JP2001517452A - 機能的スプライス・ドナー部位及び機能的スプライス・アクセプター部位を含むレトロウイルスベクター - Google Patents
機能的スプライス・ドナー部位及び機能的スプライス・アクセプター部位を含むレトロウイルスベクターInfo
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Abstract
Description
現する新規な系に関するものである。
イルス粒子を発現できる新規な系に関するものである。
ターに関するものである。
は複数を含み得る。標的部位が標的細胞である場合には、この細胞は組織または
器官の一部であり得る。遺伝子治療についての一般的な教示は、Molecular Biol
ogy (Ed Robert Meyers, Pub VCH, 例えば556-558頁)に見られる。
欠陥遺伝子の交換や補足に用いることができるようにすること、例えば遺伝子の
ような病原性ヌクレオチド配列またはその発現産物を除去することができるよう
にすること、例えばより多くの好ましい表現型を生成するために遺伝子のような
ヌクレオチド配列またはその発現産物を付加、あるいは導入すること、例えば選
択を行う(即ち形質転換された細胞等を形質転換されていない細胞から選択する)
ために遺伝子のようなヌクレオチド配列またはその発現産物を付加あるいは導入
できるようにすること、分子レベルで細胞を操作して、例えば癌(Schmidt-Wolf 及びSchmidt-Wolf, 1994, Annals of Hematology 69;273-279)、または免疫疾患
、循環器(心血管)障害、神経疾患や、炎症性疾患または感染症のような他の疾
病等の疾病状態を処置、治療、または予防できるようにすること、及び例えば遺
伝子ワクチン接種のような免疫応答を誘発するために抗原を操作及び/または導
入できるようにすることのいずれか1つまたは複数を達成する手段となり得る。
イルスは、基本的に溶解性ウイルスと異なる生活環を有するRNAウイルスである 。この点から言えば、レトロウイルスは中間体DNAを介して複製を行う感染性物 質である。レトロウイルスが細胞に感染すると、そのゲノムは逆転写酵素によっ
てDNA形態に変換される。このDNAコピーは、新たなRNAゲノム、及び感染性ウイ ルス粒子の構築に必要な、ウイルスにコードされたタンパク質を生成するための
鋳型となる。
)、ヒト免疫不全ウイルス(HIV)、ウマ伝染性貧血ウイルス(EIAV)、マウス乳癌ウ
イルス(MMTV)、ラウス肉腫ウイルス(RSV)、藤浪肉腫ウイルス(FuSV)、モロニー マウス白血病ウイルス(Mo-MLV)、FBRマウス骨肉種ウイルス(FBR MSV)、モロニー
マウス肉腫ウイルス(Mo-MSV)、アベルソンマウス白血病ウイルス(A-MLV)、トリ 骨髄球腫症ウイルス29(MC29)、及びトリ赤芽球症ウイルス(AEV)等が挙げられる 。
Harbour Laboratory Press Eds: JM Coffin, SM Hughes, HE Varmus pp 758-76
3)に見ることができる。
、HIVについての詳細は、NCBI Genbank(ゲノム受託番号AF033819)から知ること ができる。
ドする3つの主要なコードドメイン、gag、pol、envを有するが、レトロウイルス
は大きく2つのカテゴリー、即ち「単純型(simple)」と「複雑型(complex)」とに
分けられる。これらのカテゴリは、そのゲノムの構成によって区別できる。単純
型レトロウイルスは、通常基本的な情報のみしか有していない。これに対して複
雑型レトロウイルスは、複数のスプライシングされたメッセージに由来する他の
調節タンパク質もコードしている。
発癌性のレトロウイルスである。他の2群はレンチウイスル及び泡沫状ウイルス である。これらのレトロウイルスの概説は、"Retroviruses" (1997 Cold Spring
Harbour Laboratory Press Eds: JM Coffin, SM Hughe, HE Varmus pp 1-25)に
示されている。
いる発癌性レトロウイルスとしては、ラウス肉腫ウイルス(RSV)、マウス乳癌ウ イルス(MMTV)及びマウス白血病ウイルス(MLV)及びヒトT細胞白血病ウイルス(HTL
V)等が挙げられる。
イルス」に分けることができる。霊長類レンチウイルスの例としては、ヒト後天
性免疫不全症候群(AIDS)の原因物質であるヒト免疫不全ウイルス(HIV)、及びサ ル免疫不全ウイルス(SIV)等が挙げられる。非霊長類レンチウイルス群としては 、プロトタイプの「遅発性ウイルス」であるビスナ/マエディウイルス(VMV)や 、類縁のヤギ関節炎−脳炎ウイルス(CAEV)、ウマ伝染性貧血ウイルス(EIAV)、及
び最近の文献に記載されたネコ免疫不全ウイルス(FIV)及びウシ免疫不全ウイル ス(BIV)等が挙げられる。
イルスが分裂細胞と非分裂細胞の両方に感染する能力を有している点である(Lew
isら 1992 EMBO. J 11: 3053-3058; Lewis及びEmerman 1994 J. Virol. 68: 510
-516)。これに対してMLVのような他のレトロウイルスは、例えば筋肉、脳、肺及
び肝臓の組織を形成する細胞のような非分裂細胞に感染することができない。
着する。感受性を有する宿主細胞中に入ると、レトロウイルスRNAゲノムは、親 ウイルスに保持されている、ウイルスがコードする逆転写酵素によりDNAにコピ ーされる。このDNAは宿主細胞の核に送り込まれ、そこで宿主のゲノムに組み込 まれる。この段階のウイルスは通常プロウイルスと呼ばれる。プロウイルスは、
細胞分裂の間に宿主の染色体中で安定であり、他の細胞タンパク質と同様に転写
される。プロウイルスは、さらに多くのウイルスを生成するのに必要なタンパク
質及びパッケージング機構をコードしており、作り出されたプロウイルスは、「
発芽」とも呼ばれるプロセスによって細胞から放出され得る。
をコードする、gag、pol及びenvと称する遺伝子を有する。プロウイルスでは、 これらの遺伝子の両側に、長い末端反復配列(LTR)と呼ばれる領域が隣接してい る。このLTRがプロウイルスの組み込み及び転写をもたらす。LTRは、エンハンサ
ー−プロモーター配列としての役目も果たす。つまり、LTRはウイルス遺伝子の 発現を調節し得る。レトロウイルスRNAのキャプシドによる包入はウイルスのゲ ノムの5'末端にあるpsi配列によって生ずる。
トのサイズは、異なるレトロウイルスの間でかなりばらつきがある。
構成(その通りのスケールではない)を、以下に簡単に示す。ここでは、LTRの基 本的特徴及びgag、pol及びenvの相対的位置を示す。
RNAゲノムの5'末端及び3'末端で独特の配列を表す。
3'末端への逆転写酵素の2回のジャンプを伴う。このジャンプの結果、ビリオンR
NAの5'末端及び3'末端に位置する配列の複製が生ずる。次にこれらの配列が、ウ
イルスDNAの両端にタンデムに融合し、R、U5、及びU3領域を含む長い末端反復配
列(LTR)を形成する。逆転写が終了すると、ウイルスDNAは核内に転位し、そこで
前組み込み複合体(PIC)と称するレトロウイルスゲノムの線状のコピーが、ビリ オンインテグラーゼにより染色体DNAにランダムに挿入され、安定したプロウイ ルスを形成する。宿主の細胞ゲノムへの組み込みが可能な部位の数は非常に多く
、非常に広く分布している。
ポリ(A)付加(終結)部位は、(上に示すように)右側LTRにおけるRとU5との境界に ある。U3はプロウイルスの転写調節エレメントの殆どを含み、転写調節エレメン
トとしては、細胞、場合によってはウイルス転写活性化因子タンパク質に応答す
るプロモーター及び複数のエンハンサー配列が含まれる。いくつかのレトロウイ
ルスは、遺伝子発現の調節に関与するタンパク質をコードするtat、rev、tax及 びrexのような遺伝子のいずれか1つまたは複数を有する。
れる。一般に、あらゆるRNA産物がウイルスタンパク質生成のための鋳型となる 。RNA産物の発現は、RNA転写物のスプライシングと、翻訳時のリボソームフレー
ムシフトが組み合わさることによって達成される。
レームが作られるプロセスである。レトロウイルスDNAの最初の転写物はいくつ かの形態で修飾され、細胞mRNAによく似ている。しかし、全てのイントロンが効
率的にスプライシングされる多くの細胞のmRNAとは異なり、新たに合成されたレ
トロウイルスRNAは、2つの集団に分けられなければならない。一方の集団は、ス
プライシングされないでゲノムRNAとしての役目を果たすものであり、他方の集 団はスプライシングされてゲノム下サイズのRNAとなるものである。
を果たす。即ち、それらの転写物は(1) gag及びpol遺伝子産物をコードするとと
もに、(2) ゲノムRNAとして子孫のビリオン粒子にパッケージングされる。ゲノ ム下サイズのRNA分子は、他のウイルス遺伝子産物のmRNAとなる。スプライシン グされたレトロウイルスの転写物はいずれも5'LTRのU5領域にわたる第1のエキソ
ンを有している。最後のエキソンは、そのサイズは異なっているとしても、3' L
TRがコードするU3及びR領域を常に有している。RNA構造の他の部分の構成は、ス
プライシング事象の数及び選択的スプライシング部位の選択による。
ー部位と、polの3'末端の近傍に位置するスプライス・アクセプター部位とを用 いて行われる。スプライシングで取り除かれる、スプライス・ドナー部位とスプ
ライス・アクセプター部位との間にあるイントロンはgag及びpol遺伝子を含む。
このスプライシングにより、エンベロープ(Env)タンパク質のmRNAが形成される 。一般に、スプライス・ドナー部位はgagの上流にあるが、ASLVのようないくつ かのウイルスでは、数個のコドンをgag遺伝子中に配置させており、Gagと共通の
アミノ末端の数個のアミノ酸残基を含む一次Env翻訳産物を生ずる。このEnvタン
パク質は、膜結合ポリリボソーム上で合成され、細胞の小胞輸送により原形質膜
に輸送され、そこでウイルス粒子に取り込まれる。
トもコードしている。レンチウイルス、特にHIVのような複雑型レトロウイルス は、レトロウイルスの感染の際に起こり得る選択的スプライシングの複雑さを明
らかに示す例となる。例えば、HIV-1は一次ゲノム転写物から、準最適のスプラ イシングにより30種以上の異なるmRNAを生成することができることが現在知られ
ている。競合するスプライス・アクセプター部位を破壊する変異がスプライシン
グパターンのシフトを生じさせ得、ウイルスの感染力に影響を及ぼし得ることか
ら、この選択プロセスは調節されていると考えられる(Purcell及びMartin 1993
J Virol 67: 6365-6378)。
これらの転写物のレベルの調節は、レトロウイルス遺伝子の発現における調節ス
テップである可能性がある。レトロウイルス遺伝子の発現のためには、スプライ
シングされたRNAとスプライシングされていないRNAの両方が細胞質に輸送されな
ければならず、効率的なレトロウイルス遺伝子の発現のために、スプライシング
されたRNAとスプライシングされていないRNAの適切な比率が維持されなければな
らない。別の種類のレトロウイルスは、この問題に対して独特の解決法を進化さ
せた。完全長の1回スプライシングされるRNAのみを用いる単純型レトロウイルス
は、可変的に効率的なスプライシング部位を使用するか、あるいは部分的にしか
明らかになっていないいくつかのcis作用エレメントをウイルスのゲノムに導入 することによって、それらの種の細胞質での比率を調節している。1回スプライ シングされるRNAと複数回スプライシングされるRNAの両方の合成を誘導する複雑
型レトロウイルスは、例えばHIV-1のrevやHTLV-1のrexのようなアクセサリー遺 伝子の1つのタンパク質産物とRNA上の配列との相互作用を介して、ゲノム下サイ
ズの種々のゲノムRNA種の輸送とおそらくスプライシングの調節を行っている。
ルスの内部構造タンパク質をコードする。Gagは、タンパク分解によって、成熟 タンパク質MA(マトリックス)、CA(キャプシド)、及びNC(ヌクレオキャプシド)に
分解される。pol遺伝子は逆転写酵素(RT)をコードする。逆転写酵素は、DNAポリ
メラーゼと、関連RNアーゼ活性及びインテグラーゼ(IN)とを含み、ゲノムの複製
を媒介する。env遺伝子は、ビリオンの表面(SU)糖タンパク質及び膜貫通(TM)タ ンパク質をコードし、これらは細胞受容体タンパク質と特異的に相互作用する複
合体を形成する。この相互作用が最終的にウイルス膜と細胞膜との融合をもたら
す。
レトロウイルスのエンベロープ糖タンパク質複合体は、2種のポリペプチド、即 ち外部の糖鎖をもつ親水性ポリペプチド(SU)と膜貫通タンパク質(TM)とを含む。
この両者がビリオンの表面上にオリゴマーの「ノブ部(knob)」または「ノブ付き
スパイク部(knobbed spike)」を形成する。両ポリペプチドは、env遺伝子により
コードされ、細胞表面への輸送の間にタンパク分解によって切断されるポリタン
パク質前駆体の形に合成される。切断前のEnvタンパク質は受容体に結合できる が、切断自体は、ウイルスの宿主細胞への侵入に必要なタンパク質の融合能を活
性化するために必要である。通常は、SUタンパク質とTMタンパク質の両方におい
て複数の部位でグリコシル化されている。しかし、例えばMLVのようないくつか のウイルスでは、TMはグリコシル化されていない。
てのために必ずしも必要ではないが、両タンパク質は侵入プロセスにおいて必要
不可欠な役目を果たす。これに関して、SUドメインは、標的細胞上の受容体分子
、多くの場合は特異的な受容体分子に結合する。この結合によりTMタンパク質の
膜融合誘導能が活性化された後、ウイルスの膜と細胞膜の融合が起こると考えら
れている。いくつかのウイルス、特にMLVでは、TMの原形質内にある尾部の短い 部分が除去される切断が、該タンパク質の完全な融合活性を表出させる際に重要
な役割を果たしていると考えられる(Brodyら 1994 J Virol 68: 4620-4627; Rei
nら 1994 J Virol 68: 1773-1781)。TMの膜貫通セグメントから離れた位置にあ る、原形質内のこの「尾部」はウイルス膜の内側に残り、異なる種類のレトロウ
イルスによって長さが著しく異なる。
スベクターの形質導入能を制限し得る。ここで形質導入とは、ウイルスベクター
を用いて非ウイルス遺伝子を標的細胞にデリバリーするプロセスである。このた
め、多くの遺伝子治療実験ではMLVが用いられてきた。4070Aと称するエンベロー
プタンパク質を有する特定のMLVは、両種指向性ウイルスとして知られており、 そのエンベロープタンパク質がヒト及びマウスに保存されているリン酸輸送タン
パク質と「ドッキング」するため、ヒト細胞にも感染することができる。この輸
送体はいたるところに遍在しているので、これらのウイルスは多くのタイプの細
胞に感染し得る。しかし場合によっては、特に安全性の点から、限定された細胞
を特異的に標的にすることが有益なこともある。このため、いくつかのグループ
は、マウス自己向性レトロウイルス(mouse ecotropic retrovirus)を製造し、通
常はマウス細胞のみに感染するその両種指向性の近縁種とは異なり、特定のヒト
細胞に特異的に感染するようにした。Envタンパク質の断片を、エリスロポエチ ンのセグメントで置換することにより、例えば赤血球前駆体のような、その表面
上にエリスロポエチン受容体を発現するヒト細胞に特異的に結合する組換えレト
ロウイルスが生成された(Maulik及びPatel 1997 "Molecular Biotechnology; Th
erapeutic Applications and Strategies" 1997 Wiley-Liss Inc. pp45)。
アクセサリータンパク質、即ち補助タンパク質は、通常の複製される遺伝子、即
ち構造遺伝子、gag、pol、及びenvによってコードされるものに加えて、アクセ サリー遺伝子によってコードされるタンパク質として定義される。これらのアク
セサリータンパク質は、tat、rev、tax及びrexによってコードされるタンパク質
のような遺伝子発現の調節に関与するタンパク質とは明らかに異なるものである
。アクセサリー遺伝子の例としては、vif、vpr、vpx、vpu及びnefの1種以上が挙
げられる。これらのアクセサリー遺伝子は、例えばHIVにおいて見られる (例え ば"Retrobviruses" Ed. Coffinら Pub. CSHL 1997の802及び803頁を参照)。必須
ではないアクセサリータンパク質は特別な細胞タイプにおいて機能し得、細胞タ
ンパク質により提供される機能と少なくとも部分的に重複している機能を与える
。通常、アクセサリー遺伝子はpolとenvの間、LTRのU3領域を含むenvの下流側の
近傍、またはenv及び相互の重複部分に位置する。
ドされた転写活性化因子を用いる調節機構を進化させてきた。これらのトランス
作用性ウイルスタンパク質は、LTRによって指令されるRNAの転写の活性化因子と
しての役目を果たす。レンチウイルスの転写トランス活性化因子は、ウイルスの
tat遺伝子によってコードされる。TatはTARと称する安定なステムループRNA二次
構造に結合し、この構造の機能の1つは、転写をトランス活性化するためにTatを
最適と思われる位置に置くことである。
n vitro、ex vivo、in vivoあるいはこれらの組み合わせにおいて生じ得る。こ のようにレトロウイルスを用いる場合、レトロウイルスは通常レトロウイルスベ
クターまたは組換えレトロウイルスベクターと呼ばれる。レトロウイルスベクタ
ーは、レトロウイルスの生活環のいくつかの側面、例えば受容体の使用、逆転写
、RNAパッケージング等を研究することを目的として開発されてきた(Miller, 19
92 Curr Top Microbiol Immunol 158:1-24に概説されている)。
g、pol及びenvタンパク質コード領域のいずれか1つまたは複数の少なくとも一部
分をウイルスから除去し得る。これによりレトロウイルスは複製欠陥を有するも
のとなる。そのゲノムを宿主ゲノムに組み込むことができるが、修飾されたウイ
ルスゲノムは構造タンパク質を欠いているためにそれ自体では増殖することがで
きないウイルスを生成するために、除去された部分をNOIによって置換すること もできる。宿主のゲノムに組み入れられるとNOIの発現が起こり、例えば治療上 及び/または診断上の効果が得られる。すなわち、NOIを目的の部位に移送する ことは、通常、NOIを組換えウイルスベクターに組み込み、その修飾されたウイ ルスベクターをビリオンコートのなかにパッケージングし、目的の部位、例えば
標的細胞や標的細胞の集団の形質導入を可能とすることによって達成される。
ることによって、例えばその後に目的の部位の形質導入を行うために、多量のレ
トロウイルスベクターを増殖させ、単離すること(例えば適切な力価のレトロウ イルスベクターを調製すること)が可能である。
することが必要なことがある。このパッケージング細胞系は、レトロウイルスDN
Aのパッケージングに必要なタンパク質を産生するが、psi領域を欠いているため
DNAを封入することはできない。しかし、NOI及びpsi領域を有する組換えベクタ ーをこのパッケージング細胞系に導入すると、ヘルパータンパク質がpsiポジテ ィブな組換えベクターをパッケージングして組換えウイルス系を生成することが
できる。これを利用して細胞に形質導入し、NOIを細胞のゲノムに導入すること ができる。この組換えウイルスは、ウイルスタンパク質を作るために必要な全て
のゲノム遺伝子を欠いており、1回だけ形質導入することができ、増殖はできな い。単回のみの標的細胞の形質導入が可能なこれらのウイルスベクターは複製欠
陥ベクターとして知られている。従って、有害である可能性のあるレトロウイル
スを発生させることなく、NOIが宿主/標的細胞のゲノムに導入される。使用で きるパッケージング系の概要は、"Retroviruses" (1997 Cold Spring Harbour L
aboratory Press Eds: JM Coffin, SM Hughes, HE Varmus pp 449)に記載されて
いる。
じたヘルパーウイルスの自発的生成の問題に対処するために発展してきた。組換
えは相同性により大きく促進されるので、ベクターゲノムとヘルパーゲノムとの
間の相同性を小さくするか、あるいはなくすことにより、ヘルパーウイルスの生
成の問題が起こることは少なくなった。さらに最近では、gag、pol及びenvウイ ルスコード領域が別々の発現プラスミドに含まれ、それぞれを個別にパッケージ
ング細胞系にトランスフェクトするため、野生型ウイルスを発生させるために3 種の組換え事象が必要なパッケージング細胞が開発された。これによって、複製
‐コンピテントウイルスの発生の可能性が小さくなる。この方法は3プラスミド トランスフェクション法と称されることもある(Soneokaら、1995 Nucl. Acids R
es. 23: 628-633)。
生を測定することもできる。この点、一過性トランスフェクションにより安定な
ベクター生成細胞系を生成するのにより長い時間をかけなくて済み、またベクタ
ーまたはレトロウイルスパッケージング要素が細胞に対して毒性である場合に用
いることができる。レトロウイルスベクターにを生成するために通常用いられる
要素には、Gag/Polタンパク質をコードするプラスミド、Envタンパク質をコード
するプラスミド、及びNOIを含むプラスミドが含まれる。ベクターの製造では、 これらの要素のうち1または複数の要素の、他の必要な要素を含む細胞への一過 性トランスフェクションを行う。有害な遺伝子、または細胞周期のインヒビター
のような宿主細胞の複製を阻害する遺伝子またはアポトーシスを誘導する遺伝子
をベクターがコードしている場合、安定なベクター生成細胞系を生成することが
困難なことがあるが、一過性トランスフェクションを用いることにより、細胞が
死滅する前にベクターを生成することができる。また、安定なベクター生成細胞
系で得られるレベルに匹敵するベクター力価レベルを生成する細胞系が、一過性
感染を用いて開発された(Pearら 1993, Proc Natl Acad Sci 90:8392-8396)。
クターとヘルパーウイルスの一過性トランスフェクションにより製造される。HI
VのEnvタンパク質を水疱性口内炎ウイルス(VSV)のEnvタンパク質で置換すること
も行われている。一過性トランスフェクションによりHIV/VSV-Gベクターが5×10 5 (濃縮後108)の力価で生成されるので、VSVのEnvタンパク質を挿入することによ
りベクターの濃縮が容易になる(Naldiniら、1996 Science 272: 263-267)。従っ
て、HIVベクターの一過性トランスフェクションにより高い力価のベクターを生 成するための有用な方法が得られる(Yeeら、1994 PNAS. 91: 9564-9568)。 ベクターの力価に関して、in vitroの培養で得られる導入粒子の力価(通常は1
08粒子/ml以下)や、ウイルスの濃縮・精製のための従来の生化学的及び物理化学
的技術に対する多くのエンベロープを有するウイルスの感受性により、レトロウ
イルスベクターの実用上の使用はかなり限定されたものであった。
おり、遠心分離を用いる方法(Fekete及びCepko 1993 Mol Cell Biol 13: 2604-2
613)、中空糸繊維を用いる濾過(Paulら 1993 Hum Gene Ther 4: 609-615)、及び
接線フロー濾過(Kotaniら 1994 Hum Gene Ther 5: 19-28)等が挙げられる。ウイ
ルスの力価を20倍に高めることは可能であるが、レトロウイルスのEnvタンパク 質が比較的脆弱であるためレトロウイルスベクターを濃縮する能力が限定され、
ウイルスの濃縮では、通常感染性ビリオンを少量しか回収できない。この問題は
、レトロウイルスのEnvタンパク質を、上述のようにより高い収率でより効果的 なベクターの濃縮を可能とする、より安定なVSV-Gタンパク質で置換することに より克服することができるが、VSV-Gタンパク質が細胞に対して極めて有害であ るという欠点がある。
ベクターで得ることができるが、実験は多くの場合これより非常に小さい力価の
ベクターストックで行うことができる。しかし、実用上の理由から、特に多数の
細胞に感染させなければならない場合には高い力価のウイルスが望ましい。さら
に、高い力価は、ある細胞のタイプを大きな割合で形質導入するための必要条件
である。例えば、ヒト造血前駆細胞への感染頻度はベクターの力価によって大き
く左右され、有用な感染頻度は非常に高い力価のストックを用いた場合しか得ら
れない(Hock及びMiller 1986 Nature 320: 275-277; Hogge及びHumphries 1987
Blood 69: 611-617)。このような場合、低いウイルス力価を補償するためには、
単に細胞をより多量のウイルスに露出するだけでは不十分である。逆に、効率的
な形質導入を促進するために、感染性ベクタービリオンの濃度が重要である場合
がある。
も試みられている。例えば、異なるベクターの設計を比較することは、高い力価
のウイルスの生成に必要な必須エレメントを確定するのに有用であることが判明
している。異なるレトロウイルスベクターの設計についての初期の研究から、ML
Vの殆ど全ての内部タンパク質コード領域を、ベクターの感染性を失わせること なく取り除くことが可能であることが示されている(Millerら 1983 Proc Natl A
cad Sci 80: 4709-4713)。これらの初期のベクターは、envコード領域の3'末端 の小部分のみを有していた。その後の研究で、全てのenv遺伝子コード配列を、 ベクターの力価をさらに低下させることなく取り除くことが可能であることがわ
かった(Miller及びRosman 1989 Biotechnique 7: 980-990; Morgenstern及びLan
d 1990 Nucleic Acids Res 18: 3587-3596)。ベクターが透過するために必要な のは、プラス及びマイナス鎖DNAプライミングに必要なセグメント及びウイルスR
NAのビリオンへの選択的パッケージングに必要な領域(psi部位; Mannら1983 Cel
l 33: 153-159)を含む、ウイルスのLTR及びLTRに隣接する短い領域のみであると
考えられた。それにも関わらず、これらの初期のベクターで得られたウイルスの
力価は、親ヘルパーウイルスの力価の約10分の1に過ぎなかった。
J Virol 61: 1647-1650; Benderら1987 J Virol 61: 1639-1646; Adam及びMille
r 1988 J Virol 62: 3802-3806)。この効果は、ベクターのgag領域からのウイル
スタンパク質の合成によるものではない。gagのリーディングフレームの破壊、 あるいはgagコドンの終始コドンへの変異はベクターの力価に影響を与えなかっ たからである(Benderら1987 ibid)。これらの実験により、MLVにおけるゲノムRN
Aの効率的なパッケージングに必要な配列が、遺伝子欠失分析により前に確定さ れたpsiシグナルより大きいことが立証された(Mannら 1983 上出)。高い力価(10 6 から>107)を得るためには、psiプラスと称するこのより大きいシグナルをレト ロウイルスベクターに含めることが重要であることが分かった。現在、このシグ
ナルは、スプライス・ドナー部位の上流からgag開始コドンの下流にわたってい ることが示されている(Benderら 1987 上出)。この位置にあるために、スプライ
シングされたenv発現転写物ではこのシグナルは除去される。これにより、ウイ ルスの生活環のための3つの必須遺伝子を含む完全長転写物のみのパッケージン グが確保される。
ことに加えて、レトロウイルスベクターは、形質導入された細胞において特定の
NOI(通常はマーカータンパク質)の生成を誘導するようにも設計されている。既 に述べたように、最も一般的なレトロウイルスベクターの設計では、レトロウイ
ルスの配列を1または複数のNOIで置換することにより、複製欠陥ベクターを生成
する。最も単純な方法は、レトロウイルス5'LTRにおけるプロモーターを用いてN
OIをコードするcDNAの発現を調節したり、あるいはLTRのエンハンサー/プロモー
ターを改変して組織特異的発現、または誘導能をもたらすものであった。あるい
は、プロモーターの選択においてより高い柔軟性を許容する内部プロモーターを
用いることにより単一のコード領域を発現させるものであった。
択を容易にするヒポキサンチン−グアニンホスホリボシルトランスフェラーゼ(h
prt) (Millerら 1983 Proc Natl Acad Sci 80: 4709-4713)の場合と同様に、NOI
が選択マーカーであるとき最も容易に実現されるものであった。ベクターが選択
マーカーでないNOIを含む場合、別のプラスミド上に存在する選択マーカーを同 時トランスフェクトすることにより、ベクターをパッケージング細胞に導入する
ことができる。この方法は、1種類のタンパク質が最終的な標的細胞で発現され 、選択マーカーが有し得る毒性または抗原性が回避される点で、遺伝子治療にお
いて非常に有益である。しかし、挿入された遺伝子が選択できないとき、この方
法は、高力価ベクターストックを生成する細胞を生成するのが一層困難になると
いう点で不利である。加えて、ベクターの力価を決定するのが通常より困難にな
る。
ロモーターから転写され、選択的にスプライシングされたmRNAからの異なるタン
パク質の発現、(ii) 異なるcDNAの転写を誘導するための5' LTRにおけるプロモ ーター及び内部プロモーターの使用、及び(iii) 単一mRNA、またはオープンリー
ディングフレームからその後発現され得る融合タンパク質のいずれかからの複数
のコード領域の翻訳を可能とするための内部リボソーム侵入部位(IRES)の使用で
ある。
いられてきた。内部プロモーターにより、遺伝子発現を誘導するためのウイルス
LTR以外のプロモーター/エンハンサーの組み合わせを開発することが可能とな る。複数の内部プロモーターをレトロウイルスベクターに含めることができ、そ
れぞれ自身のプロモーターから少なくとも3種の異なるcDNAを発現できることが 判明している(Overellら 1988 Mol Cell Biol 8: 1803-1808)。
レトロウイルスベクターの殆どは、非分裂細胞には形質導入ができないマウスオ
ンコレトロウイルスのような単純型レトロウイルスに由来するものである。
択マーカーとしてネオマイシンホスホトランスフェラーゼ遺伝子を有する。この
タイプのベクターのモデルは親ウイルスのMO-MLVであり、このMO-MLVでは、Gag 及びGag-Polタンパク質が完全長ウイルスmRNAから翻訳され、Envタンパク質はス
プライシングされたmRNAから作られる。このベクターによりコードされるタンパ
ク質の1つは完全長RNAから翻訳され、5'LTR近傍のスプライス・ドナー部位を、 第2の遺伝子の直ぐ上流にあるスプライス・アクセプター部位とを結合するスプ ライシングによって、そこから第2の遺伝子産物が翻訳され得るRNAが生成される
。この方法の1つの欠点は、スプライシングされた遺伝子のイントロンに外来配 列が挿入されることである。これはスプライシングされたRNAとスプライシング されないRNAの比率に影響を及ぼし得、あるいは第2の遺伝子産物をコードするス
プライシングされたRNAの生成を妨げる選択的スプライス・アクセプター部位を 与え得る(Krmanら 1987 Proc Natl Acad Sci 84: 2150-2154)。これらの影響は 予測不可能であることから、コードされた遺伝子の生成に影響を与え得る。
990 Nucleic Acid Research 18: 3587-3596)に代表されるものであり、ウイルス
の転写物のスプライシングを阻害するスプライス・ドナー部位内に(GTからGCへ の)変異を有する。このようなスプライシングの阻害は、2つの理由から有益であ
る。第一に、この阻害により、全てのウイルス転写物がパッケージングシグナル
を有し、従って全てが産生細胞にパッケージングされ得ることが確保される。第
二に、この阻害により、ウイルスのスプライス・ドナー部位と挿入された遺伝子
のクリプティックスプライス・アクセプター部位となり得る部位との間での異常
なスプライシングが起こるのを防ぐことができる。
s 7: 980-990)及びより最近のMFG(Dranoffら1993 Proc Natl Acad Sci 19: 3979
-3986)に代表されるものであり、機能的イントロンを有する。両ベクターは、パ
ッケージングシグナル内に見出される通常のスプライス・ドナー部位を用いてい
る。しかし、両ベクターのそれぞれのスプライス・アクセプター部位(SA)は異な
っている。N2では、SAは「伸長された」パッケージングシグナル内にある(Bende
rら1987 ibid)。MFGでは、天然のSA(pol内に見出される、図1参照)が用いられて
いる。両ベクターについて、スプライシングが形質導入された細胞における遺伝
子の発現を著しく高めることが示されている(Millerら 1989 上出; Krallら1996
Gene Therapy 3: 37-48)。このような観察は、一般にスプライシングがmRNAの 翻訳を促進し得るという従来の知見を支持するものである(Leeら1981 Nature 29
4: 228-232; Lewisら 1986 Mol Cell Biol 6: 1998-2010; Chapmanら1991 Nucle
ic Acids Res 19: 3979-3986)。この理由として有力なものの1つは、転写スプラ
イシングに関与するのと同じ機構が核からの転写物の搬出にも働いている可能性
があるということである。
ロウイルスのレンチウイルス系では、選択的スプライシングについての研究は殆
どない(Naldiniら 1996 Science 272: 263-267)。現在までに文献に記載された レンチウイルスベクターは、HIV-1由来のもの(Kimら1997 J Virol 72: 811-816)
、及びFIVに由来するもの(Poeschlaら 1998 Nat Med 4: 354-357)のみである。 これらのベクターは、やはりウイルス由来のスプライス・ドナー部位及び受容部
位配列を有するものである(Naldiniら 1996 上記)。
法では、(i) アデノウイルス、アデノ関連ウイルス(AAV)、ヘルペスウイルス、 及びポックスウイルスのような欠陥ウイルスベクター、及び(ii) 改変レトロウ イルスベクターの設計を利用する。
。50種以上の異なるヒト血清型のアデノウイルスが存在し、遺伝子配列の相同性
に基づいて6つの亜群に分けられる。アデノウイルスの自然における標的は気道 及び消化管の上皮であり、一般に軽度の症状を呈するのみである。血清型2及び5
(95%の配列同一性を有する)がアデノウイルスベクター系において最も一般的に
用いられ、若齢者の通常上気道への感染を伴う。
アデノウイルスとしては、140 nmのキャプシド形成したDNAウイルスがある。ウ イルスの20面体の対称的な構造は、152個のキャプソメア、240個のヘキソン、及
び12個のペントンからなる。この粒子のコアは、36kbの線状二重鎖DNAを有し、 このDNAは、DNA複製のためのプライマーとして作用する末端タンパク質(TP)と 5
'末端で共有結合している。このDNAは、逆方向末端反復配列(ITR)を有し、その 長さは血清型によって異なる。
繊維(37nm)と細胞上の繊維受容体との間の相互作用を介してウイルスの細胞への
付着が起こる。この受容体は最近、Ad2/5血清型について同定され、CAR(コクサ ッキー及びアデノ受容体、Tomkoら(1997 Proc Natl Acad Sci 94: 3352-2258)と
命名された。細胞のαvβ3及びαvβ5インテグリンを介したウイルスのエンドソ
ームへのインターナリゼーションは、ペントンをベースにしたキャプシドタンパ
ク質におけるウイルスのRGD配列によって媒介される(Wickhamら1993 Cell 73: 3
09-319)。インターナリゼーションの後、エンドソームは、エンドソーム溶解と して知られるプロセスにより破壊される。このエンドソーム溶解は、細胞のαv β5インテグリンによって優先的に促進される事象であると考えられる(Wickham ら1994 J Cell Biol 127: 257-264)。さらに、Ad5繊維ノブ部は、ヒト上皮細胞 及びBリンパ芽球を含む一定の細胞タイプの表面において、高い親和性をもってM
HCクラス1α2ドメインに結合することが最近示された(Hongら 1997 EMBO 16: 22
94-2306)。
後にDNA複製及び後期領域の活性化が起こる。アデノウイルスDNAの転写、複製、
パッケージングには、宿主とウイルス両方の機能的タンパク質機構が必要である
。
。後期段階は、ウイルスDNA複製の開始によって定義される。アデノウイルスの 構造タンパク質は、通常後期段階において合成される。殆どの血清型について、
アデノウイルスの感染後、感染細胞で宿主の細胞のmRNA及びタンパク質の合成が
阻害される。アデノウイルス2及びアデノウイルス5でのアデノウイルス溶解サイ
クルは非常に効率的で、感染した細胞当たり約10,000個のビリオンが生ずるとと
もに、ビリオンに導入されない過剰なウイルスタンパク質及びDNAが合成される 。初期のアデノウイルスの転写は、複雑な相互に関係する生化学的事象の連続で
あるが、DNA複製の開始前にウイルスRNAの合成が行われることが必要不可欠であ
る。
写の相対的方向及び位置を示している。
、研究された各血清型について特定の機能は一般的に同一の位置にある。初期の
細胞質メッセンジャーRNAは、ウイルスDNA上の4つの確定された連続していない 領域に対して相補的である。これらの領域は、E1〜E4と称する。この初期の転写
物は、中間初期(E1a)、後期初期(Elb、E2a、E2b、E3及びE4)、及び中間領域の配
列に分類されている。
、E2a、E2b、E3、またはE4を効率的に転写するために活性E1a産物が必要である 。しかし、E1a機能はバイパスされ得る。細胞は、E1a様の機能を与えるように操
作することが可能であり、あるいはそのような機能を天然に有し得る。このウイ
ルスは、E1a機能をバイパスするように操作することもできる。ウイルスパッケ ージングシグナルはE1aエンハンサー(194-358nt)と重複している。
体は、アデノウイルス感染の後期に通常観察される宿主の細胞輸送の阻害の障害
とともに、後期のウイルスのmRNAの蓄積の低下を示す。E1bは、ウイルスの後期 の遺伝子産物のためにプロセシング及び輸送がシフトするように宿主細胞の機能
を変化させるために必要である。これらの産物によって、ウイルスのパッケージ
ング及びビリオンの放出が生ずる。E1bは、アポトーシスを防ぐ19 kDタンパク質
を生成する。E1bは、p53に結合する55 kDのタンパク質も生成する。アデノウイ ルス及びその複製に関する概説については、WO 96/17053を参照されたい。
80kDaの前駆体をコードしており、必要不可欠な領域である。
クラスI抗原に結合して、その上皮表面への遊走を防止し、これにより細胞障害 性Tリンパ球によるアデノウイルス感染細胞の認識を低下させる。このE3領域はi
n vitroでの実験では不要であり、1.9 kbのXbaI断片を除くことにより除去する ことができる。
されている。アデノウイルスゲノムには、Ad5においては103 bpでDNA複製に必要
な逆方向反復配列が隣接している。感染後30〜40時間で、ウイルスの生成は完了
する。
及びE4プロモーターの誘導のための重要なE1遺伝子を除くことによって変換する
ことができる。E1複製欠陥ウイルスは、ヒト胎児腎細胞系293のようなE1ポリペ プチドをトランスで提供する細胞系において増殖させることができる。治療用遺
伝子または遺伝子群を、E1遺伝子と置き換わるように組換えるによって挿入する
ことができる。この遺伝子の発現は、E1プロモーターあるいは異種プロモーター
のいずれかによって駆動される。
ーム(ORF)の一部または全体を除くことによって開発されている。しかし、第二 世代のベクターのなかには、DNAが維持されているようであるとしても、長期間 の遺伝子発現ができないものがあるようである。従って、1つまたは複数のE4のO
RFの機能は、ウイルスが有する少なくともあるウイルスプロモーターからの遺伝
子発現を高めるものであり得る。
に必要な末端反復配列のみを完全に維持しながらウイルスの「中身(重要部分)
を除去する(gut)」ことである。「中身を除去した」または「中身を除去してい ない」ウイルスは、293細胞系で第一世代のヘルパーウイルスにより高力価で増 殖させることができるが、ヘルパーウイルスから「中身を除去した」ベクターを
分離することが困難であった。
ば、E1A遺伝子を、腫瘍特異的プロモーターの調節下で第一世代のウイルスに挿 入することができる。理論上、このウイルスを腫瘍に注射すると、このウイルス
は腫瘍において特異的に複製し得るが、周囲の正常な組織では複製できない。こ
のタイプのベクターは、腫瘍細胞を溶解により直接殺すための、あるいはガンシ
クロビルで処置した後感染細胞及び傍観細胞を殺すことができる単純ヘルペスウ
イルスチミジンキナーゼ遺伝子(HSV tk)のような「自殺遺伝子」をデリバリーす
るためのいずれかの目的で用いることができる。あるいは、E1bのみが欠損して いるアデノウイルスは、フェーズ1の臨床試験における抗腫瘍的処置のために特 に用いられている。E1bによってコードされるポリペプチドは、p53により媒介さ
れるアポトーシスを遮断し、細胞がウイルスの感染に応答して自死に至るのを防
止することができる。従って、正常な非腫瘍性細胞では、E1bが欠損している場 合、ウイルスはアポトーシスを遮断することができず、感染性ウイルスを作り出
し拡散させることができない。p53を欠損する腫瘍細胞では、E1b欠陥ウイルスが
増殖し、p53を欠く腫瘍細胞の近くまで拡散することができるが、正常な細胞に 達することはできない。同様に、このタイプのベクターも、HSV tkのような治療
用遺伝子のデリバリーのために用いることができる。
伝子治療用ベクター系より優れている。
いてin vino及びin vitroの形質導入が可能な、エンベロープの無い二本鎖DNAウ
イルスである。これらの細胞としては、気道上皮細胞、肝細胞、筋細胞、心筋細
胞、滑膜細胞、一次乳房上皮細胞、及びニューロンのような有糸分裂後終末分化
細胞等が挙げられる(但し、単球等のようないくつかのリンパ球はおそらく重要 な例外である)。
、肺上皮の患部細胞の代謝回転速度が遅くなる嚢胞性線維症のような疾病におい
て非常に重要である。実際に、アデノウイルスを利用して成人の嚢胞性線維症の
成人患者の肺に嚢胞性線維症輸送体(CFTR)を導入する試みがいくつか進行中であ
る。
用いられてきた。この大形(36 kb)のゲノムは、最大8kbの外来インサートDNAを 組み込むことができ、補完的な細胞系において効率的に複製して最大1012の非常
に高い力価を生成することができる。従ってアデノウイルスは一次非複製可能細
胞における遺伝子の発現の研究に最適な系の一つである。
製細胞は不要である。アデノウイルスベクターは、受容体媒介エンドサイトーシ
スにより細胞内に入る。一旦細胞の内部に入ると、アデノウイルスベクターが宿
主染色体に組み込まれることは殆ど無い。そのかわり、アデノウイルスベクター
は、宿主の核で線状ゲノムとして(宿主のゲノムからは独立して)エピソームとし
て機能する。従って、組換えアデノウイルスを用いることにより宿主ゲノムへの
ランダムな組み込みに関連する問題が軽減される。
株が開発され、生ワクチンとしてヒトにおいて用いられてきた。
、即ちアデノウイルスベクターは一般にエピソームの状態にとどまり、複製しな
いため子孫に継代されないこと、(ii) 複製ができないため、標的細胞の増殖に よってベクターが希釈されること、(iii) アデノウイルスタンパク質に対して免
疫応答が誘発されるので、低いレベルであってもアデノウイルスのタンパク質を
発現する細胞は破壊されること、及び(iv) in vivoデリバリーによってベクター
が取り込まれたり、デリバリーされた遺伝子が標的細胞の一部でしか発現されな
いため、有効な治療係数を達成できないこと等が挙げられる。
組み合わせることができるならば、実質的に、アデノウイルスを標的細胞への形
質導入を行うために用いて、安定に近傍の細胞に感染し得る一過性のレトロウイ
ルスを産生する細胞となるようにすることができる。
とを目的とする。
数の所望の標的部位においてNOIまたは複数のNOIを効率的に発現させることがで
きるベクタービリオンを高い力価で調製するための新規な系を提供することを目
的とする。
ice donor site)及び機能的スプライス・アクセプター部位(functional splice
acceptor site)を含むレトロウイルスベクターであって、機能的スプライス・ド
ナー部位及び機能的スプライス・アクセプター部位が、目的の第1のヌクレオチ ド配列(NOI)に隣接しており、機能的スプライス・ドナー部位が、機能的スプラ イス・アクセプター部位の上流にあり、該レトロウイルスベクターがレトロウイ
ルスプロベクターに由来するものであり、レトロウイルスプロベクターが機能的
スプライス・ドナー部位を生成することができる第1のヌクレオチド配列(NS)と 、機能的スプライス・アクセプター部位を生成することができる第2のNSとを含 み、第1のNSが第2のNSの下流にあって、前記レトロウイルスベクターが前記レト
ロウイルスプロベクターの逆転写の結果として形成されるレトロウイルスベクタ
ーが提供される。
トロウイルスベクターが提供される。
第1のNOIが一次標的部位で発現され得るレトロウイルスベクターが提供される。
し、それにより1または複数の追加のNOIが挿入され得るレトロウイルスベクター
が提供される。
するヌクレオチド配列であるレトロウイルスベクターが提供される。
ードするヌクレオチド配列であるレトロウイルスベクターが提供される。
ベクターが提供される。
ターが提供される。
コレトロウイルスまたはレンチウイルスから誘導され得るものであるレトロウイ
ルスベクターが提供される。
EIAVから誘導され得るものであるレトロウイルスベクターが提供される。
イルスであるレトロウイルスベクターが提供される。
レトロウイルス粒子が提供される。
たは形質導入された細胞が提供される。
またはウイルス粒子または細胞が提供される。
にデリバリーするための医薬組成物を製造するためのレトロウイルスベクターま
たはウイルス粒子または細胞が提供される。
により、または細胞の使用により細胞をトランスフェクトまたは形質導入するこ
とを含む方法が提供される。
たは細胞のためのデリバリー系であって、NOIまたは複数のNOIを第1の標的細胞 にデリバリーするための1または複数の非レトロウイルス発現ベクター、アデノ ウイルスもしくはプラスミドまたはそれらの組み合わせと、NOIまたは複数のNOI
を第2の標的細胞にデリバリーするためのレトロウイルスベクターとを含むデリ バリー系が提供される。
抑制するための機能的イントロンの使用が提供される。
用が提供される。
クターが二次標的細胞の形質導入を行うことができる前記ハイブリッドウイルス
ベクター系が提供される。
次ベクターがアデノウイルスベクターから得ることができるもの、あるいはそれ
をベースにしたものであり、及び/または二次ベクターがレトロウイルスベクタ
ー、好ましくはレンチウイルスベクターから得ることができるもの、あるいはそ
れをベースにしたものである前記ハイブリッドウイルスベクター系が提供される
。
イントロン(split-intron)構造を有するか、またはそれをデリバリーすることが
できるハイブリッドウイルスベクター系が提供される。
イルスベクターが、スプリット‐イントロン構造を有するか、またはそれをデリ
バリーすることができる前記レンチウイルスベクター系が提供される。
イルスベクターが、スプリット‐イントロン構造を有するか、またはそれをデリ
バリーすることができる前記アデノウイルスベクター系が提供される。
1PEGASUS4、pCI-Rab、pE1Rabとして提示されるもののなかの1つまたは複数をベ ースとするか、またはそれから得られるベクターまたはプラスミドが提供される
。
一次ウイルスベクターを含み、一次ベクターは第1の標的細胞に感染し、そのな かで二次ウイルスベクターを発現することができ、二次ベクターは二次標的細胞
の形質導入を行うことができ、一次ベクターはアデノウイルスベクターから得る
ことができるもの、あるいはそれをベースにしたものであり、二次ウイルスベク
ターはレトロウイルスベクター、好ましくはレンチウイルスベクターから得るこ
とができるもの、あるいはそれをベースにしたものである。
る一次ウイルスベクターを含み、一次ベクターは第1の標的細胞に感染し、その なかで二次ウイルスベクターを発現することができ、二次ベクターは二次標的細
胞の形質導入を行うことができ、一次ベクターはアデノウイルスベクターから得
ることができるもの、あるいはそれをベースにしたものであり、二次ウイルスベ
クターはレトロウイルスベクター、好ましくはレンチウイルスベクターから得る
ことができるもの、あるいはそれをベースにしたものであり、前記ベクター系は
機能的スプライス・ドナー部位及び機能的スプライス・アクセプター部位を含み
、機能的スプライス・ドナー部位及び機能的スプライス・アクセプター部位は目
的の第1のヌクレオチド配列(NOI)に隣接しており、機能的スプライス・ドナー部
位は機能的スプライス・アクセプター部位の上流にあり、レトロウイルスベクタ
ーはレトロウイルスプロベクターに由来するものであり、レトロウイルスプロベ
クターは機能的スプライス・ドナー部位を生成することができる第1のヌクレオ チド配列(NS)と、機能的スプライス・アクセプター部位を生成することができる
第2のNSとを含み、第1のNSは第2のNSの下流にあって、前記レトロウイルスベク ターは前記レトロウイルスプロベクターの逆転写の結果として形成されるもので
ある。
ことができるものである。
が機能的スプライス・アクセプター部位の下流にあるものである。
第2のヌクレオチド配列の下流にあるものである。
またはそれらを含むものである。
部、またはそれらの組み合わせを含むものである。
ド配列またはその一部であるものである。
態においては、ベクターの構成要素は低酸素状態(hypoxia)により調節されてい る。
イクリン・オン/オフ系により調節される。
する。
的スプライス・ドナー部位(FSDS)及び機能的スプライス・アクセプター部位(FSA
S)を含む。このレトロウイルスベクターは、複数のNOIを含み得るレトロウイル スプロベクターの逆転写の結果、形成される。
ある。一般に、スプライシングにより、介在、即ち「イントロン」RNA配列が除 かれ、残りの「エキソンの」配列が連結して翻訳のための連続した配列が得られ
る。
い。
ない。
、各配列は独立したDNAまたはRNAであり得、合成により作製されたもの、組換え
DNA技術を用いて作製されたもの、天然の起源から単離されたもの、あるいはこ れらを組み合わせたものであり得る。この配列はセンス配列またはアンチセンス
配列であり得る。また、互いに直接または間接的に連結され得る複数の配列、あ
るいはそれらを組み合わせた複数の配列が存在し得る。
DNA技術を用いて作製されたもの、天然の起源から単離されたもの、あるいはこ れらを組み合わせたものであり得る。この配列はセンス配列またはアンチセンス
配列であり得る。また、互いに直接または間接的に連結され得る複数の配列、あ
るいはそれらを組み合わせた複数の配列が存在し得る。
の選択マーカー、即ちそれぞれG418及びハイグロマイシンに対する耐性を与える
細菌性ネオマイシン及びハイグロマイシンホスホトランスフェラーゼ遺伝子(Pal
merら 1987 Proc Natl Acad Sci 84: 1055-1059; Yangら 1987 Mol Cell Biol 7
: 3923-3928)、メトトレキセートに対する耐性を与える変異体マウスジヒドロ葉
酸レダクターゼ遺伝子(dhfr)(Millerら 1985 Mol Cell Biol 5: 431-437)、マイ
コフェノール酸、キサンチン及びアミノプテリンを含む培地での細胞の増殖を可
能とする細菌性gpt遺伝子(Mannら 1983 Cell 33: 153-159)、ヒスチジンを含ま ないがヒスチジノールを含む培地での細胞の増殖を可能とする細菌性hisD遺伝子
(Danos及びMulligan 1988 Proc Natl Acad Sci 85: 6460-6464)、様々な薬剤に 対する耐性を与える多剤耐性遺伝子(mdr)(Guildら 1988 Proc Natl Acad Sci 85
: 1595-1599; Pastanら1988 Proc Natl Acad Sci 85: 4486-4490)、及びピュー ロマイシンまたはフレオマイシンに対する耐性を与える細菌性遺伝子(Morgenste
rn及びLand 1990 Nucleic Acid Res 18: 3587-3596)のなかの1つまたは複数を含
み得る。
る殆どの細胞の化学的選択を可能とする。βガラクトシダーゼもまた強力なマー
カーとみなしうる。βガラクトシダーゼを発現する細胞は、蛍光活性化セルソー
ターを用いて選択することができる。実際、どの細胞表面タンパク質も、そのタ
ンパク質を作っていない細胞に対する選択マーカーとなりうる。該タンパク質を
発現する細胞は、該タンパク質に対する蛍光抗体および細胞選別器を用いて選択
することができる。ベクターに使用されてきた他の選択マーカーにはhprtおよび
HSV チミジンキナーゼが含まれる。これらは、ヒポキサンチン、アメトプテリン
およびチミジンを含む培地における細胞の増殖を可能とするものである。
えば、アデノウイルスベクターにおいては、これはレトロウイルスベクターゲノ
ムおよびエンベロープが同一プロモーターの制御下にある1つのアデノウイルス
ベクター内に配置されることを可能とし、その結果より単純な系を提供し、かつ
アデノウイルスベクター内に付加的配列を入れるためのより大きいキャパシティ
(capacity)を残す。1つの態様においては、これらの付加的配列はgag-pol カセ
ット自体でありうる。このように、1個のアデノウイルスベクター内にレトロウ
イルスベクター粒子を作製することができるのである。以前の研究(Fengら, 199
7, Nature Biotechnology 15: 866)では、複数のアデノウイルスベクターを使用
しなければならなかった。
質、またはインフルエンザ赤血球凝集素(HA)、または水疱性口内炎ウイルスG (V
SV-G) タンパク質等の他のenv核酸配列の全部または一部と置換することができ る。env遺伝子の異種env遺伝子との置換は、擬似タイピング(pseudotyping)と呼
ばれる技法または戦略の1例である。擬似タイピングは新しい現象ではなく、こ
の例はWO-A-98/05759, WO-A-98/05754, WO-A-97/17457, WO-A-96/09400, WO-A-9
1/00047およびMebatsionら, 1997 Cell 90, 841-847に見いだすことができる。
ピング(pseudotyped)されている。このことについて、擬似タイピングは1つ以 上の利点を付与することができる。例えば、これらのベクターを用いた場合、HI
Vに基づくベクターのenv遺伝子産物は、レンチウイルスベクターがCD4と呼ばれ るタンパク質を発現する細胞にのみ感染するように感染を制限するであろう。し
かし、これらのベクター内のenv遺伝子が他のRNAウイルス由来のenv配列に置換 されていたならば、これらのベクターはより広い感染スペクトルを持つことがで
きる(VermaおよびSomia, 1997, Nature 389:239-242)。例えば、研究者はVSV由 来の糖タンパク質を用いてHIVに基づくベクターを擬似タイピングした(Vermaお よびSomia, 1997, 同じ箇所)。
ッティング能力を導入するように、または毒性を減少させるように、または他の
目的のために実施または選択することができる(Valsesia-Wittmanら,1996, J.
Virol 70: 2056-64; Nilsonら,1996, Gene Therapy 3: 280-6; Fieldingら,19
98, Blood 9: 1802およびそこに引用されている文献)。
に作製された免疫グロブリン様分子、1本鎖抗体、融合タンパク質、酵素、免疫
共刺激(co-stimulatory)分子、免疫調節分子、アンチセンスRNA、標的タンパク 質のトランスドミナント(transdominant)陰性突然変異体、毒素、条件付き毒素 、抗原、腫瘍抑制タンパク質および増殖因子、膜タンパク質、血管作用性タンパ
ク質およびペプチド、抗ウイルスタンパク質およびリボザイム、およびそれらの
誘導体(例えば、関連するリポーターグループを伴うもの)をコードする配列が
含まれるが、それらだけに限定されない。第2のNOIに含まれる場合、このよう なコード配列は典型的には適切なプロモーターに機能しうる形で連結されること
ができる。このプロモーターは、リボザイムの発現を駆動するプロモーター、ま
たは異なる1もしくは複数のプロモーターであってよい。
素等の第2のNOIを腫瘍部位に送達するために用いることができる。各症例にお いて、個体(患者など)の治療に適切なプロドラッグが適切なプロドラッグ活性
化酵素と組み合わせて用いられる。適切なプロドラッグがベクターと共に投与さ
れる。プロドラッグの例は、リン酸エトポシド(アルカリ性フォスファターゼと
共に、Senterら,1988, Proc. Natl. Acad. Sci. 85: 4842-4846); 5-フルオロ シトシン(シトシンデアミナーゼと共に、Mullenら,1994, Cancer Res 54: 150
3-1506); ドキソルビシン-N-p-ヒドロキシフェノキシアセトアミド(ペニシリン
-V-アミダーゼと共に、Kerrら,1990, Cancer Immunol. Immunother. 31: 202-2
06); パラ-N-ビス(2-クロロエチル)アミノベンゾイルグルタメート(カルボキ シペプチダーゼG2と共に);セファロスポリンナイトロジェンマスタードカルバ
メート(βラクタマーゼと共に);SR4233 (P450レダクターゼと共に);ガンシ
クロビル(HSV チミジンキナーゼと共に、Borrelliら,1988, Proc. Natl. Acad
. Sci. 85: 7572-7576); マスタードプロドラッグ(ニトロレダクターゼと共に
、Friedlosら,1997, J. Med. Chem. 40: 1270-1275)およびシクロホスファミド
(P450 と共に、Chenら,1996, Cancer Res. 56:1331-1340)を含む。
位に送達することができる。 当技術分野で周知のように、ベクターとはある実在物を1つの環境から他の環
境へ運ぶことを可能とする、または容易にする道具である。例えば、遺伝子組換
え技法に用いられているいくつかのベクターは、DNAの1セグメント(異種DNAセ
グメント、異種cDNAセグメント、等)が標的細胞中に導入されることを可能とす
る。場合により、いったん標的細胞に入った後、ベクターは該細胞内で異種DNA を維持するのに役立ちうる。またはDNA複製の単位として作用しうる。遺伝子組 換え技法に用いられているベクターの例は、プラスミド、染色体、人工染色体ま
たはウイルスを含む。
細胞に送達するために非ウイルス性ベクターを用いる方法を含む。
pacted) DNA媒介トランスフェクション、リポソーム、イムノリポソーム、リポ フェクチン、カチオン性作用物質媒介トランスフェクション、カチオン性表面両
親媒性物質(CFA)(Nature Biotechnology, 1996, 14:556) およびこれらの組合せ
を含む。
ベクター、バキュロウイルスベクターを含むが、これらだけに限定されない。ベ
クターの他の例は、ex vivo 送達系を含む。これらの系はエレクトロポレーショ
ン、DNAバイオリスティクス法(biolistics)、脂質媒介トランスフェクション 、コンパクト化DNA媒介トランスフェクション等のDNAトランスフェクション法を
含むが、これらだけに限定されない。
スまたはポックスウイルスベクター等の種々の異なるウイルスベクターであって
よい。または、一次ウイルスベクターが複数である場合は、起源を異にするウイ
ルスベクターの混合物であってよい。いずれの場合にも、好ましくは、一次ウイ
ルスベクターは独立複製が不可能であるという点で欠陥性である。したがって、
それらは標的細胞に入ってそこに二次ベクター配列を送達することはできるが、
複製してさらなる標的細胞に感染を続行することはできない。
ベクターを含む場合は、一次標的細胞集団をトランスフェクションまたは形質導
入するのに一次ベクターの両方または3個全部が、通常は同時に用いられる。
ウイルスベクターが存在する。
る。 本発明に用いるアデノウイルスベクターは、ヒトアデノウイルス由来であって
も、または通常ヒトに感染しないアデノウイルスに由来するものであってもよい
。好ましくは、上記ベクターはアデノウイルス2型もしくは5型(Ad2またはAd5
)、またはマウスアデノウイルス、またはCELOウイルス(Cottonら,1993, J. Vir
ol 67: 3777-3785) 等のトリアデノウイルスに由来するものである。上記ベクタ
ーは複製能のあるアデノウイルスベクターであってよいが、より好ましくは欠陥
アデノウイルスベクターである。アデノウイルスベクターは該ウイルスの複製に
必要な1以上の構成要素を欠失させることによって欠陥ウイルスとすることがで
きる。典型的には、各アデノウイルスベクターはE1領域に少なくとも1つの欠失
を含む。感染性アデノウイルスベクター粒子を作製するためには、E1遺伝子を含
むAd5 左部分のコピーが組み込まれたヒト胚繊維芽細胞系(ヒト293細胞系など )中でウイルスを継代(passage)させることによって上記欠失を補完することが できる。異種DNAをこのようなベクターに挿入するためのキャパシティは、約7 k
bまである。したがって、このようなベクターは、それぞれがレトロウイルス二 次ベクターの構築に必須な転写ユニットの1つを含む3個の個々の組換えベクタ
ーからなる本発明の系を構築するのに有用である。
ーが当技術分野で公知であり、これらのベクターもまた本発明に用いるのに適切
である。これらの第二世代アデノウイルスベクターのいくつかは、免疫原性の低
下を示す(例えば、E1 + E2 欠失、Gorzigliaら,1996, J. Virol. 70: 4173-41
78; E1 + E4欠失、Yehら,1996, J. Virol. 70: 559-565)。欠失の拡大は、ベク
ターに複数の遺伝子を導入するための付加的なクローニングキャパシティを提供
するのに役立つ。例えば、25 kbの欠失が記述されており(Lieberら,1996, J. V
irol. 70: 8944-8960)、また35 kbを超える異種DNAの導入を可能とする、全ウイ
ルス遺伝子を欠失させたクローニングベクターが報告されている(Fisher ら,19
96, Virology 217: 11-22)。このようなベクターを用いて、レトロウイルス二次
ベクターを構築するための2または3個の転写ユニットをコードする本発明のア
デノウイルス一次ベクターを作製することができる。
ターは、欠陥ウイルスベクター粒子の一次標的細胞内におけるアセンブリーおよ
びパッケージングに必須の遺伝子の発現によって生成される。それは独立複製が
不可能であるという点で欠陥性である。したがって、二次レトロウイルスベクタ
ーはいったん二次標的細胞を形質導入したのち、複製によってさらなる標的細胞
に広がっていくことはできない。
れ自身では複製できないレトロウイルス核酸を含む。したがってレトロウイルス
ベクターは複製に欠陥がある。典型的には、レトロウイルスベクターは標的細胞
に送達すべき、好ましくは非レトロウイルス起源の1つ以上のNOIを含む。レト ロウイルスベクターはまた、機能性スプライス・ドナー部位(FSDS)が機能性スプ
ライス・アクセプター部位(FSAS)の上流にある場合、任意の介在配列がスプライ
シングされうるように、FSDSおよびFSASを含むことができる。レトロウイルスベ
クターはさらに、非レトロウイルス性配列を含むことができる。例えば、レトロ
ウイルスベクターがプロウイルスとして標的細胞中にいったん組み込まれたなら
ば、NOIの発現に影響を及ぼすことができるU3領域内の非レトロウイルス性制御 配列などである。レトロウイルスベクターはただ1つのレトロウイルスに由来す
る要素を含む必要はない。したがって、本発明によれば、レトロウイルスベクタ
ーは2つ以上の異なるレトロウイルスまたは他の供給源から誘導しうる要素をも
つことが可能である。
トロウイルスベクターゲノムであるが、機能性スプライス・ドナー部位(FSDS)を
もたらすことができる第1の核酸配列(NS)および機能性スプライス・アクセプタ
ー部位(FSAS)をもたらすことができる第2のNSを含む該ゲノムを含む。ここで、
第1のNSおよび第2のNSに関連するスプライシングが起こり得ないように、第1
のNSは第2のNSの下流にある。レトロウイルスプロベクターが逆転写されると、
レトロウイルスベクターが形成される。
ルスベクターを意味し、これは好ましくは標的細胞に結合し、そこに入ることが
可能である。ベクターの所ですでに論じたように、この粒子の構成要素は、野生
型レトロウイルスに関しては改変してもよい。例えば、該粒子のタンパク質性外
被中のEnvタンパク質を、それらタンパク質のターゲッティング特性を変更する ため、または他の所望の機能を達成するため、遺伝子的に改変することができる
。
誘導することができる。
イス・ドナー部位を非機能性にすることができる。 「改変」という用語は、天然のスプライス・ドナー部位をサイレント化させる
、つまり除去することを含む。スプライス・ドナー部位を除去したベクター、例
えばMLVに基づくベクター等が当技術分野で公知である。そのようなベクターの 1例はpBABE (Morgensternら, 1990, 同じ箇所)である。
遺伝子は、レトロウイルス由来のgag-pol 遺伝子、エンベロープを有するウイル
ス(enveloped virus)由来のenv遺伝子、および1つ以上の治療用または診断用NO
Iを含む欠陥性レトロウイルスベクターを含むことができる。この欠陥性レトロ ウイルスベクターは一般に、逆転写を可能とする配列、5'長末端反復(LTR)の少 なくとも一部、3'LTR の少なくとも一部、およびパッケージングシグナルを含む
。
写ユニットによってコードすることができる。そしてこれらのユニットは1個ま
たは2個以上のアデノウイルス一次ベクターまたは他の一次ベクター中に配置す
ることができる。したがって、二次ベクターゲノムをコードする転写ユニット、
gag-pol遺伝子をコードする転写ユニットおよびenv遺伝子をコードする転写ユニ
ットが存在する。または、これらのうち2個以上を組み合わせることができる。
例えば、gag-pol遺伝子およびenv遺伝子、またはenv遺伝子および上記ゲノムを コードする核酸配列を1個の転写ユニット中に組み合わせることができる。これ
を達成する方法は当技術分野で公知である。
コード配列とは独立した発現を達成するためのシグナルを含む核酸の領域である
。したがって、各転写ユニットは一般に少なくとも、プロモーター、エンハンサ
ーおよびポリアデニル化シグナルを含む。
nodの遺伝子発現理論におけるRNAポリメラーゼ結合部位)において用いられる。 「エンハンサー」という用語は、転写開始複合体の他のタンパク質構成要素に
結合し、その結果、関連するプロモーターによって指令される転写の開始を容易
にするDNA配列を含む。
、二次ウイルスベクター作製条件下の一次標的細胞中で、好ましくは強力に活性
であるか、または強く誘導されることが可能である。プロモーターおよび/また
はエンハンサーは構成的に効果的なものであるか、またはその活性が組織によっ
て、もしくは時間的に制限されているものであってよい。組織によって制限され
る適切なプロモーター/エンハンサーの例は、MUC1遺伝子、CEA遺伝子または5T4
抗原遺伝子由来のプロモーター/エンハンサー等、腫瘍細胞中で高度に活性なプ
ロモーター/エンハンサーである。時間的に制限されているプロモーター/エン
ハンサーの例は、低酸素応答エレメントまたはgrp78もしくはgrp94遺伝子のプロ
モーター/エンハンサー等、虚血および/または低酸素に応答するプロモーター
/エンハンサーである。好ましいプロモーター-エンハンサーの組合せの1例は 、ヒトサイトメガロウイルス(hCMV)主要前初期(MIE)プロモーター/エンハンサ ーの組合せである。
素または虚血によって調節される。これに関連して、低酸素は広い範囲の異なる
細胞型において遺伝子発現の強力なレギュレーターであり、そして例えば低酸素
誘導性因子1(HIF-1; WangおよびSemenza, 1993, Proc. Natl. Acad. Sci. 90:4
30)等の低酸素が誘導する転写因子の活性の誘導によって作用する。該転写因子 は種々の遺伝子プロモーター上の対応するDNA認識部位、すなわち低酸素応答エ レメント(HRE) に結合する。Dachsら(1997, Nature Med. 5:515)は、マウスのホ
スホグリセレートキナーゼ1(PGK-1)遺伝子(Firthら,1994 Proc. Natl. Acad
. Sci. 91:6496-6500)由来のHREの多量体形態を用いて、ヒト繊維肉腫細胞によ る低酸素に応答したマーカーおよび治療遺伝子の両方のin vitro発現および該腫
瘍内におけるin vivo発現を調節した(Dachsら、同書)。または、腫瘍の虚血性
領域には顕著なグルコース剥奪も存在するという事実を利用して、異種遺伝子発
現を腫瘍中で特異的に活性化することができる。grp78 遺伝子プロモーターの末
端切断型632塩基対配列(これはグルコース剥奪によって特異的に活性化される ことが公知である)もまた、マウス腫瘍においてin vivoでリポーター遺伝子の 高レベル発現を駆動し得ることが示された(Gazitら,1995, Cancer Res. 55:16
60)。
, Proc. Natl. Acad. Sci. 89:5547) が記述するテトラサイクリンオン/オフ系
を、Yoshidaら(1997, Biochem. Biophys. Res. Comm. 230: 426)がレトロウイル
スgal、polおよびVSV-G タンパク質の作製について記述しているように用いるこ
とである。通常、この調節系は本発明においてもプロベクターゲノムの作製を制
御するために使用されている。この系は、テトラサイクリンの不在下ではアデノ
ウイルスベクターからベクター構成要素が全く発現されないことを保証する。
記述する。1以上のそのような特徴が存在しうる。
能性を排除する1以上の特徴がそこに組み込まれているという点で、in vivoに おける使用についても有利である。そのような特徴は以前に刊行された研究には
含まれていなかった(Fengら, 1997, 同書)。特に、以下に記述する3つの構成
要素からなるレトロウイルスベクターの構築は、Fengら(同書)には記載されて
いない。
ドする配列間の配列相同性を回避することができる。相同領域は遺伝子の組換え
を引き起こす。特定の実施形態においては、二次レトロウイルスベクターを構築
するのに3個の転写ユニットが用いられる。第1の転写ユニットは、非レトロウ
イルス性プロモーターおよびエンハンサーの制御下にあるレトロウイルスgag-po
l遺伝子を含む。第2の転写ユニットは、非レトロウイルス性プロモーターおよ びエンハンサーの制御下にあるレトロウイルスenv遺伝子を含む。第3の転写ユ ニットは、非レトロウイルス性プロモーターおよびエンハンサーの制御下にある
欠陥性レトロウイルスゲノムを含む。天然のレトロウイルスゲノムにおいては、
パッケージングシグナルは、適切に機能するためにはgag配列の一部を必要とす るように配置されている。レトロウイルスベクター系を天然のレトロウイルスか
ら構築する場合、通常、パッケージングシグナル(gag遺伝子の一部を含む)は ベクターゲノム中に残る。しかし、本発明においては上記欠陥性レトロウイルス
ゲノムは、第1の転写ユニット中のgag配列と相同な配列を含まない、最小限の パッケージングシグナルを含む。また、例えばモロニーマウス白血病ウイルス(M
MLV)などのレトロウイルスにおいては、polコード配列の3'末端とenvコード配列
の5'末端の間にはオーバーラップする小さい領域がある。第1および第2転写ユ
ニットの間のこれに対応する相同領域は、polコード配列の3'末端またはenvコー
ド配列の5'末端を、コドン使用法を変えるがコードされたタンパク質のアミノ酸
配列を変えないように変更することによって除去することができる。
ロウイルスゲノムを別のレトロウイルスまたはエンベロープを有する別のウイル
スのEnvタンパク質を用いて擬似タイピングすることによって、複製可能な二次 ウイルスベクターの可能性を回避することができる。
から構築される。すなわち、第1の転写ユニットは非レトロウイルス性プロモー
ターおよびエンハンサーの制御下にあるレトロウイルスgag-pol遺伝子を含む。 第2の転写ユニットは、非レトロウイルス性プロモーターおよびエンハンサーの
制御下にある、エンベロープを有する別のウイルス由来のenv遺伝子を含む。第 3の転写ユニットは、非レトロウイルス性プロモーターおよびエンハンサーの制
御下にある欠陥性レトロウイルスゲノムを含む。上記欠陥性レトロウイルスゲノ
ムは、第1の転写ユニット中のgag配列と相同な配列を含まない、最小限のパッ ケージングシグナルを含む。
製可能なレトロウイルスの可能性を排除することができる。第1の転写ユニット
は、一次標的細胞中で活性なプロモーター-エンハンサー(例えば、hCMVプロモ ーター-エンハンサーまたは組織に限定されるプロモーター-エンハンサー)の制
御下にあるgag-polコード領域を含む。第2の転写ユニットは、レトロウイルス 粒子中にパッケージングされうるレトロウイルスゲノムRNAをコードする。第2 の転写ユニットはパッケージング、組み込みおよび逆転写に必要なレトロウイル
ス配列を含み、かつまたエンベロープを有するウイルスのEnvタンパク質をコー ドする配列および1以上の治療遺伝子をコードする配列を含む。
cに示す。本発明においては、一次ベクターによって一次標的細胞に送達される レトロウイルスゲノム配列中で、スプライス・ドナー部位はスプライス・アクセ
プター部位の下流に位置する。したがって、一次標的細胞においてはスプライシ
ングは起こらないか、または低頻度でしか起こらず、そしてEnvタンパク質が優 先的に発現される。しかし、いったんベクターゲノムが逆転写および二次標的細
胞への組み込みというプロセスを経たならば、機能性スプライス供与配列が5'LT
Rに、すなわち、機能性スプライス受容配列の上流に位置する。スプライシング が起こってenv配列が切除され、NOIの転写産物が産生される。
に後述し、また図18に示す。ここでは、プロモーター-エンハンサー、コード配 列の5'末端を含むNOIの第1断片、および天然の、または人工的に誘導した、も しくは誘導可能なスプライス供与配列が、レトロウイルスゲノム構築物の3'末端
に、R領域の上流に挿入されている。コード領域を完成させるのに必要な全ての
配列を含むNOIの第2断片は、上記レトロウイルスゲノム構築物中でパッケージ ングシグナルの下流に位置する天然の、または人工的に誘導した、もしくは誘導
可能なスプライス受容配列の下流に配置されている。逆転写およびレトロウイル
スゲノムの二次標的細胞への組み込みの結果、プロモーター、NOIの5'断片およ び機能性スプライス供与配列は、機能性スプライス受容配列およびNOIの3'末端 の上流に位置する。次に、プロモーターからの転写およびスプライシングが二次
標的細胞中でNOIの翻訳を可能とする。
トロウイルス二次ベクターをコードする1または複数のアデノウイルス一次ベク
ターから成る。
付随する主要な問題の1つ、すなわち、そのようなベクターからの遺伝子発現は
一過性であるという問題と取り組んでいる。一次標的細胞から生成されるレトロ
ウイルス粒子は二次標的細胞の形質導入を達成することができ、そしてレトロウ
イルスベクターゲノムの宿主細胞ゲノムへの組み込みにより、二次標的細胞にお
ける遺伝子発現は安定に維持される。二次標的細胞は重大な量のウイルスタンパ
ク質抗原を発現することはなく、したがってアデノウイルスベクターによって形
質導入された細胞よりも免疫原性が低い。
ぜなら、それは例えば急速に分裂する細胞を標的にすることを可能とすることに
よって、ある程度細胞の区別を可能とするからである。さらに、レトロウイルス
の組み込みは、増殖する標的細胞における安定な発現を含めて、標的組織中にお
ける治療遺伝子の安定な発現を可能とする。
一次または二次標的部位に限定できるという点でも有利である。この方法におい
ては、1または複数のNOIを二次標的部位で優先的に発現させることができ、ま た一次標的部位では少ししか発現させないか、あるいは生物学的に有意なレベル
で発現させないことができる。その結果、NOIの考えうる毒性または抗原性を回 避することができる。
を優先的に行う。 より好ましくは、一次ベクターは特定の細胞を標的とするように、天然のウイ
ルスと較べて変更された組織親和性をもつ標的設定されたベクターである。
的細胞」という用語と結びついているわけではない。
ランスフェクションまたは形質導入できる部位をいう。 「一次標的部位」とは、天然のものであれ標的設定されたものであれベクター
がトランスフェクションまたは形質導入できる第1の部位をいう。 「二次標的部位」とは、天然のものであれ標的設定されたものであれベクター
がトランスフェクションまたは形質導入できる第2の部位をいう。
ーがトランスフェクションまたは形質導入できる細胞をいう。 「一次標的細胞」とは、天然のものであれ標的設定されたものであれベクター
がトランスフェクションまたは形質導入できる第1の細胞をいう。 「二次標的細胞」とは、天然のものであれ標的設定されたものであれベクター
がトランスフェクションまたは形質導入できる第2の細胞をいう。
親和性が野生型アデノウイルスの組織親和性から変更されている標的設定された
ベクターである。アデノウイルスベクターを改変して、例えば以下の文献に記載
されているような標的設定されたアデノウイルスベクターを作製することができ
る。すなわち、Krasnykhら,1996, J. Virol. 70: 6839-6846; Wickhamら,1996
, J. Virol. 70: 6831-6838; Stevensonら,1997, J. Virol. 71: 4782-4790; W
ickhamら,1995, Gene Therapy 2: 750-756; Douglasら,1997, Neuromuscul. D
isord. 7:284-298; Wickhamら,1996, Nature Biotechnology 14: 1570-1573で ある。
ンパ球、顆粒球、またはこれらの前駆細胞を含む);内皮細胞;腫瘍細胞;間質
細胞;星状細胞または神経膠細胞;筋肉細胞;および上皮細胞を含む。 したがって、二次ウイルスベクターを生成することができる本発明の一次標的
細胞は、上記の細胞型のうち任意のものであってよい。
gag-pol遺伝子のための第1の転写ユニットおよびパッケージング可能な欠陥性 レトロウイルスゲノムを生成することができる第2の転写ユニットを含む欠陥性
アデノウイルスベクターによって形質導入された単球またはマクロファージであ
る。この場合、少なくとも第2の転写ユニットは好ましくは、身体内の病態部位
、例えば虚血性部位または固形腫瘍の微小環境、等において優先的に活性なプロ
モーター-エンハンサーの制御下にある。
細胞に挿入されると、ウイルスの必須エレメント(ウイルスenv遺伝子など)の 発現を減少させ、かつ治療用および/または診断用NOIの効率的発現を可能とす るのに役立つイントロンが生成されるように構築される。
あってよい。適切な細胞系はマウス繊維芽細胞由来細胞系またはヒト細胞系、等
の哺乳動物細胞を含む。好ましくは、パッケージング細胞系は、例えばHEK293、
293-T、TE671、HT1080等のヒト細胞系である。
マクロファージ、血液細胞または繊維芽細胞、等であってもよい。細胞を個体か
ら単離し、パッケージングおよびベクター構成要素をex vivoで投与し、次にこ の自己由来のパッケージング細胞を再投与することができる。または、上記パッ
ケージングおよびベクター構成要素をパッケージング細胞にin vivoで投与する ことができる。レトロウイルスパッケージングおよびベクター構成要素を個体の
細胞に導入する方法は、当技術分野で公知である。例えば、1つの方法は、レト
ロウイルスベクター粒子を作製するのに必要な異なるDNA配列、例えばenvコード
配列、gag-polコード配列および欠陥性レトロウイルスゲノムを一過性三重トラ ンスフェクションによって同時に細胞に導入するものである(LandauおよびLittm
an, 1992, J. Virol. 66, 5110; Soneokaら,1995, Nucleic Acids Res. 23: 62
8-633)。
トロウイルスベクターについては、これはEnvタンパク質を改変することによっ て達成できる。レトロウイルス二次ベクターのEnvタンパク質は、非毒性エンベ ロープであるか、または一次標的細胞内で非毒性量産生されるエンベロープ、例
えば、MMLV両種指向性エンベロープまたは改変された両種指向性エンベロープ、
等である必要がある。このような場合の安全性特徴は、好ましくは、レトロウイ
ルス構成要素間の領域または配列相同性の欠失である。
ある。適切なenv遺伝子の例は、VSV-G、4070A env等のMLV 両種指向性env、RD11
4 ネコ白血病ウイルスenvまたはインフルエンザウイルス由来の赤血球凝集素(HA
)遺伝子を含むが、これらだけに限定されない。Envタンパク質は、限定された数
のヒト細胞型の上に存在する受容体に結合可能なタンパク質であってよく、これ
はターゲッティング部分を含む工学的に作製されたエンベロープであってよい。
envおよびgag-polコード配列は、選択されたパッケージング細胞系中で活性なプ
ロモーターおよび場合によりエンハンサーから転写される。そして、転写ユニッ
トはポリアデニル化シグナルによって終了する。例えば、パッケージング細胞が
ヒト細胞である場合、適切なプロモーター-エンハンサーの組合せはヒトサイト メガロウイルス主要前初期(hCMV-MIE)遺伝子由来のものであり、SV40ウイルス由
来のポリアデニル化シグナルを用いることができる。他の適切なプロモーターお
よびポリアデニル化シグナルも当技術分野で公知である。
の一次ベクターを腫瘍細胞へ送達することは、さらなるベクター粒子の複製およ
び生成をもたらし、これらの粒子はさらなる腫瘍細胞を形質導入することができ
る。
合、一次標的細胞は治療を受けた個体の体内における内在性工場の役割を果たし
て、二次標的細胞を形質導入することができるさらなるベクター粒子を生成する
。例えば、一次標的細胞集団は一次ベクターによってin vivoまたはex vivoで形
質導入された造血細胞であってよい。次に、この一次標的細胞は身体内の部位、
例えば腫瘍などに送達されるか、またはそこへ移動し、二次ベクター粒子を生成
する。この粒子は、例えば、固形腫瘍内の有糸分裂的に活性な腫瘍細胞を形質導
入することができる。
てMLV等の非レンチウイルスでは効率的に形質導入できない細胞も形質導入する ことができる。ゆっくりと分裂する細胞は、ある種の腫瘍細胞を含めて、約3〜
4日ごとに1回分裂する。腫瘍は急速に分裂する細胞を含むが、ある腫瘍細胞、
特に腫瘍の中心に存在する細胞は、たまにしか分裂しない。または、標的細胞は
細胞分裂をすることができる、増殖を抑制された細胞(例えば腫瘍塊の中心部に
位置する細胞、等)または幹細胞(例えば造血幹細胞またはCD34陽性細胞、等)
であってよい。さらにまた、標的細胞は単球前駆体、CD33陽性細胞、または骨髄
系細胞前駆体、等の分化細胞の前駆体であってよい。さらにまた、標的細胞は神
経細胞、星状細胞、神経膠細胞、小神経膠細胞、マクロファージ、単球、上皮細
胞、内皮細胞、肝細胞、精母細胞、精子細胞、または精子などの分化細胞であっ
てよい。標的細胞はヒト個体から単離した後in vitroで形質導入してもよいし、
またはin vivoで直接形質導入してもよい。
て高力価の欠陥性レトロウイルスベクター粒子の局在化したin vivo生成を可能 とし、その結果、二次標的細胞の効率的形質導入を達成する。これは欠陥性アデ
ノウイルスベクターまたは欠陥性レトロウイルスベクターを単独で用いるよりも
一層効率的である。
ロウイルスベクター、例えばMMLVに基づくベクター等のin vivo生成を可能とす る。これまで、MMLVに基づくレトロウイルスベクターを生成することは急速に分
裂する細胞、例えばin vitroで増殖する、組織培養に適合させた細胞、またはin vivoで急速に分裂する腫瘍細胞、等においてのみ可能であった。レトロウイル スベクターを生成することができる細胞型の拡大は、固形腫瘍の細胞(その多く
はゆっくりと分裂する)に遺伝子を送達するうえで、また内皮細胞や種々の造血
系統細胞等の非分裂細胞を治療用タンパク質産物の内在性工場として使用するう
えで、有利である。
、または他の治療もしくは治療構成要素と組み合わせて用いることもできる。
皮膚科学的障害、熱、心臓血管作用、出血、血液凝固および急性期応答、悪液質
、食欲不振、急性感染、HIV感染、ショック状態、移植片体宿主反応、自己免疫 疾患、再灌流傷害、髄膜炎、偏頭痛およびアスピリン依存性抗血栓症;腫瘍の増
殖、浸潤および拡大、血管新生、転移、悪性腹水および悪性胸膜滲出;脳虚血、
虚血性心臓疾患、変形性関節症、慢性関節リウマチ、骨粗しょう症、喘息、多発
硬化、神経退化、アルツハイマー病、アテローム硬化、卒中、脈管炎、クローン
(Crohn)病および潰瘍性大腸炎;歯周炎、歯肉炎;乾癬、アトピー性皮膚炎、慢 性潰瘍、表皮水疱症;角膜潰、網膜症および外科創傷治癒;鼻炎、アレルギー性
結膜炎、湿疹、アナフィラキシー;再狭窄、うっ血性心不全、子宮内膜症、アテ
ローム硬化または内部硬化(endosclerosis)。
、WO-A-98/07859にリストアップされている障害の治療に有用な1以上のNOIを送
達することができる。参照を容易にするため、該リストの一部をここに掲げる:
サイトカインおよび細胞増殖/分化活性;免疫抑制または免疫刺激活性(例えば
、ヒト免疫不全ウイルスの感染を含む免疫不全の治療;リンパ球増殖の調節;癌
および多数の自己免疫疾患の治療;および移植片拒絶の阻止または腫瘍免疫の誘
導のため);造血の調節、例えば、骨髄系またはリンパ系疾患の治療など;例え
ば、傷の治癒、火傷、潰瘍および歯周疾患および神経退化の治療、などのための
骨、軟骨、腱、靱帯および神経組織の増殖促進;卵胞刺激ホルモンの抑制または
活性化(受胎能の調節);走化性/ケモキネシス活性(例えば、特定の細胞型を
損傷または感染部位に移動させるため);うっ血性および血栓崩壊性活性(例え
ば、血友病および卒中の治療のため);抗炎症活性(例えば、敗血症性ショック
またはクローン病の治療のため);抗菌剤として;代謝または行動の変調剤;鎮
痛薬として;特定の欠乏障害の治療;ヒトまたは獣医学における例えば乾癬の治
療。
て、WO-A-98/09985にリストアップされている障害の治療に有用な1以上のNOIを
送達することができる。参照を容易にするため、該リストの一部をここに掲げる
:マクロファージ阻害および/またはT細胞阻害活性およびその結果としての抗
炎症活性;抗免疫活性、すなわち、細胞性および/または体液性免疫応答(炎症
を伴わない応答を含む)に対する抑制作用;マクロファージおよびT細胞の細胞
外マトリックスおよびフィブロネクチンに付着する能力、ならびにT細胞におけ
るアップレギュレーションされたfas受容体発現の阻害;望ましくない免疫応答 および関節炎(慢性関節リウマチを含む)を含む炎症、過敏症、アレルギー性反
応、喘息、全身性エリテマトーデス、コラーゲン疾患および他の自己免疫疾患に
関連する炎症、アテローム硬化、動脈硬化、アテローム硬化性心臓疾患、再灌流
傷害、心停止、心筋梗塞、血管炎症性障害、呼吸窮迫症候群または他の心肺疾患
に関連する炎症、消化性潰瘍、潰瘍性大腸炎および他の消化管の疾患、肝繊維症
、肝硬変または他の肝臓疾患、甲状腺炎または他の腺疾患、糸球体腎炎または他
の腎臓および泌尿器疾患、耳炎または他の耳鼻咽頭疾患、皮膚炎または他の皮膚
疾患、歯周疾患または他の歯科疾患、精巣炎または精巣精巣上体炎、不妊症、精
巣外傷または他の免疫関連精巣疾患、胎盤機能不全、胎盤不全、習慣性流産、子
癇、子癇前症および他の免疫および/または炎症関連産婦人科疾患、後部ブドウ
膜炎、中間部ブドウ膜炎、前部ブドウ膜炎、結膜炎、脈絡網膜炎、ブドウ膜網膜
炎、視神経炎、眼内炎症、例えば、網膜炎または嚢胞状黄斑浮腫、交感性眼炎、
強膜炎、色素性網膜炎に関連する炎症、変性眼底疾患の免疫および炎症構成要素
、眼外傷、感染によって引き起こされる眼の炎症、増殖性ガラス体網膜症、急性
虚血性眼ニューロパシー、過剰瘢痕(例えば、緑内障濾過手術後の)の炎症構成
要素、眼移植に対する免疫および/または炎症反応ならびに他の免疫および炎症
関連眼疾患、中枢神経系(CNS)もしくは他の器官における免疫および/または炎 症の抑制が有益と思われる自己免疫疾患または異常または障害に関連する炎症、
パーキンソン病、パーキンソン病の治療に由来する合併症および/または副作用
、AIDS関連痴呆症候群、HIV関連脳障害、ドヴィック(Devic) 病、シドナム(Syde
nham)舞踏病、アルツハイマー病および他の退行性疾患、CNSの症状または障害に
関連する炎症、卒中、ポリオ後症の炎症構成要素、精神障害、脊髄炎、脳炎、亜
急性硬化性汎脳炎、脳脊髄炎、急性ニューロパシー、亜急性ニューロパシー、慢
性ニューロパシー、ギラン-バレー(Guillain-Barre)症候群、シドナム舞踏病、 重症筋無力症、偽脳腫瘍、ダウン症、ハンチントン病、筋萎縮側索硬化の免疫お
よび炎症構成要素、CNS圧迫またはCNS外傷またはCNS感染の炎症構成要素、筋萎 縮およびジストロフィーの炎症構成要素、ならびに中枢および末梢神経系の免疫
および炎症関連疾患、症状または障害、外傷後炎症、敗血症ショック、感染性疾
患、外科手術、骨髄移植の炎症性合併症または副作用、または他の移植合併症お
よび/または副作用、遺伝子療法の炎症性および/または免疫合併症および副作
用(例えば、ウイルス担体の感染によるものなど)、またはAIDSに関連する炎症
の抑制;体液性および/または細胞性免疫応答の抑制または阻害;単球またはリ
ンパ球の量を減らすことによる単球または白血球増殖性疾患(例えば白血病)治
療または軽減;天然または人工の細胞、組織および器官(角膜、骨髄、臓器、レ
ンズ、ペースメーカー、天然または人工の皮膚組織など)を移植する場合に、移
植片拒絶を阻止および/または治療するため。
ルでは発現されないように、治療用NOIの産生を制御する方法が提供される。
る。該組成物は、治療上有効量の、送達可能な1以上の治療用および/または診
断用NOIを含む本発明のレトロウイルスベクター、または該ベクターによって生 成される、もしくはそれから得られるウイルス粒子を含む。この医薬組成物はヒ
トまたは動物に用いることができる。典型的には、医師が個々の被験者に実際に
最も適する用量を決定する。その量は特定個体の年齢、体重および応答によって
変動する。
ントを含むことができる。製薬用担体、賦形剤または希釈剤は、意図される投与
経路および標準的な製薬上の慣例に鑑みて選択することができる。該医薬組成物
は、担体、賦形剤または希釈剤として、またはそれらのほかに、任意の適切な結
合剤、潤沢剤、懸濁剤、被覆剤、可溶化剤、および標的部位へのウイルスの侵入
を助ける、または増大させることができる他の担体(例えば、脂質送達系)を含
むことができる。
ローション、溶液、クリーム、軟膏または散布剤の形で局所的に;皮膚パッチの
使用により;デンプンまたはラクトース等の賦形剤を含む錠剤の形、または単独
もしくは賦形剤と混合したカプセルもしくはオビュール(ovule)の形、または矯 味剤もしくは着色剤を含むエリキシル、溶液もしくは懸濁液の形で経口的に投与
するか、または非経口的に(例えば、海綿状構造内、静脈内、筋肉内または皮下
に)注射することができる。非経口投与のためには、該組成物は他の物質(例え
ば、溶液を血液と等張性とするのに十分な塩または単糖)を含んでいてもよい滅
菌水性溶液の形で最も良好に使用される。奥歯と頬の間または舌下に投与するた
めには、該組成物は通常の方法で製剤化できる錠剤またはロゼンジの形で投与す
ることができる。
)ハイブリッドウイルスベクター系が提供される。この系は、二次ウイルスベク
ターをコードする1以上の一次ウイルスベクターを含んでおり、該一次ベクター
は一次標的細胞に感染して二次ウイルスベクターを発現することが可能であり、
該二次ベクターは二次標的細胞の形質導入をすることができる。
胞細胞内で欠陥性の感染性粒子を生成することができる、遺伝子送達のためのハ
イブリッドウイルスベクター系である。したがって、本発明の遺伝子ベクターは
、二次ベクターをin vivoで生成するために必要な遺伝子をコードする、in vitr
oで作製された一次ベクターを含む。使用にあっては、二次ベクターは二次標的 細胞に挿入するための1個以上の選択された遺伝子を担持する。該選択された遺
伝子は、1以上のマーカー遺伝子および/または治療遺伝子であることができる
。マーカー遺伝子は選択可能なおよび/または検出可能なタンパク質をコードす
る。
示は本発明のこれまでに記述した態様にも適用される。
染性二次ウイルスベクター粒子を生成することができる標的細胞を提供する。
クター系または一次ウイルスベクターに感染した標的細胞を投与することを含む
、ヒトまたは非ヒト哺乳動物を治療する方法を提供する。
ス、アデノウイルス、ヘルペスウイルスまたはポックスウイルスベクター等であ
ってよい。または、一次ウイルスベクターが複数の場合は、それらはウイルス起
源の異なるベクターの混合物であってよい。いずれの場合にも、好ましくは、一
次ウイルスベクターは独立複製が不可能であるという点で欠陥性である。したが
って、それらは標的細胞に入ってそこに二次ベクター配列を送達することはでき
るが、複製してさらなる標的細胞に感染を続行することはできない。
ベクターを含む場合は、一次標的細胞集団に感染するのに一次ベクターの両方ま
たは3個全部が、通常は同時に用いられる。好ましくは、1個の一次ウイルスベ
クターが二次ウイルスベクターの全ての構成要素をコードする。
る。アデノウイルスベクターは、in vitro培養物から得ることができる力価の点
で、他のウイルスベクターと比較して重大な利点を有する。アデノウイルス粒子
はまた、エンベロープを有するウイルスの粒子と較べて比較的安定であり、この
ためより容易に精製し、保存することができる。しかし、欠陥性アデノウイルス
ベクターからの遺伝子発現は一過性にすぎないため、現在のアデノウイルスベク
ターはin vivo治療用途について重大な限定を被っている。ベクターゲノムが複 製しないため、標的細胞増殖はベクターの希釈をもたらす。また、たとえ低レベ
ルでもアデノウイルスタンパク質を発現する細胞はアデノウイルスタンパク質に
対して起こる免疫応答によって破壊される。
ターは、欠陥ウイルスベクター粒子の一次標的細胞内における集合およびパッケ
ージングに必須の遺伝子の発現によって生成される。それは独立複製が不可能で
あるという点で欠陥性である。したがって、二次レトロウイルスベクターはいっ
たん二次標的細胞を形質導入したのち、複製によってさらなる標的細胞に広がっ
ていくことはできない。
遺伝子は、レトロウイルス由来のgag-pol 遺伝子、エンベロープを有するウイル
ス由来のエンベロープ遺伝子、および1つ以上の治療用NOIを含む欠陥性レトロ ウイルスゲノムを含むことができる。この欠陥性レトロウイルスゲノムは一般に
、逆転写を可能とする配列、5'長末端反復(LTR)の少なくとも一部、3'LTR の少 なくとも一部、およびパッケージングシグナルを含む。
るような組換えの可能性を排除する1以上の安全性特徴が組み込まれているとい
う点で、in vivo 使用にとって安全である。
によって二次ベクターをコードすることができる。そして、これらのユニットを
1個または2個以上のアデノウイルスまたは他の一次ベクター中に配置すること
ができる。したがって、二次ベクターゲノムをコードする転写ユニット、gag-po
l遺伝子をコードする転写ユニットおよびenv遺伝子をコードする転写ユニットが
存在する。または、これらユニットの2個以上を組み合わせることができる。例
えば、gag-polおよびenv遺伝子をコードする核酸配列、またはenv遺伝子および ゲノムをコードする核酸配列を1個の転写ユニットに組み合せることができる。
これを達成する方法は当技術分野で公知である。
コード配列から独立した発現を達成するためのシグナルを含む核酸の領域である
。したがって、各転写ユニットは一般に少なくともプロモーター、エンハンサー
およびポリアデニル化シグナルを含む。二次ベクターをコードする転写ユニット
のプロモーターおよびエンハンサーは、二次ウイルスベクター作製条件下の一次
標的細胞中で、好ましくは強力に活性であるか、または強力に誘導されることが
可能である。プロモーターおよび/またはエンハンサーは構成的に効果的なもの
であるか、またはその活性が組織によって、もしくは時間的に制限されているも
のであってよい。組織によって制限される適切なプロモーター/エンハンサーの
例は、MUC1遺伝子、CEA遺伝子または5T4抗原遺伝子由来のプロモーター/エンハ
ンサー等、腫瘍細胞中で高度に活性なプロモーター/エンハンサーである。時間
的に制限されているプロモーター/エンハンサーの例は、低酸素応答エレメント
またはgrp78もしくはgrp94遺伝子のプロモーター/エンハンサー等、虚血および
/または低酸素に応答するプロモーター/エンハンサーである。好ましいプロモ
ーター-エンハンサーの組合せの1例は、ヒトサイトメガロウイルス(hCMV)主要 前初期(MIE)プロモーター/エンハンサーの組合せである。
状況下で特に有用である。低酸素は広い範囲の異なる細胞型において遺伝子発現
の強力な調節物であり、そして例えば低酸素誘導性因子1(HIF-1; WangおよびSe
menza, 1993, Proc. Natl. Acad. Sci. USA, 90:430)等の低酸素が誘導する転写
因子の活性の誘導によって作用する。該転写因子は種々の遺伝子プロモーター上
の同族体DNA認識部位、すなわち低酸素応答エレメント(HRE) に結合する。Dachs
ら(1997, Nature Med. 5:515)は、マウスのホスホグリセリン酸キナーゼ1(PGK
-1)遺伝子(Firthら,1994, Proc. Natl. Acad. Sci. USA, 91:6496-6500) 由来
のHREの多量体形態を用いて、ヒト繊維肉腫細胞による低酸素に応答したマーカ ーおよび治療遺伝子の両方のin vitro発現および固形腫瘍内におけるin vivo発 現を調節した(Dachsら、同書)。または、腫瘍の虚血性領域には顕著なグルコ ース剥奪も存在するという事実を利用して、異種遺伝子発現を腫瘍中で特異的に
活性化することができる。grp78 遺伝子プロモーターの末端切断型632塩基対配 列(これはグルコース剥奪によって特異的に活性化されることが公知である)も
また、マウス腫瘍においてin vivoでリポーター遺伝子の高レベル発現を引き出 しうることが示された(Gazit, G. ら,1995, Cancer Res. 55:1660)。
記述する。そのような特徴は系の中に1つ以上存在しうる。
ドする配列間の配列相同性を回避することができる。相同領域は遺伝子の組換え
を引き起こす。特定の実施形態においては、二次レトロウイルスベクターを構築
するのに3個の転写ユニットが用いられる。第1の転写ユニットは、非レトロウ
イルス性プロモーターおよびエンハンサーの制御下にあるレトロウイルスgag-po
l遺伝子を含む。第2の転写ユニットは、非レトロウイルス性プロモーターおよ びエンハンサーの制御下にあるレトロウイルスenv遺伝子を含む。第3の転写ユ ニットは、非レトロウイルス性プロモーターおよびエンハンサーの制御下にある
欠陥性レトロウイルスゲノムを含む。天然のレトロウイルスゲノムにおいては、
パッケージングシグナルは、適切に機能するためにはgag配列の一部を必要とす るように配置されている。したがってレトロウイルスベクター系を天然のレトロ
ウイルスから構築する場合、通常、パッケージングシグナル(gag遺伝子の一部 を含む)はベクターゲノム中に残る。しかし、本発明においては上記欠陥性レト
ロウイルスゲノムは、第1の転写ユニット中のgag配列と相同な配列を含まない 、最小限のパッケージングシグナルを含む。また、例えばモロニーマウス白血病
ウイルス(MMLV)などのレトロウイルスにおいては、polコード配列の3'末端とenv
コード配列の5'末端の間にはオーバーラップする小さい領域がある。第1および
第2転写ユニットの間のこれに対応する相同領域は、polコード配列の3'末端ま たはenvコード配列の5'末端を、コドン使用法を変えるがコードされたタンパク 質のアミノ酸配列を変えないように変更することによって除去することができる
。
のレトロウイルスのゲノムを別のレトロウイルスまたはエンベロープを有する別
のウイルスのエンベロープタンパク質を用いて疑似タイピングすることによって
、複製可能な二次ウイルスベクターの可能性を回避することができる。特定の実
施形態においては、レトロウイルスベクターは以下の3つの構成要素から構築さ
れる。すなわち、第1の転写ユニットは非レトロウイルス性プロモーターおよび
エンハンサーの制御下にあるレトロウイルスgag-pol遺伝子を含む。第2の転写 ユニットは、非レトロウイルス性プロモーターおよびエンハンサーの制御下にあ
る、エンベロープを有する別のウイルス由来のenv遺伝子を含む。第3の転写ユ ニットは、非レトロウイルス性プロモーターおよびエンハンサーの制御下にある
欠陥性レトロウイルスゲノムを含む。上記欠陥性レトロウイルスゲノムは、第1
の転写ユニット中のgag配列と相同な配列を含まない、最小限のパッケージング シグナルを含む。
タンパク質は、例えば、4070Aと称する両種指向性エンベロープタンパク質であ ってよい。または、レトロウイルスゲノムはMMLVに基づくものであって、そして
エンベロープタンパク質は一次標的細胞内で非毒性量で産生されうる、別のウイ
ルス由来のタンパク質(インルエンザ赤血球凝集素または水疱性口内炎ウイルス
Gタンパク質、等)であってよい。あるいはまた、エンベロープタンパク質は突
然変異体エンベロープタンパク質または遺伝子操作されたエンベロープタンパク
質、等のような改変されたエンベロープタンパク質であってもよい。改変は、標
的能力を導入するように、または毒性を減少させるように、または別の目的に合
わせて実施または選択することができる。
製可能なレトロウイルスの可能性を排除することができる。第1の転写ユニット
は、一次標的細胞中で活性なプロモーター-エンハンサー(例えば、hCMVプロモ ーター-エンハンサーまたは組織に限定されるプロモーター-エンハンサー)の制
御下にあるgag-polコード領域を含む。第2の転写ユニットは、レトロウイルス 粒子中にパッケージングされうるレトロウイルスゲノムRNAをコードする。第2 の転写ユニットはパッケージング、組み込みおよび逆転写に必要なレトロウイル
ス配列を含み、かつまたエンベロープを有するウイルスのenvタンパク質をコー ドする配列および1以上の治療遺伝子をコードする配列を含む。
トロウイルス二次ベクターをコードする1または複数のアデノウイルス一次ベク
ターを含んでなる。本発明に用いるアデノウイルスベクターは、ヒトアデノウイ
ルス由来であっても、または通常ヒトに感染しないアデノウイルスに由来するも
のであってもよい。好ましくは、上記ベクターはアデノウイルス2型もしくは5
型(Ad2またはAd5)、またはマウスアデノウイルス、またはCELOウイルス(Cotton
ら,1993, J. Virol 67: 3777-3785) 等のトリアデノウイルスに由来するもので
ある。上記ベクターは複製可能のアデノウイルスベクターであってよいが、より
好ましくは欠陥性アデノウイルスベクターである。アデノウイルスベクターは該
ウイルスの複製に必要な1以上の構成要素を欠失させることによって欠陥性とす
ることができる。典型的には、各アデノウイルスベクターはE1領域に少なくとも
1つの欠失を含む。感染性アデノウイルスベクター粒子を作製するためには、E1
遺伝子を含むAd5 左部分のコピーが組み込まれたヒト胚繊維芽細胞系(ヒト293 細胞系など)中でウイルスを継代させることによって上記欠失を補完することが
できる。異種DNAをこのようなベクターに挿入する場合のキャパシティは、約7k
bまである。したがって、このようなベクターは、それぞれがレトロウイルス二 次ベクターの構築に必須な転写ユニットの1つを含む3個の組換えベクターから
なる本発明の系を構築するのに有用である。
ーが当技術分野で公知であり、これらのベクターもまた本発明に用いるのに適切
である。これらの第二世代アデノウイルスベクターのいくつかは、免疫原性の低
下を示す(例えば、E1 + E2 欠失、Gorzigliaら,1996, J. Virol. 70: 4173-41
78; E1 + E4欠失、Yehら,1996, J. Virol. 70: 559-565)。欠失の拡大は、ベク
ターに複数の遺伝子を導入するための付加的なクローニングキャパシティを提供
するのに役立つ。例えば、25 kbの欠失が記述されており(Lieberら,1996, J. V
irol. 70: 8944-8960)、また35 kb以上の異種DNAの導入を可能とする、全ウイル
ス遺伝子を欠失させたクローニングベクターが報告されている(Fisher ら,1996
, Virology 217: 11-22)。このようなベクターを用いて、レトロウイルス二次ベ
クターを構築するための2または3個の転写ユニットをコードする本発明のアデ
ノウイルス一次ベクターを作製することができる。
ターに付随する主要な問題の1つ、すなわち、そのようなベクターからの遺伝子
発現は一過性であるという問題を解決している。一次標的細胞から生成されるレ
トロウイルス粒子は二次標的細胞に感染することができ、そして二次標的細胞に
おける遺伝子発現はレトロウイルスベクターゲノムが宿主細胞ゲノムに組み込ま
れているため、安定に維持される。二次標的細胞は重大な量のウイルスタンパク
質抗原を発現することはなく、したがってアデノウイルスベクターによって形質
導入された細胞よりも免疫原性が低い。
。なぜなら、例えば急速に分裂する細胞を標的にすることを可能ならしめること
によって、それはある程度細胞の区別を可能とするからである。さらに、レトロ
ウイルスの組み込みは、増殖する標的細胞における安定な発現を含めて、標的組
織中における治療遺伝子の安定な発現を可能とする。
感染する。より好ましくは、一次ベクターは特定の細胞に向かうように標的設定
された、天然のウイルスと較べて変更された組織親和性をもつベクターである。
「標的設定されたベクター」という用語は、必ずしも「標的細胞」という用語と
結びついているわけではない。「標的細胞」とは、単にベクター(天然のもので
あれ標的設定されたものであれ)が感染または形質導入できる細胞をいう。
親和性が野生型アデノウイルスの組織親和性から変更されている標的設定された
ベクターである。アデノウイルスベクターを改変して、例えば以下の文献に記載
されているような標的設定されたアデノウイルスベクターを作製することができ
る。すなわち、Krasnykhら,1996, J. Virol. 70: 6839-6846; Wickhamら,1996
, J. Virol. 70: 6831-6838; Stevensonら,1997, J. Virol. 71: 4782-4790; W
ickhamら,1995, Gene Therapy 2: 750-756; Douglasら,1997, Neuromuscul. D
isord. 7:284-298; Wickhamら,1996, Nature Biotechnology 14: 1570-1573で ある。
ンパ球、顆粒球、またはこれらの前駆細胞を含む);内皮細胞;腫瘍細胞;間質
細胞;星状細胞または神経膠細胞;筋肉細胞;および上皮細胞を含むが、それら
だけに限定されない。
細胞は、上記の細胞型のうち任意のものであってよい。好ましい実施形態におい
ては、本発明の一次標的細胞は、レトロウイルスgag-pol遺伝子のための第1の 転写ユニットおよびパッケージング可能な欠陥性レトロウイルスゲノムを生成す
ることができる第2の転写ユニットを含む欠陥性アデノウイルスベクターに感染
した単球またはマクロファージである。この場合、少なくとも第2の転写ユニッ
トは好ましくは、身体内の病態部位、例えば虚血性部位または固形腫瘍の微小環
境、等において優先的に活性なプロモーター-エンハンサーの制御下にある。本 発明のこの態様の特に好ましい実施形態においては、第2の転写ユニットは、ゲ
ノムが二次標的細胞に挿入されると、ウイルスenv遺伝子の発現を減少させ、か つ治療遺伝子の効率的発現を可能とするのに役立つイントロンが生成されるよう
に構築される。
トロウイルスベクターについては、これはエンベロープタンパク質を改変するこ
とによって達成できる。レトロウイルス二次ベクターのエンベロープタンパク質
は、非毒性エンベロープであるか、または一次標的細胞内で非毒性量産生される
エンベロープ、例えば、MMLV両種指向性エンベロープまたは改変された両種指向
性エンベロープ、等である必要がある。このような場合の安全性特徴は、好まし
くは、レトロウイルス構成要素間の領域または配列相同性の欠失である。
の一次ベクターを腫瘍細胞へ送達することは、さらなるベクター粒子の複製およ
び生成をもたらし、これらの粒子はさらなる腫瘍細胞を形質導入することができ
る。または、二次標的細胞集団は一次標的細胞集団と異なっていてもよい。この
場合、一次標的細胞は治療を受けた個体の体内における内在性工場の役割を果た
して、二次標的細胞を感染させることができるさらなるベクター粒子を生成する
。例えば、一次標的細胞集団は一次ベクターによってin vivoまたはex vivoで形
質導入された造血細胞であってよい。次に、この一次標的細胞は身体内の部位、
例えば腫瘍などに送達されるか、またはそこへ遊走し、二次ベクター粒子を生成
する。このれらの粒子は、例えば、固形腫瘍内の腫瘍細胞を形質導入することが
できる。
て高力価の欠陥性レトロウイルスベクター粒子の局在化したin vivo生成を可能 とし、その結果、二次標的細胞の効率的形質導入を達成する。これは欠陥性アデ
ノウイルスベクターまたは欠陥性レトロウイルスベクターを単独で用いるよりも
一層効率的である。
ロウイルスベクター、例えばMMLVに基づくベクター等のin vivo生成を可能とす る。これまで、MMLVに基づくレトロウイルスベクターの生成は急速に分裂する細
胞、例えばin vitroで増殖する、組織培養に適合させた細胞、またはin vivoで 急速に分裂する腫瘍細胞、等においてのみ可能であった。レトロウイルスベクタ
ーを生成することができる細胞型の拡大は、固形腫瘍の細胞(その多くはゆっく
りと分裂する)に遺伝子を送達するうえで、また内皮細胞や種々の造血系統細胞
等の非分裂細胞を治療用タンパク質産物の内在性工場として使用するうえで、有
利である。
、または他の治療もしくは治療構成要素と組み合わせて用いることもできる。治
療することができる疾患は、癌、神経疾患、遺伝性疾患、心臓疾患、卒中、関節
炎、ウイルス感染および免疫系の疾患を含む。適切な治療遺伝子は、腫瘍抑制タ
ンパク質、酵素、プロドラッグ活性化酵素、免疫変調性分子、抗体、工学的に作
製された免疫グロブリン様分子、融合タンパク質、ホルモン、膜タンパク質、血
管作用性タンパク質またはペプチド、サイトカイン、ケモカイン、抗ウイルスタ
ンパク質、アンチセンスRNAおよびリボザイムをコードする遺伝子を含む。
てプロドラッグ活性化酵素をコードする遺伝子が腫瘍に送達され、そして次に適
切なプロドラッグを用いて患者が治療される。プロドラッグの例は、リン酸エト
ポシド(アルカリ性フォスファターゼと共に使用、Senterら,1988, Proc. Natl
. Acad. Sci. 85: 4842-4846); 5-フルオロシトシン(シトシンデアミナーゼと 共に、Mullenら,1994, Cancer Res 54: 1503-1506); ドキソルビシン-N-p-ヒド
ロキシフェノキシアセトアミド(ペニシリン-V-アミダーゼと共に、Kerrら,199
0, Cancer Immunol. Immunother. 31: 202-206); パラ-N-ビス(2-クロロエチル )アミノベンゾイルグルタメート(カルボキシペプチダーゼG2と共に);セファ
ロスポリンナイトロジェンマスタードカルバメート(βラクタマーゼと共に);
SR4233 (P450レダクターゼと共に);ガンシクロビル(HSV チミジンキナーゼと
共に、Borrelliら,1988, Proc. Natl. Acad. Sci. 85: 7572-7576); マスター
ドプロドラッグ(ニトロレダクターゼと共に、Friedlosら,1997, J. Med. Chem
. 40: 1270-1275)およびシクロホスファミドまたはイホスファミド(シトクロム
P450と共に、Chenら,1996, Cancer Res. 56:1331-1340)を含む。
中では少量しか発現されないか、または生物学的に重大な量では発現されないよ
うに治療遺伝子の生成を制御する方法が本発明により提供される。
用いることができる。そのような技法は文献に十分記述されている。例えば、Sa
mbrookら(1989), Molecular Cloning; a laboratory manual; HamesおよびGlove
r (1985-1997) DNA Cloning: a practical approach, 第I-IV巻(第2版)を参 照されたい。免疫グロブリン遺伝子の作製方法は、McCaffertyら(1996) "Antibo
dy Engineering: A Practical Approach"に記述されている。
ライス・アクセプター部位を含むレトロウイルスベクターに関するものであり;
該機能性スプライス・ドナー部位および機能性スプライス・アクセプター部位は
第1の興味のあるヌクレオチド配列(NOI)の両側に位置し;該機能性スプライ ス・ドナー部位は該機能性スプライス・アクセプター部位の上流にあり;該レト
ロウイルスベクターはレトロウイルスプロベクターから誘導され;該レトロウイ
ルスプロベクターは該機能性スプライス・ドナー部位をもたらすことのできる第
1のヌクレオチド配列(NS)および該機能性スプライス・アクセプター部位をも
たらすことのできる第2のNSを含み;第1のNSは第2のNSの下流にあり;該レト
ロウイルスプロベクターの逆転写の結果該レトロウイルスベクターが形成される
ようになっている。
1個以上の一次ウイルスベクターを含んでなり、該一次ベクターは一次標的細胞
に感染してそこで二次ウイルスベクターを発現することができ、該二次ベクター
は二次標的細胞の形質導入を行うことができる。
れに基づくベクターであり、および/または二次ウイルスはレトロウイルスベク
ター、好ましくはレンチウイルスベクターから得られる、またはそれに基づくベ
クターである。
マウスオンコレトロウイルス等の最も単純なレトロウイルスは3つのオープンリ
ーディングフレーム、すなわちgag、polおよびenvを有する。gagの翻訳中におこ
るフレームシフトはpolの翻訳を導く。envの発現および翻訳は、図に示すスプラ
イス供与体(SD)とスプライス受容体(SA)の間のスプライシングによって達成され
る。パッケージングシグナルはPsi と表示され、これは全長転写産物にのみ含ま
れている。スプライシング現象の間にこのシグナルが除去される、envを発現す るサブゲノム転写産物には含まれない。
を図式的に示す。ここでは、スモールTスプライス供与配列は、最終構築物中で
逆転写が起こると、U3-スプライス供与体-Rというカセットがプロウイルスベク
ターの5'末端に「受け継がれ」、そして発現されたRNA転写産物がその5'末端近 傍にスプライス供与配列を含むように、LTRベクターの転写開始点の下流である がR配列の上流に挿入される。
nt, 1982, Nucleic Acids Res. 10: 459-472)およびブランチ部位(branch point
)の両方に下線を付し、太字で示す。矢印はイントロン/エキソン接合部を示す 。ここでは、共通スプライス受容配列がpLXSN のStu1/BamH1部位に挿入される。
このような配置により、この受容体は(最終RNA転写産物中で)任意の上流スプ ライス供与体と相互作用する。
pL-SA-NのSpe1-Asc1 部位にクローン化し、その結果、野生型スプライス供与体g
TをgCに置換する。Spe1およびAsc1両部位を太字で示し、Spe1オリゴヌクレオチ ド中の突然変異を太字の大文字で示す。
概略図である。後に概略を示す2つのオリゴヌクレオチドを用いてPCRを実施し 、PCR産物をCMVLTRのSac1-BamH1部位にクローン化し、相当する断片を除去する 。SacIオリゴヌクレオチド中で、矢印は転写の開始を示し、新しいインサートは
大文字で示し、スプライス供与配列には下線を付してある。Rの開始をイタリッ
ク体で示す。
挿入し、プラスミド pEGASUS+SA を作製する。共通スプライス受容体(T/C)nNC/T
AG-G (Mount, 1982, 同じ箇所)およびブランチ部位の両方に下線を付し、太字 で示す。矢印はイントロン/エキソン接合部を示す。
る。後述するオリゴヌクレオチドおよび鋳型としてpEGASUS+SAを用いたオーバー
ラップPCRによってスプライス供与配列を除去する。最初にオリゴ1+2 およびオ リゴ3+4 をそれぞれ用いて別々にPCR反応を実施する。次に増殖副産物を溶出し 、混合して第3のPCR反応に用いる。この第3反応を10サイクル実施した後、オ リゴ2および4を加える。次に、得られた産物をpEGASUS+SAのSac1-Sal1 部位に
クローン化し、プラスミドpEGASUS+SA(noSD)を作製する。スプライス供与体(SD)
の位置を図に示す。野生型スプライス供与体をGTからGCに変える点突然変異を、
オリゴ1および相補体であるオリゴ3の両方に太字で示す。
略を示す図である。ここでは、pEGASUS+SA(noSD)のMlu1断片をpCMV-LTRのユニー
クなMlu1部位にする。
ように、pEGASUS-1 由来のXho1-Bpu1 102 LacZ断片をpEICUT-1のXhoI-Bpu1 102 部位に挿入することによって作製される。
ベクター配置の概略図を示す。ここでは、出発ベクターpICUTはスプライス受容 体(この例ではIgSA由来の共通スプライス受容体)の上流にスプライス供与体を
含んでおらず、そのため得られるRNA転写産物はスプライシングされない。した がって、転写産物の全てはパッケージングシグナルを含む全長転写産物である(
A)。しかし、形質導入を行うと、スプライス供与体(この例ではスモールTス
プライス供与体)は生成される全てのRNA転写産物がスプライス受容体(すなわ ちイントロン)の上流にスプライス供与体を含むようにプロウイルスベクターの
5'末端に「受け継がれ」、そしてその結果最大のスプライシングが達成される(
B)。
概略図である。この例における遺伝子発現の限定は、ハイグロマイシンORFをMLV
pEIBUTのネオマイシンORFの上流に配置することによって達成される(a)。こ
のクローニング戦略によって、得られるベクターはトランスフェクションされた
細胞中ではハイグロマイシンのみを発現するRNA転写産物を発現するようになる 。なぜなら、リボソーム5'キャップ依存性翻訳は上流ORFのみを効率的に読むか らである。しかし、形質導入を行うと、ハイグロマイシンは機能性イントロン内
に含まれることになり、したがって成熟転写産物から除去され(b)、その結果
ネオマイシンORFが 5' キャップ依存性に翻訳される。
示す概略図である。この構築の出発ベクターは、hygroおよびneo両遺伝子を含む
図13に示すpICUT ベクターである。neo遺伝子は完全なp450 2B6 cDNAに以下のよ
うに置換される。すなわち、ヒト肝臓RNA (Clontech)を鋳型とし、下記のプライ
マーを用いてRT-PCRを実施して完全な2B6 cDNAを得る:
側を囲まれた完全な2B6 cDNAをもたらす。次に、このcDNAをpICUT-Hyg-NeoのBcl
1-NgoMI部位にクローン化し、その結果Neoをp450で置換する((A)参照)。ト
ランスフェクションされた細胞(B)および形質導入細胞(C)中のプロウイル
スDNA構築物も示す。
との配列比較である。
は、第1のNOI(4070AエンベロープORF)は最初のベクターによって発現され、第
2のNOI(この例ではp450)はベクターの複製後にのみ発現される。複製後、407
0A遺伝子は機能性イントロン内に位置し、したがってRNAスプライシングの間に 除去される。
伝子の3'末端の上流(SAの上流)に見いだされ、したがって複製後にのみ機能性
p450遺伝子が(スプライシングされたmRNAから)発現される、レトロウイルス発
現ベクターを示す。
1に、この構築物をNhe1で消化し、背骨を再連結してLTR (U3-R-U5) プラスミド
を作製する。次に、スプライス供与配列を含むオリゴヌクレオチドをこのプラス
ミドのKpn1-Bbe1 部位の間に挿入する。このオリゴヌクレオチドには、該スプラ
イス供与体の下流に、Kpn1までのMLV R 配列も含まれている。得られるプラスミ
ドを3'LTR-SDと称する(図2参照)。
イス受容体の20から40塩基上流に位置し、イントロンラリアット形成(Aebiら,1
987, Trends in Genetics 3: 102-107)に関与する1個のA残基を含む〕は、免 疫グロブリン重鎖可変領域mRNA (Bothwellら,1981, Cell 24: 625-637) である
が共通/最適化受容部位を有するものから誘導される。そのような配列シグナル
はpCI (Promega)にも存在する。この受容配列をまずpLXSN のBamH1-Stu1部位に 2本鎖オリゴヌクレオチドとして挿入し、ベクターpL-SA-N を作製する(注:SV
40プロモーターはクローニング中にpLXSN から失われる)。クローニング戦略の
概略については図3を参照されたい。
いて、pL-SA-NのユニークなAsc1およびSpe1部位にまたがる領域をPCR増幅する。
Spe1にかかる(Spe1-spanning)オリゴヌクレオチドには、スプライシング陰性pBA
BEベクター(Morgensternら,1990, 同じ箇所)にも見いだされるagGTaag からag
GCaag への変化も組み込まれている。クローニング戦略の概略については図4を
参照されたい。
NからNhe1インサートを取り出し、これをNhe1で消化した3'LTR-SDベクターに挿 入することによって、上記3'LTR を3'LTR-SD配列と置換する。このようにして得
られるプラスミドをpICUT (Intron Created Upon Transduction,形質導入の結果
形成されるイントロン)と称し、この新世代レトロウイルスベクターの全ての特
徴を含んでいる(配列データについては図5参照)。
参照されたい) 分断機能レンチウイルスベクター構築の出発点は、pEGASUS-1 と称するベクタ
ー(英国特許出願GB9727135.7 参照)である。このベクターは感染性プロウイル
スEIAVクローンpSPEIAV19(受託番号:U01866; Payneら,1994) から誘導され る。その構築は以下の通りである。すなわち、第1に、PCR増幅したEIAV LTRをp
Bluescript II KS+ (Stratagene) 中にクローン化する。次に、pSEIAV19のMluI/
MluI (216/8124)断片を挿入して、pBluescript II KS+中に野生型プロウイルス クローン(pONY2) を作製する(図1)。次に、HindIII/HindIII 断片を除去する
ことによってenv領域を欠失させ、pONY2-H を作製する。さらに、pol遺伝子内の
BglII/NcoI断片(1901/4949)を欠失させ、その場所にHCMV IE エンハンサー/プ ロモーターによって制御されるβガラクトシダーゼ遺伝子を挿入する。これをpO
NY2.10nlsLacZ と称する。EIAV配列を759塩基対に減少させ、また一次転写産物 をCMVプロモーターから分離するため、第1に、EIAVポリプリントラクト(PPT)お
よび3'LTR を含む配列を下記のプライマー:
。
CMVLacZ.3'LTR と称する。
の包含によって改変された、pCIneo (Promega)の誘導体である。この400塩基対 の断片は、以下のプライマー:
oのBglII/SpeI部位にクローン化する。
チド268から675)を、以下のプライマー:CMV5‘EIAV2
開始点を含む。次に、pBS.CMVLacZ.3LTRからApa1-Not1 断片を取り出し、これを
Sal1-Not1 で消化したpCIEneo5'EIAV にクローン化することによって、CMVLacZ/
3LTRカセットをpCIEneo5'EIAV プラスミドに挿入する(ベクターおよびインサー
トをそれぞれNot1で消化する前に、Sal1部位およびApa1部位をT4で「みがいて(p
olish)」平滑末端を作製する)。得られるプラスミドをpEGASUS-1 と称する。
gag/pol遺伝子の供給源として、EIAV gag-pol発現プラスミド(pONY3)が作製され
る。これは、gag-pol 遺伝子がhCMV-MIEプロモーター/エンハンサーから発現さ
れ、かつLTR 配列を全く含まないように、pONY2-HのMluI/MluI 断片を哺乳動物 発現プラスミドpCI-neo (Promega) に挿入することによって作製される。env遺 伝子の供給源としては、pRV583 VSV-G発現プラスミドが通常の方法で用いられる
。これらの3つのベクターは、MLVに基づくベクターについて記述されているよ うに(Soneokaら,1995, Nucl. Acids Res. 23:628-633)、3個のプラスミドに よる同時トランスフェクションに使用され、その結果得られるウイルスはD17 繊
維芽細胞上で通常ミリリットルあたり104から105 lacZ形成単位という力価を有 する。
メラーゼを用いて両端を平滑末端とし、再連結して、pEGASUS-1のCMV-R-U5部分 のみを含むプラスミドを作製する。このプラスミドはその背骨にSV40-Neoカセッ
トを保持している。このプラスミドをCMVLTRと称する。CMVとRの境界にスプラ イス供与体を挿入するため、図6に示す2つのオリゴヌクレオチドを用いて、図
6の説明に概略を述べたようにPCRを実施する。得られるプラスミドをpCMVLTR+S
Dと称する。MLV pICUTに用いたのと同一の免疫グロブリンに基づく共通スプライ
ス受容体(前述)をEIAV版に用いる。図7に示すオリゴヌクレオチドを用いて、
この受容体をpEGASUS-1 のXhoI-BpuI 102部位に挿入し、プラスミドpEGASUS+SA を作製する。図8に記述したオリゴヌクレオチドおよび方法を用いて、また鋳型
としてpEGASUS+SAを用いてオーバーラップPCRを実施することによって、EIAVの 野生型スプライス供与体を除去し、プラスミドpEGASUS+SA(noSD)を作製する。次
に、pEICUT-1を作製するため、pEGASUS+SA(noSD)のMlu1-Mlu1 断片をpCMVLTR+SD
のユニークなMlu1部位に挿入し、pEICUT-1を作製する(図9参照)。次に、Xho1
-Bpu1 102消化および挿入によってlacZをpEGASUS-1 からpEICUT-1に導入し、pEI
CUT-Zを作製する(図10参照;配列データについては図11参照)。
トロンはスプライス受容体の5'末端に位置するスプライス供与体を必要とする)
。この理由により、ベクターがプロデューサー細胞にトランスフェクションされ
ると、生成される転写産物はスプライシングされない。したがってパッケージン
グシグナルは失われず、その結果、最大限のパッケージングが達成可能である(
図12参照)。
導入後、組み込まれたpICUTベクターから生成される転写産物は、上記のトラン スフェクションされた細胞の転写産物とは異なっている。これは複製の間に3'U3
プロモーター(Rの5'開始点まで)がコピーされて、形質導入細胞において5'プ
ロモーターとして使用されるためである。この理由により、組み込まれたpICUT から生成される転写産物は、いまや強力なスプライス受容体の5'末端に強力なス
プライス供与体を含む。これらは両方ともneo ORFの上流に位置している。その ため、そのような転写産物は5'UTR(非翻訳領域)内に機能性イントロンを含み 、したがって最大限にスプライシングされ翻訳される。
ンが形成されるので、遺伝子発現をパッケージされた細胞または形質導入細胞に
限定することができることである。これがいかにして達成されるかの1例を図13
に示す。この戦略は、第2遺伝子(この例ではハイグロマイシン)をスプライス
受容体の上流にクローニングすることを必要とする。これは、Selcta Vector Hy
gro (Ingenius; Oxfordshire, UK) からSalI断片上のハイグロマイシンcDNAを取
り出し、これをpICUT のXhoI部位(スプライス受容体に位置する)に挿入するこ
とによって達成される。このベクターはトランスフェクションされた細胞中でハ
イブロマイシンを、形質導入細胞中でネオマイシンを選択的に発現する。この理
由は、どのmRNA転写産物においても、内部リボソーム結合部位(IRES)の助けがな
い場合は第1の遺伝子のみがリボソームによって翻訳されるからである。トラン
スフェクションされた細胞においては、この遺伝子はハイグロマイシンである。
しかし、形質導入細胞ではハイグロマイシンのオープンリーディングフレーム(O
RF)が機能性イントロン内に含まれるため、この遺伝子は成熟mRNA転写産物から 除去され、その結果neo ORFの翻訳を可能とする。
用途に用いうる。例えば、耐性マーカーの発現をそれが必要とされるプロデュー
サー細胞に限定し、それらマーカーが免疫原性となりうる形質導入細胞において
は発現させないことができる。別な例としては、リシンおよび優勢な陰性シグナ
ルタンパク質等の毒性遺伝子の発現を、場合により細胞増殖を停止させたり細胞
を殺したりするのにそれらを必要とするかもしれない形質導入細胞に限定し、そ
してそのような特徴が高力価ウイルスの産生を妨げるであろうプロデューサー細
胞では発現させないことが可能であろう。図14は、プロデューサー細胞ではNeo のみが発現され、形質導入細胞ではプロドラッグp450 2B6イソ型が発現されるNe
o-p450 MLV pICUT構築物を示す。
な任意の必須エレメントを形質導入の結果形成される機能性イントロンの内部に
位置させ、形質導入細胞の転写産物から除去することが可能なことである。例え
ば、MLVおよびレンチウイルスのpICUTベクターの両方について、ウイルス転写産
物は、形質導入の結果形成されて形質導入細胞の転写産物から除去されるイント
ロン内に機能性Psiパッケージングシグナルを含んでいた(MLV内のPsiの位置に ついてはBenderら,1987参照; EIAV内のPsiの位置については英国特許出願GB 97
27135.7参照)。
するならば)の存在下ではリボソームは「休み休み進む(stutter)」かもしれな いからである(Krallら, 1996, 同じ箇所およびそこに含まれる参照文献) 。
物のパッケージングが阻止される。
G翻訳開始部位)が形質導入細胞で発現される転写産物から除去されている場合 は、望ましくない未成熟な翻訳開始が阻止される。これは、EIAVおよびMLV pICU
Tベクターの両方がそうであるように、パッケージングシグナルがgag遺伝子内に
伸びている場合は特に有益である。
びサプレッサーを配置し、その結果、そのような実在物をイントロン内に含む、
CMVから生成される転写産物のような他の転写産物の配置を模倣することができ る(Chapmanら,1991, 同じ箇所)。
減少 (II) 形質導入細胞における最大限のスプライシングおよびそれによるイントロ ンの除去と翻訳の増大 (III) 遺伝子および/またはウイルス必須エレメントの発現のプロデューサー細
胞または形質導入細胞への限定
0 bpはpol遺伝子の3'末端の配列とオーバーラップしている。これら2つの遺伝 子間の相同領域は、両遺伝子を発現する細胞においてそれらの間で組換えが起こ
る可能性を阻止するため、除去された。
ドを作製し、envの残りの部分に以下のように挿入した。
し、pCI-4070Aを形成しておいたpCIプラスミド(Promega)であった。 pCI-4070Aを鋳型とし、プライマーAおよびB(図15)を用いてPCR反応を実施
し、600塩基対の産物を生成した。次に、この産物をpCI-4070AのNhe1およびXho1
部位の間にクローン化した。得られた構築物のNhe1/Xho1 領域を配列決定した。
得られた遺伝子のアミノ酸配列は元の4070Aと同一であるが、pol遺伝子との相同
領域は除去されている。
Soneokaら,1995, 同じ箇所)から得る。
ルスベクターMFG (Bandaraら,1993, Proc. Natl. Acad. Sci. 90: 10764-10768
)から、またはMMLVプロウイルスDNAから以下のオリゴヌクレオチドプライマーを
用いたPCR反応によって得る:
43-548 に記載のMMLVのヌクレオチド配列に基づく)。
技法を用いたサブクローニングによりレトロウイルスゲノムベクターを構築する
ことができる。そのようなベクターはgagコード配列と相同性をもたない。
す。このユニットは以下の要素を含む。すなわち、PGK遺伝子のHRE(低酸素応答
エレメント)を3コピー含む、低酸素によって調節されるプロモーター-エンハ ンサーおよびpGL3 (Promega)から72 bp反復エンハンサーが削除されたSV40プロ モーター;R、U5およびパッケージングシグナルを含むMMLV配列;m4070A(実施
例3)のコード配列;スプライス受容体;治療用タンパク質のコード配列を挿入
するためのクローニング部位;MMLV由来のポリピリミジントラクト;HREを含む プロモーター-エンハンサーの第2コピー;スプライス供与部位;R、U5の第2 コピーである。
はenv遺伝子の上流に導入され、スプライシングによる該遺伝子のmRNAからの除 去を引き起し、それによって治療遺伝子の二次標的細胞のみにおける効率的な発
現を可能とする(図17参照)。
可能となるように、シトクロムP450遺伝子の配列を1/2ずつに分けてコードする レトロウイルス発現ベクターcDNAの構造を示す。したがって、このベクターは形
質導入細胞にのみ遺伝子発現を限定する。
n, 1989, Bio Techniques 7: 980-990)である。pLNSX のパッケージングシグナ ル内に含まれる天然のスプライス供与体(...agGTaag...) (位置781/782)を、AL
TERED SITES II突然変異誘発キット(Promega)および下記の配列を有する合成オ リゴヌクレオチドを用いてPCR突然変異誘発法によって突然変異させる:
ー2)を有するCMVプロモーターを含む断片をもたらす。この断片をNhe1およびX
ba1で切断し、あらかじめNhe1-Nhe1断片を除去しておいたpLNSX にクローン化し
た。
Rによってヒト肝臓RNA (Clontech)から単離する:
からのものである;Yamanoら, 1989, Biochem 28:7340-7348)。PCR断片の5'末 端(プライマー3に由来する)には、Not1部位および最適化「コザック」翻訳開
始シグナルも含まれている。PCR断片の3'末端(プライマー4に由来する)には 、別のNot1部位、およびP450の残基704(相補残基をプライマー4中に大文字で 示す)に対して上流に位置するGTスプライス供与体対を有する共通スプライス供
与配列(pCI にも見いだされ、もともとはヒトβグロビン遺伝子に由来する)が
含まれている。この断片をNot1で消化し、そして上記工程2で作製した、Not1で
消化したプラスミド中にクローン化する。
スミドに再導入する。これによって、図17に示すレトロウイルスベクターである
がP450の3'末端を欠くベクターが作製される。
臓RNA (Clontech)から単離する:
イマー5によって生成されて、Bcl1制限部位、共通スプライス受容体およびブラ
ンチ部位(pCIにも見いだされ、もともとは免疫グロブリン遺伝子に由来する) が残基705の上流に存在する。停止コドンの下流に位置するこの産物の3'末端に 、プライマー6によって生成されてCla1部位が存在する。次に、このPCR産物をB
cl1およびCla1で消化し、そしてBcl1-Cla1 断片を除去した、工程3で作製した ベクターに挿入し、図18に示すレトロウイルスベクターを作製する。
り、外来DNAの通常は左側逆方向末端反復配列(ITR)に隣接するウイルス左腕への
挿入を可能とする。このウイルスのパッケージングシグナル(194-358ヌクレオチ
ド)はE1aエンハンサーとオーバーラップし、そのため殆どのE1欠失ベクター中 に存在する。この配列はウイルスゲノムの右端へ移転させることができる(Heari
ngおよびShenk, 1983, Cell 33:59-74)。したがって、E1欠失ベクターにおいて3
.2 kbを欠失させることができる(358-3525ヌクレオチド)。
でき、このためさらに2.1 kbを加えることが可能となる。したがって、E1/E3欠 失ウイルスベクターにおいては、クローニングキャパシテイは7-8 kbとなる(2.
1 kb + 1.9 kb (E3の除去) + 3.2 kb (E1の除去))。組換えアデノウイルスは必 須のE1初期遺伝子を欠くため、非E1補完性細胞系では複製できない。293細胞系 がGrahamら(1977, J. Gen. Virol. 36: 59-74)によって開発され、これはITR、 パッケージングシグナル、E1a、E1bおよびpIXを含む、Ad5ゲノムの左端由来の約
4 kbを含む。これらの細胞はE1aおよびE1b遺伝子産物を安定に発現するが、pIX
配列がE1b内にあるにもかかわらず、後期タンパク質IXを発現しない。非補完性 細胞中では、E1欠失ウイルスは細胞を形質導入し、そして核に運ばれるが、そこ
ではE1欠失ゲノムからの発現は全くない。
般戦略を示す。
に、この組換えプラスミドをpJM17 プラスミドと共に293細胞中に同時トランス フェクションする。pJM17 はE3領域の欠失、およびE1領域の3.7単位に原核生物p
BRXベクター(アンピシリン耐性および細菌ori 配列を含む)の挿入を含む。し たがって、この40 kbプラスミドはアデノウイルスのヌクレオキャプシドにパッ ケージするには大きすぎるが、細菌中で増殖させることができる。293細胞中で の細胞内組換えは、amprおよびori配列の外来DNAインサートとの置換をもたらす
。
要がある。すなわち、ゲノム、gagpol遺伝子、envelope遺伝子(狂犬病ウイルス
G)およびRev遺伝子である。レンチウイルス構成要素は異種プロモーターから 発現され、それらは(gagpol、Revおよび狂犬病ウイルスenvelopeの高発現にと って)必要な場合はイントロン、およびポリアデニル化シグナルを含む。これら
4つのウイルスをE1a マイナス細胞に形質導入すると、アデノウイルス構成要素
は発現されないが、異種プロモーターはレンチウイルス構成要素を発現させる。
EIAVアデノウイルス系の構築について1つの例を以下(実施例1)に概説する(
出願番号:9727135 .7)。このEIAVは、非必須EIAVコードタンパク質(S2、Tatま
たはエンベロープ)のうち任意のものを欠く最小限の系に基づいている。EIAVを
偽タイプ化するのに用いるエンベロープは、狂犬病ウイルスエンベロープ(Gタ
ンパク質)である。これはEIAVを良好に偽タイプ化することが示された(出願番
号:9811152.9)。
ミドはpE1sp1Aである(図20)。
る2.3 kbのバンドをクレノウポリメラーゼで平滑末端とし、pE1sp1AのEcoRV 部 位に挿入してプラスミドpE1RevE を得る(図21)。
によって、狂犬病ウイルスのオープンリーディングフレームをpCI-Neo(図24) に挿入した。T4 DNAポリメラーゼを用いて1.25 kb のバンドを平滑末端化し、Sm
aIで切断したpCI-Neoに挿入した。これによってプラスミドpCI-Rab(図25)を得
た。
b のバンドを精製した)。これによってプラスミドpE1Rab(図26)を得た。
性スプライス受容部位を含むレトロウイルスベクターであって;該機能性スプラ
イス供与部位および機能性スプライス受容部位は第1の興味のあるヌクレオチド
配列(NOI)の両側に位置し;該機能性スプライス供与部位は該機能性スプライ ス受容部位の上流にあり;該レトロウイルスベクターはレトロウイルスプロベク
ターから誘導され;該レトロウイルスプロベクターは該機能性スプライス供与部
位をもたらすことのできる第1のヌクレオチド配列(NS)および該機能性スプラ
イス受容部位をもたらすことのできる第2のNSを含み;第1のNSは第2のNSの下
流にあり;該レトロウイルスプロベクターの逆転写の結果該レトロウイルスベク
ターが形成されるようになっている該ベクターを包含する。
SDとSAの順序を入れ換えたプロベクターから生成された、機能性SDおよびSAによ
って両側を囲まれた1以上のNOIを含む新規なデリバリー系を包含する。
の態様を示す概略図を図27cに掲げる。対照的に、図27aおよび27bは公知のレト ロウイルスベクターのスプライシング配置を示す。
ージすることができる1以上のアデノウイルスベクター構成要素を含んでなる新
規なデリバリー系を包含し、ここで該レンチウイルスベクターは場合により分断
イントロン配置を含む。
とができる。この特定の場合においては、アデノウイルス構成要素とレンチウイ
ルス構成要素の組み合わせは、二部分からなる(dual)ハイブリッドウイルスベク
ター系と呼ぶことができる。
囲および精神から逸脱することなく、記述された本発明の方法および系の種々の
改変および変法が可能であることが当業者には明らかであろう。特定の好ましい
実施形態に関連させて本発明を説明してきたが、請求されている発明はそのよう
な特定の実施形態に不当に限定されないことが理解されるべきである。実際、分
子生物学および関連分野の当業者には自明である記述された本発明の実施態様の
種々の改変は、以下の請求の範囲内にあることが意図される。
。
である。
配置を示す図である。
。
ある。
比較を示す。
0は第2細胞に限定されている。
。
Claims (42)
- 【請求項1】 機能的スプライス・ドナー部位及び機能的スプライス・ア
クセプター部位を含むレトロウイルスベクターであって、機能的スプライス・ド
ナー部位及び機能的スプライス・アクセプター部位が、目的の第1のヌクレオチ ド配列(NOI)に隣接しており、機能的スプライス・ドナー部位が、機能的スプラ イス・アクセプター部位の上流にあり、該レトロウイルスベクターがレトロウイ
ルスプロベクターに由来するものであり、レトロウイルスプロベクターが機能的
スプライス・ドナー部位を生成することができる第1のヌクレオチド配列(NS)と 、機能的スプライス・アクセプター部位を生成することができる第2のNSとを含 み、第1のNSが第2のNSの下流にあって、前記レトロウイルスベクターが前記レト
ロウイルスプロベクターの逆転写の結果として形成されるレトロウイルスベクタ
ー。 - 【請求項2】 レトロウイルスプロベクターが第2のヌクレオチド配列の 上流にある第3のNSを含み、第3のNSが非機能的スプライス・ドナー部位を生成す
ることができるものである請求項1に記載のレトロウイルスベクター。 - 【請求項3】 レトロウイルスベクターがさらに第2のNOIを含み、第2のN
OIが機能的スプライス・アクセプター部位の下流にあるものである請求項1また
は2に記載のレトロウイルスベクター。 - 【請求項4】 レトロウイルスプロベクターが第2のNOIを含み、第2のNOI
が第2のヌクレオチド配列の下流にあるものである請求項3に記載のレトロウイ ルスベクター。 - 【請求項5】 第2のNOIまたはその発現産物が治療剤または診断剤である
かまたはそれらを含むものである請求項3または4に記載のレトロウイルスベク
ター。 - 【請求項6】 第1のNOIまたはその発現産物が、1または複数の選択性を 与える剤(例えばマーカーエレメント)、ウイルスの必須エレメントもしくはその
一部、またはそれらの組み合わせであるかまたはそれらを含むものである請求項
1〜5のいずれかに記載のレトロウイルスベクター。 - 【請求項7】 第1のNSがレトロウイルスプロベクターの3'末端またはそ の近傍にあり、好ましくは、この3'末端がU3領域及びR領域を含み、かつ好まし くは、前記第1のNSがU3領域とR領域との間に位置するものである請求項1〜6の
いずれかに記載のレトロウイルスベクター。 - 【請求項8】 レトロウイルスプロベクターのU3領域及び/または第1のN
Sが第3のNOIであるNSを含み、前記NOIが1または複数の転写調節エレメント、コ ード配列またはその一部であるものである請求項7に記載のレトロウイルスベク
ター。 - 【請求項9】 第1のNSがウイルスから得ることができるものである請求 項1〜8のいずれかに記載のレトロウイルスベクター。
- 【請求項10】 第1のNSがイントロンまたはその一部である請求項9に 記載のレトロウイルスベクター。
- 【請求項11】 前記イントロンが、SV40ウイルスの小形のtイントロン から得ることができるものである請求項10に記載のレトロウイルスベクター。
- 【請求項12】 レトロウイルスプロベクターがレトロウイルスパッケー
ジングシグナルを含み、第2のNSがレトロウイルスパッケージングシグナルの下 流に位置し、これによりスプライシングが一次標的部位で防止され得る請求項1
〜11のいずれかに記載のレトロウイルスベクター。 - 【請求項13】 第2のNSが第1のNOIの下流に位置し、これにより第1のNO
Iが一次標的部位で発現され得る請求項1〜12のいずれかに記載のレトロウイ ルスベクター。 - 【請求項14】 第2のNSが複数のクローニング部位の上流に位置し、こ れにより1または複数の追加のNOIが挿入され得る請求項1〜13のいずれかに記
載のレトロウイルスベクター。 - 【請求項15】 第2のNSが免疫学的分子またはその一部をコードするヌ クレオチド配列である請求項1〜14のいずれかに記載のレトロウイルスベクタ
ー。 - 【請求項16】 免疫学的分子が免疫グロブリンである請求項15に記載
のレトロウイルスベクター。 - 【請求項17】 第2のNSが免疫グロブリンの重鎖の可変領域をコードす るヌクレオチド配列である請求項16に記載のレトロウイルスベクター。
- 【請求項18】 機能的イントロンをさらに含む請求項1〜17のいずれ
かに記載のレトロウイルスベクター。 - 【請求項19】 前記機能的イントロンが所望の標的部位においてNOIの 少なくとも1つの発現を抑制できるように配置されている請求項18に記載のレ トロウイルスベクター。
- 【請求項20】 前記標的部位が細胞である請求項19に記載のレトロウ
イルスベクター。 - 【請求項21】 前記ベクターまたはプロベクターがマウスオンコレトロ
ウイルスまたはレンチウイルスから誘導され得るものである請求項1〜20のい
ずれかに記載のレトロウイルスベクター。 - 【請求項22】 前記ベクターがMMLV、MSV、MMTV、HIV-1またはEIAVから
誘導され得るものである請求項21に記載のレトロウイルスベクター。 - 【請求項23】 レトロウイルスベクターが、組み込まれたプロウイルス
である請求項1〜22のいずれかに記載のレトロウイルスベクター。 - 【請求項24】 請求項1〜23のいずれかに記載のレトロウイルスベク
ターから得ることができるレトロウイルス粒子。 - 【請求項25】 請求項1〜23のいずれかに記載のレトロウイルスベク
ターまたは請求項24に記載のレトロウイルス粒子でトランスフェクトまたは形
質導入された細胞。 - 【請求項26】 医薬で使用するための請求項1〜23のいずれかに記載
のレトロウイルスベクターまたは請求項24に記載のレトロウイルス粒子または
請求項25に記載の細胞。 - 【請求項27】 1または複数のNOIをそれを必要とする標的部位にデリバ
リーするための医薬組成物を製造するための請求項1〜23のいずれかに記載の
レトロウイルスベクターまたは請求項24に記載のレトロウイルス粒子または請
求項25に記載の細胞の使用。 - 【請求項28】 請求項1〜23のいずれかに記載のレトロウイルスベク
ターもしくは請求項24に記載のレトロウイルス粒子により、または請求項25
に記載の細胞の使用により細胞をトランスフェクトまたは形質導入することを含
む方法。 - 【請求項29】 請求項1〜23のいずれかに記載のレトロウイルスベク
ターまたは請求項24に記載のレトロウイルス粒子または請求項25に記載の細
胞のためのデリバリー系であって、NOIまたは複数のNOIを第1の標的細胞にデリ バリーするための1または複数の非レトロウイルス発現ベクター、アデノウイル
スもしくはプラスミドまたはそれらの組み合わせと、NOIまたは複数のNOIを第2 の標的細胞にデリバリーするためのレトロウイルスベクターとを含むデリバリー
系。 - 【請求項30】 請求項1〜29のいずれかに記載のレトロウイルスプロ
ベクター。 - 【請求項31】 所望の標的細胞内で1または複数のNOIの発現を抑制する
ための機能的イントロンの使用。 - 【請求項32】 第1のNSをレトロウイルスプロベクターの3'末端からレ トロウイルスベクターの5'末端にデリバリーするための逆転写酵素の使用。
- 【請求項33】 in vivo遺伝子デリバリーのためのハイブリッドウイル スベクター系であって、二次ウイルスベクターをコードする1または複数の一次 ウイルスベクターを含み、一次ベクターまたはベクター群が第1の標的細胞に感 染し、そのなかで二次ウイルスベクターを発現することができ、二次ベクターが
二次標的細胞の形質導入を行うことができる前記ハイブリッドウイルスベクター
系。 - 【請求項34】 一次ベクターがアデノウイルスベクターから得ることが
できるもの、あるいはそれをベースにしたものであり、及び/または二次ウイル
スベクターがレトロウイルスベクター、好ましくはレンチウイルスベクターから
得ることができるもの、あるいはそれをベースにしたものである請求項33に記
載のハイブリッドウイルスベクター系。 - 【請求項35】 レンチウイルスベクターがスプリット‐イントロン構造
を有する請求項33または34に記載のハイブリッドウイルスベクター系の使用
。 - 【請求項36】 前記レンチウイルスベクターが、スプリット‐イントロ
ン構造を含むか、またはそれをデリバリーすることができるハイブリッドウイル
スベクター系。 - 【請求項37】 レンチウイルスベクター系であって、レンチウイルスベ
クターが、スプリット‐イントロン構造を含むか、またはそれをデリバリーする
ことができる前記レンチウイルスベクター系。 - 【請求項38】 アデノウイルスベクター系であって、アデノウイルスベ
クターが、スプリット‐イントロン構造を含むか、またはそれをデリバリーする
ことができる前記アデノウイルスベクター系。 - 【請求項39】 pElsp1A、pCI-Neo、pE1RevE、pE1HORSE3.1、pE1PEGASUS
4、pCI-Rab、pE1Rabとして提示されるもののなかの1つまたは複数をベースとす るか、またはそれから得られるベクターまたはプラスミド。 - 【請求項40】 in vivo遺伝子デリバリーのためのハイブリッドウイル スベクター系であって、二次ウイルスベクターをコードする一次ウイルスベクタ
ーを含み、一次ベクターは第1の標的細胞に感染し、そのなかで二次ウイルスベ クターを発現することができ、二次ベクターは二次標的細胞の形質導入を行うこ
とができ、一次ベクターはアデノウイルスベクターから得ることができるもの、
あるいはそれをベースにしたものであり、二次ウイルスベクターはレトロウイル
スベクター、好ましくはレンチウイルスベクターから得ることができるもの、あ
るいはそれをベースにしたものである前記ハイブリッドウイルスベクター系。 - 【請求項41】 in vivo遺伝子デリバリーのためのハイブリッドウイル スベクター系であって、二次ウイルスベクターをコードする一次ウイルスベクタ
ーを含み、一次ベクターは第1の標的細胞に感染し、そのなかで二次ウイルスベ クターを発現することができ、二次ベクターは二次標的細胞の形質導入を行うこ
とができ、一次ベクターはアデノウイルスベクターから得ることができるもの、
あるいはそれをベースにしたものであり、二次ウイルスベクターはレトロウイル
スベクター、好ましくはレンチウイルスベクターから得ることができるもの、あ
るいはそれをベースにしたものであり、前記ベクター系は機能的スプライス・ド
ナー部位及び機能的スプライス・アクセプター部位を含み、機能的スプライス・
ドナー部位及び機能的スプライス・アクセプター部位は目的の第1のヌクレオチ ド配列(NOI)に隣接しており、機能的スプライス・ドナー部位は機能的スプライ ス・アクセプター部位の上流にあり、レトロウイルスベクターはレトロウイルス
プロベクターに由来するものであり、レトロウイルスプロベクターは機能的スプ
ライス・ドナー部位を生成することができる第1のヌクレオチド配列(NS)と、機 能的スプライス・アクセプター部位を生成することができる第2のNSとを含み、 第1のNSは第2のNSの下流にあって、前記レトロウイルスベクターは前記レトロウ
イルスプロベクターの逆転写の結果として形成されるものである前記ハイブリッ
ドウイルスベクター系。 - 【請求項42】 本明細書に実質的に記載される、標的細胞においてNOI を差別的に発現し得るレトロウイルスベクター。
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