JP2003284570A - フォンビルブラント因子(vWF)切断酵素 - Google Patents

フォンビルブラント因子(vWF)切断酵素

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高義 濱本
Toshihiro Nakagaki
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Abstract

(57)【要約】 【目的】vWF特異的切断酵素を単離同定することを目
的とする。 【構成】vWFの842Tyr−843Metの結合を
切断し、部分配列としてLeu-Leu-Val-Ala-Valを含有す
るポリペプチド鎖よりなり、より好適にはAla-Ala-Gly-
Gly-Ile-Leu-His-Leu-Glu-Leu-Leu-Val-Ala-Valの成熟
型蛋白質のN末端側アミノ酸部分配列を含有し、一態様
として還元あるいは非還元条件下のSDS−PAGEに
おいて105〜160kDaの分子量を有することが例
示されるポリペプチド鎖よりなるvWF特異的切断酵
素。 【効果】当該vWF特異的切断酵素の単離・同定によ
り、血栓性血小板減少性紫斑病等の当該酵素の欠損に起
因する疾病患者への補充療法の可能性が拓かれる。

Description

【発明の詳細な説明】
【0001】
【産業上の利用分野】本願発明は、医療用医薬品の分野
に係る血漿蛋白質に関する。詳細には、血液凝固に関与
するフォンビルブラント因子(von Willebrand Factor:
以下、vWFと称することがある)の特異的切断酵素に
関する。本願発明で提供されるvWF切断酵素により血
栓性血小板減少性紫斑病(thrombotic thrombocytopenic
purpura : 以下、TTPと称することがある)等の当該
酵素の欠損に起因する疾病患者への補充療法の可能性が
拓かれる。加えて、新規な抗血小板血栓薬としての利用
も見込まれる。
【0002】
【従来の技術並びに発明が解決しようとする課題】vW
Fは、血管内皮細胞や骨髄巨核球で産生され、2050
アミノ酸残基(モノマー約250kDa)からなる単一サ
ブユニットがS−S結合にて結ばれたマルチマー構造
(分子量500〜20,000kDa)を持って存在して
いる止血因子である。血中濃度は約10μg/mlで、
一般に高分子量のものほど比活性が高い。vWFには2
つの大きな止血因子としての機能があり、1つは血液凝
固第VIII因子と結合し、これを安定化させるキャリアー
蛋白質としての働き、もう1つは傷害血管壁の血管内皮
細胞下組織に血小板を粘着・凝集させ、血小板血栓を形
成する機能である。
【0003】血栓性血小板減少性紫斑病は、全身の体組
織細動脈と毛細血管に血小板血栓を生じる疾患であり、
今日の医療技術の進歩にもかかわらず、当該疾患での関
連死亡率は1971〜1991年にかけて約3倍に増加
している。病理学的に、TTPは血管内皮細胞障害や血
管内血小板凝集によって惹き起こされると考えられてお
り、免疫組織学的には生じた血小板血栓中に多量のvW
Fの存在が認められ、vWFがこの成因に大きな役割を
果たしていると考えられている。TTP患者のvWFの
マルチマー構造は正常もしくは高分子量が優位となって
おり、特に通常では見られない超高分子量のvWF(unu
sually large vWF multimer:ULvWFM)や高分子量
vWF重合体 (large vWF multimer:LvWFM)が、
高ずり応力下での血小板凝集の促進と微小血栓形成に大
きな役割を果たしていることが推察される。一方で、v
WFは健常人の循環血液中で高ずり応力下、vWF切断
酵素(vWF-cleaving protease)の作用により842T
yr−843Metの位置で分解を受けることが知られ
ていた。したがって、TTPは血漿中の当該酵素活性が
何らかの原因で低下して、ULvWFM〜LvWFMが
増加して血小板凝集が亢進し、血管内に血小板血栓が形
成されるためというシナリオが描かれている。
【0004】最近、Furlanら(Blood, vo
l. 87, 4223−4234:1996、特表200
0−508918)、Tsaiら(Blood, vol.
87, 4235−4244:1996)によりvWF特
異的切断酵素の測定法が考案され、TTPでは、事実こ
の酵素活性が低下していることが報告された。そして前
記報告の著者等は当該酵素が血漿中のメタロプロテアー
ゼであることを示し、部分精製したことを報告したが、
当該酵素を特定化するようなアミノ酸配列の決定等には
至らずそれ以来進展がない。
【0005】
【発明が解決しようとする問題点】vWF特異的切断酵
素の先天的欠損患者および後天性の当該酵素に対する抗
体陽性患者の治療法として、現在までプラズマ交換療法
が施されており、当該酵素の精製品または遺伝子組換え
体等純品による補充療法の確立が望まれる。家族性TT
P患者は、先天的にvWF特異的切断酵素が欠損してお
り、非家族性では後天的に当該酵素に対する自己抗体の
産生が原因と報告されている。したがって、家族性TT
P患者には、本酵素の補充療法が望ましく(現実には血
漿投与が行われている)、非家族性では、血漿交換によ
る自己抗体の除去と本酵素の補充が必要である。さら
に、本酵素の利用は新規な抗血小板血栓薬としての応用
も見込まれる。しかし、vWF切断酵素は、前述のごと
くFurlanら(Blood, vol. 87, 422
3−4234:1996、特表2000−50891
8)、Tsaiら(Blood, vol. 87, 4235
−4244:1996)により、血漿中のメタロプロテ
アーゼであることが示唆され、部分精製したこと、そし
てその比活性において血漿から1,000〜10,000
倍濃縮されたと報告されているが、この条件下でもな
お、これ以来現在までおよそ5年間に渡って、その蛋白
質のアミノ酸配列など本酵素本体の性状解析には進展が
無く、未だ本酵素に関しての具体的、生化学的情報は一
切得られていない。これは、Furlanらの報告にも
あるように、目的蛋白質が巨大であることが示唆されて
おり、これに伴う、様々な問題点が考えられる。例え
ば、様々な相互作用分子やコファクターの存在など、本
酵素の存在様式の多様性が想定され、精製法の複雑化、
さらには、精製ステップでの非特異的な相互作用による
分離能の低下などから、Furlanらのプラズマ画分
からの精製法では本酵素の単離同定に至るには大きな困
難性が立ちふさがっていたことが推察された。
【0006】
【課題を解決するための手段、発明の構成】上述の状況
の下、本願発明者等はvWF切断酵素の単離同定を達成
するべく、鋭意研究を重ねた結果、従来報告のなかった
所望のvWF切断酵素の精製単離に成功し、その成熟型
蛋白質のアミノ酸配列及び当該アミノ酸配列をコードす
る遺伝子を同定するに至った。本願発明のvWF切断酵
素は、vWFの842Tyr−843Metの結合を切
断し得る性状を有し、一態様として還元あるいは非還元
条件下のSDS−PAGEにおいて105〜160kD
aまたは160〜250kDaの分子量を有することが
例示され、部分配列としてLeu-Leu-Val-Ala-Valを含有
するポリペプチド鎖よりなり、より好適にはAla-Ala-Gl
y-Gly-Ile-Leu-His-Leu-Glu-Leu-Leu-Val-Ala-Valの成
熟型蛋白質のN末端側アミノ酸部分配列を含有するポリ
ペプチド鎖よりなる。そして、下記の性状によって特徴
付けられる新規な物質である。
【0007】1)vWF切断活性 本願発明酵素は、切断断片のN末端配列解析の結果、8
42Tyr−843Metのペプチド結合を切断する。 2)ゲル濾過による分画 FIペーストを出発材料とした場合、ゲル濾過クロマト
グラフィーを用いて分画を行なうと、分子量が150kD
a〜300kDaのサイズにほとんどの活性が回収される
が、実際に得られる本発明中の活性物質の一例では電気
泳動で105〜160kDa程度の分子量を示すことか
ら、二量体等の形成あるいは他の分子と結合しやすい可
能性のある物質、または易分解性、あるいは糖鎖付加の
不均一性を有しうる物質である。 3)硫安沈澱 例えば、FIペーストを出発原料とした場合、粗精製画
分中で33%飽和硫安で本酵素の大部分は沈殿画分とし
て回収される。 4)SDS−PAGE 例えば、ヒトプールプラズマを原料としたFIペースト
あるいはクリオプレシピテート由来の本酵素は、SDS-PA
GEにおいて、主に、分子量マーカーの105kDa〜16
0kDa程度の分子サイズを示す。そして、配列番号15
記載の核酸配列を基に、445番目以降atgの開始コド
ンから4726番目以下のtgaまでの終結コドンを含ん
だフレームで表されるアミノ酸配列を遺伝子組換え技術
を用いて発現させた場合、宿主により多少の分子サイズ
は異なるものの、概ね、分子量マーカーの160kDa〜
250kDa程度の分子サイズを示す。そして、このサイ
ズのものは、ヒト健常者及び一部のTTP患者の血漿中
にも認められる。また、この酵素は、遺伝子のクローニ
ングの際に認められたalternative splicing産物(配列
番号16〜21)などの存在、糖鎖付加などの翻訳後修飾の
違い、あるいは精製工程中での分解に起因すると思われ
る複数の分子種がヒト血漿中では存在する。さらに、本
酵素は、非還元下のSDS-PAGE後、活性を有する状態で回
収可能である。
【0008】5)アミノ酸配列分析 単離されたポリペプチド断片のアミノ酸配列の解析の結
果、部分アミノ酸配列としてLeu-Leu-Val-Ala-Valの配
列を有し、成熟型蛋白質のN末端側アミノ酸配列とし
て、Ala-Ala-Gly-Gly-Ile-Leu-His-Leu-Glu-Leu-Leu-Va
l-Ala-Valの配列を有するポリペプチド鎖より例示され
ることが明らかとなった。そしてさらには、現在のバイ
オインフォーマティクスの方法(BIOINFORMATICS: A Pr
actical Guide to the Analysis of Genes and Protein
s edited by Andreas D. Baxevanisand B. F. Francis
Ouellette)により、前記部分配列を基に、データベー
スサーチにより、信頼性高く、本アミノ酸配列をコード
する核酸配列の同定を行うに至った。具体的には、プロ
グラムtblastnによりゲノムでのデータベースサーチを
行った結果、本願発明の酵素をコードしていると推察さ
れる染色体クローン(AL158826)が同定され、さらに、
EST(Expressed Sequence Tag)データベースとの照
合により、目的酵素の一部分及び上記ゲノムによりコー
ドされるポリペプチドの一部と推察されるクローン(AI
346761及びAJ011374)を同定した。これを基にvWF切
断酵素としての活性部位として配列番号3もしくは7に
示すアミノ酸配列を同定した。
【0009】配列としてゲノムから想定されるGCT GCA
GGC GGC ATC CTA CAC CTGGAG CTG CTG GTG
GCC GTG、より好適にはESTによりそのトランスクリ
プトームが確認されている部分としてのCTG CTG GTG
GCC GTGが得られた。そして、得られた塩基の配列解
析、アミノ酸への推定からモチーフ解析を行い、本願発
明の酵素の一つの候補として、メタロプロテアーゼドメ
インを有していることが推察できた。上記知見により、
さらにより具体的な当該酵素の一つとしてのポリペプチ
ド鎖の配列を開示できるに至った。また、酵素は一般的
にそのアミノ酸配列の一部の置換あるい欠失、挿入、点
変異の導入等でその活性が変化することが知られている
(血液凝固第VII因子の改変体;副島ら特開2001−6
1479)。それで、本願発明の酵素においてもこれら
と同様に1もしくは数個のアミノ酸が欠失、置換もしく
は付加されるなどの改変操作で、より最適化された酵素
の作製が可能である。
【0010】さらなる本酵素蛋白質の大量調製を行い、
N末端から29個のアミノ酸配列を決定した。そのアミ
ノ酸配列を配列番号8に示す。この結果は、バイオイン
フォーマティクスを用いて推定された配列番号3もしく
は7記載の配列とほぼ一致しており、唯一異なったのは
27位のアミノ酸が、配列番号3もしくは7記載のもの
がGluであるのに対して、今回のN末端配列解析では
Argであった点であるが、これは遺伝子多型(ポリモ
ルフィズム)と考えられた。これにより、本酵素はその
成熟体としてN末端に配列番号3もしくは7記載のアミ
ノ酸配列を有するポリペプチド鎖からなることが確認さ
れた。そこで、本酵素をコードする遺伝子断片を以下の
手順でクローニングした。
【0011】配列番号7中の核酸配列に依拠し、図9中
の下線部位で示される核酸配列を基に、センスプライマ
ー(配列番号9)及びアンチセンスプライマー(配列番
号10)を作製し、プライマーで挟まれた部分の遺伝子
を増幅した。その断片をクローニング後、塩基配列を確
認した。当該断片をプローブとし、ノーザンブロット解
析により、本酵素遺伝子の発現部位を確認した。その結
果、本酵素遺伝子は肝臓で特徴的に発現していることが
確認された。これにより、ヒト肝臓cDNAライブラリ
ーを購入し、RACE法(Rapid Amplification of cDN
A Ends)を用いて、本酵素をコードする遺伝子を同定し
た。これらの結果、配列番号15に示されるポリA付加
サイトまでのおよそ5キロベースのmRNA(cDN
A)の配列を同定した。
【0012】この遺伝子配列から推定されたアミノ酸配
列により、本酵素はプレプロ配列を有し、ディスインテ
グリンドメイン、メタロプロテアーゼドメイン等を有す
るADAM(A Disintegrin And Metalloprotease)フ
ァミリー、特にTSP-1(トロンボスポンジンType-
1)ドメインを有するADAM-TSファミリーに属す
るものであると推察された。最終的に、一部の核酸配列
に挿入・欠失を生じたものを含めて、成熟体であるプレ
プロ配列が切断された以降のN末端に配列番号3および
7に示される配列を有する配列番号16から21に示さ
れるアイソフォームが同定された。したがって、本願発
明の酵素の要件としては、vWFを842Tyr-843Metで
切断し、かつアミノ酸の部分配列としてLeu-Leu-Val-Al
a-Valの配列を有するものとして表されるものである。
【0013】本願発明のvWF切断酵素は大略以下の方
法によって調製され得る。本願発明における当該酵素の
活性測定法の特徴は、短時間に活性の有無の評価が可能
な点にある。Furlanら(Blood, vol. 87, 4223−
4234:1996 特表2000−508918)の報告で
は、抗vWF抗体を用いたウェスタンブロット法による
vWF切断パターンの解析で行われるため、フィルター
へのトランスファーなど時間を要する。より具体的に
は、基質であるvWFとの酵素反応に24時間、さらに
その電気泳動に17時間、フィルターへのトランスファ
ーに3時間その後の抗vWF抗体を用いた検出反応が続
くもので少なくとも計45時間程度を要する。これに比
し、本願発明者等の行った活性測定は、基質であるvW
Fとの酵素反応に16時間、さらにその電気泳動および
検出に2時間の計18時間で完了し、3分の1弱の時間
短縮が可能である。これに伴い、精製工程の時間短縮が
可能となり、本酵素の活性失活を低減できる。したがっ
て、精製効率がFurlanらの方法より向上してお
り、その結果、精製度の向上につながっている。
【0014】さらに、上述のアッセイ系を用いて、出発
材料の検討を行って、従来Furlanらが報告したク
リオプレシピテートよりもFIペースト中に本酵素活性
が濃縮されていることを見出した。これを出発材料と
し、前述の迅速な活性測定系を組み合わせることによ
り、本酵素の単離同定が可能となった。具体的な態様と
して、ゲル濾過クロマトグラフィーおよびイオン交換ク
ロマトグラフィーを組み合わせる精製法を適用し前記活
性測定系を組み合わせる。より具体的には、FIペース
トをバッファーにて可溶化し、これをゲル濾過クロマト
グラフィーを用いて分画する。本酵素活性はゲル濾過の
サイズマーカーから推定して分子量150kDa〜300k
Daの溶出位置に分画され、この後、33%飽和硫安にて
沈殿濃縮せしめる。この行程を計3回行い、3回目のゲ
ル濾過の活性画分をプールしたものを50mMTris-HCl pH
7.1にNaCl 50mM添加したバッファーで4℃一晩透析した
後、陰イオン交換クロマトグラフィー(DEAE)にかけ、
0.25M のNaClにてステップワイズに溶出する。本願発明
の酵素を単離同定するための方法として、鋭意研究した
結果、驚くべきことに、非還元下のSDS-PAGE後、活性を
有するバンドとして回収可能であることを見いだした。
これをもとにさらに大量調製するために、精製・濃縮さ
れた画分をSDS-PAGEの原理を利用したバイオフォレーシ
スに供した。これにより、泳動分離された画分でvWF
切断活性を有する画分を分取した。この段階までの比活
性を概算するとおよそ30,000〜100,000倍近
い精製度を達成したことになる。さらに、これを効率よ
く複数回に渡り迅速に行うことにより、現在のアミノ酸
配列分析の限界である0.5ピコモル程度のサンプルが
取得できた。これにより、アミノ酸配列分析が可能にな
った。つまりは、最終工程としてSDS-PAGEの原理に基づ
いた分離精製(バイオフォレーシス)が重要なステップ
であり、それは本願発明に至るまでの鋭意研究の結果得
られた知見に基づくものである。
【0015】Furlanらの報告では、10,000
倍近い比活性の向上を行ったにも拘わらず、本酵素の本
質的な単離同定に至らなかったのは、精製中の失活等あ
るいは、各種液体クロマトグラフィーに属する分離方法
では、本酵素のように巨大蛋白質で様々な他の蛋白質と
の相互作用が可能と考えられる分子では、単離同定まで
達するのが困難であったためであろうと考えられる。さ
らに、本酵素のプラズマ中での含量が微量であることが
想定され、本願発明の手法が確立されるのを待たねばな
らなかったのである。さらに、この方法を用いることに
より、遺伝子組み換え体も精製可能である。
【0016】本願発明により得られた知見に基づき、得
られた配列を基に調製されるペプチドもしくは蛋白質を
抗原に、通常の免疫方法(Current Protocols in Molec
ularBiology、Antibody Engineering: A PRACTICAL APP
ROACH Edited by J.McCAFFERTY et al.あるいはANTIBOD
Y ENGINEERING second edition Edited by Carl A.K. B
ORREBAECK )によってモノクローナルおよびポリクロー
ナル抗体等の作製あるいはこれらのヒト型抗体の作製が
可能となる。あるいは、ファージディスプレイ技術を利
用した抗体作製技術(Phage Display of Peptides and
Proteins: ALaboratory Manual Edited by Brian K. Ka
y et al.、Antibody Engineering: APRACTICAL APPROAC
H Edited by J.McCAFFERTY et al.あるいはANTIBODY EN
GINEERING second edition edited by Carl A. K. BORR
EBAECK)により当該蛋白質と結合する抗体の作出が可能
である。あるいは、これらの技術に基づき、本酵素に対
する自己抗体陽性であるTTP患者検体からの本酵素活
性の中和抗体もしくは単なる結合抗体の単離も可能であ
る。そして、これらの抗体を用いることで、例えばTT
Pなどの疾患の診断及び治療への応用が可能となる。
【0017】さらには、得られたゲノムあるいはEST
の配列を基に通常の方法(Molecular Cloning 2nd edit
ion)により、本願発明の酵素をコードするcDNAや
ゲノム遺伝子をクローニングすることが可能である。さ
らに、バイオインフォーマティックな解析(BIOINFORMA
TICS: A Practical Guide to the Analysis of Genesan
d Proteins edited by Andreas D. Baxevanis and B.
F. Francis Ouellette)により、これと相同な他動物種
の当該蛋白質のクローニングも可能となり、その遺伝子
を通常の方法(Gene Targeting: A Practial Approach
First EditionEdited by A.L.Joyner、Teratocarcinoma
s and embryonic stem cell a practical approach、
トランスジェニック動物 山村研一他編 共立出版な
ど)によって遺伝子破壊することにより、TTP様モデ
ル動物の作出が可能となる。とりわけマウス由来の本蛋
白質をコードする遺伝子配列を同定することにより、こ
の遺伝子のノックアウトマウスの作出が可能となる。こ
れにより、先天的TTPなどの疾患モデルマウスが作製
できる。または、ヒトなどの本酵素遺伝子を発現する動
物等の作出が可能になる。
【0018】さらには、通常の方法(J. Sambrook et a
l.著 Molecular Cloning 2nd edition、またはCURRENT
PROTOCOLS IN MOLECULAR BIOLOGYなど)により、これら
の遺伝子を適当な発現ベクターに組み込み、適当な宿主
細胞に形質転換し、当該酵素の遺伝子組み換え産物を調
製することが可能である。この時、組み込む遺伝子は、
必ずしも当該蛋白質の全域をコードした遺伝子である必
要はなく、用途に応じてドメインで定義されるような当
該蛋白質の一部分の発現も含まれる。例えば、本願発明
のポリヌクレオチドを形質導入、トランスフェクショ
ン、およびトランスフォーメーションの公知の技術を用
いて宿主細胞中に導入する。ポリヌクレオチドは単独ま
たは他のポリヌクレオチドと共に導入される。このよう
な他のポリヌクレオチドは、独立して導入されるか、同
時導入されるか、または本発明のポリヌクレオチドと合
わせて導入される。
【0019】このように、例えば本発明のポリヌクレオ
チドを宿主細胞中に選択マーカーをコードする他の別の
ポリヌクレオチドで、例えば哺乳動物細胞中、同時トラ
ンスフェクションおよび選択についての標準的技術を用
いてトランスフェクションする。この場合、ポリヌクレ
オチドは一般的に宿主細胞ゲノム中に安定に組み込まれ
るであろう。
【0020】別法として、ポリヌクレオチドを宿主中の
増殖用選択マーカーを含有するベクターと結合させても
よい。ベクター構築物は前記技術により宿主細胞中に導
入される。一般に、プラスミドベクターは、沈殿物、例
えばリン酸カルシウム沈殿物、または荷電脂質との複合
体などのDNAとして導入される。エレクトロポレーシ
ョンもポリヌクレオチドを宿主中に導入するために用い
られる。ベクターがウイルスの場合、これはin vitroで
パッケージされるか、またはパッケージング細胞中に導
入され、パッケージされたウイルスを細胞中に導入す
る。
【0021】本発明のこの態様にしたがって、ポリヌク
レオチドを産生し、ポリヌクレオチドを細胞中に導入す
るのに適した広範囲に及ぶ技術は当業界で周知であり慣
例的である。このような技術は、Sambrookら(前掲)
に記載され、これはこれらの技術を詳述した多くの標準
的実験マニュアルを説明するものである。本発明のこの
態様に関して、ベクターは、例えばプラスミドベクタ
ー、一本または二本鎖ファージベクター、一本または二
本鎖RNAまたはDNAウイルスベクターである。この
ようなベクターは、ポリヌクレオチド、好ましくはDN
Aとして、DNAおよびRNAの細胞中への導入につい
て周知の技術により細胞中に導入される。ベクターは、
ファージおよびウイルスベクターの場合、好ましくは、
感染および形質導入について周知の技術によりパッケー
ジされたまたは封入されたウイルスとして細胞中に導入
される。ウイルスベクターは複製受容または複製欠陥の
いずれであってもよい。
【0022】ベクターのうち好ましいものは、ある点に
おいて、本発明のポリヌクレオチドまたはポリペプチド
を発現するベクターである。一般に、このようなベクタ
ーは、発現されるポリヌクレオチドと操作可能に結合し
た宿主中の発現に有効なシス−作用制御領域を含む。適
当なトランス−作用ファクターは(例えば、シグナルペ
プチダーゼあるいはフーリンなどの翻訳後のプロセッシ
ングに関与する酵素群など)、宿主細胞中に導入される
際、宿主により供給されるか、補足ベクターにより供給
されるかまたはベクターそれ自身により供給されるかの
いずれかである。
【0023】この点に関して好ましい一態様において、
ベクターは特異的発現を提供する。このような特異的発
現は、誘発性発現またはある型の細胞でのみ発現する
か、または誘発性かつ細胞特異性なものである。誘発性
ベクターの中で特に好ましいのは、操作が簡単な環境因
子、例えば温度および栄養添加物により発現を誘発でき
るベクターである。原核および真核細胞宿主における使
用についての構成および誘発可能な発現ベクターを含む
本発明のこの態様に適した種々のベクターは、周知であ
り、当業者により慣例的に用いられるものである。
【0024】遺伝子操作した宿主細胞は、通常の栄養培
地中で培養でき、これは、特にプロモーターの活性化、
形質転換体の選択または遺伝子の増幅に適するように修
飾される。一般に発現のために選択された宿主細胞につ
いて今までに用いられている温度、pHなどの培養条件
は、当業者に明らかなように、本発明のポリペプチドの
発現に適しているであろう。
【0025】非常に多種の発現ベクターを本発明のポリ
ペプチドの発現に用いることができる。このようなベク
ターは、染色体、エピソームおよびウイルス由来のベク
ター、例えばバクテリアプラスミド、バクテリオファー
ジ、酵母エピソーム、酵母染色体エレメント、バクロウ
イルス、シミアンウイルス40(「SV40」)などの
パポバウイルス、ワクチニアウイルス、アデノウイル
ス、鶏痘ウイルス、偽狂犬病ウイルスおよびレトロウイ
ルスなどのウイルス由来のベクター、およびその組み合
わせ由来のベクター、例えばプラスミドおよびバクテリ
オファージ遺伝子エレメント由来のもの、例えばコスミ
ッドおよびファージミッドを包含し、これらはすべて本
発明のこの態様にしたがって発現に用いられる。一般
に、宿主においてポリペプチドを発現するため、ポリヌ
クレオチドの維持、増殖または発現に適したいかなるベ
クターもこの点に関して発現に用いることができる。適
当なDNA配列は種々の周知の慣例技術よりベクター中
に挿入される。一般に、発現用DNA配列は、DNA配
列および1またはそれ以上の制限エンドヌクレアーゼを
有する発現ベクターの開裂により発現ベクターに結合さ
せ、次に制限フラグメントをT4DNAリガーゼを用い
て一緒に結合させる。この目的に用いることができる制
限およびライゲーション法は当業者には周知であり、慣
例的である。この点に関して、また当業者に周知であり
慣例的である別の技術を用いた発現ベクターの構築に適
当な方法は、Sambrookら(前掲)に非常に詳しく説明
されている。
【0026】発現ベクター中のDNA配列を、例えば、
プロモーターを含む適当な発現調整配列に操作可能に結
合させ、mRNA転写を方向付ける。このようなプロモ
ーターの代表例は、ごく僅かの周知のプロモーターを列
挙すると、ファージラムダPLプロモーター、大腸菌l
ac、trp、trcおよびtacプロモーター、SV
40初期および後期プロモーターおよびレトロウイルス
LTRのプロモーターを包含する。記載していない多く
のプロモーターが本発明のこの態様における使用に適
し、周知であり、本明細書の考察および実施例により説
明されたようにしてより容易に用いられると考えられ
る。一般に、発現構築物は、転写開始または終止部位、
および転写された領域に、翻訳のためのリボソーム結合
部位を含有する。構築物により発現された成熟転写物の
コーディング部分は翻訳されるポリペプチドのほぼ末端
に位置する開始および終止コドンに翻訳開始AUGを含
む。加えて、構築物は、発現を調節し、引き起こす調節
領域を含む。一般に、多くの通常実施されている方法に
したがって、このような領域は、レプレッサー結合部位
およびエンハンサーなどの転写を調節することにより作
用する。
【0027】増殖および発現用ベクターは、選択マーカ
ーを含む。このようなマーカーは増殖に適しているか、
またはベクターはこの目的のために付加的なマーカーを
含有する。この点に関して、発現ベクターは、形質転換
された宿主細胞の選択のための表現型特質を提供するた
めに好ましくは1またはそれ以上の選択マーカー遺伝子
を含む。好ましいマーカーは、真核細胞培養について、
ジヒドロ葉酸還元酵素またはネオマイシン耐性、あるい
は大腸菌および他のバクテリアの培養に関して、テトラ
サイクリンまたはアンピシリン耐性を含む。本明細書に
記載するような適当なDNA配列を含むベクター、なら
びに適当なプロモーターまたは調節配列を、所望のポリ
ペプチドの発現に適した種々の周知の技術を用いて適当
な宿主中に導入する。
【0028】適当な宿主の代表例は、大腸菌、ストレプ
トマイセスおよびサルモネラ・チフィムリウム細胞など
の細菌細胞;酵母細胞などの真菌細胞;ドロソフィラS
2およびスポドプテラSf9細胞などの昆虫細胞;CH
O、COSおよびBowes黒色腫細胞など、さらにはSP
2/0など接着性、浮遊性いずれの動物細胞および植物
細胞を包含する。種々の発現構築物に対する宿主は周知
であり、当業者は本発明の開示により本発明のこの態様
にしたがってポリペプチドを発現するための宿主を容易
に選択できる。
【0029】より詳細には、本発明は組換え構築物、例
えば1またはそれ以上の前記配列を含む発現構築物も包
含する。構築物は、ベクター、例えばプラスミドまたは
ウイルスベクターであって、その中に本発明の配列が挿
入されているものを含む。配列を正または逆の順序に挿
入する。この点に関して好ましい具体例において、構築
物はさらに、例えば配列に操作可能に結合したプロモー
ターなどを含む調節配列を有する。多数の適当なベクタ
ーおよびプロモーターが当業者に公知であり、本発明に
おける使用に適した多くの商業上入手可能なベクターが
ある。
【0030】以下の商業的に入手可能なベクターを例示
のために記載する。細菌においての使用に好ましいベク
ターはQiagenから入手可能なpQE70、pQE6
0、pQE−9;Stratageneから入手可能なpBSベ
クター、ファージスクリプトベクター、ブルースクリプ
トベクター、pNH8A、pNH16a、pNH18
A、pNH46A;Pharmaciaから入手可能なptrc
99a、pKK223−3、pKK233−3、pDR
540、pRIT5である。好ましい真核細胞ベクター
は、Stratageneから入手可能なpWLNEO、pSV
2CAT、pOG44、pXT1およびpSG;および
Pharmaciaから入手可能なpSVK3、pBPV、pM
SG、pSVLである。これらのベクターは、本発明の
態様にしたがって用いるために、当業者に利用可能な商
業上入手可能であり、かつ周知のベクターを単に例示と
して列挙したものである。例えば本発明のポリヌクレオ
チドまたはポリペプチドの導入、維持、増殖または発現
に適した他のプラスミドまたはベクターも本発明のこの
態様において宿主にて用いることができる。
【0031】プロモーター領域は、例えば候補プロモー
ターフラグメント;すなわちプロモーターを含有するフ
ラグメントを導入するための制限部位(複数)の下流の
クロランフェニコールアセチルトランスフェラーゼ
(「CAT」)転写単位などのプロモーター領域を欠く
リポーター転写単位を含有するベクターを用いて所望の
遺伝子から選択できる。周知のように、cat遺伝子の
上流の制限部位でプロモーター含有フラグメントのベク
ター中に導入すると、標準CATアッセイにより検出可
能なCAT活性の産生を引き起こす。この目的に適した
ベクターは周知で容易に入手可能である。2つのこのよ
うなベクターはpKK232−8およびpCM7であ
る。したがって、本発明のポリヌクレオチドの発現用プ
ロモーターは、周知で容易に入手可能なプロモーターだ
けでなく、前記技術により、リポーター遺伝子を用いて
容易に得られるプロモーターも包含する。
【0032】そのうち、本発明にしたがってポリヌクレ
オチドおよびポリペプチドの発現に適した公知の細菌プ
ロモーターは、大腸菌lacIおよびlacZプロモー
ター、T3およびT7プロモーター、gptプロモータ
ー、ラムダPR、PLプロモーターおよびtrp、tr
cプロモーターである。そのうち、この点に関して適当
な公知の真核細胞プロモーターは、サイトメガロウイル
ス(「CMV」)即時型プロモーター、HSVチミジン
キナーゼプロモーター、初期および後期SV40プロモ
ーター、レトロウイルスLTRのプロモーター、例えば
ラウス肉腫ウイルス(「RoSV」)のプロモーター、
およびメタロチオネイン−Iプロモーターなどのメタロ
チオネインプロモーターを包含する。
【0033】宿主細胞における発現についての適当なベ
クターおよびプロモーターの選択は、公知方法であり、
発現ベクター構築、ベクターの宿主細胞中への導入およ
び宿主における発現に必要な技術は当業界で慣例の技術
である。本発明はまた前記構築物を有する宿主細胞に関
する。宿主細胞は、哺乳動物細胞などのより高等な真核
細胞、または酵母細胞などのより低級な真核細胞、ある
いは宿主細胞は細菌細胞などの原核細胞とすることがで
きる。
【0034】構築物の宿主細胞中への導入はリン酸カル
シウムトランスフェクション、DEAE−デキストラン
媒介トランスフェクション、カチオン性脂質−媒介トラ
ンスフェクション、エレクトロポレーション、形質導
入、感染または他の方法により行うことができる。この
ような方法は、多くの標準実験室マニュアル、例えば、
Sambrookらの本に記載されている。宿主細胞中の構築
物は常法で用いることができ、組換え体配列によりコー
ドされる遺伝子産物を生じる。別法として、本発明中の
部分ポリペプチドは通常のペプチド合成機により合成で
きる。成熟蛋白質は、哺乳動物細胞、酵母、細菌、また
は他の細胞において適当なプロモーターの調節下で発現
できる。また、細胞を含まない翻訳系を用い、本発明の
DNA構築物由来のRNAを用いてこのような蛋白質を
産生することもできる。原核および真核宿主について用
いる適当なクローニングおよび発現ベクターは、Sambr
ookら(前掲)に記載されている。
【0035】一般に、組換え発現ベクターは、複製起
点、下流構造配列の転写を方向付けるために高度に発現
された遺伝子由来のプロモーター、およびベクターに接
触させた後ベクターを含有する細胞の単離を行うための
選択マーカーを含む。そのうち、適当なプロモーター
は、3−ホスホグリセレートキナーゼ(「PGK」)、
α−ファクター、酸ホスファターゼ、および熱ショック
蛋白質などの糖分解酵素をコードする遺伝子から誘導で
きるものである。選択マーカーは大腸菌のアンピシリン
耐性遺伝子およびエス・セレビシエのtrp1遺伝子を
包含する。
【0036】高等な真核細胞による本発明のポリペプチ
ドをコードするDNAの転写はエンハンサー配列をベク
ター中に挿入することにより増加させてもよい。エンハ
ンサーは、所定の宿主細胞型においてプロモーターの転
写活性を増加させるように作用する、通常、DNAのシ
ス−作用エレメントである。エンハンサーの例は、SV
40エンハンサー、サイトメガロウイルス初期プロモー
ターエンハンサー、複製起点の後側のポリオーマエンハ
ンサー、βアクチンエンハンサーおよびアデノウイルス
エンハンサーなどを包含する。
【0037】本発明のポリペプチドのヘテロローガスな
構造配列をコードする本発明のポリヌクレオチドは一般
に標準的技術を用いて、これが発現用プロモーターに操
作可能に結合するようにベクター中に挿入される。ポリ
ペプチドは転写開始部位が適当にリボソーム結合部位の
5’に位置するように配置される。リボソーム結合部位
は発現されるポリペプチドの翻訳を開始するAUGに対
して5’である。一般に、開始コドン、通常はAUGで
始まり、リボソーム結合部位と開始AUGの間にある他
のオープンリーディングフレームは存在しない。また、
一般に、ポリペプチドの末端に翻訳終止コドンがあり、
転写領域の3’末端に適切に配置されたアデニル化シグ
ナルおよび転写終止シグナルが存在する。
【0038】翻訳された蛋白質の小胞体のルーメン中、
細胞質隙中または細胞外環境への分泌については、適当
な分泌シグナルが発現されたポリペプチド中に組み込ま
れている。シグナルはポリペプチドに対して内因性であ
るかまたはヘテロローガスなシグナルであってもよい。
さらには、シグナル配列に続くプロ配列に関しても内因
性のものであっても良いし、その他のヘテロローガスな
もの(例えば他のメタロプロテアーゼのプレ/プロ配列
など)を用いても良い。
【0039】ポリペプチドは例えば融合蛋白質などの修
飾された形態で発現され、分泌シグナルだけでなく、付
加的なヘテロローガスな機能領域も包含する。したがっ
て、例えば付加的アミノ酸、特に荷電アミノ酸の領域
は、精製中またはそれに続く操作および保存中、宿主細
胞における安定性および保存性を向上させるためにポリ
ペプチドに添加される。また、ある領域をポリペプチド
に付加して精製を促進してもよい。このような領域は、
ポリペプチドの最終調製の前に除去してもよい。ペプチ
ド部をポリペプチドに付加し、分泌または排出を誘起す
るか、または安定性を向上させるかまたは精製を容易に
することは、当業界で周知の慣例的技術である。
【0040】本発明によるポリヌクレオチドおよびポリ
ペプチドの増殖、維持または発現に適当な原核宿主は、
大腸菌、バチルス・サチリスおよびサルモネラ・チフィ
ムリウムを包含する。種々のシュードモナス、ストレプ
トマイセスおよびスタフィロコッカスがこの点で適当な
宿主である。さらにまた、この点に関して当業者に公知
の多数の他の宿主も用いうる。代表的であるが制限的で
ない例として、細菌の用途に有用な発現ベクターは、選
択可能なマーカーおよび周知のクローニングベクターp
BR322(ATCC37017)の遺伝子エレメント
を含む市販のプラスミド由来の細菌の複製起源を含みう
る。このような市販のベクターは、例えばpKK223
−3(Pharmacia Fine Chemicals、ウプサラ、スウ
ェーデン)およびGEM1(Promega Biotec,マディ
ソン、ウイスコンシン州、米国)を包含する。これらの
pBR322「主鎖」セクションを、適当なプロモータ
ーおよび発現させる構造配列と合す。
【0041】適当な宿主株の形質転換および宿主株の至
適細胞濃度への増殖後、選択されたプロモーターを適当
な手段(例えば、温度シフトまたは化学誘発因子)によ
り誘発させ、細胞をさらなる期間培養する。細胞を典型
的には遠心分離により収穫し、物理的または化学的手段
により破砕し、得られた粗抽出物をさらに精製する。蛋
白質の発現に用いた微生物細胞は、凍結−解凍サイク
ル、超音波処理、機械的破砕、または細胞溶解剤を含む
いずれか都合のよい方法で破砕することができ、このよ
うな方法は当業者には周知である。
【0042】種々の哺乳動物細胞培養系はまた、発現に
も用いることができる。哺乳動物発現系の例は、Gluzm
anら、Cell 23:175(1981)に記載されている
サル腎臓線維芽細胞のCOS−6系統を包含する。適合
性ベクターの発現能を有する他の細胞系は、例えば、C
127、3T3、CHO、HeLa、ヒト腎臓293お
よびBHK細胞系を包含する。さらには、浮遊系の細胞
株であるSP2/0等のミエローマも用いることが出来る。
【0043】哺乳動物発現ベクターは、複製起点、適当
なプロモーターおよびエンハンサー、ならびに必要なリ
ボソーム結合部位、ポリアデニル化部位、スプライスド
ナーおよびアクセプター部位、転写終止配列、および発
現に必要な5’フランキング非転写配列を含む。あるい
は、SV40スプライス部位、およびSV40ポリアデ
ニル部位由来のDNA配列は、これらのタイプの所望の
非形質転換転写遺伝子エレメントについて用いられる。
これらの一例として、CAG系の発現ベクター(H. Niwa e
t al., Gene, 108, 193-199, (1991))などが挙げられ
る。
【0044】また、当該酵素の遺伝子配列を基に通常の
方法により、プローブやプライマーあるいはアンチセン
ス(アンチセンス技術は、アンチセンスDNAまたはR
NAにより、あるいは三重らせんの形成により、遺伝子
発現を制御するのに用いることができる。アンチセンス
技術は、例えば、Okano,J.、Neurochem.、56:5
60(1991);OLIGODEOXYNUCLEOTIDES AS ANTISEN
SE INHIBITORS OF GENE EXPRESSION,CRC Press,
BocaRaton,FL(1988)に記載されている。三
重らせんの形成は、例えば、Leeら、Nucleic Acids
Research 6:3073(1979);Cooneyら、Sc
ience 241:456(1988);およびDervan
ら、Science 251:1360(1991)において
考察されている。方法はポリヌクレオチドの相補DNA
またはRNAに対する結合に基づく。)をデザインする
ことによって、遺伝子診断あるいは遺伝子治療が可能と
なる。
【0045】例えば患者からの細胞をex vivoでポリペ
プチドをコードするDNAまたはRNAなどのポリヌク
レオチドで遺伝子操作し、その遺伝子操作をした細胞を
次にポリペプチドで処置すべき患者に提供する。例え
ば、細胞を本発明のポリペプチドをコードするRNAを
含有するレトロウイルスプラスミドベクターを用いてex
vivoで遺伝子操作できる。このような方法は当業界で周
知であり、本発明におけるその使用は本明細書の記載か
ら明らかである。同様に、in vivoでのポリペプチドの
発現に関して、当業界で公知の手順により細胞をin vit
roで操作する。例えば、本発明のポリヌクレオチドを前
記のように複製欠陥レトロウイルスベクターにおける発
現用に操作する。ついで、レトロウイルス発現構築物を
単離し、パッケージング細胞中に導入し、そのパッケー
ジング細胞が対照となる遺伝子を含有する感染性ウイル
ス粒子を産生するように、本発明のポリペプチドをコー
ドするRNAを含有するレトロウイルスプラスミドベク
ターで形質導入する。これらのプロデューサー細胞を、
in vitroにて細胞を操作し、in vivoにてポリペプチド
を発現させるために患者に投与する。このような方法に
よるこれらおよび他の本発明のポリペプチドの投与法は
本発明の教示により当業者には明らかである。
【0046】前記したレトロウイルスプラスミドベクタ
ーが由来するレトロウイルスは、例えば、モロニーネズ
ミ白血病ウイルス、脾臓壊死ウイルス、ラウス肉腫ウイ
ルス、ハーベイ肉腫ウイルス、ニワトリ白血症ウイル
ス、テナガザル白血病ウイルス、ヒト免疫不全ウイル
ス、骨髄増殖性肉腫ウイルス、および乳房腫瘍ウイルス
を包含するが、これに限定されない。このようなベクタ
ーはポリペプチドの発現に関して1またはそれ以上のプ
ロモーターを含む。用いられる適当なプロモーターは、
レトロウイルスLTR;SV40プロモーター;および
Millerら、Biotechniques 7:980−990(19
89)に記載されているCMVプロモーター、または他
のプロモーター(例えば、ヒストン、RNAポリメラー
ゼIIIおよびβ−アクチンプロモーターを包含するが
これに限定されない真核細胞プロモーターなどの細胞プ
ロモーター)を包含するが、これに限定されない。用い
られる他のウイルスプロモーターは、アデノウイルスプ
ロモーター、チミジンキナーゼ(TK)プロモーター、
およびB19パルボウイルスプロモーターを包含する
が、これに限定されない。適当なプロモーターの選択
は、本明細書に含まれる教示から当業者には自明であ
る。
【0047】本発明のポリペプチドをコードする核酸配
列は、適当なプロモーターの制御下にある。用いること
のできる適当なプロモーターは、アデノウイルスメジャ
ーレイトプロモーターなどのアデノウイルスプロモータ
ー;またはCMVプロモーターなどのヘテロローガスプ
ロモーター;呼吸器合胞体ウイルス(「RSV」)プロ
モーター;MMTプロモーター、メチタルチオネインプ
ロモーターなどの誘導プロモーター;熱ショックプロモ
ータ;アルブミンプロモーター;ApoAIプロモータ
ー;ヒトグロビンプロモーター;単純ヘルペスチミジン
キナーゼプロモーターなどのウイルスチミジンキナーゼ
プロモーター;レトロ ウイルスLTR(前記修飾レト
ロウイルスLTRを包含する);β−アクチンプロモー
ター;およびヒト成長ホルモンプロモーターを包含する
が、これに限定されない。プロモーターはまたポリペプ
チドをコードする遺伝子を制御するネイティブプロモー
ターであってもよい。レトロウイルスプラスミドベクタ
ーをパッケージング細胞系の形質導入に用いて、プロデ
ューサー細胞系を形成する。
【0048】トランスフェクションされるパッケージン
グ細胞の例は、PE501、PA317、Y-2、Y-A
M、PA12、T19-14X、VT-19-17-H2、
YCRE、YCRIP、GP+E−86、GP+envA
m12、およびMiller、Human Gene Therapy 1:
5−14頁(1990)に記載されているDAN細胞系
を包含するが、これに限定されない。
【0049】ベクターはパッケージング細胞中に当業界
で公知の手段により形質導入される。このような手段
は、エレクトポレーション、リポソームの使用、および
CaPO4沈降を包含するが、これに限定されない。別法
として、レトロウイルスプラスミドベクターをリポソー
ム中に封入するか、または脂質と結合させ、宿主に投与
する。プロデューサー細胞系は、ポリペプチドをコード
する核酸配列(複数)を含む感染性レトロウイルスベク
ター粒子を生成する。このようなレトロウイルスベクタ
ー粒子を用いて、真核細胞をin vitroまたはin vivoの
いずれかで形質導入する。
【0050】形質導入された真核細胞はポリペプチドを
コードする核酸配列を発現する。形質導入されてもよい
真核細胞は胚幹細胞、胎生期癌細胞、ならびに造血幹細
胞、肝細胞、線維芽細胞、筋芽細胞、ケラチノサイト、
内皮細胞、および気管支上皮細胞を包含するが、これに
限定されない。
【0051】本発明の蛋白質分解酵素、該蛋白質分解酵
素に対する抗体、該分解酵素のアンタゴニスト、阻害
剤、アゴニスト、活性調節剤等を生理食塩水、緩衝液等
で希釈して製剤化し、医薬組成物を得ることができる。
製剤のpHは体液のpHに近い弱酸性〜中性域のpHが
望ましく、その下限は5.0〜6.4が望ましく、その上限は
pH6.4〜7.4が望ましい。また、凍結乾燥形態等の長期
間保存可能な形態で提供することもでき、この場合使用
時に水、生理食塩水、緩衝液等で所望の濃度になるよう
に溶解して使用することができる。本発明の製剤は、通
常医薬品に用いられる薬理的に許容される添加剤(例え
ば担体、賦形剤、希釈剤等)、安定化剤または製薬上必
要な成分を含有していてもよい。安定化剤としては、グ
ルコース等の単糖類、サッカロース、マルトース等の二
糖類、マンニトール、ソルビトール等の糖アルコール、
塩化ナトリウム等の中性塩、グリシン等のアミノ酸、ポ
リエチレングリコール、ポリオキシエチレン−ポリオキ
シプロピレン共重合体(プルロニック)、ポリオキシエ
チレンソルビタン脂肪酸エステル(トゥイーン)等の非
イオン系界面活性剤、ヒトアルブミン等が例示され、1
〜10w/v%程度が添加されていることが好ましい。
本発明の医薬組成物は、静脈内注射、筋肉内注射、皮下
注射等により有効量で投与することができ、1回または
数回に分けて投与される。その投与量は、症状、年齢、
体重などによって異なるが、1回あたり、0.001mg〜100
mgが好ましい。また、本発明の蛋白質分解酵素をコード
するDNAのセンスDNAまたはアンチセンスDNAも同様にし
て製剤化し、医薬組成物を得ることができる。
【0052】さらに、本発明は、本願発明のペプチド、
蛋白質、DNAを投与して、心筋梗塞、脳梗塞における血
小板血栓抑制、動脈硬化症の抑制、PTCAにおける再
狭窄や再塞栓・梗塞の防止、PTCRにおける再塞栓の
防止、HUSやO−157が原因となる血小板血栓の予
防の方法をも含む。さらに、本発明は、心筋梗塞、脳梗
塞における血小板血栓抑制、動脈硬化症の抑制、PTC
Aにおける再狭窄や再塞栓・梗塞の防止、PTCRにお
ける再塞栓の防止、HUSやO−157が原因となる血
小板血栓の予防のための医薬の製造における本願発明の
ペプチド、蛋白質、DNAの使用をも含む。
【0053】さらに、本願発明のペプチドまたは蛋白質
をリード物質としてアミノ酸を改変することにより、本
願発明酵素の活性を変化させた分子を調製することが可
能である。一例としてメタロプロテアーゼドメイン内の
活性中心近傍のアミノ酸残基を他のアミノ酸に置換する
等して不活性化された変異体を作製するなどして得られ
るアンタゴニストの作製あるいは分子認識部位と触媒部
位を分離あるいはその一部あるいは両方を変化させるこ
とにより得られる変異体分子などが例示される。
【0054】また、本願発明中に述べられているvWF
切断活性の評価系を利用することによりアンタゴニスト
・アゴニストの作出が可能である。例えば、有効なアン
タゴニストとは、小さな有機分子、ペプチド、ポリペプ
チド等で本発明のポリペプチドと結合し、これによりそ
の活性を抑制または消失させるもので抗体を包含する。
【0055】
【発明の効果】本願発明によりもたらされた知見によ
り、血栓性血小板減少性紫斑病等の当該酵素の欠損に起
因する疾病患者への補充療法の可能性が拓かれる。遺伝
子のクローニング及び、血清、血漿からの効率的な精製
法の確立が可能となる。とりわけ今回の情報により、得
られた塩基配列をもとに、遺伝子組み換え化が可能とな
り、従来困難であった本願発明の酵素の安定的な生産、
供給が可能となり、TTPの患者への当該酵素の補充療
法、あるいは新規な抗血小板薬として心筋梗塞、脳梗塞
における血小板血栓抑制、動脈硬化症の抑制、PTCA
における再狭窄や再塞栓・梗塞の防止、PTCRにおけ
る再塞栓の防止、HUSやO−157が原因となる血小
板血栓の予防への応用が可能となる。また、本酵素をコ
ードする遺伝子あるいは当該酵素に対する抗体を用いた
診断及び治療が可能となる。
【0056】以下に、実施例に従って本願発明を詳説す
るが、本願発明はこれら実施例に何等限定されるもので
はない。
【実施例】実施例1 (vWFの調製)vWFは、セファクリルS-500HR(アマシ
ャムファルマシア)の2.6×90 cmカラムにより、プラズ
マクリオ画分2gを20 mLのバッファー(0.01% Tween-80 /
50 mMTris-HCl / 100mM NaCl pH 7.4)に溶解したもの
をゲル濾過することにより調製した。流速は2 mL / mi
n.でフラクションは6 mLづつ回収した。 vWFは、ペ
ルオキシダーゼ標識ウサギ抗ヒトvWF抗体(DAKO社製)
を用いたウェスタンブロット法により確認し、高分子量
vWF画分をプールした。これを後述するアガロース電
気泳動法を利用したマルチマー解析に供した。本来、v
WFは図1に示されるようにvWFモノマー分子が、N
末端、C末端同士で重合し、マルチマー構造をとってお
り、vWF特異的切断酵素により図中に示されるような
限定分解を受けることが知られている。解析の結果、図
2に示されるように、精製したvWFは健常人血漿中の
それと同等程度のアガロース電気泳動上でのマルチマー
パターンを示した(図中のラダーがマルチマー構造を有
するvWFの泳動パターンで、上位の方がより重合が進
んだvWFであることを示す)。これにより、本質的に
vWFを分解する夾雑物を含まないvWFを調製するこ
とができ、この画分は後述するvWF切断活性を測定す
る際の基質として使用した。
【0057】実施例2 (vWF切断反応)vWF切断活性のアッセイは、終濃度
10mMの塩化バリウムを加えたサンプルを37℃で5分間プ
レインキュベートし、プロテアーゼの活性化を行った。
50mLのファルコンチューブにバッファー(15〜20mLの
1.5M Urea / 5mM Tris-HCl pH8.0)を入れた。次にミリ
ポア社製のメンブレンフィルター(0.025μm)を浮遊さ
せ、50μLのvWF基質溶液を加えて混合した活性化サ
ンプルを100μL添加した。37℃のインキュベーターに一
晩静置して翌日フィルターから回収した。回収したサン
プルを、以下のSDS-PAGEの項に示すvWFの切断パター
ンにより評価した。
【0058】SDS-PAGE SDS-5%ポリアクリルアミドゲルを自家調製し使用した。
vWF切断活性のアッセイ項で述べたサンプル10μL
に、SDS泳動バッファー(還元剤2-メルカプトエタノール
存在下または不在下)2μLを加え3分間煮沸したものを泳
動サンプルとした。30mAで1時間電気泳動したのち、ゲ
ルはCBB染色を利用したGel Code Blue Stain Reagent(P
IERCE社)にて染色した。活性の有無の解釈は図1に示さ
れるように還元下、非還元下での切断断片の出現及び切
れ残る残存断片の有無で評価される。より具体的には、
後述する「実施例3」の項、図3を参照されたい。
【0059】アガロース電気泳動法を利用したマルチマ
ー解析 ゲルの作製、電気泳動 375 mM Tris-HCl(pH6.8)にLow Gelling Temperature(シ
グマ TypeVII)を1.4%になるように加え電子レンジで加
熱し完全に溶解した後、0.1% SDSを加え、一旦56℃にな
るように保った。ゲル型に流し4℃で一晩冷やし固めた
(Running gel)。翌日、375 mMTris-HCl(pH6.8)にHigh G
elling Temperature(SeaKem)を0.8%になるように混じ、
電子レンジで煮沸溶解した後、一旦56℃に保った(Stack
ing gel)。前日に調製したゲルは端から10cmを残し
切り取った。切り取ったところに上述のゲルを流し込
み、4℃で3時間以上流し固めた。vWF切断活性のアッ
セイ項で述べたサンプルに、パイロニンYを加え、非還
元、煮沸をせずに調製後、SDS-PAGEバッファーを用いて
10mA、24時間以上泳動した。
【0060】ウェスタンブロット 電気泳動後、ゲルを転写緩衝液(0.005%SDS、50mMリン酸
緩衝液pH7.4)に10分間浸し、転写装置を用いて4℃、0.5
Aで一晩ニトロセルロース膜に転写した。ブロット液(5%
スキムミルク、PBS)でブロッキングを30分した後、ブロ
ット液で1000倍希釈したペルオキシダーゼ標識ウサギ抗
ヒトvWF抗体(DAKO社製)と6時間以上反応させた。こ
の後ブロット液にて3回、PBSにて1回洗浄してペルオキ
シダーゼの基質反応液であるコニカイムノステインHRP-
1000(コニカ社製)で発色を行った。本アッセイを用いて
確認された精製vWFは、分解を受けたものではなく十
分、本願発明中で利用された基質として用いるに値する
ことが確認された(図2)。
【0061】実施例3 (vWF切断酵素の調製)プラズマをコーンのエタノール
分画に供し、出発プラズマ、クリオプレシピテート、フ
ラクションI(FI)上清及びペーストの4つの画分につ
いて、タンパク量を等しくした場合のvWF切断活性の
高いもの(比活性の高いもの)を選定した。図3に示すご
とく本酵素活性はFIペーストで最も活性が高かった。こ
の切断断片のN末端配列解析を行ったところ、クリオ、
FIペースト由来の活性本体は842Tyr-843Metのペプチド
結合を切断することが判った。そこで、これ以降FIペー
ストを主な精製の出発原料とした。
【0062】FIペーストの可溶化 FIペーストは12gずつに小分けし凍結保存した。使用す
る前日に4℃に出して融解させ、翌日、可溶化バッファ
ー(0.05% アザイド、50 mM Tris-HCl pH7.4、100 mM Na
Cl)を10 mg/mLになるよう、120mL加え37℃で2時間攪拌
した。10000rpmで10分間遠心した後、上清を回収し、プ
レフィルター、5.0μmフィルター、0.8μmフィルターの
順でろ過したものを可溶化サンプルとした。図4に可溶
化サンプルのSDS-PAGEを示す。
【0063】vWF切断酵素のゲルろ過クロマトグラフ
ィー 可溶化したF1ペーストを、セファクリルS-300HR(アマ
シャムファルマシア)の5×90cmカラムにかけ、1回目の
ゲルろ過を行った。可溶化バッファーと同じ0.05% Azai
d、50 mM Tris-HCl pH7.4、100 mM NaCl(以後溶出バッ
ファー)を用い、流速は5 mL/min.、分取はサンプルアプ
ライ後600mL目から、フラクションは10 mLづつ回収し
た。フラクションはvWF切断反応後、SDS−PAGEで活性を
確認した。酵素活性のあったフラクションをプールし、
これに、終濃度33%飽和となるよう飽和硫安を少量ずつ
滴下した。これをさらに一晩4℃に静置した。翌日10000
rpm、10分遠心し、目的の活性画分を沈殿として回収し
た。以上の可溶化・ゲルろ過・硫安沈澱の操作を5バッ
チ行い、−20℃で凍結保存した。
【0064】1回目のゲルろ過によって得られた硫安沈
殿物2〜3バッチ分を、溶出バッファー50mLに溶解し1回
目と同様セファクリルS-300HRカラム(5×90cm)に通液
し、2回目のゲルろ過を行った。溶出バッファー、条
件、操作等については1回目と同様である。フラクショ
ンはvWF切断反応後、SDS−PAGEで活性を確認した。
活性のあったフラクションをプールし、硫安沈澱を同様
に行った。この操作を2回実施した。
【0065】2回目のゲルろ過によって得られた硫安沈
殿物2回分を、溶出バッファー50mLに溶解し、1、2回
目と同様、セファクリルS-300HRカラム(5×90cm)にか
け、3回目のゲルろ過を実施した。溶出バッファー、条
件、操作等については1、2回目と同様である。得られ
たフラクションは、vWF切断反応後、SDS−PAGEで活
性を確認したのちプールした。図5にフラクションのSD
S-PAGE及びvWF切断活性のSDS-PAGEを示す。ゲル濾過
のパターンと活性のデータよりフラクション37番から
47番に渡って本酵素が溶出されてきていることが確認
できた。この溶出位置は、別途行った高分子量ゲル濾過
マーカー(アマシャムファルマシア)の溶出実験から、
分子量として推定150kDa〜300kDaに相当すること
が示唆された。この段階では、まだかなりの夾雑物が大
量に存在していることが明らかとなった。
【0066】DEAE陰イオン交換クロマトグラフィー ゲルろ過を3回かけて得られたプールフラクションを、
50mM Tris-HCl、50mMNaCl pH7.1バッファーで一晩透析
した。透析後、ハイトラップDEAEファストフローセファ
ロースカラム(ファルマシア)5mLを用い、陰イオン交換
クロマトグラフィーを行い、さらなる精製及び濃縮を行
った。平衡化及び洗浄バッファーは50mMTris-HCl pH7.1
にて行い、溶出は0.25MのNaCl で溶出させた。流速は5
mL/min、フラクションは5mLずつ5本回収しプールし
た。図6に溶出フラクションのSDS-PAGE及びvWF切断
活性のSDS-PAGEを示す。活性の測定のSDS-PAGEから、か
なり効率よく溶出画分にvWFを切断する活性を有する
本酵素が濃縮されていることが明らかとなった。
【0067】SDS-PAGEを利用した分画 DEAE陰イオン交換クロマトグラフィーにより精製・濃縮
されたサンプル5 mlをさらに、分子量カット10,00
0Daのセントリコン(アミコン社製)にて0.5mLま
で濃縮し、SDS-PAGEを利用したアトー社製バイオ・フォ
レーシスIIIにより、本酵素の単離を行った。Laemmli法
(Nature, vol. 227, 680-685 : 1970)に従い、泳動槽用
緩衝液を調製し、ポリアクリルアミド8%ゲルにて展開
し、泳動画分を回収した。図7に回収画分のSDS-PAGEを
示す。回収バッファーは50 mMTris-HCl、10%グリセロ
ール pH 8.8を用いた。図7からも理解されるように、
本願発明の当該工程は高分離能を有する分離法であるこ
とが判る。図8に活性の結果の電気泳動及び活性画分の
SDS-PAGEを示す。本酵素はSDS-PAGE後も活性を有する分
子として回収することができ、この段階で、比活性とし
てプラズマ中での本酵素活性を1とした場合、プラズマ
の平均的なタンパク含量(60mg/ml)から推定して、3
0,000〜100,000倍の精製度に達したことが推
定された。
【0068】実施例4 (部分アミノ酸配列の決定)単離した本酵素の部分アミ
ノ酸配列を決定した。バイオフォレシスにて単離された
本酵素を常法により、SDS-PAGE後、PVDF膜へトランスフ
ァーし、風乾したのち、PEアプライドバイオシステムズ
社のオートプロテインシークエンサー492にて、解析を
行った。その結果、上記条件で単離した本願発明のvW
F切断酵素の一態様は、分子量がSDS-PAGEにおいて還元
下105〜160kDaの範囲にあるポリペプチド鎖よりなり、
部分配列としてLeu-Leu-Val-Ala-Valを、好適にはAla-A
la-Gly-Gly-Ile-Leu-His-Leu-Glu-Leu-Leu-Val-Ala-Val
を有することが明らかとなった。
【0069】バイオインフォーマティクスを利用した単
離酵素の推定 現在は、バイオインフォーマティクスの技法を用いるこ
とで、今まで蓄積されたデータベースとの照合により、
実質的な遺伝子のクローニングなしに当該ポリペプチド
をコードする全塩基配列の推定が可能となっている(BI
OINFORMATICS:A Practical Guide to the Analysis of
Genes and Proteins edited by Andreas D. Baxevanis
and B. F. Francis Ouellette)。上述した手法により
決定されたアミノ酸部分配列(Ala-Ala-Gly-Gly-Ile-Le
u-His-Leu-Glu-Leu-Leu-Val-Ala-Val)を基に、プログ
ラムtblastnによりデータベースサーチを行った結果、
ゲノムでのデータベースサーチにより、本酵素をコード
していると推察される染色体クローン(AL158826)が同
定され、さらに、EST(Expressed Sequence Tag)とし
て目的酵素の一部分及び上記ゲノムによりコードされる
ポリペプチドの一部と推察されるクローン(AI346761及
びAJ011374)を同定した。これをもとにvWF切断酵素
としての活性部位として配列番号3もしくは7に示すア
ミノ酸配列を推定した。
【0070】実施例5 (遺伝子の同定)以下、全ての合成プライマーはグライ
ナージャパン(株)に依頼した。さらに、遺伝子組換え
に関する試薬類は、特に断りのない限り、TAKARA、TOYO
BOおよびNew England Biolabs社製を用いた。
【0071】ノザンブロットプローブ用遺伝子断片の調
製 センスプライマー(配列番号9)及びアンチセンスプラ
イマー(配列番号10)を作製し、正常ヒト組織由来c
DNAの混合物であるUniversal QUICK-CloneT M cDNA
(CLONTECH社製)を鋳型として、TAKARA LA Taq with G
C rich bufferにてPCR反応し、プライマーで挟まれ
た部分の遺伝子を増幅し、その断片をInvitrogen社製TO
PO TA cloningTMキットにてクローニングした。数個の
クローンから配列番号6記載の塩基配列を有するものを
単離した。このクローン化DNAからEcoRI消化により
ベクター部分を取り除き、アガロース電気泳動により分
離・精製し、ノザンブロットのプローブ調製用の鋳型と
した。
【0072】ノザンブロット 上述により調製された遺伝子断片を鋳型として、[α-
32P]dCTP(Amershampharmacia 社製)およびBcaBEST
TMラベリングキット(TAKARA社製)により、放射性プロ
ーブを調製した。そして、Human 12-lane Mutiple Tiss
ue Northern BlotsTM(CLONTECH社製)フィルターを用
いて、Molecular Cloning 2nd editionpp 9.52-9.55記
載の方法により、ハイブリダイズし、オートラジオグラ
フィーにより検出した。図10に示されるように、本酵
素をコードするmRNAの発現部位は、主に肝臓である
ことが確認された。そして、そのmRNAのサイズは、
4.4キロベース以上に及ぶことが明らかとなった。
【0073】本酵素コード遺伝子の単離・同定 ノザンブロットの結果、mRNAの主要発現部位は肝臓
であることが確認されたため、正常ヒト肝臓由来のPoly
A+ RNA及びMarathon-ReadyTM cDNA (CLONTECH社製)
を用いて、RACE法により本酵素遺伝子の単離・同定
を行った。より具体的には、5’RACEとして正常ヒト肝
臓由来Marathon-ReadyTM cDNA を用いて、製品マニュア
ルに基づき、添付のAP-1プライマーと図11に示すGene
Specific Primer (GSP)プライマー群から最上流のプラ
イマー1位のものを除き、アンチセンスプライマーを任
意に選択し(配列番号11〜13)、1st PCRを行い、
さらにその内側のAP-2と図11中の1st PCRで用いたプ
ライマーより内側の位置のアンチセンスプライマーにて
nested PCR(2nd PCR)を行ったのち、TA cloningを実
施した。出現したコロニーから常法により遺伝子を調製
し(Molecular Cloning 2nd edition pp 1.25-1.2
8)、自動DNAシークエンサーにて核酸配列の解読を
行った。シークエンシングに用いたプライマーは、PC
Rに用いたプライマーあるいはそれより内部のプライマ
ーを用いて行った。さらには、逐次解読後の配列を基に
設定した。
【0074】3’RACEは、正常ヒト肝臓由来のPoly A+
RNAから、3'-Full RACE Core Set(TAKARA社製)を用い
て、添付マニュアルに基づき、添付のオリゴdTプライマ
ーにて逆転写反応を行った後、図11中のプライマー2
の位置のセンスプライマー(配列番号14)と添付のオ
リゴdTプライマーでのPCRで増幅したバンドをアガロ
ース電気泳動により分離、そして抽出後TA cloningを行
った。出現したコロニーから遺伝子を調製し、自動DN
Aシークエンサーにて核酸配列の解読を行った。シーク
エンシングに用いたプライマーは、逐次解読後の配列を
基に設定した。
【0075】実施例6 (全長cDNAを含むベクターの調製1)当該蛋白質をコー
ドしているcDNAを例えば制限酵素サイトとしてXhoIを付
加し、開始コドンを含むセンスプライマー1(配列番号
22)及びSalIサイトを付加した終結コドンを含むアン
チセンスプライマー2(配列番号23)を用いて(図1
2参照)、前出の正常ヒト肝臓由来Marathon-ReadyTM c
DNAを鋳型として、TAKARA LA Taq with GC rich buffe
rにて一段階PCRの後、前出のTA cloningを行い、その全
長を自動DNAシークエンサーにて確認した。
【0076】実施例7 (全長cDNAを含むベクターの調製2)当該蛋白質をコー
ドしているcDNA(配列番号15)の内部配列中で1点の
みで切断する制限酵素サイトAccI及びAvrIIを見い出し
た。これを利用して、図12に示すように、全長cDNAを
3つのフラグメントに分割し、それぞれにセンスプライ
マー1(配列番号22)及びアンチセンスプライマー3
(配列番号24)で挟まれたフラグメント(フラグメン
ト1)、センスプライマー4(配列番号25)及びアン
チセンスプライマー5(配列番号26)で挟まれたフラ
グメント(フラグメント2)そして、センスプライマー
6(配列番号27)及びアンチセンスプライマー2(配
列番号23)で挟まれたフラグメント(フラグメント
3)を設定し、前出の正常ヒト肝臓由来Marathon-Ready
TM cDNAを鋳型として、TAKARA LA Taq with GC rich b
ufferにてそれぞれPCRの後、前出のTA cloningを行い、
その全長を自動DNAシークエンサーにて確認した。さら
に、前出のTAクローニングキットに含まれるpCR2.1ベク
ターをセルフライゲーションしたものを、XhoI/HindIII
で切断後、XhoI/AccI/AvrII/HindIIIを含むリンカー
(配列番号28及び29に示す合成DNAをアニールさせ
たもの)をライゲーションし、上述の3つのフラグメン
トを逐次、常法によりライゲーションしてこれらのフラ
グメントを結合して全域を含むcDNAを調製した(図13
参照)。
【0077】実施例8 (全長cDNAを含む発現ベクターの調製:動物細胞宿主
系)実施例6または7で得られたDNAをXhoI/SalIにて制
限酵素消化し、例えばpCAGベクター(Niwa, H., et al.
Gene vol.108, 193-199)中のSalIサイトにライゲーシ
ョンし、その挿入向きと全長配列を自動DNAシークエン
サーにて確認した。
【0078】実施例9 (全長cDNAを含む発現ベクターの動物細胞への形質転
換)実施例8で調製した動物細胞用発現ベクターを293
細胞(ヒト胎児腎細胞株)、Hela細胞及びHepG2細胞を
用いて、以下の手順でトランスフェクトした。まず初め
にトランスフェクションの24時間前に1−3×105個/3
5mm dishで細胞を捲き、その翌日に上記発現ベクターを
1μg当たり2μlのPolyamine TransfectionReagentであ
るTransIT(TAKARA社製)をとり、Opti-MEM等の無血清
培地100μlに添加して、試薬添付文書に従い、DNAとの
コンプレックスを調製後、準備しておいた前記各種細胞
へ滴下し、2−8時間インキュベーションし、その後、
培地交換し、さらにその3日後G418添加選択培地に交換
した。これからさらに3日毎に培地交換を行い、安定発
現株を作出した。一例として、C末端にFLAGエピトープ
タグを含むものの一時発現を図14に示す。検出は抗FLAG
-M2抗体(コダック社製)を用いたウエスタンブロット
法により、抗マウスIg-アルカリフォスファターゼ酵素
標識抗体系で染色して行った。この実施例に示すcDNAを
用いた組換え発現体は、還元下250kDa程度の分子サイズ
を示した。そして、この分子サイズは、ヒト健常人血漿
中にも存在することが認められた(後述する実施例14
の図18)。また、この酵素は、遺伝子のクローニングの
際に認められたalternative splicing産物(配列番号16
〜21記載)などの存在、糖鎖付加などの翻訳後修飾の違
い、あるいは精製工程中での分解に起因すると思われる
複数の分子種がヒト血漿中では存在することが確認され
ている(後述する実施例14項の図17及びGerritsenら、B
lood vol.98, 1654-1661 (2001) 記載 )。次に、組み
換え体のvWF切断活性を実施例2項に示した方法で確認
した(図15)。これらの結果、本願発明のヒトプラズマ
由来酵素及び遺伝子組換え産物は、同じvWFの切断活性
を示すことが確認された。
【0079】実施例10 (部分cDNAを含む発現ベクターの調製:大腸菌宿主系)
一例として当該蛋白質のメタロプロテアーゼドメイン領
域をコードしている部分cDNAを、例えば制限酵素サイト
としてNcoIを付加し、開始コドンを含むセンスプライマ
ー(配列番号30)及びHindIIIサイトを付加した終結
コドンを含むアンチセンスプライマー(配列番号31)
を用いて、前出の正常ヒト肝臓由来Marathon-ReadyTM c
DNAを鋳型として、もしくは実施例6または7で得られ
たcDNAを鋳型として、TAKARA LA Taq with GC rich bu
fferにてPCRの後、NcoI/HindIIIにて消化、大腸菌発現
用ベクターである例えば、pUT1 (Soejima et al., J. B
iochem. (Tokyo) vol.130, 269-277 (2001))のNcoI/Hi
ndIII消化物とライゲーションし、常法により、大腸菌
コンピテントセルJM109にトランスフォーメーションし
た。形成したコロニー群から数クローンをとり、それら
から遺伝子を調製したのち、そのプラスミドベクターの
インサート部位の核酸配列が配列番号表32と同等ある
いは本質的に配列番号33で表されるポリペプチドをコ
ードしている遺伝子であることを自動DNAシークエンサ
ーにて確認した。
【0080】実施例11 (部分cDNAを含む発現ベクターの大腸菌菌体内発現)実
施例10により構築した発現ベクターを導入した宿主大
腸菌を50μg/mlのアンピシリンを含むLB培地200ml中に3
0℃一晩前培養し、それを8リットルのLB培地を含むファ
ーメンターに播種し、600nmの濁度が0.2-0.5になるまで
30℃にて培養した。その後、終濃度1mMとなるようにイ
ソプロピル-1-チオ-β-D-ガラクトピラノシドを添加し
て、さらに一晩培養し、当該蛋白質のメタロプロテアー
ゼドメイン領域の発現を誘導した。そして、培養した大
腸菌を遠心機にて(30分4℃)集菌した。続いて、集菌
した大腸菌ペレットを蒸留水にて再懸濁し、終濃度0.6m
g/mlのリゾチームを添加して、室温30分撹拌後、一晩4
℃に静置し、菌体を破砕した。そして、さらに超音波処
理後、遠心機にて(20分4℃)遠心分離し、ペレットを
回収し、これを50mMトリス10mM EDTA 1% トライトンX-1
00 pH8.0にて再懸濁した。この遠心分離、超音波処理、
再懸濁操作を数回繰り返したのち、ペレットを蒸留水に
再懸濁し、同様に遠心分離、超音波処理、再懸濁操作を
数回繰り返し、インクルージョンボディーを回収した。
このインクルージョンボディは、抗体作製の際の抗原と
して用いられた。
【0081】実施例12 (他動物種ホモログ遺伝子の単離)配列番号15記載の
核酸配列をプローブとして、GenomeNet WWW server(htt
p://www.genome.ad.jp/)においてプログラムBLASTNによ
り、ホモロジーサーチを行った結果、マウス染色体10
番にマップされる染色体クローン AC091762及びAC09000
8が得られた。この配列を基に、配列番号34に示す本
酵素のマウスホモログを推定した。この配列から新たに
プライマーを設計し、前述したヒトvWF切断酵素コー
ド遺伝子の単離同定で行った手法により、ノザンブロッ
ト解析を行い、ヒトと同様、肝臓で特異的に発現してい
ることを確認した。さらに、正常マウス肝臓由来のPoly
A+ RNA及びMarathon-ReadyTM cDNA (CLONTECH社製)
を用いて、ヒト同様、RACE法により本酵素遺伝子の
単離・同定を行った。その結果、配列番号35、36に
示す本酵素のマウスホモログの遺伝子配列が決定され
た。決定されたこのマウスホモログ部分配列を基に、前
出のマウス染色体10番の5’側のExon/Intron構造を
決定し、これを基に常法(Gene Targeting: A Practial
Approach First Edition Edited by A.L.Joyner、Ter
atocarcinomas and embryonic stem cell a practical
approachなど)に従い、ノックアウト(ノックイン)
マウス作出用のターゲッティングベクター作製が可能と
なり,遺伝子変異マウスの作製が可能となった。また、
さらには、本蛋白質を常法により組換え発現させること
も可能である。
【0082】実施例13 (抗体の作製及びその抗体を用いた本酵素の検出系の構
築)マウス・ウサギに常法により(Current Protocols
in Molecular Biology:Chapter 11 immunology、Antib
ody Engineering: A PRACTICAL APPROACH Editedby J.M
cCAFFERTY et al.あるいはANTIBODY ENGINEERING secon
d edition Edited by Carl A. K. BORREBAECKなど)、
ヒトプラズマより部分精製した抗原タンパク,あるいは
その一部のアミノ酸配列を有する合成ペプチド(一つの
例として、本酵素のアイソフォームの一つのC末端領域
のペプチド配列(配列番号37)Phe-Ser-Pro-Ala-Pro-
Gln-Pro-Arg-Arg-Leu-Leu-Pro-Gly-Pro-Gln-Glu-Asn-Se
r-Val-Gln-Ser-Ser)を場合によっては至適なキャリア
ー物質(KLH等)に結合させたもの(KLHを付加しやすく
するためにCysをN末端あるいはC末端などに付加したも
の)、上述の遺伝子組換えタンパク質またはそれをコー
ドする遺伝子を導入した発現ベクターを投与し、モノク
ローナル抗体発現ハイブリドーマの確立及びポリクロー
ナル抗体(抗血清)の作出を行った。
【0083】続いて、上記種々の方法により調製された
抗体を用いて、常法により(Current Protocols in Mol
ecular Biology: Chapter 10 analysis of protein
s、Chapter 11 immunologyなど)、本酵素のウエスタン
ブロット法による検出を行った。具体的には、遺伝子組
み換え体の発現の確認として、実施例9に示す手順で得
られた組み換え体発現293細胞の培養上清の非還元状態
でのSDS-PAGEを行った後、PVDF膜への転写後、マウス、
ウサギ等の抗血清により確認した(図16)。その結果、
分子サイズとして160〜250kDaの範囲に本酵素由
来と想定されるバンドが検出された。そして、次に、原
料血漿等と組換え体での本酵素の検出を非還元下で行っ
たところ、105〜160kDaあるいは160〜250k
Daにバンドが確認された(図17)。また、組換え蛋白質
を免疫して確立したモノクローナル抗体(Clone No. CP
HSWH-10)においても同様な組換え体由来のバンドが検
出できた。さらに、本酵素のアイソフォームの一つのC
末端領域のペプチド配列(配列番号37)Phe-Ser-Pro-
Ala-Pro-Gln-Pro-Arg-Arg-Leu-Leu-Pro-Gly-Pro-Gln-Gl
u-Asn-Ser-Val-Gln-Ser-SerをKLHに結合したものを免疫
原として得られたペプチド抗体により、還元条件下、健
常人血漿、TTP患者血漿あるいは、組み換え体培養上清
中から本酵素の検出を行ったところ、一部のTTP患者血
漿では明瞭ではないが、概ね250kDa程度の本酵素由
来のシグナルと想定されるバンドが確認された(図1
8)。
【0084】またさらには、得られた抗体を組み合わせ
ることで構築される酵素免疫測定法(ELISA)により、組
換えタンパク質の培養上清レベルでの濃度依存的な検量
線が作製できた(図19)。ELISAとしては以下の記
述により例示されることができる。得られたマウス抗vW
F切断酵素抗体をNunc社製Maxisorpプレートに固相化
し、vWF切断酵素一時発現293細胞の培養上清を1/1、1/
2、 1/4希釈したもの(0として、Mock上清)を100μl
/ウェルで反応させ、例えば37℃1時間後、0.05%Twee
n20/TBSでプレートを洗浄後、ウサギ抗vWF切断酵素抗体
を例えば100倍希釈濃度で100μl/ウェルで反応させ、
例えば37℃1時間後、0.05%Tween20/TBSでプレートを
洗浄後、さらにパーオキシダーゼ標識抗ウサギIg抗体
(BioRad社製)を例えば1000倍希釈濃度で100μl/ウ
ェルで反応させ、例えば37℃1時間後、0.05%Tween20/
TBSでプレートを洗浄後、発色基質TMBZを用いて一定時
間の発色反応後、停止液として1 M硫酸にて反応を停止
させて、450nmの吸光度を測定する。これを応用するこ
とで、様々な検体での本酵素の定量が可能となった。
【0085】実施例14 (抗体を用いた本酵素の精製)得られた抗体を適当な固
定化担体に結合させることでアフィニティーカラムを作
製し、当該酵素の精製に供した。アフィニティーカラム
の調製には、チッソ社製NHS活性化セルロファインを用
いて、添付文書に従い抗体を固定化した。これにより調
製した約1mlの膨潤担体を用いて、実施例9に示す当
該酵素の293細胞を宿主とした遺伝子組換え体の発現
培養上清をアプライしたのち、50mM Tris-HCl 0.1M NaC
l pH7.5(以下TBS)でカラムを洗浄後、尿素を含んだ0.
1MグリシンpH3バッファーで溶出した。溶出された画分
を1M Tris-HCl pH8.5にて中和し、TBSに対して透析し
た。得られた精製酵素のSDS-PAGEを図20に示す。ま
た、得られた精製画分にvWFを切断する活性が存在する
ことも確認された。そして、この組換え酵素により断片
化されたvWFの切断点は、その断片のN末端アミノ酸配列
解析から842Tyr-843Metの位置であることが確認され
た。また、実施例13に示される方法により作製された
モノクローナル抗体を用いても同様に精製に供すること
が可能なクローン(Clone No. CPHSWH-7.2および10な
ど)が確立された。
【0086】続いて精製された本酵素の部分アミノ酸配
列を決定した。常法により、SDS-PAGE後、PVDF膜へトラ
ンスファーし、風乾したのち、PEアプライドバイオシス
テムズ社のオートプロテインシークエンサー492にて解
析を行った。その結果、部分N末端配列としてAla-Ala-G
ly-Gly-Ile-を有することが明らかとなった。この配列
は、遺伝子構造から推定された当該酵素の成熟体のN末
端配列に一致した。
【0087】実施例15 (抗体による本酵素活性の中和)前述の家兎ポリクロー
ナル抗体によるvWF切断酵素の中和活性を評価した。遺
伝子組換えvWF切断酵素1〜10マイクログラム/ml(ブ
ラッドフォード法にて概算)に対して、正常家兎血清、
C末端領域のペプチド配列(配列番号37)Phe-Ser-Pr
o-Ala-Pro-Gln-Pro-Arg-Arg-Leu-Leu-Pro-Gly-Pro-Gln-
Glu-Asn-Ser-Val-Gln-Ser-SerをKLHに結合したものを免
疫原として得られた家兎抗血清、および実施例7、8に
示す発現ベクターにより発現された蛋白質により免疫誘
導された抗血清のそれぞれを体積比1対1あるいは5倍希
釈した抗血清を1対1で予め37℃で1時間反応させた
後、前述した方法でvWFの切断活性を評価したところ、
図21に示すごとく蛋白質により免疫誘導された抗血清
で本酵素の阻害活性(アンタゴニスト活性)を有するも
のが調製された(メタロプロテアーゼのインヒビターで
あるEDTAをコントロールとした。)。このことは、単に
中和抗体の作製が可能であるという知見のみならず、vW
F切断酵素に対する自己抗体陽性の後天的TTP患者様のモ
デルを構築できる可能性も示唆している。
【0088】実施例16 (C末端削除改変体の構築)図22に示すストラテジー
により、実施例6,または7により得られた全長のvWF
切断酵素遺伝子クローニングベクター(pCR2.1vWFCP)
を利用して、C末端より逐次ドメインを欠失させた変異
体(T1135stop、W1016stop、W897stop、T581stop、Q449
stop:それぞれの数字は開始コドンATGのコードするMet
から終結コドンまでのアミノ酸の残基数を示し、FLAGエ
ピトープ(DNA配列:gactacaaggacgatgacgataagtga(配
列番号47)、アミノ酸配列:Asp Tyr Lys Asp Asp As
p Asp Lys(配列番号48))を付加した部位を示
す。)遺伝子を調製し、実施例8、9同様の方法によ
り、pCAG発現ベクターに組み込み、Hela細胞にその発現
ベクターを遺伝子導入した。一時発現の細胞培養上清
(図23に抗FLAG抗体発現確認のウエスタンブロットを
示す。)を用いてvWF切断活性を実施例2中のSDS-PAGE
による方法で検出した。また、図24に示されるように
培養上清レベルで変異体によって活性が変化することが
示唆された。この時点で、W897まで欠失させたもので
も、定性的にではあるがvWFを切断できることが確認さ
れた。同様にN末端からのアミノ酸の逐次欠失変異体の
作製、あるいは、中間のドメインを欠失させた変異体の
作製を行うことで、例えば、各ドメインの機能探索が可
能となり、こういったアプローチによりアンタゴニスト
の設計あるいはその逆にアゴニストの設計も可能になる
と考えられる。
【配列表】 SEQUENCE LISTING <110>JURIDICAL FOUNDATION THE CHEMO-SERO-THERAPEUTIC RESEARCH INSTITUTE <120>vWF-cleaving protease <130>JP403PR4YS <160>48 <210>1 <211>5 <212>PRT <213> Homo sapiens <400>1 Leu Leu Val Ala Val 1 5 <210>2 <211>14 <212>PRT <213> Homo sapiens <400>2 Ala Ala Gly Gly Ile Leu His Leu Glu Leu Leu Val Ala Val 1 5 10 <210>3 <211>161 <212>PRT <213> Homo sapiens <400>3 Ala Ala Gly Gly Ile Leu His Leu Glu Leu Leu Val Ala Val Gly 1 5 10 15 Pro Asp Val Phe Gln Ala His Gln Lys Asp Thr Glu Arg Tyr Val 20 25 30 Leu Thr Asn Leu Asn Ile Gly Ala Glu Leu Leu Arg Asp Pro Ser 35 40 45 Leu Gly Ala Gln Phe Arg Val His Leu Val Lys Met Val Ile Leu 50 55 60 Thr Glu Pro Glu Gly Ala Pro Asn Ile Thr Ala Asn Leu Thr Ser 65 70 75 Ser Leu Leu Ser Val Cys Gly Trp Ser Gln Thr Ile Asn Pro Glu 80 85 90 Asp Asp Thr Asp Pro Gly His Ala Asp Leu Val Leu Tyr Ile Thr 95 100 105 Arg Phe Asp Leu Glu Leu Pro Asp Gly Asn Arg Gln Val Arg Gly 110 115 120 Val Thr Gln Leu Gly Gly Ala Cys Ser Pro Thr Trp Ser Cys Leu 125 130 135 Ile Thr Glu Asp Thr Gly Phe Asp Leu Gly Val Thr Ile Ala His 140 145 150 Glu Ile Gly His Ser Phe Gly Leu Glu His Asp 155 160 <210>4 <211>15 <212>DNA <213> Homo sapiens <400>4 ctgctggtgg ccgtg 15 <210>5 <211>42 <212>DNA <213> Homo sapiens <400>5 gctgcaggcg gcatcctaca cctggagctg ctggtggccg tg 42 <210>6 <211>483 <212>DNA <213> Homo sapiens <400>6 gctgcaggcg gcatcctaca cctggagctg ctggtggccg tgggccccga tgtcttccag 60 gctcaccaga aggacacaga gcgctatgtg ctcaccaacc tcaacatcgg ggcagaactg 120 cttcgggacc cgtccctggg ggctcagttt cgggtgcacc tggtgaagat ggtcattctg 180 acagagcctg agggtgctcc aaatatcaca gcaaacctca cctcgtccct gctgagcgtc 240 tgtgggtgga gccagaccat caaccctgag gacgacacgg atcctggcca tgctgacctg 300 gtcctctata tcactaggtt tgacctggag ttgcctgatg gtaaccggca ggtgcggggc 360 gtcacccagc tgggcggtgc ctgctcccca acctggagct gcctcattac cgaggacact 420 ggcttcgacc tgggagtcac cattgcccat gagattgggc acagcttcgg cctggagcac 480 gac 483 <210>7 <211>161 <212>PRT <213> Homo sapiens <400>7 gct gca ggc ggc atc cta cac ctg gag ctg ctg gtg gcc gtg ggc 45 Ala Ala Gly Gly Ile Leu His Leu Glu Leu Leu Val Ala Val Gly 1 5 10 15 ccc gat gtc ttc cag gct cac cag aag gac aca gag cgc tat gtg 90 Pro Asp Val Phe Gln Ala His Gln Lys Asp Thr Glu Arg Tyr Val 20 25 30 ctc acc aac ctc aac atc ggg gca gaa ctg ctt cgg gac ccg tcc 135 Leu Thr Asn Leu Asn Ile Gly Ala Glu Leu Leu Arg Asp Pro Ser 35 40 45 ctg ggg gct cag ttt cgg gtg cac ctg gtg aag atg gtc att ctg 180 Leu Gly Ala Gln Phe Arg Val His Leu Val Lys Met Val Ile Leu 50 55 60 aca gag cct gag ggt gct cca aat atc aca gca aac ctc acc tcg 225 Thr Glu Pro Glu Gly Ala Pro Asn Ile Thr Ala Asn Leu Thr Ser 65 70 75 tcc ctg ctg agc gtc tgt ggg tgg agc cag acc atc aac cct gag 270 Ser Leu Leu Ser Val Cys Gly Trp Ser Gln Thr Ile Asn Pro Glu 80 85 90 gac gac acg gat cct ggc cat gct gac ctg gtc ctc tat atc act 315 Asp Asp Thr Asp Pro Gly His Ala Asp Leu Val Leu Tyr Ile Thr 95 100 105 agg ttt gac ctg gag ttg cct gat ggt aac cgg cag gtg cgg ggc 360 Arg Phe Asp Leu Glu Leu Pro Asp Gly Asn Arg Gln Val Arg Gly 110 115 120 gtc acc cag ctg ggc ggt gcc tgc tcc cca acc tgg agc tgc ctc 405 Val Thr Gln Leu Gly Gly Ala Cys Ser Pro Thr Trp Ser Cys Leu 125 130 135 att acc gag gac act ggc ttc gac ctg gga gtc acc att gcc cat 450 Ile Thr Glu Asp Thr Gly Phe Asp Leu Gly Val Thr Ile Ala His 140 145 150 gag att ggg cac agc ttc ggc ctg gag cac gac 483 Glu Ile Gly His Ser Phe Gly Leu Glu His Asp 155 160 <210>8 <211>29 <212>PRT <213> Homo sapiens <400>8 Ala Ala Gly Gly Ile Leu His Leu Glu Leu Leu Val Ala Val Gly 1 5 10 15 Pro Asp Val Phe Gln Ala His Gln Lys Asp Thr Arg Arg Tyr 20 25 <210>9 <211>30 <212>DNA <213> Homo sapiens <400>9 gctgcaggcg gcatcctaca cctggagctg 30 <210>10 <211>21 <212>DNA <213> Homo sapiens <400>10 cccaatctca tgggcaatgg t 21 <210>11 <211>21 <212>DNA <213> Homo sapiens <400>11 cccaatctca tgggcaatgg t 21 <210>12 <211>30 <212>DNA <213> Homo sapiens <400>12 ccgatgttga ggttggtgag cacatagcgc 3 0 <210>13 <211>20 <212>DNA <213> Homo sapiens <400>13 gtgtcgtcct cagggttgat 20 <210>14 <211>21 <212>DNA <213> Homo sapiens <400>14 accattgccc atgagattgg g 21 <210>15 <211>4950 <212>DNA <213> Homo sapiens <400>15 aaccacgatg tctttggcac agcctctcat ctgtcagatg ggagcgggga ccccggagag 60 ggagtcagcc gaggtcctgg cattccttgt gaacccccgt ctgtgggttt ctggtccagt 120 gtcccttctc cagattagat ggcttaggcc tcctctaagg gggtgggcgt gcacatccgg 180 agagctgtct ggtgtgcagg actgggctgc aggttaccct gaactgcaac catcttagag 240 caaggcccag cttgcagcag gaggagctgc aggccgccca ccctagccac ggcccctgcc 300 ctggcaggaa gcttccaaga gtaaacactg cctaatcgtc ccgcccagta gtgagcaggc 360 ctgtcccatt ccatactgac cagattccca gtcaccaagg ccccctctca ctccgctcca 420 ctcctcgggc tggctctcct gaggatgcac cagcgtcacc cccgggcaag atgccctccc 480 ctctgtgtgg ccggaatcct tgcctgtggc tttctcctgg gctgctgggg accctcccat 540 ttccagcaga gttgtcttca ggctttggag ccacaggccg tgtcttctta cttgagccct 600 ggtgctccct taaaaggccg ccctccttcc cctggcttcc agaggcagag gcagaggcag 660 aggcgggctg caggcggcat cctacacctg gagctgctgg tggccgtggg ccccgatgtc 720 ttccaggctc accaggagga cacagagcgc tatgtgctca ccaacctcaa catcggggca 780 gaactgcttc gggacccgtc cctgggggct cagtttcggg tgcacctggt gaagatggtc 840 attctgacag agcctgaggg tgctccaaat atcacagcca acctcacctc gtccctgctg 900 agcgtctgtg ggtggagcca gaccatcaac cctgaggacg acacggatcc tggccatgct 960 gacctggtcc tctatatcac taggtttgac ctggagttgc ctgatggtaa ccggcaggtg 1020 cggggcgtca cccagctggg cggtgcctgc tccccaacct ggagctgcct cattaccgag 1080 gacactggct tcgacctggg agtcaccatt gcccatgaga ttgggcacag cttcggcctg 1140 gagcacgacg gcgcgcccgg cagcggctgc ggccccagcg gacacgtgat ggcttcggac 1200 ggcgccgcgc cccgcgccgg cctcgcctgg tccccctgca gccgccggca gctgctgagc 1260 ctgctcagcg caggacgggc gcgctgcgtg tgggacccgc cgcggcctca acccgggtcc 1320 gcggggcacc cgccggatgc gcagcctggc ctctactaca gcgccaacga gcagtgccgc 1380 gtggccttcg gccccaaggc tgtcgcctgc accttcgcca gggagcacct ggatatgtgc 1440 caggccctct cctgccacac agacccgctg gaccaaagca gctgcagccg cctcctcgtt 1500 cctctcctgg atgggacaga atgtggcgtg gagaagtggt gctccaaggg tcgctgccgc 1560 tccctggtgg agctgacccc catagcagca gtgcatgggc gctggtctag ctggggtccc 1620 cgaagtcctt gctcccgctc ctgcggagga ggtgtggtca ccaggaggcg gcagtgcaac 1680 aaccccagac ctgcctttgg ggggcgtgca tgtgttggtg ctgacctcca ggccgagatg 1740 tgcaacactc aggcctgcga gaagacccag ctggagttca tgtcgcaaca gtgcgccagg 1800 accgacggcc agccgctgcg ctcctcccct ggcggcgcct ccttctacca ctggggtgct 1860 gctgtaccac acagccaagg ggatgctctg tgcagacaca tgtgccgggc cattggcgag 1920 agcttcatca tgaagcgtgg agacagcttc ctcgatggga cccggtgtat gccaagtggc 1980 ccccgggagg acgggaccct gagcctgtgt gtgtcgggca gctgcaggac atttggctgt 2040 gatggtagga tggactccca gcaggtatgg gacaggtgcc aggtgtgtgg tggggacaac 2100 agcacgtgca gcccacggaa gggctctttc acagctggca gagcgagaga atatgtcacg 2160 tttctgacag ttacccccaa cctgaccagt gtctacattg ccaaccacag gcctctcttc 2220 acacacttgg cggtgaggat cggagggcgc tatgtcgtgg ctgggaagat gagcatctcc 2280 cctaacacca cctacccctc cctcctggag gatggtcgtg tcgagtacag agtggccctc 2340 accgaggacc ggctgccccg cctggaggag atccgcatct ggggacccct ccaggaagat 2400 gctgacatcc aggtttacag gcggtatggc gaggagtatg gcaacctcac ccgcccagac 2460 atcaccttca cctacttcca gcctaagcca cggcaggcct gggtgtgggc cgctgtgcgt 2520 gggccctgct cggtgagctg tggggcaggg ctgcgctggg taaactacag ctgcctggac 2580 caggccagga aggagttggt ggagactgtc cagtgccaag ggagccagca gccaccagcg 2640 tggccagagg cctgcgtgct cgaaccctgc cctccctact gggcggtggg agacttcggc 2700 ccatgcagcg cctcctgtgg gggcggcctg cgggagcggc cagtgcgctg cgtggaggcc 2760 cagggcagcc tcctgaagac attgccccca gcccggtgca gagcaggggc ccagcagcca 2820 gctgtggcgc tggaaacctg caacccccag ccctgccctg ccaggtggga ggtgtcagag 2880 cccagctcat gcacatcagc tggtggagca ggcctggcct tggagaacga gacctgtgtg 2940 ccaggggcag atggcctgga ggctccagtg actgaggggc ctggctccgt agatgagaag 3000 ctgcctgccc ctgagccctg tgtcgggatg tcatgtcctc caggctgggg ccatctggat 3060 gccacctctg caggggagaa ggctccctcc ccatggggca gcatcaggac gggggctcaa 3120 gctgcacacg tgtggacccc tgcggcaggg tcgtgctccg tctcctgcgg gcgaggtctg 3180 atggagctgc gtttcctgtg catggactct gccctcaggg tgcctgtcca ggaagagctg 3240 tgtggcctgg caagcaagcc tgggagccgg cgggaggtct gccaggctgt cccgtgccct 3300 gctcggtggc agtacaagct ggcggcctgc agcgtgagct gtgggagagg ggtcgtgcgg 3360 aggatcctgt attgtgcccg ggcccatggg gaggacgatg gtgaggagat cctgttggac 3420 acccagtgcc aggggctgcc tcgcccggaa ccccaggagg cctgcagcct ggagccctgc 3480 ccacctaggt ggaaagtcat gtcccttggc ccatgttcgg ccagctgtgg ccttggcact 3540 gctagacgct cggtggcctg tgtgcagctc gaccaaggcc aggacgtgga ggtggacgag 3600 gcggcctgtg cggcgctggt gcggcccgag gccagtgtcc cctgtctcat tgccgactgc 3660 acctaccgct ggcatgttgg cacctggatg gagtgctctg tttcctgtgg ggatggcatc 3720 cagcgccggc gtgacacctg cctcggaccc caggcccagg cgcctgtgcc agctgatttc 3780 tgccagcact tgcccaagcc ggtgactgtg cgtggctgct gggctgggcc ctgtgtggga 3840 cagggtacgc ccagcctggt gccccacgaa gaagccgctg ctccaggacg gaccacagcc 3900 acccctgctg gtgcctccct ggagtggtcc caggcccggg gcctgctctt ctccccggct 3960 ccccagcctc ggcggctcct gcccgggccc caggaaaact cagtgcagtc cagtgcctgt 4020 ggcaggcagc accttgagcc aacaggaacc attgacatgc gaggcccagg gcaggcagac 4080 tgtgcagtgg ccattgggcg gcccctcggg gaggtggtga ccctccgcgt ccttgagagt 4140 tctctcaact gcagtgcggg ggacatgttg ctgctttggg gccggctcac ctggaggaag 4200 atgtgcagga agctgttgga catgactttc agctccaaga ccaacacgct ggtggtgagg 4260 cagcgctgcg ggcggccagg aggtggggtg ctgctgcggt atgggagcca gcttgctcct 4320 gaaaccttct acagagaatg tgacatgcag ctctttgggc cctggggtga aatcgtgagc 4380 ccctcgctga gtccagccac gagtaatgca gggggctgcc ggctcttcat taatgtggct 4440 ccgcacgcac ggattgccat ccatgccctg gccaccaaca tgggcgctgg gaccgaggga 4500 gccaatgcca gctacatctt gatccgggac acccacagct tgaggaccac agcgttccat 4560 gggcagcagg tgctctactg ggagtcagag agcagccagg ctgagatgga gttcagcgag 4620 ggcttcctga aggctcaggc cagcctgcgg ggccagtact ggaccctcca atcatgggta 4680 ccggagatgc aggaccctca gtcctggaag ggaaaggaag gaacctgagg gtcattgaac 4740 atttgttccg tgtctggcca gccctggagg gttgacccct ggtctcagtg ctttccaatt 4800 cgaacttttt ccaatcttag gtatctactt tagagtcttc tccaatgtcc aaaaggctag 4860 ggggttggag gtggggactc tggaaaagca gcccccattt cctcgggtac caataaataa 4920 aacatgcagg ccaaaaaaaa aaaaaaaaaa 4950 <210>16 <211>1353 <212>PRT <213> Homo sapiens <400>16 gct gca ggc ggc atc cta cac ctg gag ctg ctg gtg gcc gtg ggc 45 Ala Ala Gly Gly Ile Leu His Leu Glu Leu Leu Val Ala Val Gly 1 5 10 15 ccc gat gtc ttc cag gct cac cag gag gac aca gag cgc tat gtg 90 Pro Asp Val Phe Gln Ala His Gln Glu Asp Thr Glu Arg Tyr Val 20 25 30 ctc acc aac ctc aac atc ggg gca gaa ctg ctt cgg gac ccg tcc 135 Leu Thr Asn Leu Asn Ile Gly Ala Glu Leu Leu Arg Asp Pro Ser 35 40 45 ctg ggg gct cag ttt cgg gtg cac ctg gtg aag atg gtc att ctg 180 Leu Gly Ala Gln Phe Arg Val His Leu Val Lys Met Val Ile Leu 50 55 60 aca gag cct gag ggt gct cca aat atc aca gcc aac ctc acc tcg 225 Thr Glu Pro Glu Gly Ala Pro Asn Ile Thr Ala Asn Leu Thr Ser 65 70 75 tcc ctg ctg agc gtc tgt ggg tgg agc cag acc atc aac cct gag 270 Ser Leu Leu Ser Val Cys Gly Trp Ser Gln Thr Ile Asn Pro Glu 80 85 90 gac gac acg gat cct ggc cat gct gac ctg gtc ctc tat atc act 315 Asp Asp Thr Asp Pro Gly His Ala Asp Leu Val Leu Tyr Ile Thr 95 100 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ccg ccg gat gcg 675 Pro Pro Arg Pro Gln Pro Gly Ser Ala Gly His Pro Pro Asp Ala 215 220 225 cag cct ggc ctc tac tac agc gcc aac gag cag tgc cgc gtg gcc 720 Gln Pro Gly Leu Tyr Tyr Ser Ala Asn Glu Gln Cys Arg Val Ala 230 235 240 ttc ggc ccc aag gct gtc gcc tgc acc ttc gcc agg gag cac ctg 765 Phe Gly Pro Lys Ala Val Ala Cys Thr Phe Ala Arg Glu His Leu 245 250 255 gat atg tgc cag gcc ctc tcc tgc cac aca gac ccg ctg gac caa 810 Asp Met Cys Gln Ala Leu Ser Cys His Thr Asp Pro Leu Asp Gln 260 265 270 agc agc tgc agc cgc ctc ctc gtt cct ctc ctg gat ggg aca gaa 855 Ser Ser Cys Ser Arg Leu Leu Val Pro Leu Leu Asp Gly Thr Glu 275 280 285 tgt ggc gtg gag aag tgg tgc tcc aag ggt cgc tgc cgc tcc ctg 900 Cys Gly Val Glu Lys Trp Cys Ser Lys Gly Arg Cys Arg Ser Leu 290 295 300 gtg gag ctg acc ccc ata gca gca gtg cat ggg cgc tgg tct agc 945 Val Glu Leu Thr Pro Ile Ala Ala Val His Gly Arg Trp Ser Ser 305 310 315 tgg ggt ccc cga agt cct tgc tcc cgc tcc tgc gga gga ggt gtg 990 Trp Gly Pro Arg Ser Pro Cys 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ggt cgt gtc gag tac aga 1665 Thr Thr Tyr Pro Ser Leu Leu Glu Asp Gly Arg Val Glu Tyr Arg 545 550 555 gtg gcc ctc acc gag gac cgg ctg ccc cgc ctg gag gag atc cgc 1710 Val Ala Leu Thr Glu Asp Arg Leu Pro Arg Leu Glu Glu Ile Arg 560 565 570 atc tgg gga ccc ctc cag gaa gat gct gac atc cag gtt tac agg 1755 Ile Trp Gly Pro Leu Gln Glu Asp Ala Asp Ile Gln Val Tyr Arg 575 580 585 cgg tat ggc gag gag tat ggc aac ctc acc cgc cca gac atc acc 1800 Arg Tyr Gly Glu Glu Tyr Gly Asn Leu Thr Arg Pro Asp Ile Thr 590 595 600 ttc acc tac ttc cag cct aag cca cgg cag gcc tgg gtg tgg gcc 1845 Phe Thr Tyr Phe Gln Pro Lys Pro Arg Gln Ala Trp Val Trp Ala 605 610 615 gct gtg cgt ggg ccc tgc tcg gtg agc tgt ggg gca ggg ctg cgc 1890 Ala Val Arg Gly Pro Cys Ser Val Ser Cys Gly Ala Gly Leu Arg 620 625 630 tgg gta aac tac agc tgc ctg gac cag gcc agg aag gag ttg gtg 1935 Trp Val Asn Tyr Ser Cys Leu Asp Gln Ala Arg Lys Glu Leu Val 635 640 645 gag act gtc cag tgc caa ggg agc cag cag cca cca gcg tgg cca 1980 Glu Thr Val 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ccg tgc cct gct cgg tgg cag tac aag ctg 2655 Val Cys Gln Ala Val Pro Cys Pro Ala Arg Trp Gln Tyr Lys Leu 875 880 885 gcg gcc tgc agc gtg agc tgt ggg aga ggg gtc gtg cgg agg atc 2700 Ala Ala Cys Ser Val Ser Cys Gly Arg Gly Val Val Arg Arg Ile 890 895 900 ctg tat tgt gcc cgg gcc cat ggg gag gac gat ggt gag gag atc 2745 Leu Tyr Cys Ala Arg Ala His Gly Glu Asp Asp Gly Glu Glu Ile 905 910 915 ctg ttg gac acc cag tgc cag ggg ctg cct cgc ccg gaa ccc cag 2790 Leu Leu Asp Thr Gln Cys Gln Gly Leu Pro Arg Pro Glu Pro Gln 920 925 930 gag gcc tgc agc ctg gag ccc tgc cca cct agg tgg aaa gtc atg 2835 Glu Ala Cys Ser Leu Glu Pro Cys Pro Pro Arg Trp Lys Val Met 935 940 945 tcc ctt ggc cca tgt tcg gcc agc tgt ggc ctt ggc act gct aga 2880 Ser Leu Gly Pro Cys Ser Ala Ser Cys Gly Leu Gly Thr Ala Arg 950 955 960 cgc tcg gtg gcc tgt gtg cag ctc gac caa ggc cag gac gtg gag 2925 Arg Ser Val Ala Cys Val Gln Leu Asp Gln Gly Gln Asp Val Glu 965 970 975 gtg gac gag gcg gcc tgt gcg gcg ctg gtg cgg ccc gag gcc agt 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tat gtc acg ttt ctg aca gtt acc ccc aac ctg acc agt gtc tac 1530 Tyr Val Thr Phe Leu Thr Val Thr Pro Asn Leu Thr Ser Val Tyr 500 505 510 att gcc aac cac agg cct ctc ttc aca cac ttg gcg gtg agg atc 1575 Ile Ala Asn His Arg Pro Leu Phe Thr His Leu Ala Val Arg Ile 515 520 525 gga ggg cgc tat gtc gtg gct ggg aag atg agc atc tcc cct aac 1620 Gly Gly Arg Tyr Val Val Ala Gly Lys Met Ser Ile Ser Pro Asn 530 535 540 acc acc tac ccc tcc ctc ctg gag gat ggt cgt gtc gag tac aga 1665 Thr Thr Tyr Pro Ser Leu Leu Glu Asp Gly Arg Val Glu Tyr Arg 545 550 555 gtg gcc ctc acc gag gac cgg ctg ccc cgc ctg gag gag atc cgc 1710 Val Ala Leu Thr Glu Asp Arg Leu Pro Arg Leu Glu Glu Ile Arg 560 565 570 atc tgg gga ccc ctc cag gaa gat gct gac atc cag gtt tac agg 1755 Ile Trp Gly Pro Leu Gln Glu Asp Ala Asp Ile Gln Val Tyr Arg 575 580 585 cgg tat ggc gag gag tat ggc aac ctc acc cgc cca gac atc acc 1800 Arg Tyr Gly Glu Glu Tyr Gly Asn Leu Thr Arg Pro Asp Ile Thr 590 595 600 ttc acc tac ttc cag cct aag cca cgg cag 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Pro 815 820 825 gcg gca ggg tcg tgc tcc gtc tcc tgc ggg cga ggt ctg atg gag 2520 Ala Ala Gly Ser Cys Ser Val Ser Cys Gly Arg Gly Leu Met Glu 830 835 840 ctg cgt ttc ctg tgc atg gac tct gcc ctc agg gtg cct gtc cag 2565 Leu Arg Phe Leu Cys Met Asp Ser Ala Leu Arg Val Pro Val Gln 845 850 855 gaa gag ctg tgt ggc ctg gca agc aag cct ggg agc cgg cgg gag 2610 Glu Glu Leu Cys Gly Leu Ala Ser Lys Pro Gly Ser Arg Arg Glu 860 865 870 gtc tgc cag gct gtc ccg tgc cct gct cgg tgg cag tac aag ctg 2655 Val Cys Gln Ala Val Pro Cys Pro Ala Arg Trp Gln Tyr Lys Leu 875 880 885 gcg gcc tgc agc gtg agc tgt ggg aga ggg gtc gtg cgg agg atc 2700 Ala Ala Cys Ser Val Ser Cys Gly Arg Gly Val Val Arg Arg Ile 890 895 900 ctg tat tgt gcc cgg gcc cat ggg gag gac gat ggt gag gag atc 2745 Leu Tyr Cys Ala Arg Ala His Gly Glu Asp Asp Gly Glu Glu Ile 905 910 915 ctg ttg gac acc cag tgc cag ggg ctg cct cgc ccg gaa ccc cag 2790 Leu Leu Asp Thr Gln Cys Gln Gly Leu Pro Arg Pro Glu Pro Gln 920 925 930 gag gcc tgc agc ctg gag 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Arg Cys Gly Arg Pro Gly Gly Gly Val Leu Leu Arg 1145 1150 1155 tat ggg agc cag ctt gct cct gaa acc ttc tac aga gaa tgt gac 3510 Tyr Gly Ser Gln Leu Ala Pro Glu Thr Phe Tyr Arg Glu Cys Asp 1160 1165 1170 atg cag ctc ttt ggg ccc tgg ggt gaa atc gtg agc ccc tcg ctg 3555 Met Gln Leu Phe Gly Pro Trp Gly Glu Ile Val Ser Pro Ser Leu 1175 1180 1185 agt cca gcc acg agt aat gca ggg ggc tgc cgg ctc ttc att aat 3600 Ser Pro Ala Thr Ser Asn Ala Gly Gly Cys Arg Leu Phe Ile Asn 1190 1195 1200 gtg gct ccg cac gca cgg att gcc atc cat gcc ctg gcc acc aac 3645 Val Ala Pro His Ala Arg Ile Ala Ile His Ala Leu Ala Thr Asn 1205 1210 1215 atg ggc gct ggg acc gag gga gcc aat gcc agc tac atc ttg atc 3690 Met Gly Ala Gly Thr Glu Gly Ala Asn Ala Ser Tyr Ile Leu Ile 1220 1225 1230 cgg gac acc cac agc ttg agg acc aca gcg ttc cat ggg cag cag 3735 Arg Asp Thr His Ser Leu Arg Thr Thr Ala Phe His Gly Gln Gln 1235 1240 1245 gtg ctc tac tgg gag tca gag agc agc cag gct gag atg gag ttc 3780 Val Leu Tyr Trp Glu Ser Glu Ser Ser Gln Ala Glu Met Glu Phe 1250 1255 1260 agc gag ggc ttc ctg aag gct cag gcc agc ctg cgg ggc cag tac 3825 Ser Glu Gly Phe Leu Lys Ala Gln Ala Ser Leu Arg Gly Gln Tyr 1265 1270 1275 tgg acc ctc caa tca tgg gta ccg gag atg cag gac cct cag tcc 3870 Trp Thr Leu Gln Ser Trp Val Pro Glu Met Gln Asp Pro Gln Ser 1280 1285 1290 tgg aag gga aag gaa gga acc 3891 Trp Lys Gly Lys Glu Gly Thr 1295 <210>18 <211>1378 <212>PRT <213> Homo sapiens <400>18 gct gca ggc ggc atc cta cac ctg gag ctg ctg gtg gcc gtg ggc 45 Ala Ala Gly Gly Ile Leu His Leu Glu Leu Leu Val Ala Val Gly 1 5 10 15 ccc gat gtc ttc cag gct cac cag gag gac aca gag cgc tat gtg 90 Pro Asp Val Phe Gln Ala His Gln Glu Asp Thr Glu Arg Tyr Val 20 25 30 ctc acc aac ctc aac atc ggg gca gaa ctg ctt cgg gac ccg tcc 135 Leu Thr Asn Leu Asn Ile Gly Ala Glu Leu Leu Arg Asp Pro Ser 35 40 45 ctg ggg gct cag ttt cgg gtg cac ctg gtg aag atg gtc att ctg 180 Leu Gly Ala Gln Phe Arg Val His Leu Val Lys Met Val Ile Leu 50 55 60 aca gag cct gag ggt gct 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1050 ctc gga ccc cag gcc cag gcg cct gtg cca gct gat ttc tgc cag 3195 Leu Gly Pro Gln Ala Gln Ala Pro Val Pro Ala Asp Phe Cys Gln 1055 1060 1065 cac ttg ccc aag ccg gtg act gtg cgt ggc tgc tgg gct ggg ccc 3240 His Leu Pro Lys Pro Val Thr Val Arg Gly Cys Trp Ala Gly Pro 1070 1075 1080 tgt gtg gga cag ggt acg ccc agc ctg gtg ccc cac gaa gaa gcc 3285 Cys Val Gly Gln Gly Thr Pro Ser Leu Val Pro His Glu Glu Ala 1085 1090 1095 gct gct cca gga cgg acc aca gcc acc cct gct ggt gcc tcc ctg 3330 Ala Ala Pro Gly Arg Thr Thr Ala Thr Pro Ala Gly Ala Ser Leu 1100 1105 1110 gag tgg tcc cag gcc cgg ggc ctg ctc ttc tcc ccg gct ccc cag 3375 Glu Trp Ser Gln Ala Arg Gly Leu Leu Phe Ser Pro Ala Pro Gln 1115 1120 1125 cct cgg cgg ctc ctg ccc ggg ccc cag gaa aac tca gtg cag tcc 3420 Pro Arg Arg Leu Leu Pro Gly Pro Gln Glu Asn Ser Val Gln Ser 1130 1135 1140 agt gcc tgt ggc agg cag cac ctt gag cca aca gga acc att gac 3465 Ser Ala Cys Gly Arg Gln His Leu Glu Pro Thr Gly Thr Ile Asp 1145 1150 1155 atg cga ggc cca ggg cag gca gac tgt gca gtg gcc att ggg cgg 3510 Met Arg Gly Pro Gly Gln Ala Asp Cys Ala Val Ala Ile Gly Arg 1160 1165 1170 ccc ctc ggg gag gtg gtg acc ctc cgc gtc ctt gag agt tct ctc 3555 Pro Leu Gly Glu Val Val Thr Leu Arg Val Leu Glu Ser Ser Leu 1175 1180 1185 aac tgc agt gcg ggg gac atg ttg ctg ctt tgg ggc cgg ctc acc 3600 Asn Cys Ser Ala Gly Asp Met Leu Leu Leu Trp Gly Arg Leu Thr 1190 1195 1200 tgg agg aag atg tgc agg aag ctg ttg gac atg act ttc agc tcc 3645 Trp Arg Lys Met Cys Arg Lys Leu Leu Asp Met Thr Phe Ser Ser 1205 1210 1215 aag acc aac acg ctg gtg gtg agg cag cgc tgc ggg cgg cca gga 3690 Lys Thr Asn Thr Leu Val Val Arg Gln Arg Cys Gly Arg Pro Gly 1220 1225 1230 ggt ggg gtg ctg ctg cgg tat ggg agc cag ctt gct cct gaa acc 3735 Gly Gly Val Leu Leu Arg Tyr Gly Ser Gln Leu Ala Pro Glu Thr 1235 1240 1245 ttc tac aga gaa tgt gac atg cag ctc ttt ggg ccc tgg ggt gaa 3780 Phe Tyr Arg Glu Cys Asp Met Gln Leu Phe Gly Pro Trp Gly Glu 1250 1255 1260 atc gtg agc ccc tcg ctg agt cca gcc acg agt aat gca ggg ggc 3825 Ile Val Ser Pro Ser Leu Ser Pro Ala Thr Ser Asn Ala Gly Gly 1265 1270 1275 tgc cgg ctc ttc att aat gtg gct ccg cac gca cgg att gcc atc 3870 Cys Arg Leu Phe Ile Asn Val Ala Pro His Ala Arg Ile Ala Ile 1280 1285 1290 cat gcc ctg gcc acc aac atg ggc gct ggg acc gag gga gcc aat 3915 His Ala Leu Ala Thr Asn Met Gly Ala Gly Thr Glu Gly Ala Asn 1295 1300 1305 gcc agc tac atc ttg atc cgg gac acc cac agc ttg agg acc aca 3960 Ala Ser Tyr Ile Leu Ile Arg Asp Thr His Ser Leu Arg Thr Thr 1310 1315 1320 gcg ttc cat ggg cag cag gtg ctc tac tgg gag tca gag agc agc 4005 Ala Phe His Gly Gln Gln Val Leu Tyr Trp Glu Ser Glu Ser Ser 1325 1330 1335 cag gct gag atg gag ttc agc gag ggc ttc ctg aag gct cag gcc 4050 Gln Ala Glu Met Glu Phe Ser Glu Gly Phe Leu Lys Ala Gln Ala 1340 1345 1350 agc ctg cgg ggc cag tac tgg acc ctc caa tca tgg gta ccg gag 4095 Ser Leu Arg Gly Gln Tyr Trp Thr Leu Gln Ser Trp Val Pro Glu 1355 1360 1365 atg cag gac cct cag tcc tgg aag gga aag gaa gga acc 4134 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His Ser Gln Gly Asp Ala Leu Cys Arg 425 430 435 cac atg tgc cgg gcc att ggc gag agc ttc atc atg aag cgt gga 1350 His Met Cys Arg Ala Ile Gly Glu Ser Phe Ile Met Lys Arg Gly 440 445 450 gac agc ttc ctc gat ggg acc cgg tgt atg cca agt ggc ccc cgg 1395 Asp Ser Phe Leu Asp Gly Thr Arg Cys Met Pro Ser Gly Pro Arg 455 460 465 gag gac ggg acc ctg agc ctg tgt gtg tcg ggc agc tgc agg aca 1440 Glu Asp Gly Thr Leu Ser Leu Cys Val Ser Gly Ser Cys Arg Thr 470 475 480 ttt ggc tgt gat ggt agg atg gac tcc cag cag gta tgg gac agg 1485 Phe Gly Cys Asp Gly Arg Met Asp Ser Gln Gln Val Trp Asp Arg 485 490 495 tgc cag gtg tgt ggt ggg gac aac agc acg tgc agc cca cgg aag 1530 Cys Gln Val Cys Gly Gly Asp Asn Ser Thr Cys Ser Pro Arg Lys 500 505 510 ggc tct ttc aca gct ggc aga gcg aga gaa tat gtc acg ttt ctg 1575 Gly Ser Phe Thr Ala Gly Arg Ala Arg Glu Tyr Val Thr Phe Leu 515 520 525 aca gtt acc ccc aac ctg acc agt gtc tac att gcc aac cac agg 1620 Thr Val Thr Pro Asn Leu Thr Ser Val Tyr Ile Ala Asn His Arg 530 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cac ctt gag cca aca 3285 Cys Val Gly Gln Gly Ala Cys Gly Arg Gln His Leu Glu Pro Thr 1085 1090 1095 gga acc att gac atg cga ggc cca ggg cag gca gac tgt gca gtg 3330 Gly Thr Ile Asp Met Arg Gly Pro Gly Gln Ala Asp Cys Ala Val 1100 1105 1110 gcc att ggg cgg ccc ctc ggg gag gtg gtg acc ctc cgc gtc ctt 3375 Ala Ile Gly Arg Pro Leu Gly Glu Val Val Thr Leu Arg Val Leu 1115 1120 1125 gag agt tct ctc aac tgc agt gcg ggg gac atg ttg ctg ctt tgg 3420 Glu Ser Ser Leu Asn Cys Ser Ala Gly Asp Met Leu Leu Leu Trp 1130 1135 1140 ggc cgg ctc acc tgg agg aag atg tgc agg aag ctg ttg gac atg 3465 Gly Arg Leu Thr Trp Arg Lys Met Cys Arg Lys Leu Leu Asp Met 1145 1150 1155 act ttc agc tcc aag acc aac acg ctg gtg gtg agg cag cgc tgc 3510 Thr Phe Ser Ser Lys Thr Asn Thr Leu Val Val Arg Gln Arg Cys 1160 1165 1170 ggg cgg cca gga ggt ggg gtg ctg ctg cgg tat ggg agc cag ctt 3555 Gly Arg Pro Gly Gly Gly Val Leu Leu Arg Tyr Gly Ser Gln Leu 1175 1180 1185 gct cct gaa acc ttc tac aga gaa tgt gac atg cag ctc ttt ggg 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Ser Leu Arg Gly Gln Tyr Trp Thr Leu Gln Ser 1295 1300 1305 tgg gta ccg gag atg cag gac cct cag tcc tgg aag gga aag gaa 3960 Trp Val Pro Glu Met Gln Asp Pro Gln Ser Trp Lys Gly Lys Glu 1310 1315 1320 gga acc 3966 Gly Thr <210>20 <211>312 <212>PRT <213> Homo sapiens <400>20 gct gca ggc ggc atc cta cac ctg gag ctg ctg gtg gcc gtg ggc 45 Ala Ala Gly Gly Ile Leu His Leu Glu Leu Leu Val Ala Val Gly 1 5 10 15 ccc gat gtc ttc cag gct cac cag gag gac aca gag cgc tat gtg 90 Pro Asp Val Phe Gln Ala His Gln Glu Asp Thr Glu Arg Tyr Val 20 25 30 ctc acc aac ctc aac atc ggg gca gaa ctg ctt cgg gac ccg tcc 135 Leu Thr Asn Leu Asn Ile Gly Ala Glu Leu Leu Arg Asp Pro Ser 35 40 45 ctg ggg gct cag ttt cgg gtg cac ctg gtg aag atg gtc att ctg 180 Leu Gly Ala Gln Phe Arg Val His Leu Val Lys Met Val Ile Leu 50 55 60 aca gag cct gag ggt gct cca aat atc aca gcc aac ctc acc tcg 225 Thr Glu Pro Glu Gly Ala Pro Asn Ile Thr Ala Asn Leu Thr Ser 65 70 75 tcc ctg ctg agc gtc tgt ggg tgg agc cag acc atc aac cct gag 270 Ser Leu Leu Ser Val Cys Gly Trp Ser Gln Thr Ile Asn Pro Glu 80 85 90 gac gac acg gat cct ggc cat gct gac ctg gtc ctc tat atc act 315 Asp Asp Thr Asp Pro Gly His Ala Asp Leu Val Leu Tyr Ile Thr 95 100 105 agg ttt gac ctg gag ttg cct gat ggt aac cgg cag gtg cgg ggc 360 Arg Phe Asp Leu Glu Leu Pro Asp Gly Asn Arg Gln Val Arg Gly 110 115 120 gtc acc cag ctg ggc ggt gcc tgc tcc cca acc tgg agc tgc ctc 405 Val Thr Gln Leu Gly Gly Ala Cys Ser Pro Thr Trp Ser Cys Leu 125 130 135 att acc gag gac act ggc ttc gac ctg gga gtc acc att gcc cat 450 Ile Thr Glu Asp Thr Gly Phe Asp Leu Gly Val Thr Ile Ala His 140 145 150 gag att ggg cac agc ttc ggc ctg gag cac gac ggc gcg ccc ggc 495 Glu Ile Gly His Ser Phe Gly Leu Glu His Asp Gly Ala Pro Gly 155 160 165 agc ggc tgc ggc ccc agc gga cac gtg atg gct tcg gac ggc gcc 540 Ser Gly Cys Gly Pro Ser Gly His Val Met Ala Ser Asp Gly Ala 170 175 180 gcg ccc cgc gcc ggc ctc gcc tgg tcc ccc tgc agc cgc cgg cag 585 Ala Pro Arg Ala Gly Leu Ala Trp Ser Pro Cys Ser Arg 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Asp Thr Asp Pro Gly His Ala Asp Leu Val Leu Tyr Ile Thr 95 100 105 agg ttt gac ctg gag ttg cct gat ggt aac cgg cag gtg cgg ggc 360 Arg Phe Asp Leu Glu Leu Pro Asp Gly Asn Arg Gln Val Arg Gly 110 115 120 gtc acc cag ctg ggc ggt gcc tgc tcc cca acc tgg agc tgc ctc 405 Val Thr Gln Leu Gly Gly Ala Cys Ser Pro Thr Trp Ser Cys Leu 125 130 135 att acc gag gac act ggc ttc gac ctg gga gtc acc att gcc cat 450 Ile Thr Glu Asp Thr Gly Phe Asp Leu Gly Val Thr Ile Ala His 140 145 150 gag att ggg cac agc ttc ggc ctg gag cac gac ggc gcg ccc ggc 495 Glu Ile Gly His Ser Phe Gly Leu Glu His Asp Gly Ala Pro Gly 155 160 165 agc ggc tgc ggc ccc agc gga cac gtg atg gct tcg gac ggc gcc 540 Ser Gly Cys Gly Pro Ser Gly His Val Met Ala Ser Asp Gly Ala 170 175 180 gcg ccc cgc gcc ggc ctc gcc tgg tcc ccc tgc agc cgc cgg cag 585 Ala Pro Arg Ala Gly Leu Ala Trp Ser Pro Cys Ser Arg Arg Gln 185 190 195 ctg ctg agc ctg ctc aga ccc gtc cct ccg tcg ccg ctc cct ctg 630 Leu Leu Ser Leu Leu Arg Pro Val Pro Pro Ser Pro Leu 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ctttccacct aggtgggcag ggctccaggc 30 <210>27 <211>30 <212>DNA <213> Homo sapiens <400>27 gcctggagcc ctgcccacct aggtggaaag 30 <210>28 <211>33 <212>DNA <213> Homo sapiens <400>28 tcgagaaaaa gtctacgggg gcctaggttt tta 33 <210>29 <211>33 <212>DNA <213> Homo sapiens <400>29 agcttaaaaa cctaggcccc cgtagacttt ttc 33 <210>30 <211>30 <212>DNA <213> Homo sapiens <400>30 tcggccatgg ccgcaggcgg catcctacac 30 <210>31 <211>28 <212>DNA <213> Homo sapiens <400>31 ggcaagctta tcagcggggc gcggcgcc 28 <210>32 <211>564 <212>DNA <213> Homo sapiens <400>32 ccatggccgc aggcggcatc ctacacctgg agctgctggt ggccgtgggc cccgatgtct 60 tccaggctca ccaggaggac acagagcgct atgtgctcac caacctcaac atcggggcag 120 aactgcttcg ggacccgtcc ctgggggctc agtttcgggt gcacctggtg aagatggtca 180 ttctgacaga gcctgagggt gctccaaata tcacagccaa cctcacctcg tccctgctga 240 gcgtctgtgg gtggagccag accatcaacc ctgaggacga cacggatcct ggccatgctg 300 acctggtcct ctatatcact aggtttgacc tggagttgcc tgatggtaac cggcaggtgc 360 ggggcgtcac ccagctgggc ggtgcctgct ccccaacctg 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Gly Ala Pro 155 160 165 Gly Ser Gly Cys Gly Pro Ser Gly His Val Met Ala Ser Asp Gly 170 175 180 Ala Ala Pro Arg 185 <210>34 <211>2529 <212>DNA <213> Mus musculus <400>34 atgagccagc tttgcctgtg gttgacgtgc cagccttgtt atgctgtcag 50 tgtcagagga atcctcactg gtgccatctt cattctgggc tgctgggggc 100 tctctgactt ccagaagagt cttcttcaag atctggagcc caaggatgtg 150 tcttcttact ttggccacca tgctgctcca ttcacaggcc atcctccctc 200 tcacctccag agactgagac ggagaaggac tttggaggac attctgcacc 250 tggaactcct ggtagctgtg ggccccgatg tttcccgggc tcatcaggag 300 gacacagaac gctacgtgct cactaatctc aatatcgggt cagaactgtt 350 gagaaaccca tccctgggag tccagttcca ggtgcacctg gtgaagctaa 400 tcaccctctc tgactcagag agtactccga atatcacggc caacatcacc 450 tcatccttga tgagcgtctg cgagtggagc cagacgatca acccccacga 500 tgacagggat ccaagtcacg ctgacctgat tctctatatc accagcaacg 550 tggctggtgc cactgtcctt gtgattcatt ttctcttatc aaggtttgac 600 ctggagttgc ctgatggcaa ccagcaggtt cggggtgtca cccagctggg 650 aggtgcctgc tccctttcct ggagttgcct tatcactgag gatactggct 700 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caggctaaga tgtgcaacac gcaggcttgt 1450 gagaagactc agctggagtt catgtccgag cagtgtgccc agacagacag 1500 acaaccactg caactttccc aaggcactgc ctccttctac cactgggatg 1550 ctgctgtgca gtatagtcaa ggagataccc tgtgcagaca catgtgctgg 1600 gctgttggag aaagcttcat tgtcagccgt ggggacaggt tcctagatgg 1650 gacccgttgt gtgccaagtg gtcctcagga tgatgggacc ctaagcctct 1700 gtttgttggg cagctgcagg acctttggct gtgatggcag gatggactcc 1750 cagaaggttt gggatgcgtg ccaggtgtgt ggaggagaca acagcacctg 1800 cagctcacgg aatggttctt tcacagctgg gagagccaga gaatatgtca 1850 cgttcctgat tgttactccc aacatgacca acgcacacat tgtcaaccgc 1900 aggcctctct tcacacactt ggcggtgagg atccagggcc actacattgt 1950 ggcagggaag actagcatct cacccaacac cacctaccct tcccttctgg 2000 aggactaccg tgtggaatac agagtgactc tcactgagga ccagctgccc 2050 cacttagagg agattcacat ccggggaccc gtccgggatg acattgagat 2100 tcaggtgtac agacgatatg gaggagaata tggggatctt acacacccag 2150 acatcacctt ttcctacttt caactgaagc agcaggcagc ctgggtatgg 2200 accgctaagc gtggaccctg ctcagtgagc tgtggggcag ggctgcgctg 2250 ggtgacctac agctgccagg atcaagctca agacaagtgg gtaaagaacg 2300 cccagtgcca agggagccca cagccacctg catggcaaga gccttgtgtc 2350 tctgccccct gctccccata ttgggtagct ggggacttca gcccatgtag 2400 cgtgtcttgt ggcgggggcc ttcgggagcg gtcactgcgc tgtgtagaga 2450 cccaagatgg cttcttaaag acactgccac ctgcccggtg cagagcagta 2500 gcccagcagc cagcagcaga agtggaaaac tgcaactccc agccctgtcc 2550 caccaggtgg gaggtgtcag accctggccc ttgcatgcca tctgcctgtg 2600 aggcaggtct ggactcaagg aatgtgacat gtgtgtccag ggcgggtgac 2650 ccggagaagc cagaaactgc aggcccctgc cgcaccgacg agatgtcagc 2700 tatgctggag ccctgctcca ggagcctgtg ttctccaggc ttgggtcagg 2750 tggacaacac catgtctctg ggcgaggagg ctccatcccc ggtgggcagt 2800 gacaagccag gggctcaggc tgagcatgtg tggacccctc tggtggggct 2850 gtgctccatc tcttgtggga gaggtctgaa ggaactgtat ttcctgtgca 2900 tggattctgt cctcaaaatg cctgtccagg aagagctatg cggcttggct 2950 agtaagcccc caagccggtg ggaggtctgc agggctcgcc cctgtcctgc 3000 tcggtgggag actcaagtct tggcaccgtg cccggtgacc tgtggtgggg 3050 ggcgagtgcc actgtctgtt cgttgtgtgc agctagaccg tggccacccg 3100 atatctgtac ctcactccaa gtgctcgcca gtgcctaagc caggctcctt 3150 cgaggactgc agccctgagc cttgtcctgc tagggcacta gtgtgggaag 3200 ccgcccccac attcgccgtc acaagatggc gctgacatcc tgtgttctaa 3250 gttggtaaac aaataatctg cgcatgagcc aagggtattt acgactactt 3300 gtactctgtt tttcccgtga acgtcagctc ggccatgggc tgcagccaat 3350 cagggagtga tgcgtcctag gcaattgttg ttctctttta aatagaaggg 3400 gtttcgtttt tctctttttc ttgcttctta cactctggcc ccaaaaagat 3450 gtaagcaata aagctttgcc gtaggaaaaa aaaaaaaaaa ggatccggta 3500 cctctagatc ag 3512 <210>37 <211>22 <212>PRT <213> Homo sapiens <400>37 Phe Ser Pro Ala Pro Gln Pro Arg Arg Leu Leu Pro Gly Pro Gln 1 5 10 15 Glu Asn Ser Val Gln Ser Ser 20 <210>38 <211>30 <212>DNA <213> Homo sapiens <400>38 atgtgcaaca ctcaggcctg cgagaagacc 30 <210>39 <211>30 <212>DNA <213> Homo sapiens <400>39 ccaacctgac cagtgtctac attgccaacc 30 <210>40 <211>21 <212>DNA <213> Homo sapiens <400>40 ctggagccct gcccacctag g 21 <210>41 <211>62 <212>DNA <213> Homo sapiens <400>41 gccgtcgact cttatcactt atcgtcatcg tccttgtagt cttgcgacat gaactccagc 60 tg 62 <210>42 <211>62 <212>DNA <213> Homo sapiens <400>42 gccgtcgact cttatcactt atcgtcatcg tccttgtagt ccaggttggg ggtaactgtc 60 ag 62 <210>43 <211>62 <212>DNA <213> Homo sapiens <400>43 gccgtcgact cttatcactt atcgtcatcg tccttgtagt ccacgtgtgc agcttgagcc 60 cc 62 <210>44 <211>62 <212>DNA <213> Homo sapiens <400>44 gccgtcgact cttatcactt atcgtcatcg tccttgtagt ccctaggtgg gcagggctcc 60 ag 62 <210>45 <211>62 <212>DNA <213> Homo sapiens <400>45 gccgtcgact cttatcactt atcgtcatcg tccttgtagt caccctgtcc cacacagggc 60 cc 62 <210>46 <211>60 <212>DNA <213> Homo sapiens <400>46 tccaagcttg tcgactctta tcacttatcg tcatcgtcct tgtagtcggt tccttccttt 60 <210>47 <211>27 <212>DNA <213> Artificial Sequence <220> <223> Description of Artificial Sequence:Synthetic DNA <400>47 gactacaagg acgatgacga taagtga 27 <210>48 <211>8 <212>RPT <213> Artificial Sequence <220> <223> Description of Artificial Sequence:Synthetic <400>48 Asp Tyr Lys Asp Asp Asp Asp Lys 5
【図面の簡単な説明】
【図1】 vWFのマルチマー構造とvWF切断酵素に
よる切断点を示す図である。
【図2】 vWFのマルチマー解析の結果(アガロース
電気泳動)を示す図である。
【図3】 プラズマ各画分のvWF切断活性を還元条件
下のSDS−PAGEで確認した結果を示す図である。
【図4】 フラクション1(F1)ペースト可溶化サンプ
ルの非還元下のSDS−PAGEの泳動図である。
【図5】 F1ペースト可溶化サンプルを出発原料とし
て3回のゲル濾過クロマトグラフィーに通液後のvWF
切断酵素画分の解析結果(ゲル濾過クロマトグラフィー
のチャート、非還元下でのSDS−PAGE及び還元条
件下でのvWF切断活性のSDS−PAGE)を示す図
である。
【図6】 ゲル濾過クロマトグラフィー回収画分をDE
AE陰イオン交換クロマトグラフィーによって精製した
vWF切断酵素画分の解析結果(ゲル濾過クロマトグラ
フィーのチャート、非還元下でのSDS−PAGE及び
還元条件下でのvWF切断活性のSDS−PAGE)を
示す図である。
【図7】 DEAE陰イオン交換クロマトグラフィーに
よって精製・濃縮したvWF切断酵素画分をバイオフォ
レーシスに基づくSDS−PAGEによってさらに精製
した時の泳動画分を示す図である。
【図8】 vWF切断酵素画分をバイオフォレーシスに
基づくSDS−PAGEによってさらに精製した画分の
vWF切断酵素活性の確認及び活性画分の還元下でのS
DS−PAGEの泳動図である。
【図9】 vWF切断酵素遺伝子の同定に関し、ノザン
ブロットプローブ用遺伝子断片の増幅に用いたプライマ
ーを示す。
【図10】 vWF切断酵素遺伝子の同定に関し、ノザ
ンブロットのオートラジオグラフィーを示す。A:当該蛋
白質分解酵素コード遺伝子プローブ B:βアクチンプロ
ーブ(RNAコントロール)
【図11】 vWF切断酵素遺伝子の同定に関し、RA
CE反応に用いたプライマーの位置と配列を示す。
【図12】 全長cDNAクローニング用に設計したプライ
マーの位置を示す。
【図13】 全長cDNAを含むベクターの構築手順を示
す。
【図14】 各種細胞株での発現を示す (抗FLAG抗体
を用いた還元条件下のウエスタンブロット;Mockは遺伝
子を発現ベクターへ逆向きに挿入したもの)。
【図15】 組換え発現酵素の活性測定を示す(非還元
下のSDS-PAGEによるvWF切断の確認;Mockは遺伝子を発
現ベクターへ逆向きに挿入したもの)。
【図16】 本酵素に対して確立された抗体によるウエ
スタンブロットを示す。293細胞を宿主とした組換えvWF
切断酵素を用いた各種抗血清でのウェスタンブロット。
【図17】 本酵素に対して確立された抗体によるウエ
スタンブロットを示す。vWF切断酵素全長のcDNA投与に
より得られたウサギ抗血清を用いてヒトプラズマ由来各
種サンプルと組換え発現体の検出。
【図18】 本酵素に対して確立された抗体によるウエ
スタンブロットを示す。vWF切断酵素の部分合成ペプチ
ドを免疫して得られたウサギ抗血清を用いた健常人血漿
及びTTP患者血漿中のvWF切断酵素並びに遺伝子組換えvW
F切断酵素の確認。
【図19】 vWF切断酵素に対して調製された抗体を用
いたELISAを示す。
【図20】 抗体を用いたアフィニティー精製vWF切断
酵素各画分の還元下でのSDS-PAGE(銀染色)。
【図21】 抗体を用いた中和活性能の評価(非還元下
のvWF切断活性のSDS-PAGE)。
【図22】 C末端ドメイン欠失発現ベクター構築図
【図23】 C末端ドメイン欠失体の発現を示す。(抗F
LAG抗体を用いた還元条件下のウエスタンブロット)
【図24】 C末端ドメイン欠失体のvWF切断活性を示
す。(還元SDS-PAGEによるvWF切断の検出)
───────────────────────────────────────────────────── フロントページの続き (51)Int.Cl.7 識別記号 FI テーマコート゛(参考) A61K 39/395 A61K 48/00 4C085 45/00 A61P 1/16 4C086 48/00 7/02 4H045 A61P 1/16 9/04 7/02 9/10 9/04 101 9/10 43/00 105 101 C07K 16/40 43/00 105 C12N 1/15 C07K 16/40 1/19 C12N 1/15 1/21 1/19 9/50 1/21 C12Q 1/37 5/10 C12N 15/00 ZNAA 9/50 5/00 A C12Q 1/37 A61K 37/54 (31)優先権主張番号 特願2002−17596(P2002−17596) (32)優先日 平成14年1月25日(2002.1.25) (33)優先権主張国 日本(JP) (72)発明者 前田 浩明 熊本県菊池郡旭志村川辺四の西沖1314−1 財団法人化学及血清療法研究所 菊池研 究所内 (72)発明者 野崎 周英 熊本県菊池郡旭志村川辺四の西沖1314−1 財団法人化学及血清療法研究所 菊池研 究所内 (72)発明者 濱本 高義 熊本県熊本市大窪一丁目6番1号 財団法 人化学及血清療法研究所内 (72)発明者 中垣 智弘 熊本県熊本市大窪一丁目6番1号 財団法 人化学及血清療法研究所内 Fターム(参考) 4B024 AA01 AA11 BA14 BA41 CA04 DA03 DA06 EA04 GA11 HA01 HA04 4B050 CC01 CC04 DD11 FF14C LL01 4B063 QA01 QQ03 QQ20 QQ36 QR57 QS12 QS16 4B065 AA93X AA93Y AB01 AC14 BA02 CA25 CA33 CA44 CA60 4C084 AA01 AA02 AA07 AA13 AA17 BA01 BA08 BA22 BA23 CA18 DC10 NA14 ZA361 ZA401 ZA451 ZA541 ZC192 ZC202 ZC412 4C085 AA13 AA14 BB11 CC05 DD23 DD33 4C086 AA01 AA02 AA03 EA16 MA01 MA04 NA14 ZA36 ZA40 ZA45 ZA54 ZC19 ZC20 ZC41 4H045 AA11 BA10 CA40 DA76 DA89 EA24 FA72 FA74 GA26

Claims (34)

    【特許請求の範囲】
  1. 【請求項1】 フォンビルブラント因子(von Willebran
    d Factor:以下、vWFと称することがある)の842
    Tyr−843Metの結合を切断し得る性状を有し、
    部分配列としてLeu-Leu-Val-Ala-Valのアミノ酸配列ま
    たは当該アミノ酸配列のうち1もしくは数個のアミノ酸
    が欠失、置換もしくは付加されたアミノ酸配列を含有す
    るポリペプチド鎖よりなる蛋白質分解酵素。
  2. 【請求項2】 成熟型蛋白質のN末端側部分配列として
    Ala-Ala-Gly-Gly-Ile-Leu-His-Leu-Glu-Leu-Leu-Val-Al
    a-Valのアミノ酸配列または当該アミノ酸配列のうち1
    もしくは数個のアミノ酸が欠失、置換もしくは付加され
    たアミノ酸配列を含有するポリペプチド鎖よりなる、請
    求項1に記載の蛋白質分解酵素。
  3. 【請求項3】 成熟型蛋白質のN末端側部分配列とし
    て、配列番号3もしくは7で表されるアミノ酸配列のう
    ち1もしくは数個のアミノ酸が欠失、置換もしくは付加
    されたアミノ酸配列または前記のいずれかのアミノ酸配
    列の部分配列もしくは前記アミノ酸配列を含有するポリ
    ペプチド鎖よりなる、請求項1または請求項2のいずれ
    かに記載の蛋白質分解酵素。
  4. 【請求項4】 配列番号16から配列番号21のいずれ
    かに記載のアミノ酸配列のうち1もしくは数個のアミノ
    酸が欠失、置換もしくは付加されたアミノ酸配列を含有
    するポリペプチド鎖よりなる、請求項1ないし請求項3
    のいずれかに記載の蛋白質分解酵素。
  5. 【請求項5】 還元あるいは非還元条件下のSDS−P
    AGEにおいて105〜160kDaあるいは160〜
    250kDaの分子量を有する請求項1ないし請求項4
    のいずれかに記載の蛋白質分解酵素。
  6. 【請求項6】 vWFの842Tyr−843Metの
    結合を切断する能力を有し、部分配列としてLeu-Leu-Va
    l-Ala-Valのアミノ酸配列または当該アミノ酸配列のう
    ち1もしくは数個のアミノ酸が欠失、置換もしくは付加
    されたアミノ酸配列を含有するポリペプチド鎖よりなる
    蛋白質分解酵素をコードする遺伝子断片。
  7. 【請求項7】 請求項2ないし請求項5のいずれか1項
    に記載の蛋白質分解酵素をコードする遺伝子断片。
  8. 【請求項8】 vWFの842Tyr−843Metを
    切断し得る活性を有するポリペプチドをコードする塩基
    配列であって、CTG CTG GTG GCC GTG
    からなる塩基配列または当該配列のうち1もしくは数個
    の塩基が欠失、置換もしくは付加された塩基配列を含有
    する、前記請求項1ないし請求項5のいずれか1項に記
    載の蛋白質分解酵素をコードするDNA。
  9. 【請求項9】 GCT GCA GGC GGC ATC
    CTA CAC CTG GAG CTG CTG GTG
    GCC GTGからなる塩基配列または当該配列のうち
    1もしくは数個の塩基が欠失、置換もしくは付加された
    塩基配列を含有する、請求項8記載の蛋白質分解酵素を
    コードするDNA。
  10. 【請求項10】 配列番号6で表される塩基配列のうち
    1もしくは数個の塩基が欠失、置換もしくは付加された
    塩基配列または前記のいずれかの塩基配列の部分配列ま
    たは前記塩基配列を含有する請求項8または請求項9記
    載の蛋白質分解酵素をコードするDNA。
  11. 【請求項11】 配列番号15で表される塩基配列のう
    ち1もしくは数個の塩基が欠失、置換もしくは付加され
    た塩基配列または前記のいずれかの塩基配列の部分配列
    または前記塩基配列を含有する請求項8ないし請求項1
    0のいずれか1項に記載の蛋白質分解酵素をコードする
    DNA。
  12. 【請求項12】 配列番号6もしくは15で表される塩
    基配列のうち1もしくは数個の塩基が欠失、置換もしく
    は付加された塩基配列または前記のいずれかの塩基配列
    の部分配列または前記塩基配列を含有する請求項8ない
    し請求項9記載の蛋白質分解酵素をコードするDNAを
    含むことを特徴とするベクター。
  13. 【請求項13】 ポリペプチドコード領域を含み、当該
    ポリペプチドの発現に特化されることを特徴とする請求
    項12記載のベクター。
  14. 【請求項14】 請求項12記載のベクターで形質転換
    またはトランスフェクトされた細胞。
  15. 【請求項15】 請求項13記載の発現ベクターで形質
    転換またはトランスフェクトされた宿主細胞。
  16. 【請求項16】 請求項1ないし請求項5記載の蛋白質
    分解酵素を含有して成る医薬品組成物。
  17. 【請求項17】 遺伝子異常もしくは肝臓の疾病に伴う
    請求項1ないし請求項5記載の蛋白質分解酵素の活性低
    下による疾病の改善に適用される、請求項16記載の医
    薬品組成物。
  18. 【請求項18】 過剰量のvWF高分子マルチマーの生
    成に起因する血小板凝集の抑制に適用される、請求項1
    6または請求項17に記載の医薬品組成物。
  19. 【請求項19】 疾病が血栓性血小板減少性紫斑病であ
    る請求項17記載の医薬品組成物。
  20. 【請求項20】 請求項1から請求項5のいずれか1項
    に記載の蛋白質分解酵素に対する抗体。
  21. 【請求項21】 請求項1から請求項5のいずれか1項
    に記載の蛋白質分解酵素に対する抗体であって、当該酵
    素の活性を阻害もしくは中和し得る請求項20記載の抗
    体。
  22. 【請求項22】 請求項1から請求項5のいずれか1項
    に記載の蛋白質分解酵素に対する抗体であって、当該酵
    素のアフィニティー精製に用いられ得る請求項20記載
    の抗体。
  23. 【請求項23】 請求項22記載の抗体を使用してなる
    請求項1から請求項5のいずれか1項に記載の蛋白質分
    解酵素の精製方法。
  24. 【請求項24】 請求項1から請求項5のいずれか1項
    に記載の蛋白質分解酵素に対する抗体を含有してなる医
    薬品組成物または診断薬。
  25. 【請求項25】 請求項1から請求項5のいずれか1項
    に記載の蛋白質分解酵素のアンタゴニストもしくは阻害
    剤あるいはアゴニストもしくは活性調節剤。
  26. 【請求項26】 請求項1から請求項5のいずれか1項
    に記載の蛋白質分解酵素のアンタゴニストもしくは阻害
    剤あるいはアゴニストもしくは活性調節剤を含有してな
    る医薬品組成物または診断薬。
  27. 【請求項27】 請求項8から請求項11のいずれか1
    項に記載のDNAまたは当該DNAのアンチセンスDN
    Aを含有して成る医薬品組成物または診断薬。
  28. 【請求項28】 遺伝子異常もしくは肝臓の疾病に伴
    う、請求項1から請求項5のいずれか1項に記載の蛋白
    質分解酵素の活性低下による疾病の改善を目的とする遺
    伝子治療に用いられる、請求項27記載の医薬品組成
    物。
  29. 【請求項29】 メンブレンフィルター上でのvWF及
    びvWF切断酵素による酵素・基質反応の後、当該フィ
    ルターより基質サンプルを回収し、ウェスタンブロッテ
    ィングに供することなく、SDS−PAGEに供し解析
    することを特徴とするvWF切断活性の測定方法。
  30. 【請求項30】 請求項29記載の方法により被験化合
    物のvWF切断活性を測定することを含む、vWFを切
    断し得る化合物をスクリーニングする方法。
  31. 【請求項31】 ヒト血漿フラクションIペーストを出
    発材料とする、請求項1から請求項5のいずれか1項に
    記載の蛋白質分解酵素の調製方法。
  32. 【請求項32】 請求項1から請求項5のいずれか1項
    に記載の蛋白質分解酵素の他動物種ホモログまたは相同
    な蛋白質。
  33. 【請求項33】 請求項32記載の当該蛋白質の他動物
    種ホモログまたは相同な蛋白質をコードする遺伝子。
  34. 【請求項34】 請求項32記載の当該蛋白質の他動物
    種ホモログまたは相同な蛋白質をコードする遺伝子を改
    変された動物。
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