JP2003180382A - Il−13受容体ポリペプチド - Google Patents
Il−13受容体ポリペプチドInfo
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Abstract
3の調節の現象の、および特にこれらの2種のサイトカ
インのいずれかによって創製される効果を分離し、別々
に制御すること。 【解決手段】 IL−13に特異的に結合することがで
きる配列番号:2の配列のフラグメントからなり、かつ
/または細胞膜のレベルでIL−13によって特異的に
生成されるシグナルの伝達に関与し、かつ/または配列
番号:2の配列のポリペプチドに特異的な抗体によって
認識され、ならびに/あるいは配列番号2の配列のポリ
ペプチドを認識する抗体を誘導することができる精製さ
れたポリペプチド。
Description
-13(IL-13)に対して特異的な受容体活性を有す
る精製ポリペプチド、その生物学的に活性なフラグメン
ト、および相当する核酸配列、ならびにそれらの適用に
関する。
2)、活性化Tリンパ球、活性化後のBリンパ球および
肥満細胞によって分泌される112アミノ酸のサイトカ
インである。IL-4と共有するその膨大な生物特性に
より、IL-13はIL-4様サイトカインとして説明さ
れている。その活性は、B-細胞(3-5)、単球(6-
10)および他の非-造血細胞(11-12)に対するI
L-4の活性に実際に類似している。一方、IL-4とは
反対に、休止または活性化T細胞に対しては特異的な効
果を何ら及ぼさないようである(13)。
ある種の造血前駆体に対するIL-13の種々の生物活
性はA.J.Mintyによって、ならびにIL-13の概説論文
に詳記されている(例えば14を参照されたし)。加え
て、幾つかのデータは、このサイトカインが他の細胞型
に対して多面的な効果を有することを示している。IL
-13によって直接的に影響を受けるこれらの非-造血細
胞は、内皮細胞および小膠細胞、表皮ケラチン細胞、な
らびに腎臓および小腸のガン腫である。IL-13の抗-
炎症および免疫調節活性は、例えば、自己免疫疾患、腫
瘍およびウイルス病理の治療に有用となり得る。
の生物特性の利用には、関連する病理において生物特性
を制御および変調させることができるように、それを介
してこの効果が発揮されるシグナルおよびメカニズムの
完全な認識が要求される。細胞内の生物分子によって伝
達されるシグナルの分析におけるステージの1つは、そ
の膜受容体を同定することにある。IL-13受容体の
この側面に対して行った研究実験により、IL-13お
よびIL-4が共通の受容体、または非常に少なく見積
もっても共通受容体複合体の幾つかのコンポーネント、
ならびに共通のシグナル伝達エレメントを有することが
示されている(15-18)。この受容体は、考えられ
る細胞型によって変動し得る数で、種々の細胞型の表面
に存在する。IL-13およびIL-14受容体の比較分
布が、A.J.Minty(14)によって示されている。
和性を有する受容体の構造を記載している。この受容体
は、140kDaの糖蛋白質(IL-4R)とIL-2受
容体のγ鎖(γc)との会合によって形成されるダイマ
ーである。IL-4は高親和性(50〜100pMのK
d)で140kDaの糖蛋白質サブユニット(IL-4
Rまたはgp140)に結合することができる(1
5)。しかしながら、この親和性は、γc鎖がgp14
0と会合した場合には、2〜3倍だけ上昇する。加え
て、この会合はIL-4により媒介されるある種のシグ
ナルの伝達にも必要である(19、20)。
性に関する交差-競合実験により、IL-4はIL-13
の結合性を通常妨害し得るが、IL-13は一般的にI
L-4のその受容体に対する結合性を部分的にしか妨害
できず(17、21)、IL-4受容体の2個のサブユ
ニットのいずれにも、またはそれらの会合によって形成
された複合体にも結合しないことが立証されている。こ
れらの知見に基づいて、本発明者らは、IL-13に対
して特異的な受容体が、もう1個のIL-13結合性コ
ンポーネント(IL-13Rβ)と会合した受容体複合
体IL-4よりなると予想した。
ることができる赤白血球細胞系統(TF-1系統)で行
った研究実験により、これらの2種のサイトカインがそ
れらの受容体に結合した後に同様の細胞内事象を生成す
ることが示された(18)。平行して、交差-連結(cro
ss-linking)実験により、gp140が、γ鎖または新
たなサブユニットのいずれかと分子量55〜70kDa
のヘテロダイマーを形成し得ることが示された(17、
21)。
た研究実験により、424アミノ酸残基のポリペプチド
(IL−13Rα)をコードするゲノムDNAおよびc
DNAを単離することが可能となったが、これは、高親
和性、すなわちその定数Kdが約10pM〜100pM
の値にある親和性を有する受容体(低親和性受容体は、
2nM〜10nMの値にある定数Kdを有している)
(22、23)を構成するように、IL-13受容体が
IL-4受容体と共通の鎖を分有していることを示して
いる。
IL-4およびIL-13の調節の現象の、および特にこ
れらの2種のサイトカインのいずれかによって創製され
る効果を分離し、別々に制御することができる可能性の
明確な理解の重要性に鑑み、本発明者らは、一方では、
高親和性を有するポリペプチド特異的結合性IL-13
の特徴付けに、他方では、低親和性でIL-13に単独
で特異的に結合し、IL-4受容体と会合するとIL-1
3に対する高親和性受容体を構成するもう1種のポリペ
プチドの特徴付けに関心を持った。
の公知のヒト腎臓ガン腫系統(21)よりもより多量に
IL-13特異的受容体を発現しているヒトガン腫細胞
系統を同定し、今回、IL-4/IL-13受容体に対す
るIL-13の結合に寄与する、IL-13Rβと称する
一次サブユニットのクローニング、ならびに2種のサイ
トカイン間の交差-競合を許容する高親和性受容体を構
成するためにIL-13受容体とIL-4受容体によって
分有されている、IL-13Rαと称する共通鎖のクロ
ーニングを行った。しかるに、本発明はIL-13に特
異的に結合する精製ポリペプチドに関する。
酸配列がIL-13に対して特異的な受容体(IL-13
RβおよびIL-13Rα)の配列に対応する精製ポリ
ペプチド、またはその生物学的に活性なフラグメントで
ある。また、本発明の対象は、該ポリペプチドまたはそ
の生物学的に活性なフラグメントをコードする単離DN
A配列でもある。加えて、本発明は、前記定義のヌクレ
オチド配列の少なくとも1種を含有する発現ベクター、
および該ヌクレオチド配列のうちの1種の複製および/
または発現を許容する条件下にてこれらの発現ベクター
でトランスフェクトした宿主細胞に関する。トランスフ
ェクトした宿主細胞による組換えIL-13Rβおよび
IL-13Rαまたはそれらの生物学的に活性なフラグ
メントの産生方法も本発明の一部である。
される免疫および炎症メカニズムを調節するための、I
L-13Rβおよび/またはIL-13Rαまたはそれら
の生物学的に活性なフラグメントを含む医薬組成物をも
含む。加えて、本発明は、IL-13Rβおよび/また
はIL-13Rαの活性を変調させることができる剤を
同定するための方法、およびこれらの剤をスクリーニン
グするためのIL-13Rβおよび/またはIL-13R
αまたはそれらのフラグメントの使用、ならびにIL-
13受容体の活性を変調させることができる新規な生成
物の製造方法に関する。
またはIL-13Rαに対して特異的な抗体または抗体
の誘導体をも含む。
/またはIL-13Rα、それらの生物学的に活性なフ
ラグメントのうちの1種、またはこの受容体の活性を特
異的に変調させることができる化合物を、医薬上許容さ
れるビヒクルと組合せて患者に投与することを含む、I
L-13によって媒介される免疫反応を変調させるため
の治療処理方法に関する。
以下の定義を使用する:‐高親和性でIL-13に特異
的に結合するポリペプチド(IL-13Rβ):配列番
号2のアミノ酸配列を含むポリペプチド、またはそのい
ずれかの生物学的に活性なフラグメントもしくは誘導
体;
合し、IL-4受容体と会合すると高親和性受容体を構
成するポリペプチド(IL-13Rα):配列番号4の
アミノ酸配列を含むポリペプチド、またはそのいずれか
の生物学的に活性なフラグメントもしくは誘導体;
結合することができ、かつ/または細胞膜のレベルでI
L-13によって特異的に生成されるシグナルの伝達に
関与することができ、かつ/またはIL-4およびIL-
13に結合することができる複合体を形成するように、
IL-4に対して特異的な受容体(IL-4R/gp14
0)と相互作用することができ、かつ/または配列番号
2の配列および/または配列番号4の配列のポリペプチ
ドに対して特異的な抗体によって認識され、ならびに/
あるいは配列番号2の配列および/または配列番号4の
配列のポリペプチドを認識する抗体を誘導することがで
きること;
は配列番号4の配列のポリペプチドの変異型であるいず
れかのポリペプチド、または配列番号2の配列または配
列番号4の配列の遺伝的および/または化学的性質の改
変から得た、すなわち1個または限定数のアミノ酸の突
然変異、欠失、付加、置換および/または化学修飾によ
って得たいずれかの分子、ならびにいずれかのイソ型配
列、すなわち、配列番号2の配列または配列番号4の配
列、それらを生物学的に活性とする少なくとも1種の保
存された特性を有するD エナンチオマー形、該変異
型、修飾またはイソ型配列中に1または2以上のアミノ
酸を含有する、それらのフラグメントのうちの1種もし
くはそれらの修飾配列のうちの1種に等しい配列。
のいずれかの生物学的に活性な配列;から選択されるア
ミノ酸配列を含む精製ポリペプチドである。誘導体の製
造は種々の対象物を有することができ、これには特にI
L-13に対する受容体の親和性を上昇させるもの、I
L-13とIL-4との間の交差-競合を変調させるも
の、それらの産生レベルを向上するもの、プロテアーゼ
に対するそれらの耐性を上昇させるもの、それらの生物
活性を改善するもの、あるいは新規な医薬的および/ま
たは生物学的特性をそれらに付与するものが含まれる。
前記定義のポリペプチドの生物学的に活性な変異型の中
では、前記のアミノ酸配列のうちの1種をコードする遺
伝子の転写物(メッセンジャーRNA)の可変スプライ
シング(alternate splicing)によって生成されたフ
ラグメントが好ましい。
列のポリペプチドの8個のC-末端アミノ酸が以下の6
個のアミノ酸:VRCVTLによって置換されている。
もう1つの有利な態様により、本発明は、残基343、
好ましくは残基337まで伸長する配列番号2の配列の
ポリペプチドの細胞外ドメインを特に含む、IL-13
Rβsと称するIL-13Rβの可溶性形態、ならび
に、残基343、好ましくは残基336と342との間
の残基まで伸長する配列番号4の配列のポリペプチドの
細胞外ドメインを特に含む、IL-13Rαsと称する
IL-13Rαの可溶性形態に関する。
を含むポリペプチドは、本発明の特定の具体例を表す。
実施例から明らかとなるように、このポリペプチドは、
機能性IL-13受容体を形成するようにヒト細胞の表
面に発現させることができ、かつ/または、IL-2受
容体のγ鎖と共に、IL-4およびIL-13に共通の受
容体複合体を形成するようにIL-4受容体と結合させ
ることができる。
はそれらの相補的配列にハイブリダイズすることがで
き、かつIL-13受容体活性を有するポリペプチドを
コードし、またはIL-13およびIL-4に対して高親
和性を有する受容体を再構成することができる核酸配
列、ならびに d)遺伝コードの縮重のために、配列a)、b)および
c)由来となる核酸配列;から選択される単離核酸配列
でもある。
物特性の少なくとも1つを保存している、IL-13R
βまたはIL-13Rαの可溶性部分をコードする配
列、およびIL-13RβまたはIL-13Rαの転写物
の可変スプライシングによって生成されるいずれかの変
異型である。
クレオチド番号1からヌクレオチド1081まで、好ま
しくはヌクレオチド1063まで伸長するヌクレオチド
のストレッチを含むか、またはそれからなる核酸配列に
よって表される。
の配列のヌクレオチド番号1からヌクレオチド番号10
59まで、好ましくは番号1041と1056との間の
ヌクレオチドまで伸長するヌクレオチドのストレッチを
含むか、またはそれからなる核酸配列によって表され
る。
-13RβまたはIL-13Rαの成熟形態に相当する蛋
白質をコードする配列であり、この成熟蛋白質はシグナ
ルペプチドの放出の結果物である。
的な起源または他のものとし得る。それらは、配列番号
1の配列または配列番号3の配列に基づいて作製したプ
ローブにより配列ライブラリーをスクリーニングするこ
とによって得られるDNAまたはRNA配列とし得る。
かかるライブラリーは、当業者に知られている慣用的な
分子生物学的技術によって調製し得る。
成、または別法としてライブラリーのスクリーニングに
よって得た配列の化学的または酵素的修飾を含む方法の
組合せによっても調製し得る。
によるポリペプチドまたはその生物学的に活性なフラグ
メントをコードするヌクレオチド・プローブを調製する
ことができる。適当なハイブリダイゼーション条件は、
当業者によって日常的に使用されている温度およびイオ
ン強度条件、好ましくはTm-5℃とTm-30℃との間
の温度条件、なおより好ましくはTm-5℃とTm-10
℃との間の温度条件(高ストリンジェンシー)であり、
Tmとは50%の塩基対形成鎖が分離する温度として定
義される溶融温度である。これらは、生物試料中の本発
明のポリペプチドに特異的な転写物をハイブリダイゼー
ション実験によって検出するための、あるいは多形性、
突然変異、または不完全な(poor)スプライシングから
生じる異常な合成または遺伝的異常を検出するためのイ
ン・ビトロ(in vitro)診断ツールとして用いることが
できる。
ヌクレオチドを含み、最大限、配列番号1の全体のヌク
レオチド配列もしくは配列番号3の全体のヌクレオチド
配列、またはそれらの相補鎖を含む。最も短いプロー
ブ、すなわち約10〜15ヌクレオチドのものの中で
は、適当なハイブリダイゼーション条件は当業者により
日常的に使用されている温度およびイオン強度条件に相
当する。
前に標識する。それに関しては、例えば蛍光、放射能、
化学発光、または酵素標識のごとき幾つかの技術が、当
業者の能力の範囲内に存在する。
学的に活性なフラグメントをコードする核酸配列のレベ
ルの異型接合性および遺伝子転移の欠失のごとき異常な
合成または遺伝的異常の検出にこれらのヌクレオチドプ
ローブを用いるイン・ビトロ診断方法が本発明に包含さ
れる。かかるタイプの方法は: -所望により、後記のヌクレオチド配列を増幅させる予
備工程の後であってもよいが、本発明のヌクレオチドプ
ローブと前記のヌクレオチド配列との間のハイブリダイ
ゼーション複合体の形成を許容する条件下にて、該プロ
ーブを生物試料とを接触させ; -形成され得るハイブリダイゼーション複合体を検出
し;ついで -所望により、本発明のプローブとハイブリダイゼーシ
ョン複合体を形成するヌクレオチド配列を配列決定して
もよい;ことを含む。
体異常の検出にも有利に用いることができる。本発明の
ヌクレオチド配列は、いわゆるPCR(ポリメラーゼ連
鎖反応)技術またはそのいずれか他の変形により、配列
決定反応または特異的な増幅反応用のセンスおよび/ま
たはアンチセンス・オリゴヌクレオチドプライマーの製
造および使用にも有用である。
は、メッセンジャーRNAを包含する核酸配列と特異的
にハイブリダイズすることができるアンチセンス配列を
調製する治療分野においても用途を有し、遺伝子治療に
も使用することができる。かくして、本発明の対象は、
前記定義のIL-13受容体ポリペプチドの生成を、少
なくとも部分的に阻害することができるアンチセンス配
列である。かかる配列は、有利には、転写レベルのIL
-13RβまたはIL-13Rαをコードするリーディン
グフレームを構成するものからなる。それらは、より特
に、アレルギーまたは炎症の治療に使用することができ
る。
は、IL-13受容体活性を有する前記定義の組換えポ
リペプチドの生成にも使用することができる。これらの
ポリペプチドは、当業者に知られている組換え産物を作
製するための技術により、前記定義のヌクレオチド配列
から作製することができる。この場合においては、使用
するヌクレオチド配列を、細胞性宿主中のその発現を許
容するシグナルの制御下に置く。使用する細胞性宿主
は、細菌のごとき原核生物系、または酵母、昆虫細胞、
CHO細胞(チャイニーズハムスター卵巣細胞)または
有利に商業的に入手可能ないずれかの他の系のごとき真
核生物系から選択することができる。本発明のポリペプ
チドの発現に好ましい細胞性宿主は、繊維芽細胞系統C
OS-7またはCOS-3からなる。
配列のごときポリペプチドの発現を制御するシグナル
は、使用する細胞性宿主に従って選択する。この終了ま
でに、本発明によるヌクレオチド配列を、選択した宿主
内の自己複製性ベクター、または選択した宿主の組込み
性ベクターに挿入することができる。かかるベクター
は、当業者によって日常的に使用されている方法に従っ
て調製され、得られたクローンは、例えばエレクトロポ
レーションのごとき標準的な方法によって適当な宿主に
導入することができるであろう。
1種を含む発現ベクターも、本発明の一部である。CO
S-7またはCOS-3細胞の場合においては、(17)
に記載されているのと同様に、ベクターpSE-1を使
用してトランスフェクションを行うことができる。
によってトランスフェクトした宿主細胞にも関する。こ
れらの細胞は、前記定義のベクターに挿入したヌクレオ
チド配列を宿主細胞に導入し、つづいてトランスフェク
トしたヌクレオチド配列の複製および/または発現を許
容する条件下にて該細胞を培養することによって得るこ
とができる。これらの細胞は、配列番号2の配列または
配列番号4の配列の組換えポリペプチドあるいはその誘
導体の産生方法に使用することができ、該方法はそれ自
体が本発明に含まれ、配列番号2の配列もしくは配列番
号4の配列の組換えポリペプチドまたは誘導体の発現を
許容する条件下にて該トランスフェクトした細胞を培養
し、該組換えポリペプチドペプチドを回収することを特
徴とする。
る。組換えポリペプチドペプチドは、分画、クロマトグ
ラフィー法、特異的なモノクローナル抗体もしくはポリ
クローナル抗体を用いるイムノアフィニティー技術のご
ときを独立で、または組合せて用いる方法によって、細
胞溶解物および抽出物から、培養上清から精製すること
ができる。
たはIL-13Rαを特異的に認識することができるモ
ノ-またはポリクローナル抗体も本発明の一部である。
ポリクローナル抗体は、通常の手法により、IL-13
Rβおよび/またはIL-13Rαに対して免疫化した
動物の血清から得ることができる。モノクローナル抗体
は、KoehlerおよびMilstein(Nature,1975,256,495-4
97)によって記載されている慣用的なハイブリドーマ培
養法に従って得ることができる。
たはIL-13Rαの細胞外ドメインに対して指向され
た抗体である。本発明による抗体は、例えば、キメラ抗
体、ヒト化(humanized)抗体、FabおよびF(a
b’)2フラグメントである。それらは、標識化抗体ま
たは免疫コンジュゲートの形態としても存在し得る。例
えば、それらは、ジフテリア毒のごとき毒素と、または
放射性物と会合していてもよい。この場合においては、
これらのイムノトキシンは、IL-13Rβおよび/ま
たはIL-13Rαの過剰発現に関与するある種の病理
の治療に使用することができる治療剤を構成し得る。本
発明の抗体、特にモノクローナル抗体は、例えば、免疫
蛍光によってか、または金もしくはペルオキシダーゼ標
識によって、特定の組織切片上のIL-13受容体の免
疫組織化学分析にも使用することができる。
IL-13Rβおよび/またはIL-13Rαの発現を観
察することが要求されたり、または膜発現の調節をモニ
ターするいずれの状況においても有利に使用することが
できる。しかるに、本発明は、異常なレベルで発現され
たIL−13Rβおよび/またはIL−13Rαを含有し得
る生物試料中の、IL−13Rβおよび/またはIL−13
Rαの異常な発現と関連付けられる病理のイン・ビトロ
診断方法にも関し、該方法は、本発明の少なくとも1種
の抗体を、IL−13Rβおよび/またはIL−13Rαと
該抗体(群)との間の特異的な免疫複合体の可能な形成
を許容する条件下にて、該生物試料と接触させ、形成さ
れ得る該特異的な免疫複合体を検出することを特徴とす
る。
βおよび/またはIL−13Rαの異常な発現のイン・ビ
トロ診断用の、ならびに/あるいは該試料中のIL-1
3受容体の発現レベルを測定するためのキットにも関
し、該キットは、 -所望により支持体に結合されていてもよい、IL−13
Rβおよび/またはIL−13Rαに対して特異的な少な
くとも1種の抗体、 -IL−13Rβおよび/またはIL−13Rαと該抗体
(群)との間の特異的な抗原/抗体複合体の形成を明ら
かにするための手段、および/またはこれらの複合体を
定量化するための手段を含む。
および/またはIL−13Rαに特異的なリガンドまたは
その活性を変調させることができる剤を同定および/ま
たは単離するための方法に関し、該方法は、所望により
未同定であってもよい、当該化合物が受容体に対する親
和性を有するであろう場合には、化合物または種々の化
合物を含有する混合物を、IL-13受容体と該化合物
との間の相互作用を許容する条件下にて、その表面にI
L−13Rβおよび/またはIL−13Rαを発現している
細胞と接触させ、IL−13Rβおよび/またはIL−13
Rαに結合した化合物、またはその生物活性を変調させ
ることができるものを検出および/または単離すること
を特徴とする。
は、そのIL-13Rβおよび/またはIL-13Rα受
容体についてのIL-13のアゴニストおよびアンタゴ
ニストの同定および/または単離に適用される。また、
本発明は、医薬上許容される担体と結合した、有効成分
として、好ましくは可溶性形態の、前記定義に相当する
ポリペプチドを含む医薬組成物をも含む。かかるポリペ
プチドは、細胞表面に発現されたIL−13Rβおよび/
またはIL−13Rαと実際に競合して作用し、それによ
って、IL−13のその受容体への結合性に特異的なア
ンタゴニストを構成することができ、病理状態において
IL-13によって媒介される反応を変調させることを
意図した医薬生成物の合成に有利に使用することができ
る。
クルと結合した、IL−13Rβおよび/またはIL−13
Rαを(またはそれらの生物学的に活性なフラグメント
の1種を)、またはその生物活性を特異的に変調させる
ことができる化合物を、患者に投与することを含む、I
L-13によって媒介される免疫学的反応にリンクした
状態の治療処理方法を含む。
明を表す実施例および図面と残りの説明とで明らかにな
るであろう。
験は、[125I][Phe43]−IL−13−GlyTyrGly
Tyrについて記載されている(17)のと同様にして行
った。
(ATCC HTB46)を5×104細胞/ウェルの
密度で24−ウェルプレートに入れ、培養3日後に、密
集した単層を無ウシ胎児血清DMEM培地で3回洗浄し
た。Caki−1細胞の刺激は、Y124DIL−4ま
たは抗−gp140モノクローナル抗体の不存在または
存在下にて、30ng/mlのIL−4またはIL−1
3を用いて行った。24時間培養した後に培養培地に放
出されたIL−6の量を、ELISA技術(フランス,I
nnotest社製)によって測定した。
び分析 前記(25)と同様にして、合計RNAをCaki−1
細胞から抽出した。ポリ(A)RNAは、オリゴ(d
T)25で被覆した磁気ビーズ(Dynal社製)を用いて
合計RNAから単離した。2×105クローンを含有す
るcDNAライブラリーは、プライマー−アダプター法
(26)およびベクターpSE−1(27)を用いて構
築した。用いた発現用のクローニング戦略は、以前に記
載されている(17)。
NA試料を逆転写酵素でコピーし、それを、配列+52
〜+71に相当するセンスプライマーおよび+489〜
+470に相当するアンチセンスプライマー(番号付け
は図5および6に示すcDNA配列に基いて行った)を
用いるPCR(ポリメラーゼ連鎖反応)に付した。PC
R−増幅産物は、cDNAの配列+445〜+461に
相補的なプローブとハイブリダイズした。サイズマーカ
ーを図の左に示す。
び分析 1)げっ歯類IL−13Rαプローブの調製 a)B9細胞の培養(28) B9細胞は、10%ウシ胎児血清および50μg/ml
のゲンタマイシンを補充したRPMI培地(Gibco社
製)中で培養した。 b)B9細胞のRNAの調製 該細胞を、PBS緩衝液(GIBCO−BRL社製、生理リン酸
緩衝液、参照04104040)で2回洗浄した。1,000rpmで1
0分間遠心分離した後に、細胞ペレットを以下の組成の
溶解緩衝液中に懸濁した:4M グアニジン−チオシア
ネート;25mM クエン酸ナトリウム pH7;0.
5%サルコシル;0.1M β2−メルカプトエタノー
ル。
o.231256(JANKE and KUNDEL社製)を用い、最大出
力にて1分間超音波処理した。pH4の酢酸ナトリウム
を添加して0.2Mとした。その溶液を1容量のフェノ
ール/クロロホルム混合液(v/v:5/1)で抽出し
た。水性相に含まれるRNAを1容量のイソプロパノー
ルの援助で−20℃にて沈殿させた。そのペレットを溶
解緩衝液中に再懸濁した。その溶液をフェノール/クロ
ロホルム混合液で再度抽出し、イソプロパノールでRN
Aを沈殿させた。そのペレットを70%ついで100%
エタノールで洗浄した後に、RNAを水中に再懸濁させ
た。
5μgから調製した。合計RNAを、30μl容量の緩
衝液:0.5mM 各デオキシヌクレオチド三リン酸お
よび30単位のRNアシン(Promega社製)を含有する
50mM トリス−HCl pH8.3、6mM Mg
Cl2、10mM DTT、40mMKCl中、37℃
にて1時間、ついで50℃にて10分間、さらに37℃
にて10分間、逆転写酵素RNエースH(Gibco−BRL社
製、参照8064A)200単位と共にインキュベートし
た。65℃にて10分間加熱することによって反応を終
結させた。
α cDNAフラグメントの特異的増幅 重合は、以下の組成:10mM トリス−HCl pH
8.3、2.5mMMgCl2、50mM KCl、
0.2mM 4種のdNTP、2種の核酸プライマー各
2μg/ml、および2.5U TAQ DNAポリメ
ラーゼ(Beckman社製);の緩衝液50μl最終容量
中、cDNA6μlを用いて行った。プライマーのペア
は、Hilton(22)によって公開されている配列上で選
択した。
〜268 5’AGAGGAATTACCCCTGGATG 3’ アンチセンス・プライマー:ヌクレオチド1256〜1
275 5’TCAAGGAGCTGCTTTCTTCA 3' 反応は、94℃にて1分間、58℃にて1分間、72℃
にて4分間の30サイクルにつづいて、72℃にて10
分間の最終サイクル行った。
DTA pH7.9)中の1%アガロースゲル(Sigma
社製)上、100ボルトにて1時間流した後に、同緩衝
液中の1μg/ml臭化エチジウム存在下にてゲルを染
色した。増幅産物(1027塩基対(bp)のIL−1
3RαのcDNAフラグメント)に相当するバンドをGl
ass Maxキット(Gibco社製)を用いて抽出した。
精製cDNAフラグメント25ngを、BRL Random
Primers DNA 標識化システムキットを用いて、2.
4×109dpm/μgの比活性で32Pで標識する
か;別法として、100ngを4×108dpm/μg
の比活性でBoeringherキットを用いたニックトランスレ
ーションによって標識した。
および分析 a)合計RNAの調製 合計RNAは、1b章で前記したのと同様にしてCak
i−1細胞から抽出した。
分)の精製 RNAのポリA+画分の精製は、製造業者により推奨さ
れている手法に従ってDYNAL オリゴ(dT)25 Dyn
abeadsキット(参照610.05)を用いて行った。原理は、
それにポリ(dT)25オリゴヌクレオチドが結合して
いる超常磁性ポリスチレンビーズの使用に基く。ポリA
+画分は、磁性支持体に捕捉されたビーズに結合したオ
リゴ(dT)25オリゴヌクレオチドとハイブリダイズ
した。
液(10mM pH7.4、0.5mM EDTA)中
の1%アガロース、8%ホルムアルデヒド変性ゲル上に
負荷した。移動させ、20×SSC緩衝液中のN+Hybo
ndメンブレン(Amersham社製)上に転移させた後に、そ
のRNAを真空下、80℃にてオーブン中で加熱するこ
とによって固定化させた。ついでそのメンブレンを、以
下の緩衝液:1M NaCl、30%ホルムアミド;1
%SDS、5×デンハート溶液;100μg/mlサケ
精子DNA中、42℃にて2時間、プレハイブリダイズ
させた。2時間のプレハイブリダイゼーション後に、そ
のメンブレンを2.5×106dpm/mlのランダム
・プライマー法によって調製した一定濃度のマウスIL
−13Rαプローブと同緩衝液中にて16時間ハイブリ
ダイズさせた。ついでそのメンブレンを2×SSC緩衝
液、0.1%SDS中、室温にて30分間、ついで同緩
衝液中、50℃にて2時間、2回洗浄した。カセット
(Molecular Dynamics社製)中で4日間感光させた後
に、ノザンブロットをInstant Imager(Molecular Dy
namics社製)で分析した。4200bpの優勢な転写
物、および1500bpと2000bpとの二重バンド
(doublet)がCaki−1細胞、U373およびU9
37で検出された。
の特性の特徴付け:COS−7またはCHO細胞を前記
(17)と同様にしてペトリ皿中でトランスフェクトし
た。24時間後に、その細胞をトリプシン処理し、8×1
04細胞/ウェルの密度で24−ウェルプレート中で培
養した。37℃にて48時間培養させた後に、その細胞
を、前記(17)と同様のヨウ素化IL−13を用いる
結合性実験(3回行ったアッセイは、10%未満の変動
を示した)に用いた。トランスフェクションに関して
は、COS−7またはCHO細胞を、種々のプラスミド
0.6mgを用いて25−cm2プレート中でトランス
フェクトした。24時間後に、細胞単層をトリプシン処
理し、8×104細胞/ウェルにて12−ウェルプレー
ト中で培養した。3日後に、標識IL−13、ならびに
非標識IL−13および/またはIL−4を用いて結合
性および競合実験を行った。結果は、別々に行った少な
くとも3回の実験の代表なものである。
4Rを発現している細胞の核抽出物のEMSAにおける
電気泳動移動度の比較:2×106のCHO細胞を10
cmペトリ皿に入れた。24時間後に、その細胞をプラ
スミドDNA(34)6μgでトランスフェクトした。
48時間後に、その細胞を、100ng/ml濃度のI
L−13またはIL−4を含むか、または含まない培地
3ml中、37℃にて30分間インキュベートした。つ
いで、その細胞をPBS−0.5mM EDTA緩衝液
で2回濯ぎ、ついでPBS1.2ml中に採取した。つ
いで、その細胞を遠心分離し、細胞抽出物を(35)記
載と同様にして調製した。ついで、細胞抽出物10〜2
0μg、および32Pで放射性同位元素標識化したオリ
ゴヌクレオチド・プローブ(50,000−100,00
0cpm)を用いて、(36)記載と同様にしてEMS
Aを行った。ここに該プローブはヒトCεプロモーター
のCεエレメントに相当する(37)。合成したオリゴ
ヌクレオチド・プローブは以下の配列を有する: 5'−GATCCACTTCCCAAGAACAGA−3’
現の分析 最近、ヒト腎臓ガン腫細胞が、IL−4およびIL−1
3により分有されている受容体に加えて、大過剰量の特
異的なIL−13受容体を発現していることが発見され
た(21)。これらの結果に基づいて、ヒトガン腫細胞
系統の試料を前記(17)と同様にしてIL−13の結
合について実験した。IL−13に対する結合部位を特
に多数発現する特定の系統Caki−1(ATCC H
TB46)をより詳細に分析した。飽和実験から得たス
キャッチャード曲線は、446±50pMのKdおよび
7.2×104受容体/細胞の結合能力を有する結合部
位が存在することを示した(図1)。競合実験において
は、非標識IL−13は用量−依存的な様式で標識化I
L−13を完全に置換したが、IL−4は高親和性で標
識化IL−13の約10%を置換した。より高濃度のI
L−4(100nMよりも高い濃度)でも、残りの90
%の結合IL−13を置換しなかった(図2)。
種のサイトカインによって分有されている1種と、IL
−13に特異的なもう1種;が存在することと合致し
た。IL−13に対する親和性による交差-連結に対す
る実験は、約70kDaの複合体を示し、これは、種々
の細胞型においてIL−13を用いた同様の交差-連結
実験において認められた複合体(17、21)と一致し
た。標識化IL−13はIL−13によって複合体から
完全に置換されたが、IL−4によっては置換されなか
った。このことは競合実験と合致した(図3)。
分泌の分析 本発明者らは、Caki−1細胞でIL−4またはIL
−13によって誘導される分泌を分析した。2種のサイ
トカインは、同様なレベルのIL−6の分泌を誘導し、
該分泌はIL−4Rのα鎖に特異的な抗体によって、お
よびアンタゴニストY124DIL−4によって阻害さ
れた(図4)。このことは、Caki−1細胞中の2種
のサイトカインによって分有されている受容体がIL−
6の分泌の誘導に寄与していることを示している。IL
−4およびIL−13によって誘導される蛋白質複合体
IRS1/4PS(18)のリン酸化を抗−IL−4R
抗体およびIL−4アンタゴニストの存在または不存在
下にて分析した場合にも、同様の結果が認められた。
Caki細胞中で発現された受容体複合体IL−4/I
L−13が以前に記載されているものと同一であるこ
と、および過剰発現しているIL−13に結合する蛋白
質(IL−13Rβ)がIL−4Rを含む機能性複合体
中のIL−13の認識に寄与する受容体のコンポーネン
トであることを示している。従って、このIL−13結
合基をクローニングするためのメッセンジャーRNAの
供給源として、これらの細胞を使用した。
β)のクローニング クローニングおよび発現のストラテジーは以前に記載さ
れているもの(17)を用いた。2×105組換えクロ
ーンを含有するcDNAライブラリーは、Caki−1
細胞を用いて構築した(26)。該ライブラリーを、各
バッチのDNAがプラスミド形態であって、COS−7
細胞に導入されている(29)1000のcDNAのバ
ッチに分けた。トランスフェクトしたCOS−7細胞に
対する標識化IL−13の結合性により、IL−13受
容体をコードするクローンのバッチを同定することが可
能となった。陽性バッチを分配し、IL−13に結合す
ることができる細胞表面蛋白質の合成を行うことができ
る単一クローンが同定されるまで再スクリーニングし
た。2種の独立したIL−13Rβ cDNAを最後に
単離した。IL−13Rβ cDNAの完全ヌクレオチ
ド配列およびそれから予想されるアミノ酸配列を図5お
よび6に示す。該cDNAはポリ−Aテイルを除く12
98塩基長、および106塩基の短い3’非翻訳領域を
有する。典型的な(canonical)AATAAAポリアデニル化
シグナルは予想された部位に存在している。ヌクレオチ
ド53と1192との間のオープンリーディングフレー
ムは380アミノ酸のポリペプチドを規定する。該配列
は、潜在的なシグナルペプチド、単一の貫膜ドメイン、
および短い細胞質内テイルと共に膜蛋白質をコードす
る。4箇所の潜在的なN−グリコシル化部位は細胞外領
域に位置する。II型ファミリーのサイトカイン受容体の
特徴として考えられている2種の共通モチーフ(3
0);第1のものはN−末端ジスルフィド架橋ループ構
造由来であり、第2のものは細胞外領域のC−末端に位
置するWSXWSタイプのモチーフである;も存在して
いることは重要である。非常に短い細胞質配列は、なぜ
細胞内のシグナルを伝達するものがCaki細胞中のI
L−4およびIL−13によって分有されている受容体
複合体のみであるのかを説明しているのかも知れない。
相同性(51%類似および27%同一、図7)および、
より低い程度で、プロラクチン受容体との相同性が立証
された。IL−5R複合体が、IL−5に結合するがも
う1つの蛋白質を要するα鎖と、IL−3およびGM−
CSF受容体に共有されているβ鎖とからなり、シグナ
ルを伝達することができる高親和性受容体を形成するこ
とは興味深い(31)。
ャーRNAの検出 驚くべきことには、Caki−1細胞中においては、大
過剰量のIL−13Rβが発現されているのだが、IL
−13RβおよびIL−4Rに対する同様の量のメッセ
ンジャーRNAがノザンブロットによって検出された。
この知見は、IL−4R転写物と比較してこのmRNA
のより多量の翻訳が存在することを示しており、少数の
IL−13結合部位しか発現していない細胞系統におけ
るIL−13Rβ mRNAの検出の欠如を説明してい
る。RT−PCR分析(図8)は、Caki−1細胞で
見出された転写物が、表皮ケラチン細胞系統A431、
前骨髄細胞TF−1、プレモサイティック細胞(premoc
ytic cell)U937、および細胞系統B IM9にお
いてもより低レベルで存在することを示した。JurkatT
細胞系統またはプレ−B NALM6細胞系統において
は全く転写物が検出されなかった。これらの結果は、本
発明者らによって以前に記載されたこれらと同一の系統
で行ったIL−13結合性実験(17)、およびIL−
13の知られている生物学的標的と合致した。
COS−7細胞で行った結合性分析 IL−13Rβをコードする単離cDNAでトランスフ
ェクトしたCOS−7細胞は、標識化IL−13に特異
的に結合した。飽和曲線のスキャッチャード解析は、2
50±30pMのKd値と5.6×106受容体/細胞
の最大結合能力とを有する単一のコンポーネント部位を
示した(図9)。
胞中のIL−13Rβについての446pMのKd値お
よび幾つかの他の細胞において記載されているもの(1
7)とよく一致した。その結果、IL−5Rのα鎖との
配列相同性にも拘わらず、クローン化受容体は高親和性
の結合部位を再構成するために第2の鎖を必要としない
ため、それは異なる挙動をする。
る蛋白質(32)が、IL−15R複合体の他の2種の
コンポーネント不存在下にて、高親和性でIL−15に
結合する特徴を有することは興味深い。
5±0.5nMの阻害定数(Ki)で、クローン化受容
体に対する標識化IL−13の結合性を阻害することが
できたが、IL−4は該結合性を阻害できなかった。し
たがって、クローン化受容体の薬理学は、Caki−1
細胞中に存在するIL−13Rβのものと同様であっ
た。交差-連結実験により、70kDaの放射性同位体
標識化バンドが示された。このバンドは、Caki細胞
ならびに他の細胞(17)で認められたものと同一の移
動度を有する。この複合体は、恐らくは、標識化IL−
4を用いて行った交差-連結実験におけるIL−4Rの
140kDaバンドに加えて認められた60−70kD
aのバンドに相当する。また、このことは、機能性受容
体複合体における2種の蛋白質間に強い相互作用が存在
することも示している。しかるに、本発明者らは、IL
−13RβとIL−4Rとが細胞膜中で相互作用し、2
種のサイトカイン間の交差−競合を許容する受容体を再
構成するのかをチェックした。同時発現実験の結果を図
11および12に示す。
発現が、2種のサイトカインのいずれかを特異的に認識
する多数の受容体を生じたことは明らかなようである。
しかしながら、それらが一緒に発現した場合には、少数
の受容体しか(5〜10%)2種のサイトカインを認識
することができなかった。IL−4RおよびIL−13
Rβとのγc鎖の同時トランスフェクションは、分有さ
れる結合部位の数の増加を引き起こさなかった。これら
の結果は、IL−13RβおよびIL−4R鎖が細胞膜
中で互いに相互作用して、IL−13とIL−4とが競
合関係になり得る受容体を再構成し得ることを示してい
る。再構成受容体の低い%は、IL−13およびIL−
4が競合的に結合する受容体複合体の再構成に必要であ
るCOS細胞中に限定量でもう1つの蛋白質(IL−1
3Rα)が存在することに賛同する論拠である。
られた結果は、この蛋白質が以前に示された(15)限
定因子ではないことを立証した。この結論は、Caki
−1細胞中にγcメッセンジャーRNAが存在しないこ
と(21)によっても支持された。
つの可能な論拠は、不適当な化学量論の2種の蛋白質が
細胞膜中に存在することである。しかしながら、異なる
相対量のIL−4RおよびIL−13Rβを用いた同時
トランスフェクションは、再構成受容体の数における大
きな相違は示さなかった。IL−4Rと相互作用するよ
り大きな結合能力を有するもう1つのIL−13Rが存
在するという可能性が、IL−13Rα cDNAの単
離によってマウス(22)およびヒトで確認された(実
施例7を参照されたし)。γcの発現が、前記されてい
る(19)のと同様にIL−4の結合性を向上したが、
IL−13の結合性は低下させたことは注意すべきであ
り、このことは、異なる鎖の間の複合体相互作用を示し
ている。
−13のその膜受容体への結合性の阻害の実験経時的発
現(図13)または安定系統(図14)における結果を
説明する。IL−13RβおよびIL−13Rβsをコ
ードする2種のcDNA配列を、IL−2 cDNAの
代りにベクターp7055に挿入した(33)。得られ
たプラスミドは、各々、2036および2034と称す
る。
レートに接種し、翌日、COS細胞についてと同様にD
EAE−デキストラン法によって、プラスミド2036
もしくは2034、または対照としての空プラスミドp
SE−1のいずれかでトランスフェクトした。該細胞
は、プラスミド2034でトランスフェクトした細胞の
上清にIL−13Rβsが蓄積され、プラスミド203
6でトランスフェクトした細胞の膜中においてIL−1
3Rβが良好に発現されるように、3日間培養した。つ
いで、IL−13Rβs(2034)または陰性対照
(空pSE−1)でトランスフェクトした細胞の上清を
回収し、IL−13Rβでトランスフェクトした細胞を
用いてIL−13の結合性の阻害を実験した。IL−1
3Rβを発現しているCHO細胞(2036)の表面に
対するIL−13の結合性は、放射性リガンドで1.5
倍に希釈したこれらの粗製上清の存在下または不存在下
で測定し、あるいは過剰量の非-放射性同位元素標識化
IL−13(NSB)存在下にて測定した。結合性は、
300pMの放射性リガンドを含む最終容量500ml
中の全細胞に対して3回行った。
β(380残基のポリペプチド)または可溶性形態のI
L−13Rβ(IL−13Rβs、IL−13Rβの残
基1〜337に相当する切頭ポリペプチド)のコード配
列でのトランスフェクションによって得た。これらの配
列をベクターp7055に挿入した。CHO−DHFR
−細胞をプラスミド2036(IL−13Rβ)および
2034(IL−13Rβs)でトランスフェクトし、
組換えクローンを以前に記載されている(33)のと同
様にして選抜した。
得られたクローンのうちの1種CHO−IL−13Rβ
(CHO2036)をウェル当たり105細胞の密度に
て12−ウェルプレートに接種し、2日後に、その細胞
をIL−13Rβs存在または不存在下の結合性実験に
用いた。それに関しては、CHO−IL−13Rβs
(CHO2034)クローンを皿当たり5×105細胞
にて6cm皿に3回接種した。培養培地中に3日間蓄積
させた後に、CHO2036クローンのIL−13Rβ
に対するIL−13結合阻害実験用に培地(皿当たり5
ml)を収集した。同様にして、可溶性IL−13Rβ
を発現していないCHO細胞の上清を収集した。
L−13の結合性は、放射性リガンドで1.5倍に希釈
したこれらの粗製上清の存在下または不存在下にて、あ
るいは過剰量の非-放射性同位元素標識化IL−13
(NSB)の存在下にて測定した。結合性は、300p
Mの放射性リガンドを含む500ml容量中、全細胞に
対して3回行った。
13Rβに対するIL−13の結合性のIL−13Rβ
sによる阻害を表す。IL−13のその受容体に対する
結合性の阻害は、幾つかのクローンで認めることができ
た。
からのcDNAライブラリーの調製 [32P]dCTPで標識した一本鎖相補的DNA(得
られた相補的DNAは3000dpm/ngの比活性を
有する)は、ポリA+メッセンジャーRNA0.5μg
で出発し、30μl容量の以下の緩衝液:0.5mMの
各種デオキシヌクレオチド三リン酸、[α32P]dC
TP 30μCi、およびRNアシン(Promega社製)
30Uを含有する50mM トリス−HCl pH
8.3、6mM MgCl2、10mM DTT、40
mMKCl中にて、以下の配列(BamHI部位を含
む): 5’<GATCCGGGCCCTTTTTTTTTTTT<3’ を有する合成プライマーを用いて調製した。逆転写酵素
RNエースH(Giboco−BRL社製)200単位と共に3
7℃にて1時間、ついで50℃にて10分間、さらに3
7℃にて10分間インキュベートした後に、EDTA4
μlを添加した。ついで、2N NaOH溶液6μlを
添加し、65℃にて5分間インキュベートすることによ
って、RNA鋳型を分解した。
衝液中で平衡化したSephacryl S400カラム(Pharmacia
社製)1ml上で相補的DNAを精製した。最初の2つ
の放射性画分を合し、クロロホルムで抽出した後に、1
0M酢酸アンモニウム溶液1/10容量およびエタノー
ル2.5容量で沈殿させた。ついで、ターミナルトラン
スフェラーゼ酵素(Pharmacia社製 27073001)20単
位と共にdGホモポリマー性テイルを添加することによ
ってcDNAを5’において伸長させた。つぎに、以下
の組成:30mMトリス−HCl pH7.6:1mM
塩化コバルト;140mM カコジル酸;0.1mM
DTT;1mM dGTP;を有する緩衝液20μl
中、37℃にて15分間インキュベーションを行い、つ
いで0.5M EDTA2μlを添加した。水酸化ナト
リウムでのさらなる処理を加熱することなく行い、つづ
いてS400カラム上で再精製し、クロロホルムで抽出し、
エタノールで沈殿させた。そのペレットをTE緩衝液3
3μl中に溶解した。つぎのステージは、PstIで切
断した後にホモポリマー性dCテイルが予めそれに加え
られているクローニングベクターpT7T3−18、c
DNAおよびアダプターを組合わせることにあった。c
DNA(33μl)を、ベクターpT7/T3−18
75ng(5μl)、以下の配列(Apa1部位を含
む): 5’AAAAAAAAAAAAAGGGCCCG 3’ のアダプター120ng(1μl)、200mM Na
Cl溶液10μlと接触させ、その混合物を65℃にて
5分間インキュベートし、ついでその反応物を室温まで
放冷させた。つぎのステージは、以下の組成:50mM
トリス−HClpH7.5;10mM MgCl2、
1mM ATP;を有する緩衝液中、酵素T4ファージ
DNAリガーゼ(Pharmacia社製)32.5単位を用い
て、反応容量100μl中のクローニングベクターと一
本鎖cDNAとを15℃にて一晩連結させることにあっ
た。ついで、フェノールでの抽出につづいてクロロホル
ムで抽出することによって蛋白質を除去し、ついで10
mM酢酸アンモニウム溶液1/10容量およびエタノー
ル2.5容量を添加した。その混合物を遠心分離し、ペ
レットを以下の組成:33mM トリス−酢酸 pH
7.9、62.5mM酢酸カリウム、1mM 酢酸マグ
ネシウムおよび1mM DTT;を有する緩衝液中に採
取し、酵素T4ファージDNAポリメラーゼ(Pharmaci
a社製)30単位および1mMの4種のデオキシヌクレ
オチド三リン酸の混合物ならびにT4ファージ遺伝子3
2の蛋白質(Pharmacia社製)2単位を含む30μl容
量中、37℃にて1時間、第2のcDNA鎖を合成し
た。その混合物をフェノールで抽出し、P10カラム
(Biogel P10−200−400メッシュ−参照15011050−Bio
rad社製)上に沈殿させることによって痕跡を除去し
た。
ている条件下、2.5kVで使用するBiorad Gene Pu
lser装置を用いた組換えDNAのエレクトロポレーショ
ンによってE.coli MC1061細胞を形質転換
し、ついでその細菌を以下の組成:バクトトリプトン1
0g/l;酵母エキストラクト5g/l;NaCl10
g/l;を有するLB培地中で1時間培養することにあ
った。
天(w/v)および100μg/mlアンピシリンを補
充したLB培地(以後、LB寒天培地と称する)を入れ
た皿上で1時間インキュベーションした後の形質転換体
からの1/1000希釈液を平板することによって測定
した。得られた独立クローンの数は1,000,000
であった。
グ 全体ライブラリーをBiodyne Aメンブレン(PALL社製、
参照BNNG 132)で被覆した寒天培地(直径150mm
のペトリ皿)上に平板した。37℃にて一晩放置した後
に、新たなメンブレン上に接触させることによってクロ
ーンを転移させた。その新たなメンブレンを、下記の組
成の溶液に浸漬させたWathman 3MMペーパー上にそれを
置くことによって処理した:0.5N NaOH、1.
5M NaCl、5分間、ついで0.5M トリス−H
Cl pH8、1.5M NaCl、5分間。以下の緩
衝液:10mM トリス−HCl pH8、10mM
EDTA、50mM NaCl、0.1% SDS、1
00μg/ml プロテインキナーゼK;中、37℃に
て30分間、プロテインキナーゼKで処理した後に、そ
のメンブレンを2×SSC緩衝液(クエン酸ナトリウム
−NaCl)で完全に洗浄し、ついで真空下、オーブン
中、80℃にて20分間乾燥した。
ョンおよびハイブリダイゼーション ついで、そのメンブレンを以下の緩衝液:1M NaC
l;30%ホルムアミド;1%SDS;5×デンハート
溶液;100μg/mlサケ精子DNA;中、42℃に
て2時間プレハイブリダイズさせた。2時間のプレハイ
ブリダイゼーション後に、そのメンブレンを、2.5×
106dpm/mlのニックトランスレーションによっ
て調製した一定濃度のマウスIL−13Rαプローブを
含む同緩衝液中にて16時間ハイブリダイズさせた。そ
のメンブレンを2×SSC、0.1%SDS緩衝液中、
室温にて30分間、2回洗浄し、ついで同緩衝液中、5
0℃にて2時間洗浄した。Kodak X−OMATフィルム存在
下、−80℃にて一晩感光させた後に、数個の陽性クロ
ーンが検出された。
定および該配列の分析 配列は、Applied Biosystem社製キット(参照401628)
を用いて得た。IL−13Rα cDNAの完全核酸配
列およびそれから予想されるアミノ酸配列を図15およ
び16に示す。cDNAはポリ−Aテイルを除く399
9塩基長であり、2145塩基の長い非翻訳3’領域を
有している。
れた部位に存在している。ヌクレオチド34と1851
との間のオープンリーディングフレームは、427アミ
ノ酸のポリペプチドを規定する。該配列は、潜在的なシ
グナルペプチドならびに単一の貫膜ドメインおよび短い
細胞質外領域と共に膜蛋白質をコードしている。
細胞外領域に位置する。サイトカイン受容体のII型フ
ァミリーの特徴と考えられる2種の共通モチーフ:1番
目のものはN−末端ジスルフィド架橋ループ構造由来の
もので、2番目のものは細胞外領域のC−末端に位置す
るWSXWS型のモチーフである;も存在することは重
要である。
COS−3またはCHO細胞に対して行った結合性分析 IL−13Rαをコードする単離したcDNAでトラン
スフェクトしたCHO細胞は、標識化IL−13に特異
的に結合した。飽和曲線のスキャッチャード解析は、
4.5±0.4nMのKd値と26000受容体/細胞
の最大結合能力とを有する単一のコンポーネント部位を
示した(図19Cおよび19G)。同時発現実験の結果
を図19Dおよび19Hに示す。
のクローン2036においてIL−13Rαが良好に発
現されていることが示された。IL−4Rは、IL−4
RおよびIL−13Rα cDNAで同時トランスフェ
クトしたCHO細胞におけるIL−13の結合性の60
%を置換した(図19H)が、IL−13Rαに対する
7.5nMのKdを考慮すると、IL−4R部位よりも
IL−13Rα部位が10倍も多く存在するようである
ことは注意し得る。
トランスフェクトしたhIL−4Rを発現しているCH
O−hIL4R細胞(ヒトIL−4R)は、標識化IL
−13に特異的に結合した。
のコンポーネント部位;23±8.9pMのKd値と2
8000部位/細胞の最大結合能力とを有する高親和性
の1種、および4.2±1.4nMのKd値と1500
00部位/細胞の最大結合能力とを有する低親和性のも
う1種;を明らかに示した(図19D)。
させたhIL−13Rα(ヒトIL−13Rα)と同一
の親和性を有し、非会合IL−13Rα鎖に相当した。
なぜならば、それらはhIL−4Rよりも多量に発現さ
れていたからである。
R鎖存在下にて再構成したこれらの高親和性受容体は、
2種のサイトカインを認識することができた(図19D
および19H)。このことは、IL−4が全ての結合性
IL−13を置換する匹敵量で2種のhIL−13Rα
およびhIL−4R鎖を同時発現しているCOS/pS
E1細胞でさえより明らかであった。
ウスIL−13Rα受容体について記載されているもの
(2−10nM)(参照22)に匹敵した。以前に記載
されたhIL−13Rβ鎖とは反対に、ヒトIL−13
Rαはそれ自体の上に高親和性結合部位を構成しなかっ
た。したがって、IL−13RαおよびIL−4Rは、
細胞膜中で相互作用して高親和性受容体を再構成する。
るCHO細胞におけるIL−13およびIL−4による
STAT蛋白質の活性化 ヒトPBMC細胞において、hIL−4およびIL−1
3は、後期転写因子であるSTAT6をリン酸化するJA
K(janus)ファミリーの2種のチロシンキナーゼ、Jak
1およびJak2を活性化した。この活性化された因子
は核に入り、IL−4によって調節された遺伝子のプロ
モーター中の特異的エレメントに結合した。
ッセイ(EMSA)におけるプローブとしてヒトCεプ
ロモーターのCεエレメントを選択して、STAT6と
同様な結合因子のIL−13による活性化を立証した。
−4で、37℃にて10分間刺激した、IL−13R単
独、IL−4R単独、または2種の鎖を一緒に発現して
いるCHO細胞の核抽出物を、放射性同位元素標識化C
εエレメントと共にインキュベートした。
時発現している細胞の核抽出物は、当該細胞がIL−4
またはIL−13のいずれで誘導されていようが、EM
SAにおいて同一の移動度を有する複合体を形成した
(図20を参照されたし)。一方、いずれかの鎖を単独
で発現している細胞を用いると、複合体は全く検出され
なかった。
L−4Rαを発現しているCHO細胞においては、IL
−13およびIL−4が同一のシグナリング経路を始動
させる。
びIL−13Rαのクローニングにより、IL−4によ
って誘導される応答に匹敵する、IL−13によって特
異的に誘導される応答に関与する因子の知識を改善する
ことができる。加えて、IL−13がキーとなる役割を
演ずる正常および病理状態下の受容体の発現の調節を研
究するためのツールを有することができた。さらに、c
DNAの入手可能性により、IL-4/IL-13受容体
複合体の再構成に必要な他の蛋白質を容易にクローニン
グすることができ、また、IL-13の活性の特異的な
アンタゴニストとなり得る新規な医薬生成物の製造また
は合理的なモデリングにも有用である。
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041-3045.
Rβ受容体の特徴付けを示す。[125I]で標識した
IL-13の飽和曲線のスキャッチャード解析(挿入
図)。
Rβ受容体の特徴付けを示す。上昇してゆく濃度の非標
識IL-13(・)およびIL-4(○)存在下における
[125I][Phe43]-IL-13-GlyTyrGlyTyrの結合
性。
Rβ受容体の特徴付けを示す。非標識IL−13不存在
下(レーンa)、および100倍過剰量の非IL−13
(レーンb)またはIL-4(レーンc)存在下にて放
射性IL-13を用いた交差-連結実験。
Rβ受容体の特徴付けを示す。IL−4R鎖に対して特
異的なモノクローナル抗体およびIL−4アンタゴニス
トY124DIL−4存在下における、IL−13およ
びIL−4によって誘導されるIL−6の分泌の阻害。
列を示す。IL-13RβのcDNAのヌクレオチド配
列。核酸配列の予想シグナルペプチドに相当するアミノ
酸はイタリックで示し、貫膜ドメインに相当するアミノ
酸は太字で示す。潜在的なN−グリコシル化部位(Asn-
X-Ser/Thr)には下線を引いている。
列を示す。IL-13RβのcDNAのヌクレオチド配
列。核酸配列の予想シグナルペプチドに相当するアミノ
酸はイタリックで示し、貫膜ドメインに相当するアミノ
酸は太字で示す。潜在的なN−グリコシル化部位(Asn-
X-Ser/Thr)には下線を引いている。
の比較を示す。IL−13RβおよびIL−5R配列の
アミノ酸の整列を示す。IL−13RおよびIL−5R
の蛋白質配列を前記(24)と同様に整列させている。
受容体のこのファミリーに特徴的なシステイン残基およ
びWSXWSモチーフは四角で囲んでいる。
示す。RNAは以下の細胞から調製した:Caki−1
(レーンa)、A431(レーンb)、TF−1(レー
ンc)、U937(レーンd)、Jurkat(レーン
e)およびIM9(レーンf)。
受容体の特徴付けを示す。COS−7細胞をIL−13
Rβ cDNAでトランスフェクトし、飽和曲線のスキ
ャッチャード解析による放射性同位元素標識化IL−1
3の結合性に関する実験(挿入図)。
β受容体の特徴付けを示す。COS−7細胞をIL−1
3Rβ cDNAでトランスフェクトし、不存在(レー
ンa)、および100倍過剰量の非標識IL−13存在
(レーンb)下にて放射性同位元素標識化IL−13を
用いた交差-連結実験。
(gp140)およびγc鎖を用いた同時トランスフェ
クション実験につづく放射性同位元素標識化IL−13
の結合性を示す。斜線棒グラフおよび白抜き棒グラフ
は、IL−13の特異的結合性を表す。
(gp140)およびγc鎖を用いた同時トランスフェ
クション実験につづく放射性同位元素標識化IL−4の
結合性を示す。斜線棒グラフおよび白抜き棒グラフは、
IL−4の特異的結合性を表す。
3Rβs)によるIL−13のIL−13Rβへの結合
性の阻害。2034でトランスフェクトした細胞上清中
のIL−13Rβsの発現を、IL−13Rβ(203
6)でトランスフェクトした細胞に対するIL−13の
結合性の阻害によって試験したグラフを示す。該上清
は、ヨウ素化リガンド中でそれを1.5倍に希釈するこ
とによって粗製状態で試験した。 2036NSB:過剰量の非標識IL−13存在下にお
ける非特異的結合性。 2036BT:2036でトランスフェクトした細胞に
対する合計結合性。 2036+sgt2034:2034でトランスフェク
トした細胞の上清存在下における、2036でトランス
フェクトした細胞に対する結合性。 2036+sgt pSE1:対照
13Rβs)によるIL−13のIL−13Rβへの結
合性の阻害を示す。T2036−22:IL−13Rβ
sを分泌するクローン上清不存在下における、IL−1
3Rβ(2036−22)に対する合計結合性(参照
100%) 2034−4 2034−6 2034−19 4種のクローン IL−13Rβs 2034−21 1274−20:IL−13Rβsを発現していないC
HO細胞の上清存在下(対照)。
配列を示す。IL-13Rα cDNAのヌクレオチド
配列。核酸配列から予想されるシグナルペプチドに相当
するアミノ酸には点線の下線が引かれており、貫膜ドメ
インに相当するアミノ酸には二重線の下線が引かれてい
る。潜在的なN−グリコシル化部位(Asn-X-Ser/Thr)
は四角で囲んでいる。
配列を示す。IL-13Rα cDNAのヌクレオチド
配列。核酸配列から予想されるシグナルペプチドに相当
するアミノ酸には点線の下線が引かれており、貫膜ドメ
インに相当するアミノ酸には二重線の下線が引かれてい
る。潜在的なN−グリコシル化部位(Asn-X-Ser/Thr)
は四角で囲んでいる。
13Rαのアミノ酸の整列を示す。ヒトIL−13Rα
およびげっ歯類IL−13Rαの蛋白質配列を前記(2
4)と同様に整列している。受容体のこのファミリーに
特徴的なシステイン残基およびモチーフWSXWSは四
角で囲んでいる。
α受容体の特徴付けを示す。CHOまたはCOS−3細
胞をIL−13Rαおよび/またはIL−4R cDN
Aでトランスフェクトし:IL−13Rβ cDNAで
トランスフェクトした(図AおよびE)、IL−13R
β cDNAおよびIL−4R cDNAでトランスフ
ェクトした(図BおよびF)CHO細胞を用いた飽和曲
線のスキャッチャード解析および該CHO細胞に対する
[125I]−IL−13の結合性の競合実験。白抜き
および横線棒グラフは、各々、過剰量(1,000倍多い)
のIL−13またはIL−4存在下の放射性同位元素標
識化IL−13の特異的結合性を表し、黒塗り棒グラフ
は合計結合性を表している。
α受容体の特徴付けを示す。CHOまたはCOS−3細
胞をIL−13Rαおよび/またはIL−4R cDN
Aでトランスフェクトし:IL−13Rα cDNAで
トランスフェクトした(図CおよびG)、およびIL−
13Rα cDNAおよびIL−4RcDNAでトラン
スフェクトした(図DおよびH)CHO細胞を用いた飽
和曲線のスキャッチャード解析および該CHO細胞に対
する[125I]−IL−13の結合性の競合実験。白
抜きおよび横線棒グラフは、各々、過剰量(1,000倍多
い)のIL−13またはIL−4存在下の放射性同位元
素標識化IL−13の特異的結合性を表し、黒塗り棒グ
ラフは合計結合性を表している。
HO細胞を活性化した後の(4または13)IL−4単
独に対する受容体を(CHO−4)、IL−13Rα単
独に対する受容体を(CHO−13)、または結合受容
体IL−13RαおよびIL−4Rを(CHO−4−1
3)発現している細胞抽出物のEMSAにおける電気泳
動移動度の比較。cは非活性化対照を表している。
Claims (66)
- 【請求項1】 IL−13に特異的に結合することがで
きる配列番号:2の配列のフラグメントからなり、かつ
/または細胞膜のレベルでIL−13によって特異的に
生成されるシグナルの伝達に関与し、かつ/または配列
番号:2の配列のポリペプチドに特異的な抗体によって
認識され、ならびに/あるいは配列番号2の配列のポリ
ペプチドを認識する抗体を誘導することができる精製さ
れたポリペプチド。 - 【請求項2】 8個のC−末端残基が以下の6個の残
基:VRCVTLによって置換されている配列番号:2の配列
のポリペプチドの変異型であることを特徴とする精製さ
れたポリペプチド。 - 【請求項3】 残基343まで伸長する配列番号:2の
配列のポリペプチドの可溶性形態であることを特徴とす
る精製されたポリペプチド。 - 【請求項4】 残基337まで伸長する配列番号:2の
配列のポリペプチドの可溶性形態であることを特徴とす
る精製されたポリペプチド。 - 【請求項5】 請求項1記載のポリペプチドをコードす
る単離された核酸。 - 【請求項6】 a)ストリンジェントな条件下で配列番
号:1の配列にハイブリダイズすることができ、かつI
L−13β受容体活性を有するポリペプチドをコードす
る核酸配列、および b)遺伝コードの縮重による配列a)由来の核酸配列か
ら選択されることを特徴とする請求項5記載の単離され
た核酸。 - 【請求項7】 配列番号1の配列のヌクレオチド番号1
からヌクレオチド1081まで伸長するヌクレオチドリ
ンケージからなることを特徴とする請求項6記載の核
酸。 - 【請求項8】 配列番号1の配列のヌクレオチド番号1
からヌクレオチド1063まで伸長するヌクレオチドリ
ンケージからなることを特徴とする請求項6記載の核
酸。 - 【請求項9】 請求項2記載のポリペプチドをコードす
る単離された核酸。 - 【請求項10】 a)ストリンジェントな条件下で配列
番号:1の配列にハイブリダイズすることができ、かつ
IL−13β受容体活性を有するポリペプチドをコード
する核酸配列、および b)遺伝コードの縮重による配列a)由来の核酸配列か
ら選択されることを特徴とする請求項9記載の単離され
た核酸。 - 【請求項11】 配列番号1の配列のヌクレオチド番号
1からヌクレオチド1081まで伸長するヌクレオチド
リンケージからなることを特徴とする請求項10記載の
核酸。 - 【請求項12】 配列番号1の配列のヌクレオチド番号
1からヌクレオチド1063まで伸長するヌクレオチド
リンケージからなることを特徴とする請求項10記載の
核酸。 - 【請求項13】 請求項3記載のポリペプチドをコード
する単離された核酸。 - 【請求項14】 a)ストリンジェントな条件下で配列
番号:1の配列にハイブリダイズすることができ、かつ
IL−13β受容体活性を有するポリペプチドをコード
する核酸配列、および b)遺伝コードの縮重による配列a)由来の核酸配列か
ら選択されることを特徴とする請求項13記載の単離さ
れた核酸。 - 【請求項15】 配列番号:1の配列のヌクレオチド番
号1からヌクレオチド番号1081まで伸長するヌクレ
オチドリンケージからなることを特徴とする請求項14
記載の核酸。 - 【請求項16】 配列番号:1の配列のヌクレオチド番
号1からヌクレオチド番号1063まで伸長するヌクレ
オチドリンケージからなることを特徴とする請求項14
記載の核酸。 - 【請求項17】 配列番号:4のアミノ酸配列からなる
精製されたポリペプチド。 - 【請求項18】 残基343まで伸長する配列番号:4
の配列のポリペプチドの可溶性形態であることを特徴と
する精製されたポリペプチド。 - 【請求項19】 336および342の間の残基まで伸
長する配列番号:4の配列のポリペプチドの可溶性形態
であることを特徴とする精製されたポリペプチド。 - 【請求項20】 配列番号:3であることを特徴とする
請求項17記載のポリペプチドをコードする単離された
核酸。 - 【請求項21】 請求項18記載のポリペプチドをコー
ドする単離された核酸。 - 【請求項22】 a)ストリンジェントな条件下で配列
番号:3の配列にハイブリダイズすることができ、かつ
IL−13α受容体活性を有するポリペプチドをコード
する核酸配列、および b)遺伝コードの縮重による配列a)由来の核酸配列か
ら選択されることを特徴とする請求項21記載の単離さ
れた核酸。 - 【請求項23】 配列番号:3の配列のヌクレオチド番
号1からヌクレオチド1059まで伸長するヌクレオチ
ドリンケージからなることを特徴とする請求項22記載
の単離された核酸。 - 【請求項24】 配列番号:3の配列のヌクレオチド番
号1から1041および1056の間のヌクレオチドま
で伸長するヌクレオチドリンケージからなることを特徴
とする請求項22記載の単離された核酸。 - 【請求項25】 請求項19記載のポリペプチドをコー
ドする単離された核酸。 - 【請求項26】 a)ストリンジェントな条件下で配列
番号:3の配列にハイブリダイズすることができ、かつ
IL−13α受容体活性を有するポリペプチドをコード
する核酸配列、および b)遺伝コードの縮重による配列a)由来の核酸配列か
ら選択されることを特徴とする請求項25記載の単離さ
れた核酸。 - 【請求項27】 配列番号:3の配列のヌクレオチド番
号1からヌクレオチド1059まで伸長するヌクレオチ
ドリンケージからなることを特徴とする請求項26記載
の単離された核酸。 - 【請求項28】 配列番号:3の配列のヌクレオチド番
号1から1041および1056の間のヌクレオチドま
で伸長するヌクレオチドリンケージからなることを特徴
とする請求項26記載の単離された核酸。 - 【請求項29】 請求項5ないし8いずれか1項記載の
核酸配列を含むクローニングおよび/または発現ベクタ
ー。 - 【請求項30】 プラスミドpSE−1であることを特
徴とする請求項29記載のベクター。 - 【請求項31】 請求項29または30記載のベクター
でトランスフェクトした宿主細胞。 - 【請求項32】 COS−7、COS−3またはCHO
系統の細胞であることを特徴とする請求項31記載の宿
主細胞。 - 【請求項33】 請求項20記載の核酸配列を含むクロ
ーニングおよび/または発現ベクター。 - 【請求項34】 プラスミドpSE−1であることを特
徴とする請求項33記載のベクター。 - 【請求項35】 請求項33または34記載のベクター
でトランスフェクトした宿主細胞。 - 【請求項36】 COS−7、COS−3またはCHO
系統の細胞であることを特徴とする請求項35記載の宿
主細胞。 - 【請求項37】 配列番号:3の全体またはその相補鎖
からなることを特徴とするヌクレオチド・プローブ。 - 【請求項38】 生物試料中の、請求項1記載のポリペ
プチドをコードする核酸配列をストリンジェントな条件
下でのハイブリダイゼーションによって検出するため
の、あるいは、異型接合性または遺伝子転移の欠失のご
とき異常な合成または遺伝的異常を明らかにするための
配列番号:1の配列の全体またはその相補鎖からなるこ
とを特徴とするプローブを含むことを特徴とするイン・
ビトロ(in vitro)診断ツール。 - 【請求項39】 生物試料中の、請求項17記載のポリ
ペプチドをコードする核酸配列をストリンジェント条件
下でのハイブリダイゼーションによって検出するため
の、あるいは、異型接合性または遺伝子転移の欠失のご
とき異常な合成または遺伝的異常を明らかにするための
請求項37記載のプローブを含むことを特徴とするイン
・ビトロ(in vitro)診断ツール。 - 【請求項40】 請求項37記載のプローブを含む染色
体異常を検出するための組成物。 - 【請求項41】 請求項1記載のポリペプチドをコード
する核酸配列のレベルの異常な合成または遺伝的異常を
検出するためのイン・ビトロ検出方法であって、 −所望により、前記ヌクレオチド配列の増幅の予備段階
後であってもよいが、配列番号:1またはその相補鎖か
らなるヌクレオチド・プローブを、該プローブと前記ヌ
クレオチド配列との間のハイブリダイゼーション複合体
の形成を許容するストリンジェントな条件下にて、生物
試料と接触させ; −形成され得るハイブリダイゼーション複合体を検出
し;ついで −所望により、本発明のプローブとハイブリダイゼーシ
ョン複合体を形成するヌクレオチド配列を配列決定して
もよいことを含むことを特徴とする該検出方法。 - 【請求項42】 請求項17記載のポリペプチドをコー
ドする核酸配列のレベルの異常な合成または遺伝的異常
を検出するためのイン・ビトロ検出方法であって、 −所望により、前記ヌクレオチド配列の増幅の予備段階
後であってもよいが、請求項37記載のヌクレオチド・
プローブを、該プローブと前記ヌクレオチド配列との間
のハイブリダイゼーション複合体の形成を許容するスト
リンジェントな条件下にて、生物試料と接触させ; −形成され得るハイブリダイゼーション複合体を検出
し;ついで −所望により、本発明のプローブとハイブリダイゼーシ
ョン複合体を形成するヌクレオチド配列を配列決定して
もよいことを含むことを特徴とする該検出方法。 - 【請求項43】 請求項6記載の核酸配列を使用するこ
とを特徴とする請求項1記載の組換えポリペプチドの産
生方法。 - 【請求項44】 請求項23記載の核酸配列を使用する
ことを特徴とする請求項17記載の組換えポリペプチド
の産生方法。 - 【請求項45】 配列番号:2の配列の組換えポリペプ
チドあるいは誘導体の発現を許容する条件下にて、請求
項31記載のトランスフェクトした細胞を培養し、つい
で該組換えポリペプチドを回収することを特徴とするI
L−13β受容体組換えポリペプチドの産生方法。 - 【請求項46】 配列番号:2の配列の組換えポリペプ
チドあるいは誘導体の発現を許容する条件下にて、請求
項32記載のトランスフェクトした細胞を培養し、つい
で該組換えポリペプチドを回収することを特徴とするI
L−13β受容体組換えポリペプチドの産生方法。 - 【請求項47】 配列番号:4の配列の組換えポリペプ
チドあるいは誘導体の発現を許容する条件下にて、請求
項35記載のトランスフェクトした細胞を培養し、つい
で該組換えポリペプチドを回収することを特徴とするI
L−13α受容体組換えポリペプチドの産生方法。 - 【請求項48】 配列番号:4の配列の組換えポリペプ
チドあるいは誘導体の発現を許容する条件下にて、請求
項36記載のトランスフェクトした細胞を培養し、つい
で該組換えポリペプチドを回収することを特徴とするI
L−13α受容体組換えポリペプチドの産生方法。 - 【請求項49】 請求項1記載のポリペプチドを特異的
に認識することができることを特徴とするモノクローナ
ル抗体、ポリクローナル抗体、コンジュゲート抗体また
はそれらの断片。 - 【請求項50】 請求項17記載のポリペプチドを特異
的に認識することができることを特徴とするモノクロー
ナル抗体、ポリクローナル抗体、コンジュゲート抗体ま
たはそれらの断片。 - 【請求項51】 請求項49記載の抗体を含む、生物試
料中の請求項1記載のポリペプチドを精製または検出す
るための組成物。 - 【請求項52】 請求項50記載の抗体を含む、生物試
料中の請求項17記載のポリペプチドを精製または検出
するための組成物。 - 【請求項53】 請求項49または50記載の少なくと
も1の抗体を、IL−13受容体と該抗体(群)との間
の特異的な免疫複合体の可能な形成を許容する条件下
で、該生物試料と接触させ、ついで形成され得る特異的
な免疫複合体を検出することを特徴とする異常なレベル
で発現するIL−13受容体の異常な発現と関連する病
理をイン・ビトロ検出するための方法。 - 【請求項54】 生物試料中のIL−13受容体の異常
な発現をイン・ビトロ診断し、および/または該試料中
のIL−13受容体の発現のレベルを測定するためのキ
ットであって: −所望により支持体に結合されていてもよい、請求項4
9または50記載のIL−13受容体に対して特異的な
少なくとも1種の抗体、および −IL−13受容体と該抗体(群)との間の特異的な抗
原/抗体複合体の形成を明らかにするための手段、およ
び/またはこれらの複合体を定量化するための手段を含
む該キット。 - 【請求項55】 請求項1記載のポリペプチドまたはそ
の活性を変調させることができる剤を同定および/また
は単離するための方法であって、所望により未同定であ
ってもよい化合物または種々の化合物を含有する混合物
を、該化合物が請求項1記載のポリペプチドに対して親
和性を有するであろう場合には、該ポリペプチドと該化
合物との間の相互作用を許容する条件下にて、その表面
に該ポリペプチドを発現している細胞と接触させ、つい
で、ポリペプチドに結合した化合物、またはポリペプチ
ドの生物活性を変調させることができる化合物を検出お
よび/または単離することを特徴とする該方法。 - 【請求項56】 請求項17記載のポリペプチドまたは
その活性を変調させることができる剤を同定および/ま
たは単離するための方法であって、所望により未同定で
あってもよい化合物または種々の化合物を含有する混合
物を、該化合物が請求項17記載のポリペプチドに対し
て親和性を有するであろう場合には、該ポリペプチドと
該化合物との間の相互作用を許容する条件下にて、その
表面に該ポリペプチドを発現している細胞と接触させ、
ついで、ポリペプチドに結合した化合物、またはポリペ
プチドの生物活性を変調させることができる化合物を検
出および/または単離することを特徴とする該方法。 - 【請求項57】 請求項1記載のポリペプチドを有効成
分として含む医薬組成物。 - 【請求項58】 請求項17記載のポリペプチドを有効
成分として含む医薬組成物。 - 【請求項59】 請求項2記載のポリペプチドを含むこ
とを特徴とする請求項57記載の医薬組成物。 - 【請求項60】 請求項18記載のポリペプチドを含む
ことを特徴とする請求項58記載の医薬組成物。 - 【請求項61】 請求項1記載のポリペプチドを含む、
IL−13Rβの活性を変調させることができる剤をス
クリーニングするための組成物。 - 【請求項62】 請求項17記載のポリペプチドを含
む、IL−13Rαの活性を変調させることができる剤
をスクリーニングするための組成物。 - 【請求項63】 請求項1記載のポリペプチドを使用す
ることを特徴とする、IL−13Rβの活性を変調させ
ることができる生成物の製造法。 - 【請求項64】 請求項17記載のポリペプチドを使用
することを特徴とする、IL−13Rαの活性を変調さ
せることができる生成物の製造法。 - 【請求項65】 請求項2記載のポリペプチドを使用す
ることを特徴とするIL−13β拮抗作用を有する医薬
生成物の合成法。 - 【請求項66】 請求項18記載のポリペプチドを使用
することを特徴とするIL−13α拮抗作用を有する医
薬生成物の合成法。
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