプチド用量滴定を、行った。.221A2.1腫
瘍細胞に異なる用量のペプチドを適用し、次いで、105個のペプチド負荷細胞
を同数のマウスまたはヒトCTLと共に培養した。37℃で24時間(マウス)
または48時間(ヒト)のインキュベーション後、CTLによって放出されたI
FNγのレベルをインサイチュ捕捉ELISAアッセイによって測定した。用量
滴定曲線を決定した後、ペプチドアナログのパネルの抗原性をスクリーニングす
るために、野生型ペプチドに対する活性がほとんど検出可能でない最適以下ペプ
チド用量を選択した。全てのマウスおよびヒトCTL株について、この最適以下
用量の範囲は0.1〜1μg/mlであった。マウスCTL株は第3ドメイン内
のマウスH−2Kb配列を有しているHLA分子を発現するHLA−A2.1/
Kbxsトランスジェニックマウスにおいて生成されたが、すべてがネイティブな
HLA−A2.1分子を発現するAPC上に提示されているペプチドに反応した
ということに留意すべきである。
れた最適以下用量の各アナログを適用し、前述したようにペプチド負荷APCを
CTLと共に培養した。次いで、さらなる特徴づけのために、野生型ペプチドと
比較して増強されたCTL応答を誘導するアナログを選択した。これらのアナロ
グを、前述したのと同じ条件のもとで野生型エピトープと並行してペプチド用量
滴定を行うことによって特徴付けた。
特異的なCTL株を、調製Cで記載したように、インビトロにおいてペプチド負
荷樹状細胞または接着性単球を用いてヒトPBMCの再刺激を繰り返すことによ
って、誘導した。
17CEA.691および116個のMAGE3.112アナログを作製した。
CEA.691はIMIGVLVGV(配列番号1);MAGE3.122はK
VAELVHFL(配列番号5)である。Cys、TrpおよびMet残基は、
それらが保存的変化に対応しない限り、一般に回避した。主なMHCアンカー位
置、位置2およびC末端以外のペプチドの全ての位置で置換を導入した。
野生型ペプチドに応答するIFNγ生成がほとんど検出可能でない抗原濃度を規
定にするために、前述したように、予備的な用量滴定実験を各CTL株について
行った。ついで、T細胞刺激の許容量の増加に関連したアナログを同定するため
に、引き続きこの最適以下濃度をアナログペプチドの各エピトープについてのす
べての抗原性分析に用いた。このような抗原性分析の結果を図1に示す。図1A
に示すように、最適以下100ng/ml用量では、野生型CEA.691ペプ
チドは最低限のIFNγ生成(50pg/ウェル未満)しか生じなかった。対照
的に、いくつかのCEA.691アナログ(M3、L4、P4、H5、L5、H
6、T6およびI7)は、同じ用量で、150〜350pg/ウェルの範囲内で
検出可能なレベルのIFNγの産生を、誘導した。図1Bに示したように、野生
型ペプチドのMAGE3.112特異的CTL株100ng/mlが100pg
/mlのIFNγの放出を誘導したが、2つのアナログ(I5およびW7)は3
00pg/ウェル以上のIFNγレベルの誘導に関連していた。
CEA.691およびMAGE3.112の全てのアナログを選択し、完全な用
量滴定はヘテロクリティックなアナログを同定するために実施した。ヘテロクリ
ティックなアナログは野生型ペプチドの10倍以下のペプチド濃度で、有意なI
FNγ放出(100pg/ウェルより大きい)を刺激するアナログである。CE
A.691エピトープについては2つの異なるアナログ、M3(配列番号2)お
よびH5(配列番号3)を同定した。図1Cで見られるように、エピトープCE
A691について、アナログM3およびH5が0.01ng/ml程度の少ない
ペプチドを用いて有意な放出を刺激したが、野生型ペプチドは1〜100μg/
mlの用量範囲で有意に検出可能なIFNγシグナルを産出した。これらの基準
によると、これらの2つのCEA.691アナログは、モル濃度に基づき、IF
Nγ放出の点において、その未改変野生型対応物よりも100,000倍以上強
力である。
なアナログ、I5およびW7を同定した。図1Dに示すように、等価な応答を刺
激するためには、0.1ng/mlのI5(配列番号6)またはW7(配列番号
7)アナログのいずれかが必要であったが、1μg/mlの野生型ペプチド濃度
が有意なIFNγの放出に必要とされた。これは、野生型ペプチドと比較して1
00,000倍より高い生物学的な活性の増加に対応する。
ず、野生型ペプチドと比較してより高いレベルのIFNγを産出するためのCT
L応答を刺激した。その結果、アナログに応答して達成される最大用量応答(プ
ラトー)は未改変抗原に応答して得られる応答よりはるかに高かった。
GIEV、配列番号7腫瘍エピトープ、およびウイルス抗原からの2つのエピト
ープ、HBV Pol.455、GLSRYVARL(配列番号16)およびH
IV pol.476 ILKEPVHGF(配列番号18)を分析した。これ
らのエピトープは全て、CTLに対して免疫原性であることが以前に示されてい
る。
を使って、240個の異なるアナログのパネルを、3つのエピトープのそれぞれ
においてエピトープ位置3、5、7、およびエピトープ位置1、4、6に、5つ
の保存的アミノ酸置換および5つの非保存的アミノ酸置換を含むように合成した
。これらのアナログを、HLA−A2.1/Kbxsトランスジェニックマウスで
生じたマウスTCL株を使用し、そしてCEA.691およびMAGE3.11
2エピトープについての実施例1で述べたものと類似した実験ストラテジーに従
い、へテロクリシティーについて試験した。マウス株の生成および維持に関連し
た技術的容易さに起因して、HLAトランスジェニックマウス由来のマウスCT
L株をヒトCTL株の代わりに用いた。
ィールと共に図2A(MAGE2.157)、2B(HBV pol.455)
、および2C(HIV pol.476)に示した(MAGE2.157および
HIV Pol.455について、実施例3を参照のこと)。
析は、野生型ペプチドより1/100〜1/100,000倍の用量でIFNγ
応答を刺激した2つのヘテロクリティックなアナログ、I5(配列番号8)およ
びF5(配列番号9)の同定を生じた(図1);これらのアナログは両方ともペ
プチドの中央部の奇数位置(5位)において天然に存在している保存的または半
保存的な置換を有していた。
の異なるアナログの中から、2つ(H3(配列番号19)およびL3(配列番号
20))が、ヘテロクリティックな活性を有するとして同定された(表1);両
方のアナログはペプチド中央部の奇数位置に保存的または半保存的置換のいずれ
かを保有していた。77個の試験されたものの中から、HIV pol.455
エピトープの1つのヘテロクリティックなアナログの正体が同定された。このア
ナログはペプチド(配列番号17)の位置7に保存的置換基(P)を有していた
(表1)。
157、HIV pol.476およびHBV Pol.455)についての2
40個アナログから得られたデータは、実施例1で示したようなMAGE3.1
12およびCEA.691エピトープの分析と一致する。
1つのエピトープP53.149M2、SMPPPGTRV(配列番号10)は
MHC結合を増強するメチオニン残基置換を有するヒトp53エピトープの固定
アンカーアナログ(fixed anchor analog)を表す。第2の
エピトープ、P53Mu.184、GLAPPQHLIRV(配列番号13)は
マウスとヒトとの間で完全に保存された配列を有している(Theobaldら
、92(26):11993(1995))。
び0.1μg/ml用量範囲における最適および最適以下応答が明らかになった
。p53.149M2(各位置で5つの保存的および5つの半保存的置換)につ
いての76個のアナログのパネルがスクリーニングされ、わずか2つのアナログ
、C1(配列番号11)およびP7(配列番号12)が同定された。この両方と
も、最適以下用量で100pg/ウェルのIFNγ放出を与える、図5。さらに
分析すると、両方のアナログは野生型ペプチドの1/10倍の濃度で有意なIF
Nγ産生を誘導した。さらに、C1アナログもまた1/100倍のペプチド濃度
で有意なIL10レベルを誘導した、図6。
の最適および最適以下レベルは、それぞれ500ng/mlおよび10ng/m
lであると決定した。63個の保存的および半保存的置換アナログのパネルを免
疫原性について試験した。増強された免疫原性を有する2つのアナログが見い出
された−T3(配列番号14)およびT3、E6(配列番号15)。図7および
8を参照のこと。
活性化することが以前に示されており、それにより、いくつかのアナログがTh
1サイトカインを生成するために特異的にT細胞を活性化するが、他は優先的に
Th2サイトカインの生成を活性化する。本発明のヘテロクリティックなアナロ
グに関連するリンホカイン放出のパターンを研究するため、CTL株からのTh
2サイトカインであるIL5および/またはIL10の生成をIFNγの生成と
比較した。2つの異なるエピトープからの代表的なデータを図3および4に示し
た。
ィールを示す。アナログI5もしくはF5、または野生型(WT)ペプチドを適
用した.221A2.1標的に応答して、MAGE2.157特異的CTL株に
よって生成されたIFNγ(A)およびIL10(B)をいくつかの異なる用量
に対して測定した。点線はIFNγ(100pg/ウェル)またはIL10(5
0pg/ml)の有意なレベルを示している。図3Aで見られるように、MAG
E2.157のF5およびI5アナログは、それぞれ野生型ペプチドの1/10
0倍または1/10,000倍の濃度でIFNγ生成の有意なレベルを誘導した
。さらに、同じアナログはまた、野生型ペプチドの1/10倍または1/100
倍のペプチド濃度で、有意なIL10生成誘導した。
4Aおよび4Bに示した。いくつかの異なるペプチド用量に対して、アナログP
7または野生型(WT)ペプチドに応答してHBV Pol.455CTL株に
よって放出されたIFNγ(A)またはIL10(B)を示した。再度、HBV
Pol.455のP7アナログは、有意なレベルのIFNγ(図4A)および
IL10(図4B)を野生型ペプチドの1/100倍のペプチド濃度において誘
導した。Th2サイトカイン(表1)の誘導について試験した全てのヘテロクリ
ティックなアナログをまとめたデータを総合すると、ほとんどのヘテロクリティ
ックなアナログは増加したTh1およびTh2サイトカインの両方の生成を刺激
することが示される。
の結合能力における偶然の増加に起因しないことを実証するために、精製したH
LA−A2.1分子を、インビトロで利用して全てのヘテロクリティックアナロ
グとMHCとの結合親和力を測定し、そして調製Dに記載されているように未改
変の野生型対照物と比較した。
IV Pol.476H3、およびHIVPol.476L3)は、HLA−A
2.1と野生型ペプチドよりも4倍以上高い親和力で結合し、そして2つのアナ
ログ(MAGE2.157I5、MAGE2.157F5)は低い親和力で結合
した。残る4つのヘテロクリティックアナログであるMAGE3.112I5、
CEA.691M3、CEA.691H5、およびHBV Pol.455P7
は、HLA−A2.1との結合能力において、ほとんどあるいは全く変化なしで
結合した。これらのデータからひとまとめにして、増加した結合性とヘテロクリ
シティーとの間に相関はないことが示唆される。
ウスp53.261エピトープを使用した。この理由は、このエピトープに対す
るCTL応答は、HLA−A2.1/Kbトランスジェニックマウスにおいて局
部的に寛容化されることが示されているためである。これはインビボでT細胞の
耐性を破壊すると予測されたヘテロクリティックアナログの能力の分析を可能に
する。従来まで、ヘテロクリティックアナログは野生型エピトープに対して引き
起こされるCTL株とともにインビトロでのスクリーニングを通じて検出されて
きたが、置換法によって同定したアナログは野生型エピトープに対してヘテロク
リティックであるCTLをインビトロで潜在的に誘導し得り、寛容な腫瘍関連エ
ピトープに対するワクチンを設計するための目的の適応である。
/Kbxdトランスジェニックマウスにおいて、p53.261エピトープ(LL
GRDSFEV)50μg、または予測されるアナログおよびIFAにおけるH
BV Core.128ヘルパーエピトープ140μgとを用いてマウスを共同
免疫することで試験した。11日後、プライム化脾臓細胞を収集し、そして10
μg/mlのペプチドでパルスした照射同系LPS活性化脾臓細胞とともにイン
ビトロで培養した。培養から10日後、CTLをIL2の供給源としてCon
Aの馴化培地の存在下で、ペプチドでパルスしたLPS芽細胞で再刺激した(I
shioka,G.ら、J.Immunol.(1999)162:3915)
。 予測アナログによって免疫化されたマウス由来の脾臓細胞を、野生型ペプチド(
交差反応性、アビディティおよび野生型抗原に応答するCTLの前駆体度数を決
定するため)とそれぞれの免疫化アナログ(アビディティとアナログに応答する
CTLの前駆体度数を決定するため)の両方に対してインビトロで刺激した。A
PCとしてJurkat−A2.1腫瘍細胞を用いることで、インビトロでの2
回目の再刺激の5日後でのIFNγのインサイチュのELISAアッセイによる
ペプチドの特異性に関して、CTLのバルク集団を全ての短い周期で試験した。
あるいは、CTL応答を、Elispotアッセイを用いて免疫化動物から新た
に単離した脾臓細胞上で実施した。
的置換からなるp53.261エピトープの9つのアナログのパネルを、HLA
−A2.1/Kbxdトランスジェニックマウスにおける免疫原性について試験し
た。その結果、それぞれ9つのアナログでのマウスの免疫、およびそれぞれの免
疫化アナログでのプライム化脾細胞のインビトロでの膨張により6つのアナログ
(L7、D3、H7、H3、N5、およびG5)を同定し、これは野生型ペプチ
ドを用いてインビボで誘導され、そしてインビトロで膨張されたCLTと比較し
て、かなりより低いペプチド濃度で、100pg/ウェルのIFNγ産生によっ
て特徴づけられたCTL応答が得られた。
由来の脾臓細胞を、インビトロで対応する免疫ペプチド(図9AおよびB)また
はWTペプチド(図9CおよびD)を用いて刺激した。次いで、これらのCTL
によるIFNγの放出を、免疫ペプチド(図9AおよびB)またはWTペプチド
(図9CおよびD)を用いてパルス化した標的に対して用量範囲にわたって測定
した。100pg/ウェルにおけるIFNγの放出を点線で示す。これらの結果
より、アナログの有意なパーセンテージは、野生型ペプチドそれ自体で誘導され
たアビディティよりも高いアビディティのCTLを誘導することが示される。
Lの交差反応性を、図9Cおよび図9Dに示す。野生型ペプチドで免疫化し、そ
して再刺激した動物由来のCTLは、0.1から10μg/mlの間のペプチド
用量において100pg/ウェルのIFNγを誘導した。もう一方で、L7、H
3、およびD3アナログで免疫化し、そして野生型ペプチドを用いてインビトロ
で刺激し、そして試験した動物から得られたCTLは、100pg/ウェルのI
FNγを誘導するために、それぞれ10倍、100倍または1000倍低い用量
の野生型ペプチドが必要であった(図4C)。これにより、6つのケースの内3
つのケースにおいて、予測されるヘテロクリティックアナログは、野生型抗原に
対して寛容である一部のCTLが存在する条件において、野生型ペプチドと応答
するCTLを誘導するのに10〜1000倍の活性および能力であったことが示
唆される。
理された野生型エピトープに対してHLA−A2.1/Kbを用いてトランスフ
ェクトされたp−53発現Meth A腫瘍細胞クローンによって試験した。野
生型エピトープに対してヘテロクリティックであるp−53.261アナログに
よって産生したCTLは、Meth A/A2.1Kb腫瘍細胞によって出現し
た内因的に処理されたp−53.261エピトープと応答することが明らかとな
った。
クトされたMeth Aクローン、または2.5×104のMeth A腫瘍細
胞とともに培養し、IFNγの放出はインサイチュELISAアッセイによって
測定した。図10に示しているように、p−53.261エピトープのD3とH
3アナログの両方に対して増加したCTL株は、Meth A/A2.1Kb腫
瘍細胞クローンによって発現された内因性エピトープと応答し、親HLA−A2
.1ネガティブMeth A腫瘍細胞株とは応答しなかった。
において産生されることを確証するために、インビトロでのさらなるCTL膨張
なしでアナログまたは野生型ペプチドで免疫化されたマウスの脾臓細胞からCD
8+細胞を単離し、そして野生型またはアナログのどちらか一方に対するCTL
反応性の前駆体度数をElispotアッセイを用いて測定した。
免疫化されたマウスから単離したCD8+細胞を、Elispotアッセイにお
いてWTエピトープで刺激した場合のIFNγの放出する能力について分析した
。図11に示すように、野生型ペプチド反応性CTLの前駆体度数は、野生型ペ
プチドで免疫化されたマウスにおいて1/66,000(15点/106)であ
ったのに対して、予測アナログで免疫化されたマウスにおける野生型ペプチド反
応性細胞の前駆体度数は、D3、H3およびL7アナログに対してほぼ1/15
,000(60〜75点/106細胞)であり、そしてH7アナログに対して1
/83,000(12点/106)であった。これより、野生型反応性細胞は、
天然ペプチドで免疫化されたマウスに比べて4つのアナログのうち3つのアナロ
グで免疫化されたマウスにおいて4倍高い度数で存在していたことが示される。
この発見は、インビボ−プライム化CTLのインビトロでの膨張を回避する、よ
り直接的な分析システムを用いたヘテロクリティックアナログでのインビボ免疫
化は、野生型ペプチドに対して実際により複数のCTL反応性を誘導することを
示すので重要である。
Lを誘導する) 調製Cに記載されているように、MAGE3.112のヘテロクリティックア
ナログの免疫原性もまた、MAGE3.112ペプチド、またはこのエピトープ
のI5およびW7アナログのどちらか一方に対するPBMCから1次CTLを誘
導することによって試験した。インビトロでの2回目の刺激の後、48ウェルの
PBMC培養は、正味のIFNγ産物が100pg/ウェルより多い場合にはC
TL誘導に対して陽性を記録し、そして産物はペプチドの存在下、または非存在
下で.221−A2.1 APCで刺激した後ではバックグラウンドより少なく
とも2倍以上となった。
、本発明者らはインビトロでの1次誘導システムにおいて、MAGE3.112
エピトープのヘテロクリティックアナログがヒトCTLを誘導し得るかどうかを
試験した。正常のドナー由来の新しい未処理のヒトPBMCを、前述しているよ
うに野生型またはアナログのどちらか一方を用いてインビトロで繰り返し刺激し
た(Kawashima,I.ら、Human Immunol.(1998)
59:1)。ペプチド特異的CTL応答を、野生型ペプチド(図12A)または
I5アナログ(図12B)およびW7アナログ(図12C)のいずれかで刺激さ
れた培地中で検出した。手短に言えば、.221−A2.1細胞をWTペプチド
(図12A)、I5アナログ(図12B)またはW7アナログ(図12C)10
μg/mlで一晩パルスした。48ウェルプレートの個々のウェルに成長してい
るCTLによるIFNγ産物を、ペプチドの存在下、または非存在下で.221
−A2.1細胞に対して、あるいは内因性ネガティブエピトープ888メル腫瘍
細胞株および内因性ポジティブエピトープ624メル腫瘍細胞株に対して試験し
た。ポジティブペプチド特異的CTL応答を示すウェルのみが示される。
的に処理し、そして野生型配列を示す624メル腫瘍細胞株が認識された。これ
は、ヘテロクリティックアナログは腫瘍細胞によって示される内因的に産生され
た野生型エピトープを認識する生理学的に関連性のあるヒトCTLを誘導し得る
ことの証拠であり、そしてその現象は、ヒトとトランスジェニックマウスシステ
ムの両方に関連性があることの証拠である。
ーモチーフから誘導されたヘテロクリティックアナログの合成および分析) A2スーパーファミリー内部の他のHLA分子におけるヘテロクリティック置
換法則をさらに確認するために、3、5および7の位置における3つの保存的、
または半保存的置換よりなる、以前に議論したp53.261エピトープの9つ
のアナログのパネルを、以下に示すヒトHLA分子(A*0202、A*0203
、A*0204、A*0205、A*0206、A*0207、A*0209、A*0
214、A*6802、A*6901)の1つを発現しているトランスジェニック
マウスにおける免疫原性についてインビボで試験した。
g/ウェルのIFNγ産生の誘導について試験した。代表的に、このIFNγ産
生は、野生型ペプチド(例えば、p53.261エピトープ)で誘導され、そし
て再刺激されたペプチド濃度よりもさらに低いペプチド濃度で存在する。これら
の結果は、本発明者らの予測したヘテロクリティックアナログは、野生型エピト
ープ自体に対するよりも、天然野生型エピトープに対してより高いアビディティ
CTLを誘導するのにより強力であることを示す。
たCTLは、5〜10μg/ml用量のペプチドにおいて100pg/ウェルの
IFNγを誘導するが、上述したアナログで免疫化された動物から得られ、野生
型ペプチドでインビトロで刺激し、そして試験したCTLは、100pg/ウェ
ルのIFNγを誘導するために野生型ペプチドの用量よりもそれぞれ10倍、1
00倍または1000倍までも低い用量を必要とする。
チーフから誘導されたヘテロクリティックアナログの合成および分析) ヘテロクリティック置換法則をさらに確認するために、HLA−B7スーパー
モチーフの内部に配列を持っているペプチドから誘導されたヘテロクリティック
アナログを用いて追加研究を行った。例えば、アナログをインビボで免疫原性に
ついて試験し得る。
LVYLLエピトープを選択し、そして合成した。9マーペプチドの3、5およ
び7の位置における3つの保存的、または半保存的置換よりなるアナログのパネ
ルを、HLA−B*0702/Kbトランスジェニックマウスにおける免疫原性に
ついて試験した。パネルはAPETLVYLL、APRTWVYLLおよびAP
RTLVPLLを含み、それぞれ3、5および7番目の位置における半保存的置
換と対応している。
g/ウェルのIFNγの誘導について試験した。代表的に、このIFNγ産生は
、野生型ペプチド(例えば、APRTLVYLL)で誘導され、そして再刺激さ
れたペプチド濃度よりもさらに低いペプチド濃度で存在する。これらの結果は、
本発明者らの予測したヘテロクリティックアナログは、野生型ペプチド自体より
も高いアビディティCTLを誘導するのにより強力であることを示す。
たCTLは、5〜10μg/ml用量のペプチドにおいて100pg/ウェルの
IFNγを誘導するが、上述したアナログで免疫化された動物から得られ、野生
型ペプチドでインビトロで刺激し、そして試験したCTLは、100pg/ウェ
ルのIFNγを誘導するために野生型ペプチドの用量よりもそれぞれ10倍、1
00倍または1000倍までも低い用量を必要とする。
換法則をさらに確認するために、APETLVYLL、APRTWVYLLおよ
びAPRTLVPLLペプチドを、以下のヒトHLA分子(B*0702、B*0
703、B*0704、B*0705、B*1508、B*3501、B*3502
、B*3503、B*3503、B*3504、B*3505、B*3506、B*3
507、B*3508、B*5101、B*5102、B*5103、B*5104
、B*5105、B*5301、B*5401、B*5501、B*5502、B*5
601、B*5602、B*6701、およびB*7801)の1つを発現してい
るトランスジェニックマウスにおける免疫原性についてインビボで試験した。
g/ウェルのIFNγ産生の誘導について試験した。代表的に、このIFNγ産
生は、野生型ペプチド(例えば、APRTLVYLL)で誘導され、そして再刺
激されたペプチド濃度よりもさらに低いペプチド濃度で存在する。これらの結果
は、本発明者らの予測したヘテロクリティックアナログは、野生型ペプチド自体
より高いアビディティCTLを誘導するのにより強力であることを示す。
たCTLは、5〜10μg/ml用量のペプチドにおいて100pg/ウェルの
IFNγを誘導するが、上述したアナログで免疫化された動物から得られ、野生
型ペプチドでインビトロで刺激し、そして試験したCTLは、100pg/ウェ
ルのIFNγを誘導するために野生型ペプチドの用量よりもそれぞれ10倍、1
00倍または1000倍までも低い用量を必要とする。
において産生されることを確証するために、インビトロでのさらなるCTL膨張
なしでアナログまたは野生型ペプチドで免疫化された脾臓からCD8+細胞を単
離した。この材料より、野生型、またはアナログのどちらか一方に対するCTL
反応性の前駆体度数をElispotアッセイを用いて測定した。代表的に、野
生型ペプチドの反応性CTLの前駆体度数は、アナログの前駆体度数よりもかな
り低い。
ヒトCTLを誘導し得る) ヘテロクリティックアナログを、インビトロでの1次誘導システムにおけるC
TLの誘導について分析し得る。前記のように、48ウェルプレートにおいて正
常のドナーからの新しい未処理のヒトPBMCを、野生型またはアナログのどち
らか一方を用いてインビトロで繰り返し刺激した。次に、ペプチド特異的CTL
応答を、野生型ペプチドまたはヘテロクリティックアナログのどちらか一方で刺
激された培地中で検出する。これらのアナログで誘導された培地において、内因
的に処理され、そして野生型配列を示す標的を認識し得る。これは、ヘテロクリ
ティックアナログが内因的に産生された細胞上で発現した野生型ペプチドを認識
する生理学的に関連性のあるヒトCTLを誘導し得ることの証拠であり、そして
その現象はヒトとトランスジェニックマウスシステムの両方に関連性があること
の証拠である。
チーフから誘導されたヘテロクリティックアナログの合成および分析) ヘテロクリティック置換法則をさらに進んで確認するために、HLA−A3ス
ーパーモチーフの内部に配列を有するペプチドから誘導されたヘテロクリティッ
クアナログを用いて追加研究を行う。例えば、インビボで免疫原性についてアナ
ログを試験し得る。
YALINK(配列番号22)エピトープを選択し、そして合成する。9マーペ
プチドの3、5および7の位置における3つの保存的/半保存的置換よりなる配
列番号22のアナログのパネルを、HLA−A*3101/Kbトランスジェニッ
クマウスにおける免疫原性について試験した。パネルはKVHPYALINK、
KVFPQALINKおよびKVFPYAKINKを含み、それぞれ3、5およ
び7番目の位置における半保存的変化と対応している。
g/ウェルのIFNγ産生の誘導について試験した。代表的に、このIFNγ産
生は、野生型ペプチド(例えば、KVFPYALINK)で誘導され、そして再
刺激されたペプチド濃度よりもさらに低いペプチド濃度で存在する。これらの結
果は、本発明者らの予測したヘテロクリティックアナログは、野生型ペプチド自
体より野生型に対して高いアビディティCTLを誘導するのにより強力であるこ
とを示す。
たCTLは、5〜10μg/ml用量のペプチドにおいて100pg/ウェルの
IFNγを誘導するが、上述したアナログで免疫化された動物から得られ、野生
型ペプチドでインビトロで刺激し、そして試験したCTLは、100pg/ウェ
ルのIFNγを誘導するために野生型ペプチドの用量よりもそれぞれ10倍、1
00倍または1000倍までも低い用量を必要とする。
換法則をさらに確認するために、KVHPYALINK、KVFPQALINK
およびKVFPYAKINKペプチドを、以下のヒトHLA分子(A*0301
、A*1101、A*3101、A*3301、A*6801)の1つを発現してい
るトランスジェニックマウスにおけるインビボでの免疫原性について試験する。
g/ウェルのIFNγ産生の誘導について試験した。代表的に、このIFNγ産
生は、野生型ペプチド(例えば、KVFPYALINK)で誘導され、そして再
刺激されたペプチド濃度よりもさらに低いペプチド濃度で存在する。これらの結
果は、本発明者らの予測したヘテロクリティックアナログは、野生型ペプチド自
体より高いアビディティCTLを誘導するのにより強力であることを示す。
たCTLは、5〜10μg/ml用量のペプチドにおいて100pg/ウェルの
IFNγを誘導するが、上述したアナログで免疫化された動物から得られ、野生
型ペプチドでインビトロで刺激し、そして試験したCTLは、100pg/ウェ
ルのIFNγを誘導するために野生型ペプチドの用量よりもそれぞれ10倍、1
00倍または1000倍までも低い用量を必要とする。
において産生することを確証するために、インビトロでのさらなるCTL膨張な
しでアナログまたは野生型ペプチドで免疫化された脾臓からCD8+細胞を単離
した。この材料より、野生型、またはアナログのどちらか一方に対するCTL反
応性の前駆体度数をElispotアッセイを用いて測定した。代表的に、野生
型ペプチドの反応性CTLの前駆体度数は、アナログの前駆体度数よりもかなり
低い。
TLを誘導し得る。) ヘテロクリティックアナログを、インビトロでの1次誘導システムにおけるC
TLの誘導について分析する。前記したように、48ウェルプレートにおいて正
常のドナー由来の新しい未処理のヒトPBMCを、野生型またはアナログのどち
らか一方を用いてインビトロで繰り返し刺激した。次に、ペプチド特異的CTL
応答を、野生型ペプチドまたはヘテロクリティックアナログのどちらか一方で刺
激された培地中で検出する。これらのアナログで誘導された培地において、内因
的に処理し、そして野生型配列を示す標的を認知する。これは、ヘテロクリティ
ックアナログが内因的に産生される細胞上に発現した野生型ペプチドを認識する
生理学的に関連性のあるヒトCTLを誘導することの証拠であり、そしてその現
象はヒトとトランスジェニックマウスシステムの両方に関連性があることの証拠
である。
り、本発明に照らして、様々な改良または変更は当業者に示唆され、そして本出
願の意図および範囲ならびに添付の特許請求の範囲内に含まれることが理解され
る。この結果、本明細書中で引用される全ての刊行物、特許、および特許出願は
、全ての目的のためにその全体が参考として援用される。
アナログのパネルを、その対応するCTLにおいてIFNγ産生を誘導する能力
について、試験した結果を示す。図1Cおよび1Dは、それぞれCEA.691
およびMAGE3.112ヘテロクリティックアナログについてその対応する用
量応答曲線である。
およびHBVPol.455エピトープアナログのアナログのパネルを、対応す
るCTLにおいてIFNγ産生を誘導するこれらのアナログの能力に関して、試
験した結果を示す。図2Dは、首尾よいHIVPol.476アナログについて
の関連した用量応答曲線である。
導する能力に関して、野生型との比較におけるMAGE2.157のヘテロクリ
ティックアナログの用量応答曲線の結果を示す。
対する、野生型およびHIVPol.476のヘテロクリティックアナログにつ
いての用量応答曲線である。
グのパネルを、適切なCTLからのIFNγの産生に関して、試験した結果であ
る。
ログによるIFNγおよびIL10の産生に対する、対応する用量応答曲線であ
る。
の潜在的なアナログのパネルを試験した結果である。
尾よいヘテロクリティックアナログについての用量応答曲線である。
ログの反応交差性を示す。図9Aおよび9Bにおいて、IFNγ産生は、免疫ペ
プチドによる刺激を使用して、濃度の関数としてプロットされる。図9Cおよび
9Dは、野生型エピトープが、CTLの初期誘導のために使用されるヘテロクリ
ティックアナログとは対抗的に、刺激剤として使用される場合の、対応する結果
である。
に関する、IFNγの放出である。
である。
対するCTL活性の刺激の結果である。
原から同定されたヘテロクリティックアナログの特徴を示す、表1である。
存的置換であるとして特徴付けし得るように、任意の所定のアミノ酸対の間の類
似性の割り当てを示す、表2である。
Claims (34)
- 【請求項1】 エピトープを含むペプチドの免疫原性を高める方法であって
、該方法が、以下: i)第一のクラスIエピトープを含むペプチドを提供する工程であって、ここ
で該エピトープが、本質的にN末端およびC末端ならびに少なくとも1つの一次
アンカー残基を有するアミノ酸配列からなり、ここで該アミノ酸残基が、連続し
て数えられ、そして該エピトープのN末端に最も近い一次アンカー残基が、2位
または3位である、工程;および ii)該エピトープのN末端とC末端との間の3位および/もしくは5位およ
び/もしくは7位での1つ以上の保存的、または半保存的置換を誘導する工程で
あって、ただし、該位が一次アンカー残基でない、工程、 それにより第二のクラスIエピトープを含むペプチドを構築する工程であって、
該エピトープが、該第一のクラスIエピトープと比較して高められた免疫原性を
示す、工程、 を包含する、方法。 - 【請求項2】 前記第二のクラスIエピトープが、前記第一のクラスIエピ
トープと比較して、特定のT細胞について少なくとも約50%増加した効力を示
す、請求項1に記載の方法。 - 【請求項3】 1つの置換のみが導入される、請求項1に記載の方法。
- 【請求項4】 前記置換が保存的置換である、請求項1に記載の方法。
- 【請求項5】 前記置換が半保存的置換である、請求項1に記載の方法。
- 【請求項6】 請求項1に記載の方法であって、前記ペプチドがHLAクラ
スI分子によって結合されそして細胞傷害性のT細胞と接触する場合、前記第二
のクラスIエピトープを含むペプチドが、Th1およびTh2サイトカインの両
方を誘導する、方法。 - 【請求項7】 前記第一のクラスIエピトープが、A1、A2、A3、A2
4、B7、B27、B44、B58およびB62からなる群より選択されるスー
パーモチーフを含む、請求項1に記載の方法。 - 【請求項8】 請求項1に記載の方法であって、ここで前記第一のクラスI
エピトープが、ウイルス抗原、腫瘍関連抗原、寄生生物抗原、細菌抗原または真
菌抗原由来である、方法。 - 【請求項9】 請求項1の方法によって調製された第二のクラスIエピトー
プを含むペプチド。 - 【請求項10】 免疫応答を誘発する方法であって、該方法が細胞傷害性T
リンパ球(CTL)と請求項9に記載のペプチドとを接触させる工程を包含する
、方法。 - 【請求項11】 前記接触させる工程がインビトロで、抗原提示細胞の存在
下で実施される、請求項10に記載の方法。 - 【請求項12】 前記接触工程が、被験体に前記ペプチドをコードするヌク
レオチド配列を含む核酸分子を投与する工程によって実施される、請求項10に
記載の方法。 - 【請求項13】 少なくとも1つのペプチドを含む組成物であって、該ペプ
チドが、請求項1に記載の方法によって得られ得るクラスIエピトープを含む、
組成物。 - 【請求項14】 前記ペプチドが、9個〜15個のアミノ酸を含む、請求項
13に記載の組成物。 - 【請求項15】 請求項13に記載の組成物であって、前記ペプチドが、配
列番号2、配列番号3、配列番号5、配列番号6、配列番号8、配列番号9、配
列番号11、配列番号12、配列番号14、配列番号15、配列番号17、配列
番号19および配列番号20からなる群より選択されるアミノ酸配列を含む、組
成物。 - 【請求項16】 前記ペプチドがCTLエピトープと混ぜられるか、または
連結される、請求項13に記載の組成物。 - 【請求項17】 前記ペプチドが、HTLエピトープと混ぜられるか、また
は連結される、請求項13に記載の組成物。 - 【請求項18】 前記HTLエピトープが、pan−DR結合分子である、
請求項17に記載の組成物。 - 【請求項19】 リポソームをさらに含む、請求項13に記載の組成物。
- 【請求項20】 前記エピトープが、脂質に結合される、請求項13に記載
の組成物。 - 【請求項21】 前記エピトープが、ヘテロポリマーに含まれる、請求項1
3に記載の組成物。 - 【請求項22】 前記エピトープが、ホモポリマーに含まれる、請求項13
に記載の組成物。 - 【請求項23】 前記エピトープが、HLA重鎖、β2ミクログロブリン、
およびストレプトアビジン複合体に結合され、これによりトリマーが形成される
、請求項13に記載の組成物。 - 【請求項24】 請求項13に記載の組成物であって、抗原提示細胞をさら
に含み、ここで、前記エピトープが、該抗原提示細胞上または抗原提示細胞内に
ある、組成物。 - 【請求項25】 請求項24に記載の組成物であって、前記エピトープが前
記抗原提示細胞上のHLA分子に結合し、これにより、該HLA分子に制限され
る細胞傷害性リンパ球(CTL)が存在する場合、該CTLのレセプターが該H
LA分子と該エピトープとの複合体に結合する、組成物。 - 【請求項26】 前記抗原提示細胞が、樹状細胞である、請求項25に記載
の組成物。 - 【請求項27】 請求項13に記載の組成物であって、HLA分子をさらに
含み、ここで、前記ペプチドが、該HLA分子により結合される、組成物。 - 【請求項28】 標識をさらに含む、請求項13に記載の組成物。
- 【請求項29】 請求項28に記載の組成物であって、ここで、前記標識が
、ビオチン、蛍光部分、非哺乳動物糖、放射性標識、またはモノクローナル抗体
が結合する低分子である、請求項28に記載の組成物。 - 【請求項30】 請求項13に記載の組成物であって、以下: 前記ペプチドの単位投薬量、および 薬学的賦形剤、 を含む、ワクチンである、組成物。
- 【請求項31】 請求項1に記載の方法により得られ得る第二のクラスIエ
ピトープを含む、9〜15個のアミノ酸のペプチドをコードするヌクレオチド配
列を含む核酸分子。 - 【請求項32】 請求項31に記載の核酸分子であって、前記ペプチドが、
配列番号2、配列番号3、配列番号5、配列番号6、配列番号8、配列番号9、
配列番号11、配列番号12、配列番号14、配列番号15、配列番号17、配
列番号19、および配列番号20、からなる群より選択されるアミノ酸配列から
なるエピトープを含む、核酸分子。 - 【請求項33】 前記ヌクレオチド配列の発現のための制御配列をさらに含
む、請求項32に記載の核酸分子。 - 【請求項34】 請求項31に記載の核酸分子を、活性成分として含む、薬
学的組成物。
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