JP2001352995A - カロテノイド色素の製法 - Google Patents
カロテノイド色素の製法Info
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Abstract
造法において、産生するカロテノイド化合物の生成割合
を変える方法を提供する。 【解決手段】 培養中の培養液の溶存酸素濃度を制御す
ることにより、アスタキサンチン,アドニキサンチン,
β−カロテン,エキネノン,カンタキサンチン,ゼアキ
サンチン,β−クリプトキサンチン,3−ヒドロキシエ
キネノン,アステロイデノンおよびアドニルビン等のカ
ロテノイド化合物の生成割合を変える。
Description
の微生物学的製造法に関する。詳細には,アスタキサン
チン,アドニキサンチン,β−カロテン,エキネノン,
カンタキサンチン,ゼアキサンチン,β−クリプトキサ
ンチン,3−ヒドロキシエキネノン,アステロイデノ
ン,アドニルビンなどのカロテノイド化合物を製造する
方法に関するものである。
料添加物,食品添加物,医薬品等として有用である。ア
スタキサンチンは養殖魚であるサケ,マス,マダイ等の
体色改善剤のごとき飼料添加物として,また安全な天然
食品添加物として産業上の価値が高い。またアドニキサ
ンチンは工業的製造法が確立されることによりアスタキ
サンチンと同様に飼料添加物,食品添加物,医薬品等と
しての用途が期待される。さらにβ−カロテンは飼料添
加物,食品添加物,医薬品等として使用され,カンタキ
サンチンは,食品添加物,飼料添加物,化粧品等として
使用され,ゼアキサンチンは食品添加物,飼料添加物等
として使用されている。さらにエキネノン,β−クリプ
トキサンチン,3−ヒドロキシエキネノン,アステロイ
デノン,アドニルビン等も飼料添加物,食品添加物等と
しての使用が期待される。これらカロテノイド化合物の
製造方法としては,化学合成法,微生物による産生方
法,天然物からの抽出法などが知られており,すでにア
スタキサンチン,カンタキサンチン,β−カロテンにつ
いては化学合成法により得られたものが市販されてい
る。
の魚類およびエビ,カニ,ザリガニ,オキアミ等の甲殻
類等に存在しており,これらより抽出することが可能で
ある。また、アスタキサンチンを生産する微生物の例と
しては、赤色酵母ファフィア・ロドチーマ(Phaff
ia rhodozyma),ブレビバクテリウム(B
revibacterium)属に属する細菌(Jou
rnal of Genaral and Appli
ed Microbiology,15,127,19
69),新属の細菌E−396株(FERM BP−4
283)(特開平7−79796号公報,特開平8−9
964号公報,米国特許第5,607,839号明細
書,米国特許第5,858,761号明細書),細菌ア
グロバクテリウム・オウランティアクム(Agroba
cterium aurantiacum)(特開平7
−184688号公報),緑藻類のヘマトコッカス・プ
ルビアリス(Haematococcus pluvi
alis)(Phytochemistry,20,2
561,1981),が知られている。また化学合成法
ではβ−カロテンの変換による方法(Pure App
l.Chem.,57,741,1985)およびC1
5ホスホニウム塩から合成する方法(Helv.Chi
m.Acta,64,2436,1981)が知られて
いる。
otanical Gazette, 112,228
−232,1950),魚類および甲殻類などに存在し
ていることが知られている(水産動物のカロテノイド,
日本水産学会誌,1978)。また、カンタキサンチン
を生産する微生物の例としては、ブレビバクテリウム属
に属する微生物(Applied and Envir
onmental Microbioligy,55
(10),2505,1989),ロドコッカス属に属
する微生物(特開平2−138996号公報),新属の
細菌E−396株(FERM BP−4283)(特開
平7−79796号公報,特開平8−9964号公報,
米国特許第5,607,839号明細書,米国特許第
5,858,761号明細書),細菌アグロバクテリウ
ム・オウランティアクム(Agrobacterium
aurantiacum)(Biosci. Bio
technol. Biochem.58,1842,
1994)が知られている。また化学合成法ではβ−カ
ロテンの変換による方法(J.Amer.Chem.S
oc.,78,1427,1956)および新規な3−
オキソ−C15ホスホニウム塩から合成する方法(Pu
re Appl.Chem.,51,875,197
9)が知られている。
存在していることが知られているが,化学合成法による
製造は困難と思われ,工業的製造法は知られていない。
アドニキサンチンを生産する微生物の例としては、フラ
ボバクテリウム属(Flavobacterium),
アルカリゲネス属(Alcaligenes),シュー
ドモナス属(Pseudomonas),アルテロモナ
ス属(Alteromonas),ヒポモナス属(Hy
phomonas)およびカリオファノン属(Cary
ophanon)に属する微生物(特開平6−1656
84号公報),新属の細菌E−396株(FERM B
P−4283)(特開平7−79796号公報,特開平
8−9964号公報,米国特許第5,607,839号
明細書,米国特許第5,858,761号明細書),細
菌アグロバクテリウム・オウランティアクム(Agro
bacterium aurantiacum)(Bi
osci.Biotechnol.Biochem.5
8,1842,1994)が知られている。
からの合成(Pure Appl.Chem.,63
(1), 45, 1979),ニンジン,サツマイ
モ,カボチャ等緑黄色野菜からの抽出(天然着色料ハン
ドブック,光琳(1979),天然着色料ハンドブック
編集委員会編)が知られている。β−カロテンを生産す
る微生物の例としては,(J.Appl.Bacter
iol.,70,181,1991),新属の細菌E−
396株(FERM BP−4283)(特開平7−7
9796号公報,特開平8−9964号公報,米国特許
第5,607,839号明細書,米国特許第5,85
8,761号明細書),細菌アグロバクテリウム・オウ
ランティアクム(Agrobacterium aur
antiacum)(FEMS Microbiolo
gy Letters 128,139,1995)が
知られている。
類,マダイ等の魚類の内臓,ウニ類,イセエビ等の甲殻
類の内臓等,天然物から抽出されている。また,エキネ
ノンを生産する微生物の例としては,新属の細菌E−3
96株(FERM BP−4283)(特開平7−79
796号公報,特開平8−9 964号公報,米国特許
第5,607,839号明細書,米国特許第5,85
8,761号明細書),アグロバクテリウム・オウラン
ティアクム(Agrobacterium auran
tiacum)(FEMS Microbiology
Letters128,139,1995)が知られ
ている。
ソホロンの不斉還元により得た光学活性なヒドロキシケ
トンを原料として用いる化学合成法(Pure App
l.Chem.,63(1),45,1991), ト
ウモロコシの種子から抽出する方法(生体色素,197
4,朝倉書店)が知られている。 ゼアキサンチンを生
産する微生物の例としては,フラボバクテリウム属細菌
を用いる方法(Carotenoids, in Mi
crobial Technology, 2nd e
dn, Vol.1, 529−544,New Yo
rk:Academic Press),新属の細菌E
−396株(FERM BP−4283)(特開平7−
79796号公報,特開平8−9964号公報,米国特
許第5,607,839号明細書,米国特許第5,85
8,761号明細書),細菌アグロバクテリウム・オウ
ランティアクム(Agrobacterium aur
antiacum)(FEMS Microbiolo
gy Letters 128,139,1995)が
知られている。
化学合成法は,安全性が確証されてない,微生物による
産生では生産性が低い,天然物からの抽出ではコストが
かかりすぎる等の問題点があった。例えば,アスタキサ
ンチンの製造においては,天然物のオキアミやザリガニ
からの抽出による製造では,含有量が極めて少なく,し
かも抽出が困難なことからコストが高い。赤色酵母ファ
フィア・ロドチーマ(Phaffia r hodozy
ma)は増殖速度が小さい,生産量が少ない,強固な細
胞壁を持つためにアスタキサンチンの抽出が困難である
などの問題があるので,工業化には問題点が多い。緑藻
類ヘマトコッカス・プルビアリス(Haematoco
ccus pluvialis)も増殖速度が極めて遅
い,雑菌汚染を起こしやすい,抽出が困難などの欠点を
有するので、この方法の工業化には問題点が多い。
−4283)およびA−581−1株(FERM BP
−4671)(特開平7−79796公報,特開平8−
9964公報,米国特許第5,607,839号明細
書,米国特許第5,858,761号明細書)は、生産
性が高く,増殖速度が速い,抽出が容易であるなどの利
点を有するが,それらは複数のカロテノイド化合物,す
なわちアスタキサンチン,アドニキサンチン,β−カロ
テン,エキネノン,カンタキサンチン,ゼアキサンチ
ン,β−クリプトキサンチン,3−ヒドロキシエキネノ
ン,アステロイデノンおよびアドニルビンを同時に生成
するので,それらの生成割合が培養毎に変動し,安定し
た比率で色素を生成させることが困難であった。このた
め,生成した色素混合物を動物飼料等に色調改善剤とし
て使用する際の色調効果にばらつきを生じ,商業的生産
に対する障害となっていた。従って一定の比率のカロテ
ノイド化合物を安定して生産する製造方法が求められて
いた。
ものであり,その目的は,カロテノイド化合物の生成割
合を制御すると共に、その特定の比率のカロテノイド化
合物を安定して生産する製造方法を提供することにあ
る。
題を解決すべく種々検討した結果,カロテノイドを産生
する微生物の培養において培養中の培養液の溶存酸素を
適当な濃度に制御することにより,複数のカロテノイド
化合物の生成比率を制御すると共に、その特定の比率の
カロテノイド化合物を安定に生産することが可能である
ことを見いだし,本発明に到達した。
する。本発明の方法においてはカロテノイド化合物を産
生する微生物が用いられる。このような微生物として
は,たとえばカロテノイドを産生する細菌,酵母,かび
などが挙げられる。細菌としては16SリボソームRN
Aに対応するDNAの塩基配列が配列番号1記載の塩基
配列と98%以上の相同性を有する細菌が挙げられる。
具体的には,E−396株(FERM BP−428
3)およびA−581−1株(FRRM BP−467
1),ならびにE−396株あるいはA−581−1株
を変異改良することで得られる各種変異株およびこれら
2株の近縁種を挙げることができる。配列番号1のDN
Aの塩基配列は,E−396株のリボソームRNAに対
応するものであり,また配列番号2のDNAの塩基配列
は、A−581−1株のリボソームRNAに対応するも
のである。
同性に基づいた微生物の分類は近年,微生物の分類の手
段として主流になりつつあるが,これは、従来の運動
性,栄養要求性,糖の資化性などに基づく分類では,自
然突然変異による形質の変化等により誤った同定をされ
る場合もあるという問題点があったためである。16S
リボソームRNAの塩基配列の相同性に基づいた分類で
は,極めて遺伝的に安定な16S リボソームRNAの
塩基配列に基づくため,信頼度が格段に向上する。E−
396株とA−581−1株の16S リボソームRN
Aの塩基配列の相同性は99.4%であり,極めて近縁
な株であることが判明した。よって,これらの菌株はカ
ロテノイドを生産する細菌として一つのグループを形成
している。E−396株およびA−581−1株ならび
に本発明の培養条件によって効果を発揮する菌株は,E
−396株あるいはA−581−1株の変異株および近
縁種としてE−396株の16S リボゾームRNAの
塩基配列と98%以上の相同性を有する微生物として定
義される。
げられるE−396株について説明する。この株は,本
発明者らが新しく単離したものであり,工業技術院生命
工学工業技術研究所に平成5年4月27日にFERM
BP−4283として寄託された。さらに具体的な他の
微生物としてはA−581−1株(FERM BP−4
671)を挙げることができる。この株は,発明者らが
新しく単離したものであり,工業技術院生命工学工業技
術研究所に平成6年5月20日にFERM BP−46
71として寄託された。
である。すなわち,生産菌の生育に必要で,カロテノイ
ド色素を生成する成分を含む培地で培養を行う。培養方
法は,通常の好気培養,例えば通気撹拌培養,気泡塔培
養,流動層培養などいずれの方法でも良いが,通気撹拌
培養が好ましい。例えば,E−396株(FERM B
P−4283)は,カロテノイド化合物としてβ−カロ
テン,エキネノン,β−クリプトキサンチン,3−ヒド
ロキシエキネノン,アステロイデノン,カンタキサンチ
ン,ゼアキサンチン,アドニルビン,アドニキサンチ
ン,アスタキサンチンを同時に生成する。
酵素および水酸化酵素によりそれぞれ両端の6員環が修
飾され最終的にはアスタキサンチンが生成すると推定さ
れている。しかしながら培養時間を長くしても,全てが
アスタキサンチンに変換されることはなく,それらの化
合物が培養終了まで存在する現象が認められていた。ま
たその生成割合は培養毎に一定ではなく,例えば,生合
成で上流と思われるβ−カロテン,エキネノン,カンタ
キサンチン,アドニルビン,3−ヒドロキシエキネノン
の生成割合が多い場合,アスタキサンチンの生成割合が
多い場合,アドニキサンチンの生成割合が多い場合など
様々であった。
等に色調改善剤として使用する際の色調効果にばらつき
を生じ,商品として販売できないことから商業生産のた
めの障害となっていた。そこで種々検討を重ねた結果,
生成色素の生成割合に影響を与える因子は,培養液中の
溶存酸素であることを見いだした。撹拌回転速度を一定
にした培養では,培養液中の溶存酸素濃度は微生物の微
妙な酸素消費速度の差に左右され,その結果それぞれの
色素の生成割合が培養ロット毎にばらついていたことが
判明した。この問題を解決するために培養中の培養液中
の溶存酸素を制御することにより,生成するカロテノイ
ド化合物すなわちβ−カロテン,エキネノン,3−ヒド
ロキシエキネノン,アステロイデノン,カンタキサンチ
ン,ゼアキサンチン,アドニルビン,アドニキサンチ
ン,アスタキサンチンの生成比率を制御できる。
と,生合成で上流と思われるβ−カロテン,エキネノ
ン,カンタキサンチン,3−ヒドロキシエキネノンおよ
びアドニルビンの生成割合を高めることができ,培養液
中の溶存酸素濃度を中程度に制御すると,アスタキサン
チンの生成割合を高めることができ,また培養液中の溶
存酸素濃度を高く制御することによりアドニキサンチン
の生成割合を高めることができる。
めるためには培養液中の溶存酸素濃度を飽和酸素濃度の
15〜40%,好ましくは20〜30%にコントロール
する。溶存酸素濃度が飽和酸素濃度の20〜30%の条
件下,アスタキサンチンの生成割合を40%以上に高め
ることができる。
%、好ましくは0〜10%の範囲では,β−カロテン,
エキネノン,カンタキサンチン,3−ヒドロキシエキネ
ノンおよびアドニルビンが多く蓄積しアスタキサンチン
の生成が抑制される。この条件下,β−カロテン,エキ
ネノン,カンタキサンチン,3−ヒドロキシエキネノン
およびアドニルビンの生成量の合計は60%以上であ
り,アスタキサンチンの生成割合を40%以下にするこ
とができる。
るためには培養液中の溶存酸素濃度を飽和酸素濃度の3
5〜100%、好ましくは40〜100%にコントロー
ルする。この条件によりアドニキサンチンの生成割合を
35%以上にすることができる。また培養フェーズにお
いては,対数増殖期において溶存酸素濃度は重要であ
り,例えばこの時期に溶存酸素濃度を高くすると,その
後に低い条件に変えてもアドニキサンチンの生成割合は
高くなる。
る方法,例えば溶存酸素電極により測定した培養液中の
溶存酸素濃度値に応じて培養槽内に供給する空気あるい
は酸素の流量を自動的に調節する方法あるいは溶存酸素
電極により測定した培養液中の溶存酸素濃度値に応じて
撹拌羽根の回転速度を自動的に調節する方法等いずれの
方法も用いることができる。
明するが,本発明はこれらの実施例のみに限定されるも
のではない。 〔実施例1〕表1の組成からなる培地100mlを50
0ml容量の三角フラスコに入れ121℃,15分間蒸
気殺菌した。これにE−396株(FERM BP−4
283)を植菌し28℃で1日間,150rpmの回転
振とう培養を行った。次ぎに,この培養液600ml分
を表2の組成からなる培地が20L入った30L容量の
通気撹拌培養槽に植菌し28℃,1.0vvmの好気培養
を90時間行った。培養途中のpHは7.2に20%N
aOHで連続的に制御した。シュークロースは生育とと
もに消費されるので培養開始1日目および2日目にそれ
ぞれ300gずつ添加した。培養液中の溶存酸素は,溶
存酸素電極と撹拌羽根のモーターとを連動させ,溶存酸
素の値に応じて回転速度を変化させる方法により自動制
御した。また最低回転速度は80rpmに設定した。
飽和濃度の比率で,それぞれ5,15,20,25,3
0,35%に設定した。各条件における生成したカロテ
ノイド(各化合物の記号を表3に示す)の生成濃度と比
率は、表4および表5に示すとおりであった。
100mlを500ml容量の三角フラスコに入れ12
1℃,15分間蒸気殺菌した。これにE−396株(F
ERM BP−4283)を植菌し28℃で1日間,1
50rpmの回転振とう培養を行った。次ぎにこの培養
液100ml分を上記表2の組成からなる培地が2L入
った5L容量の通気撹拌培養槽に植菌し28℃,1.0
vvmの好気培養を90時間行った。培養途中のpHは
7.2に20%NaOHで連続的に制御した。シューク
ロースは生育とともに消費されるので培養開始1日目お
よび2日目にそれぞれ30gずつ添加した。培養液中の
溶存酸素は,溶存酸素電極と撹拌羽根のモーターとを連
動させ,溶存酸素の値に応じて回転速度を変化させる方
法により自動制御した。また最低回転速度は100rp
mに設定した。溶存酸素濃度はその培地における酸素の
飽和濃度の比率で,25%に設定した。
なわち撹拌回転速度を450rpm一定での条件での培養
も行った。各条件における生成したカロテノイドの生成
濃度は,表6に示すとおりであった。
P−4283)をNTG(N−methyl−N’−n
itoro−N−nitrosoguanidine)
で変異処理し,赤色の色調が濃いコロニーを選択した。
これらの株の培養液中のカロテノイド化合物を分析し,
アスタキサンチンの生産性が向上した変異株Y−107
1株を選択した。表1の組成からなる培地100mlを
500ml容量の三角フラスコに入れ121℃,15分
間蒸気殺菌した。これにY−1071株を植菌し28℃
で1日間,150rpmの回転振とう培養を行った。
の組成からなる培地が2L入った5L容量の通気撹拌培
養槽に植菌し28℃,1.0vvmの好気培養を90時間
行った。培養途中のpHは7.2に20%NaOHで連
続的に制御した。シュークロースは生育とともに消費さ
れるので培養開始1日目および2日目にそれぞれ30g
ずつ添加した。培養液中の溶存酸素は,溶存酸素電極と
撹拌羽根のモーターとを連動させ,溶存酸素の値に応じ
て回転速度を変化させる方法により自動制御した。また
最低回転速度は100rpmに設定した。溶存酸素濃度
はその培地における酸素の飽和濃度の比率で,それぞれ
5,15,20,25,30,35%に設定した。各条
件における生成したカロテノイドの生成濃度と比率は,
表7および表8に示すとおりであった。
100mlを500ml容量の三角フラスコに入れ12
1℃,15分間蒸気殺菌した。これにA−581−1株
(FERM BP−4671)を植菌し28℃で1日
間,150rpmの回転振とう培養を行った。次ぎにこ
の培養液100ml分を上記表2の組成からなる培地が
2L入った5L容量の通気撹拌培養槽に植菌し28℃,
1.0vvmの好気培養を90時間行った。培養途中のp
Hは7.2に20%NaOHで連続的に制御した。シュ
ークロースは生育とともに消費されるので培養開始1日
目および2日目にそれぞれ30gずつ添加した。培養液
中の溶存酸素は,溶存酸素電極と撹拌羽根のモーターと
を連動させ,溶存酸素の値に応じて回転速度を変化させ
る方法により自動制御した。また最低回転速度は100
rpmに設定した。溶存酸素濃度はその培地における酸
素の飽和濃度の比率で,それぞれ5,15,20,2
5,30,35%に設定した。各条件における生成した
カロテノイドの生成濃度と比率は,表9および表10に
示すとおりであった。
的製造法において、培養中の培養液の溶存酸素濃度を制
御することにより、産生するカロテノイド化合物の生成
割合を変化させることができる。
Claims (11)
- 【請求項1】 カロテノイド化合物を複数種類産生する
微生物を培養してカロテノイド化合物を製造する方法に
おいて,培養中の培養液の溶存酸素濃度を制御すること
により,産生するカロテノイド化合物の生成割合を一定
にすることを特徴とする方法。 - 【請求項2】 微生物が16SリボソームRNAに対応
するDNAの塩基配列が配列番号1記載の塩基配列と9
8%以上の相同性を有する細菌である請求項1に記載の
方法。 - 【請求項3】 微生物がE−396株(FERM BP
−4283)およびその変異株ならびにA−581−1
株(FERM BP−4671)およびその変異株から
選ばれる請求項1に記載の方法。 - 【請求項4】 カロテノイド化合物がアスタキサンチ
ン,アドニキサンチン,β−カロテン,エキネノン,カ
ンタキサンチン,ゼアキサンチン,β−クリプトキサン
チン,3−ヒドロキシエキネノン,アステロイデノンお
よびアドニルビンより選ばれる1種以上である請求項1
に記載の方法。 - 【請求項5】 カロテノイド化合物を複数種類産生する
微生物を培養してカロテノイド化合物を製造する方法に
おいて,培養中の培養液の溶存酸素濃度を制御すること
により,産生するカロテノイド化合物の生成割合を変え
ることを特徴とする方法。 - 【請求項6】 微生物が16SリボソームRNAに対応
するDNAの塩基配列が配列番号1記載の塩基配列と9
8%以上の相同性を有する細菌であることを特徴とする
請求項5に記載の方法。 - 【請求項7】 微生物がE−396株(FERM BP
−4283)およびその変異株ならびにA−581−1
株(FERM BP−4671)およびその変異株から
選ばれる請求項5に記載の方法。 - 【請求項8】 カロテノイド化合物がアスタキサンチ
ン,アドニキサンチン,β−カロテン,エキネノン,カ
ンタキサンチン,ゼアキサンチン,β−クリプトキサン
チン,3−ヒドロキシエキネノン,アステロイデノンお
よびアドニルビンより選ばれる1種以上である請求項5
に記載の方法。 - 【請求項9】 培養中の培養液中の溶存酸素濃度を飽和
濃度の40〜100%に制御することによりアドニキサ
ンチンの生成比率を高める請求項5に記載の方法。 - 【請求項10】 培養中の培養液中の溶存酸素濃度を飽
和濃度の20〜30%に制御することによりアスタキサ
ンチンの生成比率を高める請求項5に記載の方法。 - 【請求項11】 培養中の培養液中の溶存酸素濃度を飽
和濃度の0〜10%に制御することによりβ−カロテ
ン,エキネノン,カンタキサンチン,3−ヒドロキシエ
キネノンおよびアドニルビンの生成比率を高める請求項
5に記載の方法。
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