ES2298629T3 - Composiciones que comprenden n-isopropilacrilamida y metodos para inhibir la adsorcion de proteinas sobre superficies. - Google Patents
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Abstract
Uso de polímeros de NIPAM para reducir la adsorción de proteínas en la superficie de dispositivos médicos, en el que el dispositivo médico se guarda en disoluciones que contienen polímeros de NIPAM o los polímeros de NIPAM se incorporan en disoluciones multipropósito para tratar lentes de contacto a diario.
Description
Composiciones que comprenden
N-isopropilacrilamida y método para inhibir la
adsorción de proteínas sobre superficies.
La presente invención está dirigida a la
reducción de la deposición de proteínas en superficies. La invención
proporciona composiciones y métodos para inhibir la deposición de
proteínas en las superficies de dispositivos médicos,
particularmente dispositivos biomédicos y prostéticos. La invención
se basa en el descubrimiento de que ciertos polímeros y copolímeros
relacionados que comprenden el monómero
n-isopropilacrilamida (NIPAM) inhiben de manera
significativa la deposición de proteínas en las superficies de las
lentes de contacto.
Las proteínas se adsorben a casi todas las
superficies, y la minimización o eliminación de la adsorción de las
proteínas ha sido el tema de numerosos estudios, tales como los
presentados por Lee et al., en J. Biomed. Materials
Res., vol. 23, páginas 351-368 (1989). Los
sensores, soportes cromatográficos, inmunoensayos, membranas para
separación, implantes biomédicos, dispositivos prostéticos (p.ej.
lentes de contacto) y muchos otros dispositivos u objetos pueden
ser afectados de manera adversa por la adsorción de proteínas. Un
método y/o medio para tratar las superficies de tales objetos con
el fin de impedir o reducir la deposición de proteínas sería por lo
tanto muy ventajoso.
El uso de polímeros que contienen NIPAM para
modificar superficies y controlar la deposición de proteínas en
substratos de vidrio y silicio ha sido descrito con anterioridad.
Las siguientes publicaciones proporcionan antecedentes adicionales
con respecto a tales modificaciones:
- 1.
- Kidoaki, et al., Langmuir, 17, págs. 2402-2407 (2001);
- 2.
- Bohanon, et al., J. Biomater. Sci. Polymer Edn., Vol. 8, Nº 1, págs. 19-39 (1996);
- 3.
- Publicación de patente internacional (PCT) Nº WO 02/30571 A2 (Sudor);
- 4.
- Patente de EE.UU. Nº 6.447.897 (Liang, et al.);
- 5.
- Patente de EE.UU. Nº 6.270.903 (Feng, et al.); y 6. Huber, et al., Science, Vol. 301, págs. 352-354, 18 de julio de 2003.
Las publicaciones identificadas anteriormente no
describen ni sugieren que se podrían usar polímeros que contienen
NIPAM para modificar las superficies de dispositivos médicos, tales
como lentes de contacto, y para controlar la deposición y
desprendimiento de proteínas en tales superficies.
Los términos "blandas" y "duras" en
relación a las lentes de contacto están asociados, de manera
general, no sólo con la dureza relativa de los respectivos tipos de
lentes, sino también con el tipo de material polimérico a partir
del cual se forman las lentes. El término "blanda" denota, de
manera general, una lente de contacto que está formada a partir de
un material polimérico hidrófilo, tal como metacrilato de
hidroxietilo o "HEMA", mientras que el término "dura"
denota, de manera general, una lente que está formada a partir de un
material polimérico hidrófobo, tal como poli(metacrilato de
metilo) o "PMMA". La química de superficie y porosidad de las
lentes duras y blandas es muy diferente. Las lentes blandas
contienen típicamente una gran cantidad de agua, son bastante
porosas, y llevan cargas iónicas en las superficies expuestas de las
lentes, mientras que las lentes duras son considerablemente menos
porosas y, de manera general, no llevan cargas iónicas
superficiales.
Las superficies iónicas y la naturaleza porosa
de las lentes de contacto blandas pueden conducir a problemas
significativos cuando las lentes entran en contacto con la película
lagrimal, debido a la compleja composición de la película lagrimal,
que está comprendida en su mayor parte de proteínas, lípidos,
enzimas y diversos electrolitos. Los componentes de las lágrimas
incluyen albúmina, lactoferrina, lisozima y varias inmunoglobulinas.
La retención de proteínas del fluido lagrimal sobre las lentes es
un problema común y depende de varios factores, que incluyen la
naturaleza de los materiales a partir de los cuales está hecha la
lente.
Las lentes de contacto blandas actúan como
substratos eficaces para la deposición y adsorción de proteínas.
Este ensuciamiento puede conducir a una deshidratación de la lente y
una inestabilidad de la película lacrimal, dando como resultado
incomodidad y falta de tolerancia en el usuario. La adsorción de
proteínas puede facilitar también la colonización bacteriana, y
esto puede aumentar el riesgo de infecciones que pueden afectar a la
visión.
A la vista del potencial ensuciamiento de las
lentes de contacto y de los problemas creados por tal ensuciamiento
que se discuten anteriormente, se acepta generalmente que la
limpieza de las lentes de contacto debe ser una parte regular del
régimen de cuidados de las lentes por parte de un paciente. Se han
utilizado en el pasado muchos tipos diferentes de agentes de
limpieza para este propósito. En los productos para el cuidado de
las lentes de contacto se incorporan típicamente agentes de
limpieza tales como tensioactivos y enzimas para retirar los
depósitos de proteínas. Sin embargo, el uso de estos agentes puede
conducir a una irritación, y en los casos en los que se requieren
regímenes de frotamiento y limpieza, hay una posibilidad de que los
agentes de limpieza no se usen de manera apropiada, o de que se
usen de una manera que dañe las lentes. A la vista de los problemas
precedentes, sería ventajoso el que las superficies de las lentes de
contacto se pudieran modificar para impedir o reducir la adsorción
de proteínas en las superficies.
Se han hecho diversas tentativas para reducir la
formación de depósitos de proteínas en las lentes de contacto. Se
puede hacer referencia a las siguientes patentes para tener
antecedentes adicionales con respecto a tales tentativas:
La patente de EE.UU. Nº 4.411.932 describe el
uso de alcoholes poliméricos y éteres poliméricos, que incluyen
poli(etilenglicol), poli(óxido de etileno) y poli(éter
metílico de etilenglicol), como agentes profilácticos contra
depósitos ensuciadores en lentes de contacto;
La patente de EE.UU. Nº 6.274.133 (Hu et
al.) describe el uso de polímeros catiónicos de celulosa para
impedir la acumulación de lípidos y proteínas en una lente de
silicona-hidrogel;
La patente de EE.UU. Nº 6.323.165 (Heiler, et
al.) describe el uso de polímeros de policuaternio cargados
para bloquear la unión de proteínas a lentes de contacto hidrófilas;
y
La patente de EE.UU. Nº 6.096.138 (Heiler, et
al.) describe el uso de polímeros de policuaternio tales como
Luviquat® (BASF), que es una mezcla de vinilpirrolidona y restos de
vinilimidazolio que se puede unir a materiales de lentes de
contacto hidrófilas, para bloquear la unión de materiales
proteínicos a las lentes.
Estas tentativas anteriores para reducir la
unión de proteínas tienen inconvenientes. Por ejemplo, los polímeros
catiónicos pueden actuar como irritantes tras el contacto con el
ojo cuando se utilizan a altas concentraciones. Adicionalmente,
debido al carácter positivo de la carga de estas macromoléculas, la
formación de complejos con tensioactivos aniónicos u otros
componentes de los productos de limpieza de las lentes de contacto
puede conducir a una floculación y separación de fases en la
formulación, lo cual es un problema significativo. Por
consiguiente, hay una necesidad de nuevos métodos para proporcionar
superficies resistentes a las proteínas.
Debido a la tendencia hacia el uso de lentes de
uso prolongado, sería útil poder proporcionar a los usuarios de
lentes de contacto una superficie de la lente de contacto que inhiba
la adsorción de materia proteínica durante periodos de tiempo
prolongados, sin comprometer la seguridad del paciente. El polímero
debe ser además compatible en disoluciones para el cuidado de las
lentes de contacto cuando el paciente desee un almacenamiento,
desinfección y/o limpieza. La presente invención está dirigida a
satisfacer estas necesidades.
La presente invención está dirigida al uso de
polímeros que son activos en superficies y exhiben una respuesta a
la temperatura en disoluciones acuosas. Los polímeros y polímeros
relacionados (p.ej. co-polímeros) están formados a
partir de un monómero de N-isopropilacrilamida
("NIPAM").
La presente invención se basa en el
descubrimiento de que los polímeros de NIPAM y polímeros
relacionados se pueden utilizar para inhibir la deposición de
proteínas en las superficies de lentes de contacto de hidrogel. Los
polímeros de NIPAM proporcionan unas propiedades en disolución
únicas, y se ha descubierto que estas propiedades se pueden emplear
en formulaciones en las que se deseen superficies de hidrogel
resistentes a las proteínas.
Como se discutió anteriormente, hay una
necesidad de métodos mejorados para modificar la adsorción de las
proteínas en las superficies de las lentes de contacto. La presente
invención se basa en el descubrimiento de que los polímeros de
NIPAM descritos en la presente memoria son excepcionalmente
adecuados para este propósito.
Los polímeros de NIPAM descritos en la presente
memoria se pueden emplear de diversas maneras para conseguir la
modificación de las superficies de las lentes de contacto y las
superficies de otros dispositivos médicos. Por ejemplo, las lentes
de contacto se pueden guardar en disoluciones que contengan
polímeros de NIPAM antes de ser usadas. Este método profiláctico
permite a los polímeros formar una capa protectora en la superficie
de las lentes antes de que el consumidor exponga siquiera las lentes
a los fluidos lagrimales que contienen proteínas. Los polímeros de
NIPAM también se pueden incorporar en disoluciones multipropósito
para tratar las lentes de contacto a diario.
Además de lentes de contacto, las técnicas de
modificación de superficies descritas en la presente memoria se
pueden aplicar a diversos dispositivos médicos en los que se deseen
superficies resistentes a las proteínas, tales como lentes
intraoculares, catéteres, endoprótesis vasculares cardíacas,
dispositivos prostéticos y otros dispositivos médicos que sufran
una exposición prolongada a proteínas durante el uso dentro o sobre
los cuerpos de seres humanos u otros mamíferos.
Aunque no se desea estar atado por la teoría, se
cree que los polímeros de NIPAM descritos en la presente memoria
tienen un intervalo de propiedades físicas inherentes (p.ej., baja
energía libre interfacial, propiedades
hidrófilas-hidrófobas, muy baja toxicidad, movilidad
superficial dinámica y estabilización estérica) que permiten a
estos polímeros exhibir unas características inhibitorias de
proteínas superiores.
La Figura 1 es un gráfico que muestra los
resultados de los ensayos descritos en el Ejemplo 1; y
La Figura 2 es un gráfico que muestra los
resultados de los ensayos descritos en el Ejemplo 3.
Los polímeros de NIPAM utilizados en la presente
invención tienen la siguiente fórmula:
en la que n es un número entero de
10 a
3.000.
Los polímeros de NIPAM utilizados en la presente
invención incluyen diversos tipos de polímeros que comprenden el
monómero descrito anteriormente. Los polímeros se pueden formar
enteramente a partir del monómero NIPAM identificado anteriormente,
o se pueden incorporar otros monómeros en el polímero copoli-
merizando el monómero NIPAM con otros monómeros, tales como ácido
acrílico, acrilamida, N-acetilacilamida,
N,N-dimetilacrilamida y metacrilato de butilo.
Además, se pueden preparar polímeros modificados o copolímeros que
contienen el monómero NIPAM mediante una funcionalización de los
grupos terminales, preparación de copolímeros de bloques y
reticulación de polímeros. Todos los tales polímeros, copolímeros o
modificaciones de los mismos se denominan en la presente memoria
bien "polímeros de NIPAM" o bien "PNIPAM". Los polímeros
de NIPAM utilizados en la presente invención tendrán típicamente
pesos moleculares de 1.000 a 300.000 Daltons. Los polímeros están
disponibles en Polymer Source, Inc., Dorval, Quebec (Canadá).
La cantidad de PNIPAM utilizada en las
composiciones de la presente invención variará dependiendo de la
forma de las composiciones y del uso pretendido de las mismas. La
concentración de PNIPAM utilizada será, de manera general, una
cantidad suficiente para obtener una tensión superficial de la
disolución menor que 50 miliNewtons por metro ("mNm^{-1}") a
temperatura ambiente (23ºC).
Los polímeros de NIPAM descritos anteriormente
son activos en superficies, y por lo tanto se adsorberán fácilmente
a la mayoría de tipos de superficies. Factores tales como el tipo de
superficie (hidrófoba frente a hidrófila), temperatura, tampones y
excipientes influirán en la interacción entre los polímeros y una
superficie, e influirán en la magnitud de las interacciones.
Los polímeros de PNIMAM descritos anteriormente
se pueden combinar con otros componentes utilizados comúnmente en
productos para tratar lentes de contacto, tales como modificadores
de la reología, enzimas, agentes antimicrobianos, tensioactivos,
agentes quelantes o combinaciones de los mismos. Los tensioactivos
preferidos incluyen tensioactivos aniónicos, tales como RLM 100, y
tensioactivos no iónicos, tales como las poloxaminas disponibles
bajo el nombre "Tetronic®", y los poloxámeros disponibles bajo
el nombre "Pluronic®". Además, se pueden añadir diversos
agentes amortiguadores, tales como borato de sodio, ácido bórico,
citrato de sodio, ácido cítrico, bicarbonato de sodio, tampones de
fosfato y combinaciones de los mismos.
Las composiciones de la presente invención que
están destinadas para el uso como productos de limpieza de lentes
de contacto contendrán uno o más agentes antimicrobianos
oftálmicamente aceptables en una cantidad eficaz para impedir la
contaminación microbiana de las composiciones (denominada en la
presente memoria como "una cantidad eficaz para preservar"), o
en una cantidad eficaz para desinfectar las lentes de contacto
reduciendo sustancialmente el número de microorganismos viables
presentes en las lentes (denominada en la presente memoria como
"una cantidad eficaz para desinfectar").
Los niveles de actividad antimicrobiana
requeridos para preservar las composiciones oftálmicas de la
contaminación microbiana o desinfectar las lentes de contacto son
bien conocidos por los expertos en la técnica, basados tanto en la
experiencia personal como en los estándares oficiales publicados,
tales como los expuestos en la United States Pharmacopoeia
("USP") y publicaciones similares en otros países.
La invención no está limitada en relación a los
tipos de agentes antimicrobianos que se pueden utilizar. Los
ejemplos de agentes antimicrobianos que se pueden usar incluyen:
clorhexidina, polímeros de polihexametilenbiguanida ("PHMB"),
policuaternio-1, y las aminobiguanidas descritas en
la solicitud de patente de EE.UU. en tramitación con la presente
con número de serie 09/581.952 y la publicación internacional (PCT)
correspondiente Nº WO 99/32158, cuyos contenidos completos se
incorporan en la presente memoria descriptiva por referencia.
Los agentes antimicrobianos preferidos son el
policuaternio-1, y las aminobiguanidas del tipo
descrito en la solicitud de patente de EE.UU. con número de serie
09/581.952 y la publicación internacional (PCT) correspondiente Nº
WO 99/32158. La aminobiguanida más preferida se identifica en la
solicitud de patente de EE.UU. con número de serie 09/581.952 como
"Compuesto Número 1". Este compuesto tiene la siguiente
estructura:
\vskip1.000000\baselineskip
\vskip1.000000\baselineskip
Es citado más adelante por medio del número de
código "AL-8496".
Las composiciones oftálmicas de la presente
invención se formularán, de manera general, como disoluciones
acuosas estériles. Las composiciones deben ser formuladas de tal
modo que sean compatibles con los tejidos oftálmicos y los
materiales de las lentes de contacto. Las composiciones tendrán, de
manera general, una osmolalidad de aproximadamente 200 a
aproximadamente 400 miliosmoles/kilogramo de agua ("mOsm/kg") y
un pH fisiológicamente compatible.
Las composiciones de la presente invención y la
capacidad de estas composiciones de reducir la adsorción de
proteínas sobre las lentes de contacto se ilustran adicionalmente
mediante los siguientes Ejemplos. Se añadieron polímeros de NIPAM
sin modificar (es decir, no iónicos) y modificados (es decir, con
grupos terminales -COOH) a disoluciones tamponadas apropiadamente
para demostrar la capacidad de estos polímeros de reducir la
adsorción de proteínas cuando se utilizan como componentes de
disoluciones multipropósito tamponadas para tratar lentes de
contacto. Se usó un medio simple de producir superficies modificadas
con PNIPAM, con el fin de imitar el régimen de
desinfección/limpieza de lentes de contacto usado típicamente por el
consumidor.
\vskip1.000000\baselineskip
Los ensayos descritos a continuación se
realizaron para evaluar la capacidad de los polímeros de NIPAM para
modificar las superficies de las lentes de contacto y de este modo
reducir la adsorción de proteínas.
Los materiales y métodos utilizados en la
evaluación fueron como sigue:
Lisozima (Sigma, clara de huevo de pollo,
calidad 1, cristalina 3x), Ácido trifluoroacético anhidro (Sigma,
calidad para secuenciación de proteínas), Acetonitrilo (EM Science,
calidad HPLC), Fosfato de sodio monobásico, monohidrato (Sigma,
calidad reactivo ACS (American Chemical Society)), Fosfato de sodio
dibásico, anhidro (Sigma, calidad reactivo ACS), Cloruro de sodio
(Sigma, calidad ultrapura), Unisol® 4 (Alcon Laboratories, Inc.,
disolución salina de pH equilibrado, exenta de conservantes, para
aclarado).
Los polímeros de NIPAM utilizados se identifican
en la Tabla 1 a continuación. Estos polímeros fueron adquiridos en
Polymer Source Inc. y se usaron sin purificación adicional.
\vskip1.000000\baselineskip
Se usaron lentes Acuvue (Vistakon, una división
de Johnson & Johnson Vision Products, Inc.) como substrato en
este estudio. Las lentes tenían los siguientes parámetros: 42% de
etafilcon A, 58% de agua, lente del Grupo IV de la FDA. Diámetro,
14,0 mm; curva de la base, 8,8 mm; poder, -2,00.
Los polímeros de NIPAM y
NIPAM-COOH identificados en la Tabla 1 se formularon
a pH 7,8 en un vehículo tamponado que comprendía 1,5% de sorbitol,
0,6% de ácido bórico y 0,32% de NaCl. En un vaso de precipitados, se
pesaron todos los productos químicos de la formulación excepto los
polímeros de NIPAM, y se añadió agua purificada (cantidad
suficiente hasta 95%). El pH se ajustó a 7,8 con NaOH/HCl. El
polímero de NIPAM se pesó y se añadió a la disolución del tampón y
ésta se agitó durante una noche para solubilizar el polímero. Las
formulaciones de ensayo se muestran en la Tabla 2 a continuación;
las concentraciones se expresan como tanto por ciento en
peso/volumen
("% p/v").
("% p/v").
Las formulaciones de ensayo se evaluaron en
cuanto a su comportamiento de profilaxis usando lisozima como
proteína modelo, como se describe a continuación.
Suero salino tamponado con fosfato (PBS): Se
disolvieron en agua desionizada 1,311 g de fosfato de sodio
monobásico (monohidrato), 5,74 g de fosfato de sodio dibásico
(anhidro), y 9,0 g de cloruro de sodio, y el volumen se llevó a
1000 ml con agua desionizada, y se ajustó el pH (según fue
necesario). Las concentraciones finales de fosfato de sodio y
cloruro de sodio fueron 0,05 M y 0,9%, respectivamente. El pH final
fue 7,4.
Se preparó una disolución de lisozima de 1,5
mg/ml disolviendo 750 mg de lisozima en 500 ml de suero salino
tamponado con fosfato ajustado a pH 7,4.
Se preparó una disolución de extracción de las
lentes mezclando 1,0 ml de ácido trifluoroacético con 500 ml de
acetonitrilo y 500 ml de agua desionizada. El pH de la disolución
osciló de 1,5 a 2,0.
Se sumergió cada lente en 3 ml de cada
formulación de ensayo y se dejó reposar a temperatura ambiente
durante una noche. A la mañana siguiente, se retiraron las lentes
de las formulaciones de ensayo y se tocaron ligeramente con una
toalla.
Cada lente puesta en remojo previamente se
sumergió en un vial de muestras de vidrio Wheaton que contenía 3 ml
de la disolución de lisozima. Se cerró el vial con un tapón de
plástico a presión y se incubó en un baño de agua de temperatura
constante a 37ºC durante 24 horas. Se incluyeron tres lentes
adicionales como controles para establecer la cantidad total de
lisozima depositada. Después de la incubación, las lentes
depositadas se retiraron de sus viales y se aclararon por inmersión
en tres vasos de precipitados consecutivos que contenían 200 ml de
Unisol® 4 ó agua para retirar cualquier exceso de la disolución de
deposición.
Se extrajeron las lentes con 5 ml de la
disolución de extracción de ACN/TFA en un vial de escintilación de
vidrio con tapón a rosca. La extracción se hizo agitando el vial con
un agitador rotatorio (Red Rotor) a temperatura ambiente durante al
menos 2 horas (usualmente durante una noche).
La determinación cuantitativa de la lisozima del
extracto de las lentes se llevó a cabo usando un espectrofotómetro
de fluorescencia que tenía una interfaz de un automuestreador y un
ordenador. Se midió la intensidad de fluorescencia de una alícuota
de 2 ml de cada disolución de muestra, ajustando la longitud de onda
de excitación/emisión a 280 nm/346 nm con ranuras ópticas de
excitación/emisión de 2,5 nm/10 nm, respectivamente, y la
sensibilidad del fotomultiplicador se ajustó a 950 voltios.
Se estableció una curva patrón de lisozima
diluyendo la disolución madre de lisozima a concentraciones que
oscilaban de 0 a 40 \mug/ml, usando la disolución de extracción de
ACN/TFA para el extracto de las lentes y el vehículo para las
disoluciones de remojo. Los ajustes instrumentales para medir la
intensidad de fluorescencia fueron los mismos para los extractos de
las lentes y las disoluciones de remojo de las lentes.
Las concentraciones de lisozima para todas las
muestras se calculó en base a la pendiente desarrollada a partir de
la curva patrón lineal de lisozima. El % de profilaxis de cada
formulación se calculó restando la cantidad de lisozima en el
extracto de la lente de la cantidad de lisozima de las lentes de
control (depósito total), y después dividiendo eso por el depósito
total y multiplicando por 100.
La Figura 1 muestra el % de profilaxis en
función de la concentración de PNIPAM (g/100 ml) para polímeros de
NIPAM no iónicos que tienen pesos moleculares de 46.380; 71.600; y
122.000, respectivamente.
La Figura 1 muestra que no hubo una dependencia
significativa del peso molecular del NIPAM sobre el % de profilaxis
usando las concentraciones de polímero definidas. Las
concentraciones de PNIPAM hasta 0,2 g/100 ml dieron unos resultados
de % de profilaxis de aproximadamente 30%. Con concentraciones de
PNIPAM crecientes, por encima de 0,2 g/100 ml, el % de profilaxis
se pudo incrementar hasta entre 50% y 60% usando concentraciones de
polímero entre 0,4 g/100 ml y 0,65 g/100 ml. El % de profilaxis no
fue dependiente del peso molecular de los polímeros de NIPAM.
\vskip1.000000\baselineskip
Las propiedades profilácticas de los polímeros
de NIPAM se evaluaron adicionalmente usando un estudio de ciclos de
3 días. Se prepararon dos juegos de lentes. Un juego se remojó
previamente en las formulaciones mostradas en la Tabla 2 antes de
ir a la disolución de lisozima, mientras que el otro juego no.
Después se pusieron ambos juegos de lentes en la disolución de
lisozima durante 8 horas (Día 1). Al final del día, se aclararon
todas las lentes y se pusieron en sus respectivas formulaciones para
tenerlas en remojo durante una noche. El siguiente día (Día 2), las
lentes volvieron a la lisozima durante el día (8 horas). Esto se
repitió hasta completar 3 ciclos (3 Días). Al final del
experimento, todas las lentes se analizaron de acuerdo con los
procedimientos descritos en el Ejemplo 1. Los resultados se
presentan en la Tabla 3:
\global\parskip0.900000\baselineskip
Los resultados demuestran que las disoluciones
tamponadas que contenían un polímero de NIPAM (es decir,
P2991-NIPAM) fueron eficaces en reducir la
incorporación de proteínas tanto en las lentes puestas en remojo
previamente como no puestas en remojo previamente. Por ejemplo, las
lentes puestas en remojo previamente y tratadas con disoluciones
que contenían concentraciones de 0,034% y 0,017% del polímero de
NIPAM demostraron unos valores de profilaxis de 67,8% y 60,8%,
respectivamente. Para las lentes no puestas en remojo previamente,
los valores de profilaxis fueron 45,9% y 41,9% a concentraciones de
0,034% y 0,017%, respectivamente.
Los resultados expuestos en la Tabla 3
demuestran que es preferible el tratamiento de las lentes con una
disolución de un polímero de NIPAM antes de la exposición a
proteínas. Sin embargo, los resultados también muestran que incluso
cuando las lentes ya han sido expuestas a proteínas antes de un
tratamiento inicial con una disolución de un polímero de NIPAM, la
incorporación de proteína se reduce cuando las lentes se tratan
posteriormente con una disolución de un polímero de NIPAM. Por lo
tanto, los resultados de este estudio confirman que las
composiciones de la presente invención son eficaces en reducir la
formación de depósitos de proteínas en lentes de contacto, incluso
cuando las lentes son expuestas repetidamente a la contaminación por
proteínas.
El trabajo de profilaxis fue extendido a
formulaciones que contenían el agente antimicrobiano
AL-8496 con polímeros de NIPAM sin modificar (no
iónicos) y modificados (funcionalizados terminalmente con COOH). Las
formulaciones evaluadas se muestran en la Tabla 4, a
continuación:
Los procedimientos utilizados fueron los mismos
que en el Ejemplo 1. La Figura 2 muestra los datos de profilaxis
obtenidos usando el modelo de remojo durante una noche con lentes
puestas en remojo previamente en las formulaciones de PNIPAM
respectivas.
\global\parskip1.000000\baselineskip
La Figura 2 muestra que las propiedades de
profilaxis de los polímeros de NIPAM se retuvieron en presencia del
agente antimicrobiano AL-8496 y otros componentes de
la formulación, incluyendo ingredientes de limpieza (p.ej. citrato
y Tetronic® 1304). Los datos demuestran que se pueden incorporar
polímeros de NIPAM, tanto sin modificar como modificados, en
formulaciones multipropósito para el cuidado de lentes de contacto
sin comprometer las propiedades profilácticas de los polímeros.
\vskip1.000000\baselineskip
La actividad de desinfección de las
formulaciones mostradas en la Tabla 4 anteriormente también fue
evaluada. Los resultados se muestran en la Tabla 5 a
continuación.
\vskip1.000000\baselineskip
\vskip1.000000\baselineskip
Los resultados demuestran que los polímeros de
NIPAM no afectaron de manera adversa a la actividad antimicrobiana
del agente antimicrobiano AL-8496.
\vskip1.000000\baselineskip
Se evaluaron varias formulaciones para comparar
las propiedades de profilaxis de PNIPAM con dos copolímeros de
bloques bien conocidos, Tetronic® 1107 y Pluronic® F127. Los
componentes de las formulaciones y los resultados de profilaxis se
dan en la Tabla 6, a continuación.
La evaluación se llevó a cabo usando los mismos
procedimientos que se bosquejan en el Ejemplo 1. La disolución
tamponada utilizada como control (10581-85J) no
exhibió ninguna propiedad de profilaxis. Sin embargo, como se
muestra en la Tabla 6, las composiciones de la presente invención
que contienen PNIPAM a las concentraciones de 0,2%
(10581-85B) y 0,4% (10581-85C)
produjeron unos resultados de profilaxis de 56,2% y 63%,
respectivamente.
En contraste, las disoluciones que contenían los
copolímeros de bloques Tetronic® 1107 y Pluronic® F127 a
concentraciones de hasta 0,8% no produjeron ninguna profilaxis
significativa.
Claims (7)
1. Uso de polímeros de NIPAM para reducir la
adsorción de proteínas en la superficie de dispositivos médicos, en
el que el dispositivo médico se guarda en disoluciones que contienen
polímeros de NIPAM o los polímeros de NIPAM se incorporan en
disoluciones multipropósito para tratar lentes de contacto a
diario.
2. Uso según la reivindicación 1, en el que el
dispositivo médico se selecciona entre lentes de contacto, lentes
intraoculares, catéteres, endoprótesis vasculares cardíacas y
dispositivos prostéticos.
3. Uso según la reivindicación 2, en el que el
dispositivo médico es una lente de contacto.
4. Uso según una cualquiera de las
reivindicaciones 1 a 3, en el que el polímero de NIPAM tiene un peso
molecular de 1.000 a 300.000 Daltons.
5. Uso según una cualquiera de las
reivindicaciones 1 a 4, en el que el dispositivo médico es una lente
de contacto y las superficies de la lente de contacto se modifican
guardándola en disoluciones que contienen polímeros de NIPAM antes
de ser usadas, o en el que el polímero de NIPAM se incorpora en
disoluciones multipropósito para tratar lentes de contacto a
diario.
6. Una composición adaptada para el tratamiento
de lentes de contacto, que contiene una cantidad eficaz de polímero
de NIPAM y uno o más agentes antimicrobianos oftálmicamente
aceptables.
7. Una composición según la reivindicación 6, en
la que el polímero de NIPAM tiene un peso molecular de 1.000 a
300.000 Daltons.
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