ES2624586T3 - Cultivo de células madre embrionarias humanas - Google Patents

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Abstract

Un medio de cultivo celular que comprende, en cantidades suficientes para mantener las células madre en un estado indiferenciado a través de múltiples pases del cultivo, albúmina, minerales, vitaminas, aminoácidos, glucosa, lípidos, una transferrina o un sustituto de transferrina, insulina o un sustituto de insulina y todos menos uno de los siguientes constituyentes: factor de crecimiento de fibroblastos en una concentración de 10 ng/ml a 1000 ng/ml, ácido gamma amino butírico, ácido pipecólico, TGFß y una sal de litio, estando el medio exento de células alimentadoras y sin haber estado expuesto nunca a células alimentadoras.

Description

Cultivo de células madre embrionarias humanas
Antecedentes de la invención
Las células madre se definen como células capaces de diferenciarse en otros muchos tipos de células diferenciadas. Las células madre embrionarias son células madre procedentes de embriones que son capaces de diferenciarse en la mayoría, si no todos, los tipos celulares diferenciados de un cuerpo adulto. Las células madre se describen como pluripotenciales, lo que hace referencia a su capacidad para diferenciarse en muchos tipos celulares. Un tipo de célula precursora pluripotencial de gran interés para la comunidad investigadora es la célula madre embrionaria humana, nombrada en este documento célula ES, que es una célula madre embrionaria derivada de una fuente embrionaria humana. Las células madre embrionarias humanas son de gran interés científico porque son capaces de proliferar indefinidamente en medios de cultivo y así son capaces, al menos en principio, de proporcionar células y tejidos que permiten reemplazar tejidos humanos que fallan o defectuosos. La existencia de células madre embrionarias humanas en cultivo ofrece un potencial de cantidades ilimitadas de células y tejidos humanos para emplear en una gran variedad de protocolos y programas de investigación de ayuda para la salud humana. Se prevé que en el futuro las células madre embrionarias humanas proliferarán y se orientarán a diferenciarse en linajes específicos de forma que se desarrollen células o tejidos diferenciados que puedan trasplantarse en cuerpos humanos con fines terapéuticos.
Se han descrito las técnicas básicas para crear y cultivar células madre embrionarias humanas. Las técnicas descritas previamente funcionan, pero muchos de los procedimientos usados actualmente para cultivar células madre embrionarias humanas tienen limitaciones e inconvenientes. Una de las limitaciones presenta una objeción especial. La mayoría de las líneas de células madre embrionarias humanas existentes se han expuesto, en mayor o menor grado, directamente a células de ratón o a un medio en el que se han cultivado previamente células de ratón. Por parte de la prensa, se prestó gran atención al hecho de que se encontrasen algunas células ES humanas de líneas celulares existentes que exhiben el residuo siálico Neu5Gc, residuo que no es sintetizado normalmente por células humanas. Las técnicas originales para la generación y el cultivo de células madre embrionarias humanas requerían el uso de células alimentadoras de fibroblastos embrionarios de ratón (MEF, del inglés Mouse Embryonic Fibroblast) como una capa alimentadora sobre la que las células madre embrionarias humanas podían ser cultivadas. Las células alimentadoras de fibroblastos actúan, a través de un mecanismo que no se comprende completamente todavía, de forma que fomentan que las células madre permanezcan en un estado indiferenciado. Posteriormente, se descubrió que este mismo efecto podía conseguirse si las células madre se exponían a “medios condicionados”. Un medio condicionado no es nada más que un medio de cultivo de células madre sobre el cual las células alimentadoras, como las MEFs, habían sido cultivadas previamente. Ya sea porque las células alimentadoras proporcionaban algún factor al medio o porque eliminaban algún factor del medio, el resultado es que el medio condicionado puede utilizarse para cultivar células madre sin diferenciación. Cualquier condición del cultivo, el crecimiento directo de células ES humanas sobre células alimentadoras murinas, o por el uso de medios condicionados, da origen a una preocupación de que uno o más agentes, como un virus, podrían transmitirse desde las células de ratón a las células ES humanas. Si uno de los objetivos de los cultivos de células madre embrionarias humanas es crear tejidos que en última instancia puedan transplantarse a un cuerpo humano, es sumamente deseable que las células madre nunca hayan sido expuestas a células de otras especies o a medios que hayan sido utilizados para cultivar células de otras especies. En consecuencia, definir la condición de un cultivo que permitirá la proliferación y el cultivo de células madre embrionarias humanas sin la capa alimentadora de fibroblastos, es de gran interés en el desarrollo continuo de técnicas para el cultivo a largo plazo de células madre embrionarias humanas.
Varias formulaciones de medios permiten que las células ES humanas permanezcan indiferenciadas durante cierto tiempo, pero este estado falla a menudo en el automantenimiento. En particular, el solicitante ha definido el crecimiento de células ES humanas desde un estado de siembra inicial en un recipiente de cultivo hasta la confluencia en el mismo recipiente de cultivo como un “pase”. El solicitante ha encontrado varias formulaciones de medios que permiten el cultivo de células ES humanas durante uno o dos pases sin una diferenciación estricta, pero posteriormente las células se diferencian rápidamente durante pases sucesivos. El solicitante entiende que para que un medio permita verdaderamente la proliferación indefinida de células ES humanas sin diferenciación, en ausencia de un medio condicionado o células alimentadoras de fibroblastos, debe demostrarse que el medio puede mantener el cultivo de células ES humanas en un estado sustancialmente uniforme e indiferenciado durante al menos cinco pases. También es importante que los cultivos permanezcan relativamente homogéneos e indiferenciados durante el periodo de cultivo y conserven todas las características significativas de las células ES humanas.
Un rasgo característico de las células madre embrionarias humanas en cultivo es que si las condiciones están por debajo de las óptimas, las células tienden a diferenciarse. Es fácil inducir las células ES humanas a diferenciarse aunque existe la necesidad de mantener las células ES en un cultivo en estado indiferenciado. La mayoría de las condiciones de cultivo darán como resultado un cierto grado de diferenciación no deseada, particularmente en torno a la periferia de la colonia de células ES en crecimiento. Aunque las células ES pueden cultivarse con cierto grado de diferenciación no deseada, el objetivo es definir una condición de cultivo que permita al cultivo permanecer tan indiferenciado como sea posible, es decir, con el mínimo de células diferenciadas posible. El solicitante cree que se han utilizado estándares especialmente restrictivos para definir las condiciones que darán soporte al cultivo indefini
do de cultivos de células ES indiferenciadas.
El estado de diferenciación de un cultivo de células madre puede evaluarse a través de las características morfológicas. Las células madre indiferenciadas tienen una morfología característica, es decir, son células pequeñas y compactas con bordes celulares claramente definidos, una morfología que puede verse fácilmente mediante el examen de un cultivo de células madre con un microscopio. En cambio, las células que se han diferenciado aparecen más grandes y más difusas, con bordes poco definidos. Aunque algunas células diferenciadas pueden, y normalmente lo hacen, aparecer en el margen de las colonias de células indiferenciadas, el cultivo óptimo de células madre es aquel que prolifera en el recipiente de cultivo con solo un número mínimo de células que parezcan estar diferenciadas en la periferia del cultivo. Con experiencia se puede evaluar visualmente con gran exactitud el estado de diferenciación y la salud de los cultivos de células ES humanas.
Además, la suficiencia de un medio para soportar la derivación de nuevas líneas de células ES humanas es un criterio aún más estricto para la suficiencia de las condiciones de cultivo de la célula madre. Algunas condiciones de cultivo que dan soporte a la expansión y al crecimiento de líneas de células madre existentes, no han probado que sean suficientes para uso en la derivación de nuevas líneas de células ES humanas. Parece que la capacidad para dar soporte en la iniciación de nuevas líneas de células madre es una capacidad que no presentan todas las condiciones de cultivo de células madre. El documento WO 03/020920 describe un sistema de cultivo para una expansión rápida de las células madre embrionarias humanas. Amit et al. (Biology of Reproduction, 2004; 70: 837-845) describen el cultivo exento de capa alimentadora y suero, de células madre embrionarias humanas. El documento WO 2004/055155 describe métodos de preparación de células madre embrionarias humanas y de cultivos de células madre exentos de células alimentadoras y xenobióticos, empleando los mismos. Carpenter et al. (Developmental Dynamics, 2004; 229(2): 243-258) describen las propiedades de cuatro líneas de células madre embrionarias humanas mantenidas en un sistema de cultivo exento de células alimentadoras. Schmidt et al. (The International Journal of Developmental Biology, 2001; 45(2):421-429) describen que el litio influye en la diferenciación y en la expresión génica específica de tejido de células madre embrionarias de ratón (ES) in vitro. Aubert et al. (Nature Biotechnology, 2002; 20(12):1240-1245) describen que el escrutinio de genes funcionales en células madre embrionarias implica un antagonismo de Wnt en la diferenciación neural. Park et al. (Anatomical Science International, 2004; 79:337) describen que la activación de Wnt no estaba acompañada con un mantenimiento de la pluripotencia sino con una diferenciación de las células madre embrionarias humanas.
Breve compendio de la invención
La presente invención se resume como un medio de cultivo celular que comprende, en cantidades suficientes para mantener las células madre en un estado indiferenciado a través de múltiples pases del cultivo, albúmina, minerales, vitaminas, aminoácidos, glucosa, lípidos, una transferrina o un sustituto de transferrina, insulina o un sustituto de insulina, y todos menos uno de los siguientes constituyentes: factor de crecimiento de fibroblastos en una concentración de 10 ng/ml a 1000 ng/ml, ácido gamma amino butírico, ácido pipecólico, TGFβ y una sal de litio, estando el medio exento de células alimentadoras y sin haber estado expuesto nunca a células alimentadoras. La sal de litio es preferentemente cloruro de litio.
También se describe en esta memoria un cultivo celular in vitro de células madre embrionarias humanas cultivadas en un medio de la invención.
El medio de la presente invención permite la creación de nuevas líneas de células madre embrionarias humanas que no han sido expuestas a productos animales, células alimentadoras o medio condicionado.
Es un objeto de la descripción definir las condiciones de cultivo a largo plazo para células madre embrionarias humanas que eviten el uso de células animales, ya sean células alimentadoras o para un medio condicionado en el que se cultivan las células madre.
Es otro objeto de la descripción definir las condiciones de cultivo para células madre embrionarias humanas que son como se han definido en la manera de lo posible, evitando al mismo tiempo la exposición a células animales o proteínas animales.
Otros objetos, características y ventajas de la presente invención resultarán evidentes a partir de la siguiente memoria descriptiva.
Breve descripción de varias vistas de los dibujos
La Fig. 1 es una ilustración gráfica de algunos de los datos de los ejemplos siguientes.
La Fig. 2 es una ilustración gráfica adicional de datos de los ejemplos siguientes.
Descripción detallada de la invención
Ahora se han identificado múltiples condiciones de cultivo y medios que permiten el cultivo indefinido y la proliferación de células madre embrionarias humanas en estado indiferenciado y también en ausencia completa tanto de
células alimentadoras como de medio condicionado. Las condiciones del cultivo y los medios descritos en esta memoria están totalmente exentos de productos animales y todas las proteínas son de origen humano. El desarrollo de estos medios y condiciones de cultivo hace posible la derivación y el mantenimiento de líneas de células ES humanas en condiciones definidas y controladas, sin una exposición directa o indirecta a células animales de cualquier tipo, y también posibilita la derivación de nuevas líneas de células ES humanas que no han estado nunca expuestas a células animales o a un medio en el que se hayan cultivado células animales. El medio está exento de productos animales o proteínas. Se ha demostrado que este medio permite la proliferación de células ES indiferenciadas a través de al menos veinticinco pases, lo que es una firme evidencia de que sustentará dichos cultivos indefinidamente. El medio preferido también ha demostrado ahora ser suficiente para permitir la derivación de nuevas líneas de células ES humanas, y estas nuevas líneas han pasado a través de más de diez pases en cultivo.
En el pasado, a veces ha existido la práctica de referirse al uso de un medio condicionado como la creación de condiciones de cultivo "exentas de alimentación". Esta expresión es una denominación incorrecta, ya que todavía se requieren células alimentadoras de algún tipo para condicionar el "medio condicionado". En esta memoria se describen condiciones de cultivo que permiten el cultivo "independiente de un alimentador" de células ES humanas. Por "independiente de un alimentador" se entiende que no se necesitan células alimentadoras de ningún tipo, humanas
o animales, en ninguna parte del proceso y no son necesarias ni para el cultivo ni para condicionar el medio. Las condiciones independientes del alimentador no requieren células alimentadoras en absoluto para ningún propósito.
Un medio definido y humanizado para el cultivo y la proliferación de células ES humanas normalmente incluye sales, vitaminas, una fuente de energía tal como glucosa, minerales y aminoácidos. Para complementar el medio y proporcionar unas condiciones que permitan el crecimiento celular, inicialmente los medios de cultivo de células madre incluían suero procedente de una fuente u otra. También se ha informado previamente de que la adición de un factor de crecimiento de fibroblastos además de un aditivo de sustitución del suero, permitirá el cultivo de células ES humanas sin suero. El sustituto del suero puede ser un producto comercial disponible, vendido para ese propósito o puede ser una mezcla formulada de proteína, tal como albúmina sérica, vitaminas, minerales, una transferrina o un sustituto de transferrina, e insulina o un sustituto de la insulina. Este componente sustitutivo del suero puede complementarse también con selenio y con una mezcla de lípidos. En la presente invención se prefiere que, para cultivar células ES humanas, se utilice una mezcla de aditivo sustituto de suero definido, en lugar de un suero procedente de cualquier fuente, con el fin de evitar los aspectos de variación en los componentes del suero y utilizar medios tan definidos como sea posible. Otros factores de crecimiento que se ha encontrado que son ventajosos para añadir al medio de cultivo son GABA, ácido pipecólico, cloruro de litio y factor de crecimiento transformante beta (TGFβ), aunque el TGFβ puede no ser necesario con niveles crecientes de FGF añadidos al medio.
Para evitar la necesidad de una capa alimentadora de fibroblastos, que anteriormente se consideraba necesaria para mantener las células ES humanas en un estado indiferenciado, en esta memoria se describe que la combinación del uso de mayores concentraciones de FGF (10 a 1000 ng/ml) junto con el uso de ácido gamma amino butírico (GABA), ácido pipecólico, cloruro de litio y TGFβ, permitirá que un medio sustente el crecimiento de células madre indiferenciadas. Se ha encontrado que la combinación de estos aditivos es suficiente para mantener indefinidamente el cultivo de células ES humanas en un estado indiferenciado, sin exposición ya sea a células alimentadoras o a medios condicionados. Se ha demostrado que estos aditivos son suficientes. No obstante, no todos ellos pueden ser necesarios en todas las formulaciones de medios. Mediante una eliminación selectiva de estos aditivos, se puede determinar empíricamente si uno o más de ellos no son necesarios para conseguir este resultado para un medio dado. No obstante, queda claro que la combinación es suficiente para permitir una variedad de medios que sustenten el cultivo a largo plazo y la proliferación de células ES humanas indiferenciadas sin células alimentadoras o medio condicionado.
Estos constituyentes están sujetos a alguna variación. Por ejemplo, el LiCl se utiliza en el medio, ya que estimula la vía wnt. Las wnts por sí mismas u otros estimuladores de esta vía como la activina, podrían ser sustituidas como equivalentes de LiCl, aunque LiCl es probablemente el agente más económico para este propósito. De forma similar, se cree que el GABA interacciona con el receptor de GABA, y las publicaciones científicas incluyen la identificación de varias moléculas que son agonistas de ese mismo receptor y podrían sustituir a GABA en el medio como un equivalente. También se cree que PA también interacciona con el receptor de GABA. Aunque tanto PA como GABA resultaron ser útiles en el medio en las concentraciones usadas en esta memoria, también se prevé que uno u otro de estos constituyentes podría incrementarse dramáticamente en concentración para obviar la necesidad del otro.
El factor de crecimiento de fibroblastos en altas concentraciones (40 a 100 ng/ml) parece eliminar la necesidad de utilizar células alimentadoras. El FGF que se prefiere es FGF básico, también descrito como bFGF y FGF2, pero otros FGFs que incluyen al menos FGF4, FGF9, FGF17 y FGF18 también serán suficientes para este propósito. Otros FGFs pueden funcionar también, incluso en concentraciones mayores.
También es útil incluir en las condiciones de cultivo de células ES humanas una matriz biológica en el recipiente del cultivo. Un material de este tipo que se ha utilizado previamente es MatrigelTM, que es una membrana basal artificial procedente de células de ratón, que se suministra como un producto comercial exento de células de ratón. Sin embargo, el uso de Matrigel introduce en el cultivo un material que está mal definido y que incluye material de origen murino. En esta memoria también se describe cómo crear una matriz biológica de proteínas humanas que sustituye completamente a Matrigel. Esta matriz está compuesta por cuatro proteínas humanas: colágeno aislado a partir de
placenta humana, fibronectina aislada a partir de plasma humano, vitronectina aislada a partir de plasma humano y laminina aislada a partir de placenta humana. La combinación de estas cuatro proteínas es suficiente, pero el uso de las cuatro puede no ser necesario para impulsar el crecimiento y el cultivo de células ES humanas. El uso de una matriz de este tipo sin una entre vitronectina, fibronectina o laminina, pero incluyendo las otras tres proteínas, favorece el cultivo de células ES, con cierta pérdida de pureza en el estado de diferenciación del cultivo de células ES. El método de preparación de la matriz para el crecimiento de células ES se describe en los ejemplos siguientes.
Llegando a los aditivos del medio indicados anteriormente, se siguió la prueba metódica de más de 80 factores de crecimiento individuales. Mientras que algunos de los aditivos parecían, al menos en algunos pases, impulsar el crecimiento de células ES humanas en cultivo, muchos fracasaron en pases posteriores para mantener las células ES en un estado indiferenciado. Hemos sido capaces de identificar combinaciones de estos otros factores que dieron los resultados de los aditivos de medios descritos en los ejemplos a continuación.
La observación de que los cultivos de células madre embrionarias (ES) humanas se habían mantenido previamente en un estado indiferenciado, solo cuando se cultivaban en presencia de células alimentadoras de fibroblastos, o en un medio condicionado, ha llevado a la especulación de que los fibroblastos liberan en el medio un factor que actúa para inhibir la diferenciación de las células ES. Los datos presentados a continuación demuestran que este no es el caso. Sin embargo, independientemente del efecto que está mediado por las células alimentadoras de fibroblastos en el medio, ahora está claro que los medios descritos a continuación sustituirán ese efecto. El medio descrito a continuación está definido, no contiene células animales y permite un cultivo a largo plazo de células ES humanas indiferenciadas. Se presenta un ejemplo de un medio en el que las proteínas en el medio son todas humanas, para tener un medio “humanizado” y una matriz para impedir cualquier objeción relativa a productos subcelulares de origen animal.
También se describe a continuación la derivación de nuevas líneas de células madre embrionarias humanas utilizando este medio. Estas líneas de células ES humanas, por lo tanto, nunca han estado expuestas a células alimentadoras, a medio condicionado, a productos animales o a proteínas animales. Se ha informado previamente de que las líneas de ES humanas anteriores presentan una forma de ácido siálico (Neu5Gc) que no se encuentra de forma natural en las células humanas, ya sea en cultivo o en el cuerpo. Puesto que las líneas de ES humanas anteriores adquirieron el Neu5Gc a partir de condiciones de cultivo que incluían componentes murinos, las nuevas líneas de células ES humanas descritas en esta memoria estarán y están completamente exentas de Neu5Gc.
Ejemplos de referencia
Los constituyentes del medio TeSR1, que se utilizó en todos los cultivos que se describen en esta memoria, salvo que se indique lo contrario, se recogen en la Tabla 1 a continuación. Los experimentos preliminares del solicitante sugerían que la proliferación de células ES humanas indiferenciadas era óptima a un pH de 7,2, una osmomolaridad de 350 mOsMol, y una atmósfera con 10% de CO2/ 5% de O2. Estas condiciones se emplearon en todos los cultivos posteriores descritos en esta memoria.
Aunque un medio con todos los constituyentes anteriores es suficiente y se prefiere, no todos los componentes son necesarios para el cultivo exitoso de células ES humanas. Dependiendo de la cantidad de células diferenciadas que se esté dispuesto a tolerar, algunos de los componentes del medio se pueden omitir en un medio, particularmente si el medio se usa solo para unos pocos pases. Para investigar qué constituyentes podrían omitirse, se cultivaron células ES humanas sobre variantes del medio anterior, omitiendo diferentes componentes. Se extendieron en placas doscientas mil células y se cultivaron durante 7 días sobre los medios experimentales, dos pocillos por tratamiento. Las células se sometieron a ensayo después para estudiar la expresión del factor de transcripción Oct4, un marcador reconocido de células indiferenciadas. Los datos de ese experimento se presentan como un gráfico en la Fig. 1, en donde los números de células que expresan Oct4 en cada medio experimental se presentan como una fracción de las mismas desde el medio preferido TeSR1. Téngase en cuenta que el TGFβ parece ser el componente menos necesario, al menos en presencia de altos niveles de FGF para un cultivo a corto plazo. Obsérvese también que otros constituyentes omitidos dan lugar a porcentajes incrementados de células indiferenciadas, pero las diferencias son cuantitativas y el medio funciona sin esos componentes, al menos hasta cierto punto, para pases celulares limitados.
El medio también se ha utilizado para cultivar células ES humanas utilizando un nuevo material de matriz de origen humano. La nueva matriz se compone de las siguientes cuatro proteínas:
1.
Colágeno (aislado a partir de placenta humana) a una concentración final de 10 μg/100 μl/cm2.
2.
Fibronectina (aislada a partir de plasma humano) a una concentración final de 5 μg/100 μl/cm2.
3.
Vitronectina (aislada a partir de plasma humano) a una concentración final de 0,2 μg/100 μl/cm2.
4.
Laminina (aislada a partir de placenta humana) a una concentración final de 5 μg/100 μl/cm2.
Para ensamblar esta matriz, el colágeno se desnaturaliza con GuHCl 6 M (guanidina HCl), se filtra a través de un filtro de 0,45 micrómetros y se congela en partes alícuotas. Después de descongelar, el colágeno desnaturalizado se
diluyó en un PBS exento de Ca y Mg para alcanzar la concentración final apropiada y se extendió en placas. Las placas recubiertas se incubaron a temperatura ambiente durante no menos de 1 hora, antes de que los componentes adicionales de la matriz se extendieran en placas. Después de esta incubación inicial, componentes adicionales de la matriz (Fibronectina, Vitronectina y Laminina) se diluyeron en un PBS exento de Ca y Mg para alcanzar la concentración final apropiada y se extendieron en placas. Las placas recubiertas se incubaron a temperatura ambiente durante no menos de 1 hora antes de extender en placas las células ES humanas.
Usando el nuevo material de la matriz, células ES humanas de líneas que existían previamente se han cultivado durante un mínimo de 10 pases, a la vez que permanecían indiferenciadas y proliferaban.
Para someter a ensayo la estricta necesidad de los componentes de la matriz humanizada, se formularon variaciones de la matriz, omitiendo uno o varios componentes. Los datos de ese experimento se presentan en la Fig. 2. Las letras iniciales para cada condición experimental representan las proteínas en la matriz (C-colágeno, F-fibronectina, V-vitronectina y L-laminina). Obsérvese que las membranas CFV, CVL y CFL funcionan bien y mantienen las células ES en un estado indiferenciado, pero simplemente no son tan propicias para el crecimiento de cultivos celulares como la condición de la matriz CVFL.
Este medio también ha demostrado ser capaz de impulsar el inicio de nuevas líneas de células madre embrionarias humanas. El proceso de derivación para nuevas líneas puede ser una prueba difícil para las formulaciones de un medio, pero el uso del medio definido permite crear nuevas líneas de células madre embrionarias humanas que no han estado expuestas a proteínas o a matrices animales y nunca han estado expuestas a células alimentadoras o a un medio en el que se habían cultivado células alimentadoras. Se cree que esto es un logro novedoso.
Este trabajo se llevó a cabo solo después de obtener la aprobación de la junta de revisión institucional y el consentimiento informado de los donantes. Se donaron embriones humanos congelados que fueron creados para protocolos humanos de fertilización in vitro, pero que excedieron las necesidades clínicas. Los embriones se descongelaron y se cultivaron hasta la etapa de blastocisto, utilizando un sistema de cultivo de embriones secuencial, comercialmente disponible (serie Vitrolife-GIII). Después de la eliminación de la zona pelúcida, la masa celular interna (ICM) de los blastocistos humanos se aisló mediante inmunocirugía (Solter y Knowles, 1975, Proc. Natl. Acad. Sci. USA, 72:5099-5102) o como soportes completos cultivados (Evans y Kaufman, 1981, Nature, 292154-156) y se extendieron en placas de cultivo de 4 pocillos sobre el medio TeSR1 definido, con la matriz humanizada definida como se ha descrito anteriormente (CVFL). Después de 48 horas iniciales de cultivo, el medio de cultivo TeSR1 se reemplazó diariamente. Después de 14 a 21 días, se aislaron mecánicamente grupos de células y se volvieron a sembrar en placas con CVFL de nuevo aporte. El aislamiento mecánico continuó durante los 2 a 3 pases siguientes, después de lo cual se realizaron pases en las colonias utilizando la enzima dispasa. Se confirmó que las nuevas colonias eran nuevas líneas de células madre embrionarias humanas.
Utilizando el medio TeSR1 sobre los cuatro componentes de la matriz humana, identificados anteriormente, se derivaron dos nuevas líneas de células ES humanas a partir de 5 blastocistos cultivados. En el momento de escribir este documento, ambas líneas de células ES humanas han estado continuamente en cultivo durante 6 meses a través de pases sucesivos. Las líneas son estables y morfológicamente similares a las anteriores líneas de células madre. Análisis con FACS y RT-PCR, y transferencia Western, demostraron que estas células expresan una serie de marcadores característicos de las células ES humanas. Los cuerpos embrionarios obtenidos a partir de estas líneas celulares expresaban marcadores de las tres capas germinales, y ambas líneas celulares formaban teratomas cuando se inyectaban en ratones SCID-beige. Después de 4 meses en cultivo, una línea celular era XXY (síndrome de Klinefelter) y la otra era cariotípicamente normal. El síndrome de Klinefelter es una de las anomalías cromosómicas humanas más comunes, lo que sugiere que esta anomalía puede haber estado presente en el propio embrión, en lugar de un artefacto introducido por el proceso de iniciar el cultivo de las células madre.
TABLA 1 Formulación completa del medio TeSR1
SALES INORGÁNICAS
mM AMINOÁCIDOS mM
Cloruro cálcico ( Anhidro)
0, 8232 L-Alanina 0,1392
HEPES
11,76 Clorhidrato de L-Arginina 0,5488
Cloruro magnésico ( Anhidro) Sulfato magnésico (MgSO4)
0,2352 0,319088 L-Asparagina-H2O Ácido L-aspártico 0,1392 0,1392
Cloruro potásico (KCl)
3,26144 L-Cisteína-HCl-H2O 0,0784
Bicarbonato sódico (NaHCO3) Cloruro sódico (NaCl)
11,2112 94,55824 L-Cistina 2HCl Ácido L-glutámico 0,0784 0,1392
Fosfato sódico, dibásico (Anhidro)
0,392 L-Glutamina 2,96
Fosfato sódico, monobásico
0,355152 Glicina 0,296
(NaH2PO4-H2O)
L-Histidina-HCl-H2O
0,1176
MINERALES TRAZA
L-Isoleucina 0,326144
Nitrato férrico (Fe(NO3)3-9H2O)
0,00009408 L-Leucina 0,353584
Sulfato férrico (FeSO4-7H2O)
0,001176 Clorhidrato de L-Lisina 0,391216
Sulfato de cobre (CuSO4-5H2O)
4,0768E-06 L-Metionina 0,090944
Sulfato de zinc (ZnSO4-7H2O)
0,001176 L-Fenilalanina 0,16856
Metavanadato sódico NH4VO3
0,000056 L-Prolina 0,2176
Sulfato de manganeso Mn SO4 H2O
1,00592E-05 L-Serina 0,296
Molibdato amónico
1,00404E-05 L-Treonina 0,352016
NiSO4 6H2O
4,94861E-06 L-Triptófano 0,0346528
Metasilicato sódico Na2SiO3 9H2O
0,004926108 L-Tirosina 2Na 2H2O 0,167776
SnCl2
5,32544E-06 L-Valina 0,354368
CdCl2
6,21931E-05
CrCl3 AgNO3
9,41176E-06 5,00293E-06 VITAMINAS Ácido ascórbico 0,375
AlCl3 6H2O
2,4855E-05 Biotina 1,12112E-05
Ba(C2H3O2)2
4,99217E-05 Cloruro de colina 0,0502544
CoCl2 6H2O GeO2
5,0021E-05 2,5337E-05 Pantotenato D-calcio Ácido fólico 0,0036064 0,004704
KBr
5,04202E-06 i-Inositol 0,05488
KI
5,12048E-06 Niacinamida 0,012936
NaF
0,000500119 Clorhidrato de piridoxina 0,0076048
RbCl
5,00414E-05 Riboflavina 0,0004704
ZrOCl2 8H2O
9,03834E-05 Clorhidrato de tiamina 0,02460217
Vitamina B12
0,000392
FACTORES DE CRECIMIENTO
GABA Ácido pipecólico
0,979 0,000984 SUSTRATOS ENERGÉTICOS D-Glucosa 13,72784
bFGF
5,80E-06 Piruvato sódico 0,392
LiCl TGF beta 1
0,979 2,35E-08 PROTEÍNAS
LÍPIDOS Ácido linoléico Ácido lipoicoÁcido araquidónico
0,0070976 0,00039984 0,001312 Insulina humana Holotransferrina humana Albúmina sérica humana 0,0034438 0,14 199,7
Colesterol
0,0113798 OTROS COMPONENTES
Acetato de DL-alfa tocoferol Ácido linolénico Ácido mirístico Ácido oleico Ácido palmitoleicoÁcido esteárico
0,02962 0,007184 0,008758 0,00708 0,007862 0,00703 Glutatión (reducido) Hipoxantina Na Rojo Fenol Putrescina-2HCl Timidina 2-mercaptoetanol 0,00592996 0,01176 0,0159936 0,000394352 0,001176 0,1
Selenio
0,000177304
Pluronic F-68
0,238
Tween 80
0,3358

Claims (4)

  1. REIVINDICACIONES
    1. Un medio de cultivo celular que comprende, en cantidades suficientes para mantener las células madre en un estado indiferenciado a través de múltiples pases del cultivo, albúmina, minerales, vitaminas, aminoácidos, glucosa, lípidos, una transferrina o un sustituto de transferrina, insulina o un sustituto de insulina y todos menos uno de los
    5 siguientes constituyentes: factor de crecimiento de fibroblastos en una concentración de 10 ng/ml a 1000 ng/ml, ácido gamma amino butírico, ácido pipecólico, TGFβ y una sal de litio, estando el medio exento de células alimentadoras y sin haber estado expuesto nunca a células alimentadoras.
  2. 2. El medio según la reivindicación 1, en el que la sal de litio es cloruro de litio.
  3. 3. El medio según la reivindicación 1 o 2, que comprende el factor de crecimiento de fibroblastos en una concentra10 ción de 10 ng/ml a 1000 ng/ml, ácido gamma amino butírico, ácido pipecólico y una sal de litio.
  4. 4. El medio según una cualquiera de las reivindicaciones 1 a 3, en donde el medio incluye el factor de crecimiento de fibroblastos en una concentración de 40 ng/ml a 100 ng/ml.
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Families Citing this family (113)

* Cited by examiner, † Cited by third party
Publication number Priority date Publication date Assignee Title
ES2708384T3 (es) * 2004-09-08 2019-04-09 Wisconsin Alumni Res Found Cultivo de células madre embrionarias humanas
CN101052712A (zh) * 2004-09-08 2007-10-10 威斯康星校友研究基金会 培养人胚胎干细胞
US8017395B2 (en) 2004-12-17 2011-09-13 Lifescan, Inc. Seeding cells on porous supports
US9074189B2 (en) 2005-06-08 2015-07-07 Janssen Biotech, Inc. Cellular therapy for ocular degeneration
AU2006301549B2 (en) * 2005-10-07 2013-02-14 Cellartis Ab A method for obtaining a xeno-free hBS cell line
US8741643B2 (en) 2006-04-28 2014-06-03 Lifescan, Inc. Differentiation of pluripotent stem cells to definitive endoderm lineage
GB0622394D0 (en) * 2006-11-09 2006-12-20 Univ Cambridge Tech Differentiation of pluripotent cells
JP5419279B2 (ja) * 2007-01-17 2014-02-19 ウィスコンシン アラムニ リサーチ ファンデーション 改良された幹細胞の培養
FI20075417A0 (fi) * 2007-06-05 2007-06-05 Marjo-Riitta Suuronen Koostumuksia ja menetelmiä alkion kantasolujen kasvatukseen
AT505008B1 (de) 2007-06-06 2008-10-15 Angewandte Biotechnologie Gmbh Verfahren zum kultivieren von sehnenzellen aus nicht embryonalen pluripotenten zellen mesenchymaler herkunft
US9080145B2 (en) 2007-07-01 2015-07-14 Lifescan Corporation Single pluripotent stem cell culture
BRPI0814894A2 (pt) 2007-07-31 2014-10-21 Lifescan Inc Diferenciação de células-tronco embrionárias de ser humano.
CN101878298B (zh) 2007-11-27 2017-08-15 生命扫描有限公司 人胚胎干细胞的分化
CA2715878C (en) 2008-02-21 2017-06-13 Centocor Ortho Biotech Inc. Methods, surface modified plates and compositions for cell attachment, cultivation and detachment
US8716018B2 (en) 2008-03-17 2014-05-06 Agency For Science, Technology And Research Microcarriers for stem cell culture
US20120028352A1 (en) * 2008-03-17 2012-02-02 Agency For Science, Technology And Research Microcarriers for Stem Cell Culture
US9458431B2 (en) 2008-03-17 2016-10-04 Agency For Science, Technology And Research Microcarriers for stem cell culture
CN102131919B (zh) * 2008-03-31 2017-05-03 东方酵母工业株式会社 一种增殖多能性干细胞的方法
US8623648B2 (en) 2008-04-24 2014-01-07 Janssen Biotech, Inc. Treatment of pluripotent cells
WO2009149233A1 (en) 2008-06-04 2009-12-10 Stem Cell Products, Inc. Methods for the production of ips cells using non-viral approach
EP2318516A1 (en) * 2008-06-30 2011-05-11 Centocor Ortho Biotech Inc. Differentiation of pluripotent stem cells
PL2310492T3 (pl) 2008-06-30 2015-12-31 Janssen Biotech Inc Różnocowanie pluripotencjalnych komórek macierzystych
EP2307539B1 (en) 2008-07-30 2014-11-19 Kyoto University Method of efficiently establishing induced pluripotent stem cells
US9175268B2 (en) 2008-08-12 2015-11-03 Cellular Dynamics International, Inc. Methods for the production of iPS cells
US8648170B2 (en) 2008-09-19 2014-02-11 Wisconsin Alumni Research Foundation Peptide-presenting surfaces for long-term culture of pluripotent cells
MX2011004565A (es) * 2008-10-31 2011-07-28 Centocor Ortho Biotech Inc Diferenciacion de celulas madre embrionarias humanas al linaje endocrino pancreatico.
CN102333862B (zh) 2008-10-31 2018-04-27 詹森生物科技公司 人胚胎干细胞向胰腺内分泌谱系的分化
US8895300B2 (en) 2008-11-04 2014-11-25 Viacyte, Inc. Scalable primate pluripotent stem cell aggregate suspension culture and differentiation thereof
AU2009316580B2 (en) 2008-11-20 2016-04-14 Janssen Biotech, Inc. Pluripotent stem cell culture on micro-carriers
CA2744227C (en) 2008-11-20 2018-10-02 Centocor Ortho Biotech Inc. Methods and compositions for cell attachment and cultivation on planar substrates
WO2010068955A2 (en) 2008-12-13 2010-06-17 Dna Microarray MICROENVIRONMENT NICHE ASSAY FOR CiPS SCREENING
WO2010096746A1 (en) 2009-02-20 2010-08-26 Cellular Dynamics International, Inc. Methods and compositions for the differentiation of stem cells
CA2758003A1 (en) * 2009-04-13 2010-10-21 The Regents Of The University Of California Methods and compositions for stem cell cultures
KR101772860B1 (ko) 2009-06-05 2017-08-30 셀룰러 다이내믹스 인터내셔널, 인코포레이티드 Ｔ 세포 및 조혈 세포의 재프로그래밍
EP2451837B1 (en) 2009-07-08 2015-03-25 Cellular Dynamics International, Inc. Modified ips cells having a mutant form of human immunodeficiency virus (hiv) cellular entry gene
MX348077B (es) 2009-07-20 2017-05-25 Janssen Biotech Inc Diferenciacion de celulas madre embrionarias humanas.
RU2540016C2 (ru) 2009-07-20 2015-01-27 Янссен Байотек, Инк. Дифференцировка эмбриональных стволовых клеток человека
AU2010276440B2 (en) 2009-07-20 2014-07-03 Janssen Biotech Inc. Differentiation of human embryonic stem cells
US9506114B2 (en) 2009-08-28 2016-11-29 Cellular Dynamics International, Inc. Identifying genetic variation in affected tissues
EP4364797A2 (en) 2009-10-19 2024-05-08 FUJIFILM Cellular Dynamics, Inc. Cardiomyocyte production
ES2665006T3 (es) * 2009-10-29 2018-04-24 Janssen Biotech, Inc. Células madre pluripotentes
ES2779048T3 (es) 2009-11-12 2020-08-13 Technion Res & Dev Foundation Medios de cultivo, cultivos celulares y métodos de cultivo de células madre pluripotentes en un estado indiferenciado
SG10201408552YA (en) * 2009-12-23 2015-02-27 Janssen Biotech Inc Differentiation of human embryonic stem cells
CN102712902B (zh) * 2009-12-23 2019-01-08 詹森生物科技公司 人胚胎干细胞的分化
AU2011223900A1 (en) 2010-03-01 2012-09-13 Janssen Biotech, Inc. Methods for purifying cells derived from pluripotent stem cells
AU2011250912A1 (en) 2010-05-12 2012-11-22 Janssen Biotech, Inc. Differentiation of human embryonic stem cells
EP2582794B2 (en) 2010-06-15 2024-04-24 FUJIFILM Cellular Dynamics, Inc. Generation of induced pluripotent stem cells from small volumes of peripheral blood
EP2582793B1 (en) 2010-06-15 2017-09-06 Cellular Dynamics International, Inc. A compendium of ready-built stem cell models for interrogation of biological response
EP4202040A1 (en) 2010-07-01 2023-06-28 Regenerative Research Foundation Methods for culturing undifferentiated cells using sustained release compositions
WO2012006440A2 (en) 2010-07-07 2012-01-12 Cellular Dynamics International, Inc. Endothelial cell production by programming
US8765470B2 (en) 2010-08-04 2014-07-01 Cellular Dynamics International, Inc. Reprogramming immortalized B-cells to induced pluripotent stem cells
WO2012030538A2 (en) 2010-08-31 2012-03-08 Janssen Biotech, Inc. Differentiation of human embryonic stem cells
BR112013004514A2 (pt) 2010-08-31 2016-06-07 Janssen Biotech Inc diferenciação das células-tronco embrionárias humanas
WO2012030540A2 (en) 2010-08-31 2012-03-08 Janssen Biotech, Inc. Differentiation of pluripotent stem cells
US9181529B2 (en) 2010-10-19 2015-11-10 Cellular Dynamics International, Inc. Titration of differentiation medium components
US9574179B2 (en) 2011-02-08 2017-02-21 Cellular Dynamics International, Inc. Hematopoietic precursor cell production by programming
DK2694644T3 (en) 2011-03-30 2018-04-16 Cellular Dynamics Int Inc Priming of pluripotent stem cells for neural differentiation
KR101293300B1 (ko) * 2011-04-05 2013-08-09 (주)로고스바이오시스템스 세포의 분리시기를 판정하는 방법과, 이를 이용한 세포의 계대 배양 방법 및 계대 배양 장치
CA2841165A1 (en) 2011-07-11 2013-01-17 Cellular Dynamics International, Inc. Methods for cell reprogramming and genome engineering
US8497124B2 (en) 2011-12-05 2013-07-30 Factor Bioscience Inc. Methods and products for reprogramming cells to a less differentiated state
BR112014013664A2 (pt) 2011-12-05 2020-11-03 Factor Bioscience Inc. métodos e produtos para transfectar células
SG10201608914WA (en) 2011-12-22 2016-12-29 Janssen Biotech Inc Differentiation of human embryonic stem cells into single hormonal insulin positive cells
JP6383292B2 (ja) 2012-03-07 2018-08-29 ヤンセン バイオテツク，インコーポレーテツド 多能性幹細胞の増殖及び維持のための明確な培地
RU2018108851A (ru) 2012-06-08 2019-02-26 Янссен Байотек, Инк. Дифференцировка эмбриональных стволовых клеток человека в панкреатические эндокринные клетки
BR122019025678B1 (pt) 2012-11-01 2023-04-18 Factor Bioscience Inc Composições que compreendem ácido nucleico que codifica uma proteína de edição gênica
US10370644B2 (en) 2012-12-31 2019-08-06 Janssen Biotech, Inc. Method for making human pluripotent suspension cultures and cells derived therefrom
SG10201709338RA (en) 2012-12-31 2017-12-28 Janssen Biotech Inc Culturing of human embryonic stem cells at the air-liquid interface for differentiation into pancreatic endocrine cells
ES2942484T3 (es) 2012-12-31 2023-06-01 Janssen Biotech Inc Diferenciación de células madre embrionarias humanas en células endocrinas pancreáticas usando reguladores de HB9
CN105705634A (zh) 2012-12-31 2016-06-22 詹森生物科技公司 用于分化成胰腺内分泌细胞的人多能细胞的悬浮和群集
CA2901747A1 (en) 2013-02-22 2014-08-28 Cellular Dynamics International, Inc. Hepatocyte production via forward programming by combined genetic and chemical engineering
JP6602288B2 (ja) 2013-04-03 2019-11-06 フジフィルム セルラー ダイナミクス，インコーポレイテッド 浮遊液中で内胚葉前駆細胞を培養するための方法および組成物
CA2910394A1 (en) 2013-04-26 2014-10-30 Memorial Sloan-Kettering Cancer Center Cortical interneurons and other neuronal cells produced by the directed differentiation of pluripotent and multipotent cells
RU2020104969A (ru) 2014-01-31 2020-03-13 Фэктор Байосайенс Инк. Способы и продукты для получения и доставки нуклеиновых кислот
JP6718431B2 (ja) 2014-03-21 2020-07-08 フジフィルム セルラー ダイナミクス，インコーポレイテッド 中脳ドーパミン作動性ニューロンの生産およびその使用方法
WO2015164228A1 (en) 2014-04-21 2015-10-29 Cellular Dynamics International, Inc. Hepatocyte production via forward programming by combined genetic and chemical engineering
CA2949056A1 (en) 2014-05-16 2015-11-19 Janssen Biotech, Inc. Use of small molecules to enhance mafa expression in pancreatic endocrine cells
US10444227B2 (en) 2014-08-19 2019-10-15 FUJIFILM Cellular Dynamics, Inc. Neural networks formed from cells derived from pluripotent stem cells
WO2016061071A1 (en) 2014-10-14 2016-04-21 Cellular Dynamics International, Inc. Generation of keratinocytes from pluripotent stem cells and mantenance of keratinocyte cultures
US10167451B2 (en) 2014-12-22 2019-01-01 The Chinese University Of Hong Kong Combinational use of mechanical manipulation and programin derivatives to increase Oct4, Sox2, or Nanog expression in fibroblasts
CA2976376A1 (en) 2015-02-13 2016-08-18 Factor Bioscience Inc. Nucleic acid products and methods of administration thereof
KR20180042437A (ko) 2015-09-08 2018-04-25 더 유나이티드 스테이츠 오브 어메리카, 애즈 리프리젠티드 바이 더 세크러테리, 디파트먼트 오브 헬쓰 앤드 휴먼 서비씨즈 임상 등급 망막 색소 상피 세포의 재현성 있는 분화 방법
KR20180042436A (ko) 2015-09-08 2018-04-25 셀룰러 다이내믹스 인터내셔널, 인코포레이티드 줄기 세포에서 유래된 망막색소상피의 macs 기반 정제
JP6800987B2 (ja) 2015-10-19 2020-12-16 フジフィルム セルラー ダイナミクス，インコーポレイテッド ウイルス受容性多能性幹細胞（ｐｓｃ）由来肝細胞の生産
KR20180063333A (ko) 2015-10-20 2018-06-11 후지필름 셀룰러 다이내믹스, 인코포레이티드 면역 세포로의 만능 줄기 세포의 지정된 분화 방법
KR20180092951A (ko) 2015-10-30 2018-08-20 더 리전츠 오브 더 유니버시티 오브 캘리포니아 줄기세포로부터 t-세포를 생산하는 방법 및 상기 t-세포를 이용한 면역치료 방법
WO2017117333A1 (en) 2015-12-30 2017-07-06 Cellular Dynamics International, Inc. Microtissue formation using stem cell-derived human hepatocytes
MA45479A (fr) 2016-04-14 2019-02-20 Janssen Biotech Inc Différenciation de cellules souches pluripotentes en cellules de l'endoderme de l'intestin moyen
WO2017195745A1 (ja) * 2016-05-09 2017-11-16 国立研究開発法人医薬基盤・健康・栄養研究所 培地、アルブミン非含有培地用添加剤および多能性幹細胞の培養方法
US20180030478A1 (en) 2016-07-01 2018-02-01 Research Development Foundation Elimination of proliferating cells from stem cell-derived grafts
EP4328301A2 (en) 2016-08-16 2024-02-28 FUJIFILM Cellular Dynamics, Inc. Methods for differentiating pluripotent cells
JP2019528284A (ja) 2016-08-17 2019-10-10 ファクター バイオサイエンス インコーポレイテッド 核酸産物およびその投与方法
CA3038690A1 (en) 2016-10-05 2018-04-12 FUJIFILM Cellular Dynamics, Inc. Generating mature lineages from induced pluripotent stem cells with mecp2 disruption
WO2018195175A1 (en) 2017-04-18 2018-10-25 FUJIFILM Cellular Dynamics, Inc. Antigen-specific immune effector cells
CN112204134A (zh) 2018-04-20 2021-01-08 富士胶片细胞动力公司 眼细胞的分化方法及其用途
JP2022513073A (ja) 2018-11-19 2022-02-07 ザ ユナイテッド ステイツ オブ アメリカ アズ リプリゼンテッド バイ ザ セクレタリー、デパートメント オブ ヘルス アンド ヒューマン サービシーズ 生分解性組織置換インプラントおよびその使用
JP2022513652A (ja) 2018-11-28 2022-02-09 ボード オブ リージェンツ，ザ ユニバーシティ オブ テキサス システム 機能および抑制性環境に対する抵抗性を増強するための免疫細胞のマルチプレックスゲノム編集
US20220033778A1 (en) 2018-11-29 2022-02-03 Board Of Regents, The University Of Texas System Methods for ex vivo expansion of natural killer cells and use thereof
US10501404B1 (en) 2019-07-30 2019-12-10 Factor Bioscience Inc. Cationic lipids and transfection methods
CA3178949A1 (en) 2020-05-29 2021-12-02 Andrew DIAS Retinal pigmented epithelium and photoreceptor dual cell aggregates and methods of use thereof
KR20230017876A (ko) 2020-05-29 2023-02-06 후지필름 셀룰러 다이내믹스, 인코포레이티드 망막 색소 상피 및 광수용체의 이중층 및 이의 용도
US20230051406A1 (en) 2020-11-13 2023-02-16 Catamaran Bio, Inc. Genetically modified natural killer cells and methods of use thereof
AU2021388155A1 (en) 2020-11-25 2023-06-15 Catamaran Bio, Inc. Cellular therapeutics engineered with signal modulators and methods of use thereof
WO2022216911A1 (en) 2021-04-07 2022-10-13 FUJIFILM Cellular Dynamics, Inc. Dopaminergic precursor cells and methods of use
KR20240005837A (ko) 2021-05-03 2024-01-12 아스텔라스 인스티튜트 포 리제너러티브 메디슨 성숙한 각막 내피 세포의 생성 방법
TW202309268A (zh) 2021-05-07 2023-03-01 安斯泰來再生醫藥協會 產生成熟肝細胞的方法
KR20240011831A (ko) 2021-05-26 2024-01-26 후지필름 셀룰러 다이내믹스, 인코포레이티드 만능 줄기 세포에서 유전자의 신속한 사일런싱을 방지하기 위한 방법
EP4346928A1 (en) 2021-05-28 2024-04-10 The United States of America, as represented by The Secretary, Department of Health and Human Services Biodegradable tissue scaffold with secondary matrix to host weakly adherent cells
EP4347795A1 (en) 2021-05-28 2024-04-10 The United States of America, as represented by The Secretary, Department of Health and Human Services Methods to generate macular, central and peripheral retinal pigment epithelial cells
CN113322225A (zh) * 2021-05-31 2021-08-31 郑州优倍得生物科技有限公司 一种人胚胎干细胞体外扩增用添加剂及扩增方法
AU2022343749A1 (en) 2021-09-13 2024-03-28 FUJIFILM Cellular Dynamics, Inc. Methods for the production of committed cardiac progenitor cells
CA3235390A1 (en) 2021-10-29 2023-05-04 Deepika Rajesh Dopaminergic neurons comprising mutations and methods of use thereof
WO2024006911A1 (en) 2022-06-29 2024-01-04 FUJIFILM Holdings America Corporation Ipsc-derived astrocytes and methods of use thereof
WO2024073776A1 (en) 2022-09-30 2024-04-04 FUJIFILM Cellular Dynamics, Inc. Methods for the production of cardiac fibroblasts

Family Cites Families (6)

* Cited by examiner, † Cited by third party
Publication number Priority date Publication date Assignee Title
US7410798B2 (en) * 2001-01-10 2008-08-12 Geron Corporation Culture system for rapid expansion of human embryonic stem cells
US20030232430A1 (en) * 2001-11-26 2003-12-18 Advanced Cell Technology Methods for making and using reprogrammed human somatic cell nuclei and autologous and isogenic human stem cells
HUE028026T2 (en) * 2002-12-16 2016-11-28 Technion Res & Dev Foundation Breeding system free of native cells, free of foreign matter for human embryonic stem cells
KR100632851B1 (ko) * 2004-01-20 2006-10-13 한국원자력연구소 전분화능 줄기세포의 분화를 억제하는 방법
ES2708384T3 (es) * 2004-09-08 2019-04-09 Wisconsin Alumni Res Found Cultivo de células madre embrionarias humanas
CN101052712A (zh) * 2004-09-08 2007-10-10 威斯康星校友研究基金会 培养人胚胎干细胞

Also Published As

Publication number Publication date
BRPI0514641A (pt) 2008-06-17
GB2432835A (en) 2007-06-06
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IS8619A (is) 2007-03-06
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ES2708384T3 (es) 2019-04-09
DK3196296T3 (en) 2019-02-04
WO2006029198A3 (en) 2006-05-18
EP1797172B1 (en) 2017-04-19
GB2432835B (en) 2009-04-08
AU2005282414B2 (en) 2010-12-02
NO344696B1 (no) 2020-03-09
AU2005282414C1 (en) 2011-04-07
CA2579652A1 (en) 2006-03-16
WO2006029198A2 (en) 2006-03-16
NZ553235A (en) 2009-11-27

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