JP2002518405A - ビタミンb12誘導体及びそれらの製造方法 - Google Patents
ビタミンb12誘導体及びそれらの製造方法Info
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Abstract
Description
療物質を含む複合体を投与することにより治療物質を供給するためのビタミンB 12 担体分子の新規な誘導体に関する。また、本発明は、一般的にVB12誘導体の
新規な製造方法に関する。より詳細には、本発明は、VB12の5’OH基を求電
子剤と反応させることによるこれらのVB12誘導体の製造に関する。
く国際出願PCT/AU86/0299(WO87/02251)に記載されて
いる。この機構では、少なくとも一種の担体分子であって、これに活性物質を結
合させて前記活性物質を腸内腔から循環系に輸送させるようにしたものを利用し
ている。VB12及びその類似体は、内因子(IF)に対するVB12の結合が介在
する天然VB12摂取系を使用して活性物質/VB12複合体を輸送することにより
理想的な担体分子として作用する。リンパドレナージ系又は血清に一旦排出され
たとき、この複合体は、在来活性物質の生物活性を実質的に保持している。
出及び治療に使用されてきた。ビタミンB12(コバルアミン、Cbl、VB12)
が正常に細胞摂取されるには、ビタミンは、まず血漿タンパク質トランスコバル
アミンII(TCII)に結合しなければならない。CblのTCIIへの結合
に続いて、得られたTCII−Cbl複合体は、細胞表面上のレセプターに親和
性良く結合し、レセプター介在エンドサイトーシス(RME)と称されるプロセ
スを介して細胞により吸収される。細胞内部において、Cblが酵素により変更
されて2種のコエンザイムが形成されると、これら2種のコエンザイムが次に2
つの必須の代謝経路に使用される。一つの経路には、メチオニンのデノボ(de n
ovo)合成におけるホモシステインのメチル化が含まれ、メチオニンシンターゼ
が触媒として働く。他の経路には、メチルマロニルCoAのスクシニルCoAへ
の再配列を含み、メチルマロニルCoAムターゼが触媒として働く。ヒト及びネ
ズミの白血病細胞の生体外増殖が、TCIIとCblとの両方に依存することが
最近示された(McLean,G.R.、Quadros,E.B.、Roth
enberg,S.P.、Morgan,A.C.、Schrader,J.W
.及びZiltener,H.J.、1997 Antibodies to
transcobalamin II block in vitro pro
liferation of leukemic cells(白血病細胞のト
ランスコバルアミンIIブロック生体外増殖に対する抗体)、Blood、89
、235−242)。何人かの研究者は、今般、放射線像形成と標的癌化学療法
の両方にCbl共役系を利用することについて鋭意研究した(Smeltzer
,C.C.、Pinson,P.R.、Munger,J.M.、West,F
.G.及びGrissom,C.B.、1999 Cytotoxicitie
s of two new cobalamin bioconjugates
(2種の新規なコバルアミン生物共役系の細胞毒性作用)。Proceedin
gs Ninth International Symposium on
Recent Advances in Drug Delivery Sys
tems、pp232−3;Canon,M.J.、Munger,J.M.、
West,F.G.及びGrissom,C.B.、1999 Synthes
is and uptake of radiolabeled cobala
min bioconjugate(放射線標識コバルアミン生物共役系の合成
及び取り込み)、Proceedings Ninth Internatio
nal Symposium on Recent Advances in
Drug Delivery Systems、pp230−1;Pinson
,P.R.、Munger,J.M.、West,F.G.及びGrissom
,C.B.、1999 Synthesis of two doxorubi
cin−cobalamin bioconjugates(2種のドキソルビ
シン−コバルアミン生物共役系の合成)、Proceedings Ninth
International Symposium on Recent A
dvances in Drug Delivery Systems、pp2
28−9)。
、まずVB12分子に共有結合しなければならない。同様に、VB12により抗腫瘍
剤が腫瘍を攻撃するようにするためには、抗腫瘍剤は、さらにVB12分子に共有
結合しなければならない。このために、VB12分子自体を、まず変更して共役す
るのに好適な官能基を提供しなければならない。VB12のカルボン酸誘導体は、
コリン環構造1のプロピオンイミド側鎖の穏やかな酸加水分解により容易に得ら
れる(図1参照)。この加水分解により、VB12の「b」、「d」及び「e」モ
ノカルボン酸が形成される。2 次に、単離されたモノカルボン酸誘導体を、工
業用カルボジイミド、例えば、1−エチル−3−(3−(ジメチルアミノ)プロ
ピル)カルボジイミド(EDAC)又はジシクロヘキシルカルボジイミド(DC
C)を用いて、タンパク質又はペプチドのアミノ基に直接共役することができる
。これにより、ペプチドがペプチド結合を介してVB12に結合される。1,3
の官能基の軸置換によるものである(式1参照)。この方法において、VB12の
軸CNリガンドを、官能化アルキル鎖で置き換えることができる。次に、この置
換官能基を、通常の化学的方法を用いてペプチド又はタンパク質へ共役させるの
に使用できる。しかしながら、この方法の一つの主要な欠点は、得られた共役系
が感光性Co−C結合を含有することである。したがって、アルキルコバルアミ
ンの溶液を可視光に当てないように注意しなければならない。
リボース成分の5’OHへのエステル結合を介してVB12に共役することができ
ることが示された。この研究で、Toraya及びFukuiは、ジオールデヒ
ドラーゼの精製のためのアフィニティリガンドを形成するのに、この化学的性質
を利用することができるどうかを検討した。5’O−エステル結合を形成するた
めに、著者等は、VB12と54倍過剰の無水コハク酸とを、大容量のDMSO(
VB12=5mg/ml)+大過剰のピリジン(128倍w/w)中で反応させた
。その結果、著者等は、形成された結合は、塩基性pHで不安定であるばかりで
なく、酵素を精製するのにも有効でないことを見いだした。Annunziat
o等5は、リボースの5'OHへの別の結合方法を記載している。これらの研究者
は、p−マレイミドフェニルイソシアネートをVB12とを反応させ、続いて活性
化VB12分子を使用してチオール化アルカリ性ホスファターゼと反応させる分続
いて、Habberfield等は、Toraya及びFukui4の研究をA
nnunziato等5の研究、さらにはRussell−Jones等3、6の研
究とを組み合わせて、G−CSF、EPO及びコンセンサスインターフェロンを
VB12の5’O−グルタロイル誘導体へ共役させた。記載によれば、得られた共
役系は、ラットIFに予備複合された共役系のラットへの十二指腸内ポンプ投与
後に活性状態となる。Habberfield等により記載されている方法では
、シアノコバルアミン(VB12−1356MW)5mgをDMSO1,000m
lに溶解し、無水グルタル酸(116MW)200mgをピリジン160mlに
添加した。生成物収量は、約65%であった。これは、VB12に対して無水グル
タル酸が468モル過剰であることを示す。Toraya及びFukui4の研
究において、これらの研究者は、シアノコバルアミン200mgをDMSO40
ml+無水コハク酸(100MW)8gに溶解して使用し、ヒドロキシル基にカ
ップリングさせた。これは、無水物が54倍モル過剰であることを示しており、
生成物収量は90%であった。Russell−Jones等3、6により記載さ
れている共役方法では、VB12一塩基酸を酸による72時間処理により調製し、
続いてDowex 1X8及びDowex1X2により精製しており、この場合
の収量は約5%でしかなかった。VB12一塩基酸をある種のペプチド及びタンパ
ク質に結合するために、カルボキシル基のさらなる誘導化がしばしば必要であっ
た。
nziato等5により記載されている方法とは別に、VB12の5’OH基に対
して共有結合を形成する他の方法がある。これらの方法では、一般的にアガロー
スに存在する糖残基を変更することによりアフィニティ樹脂を調製することがで
きる。これらの方法では、オキシラン(1,4ブタン−ジオールジグリシジルエ
ーテル)、ベンゾキノン又はシアヌリッククロリドとの反応を含む。これらの方
法は、VB12誘導体の合成で試みられたが、収量が低すぎてプロセスを工業化す
るには不適当であったり、試薬の使用量が多すぎて同様に工業化には不適当であ
るものであった。
なくとも軽減することである。特に、本発明の目的は、スペーサ分子との化学結
合にVB12の5'OH基を利用するVB12担体分子の誘導体の新規な製造方法を
提供することである。本発明の好ましい目的は、製造が容易であり、高収量で得
られ、且つ容易に精製されることができるVB12誘導体を提供することである。
剤へ共役するのに好適であるVB12誘導体が、VB12のリボース成分上の5'O
H基とカルボニル求電子剤との反応により容易に調製されることが分かった。
若しくはペプチドへの結合に好適なVB12誘導体の製造方法であって、VB12の
5'OH基又はその類似体を二官能カルボニル求電子剤と反応させて活性中間体
を形成する工程と、続いて前記中間体を求核性スペーサ分子と反応させて前記V
B12誘導体を得る工程と、を含む方法が提供される。
ク質若しくはペプチドへの結合に好適なVB12誘導体の製造方法であって、カル
ボン酸スペーサ分子を二官能カルボニル求電子剤と反応させて活性中間体を形成
する工程と、続いてVB12の5'OH基を前記活性中間体と反応させて前記VB1 2 誘導体を得る工程と、を含む方法が提供される。
導体は、理想的には生物適合性ポリマーに結合されるか、ナノ粒子と関連してい
る。これらのポリマー及びナノ粒子を、薬学的に許容される担体及び/又は希釈
剤と混合して被験者への治療投与用医薬組成物を調製できる。
「含有する」とは、記載された完全体、工程又は完全体若しくは工程の群を含む
が、他の完全体、工程又は完全体若しくは工程の群を含むことを排除するもので
はない。
チド並びに他のこのような薬学的に活性な薬剤へ共役する又は結合するのに好適
である。これらのVB12誘導体の製造方法により、一般的に高収量で且つ純度が
よい誘導体を得ることができる。
非水性溶媒、例えば、乾燥DMF、乾燥THF又は乾燥DMSO等に溶解し、カ
ルボニル求電子剤、好ましくは1,1'−カルボニルジイミダゾール(1〜5モ
ル過剰)との反応によりVB12の5'OH基を活性化することにより得られる。
5モル過剰以上の量を使用できるが、一般的には必要としない。好ましくは、V
B12を、DMSOに高濃度で溶解させる。次に、活性化VB12中間体を、ペプチ
ド又はタンパク質に直接カップリングさせてもよいし、ジアミノ−スペーサ若し
くはアミノ−スペーサー酸又はアミノ−アルキル鎖と反応させて、ミクロ粒子若
しくはナノ粒子の疎水性表面又は脂質若しくはリポソームに挿入させるのに好適
なVB12の疎水性誘導体を形成してもよい。
の5'OH基を利用する。5'OHエステル誘導体の合成において、まず、カルボ
ン酸スペーサ分子を二官能カルボニル求電子剤と反応させて活性求電子中間体を
調製する。次に、VB12又はその類似体を、求電子中間体との反応に附すること
により、VB12の5'OH基が、カルボニル求電子剤を攻撃し、離脱基に取って
代わってVB12誘導体が得られる。好ましくは、VB12の5'OHエステル誘導
体の調製において、VB12をアミノ酸スペーサ又は酸脂質に結合させる。これら
の誘導体は、製造が容易であり、且つ血清エステラーゼにより容易に開裂されて
生体内で在来VB12を再生するスペーサ又は結合をこれらの誘導体から生成する
のが容易であるという更なる利点がある。
ボニル基に結合した良好な離脱基と組み合わせることにより弱い5'OH求核剤
の攻撃を可能にした。これらの方法により、強塩基性(強塩基によりVB12が変
性されることがある)を使用して架橋剤をVB12分子に結合させていた従来技術
の問題を克服できる。
ール、ホスゲン、トリホスゲン、N,N'−ジスクシンイミジルカーボネート、
カルボニルジピペリジン、1,1'−カルボニルジ(1,2,4−トリアゾール
)、ジ(2−ピリジル)ケトン又はジ(1−ベンゾトリアゾリル)カーボネート
、より好ましくはカルボニルジイミダゾールから選択される二官能カルボニル求
電子剤である。
される: VB12−5'O−CO−NH−R1 (I) (式中、 R1は、C1-24アルキル、C2-24アルケニル、C2-24アルキニル、C3-8シクロ
アルキル、(C3-8シクロアルキル)アルキル、アミノ、−(C1-12アルキル)
C(O)R2、−(C2-12アルケニル)C(O)R2、−NHC(O)−C1-8ア
ルキル−C(O)NHNH2又は−CH(R3)C(O)R4(これらの全ては、
任意にアミノ、アミド、ヒドロキシ、アルキル、ハロ、ハロアルキル、カルボキ
シ、アルコキシカルボニル、アセトキシ、スルファニル、アリール、アリールア
ルキル及びアルキルアリールアルキルから選択される一つ以上の基により置換さ
れていてもよい)であり、 R2は、アミノ、ヒドロキシ、C1-6アルコキシ又はC2-6アルケニルオキシで
あり、 R3は、アミノ酸側鎖又はその誘導体であり、 R4は、ヒドロキシ、C1-6アルコキシ、アミノ酸又はペプチドである)。
クタデシル、アミノエチル、アミノブチル、アミノヘキシル、アミノドデカニル
、t−ブチル−Phe、スクシニルヒドラジジル、アジピルヒドラジジル、Gl
y−OMe又はGly−OHである。
供される: VB12−5'O−CO−R1 (II) (式中、 R1は、C1-24アルキル若しくはC2-24アルケニル(任意にアミノ、アミド、
ヒドロキシ、アルキル、ハロ、ハロアルキル、カルボキシ、アルコキシカルボニ
ル、アセトキシ、スルファニル、アリール、アリールアルキル及びアルキルアリ
ールアルキルから選択される一つ以上の基により置換されていてもよい)である
か、又は R1は、−CH(R2)−NHR3であり、 R2は、アミノ酸側鎖又はその誘導体であり、 R3は、水素、アミン保護基、アミノ酸又はペプチドである)。
R3(式中、R2はグリシンであり且つR3はBoc又は水素であるか、又はR2は
フェニルアラニンであり且つR3はBoc又は水素である)である。当業者には
、他のアミノ酸又はタンパク質を使用してVB12分子又はその類似体を誘導化で
きることが明らかであろう。さらに、アミノ酸又はタンパク質が、これらの反応
剤を本発明のカップリング反応に附する前に、ペンダント官能基の保護又は他の
このようなマスキングを必要とする場合があることが明らかであろう。
されている標準的方法に準じてポリマーに結合させるか、ナノ粒子等と関連させ
てビタミン複合体を調製できる。このような方法は、例えば、欧州特許第0 2
20 030号、オーストラリア特許第664365号、米国特許第54497
20号及び第5548064号に記載されている。
酵素、タンパク質、ペプチド、トキシン、免疫抗原又はDNA若しくはRNA類
似体を被験者に導出するのに使用される。被験者は、好ましくは脊椎動物宿主、
より好ましくは獣、家畜、農業用動物及びヒトである。
標準的配合方法に準じてポリマー又はナノ粒子を薬学的に許容される担体及び/
又は希釈剤と組み合わせることにより、医薬組成物として配合できる。医薬組成
物は、当業者により決定される所望の投与形態を満たすようにいずれかの許容で
きる方法で配合してよい。
VB12の活性化の間に使用される化学薬品の減少又は活性化される酸の増加によ
るコストの低下などがある。
限定されない。
バルアミン(1.0g、0.74mmol)を予めジメチルスルホキシド(12
mL)に溶解したものに30℃で添加し、混合物を25分間攪拌した。ヘキシル
アミン(2.7mmol)を一度に加え、攪拌を、室温でさらに24時間継続し
た。混合物を、フェノール/ジクロロメタン(1:1、2×20mL)で抽出し
、水(1:4フェノール/ジクロロメタンから;2×20mL)で逆抽出した。
混合物を、フェニルセファロース(50g)カラムクロマトグラフィーにおいて
、未変更VB12を25%エタノールで溶出させ且つ生成物を60%エタノールで
溶出させることにより精製した。溶媒を減圧除去し、残留物を、5分間音波破砕
することによりアセトン(50mL)に再懸濁させた。混合物を濾過し、得られ
た固形物をアセトンで洗浄し、風乾した:収率60%;融点213〜215℃(
分解);C70H101N15O15CoPのMS(ESI)質量、理論値1482、実
測値1505(M+23)+;UV(H2O)λ361(ε=10500)。
コバルアミン(1.0g、0.74mmol)を予めジメチルスルホキシド(1
2mL)に溶解したものに30℃で添加し、混合物を25分間攪拌した。ドデシ
ルアミン(2.7mmol)を一度に加え、攪拌を、室温でさらに24時間継続
した。混合物を、フェノール/ジクロロメタン(1:1、2×20mL)で抽出
し、水(1:4フェノール/ジクロロメタンから;2×20mL)で逆抽出した
。混合物を、フェニルセファロース(50g)カラムクロマトグラフィーにおい
て、未変更VB12を25%エタノールで溶出させ且つ生成物を60%エタノール
で溶出させることにより精製した。溶媒を減圧除去し、残留物を、5分間音波破
砕することによりアセトン(50mL)に再懸濁させた。混合物を濾過し、得ら
れた固形物をアセトンで洗浄し、風乾した:収率52%;融点215〜218℃
(分解);C76H113N15O15CoPのMS(ESI)質量、理論値1566、
実測値1589(M+23)+;UV(H2O)λ361(ε=16900)。
バルアミン(1.0g、0.74mmol)を予めジメチルスルホキシド(12
mL)に溶解したものに30℃で添加し、混合物を25分間攪拌した。テトラデ
シルアミン(2.7mmol)を一度に加え、攪拌を、室温でさらに24時間継
続した。混合物を、フェノール/ジクロロメタン(1:1、2×20mL)で抽
出し、水(1:4フェノール/ジクロロメタンから;2×20mL)で逆抽出し
た。混合物を、フェニルセファロース(50g)カラムクロマトグラフィーにお
いて、未変更VB12を25%エタノールで溶出させ且つ生成物を60%エタノー
ルで溶出させることにより精製した。溶媒を減圧除去し、残留物を、5分間音波
破砕することによりアセトン(50mL)に再懸濁させた。混合物を濾過し、得
られた固形物をアセトンで洗浄し、風乾した:収率46%;融点228〜233
℃(分解);C78H119N15O15CoPのMS(ESI)質量、理論値1595
、実測値1618(M+23)+;UV(H2O)λ361(ε=13000)。
バルアミン(1.0g、0.74mmol)を予めジメチルスルホキシド(12
mL)に溶解したものに30℃で添加し、混合物を25分間攪拌した。ヘキサデ
シルアミン(2.7mmol)を一度に加え、攪拌を、室温でさらに24時間継
続した。混合物を、フェノール/ジクロロメタン(1:1、2×20mL)で抽
出し、水(1:4フェノール/ジクロロメタンから;2×20mL)で逆抽出し
た。混合物を、フェニルセファロース(50g)カラムクロマトグラフィーにお
いて、未変更VB12を25%エタノールで溶出させ且つ生成物を60%エタノー
ルで溶出させることにより精製した。溶媒を減圧除去し、残留物を、アセトン(
50mL)中で5分間音波破砕した。混合物を濾過し、得られた固形物をアセト
ンで洗浄し、風乾した:収率48%;融点223〜227℃(分解);C80H12 1 N15O15CoPのMS(ESI)質量、理論値1623、実測値1646(M
+23)+;UV(H2O)λ361(ε=20000)。
せた。固形カルボニルジイミダゾール(CDI:400mg、3.3当量)を添
加し、得られた混合物を、室温で1時間攪拌した。反応混合物を、4等分し、オ
クタデシルアミン(Aldrich)500mgをアセトン、エタノール、ジク
ロロメタン又はクロロホルムに溶解したものに添加した。2時間反応させた後、
反応を、TLC及びRP−HPLCにより監視して、生成物(5'OH−(オク
タデシル)−VB12)の量を求めた。
した後、Beckman高速遠心分離機で遠心分離した(5K、10分)。DC
M相を除去し、生成物を、フラッシュカラムクロマトグラフィー(イソプロパノ
ール50%、アンモニア2%、水48%)により未変更VB12から分離した後、
凍結乾燥した:収率66%;融点220〜223℃(分解);C82H125N15O1 5 CoPのMS(ESI)質量、理論値1651、実測値1674(M+23)+ ;UV(H2O)λ361(ε=17500)。
た。固形カルボニルジイミダゾール(CDI:400mg、3.3当量)を添加
し、得られた混合物を、室温で1時間攪拌した。ジアミノエタン(3.3当量)
を、反応混合物に添加した。混合物を、12時間攪拌した後、アセトン/酢酸エ
チル(1:1,200mL)に注ぎ、放置した。上清を捨て、残留物を、5分間
音波破砕することによりアセトン(50mL)に再懸濁させた。混合物を焼結ガ
ラス漏斗で濾過し、得られた固形物をアセトンで洗浄した。生成物を、イソプロ
パノール50%、アンモニア2%、水48%を用いてシリカカラムによるフラッ
シュクロマトグラフィで精製した。次に、得られた生成物を、凍結乾燥した:収
率63%;融点206〜210℃(分解);TLC(iPrOH 30/n−B
uOH 45/H2O 25/NH4OH 2)Rf=0.22;C66H94N16O1 5 CoPのMS(ESI)質量、理論値1441、実測値1441(M)+;UV
(H2O)λ361(ε=19900)。
固形カルボニルジイミダゾール(CDI:400mg、3.3当量)を添加し、
得られた混合物を、室温で1時間攪拌した。ジアミノブタン(3.3当量)を一
度に加えた。混合物を、12時間攪拌した後、アセトン/酢酸エチル(1:1,
200mL)に注ぎ、放置した。上清を捨て、残留物を、アセトン(50mL)
中で5分間音波破砕した。混合物を焼結ガラス漏斗で濾過し、得られた固形物を
アセトンで洗浄した。生成物を、カラムクロマトグラフィ(シリカ、イソプロパ
ノール50%、アンモニア2%、水48%)で精製した後、凍結乾燥した:収率
70%;融点242〜244℃(分解);TLC(iPrOH 30/n−Bu
OH 45/H2O 25/NH4OH 2)Rf=0.08;C68H98N16O15
CoPのMS(ESI)質量、理論値1469、実測値1469(M)+;UV
(H2O)λ361(ε=15500)。
固形カルボニルジイミダゾール(CDI:400mg、3.3当量)を添加し、
得られた混合物を、室温で1時間攪拌した。固形t−ブチル−Phe(3.3当
量)を一度に加えた。混合物を、12時間攪拌した後、アセトン/酢酸エチル(
1:1,200mL)に注ぎ、放置した。上清を捨て、残留物を、アセトン(5
0mL)中で5分間音波破砕した。混合物を焼結ガラス漏斗で濾過し、得られた
固形物をアセトンで洗浄した。生成物を、フラッシュカラムクロマトグラフィ(
シリカ、イソプロパノール50%、アンモニア2%、水48%)で精製した後、
凍結乾燥した。
た。固形カルボニルジイミダゾール(CDI:400mg、3.3当量)を添加
し、得られた混合物を、室温で1時間攪拌した。ジアミノヘキサン(3.3当量
)を反応混合物に加えた。混合物を、12時間攪拌した後、アセトン/酢酸エチ
ル(1:1,200mL)に注ぎ、放置した。上清を捨て、残留物を、アセトン
(50mL)中で5分間音波破砕した。混合物を焼結ガラス漏斗で濾過し、得ら
れた固形物をアセトンで洗浄した。生成物を、カラムクロマトグラフィ(イソプ
ロパノール50%、アンモニア2%、水48%)で精製した後、凍結乾燥した:
収率98%;融点230〜233℃(分解);TLC(iPrOH 30/n−
BuOH 45/H2O 25/NH4OH 2)Rf=0.11;C70H102N16 O15CoPのMS(ESI)質量、理論値1497、実測値1497(M)+;
UV(H2O)λ361(ε=17000)。
固形カルボニルジイミダゾール(CDI:400mg、3.3当量)を添加し、
得られた混合物を、室温で1時間攪拌した後、ジアミノドデカン(3.3当量)
を一度に添加した。混合物を、12時間攪拌した後、アセトン/酢酸エチル(1
:1,200mL)に注ぎ、放置した。上清を捨て、残留物を、アセトン(50
mL)に再懸濁し、5分間音波破砕した。混合物を焼結ガラス漏斗で濾過し、得
られた固形物をアセトンで洗浄した。生成物を、フラッシュカラムクロマトグラ
フィ(イソプロパノール50%、アンモニア2%、水48%を用いたシリカ樹脂
)で精製した後、凍結乾燥した:収率68%;融点156〜158℃(分解);
TLC(iPrOH 30/n−BuOH 45/H2O 25/NH4OH 2
)Rf=0.27;C76H114N16O15CoPのMS(ESI)質量、理論値15
81、実測値1581(M)+;UV(H2O)λ361(ε=33000)。
固形カルボニルジイミダゾール(CDI:400mg、3.3当量)を添加し、
得られた混合物を、室温で1時間攪拌した後、固形スクシニルジヒドラジド(3
.3当量)を一度に添加した。混合物を、12時間攪拌した後、アセトン/酢酸
エチル(1:1,200mL)に注ぎ、放置した。上清を捨て、残留物を、アセ
トン(50mL)中で5分間音波破砕した。混合物を焼結ガラス漏斗で濾過し、
得られた固形物をアセトンで洗浄した。生成物を、フラッシュカラムクロマトグ
ラフィ(イソプロパノール50%、アンモニア2%、水48%)で精製した後、
凍結乾燥した:収率68%;融点206〜208℃(分解);TLC(iPrOH
30/n−BuOH 45/H2O 25/NH4OH 2)Rf=0.36;
C68H96N18O17CoPのMS(ESI)質量、理論値1581、実測値158
1(M)+;UV(H2O)λ361(ε=15700)。
固形カルボニルジイミダゾール(CDI:400mg、3.3当量)を添加し、
得られた混合物を、室温で1時間攪拌した後、固形アジピルジヒドラジド(3.
3当量)を一度に添加した。混合物を、12時間攪拌した後、アセトン/酢酸エ
チル(1:1,200mL)に注ぎ、放置した。上清を捨て、残留物を、アセト
ン(50mL)中で5分間音波破砕した。混合物を焼結ガラス漏斗で濾過し、得
られた固形物をアセトンで洗浄した。生成物を、シリカカラムフラッシュクロマ
トグラフィ(イソプロパノール50%、アンモニア2%、水48%)で精製した
後、凍結乾燥した:収率73%;融点208〜210℃(分解);TLC(iPr
OH 30/n−BuOH 45/H2O 25/NH4OH 2)Rf=0.3
3;C70H100N18O17CoPのMS(ESI)質量、理論値1555、実測値
1555(M)+;UV(H2O)λ361(ε=21100)。
ジイミダゾール(1.01g、0.0062mol)をDMF(6ml)に溶解
し、得られた溶液をCO2の激しい発生をともないながら室温で1時間攪拌した
。VB12(1.0g)をDMSO(10ml)に添加して調製した溶液を、活性
エステル溶液に滴下した後、DIEA(1.2ml、0.89g、0.0069
mol)を加え、攪拌を、室温で一晩継続した。アセトン90mlを添加してV
B12を沈殿させることにより、未反応Boc−Phe、CDI及びDIEAを除
去した。次に、生成物を、ブタノール45%と、プロパン−2−オール30%と
、DW23%と、NH4OH2%との溶媒混合物を用いた、シリカカラム(2.
5×50cm)によるフラッシュクロマトグラフィにより精製した。精製した生
成物を凍結乾燥し、乾燥粉末を、純粋TFA(1ml/100mg)を添加する
ことにより10分間で脱保護した。次に、生成物を、酢酸エチルの添加により沈
殿させ、乾燥させた。
ミダゾール(1.01g、0.0062mol)をDMF(6ml)に溶解し、
得られた溶液をCO2の激しい発生をともないながら室温で1時間攪拌した。V
B12(1.0g)をDMSO(10ml)に添加して調製した溶液を、活性エス
テル溶液に滴下した後、DIEA(1.2ml、0.89g、0.0069mo
l)を加え、攪拌を、室温で一晩継続した。アセトン90mlを添加してVB12 を沈殿させることにより、未反応Boc−Gly、CDI及びDIEAを除去し
た。次に、生成物を、ブタノール45%と、プロパン−2−オール30%と、D
W23%と、NH4OH2%との溶媒混合物を用いた、シリカカラム(2.5×
50cm)によるフラッシュクロマトグラフィにより精製した。精製した生成物
を凍結乾燥し、乾燥粉末を、純粋TFA(1ml/100mg)を添加すること
により10分間で脱保護した。次に、生成物を、酢酸エチルの添加により沈殿さ
せ、乾燥させた。
ルジイミダゾール(CDI、260mg)を、30℃のジメチルスルホキシド(
12mL)に順次添加し、混合物を20分間攪拌した。OMe−Gly(2.7
mmol)を一度に添加した後、トリエチルアミン(200μL)を添加し、得
られた混合物を、室温で24時間攪拌した。混合物を、酢酸エチル(30mL)
に注ぎ、放置した。上清を捨て、残留物を、アセトン(50mL)中で5分間音
波破砕した。混合物を濾過し、固形物を、アセトンで洗浄した。次に、残留物を
0.1M HCl溶液に溶解し、30分間攪拌した。次に粗製酸を、Dowex
1X4樹脂において、2%酢酸で溶出させて精製した:収率95%;融点23
9〜242℃(分解);TLC(iPrOH 30/n−BuOH 45/H2O
25/NH4OH 2)Rf=0.41;C66H90N15O17CoPのMS(ES
I)質量、理論値1456、実測値1456(M)+;UV(H2O)λ361(ε
=19800)。
2)を、0.1Mリン酸カリウム緩衝液(pH7.5)に1mg/mlで溶解し
た。
lをIF緩衝液25mlに添加したものに希釈して、1ng57CoVB12/25
ml溶液を得た。冷VB12250ngを、熱57CoVB12溶液25mlに添加し
て10ng/ml溶液を得た。
必要となるまで500μlロット(100IUアリコット)で凍結させた。
衝液(pH7.5)の5%チャコール溶液に添加し、30分間穏やかに攪拌した
。
で調製した。等容積の希釈IFを、各試料に添加し、室温で20分間インキュベ
ーションした。等容積のBSA塗布チャコールを、各試料に添加し、混合してか
ら遠心分離した。遠心分離後、上清と各試料のペレットとを分離し、57CoVB 12 を、ガンマカウンターでカウントすることにより求めた。データは、未変更V
B12と比較したときの57CoVB12結合の阻害%として表す。
ことが分かるであろう。また、本発明は、全てのこのような修正及び変更を含む
。また、本発明は、本明細書で個々に又はまとめて言及又は示した工程、特徴、
組成物及び化合物の全て並びに前記工程又は特徴のいずれかの2以上の組み合わ
せのいずれか及び全てを含む。
vitamin B12 transport system as a car
rier for the oral delivery of peptid
es, proteins and nanoparticles(ビタミンB1 2 輸送系のペプチド、タンパク質及びナノ粒子の経口導出用担体としての使用).
Proc. 23rd International Symposium
on Controlled Release of Bioactive M
aterials,1996. 2.Anton, D.L.Hogenkamp, H.P.C.,Walk
er, T.E., and Matwiyoff,N.A. Carbon−
13 nuclear magnetic resonance studie
s of monocarboxylic acids of cyanoco
balamin. Assignments of the b−, d−,
and e−monocarboxylic acids(シアノコバルアミン
のモノカルボン酸の炭素13核磁気共鳴の研究。b−、d−及びe−モノカルボ
ン酸の帰属). J.Am.Chem.Soc., 102:2215,198
0. 3.Russell−Jones, G.J., Westwood, S.
W and Habberfield, A.D. Vitamin B12 m
ediated oral delivery systems for Gr
anulocyte−Colony Stimulating Factor
and erythropoietin(顆粒球体−コロニー刺激因子及びエリ
スロポイエチン用ビタミンB12介在経口導出システム). Bioconj C
hem, 6, 459−465,1995. 4.Toraya, T. and Fukui, S. The synt
hesis of several immobilized derivat
ives of vitamin B12 coenzyme and thei
r use as affinity absorbents for a s
tudy of interactions of diol dehydra
se with the coenzyme(ビタミンB12コエンザイムの数種
の固定化誘導体合成及びそれらのジオールデヒドラーゼとコエンザイムとの相互
作用の研究用アフィニティ吸収剤としての使用). J.Biol.Chem.
, 255,3520,1980. 5.Annunziato, M.E., Patel, U.S., Ra
nade, M., and Palumbo, P.S. p−Maleim
idophenyl isocyanate: A novel hetero
bifunctional linker for hydroxyl to
thiol coupling(p−マレイミドフェニルイソシアネート:ヒド
ロキシルのチオールへのカップリング用の新規なヘテロ二官能リンカー). B
ioconj. Chem.,4,212,1993. 6.Westwood, S.W., and Russell−Jones
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systems for GCSF and EPO(GCSF及びEPO用ビ
タミンB12介在導出システム). (USP 08/064,873;5,54
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, and Pitt, C.G. Conjugates of VB12 a
nd proteins(VB12とタンパク質との共役系).(米国特許第5,
574,018号)1996.
つVB12分子を示す。これらの共役する部位は以下の通りである:a)コリン環
のCo原子上の置換を介した軸で共役する;b)eプロピアンイミド側鎖の酸修
飾により直接共役する;及びc)ヌクレオチド残基のリボース成分が5'OH基
へ共役する。
Claims (28)
- 【請求項1】ポリマー、ナノ粒子若しくは治療剤、又はタンパク質若しくは
ペプチドへの結合に好適なVB12誘導体の製造方法であって、VB12の5'OH
基又はその類似体を二官能カルボニル求電子剤と反応させて活性中間体を形成す
る工程と、続いて前記中間体を求核性スペーサ分子と反応させて前記VB12誘導
体を得る工程と、を含む方法。 - 【請求項2】前記二官能カルボニル求電子剤が、カルボニルジイミダゾール
、ホスゲン、トリホスゲン、N,N'−ジスクシンイミジルカーボネート、カル
ボニルジピペリジン、1,1'−カルボニルジ(1,2,4−トリアゾール)、
ジ(2−ピリジル)ケトン又はジ(1−ベンゾトリアゾリル)カーボネートから
なる群から選択されるものである、請求項1に記載の方法。 - 【請求項3】前記二官能カルボニル求電子剤が、カルボニルジイミダゾール
である、請求項2に記載の方法。 - 【請求項4】前記求核性スペーサ分子が、アミノ置換又はヒドラジジル置換
スペーサ分子である、請求項1に記載の方法。 - 【請求項5】前記スペーサ分子が、オクタデシルアミンである、請求項4に
記載の方法。 - 【請求項6】前記スペーサ分子が、ジアミノエタンである、請求項4に記載
の方法。 - 【請求項7】前記スペーサ分子が、ジアミノブタンである、請求項4に記載
の方法。 - 【請求項8】前記スペーサ分子が、ジアミノヘキサンである、請求項4に記
載の方法。 - 【請求項9】前記スペーサ分子が、ジアミノドデカンである、請求項4に記
載の方法。 - 【請求項10】前記スペーサ分子が、ジアミノオクタデカンである、請求項
4に記載の方法。 - 【請求項11】前記スペーサ分子が、アミノ酸又はペプチドである、請求項
4に記載の方法。 - 【請求項12】前記スペーサ分子が、ジヒドラジドである、請求項4に記載
の方法。 - 【請求項13】前記ジヒドラジドが、コハク酸ジヒドラジドである、請求項
12に記載の方法。 - 【請求項14】前記ジヒドラジドが、アジピン酸ジヒドラジドである、請求
項12に記載の方法。 - 【請求項15】ポリマー、ナノ粒子若しくは治療剤、又はタンパク質若しく
はペプチドへの結合に好適なVB12誘導体の製造方法であって、カルボン酸スペ
ーサ分子を二官能カルボニル求電子剤と反応させて活性中間体を形成する工程と
、続いてVB12の5'OH基を前記活性中間体と反応させて前記VB12誘導体を
得る工程と、を含む方法。 - 【請求項16】前記二官能カルボニル求電子剤が、カルボニルジイミダゾー
ル、ホスゲン、トリホスゲン、N,N'−ジスクシンイミジルカーボネート、カ
ルボニルジピペリジン、1,1'−カルボニルジ(1,2,4−トリアゾール)
、ジ(2−ピリジル)ケトン又はジ(1−ベンゾトリアゾリル)カーボネートか
らなる群から選択されるものである、請求項15に記載の方法。 - 【請求項17】前記二官能カルボニル求電子剤が、カルボニルジイミダゾー
ルである、請求項16に記載の方法。 - 【請求項18】前記カルボン酸スペーサ分子が、N−Boc−Pheである
、請求項15に記載の方法。 - 【請求項19】前記カルボン酸スペーサ分子が、N−Boc−Glyである
、請求項15に記載の方法。 - 【請求項20】前記請求項のいずれかに記載の方法により製造されたVB12 誘導体。
- 【請求項21】式(I)で表されるVB12誘導体、又はその塩: VB12−5'O−CO−NH−R1 (I) (式中、 R1は、C1-24アルキル、C2-24アルケニル、C2-24アルキニル、C3-8シクロ
アルキル、(C3-8シクロアルキル)アルキル、アミノ、−(C1-12アルキル)
C(O)R2、−(C2-12アルケニル)C(O)R2、−NHC(O)−C1-8ア
ルキル−C(O)NHNH2又は−CH(R3)C(O)R4(これらの全ては、
任意にアミノ、アミド、ヒドロキシ、アルキル、ハロ、ハロアルキル、カルボキ
シ、アルコキシカルボニル、アセトキシ、スルファニル、アリール、アリールア
ルキル及びアルキルアリールアルキルから選択される一つ以上の基により置換さ
れていてもよい)であり、 R2は、アミノ、ヒドロキシ、C1-6アルコキシ又はC2-6アルケニルオキシで
あり、 R3は、アミノ酸側鎖又はその誘導体であり、 R4は、ヒドロキシ、C1-6アルコキシ、アミノ酸又はペプチドである)。 - 【請求項22】R1が、ヘキシル、ドデシル、テトラデシル、ヘキサデシル
、オクタデシル、アミノエチル、アミノブチル、アミノヘキシル、アミノドデカ
ニル、t−ブチル−Phe、スクシニルヒドラジジル、アジピルヒドラジジル、
Gly−OMe又はGly−OHである、請求項21に記載のVB12誘導体。 - 【請求項23】式(II)で表されるVB12誘導体、又はその塩: VB12−5'O−CO−R1 (II) (式中、 R1は、C1-24アルキル若しくはC2-24アルケニル(任意にアミノ、アミド、
ヒドロキシ、アルキル、ハロ、ハロアルキル、カルボキシ、アルコキシカルボニ
ル、アセトキシ、スルファニル、アリール、アリールアルキル及びアルキルアリ
ールアルキルから選択される一つ以上の基により置換されていてもよい)である
か、又は R1は、−CH(R2)−NHR3であり、 R2は、アミノ酸側鎖又はその誘導体であり、 R3は、水素、アミン保護基、アミノ酸又はペプチドである)。 - 【請求項24】R1が、C8-24アルキル又はC8-24アルケニルである、請求
項23に記載のVB12誘導体。 - 【請求項25】R1が−CH(R2)−NHR3であり、R2がGlyであり、
R3がBoc又は水素である、請求項23に記載のVB12誘導体。 - 【請求項26】R1が−CH(R2)−NHR3であり、R2がPheであり、
R3がBoc又は水素である、請求項23に記載のVB12誘導体。 - 【請求項27】被験者に治療投与するのに好適なポリマー又はナノ粒子であ
って、請求項20〜26のいずれか1項に記載のVB12誘導体を含む、ポリマー
又はナノ粒子。 - 【請求項28】薬学的に許容される担体及び/又は希釈剤と関連した請求項
27に記載のポリマー又はナノ粒子を含む医薬組成物。
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