ES2281099T3 - Construcciones para injertos a base de tejidos submucosos, dotados de perforaciones. - Google Patents
Construcciones para injertos a base de tejidos submucosos, dotados de perforaciones. Download PDFInfo
- Publication number
- ES2281099T3 ES2281099T3 ES97917752T ES97917752T ES2281099T3 ES 2281099 T3 ES2281099 T3 ES 2281099T3 ES 97917752 T ES97917752 T ES 97917752T ES 97917752 T ES97917752 T ES 97917752T ES 2281099 T3 ES2281099 T3 ES 2281099T3
- Authority
- ES
- Spain
- Prior art keywords
- tissue
- construction
- submucosal
- grafts
- strips
- Prior art date
- Legal status (The legal status is an assumption and is not a legal conclusion. Google has not performed a legal analysis and makes no representation as to the accuracy of the status listed.)
- Expired - Lifetime
Links
Classifications
-
- A—HUMAN NECESSITIES
- A61—MEDICAL OR VETERINARY SCIENCE; HYGIENE
- A61L—METHODS OR APPARATUS FOR STERILISING MATERIALS OR OBJECTS IN GENERAL; DISINFECTION, STERILISATION OR DEODORISATION OF AIR; CHEMICAL ASPECTS OF BANDAGES, DRESSINGS, ABSORBENT PADS OR SURGICAL ARTICLES; MATERIALS FOR BANDAGES, DRESSINGS, ABSORBENT PADS OR SURGICAL ARTICLES
- A61L27/00—Materials for grafts or prostheses or for coating grafts or prostheses
- A61L27/36—Materials for grafts or prostheses or for coating grafts or prostheses containing ingredients of undetermined constitution or reaction products thereof, e.g. transplant tissue, natural bone, extracellular matrix
- A61L27/3683—Materials for grafts or prostheses or for coating grafts or prostheses containing ingredients of undetermined constitution or reaction products thereof, e.g. transplant tissue, natural bone, extracellular matrix subjected to a specific treatment prior to implantation, e.g. decellularising, demineralising, grinding, cellular disruption/non-collagenous protein removal, anti-calcification, crosslinking, supercritical fluid extraction, enzyme treatment
-
- A—HUMAN NECESSITIES
- A61—MEDICAL OR VETERINARY SCIENCE; HYGIENE
- A61F—FILTERS IMPLANTABLE INTO BLOOD VESSELS; PROSTHESES; DEVICES PROVIDING PATENCY TO, OR PREVENTING COLLAPSING OF, TUBULAR STRUCTURES OF THE BODY, e.g. STENTS; ORTHOPAEDIC, NURSING OR CONTRACEPTIVE DEVICES; FOMENTATION; TREATMENT OR PROTECTION OF EYES OR EARS; BANDAGES, DRESSINGS OR ABSORBENT PADS; FIRST-AID KITS
- A61F2/00—Filters implantable into blood vessels; Prostheses, i.e. artificial substitutes or replacements for parts of the body; Appliances for connecting them with the body; Devices providing patency to, or preventing collapsing of, tubular structures of the body, e.g. stents
- A61F2/02—Prostheses implantable into the body
-
- A—HUMAN NECESSITIES
- A61—MEDICAL OR VETERINARY SCIENCE; HYGIENE
- A61L—METHODS OR APPARATUS FOR STERILISING MATERIALS OR OBJECTS IN GENERAL; DISINFECTION, STERILISATION OR DEODORISATION OF AIR; CHEMICAL ASPECTS OF BANDAGES, DRESSINGS, ABSORBENT PADS OR SURGICAL ARTICLES; MATERIALS FOR BANDAGES, DRESSINGS, ABSORBENT PADS OR SURGICAL ARTICLES
- A61L27/00—Materials for grafts or prostheses or for coating grafts or prostheses
- A61L27/36—Materials for grafts or prostheses or for coating grafts or prostheses containing ingredients of undetermined constitution or reaction products thereof, e.g. transplant tissue, natural bone, extracellular matrix
- A61L27/3604—Materials for grafts or prostheses or for coating grafts or prostheses containing ingredients of undetermined constitution or reaction products thereof, e.g. transplant tissue, natural bone, extracellular matrix characterised by the human or animal origin of the biological material, e.g. hair, fascia, fish scales, silk, shellac, pericardium, pleura, renal tissue, amniotic membrane, parenchymal tissue, fetal tissue, muscle tissue, fat tissue, enamel
- A61L27/3629—Intestinal tissue, e.g. small intestinal submucosa
-
- A—HUMAN NECESSITIES
- A61—MEDICAL OR VETERINARY SCIENCE; HYGIENE
- A61F—FILTERS IMPLANTABLE INTO BLOOD VESSELS; PROSTHESES; DEVICES PROVIDING PATENCY TO, OR PREVENTING COLLAPSING OF, TUBULAR STRUCTURES OF THE BODY, e.g. STENTS; ORTHOPAEDIC, NURSING OR CONTRACEPTIVE DEVICES; FOMENTATION; TREATMENT OR PROTECTION OF EYES OR EARS; BANDAGES, DRESSINGS OR ABSORBENT PADS; FIRST-AID KITS
- A61F2240/00—Manufacturing or designing of prostheses classified in groups A61F2/00 - A61F2/26 or A61F2/82 or A61F9/00 or A61F11/00 or subgroups thereof
- A61F2240/001—Designing or manufacturing processes
Landscapes
- Health & Medical Sciences (AREA)
- Life Sciences & Earth Sciences (AREA)
- Engineering & Computer Science (AREA)
- Biomedical Technology (AREA)
- Chemical & Material Sciences (AREA)
- Veterinary Medicine (AREA)
- Oral & Maxillofacial Surgery (AREA)
- Public Health (AREA)
- General Health & Medical Sciences (AREA)
- Animal Behavior & Ethology (AREA)
- Transplantation (AREA)
- Epidemiology (AREA)
- Medicinal Chemistry (AREA)
- Dermatology (AREA)
- Chemical Kinetics & Catalysis (AREA)
- Botany (AREA)
- Molecular Biology (AREA)
- Zoology (AREA)
- Urology & Nephrology (AREA)
- Cardiology (AREA)
- Heart & Thoracic Surgery (AREA)
- Vascular Medicine (AREA)
- Materials For Medical Uses (AREA)
- Prostheses (AREA)
Abstract
SE DESCRIBEN UNA CONSTRUCCION DE INJERTOS TISULARES MULTI LAMINARES, UNITARIOS Y PERFORADOS Y EL PROCEDIMIENTO PARA PREPARAR DICHA CONSTRUCCION. EL PROCEDIMIENTO COMPRENDE LA SUPERPOSICION DE TIRAS DE TEJIDO SUBMUCOSO CON OTRAS TIRAS DEL MISMO TEJIDO COMPRIMIENDO AL MENOS LAS PORCIONES SUPERPUESTAS DE LAS CITADAS TIRAS ENTRE DOS SUPERFICIES, EN CONDICIONES QUE PERMITAN O FOMENTEN LA DESHIDRATACION DE LAS LAMINAS SUBMUCOSAS COMPRIMIDAS, PERFORANDOSE LA CONSTRUCCION UNITARIA RESULTANTE DE INJERTO TISULAR. LAS COMPOSICIONES DE INJERTOS TISULARES PERFORADAS TIENEN PROPIEDADES MECANICAS Y DE REMODELADO SUPERIORES EN RELACION CON LOS INJERTOS TISULARES SUBMUCOSOS NO PERFORADOS.
Description
Construcciones para injertos a base de tejidos
submucosos, dotados de perforaciones.
La presente invención se refiere a
construcciones para injertos a base de tejidos útiles para la
estimulación de la regeneración y curación de estructuras de
tejidos dañados o enfermos. De manera más particular, la presente
invención se dirige a construcciones para injertos a base de tejidos
submucosos, dotados de perforaciones, conformados a partir de
tejido submucoso de vertebrados de sangre caliente y se refiere
asimismo a un procedimiento para la obtención de dichas
construcciones.
Se sabe que las composiciones que comprenden la
túnica submucosa delaminada a partir de la túnica muscular y como
mínimo de la parte luminal de la túnica mucosa del intestino de los
vertebrados de sangre caliente pueden ser utilizadas como
materiales de injerto de tejido. Véanse, por ejemplo, las Patentes
U.S.A. Nº 4.902.508 y 5.281.422. Las composiciones descritas en
dichas Patentes se caracterizan por propiedades mecánicas
excelentes, incluyendo alta adaptabilidad, un elevado punto de
presión de reventamiento, y un índice de porosidad efectivo que
permiten la utilización de dichas composiciones de forma beneficiosa
para las construcciones para injertos vasculares y en aplicaciones
de sustitución del tejido conectivo. Cuando son utilizadas en dichas
aplicaciones, las construcciones para injertos submucosos parecen
servir como una matriz para la regeneración de los tejidos
sustituidos por las construcciones para injertos. También, de manera
significativa, en 600 implantes cruzados entre especies, las
composiciones de injerto de derivados de la submucosa no han
mostrado en ningún caso que den lugar a reacciones de rechazo al
injerto de tejido.
Las matrices derivadas de la submucosa adecuadas
para la utilización de acuerdo con la presente invención son
matrices biodegradables a base de colágeno que incluyen colágenos
altamente conservados, glucoproteínas, proteoglucanos, y
glucosaminoglucanos en sus configuraciones y concentraciones
naturales. Una matriz de colágeno extracelular para la utilización
en esta invención es el tejido submucoso de los vertebrados de
sangre caliente. El tejido submucoso puede obtenerse a partir de
diversas fuentes, por ejemplo, tejido intestinal cultivado a partir
de animales criados para la producción de carne, tal como porcinos,
ganado vacuno y ovejas u otros vertebrados de sangre caliente. El
tejido submucoso de los vertebrados es un abundante subproducto de
las operaciones de producción comercial de carnes, y resulta en
consecuencia un material de injerto de tejidos de bajo coste.
Una limitación de las construcciones para
injertos submucosos descritas en las patentes mencionadas
anteriormente es que el tamaño del injerto está restringido por el
tamaño del material de partida a partir del que se prepara el
tejido submucoso. Por ejemplo, el tamaño de un injerto de tejido
submucoso preparado a partir de tejidos intestinales está limitado
por la longitud y perímetro de los segmentos originales del tejido
intestinal. Sin embargo, varias aplicaciones de las construcciones
para injertos a base de tejido submucoso, que comprenden la
reparación de hernias, injertos de piel, cubiertas meníngeas,
reparación de gastrosquisis (defectos estomacales congénitos) y
sustitución de tejido de órganos, con frecuencia precisan láminas de
material de injerto de grandes dimensiones que se pueden preparar
directamente a partir de fuentes naturales.
Es posible preparar láminas de tejido submucoso
de grandes dimensiones a partir de pequeños segmentos de tejido
submucoso mediante técnicas convencionales, tales como tejido,
tricotado o mediante la utilización de adhesivos. No obstante, la
implementación comercial de dichas técnicas con frecuencia resulta
poco práctica y costosa. Además, la utilización de adhesivos o
tratamiento químico previo para promover la adhesión de las tiras de
tejido puede comprometer las propiedades biotrópicas de los
injertos submucosos. Por lo tanto, existe necesidad de una
construcción para injertos a base de tejido submucoso de bajo coste,
de fácil fabricación y área de superficie de gran tamaño que
conserve sus propiedades biotrópicas.
Según una realización de la presente solicitud,
las construcciones para injertos a base de tejido submucoso con
áreas de superficie de gran tamaño se conforman a partir de
múltiples fragmentos de matrices derivadas de la submucosa de
vertebrados. Los elementos laminares unitarios (es decir,
construcciones para injertos de un solo fragmento) de tejido
submucoso se preparan según la presente invención, fusionando entre
sí múltiples tiras de tejido submucoso hasta conformar una lámina
de tejido con un área de superficie de mayores dimensiones que
cualquiera de las tiras componentes del tejido submucoso. El proceso
comprende las fases de superposición de una parte como mínimo de
una tira de tejido submucoso con una parte como mínimo de otra tira
de tejido submucoso, y la aplicación de una presión como mínimo a
dichas partes superpuestas en condiciones que permitan la
deshidratación del tejido submucoso y la perforación como mínimo de
las partes superpuestas de tejido submucoso. En las condiciones
mencionadas, las partes superpuestas se "fusionarán" para
conformar un elemento laminar unitario de tejido de gran tamaño.
Estas construcciones para injertos con áreas de superficie de gran
tamaño consisten de manera esencial en tejido submucoso, libre de
adhesivos y tratamientos químicos previos potencialmente
comprometedores, y tienen un área de superficie de mayor tamaño y
una resistencia mecánica mayor que las tiras individuales
utilizadas para conformar la construcción para injertos.
Las tiras individuales de tejido submucoso
preparadas a partir de los tejidos de vertebrados de sangre caliente
presentan propiedades mecánicas que son direccionalmente
específicas (es decir, las propiedades físicas varían a lo largo de
los distintos ejes del tejido). Estas características direccionales
vienen determinadas principalmente por la orientación del colágeno
dentro del tejido. Las fibras de colágeno representan los
constituyentes de soporte de carga del interior del tejido
submucoso intestinal y se encuentran predominantemente orientados
de forma paralela al eje del lumen intestinal. Esta distribución
longitudinal de colágeno en el tejido submucoso intestinal
contribuye a la variabilidad direccional de las propiedades físicas
de las construcciones de tejido submucoso.
Se pueden preparar construcciones para injertos
de láminas múltiples pseudoisotrópicas a partir de múltiples tiras
de tejido submucoso. El término "pseudoisotrópico", según se
utiliza en el presente documento, describe un material de injerto
con propiedades físicas aproximadamente similares a lo largo de cada
eje del material de injerto. Estas construcciones para injertos de
láminas múltiples pseudoisotrópicas se preparan a partir de tiras
individuales de tejido submucoso o láminas de tejido submucoso
compuestas por tiras de tejido submucoso. El procedimiento de
preparación de las construcciones para injertos pseudoisotrópicas
consiste en superponer una parte de una primera tira (o lámina) con
una segunda tira (o lámina), estando la segunda tira (o lámina)
orientada en un plano paralelo a la primera tira (o lámina), pero
girada de forma que el eje longitudinal de la primera tira (o
lámina) forme un ángulo relativo al eje longitudinal de la segunda
tira (o lámina). Se pueden añadir tiras (o láminas) adicionales de
forma similar con el fin de crear una estructura de láminas
múltiples con un número deseado de capas de láminas. A continuación,
las tiras (o láminas) submucosas individuales se fusionan entre sí
conformando una construcción pseudoisotrópica unitaria de láminas
múltiples aplicando presión como mínimo sobre las partes
superpuestas de tejido submucoso.
La presente invención se dirige a una
construcción para injertos a base de tejido submucoso y a un
procedimiento para la preparación de dicha construcción del tipo
expuesto en las reivindicaciones 1 y 14 adjuntas. La mejora
consiste en practicar una pluralidad de perforaciones en las
construcciones para injertos a base de tejido submucoso. Las
perforaciones permiten que los fluidos extracelulares atraviesen el
material de injerto de tejido, disminuyendo la retención de fluidos
dentro del injerto y mejorando las propiedades de remodelado de los
injertos de tejido. La perforación del tejido submucoso resulta
beneficiosa de manera especial para las construcciones de láminas
múltiples de injerto de tejidos, en las cuales las mencionadas
perforaciones mejoran además la fuerza adhesiva entre las
capas
adyacentes.
adyacentes.
Las figuras 1a-c son una
representación esquemática de una construcción para injertos
homolaminar conformada a partir de múltiples tiras de tejido
submucoso.
Las figuras 2a-c son una
representación esquemática de una construcción para injertos
heterolaminar pseudoisotrópica conformada a partir de cuatro tiras
de tejido submucoso.
Las figuras 3a-c son una
representación esquemática de una construcción para injertos
heterolaminar pseudoisotrópica conformada a partir de tres láminas
de tejido submucoso, en la que cada lámina está formada por
múltiples tiras de tejido submucoso.
La figura 4 es una representación esquemática de
un dispositivo adecuado para practicar perforaciones en los
injertos de tejido submucoso según la presente invención.
Se da a conocer, según esta invención, una
construcción perfeccionada de injerto de tejido submucoso,
comprendiendo la construcción perfeccionada un injerto de tejido
submucoso con una pluralidad de perforaciones distribuidas a lo
largo del injerto. En las realizaciones preferentes, las
perforaciones poseen un tamaño uniforme y se encuentran
distribuidas de manera uniforme a lo largo de toda la superficie del
injerto. Además, la presente invención da a conocer un
procedimiento para la preparación de construcciones para injertos a
base de tejidos submucosales dotados de perforaciones.
El tejido submucoso adecuado para su utilización
en la conformación de las presentes construcciones para injertos
comprenden proteínas de matriz extracelular, glucoproteínas y otros
factores asociados de forma natural. Una fuente de tejido submucoso
es el tejido intestinal de los vertebrados de sangre caliente. El
tejido del intestino delgado es una fuente preferente de tejido
submucoso para la utilización en la presente invención.
El tejido submucoso intestinal adecuado
comprende de manera típica la túnica submucosa delaminada a partir
de la túnica muscular y como mínimo la parte luminal de la túnica
mucosa. En una realización de la presente invención, el tejido
intestinal submucoso comprende la túnica submucosa y las partes
basilares de la túnica mucosa, incluyendo la mucosa muscular
laminar y el stratum compactum, siendo sabido que dichas
capas varían de espesor y en su definición dependiendo de la
especie vertebrada fuente.
La preparación del tejido submucoso para la
utilización de acuerdo con la presente invención se encuentra
descrita en la Patente U.S.A. Nº 4.902.508.
Un segmento de intestino de vertebrado, de
manera preferente cultivado a partir de especies porcina, ovina o
bovina, pero sin excluir otras especies, se somete a abrasión
utilizando un movimiento de limpieza longitudinal para eliminar las
capas exteriores, que comprenden tejidos musculares lisos, y la capa
más interior, es decir, la parte luminal de la túnica mucosa. El
tejido submucoso se aclara con solución salina y de manera opcional
se esteriliza.
Las construcciones para injertos a base de
tejido submucoso de láminas múltiples de la presente invención
pueden esterilizarse utilizando técnicas de esterilización de tipo
convencional, incluyendo el curtido con glutaraldehído, el curtido
con formaldehído en pH ácido, el tratamiento con óxido de propileno
o con óxido de etileno, la esterilización con gas plasma, radiación
gamma o haz de electrones, y la esterilización con ácido
peracético. Resultan preferentes las técnicas de esterilización que
no tienen un efecto adverso sobre la resistencia mecánica, la
estructura y las propiedades biotrópicas del tejido submucoso. Por
ejemplo, la radiación gamma fuerte puede producir la pérdida de
resistencia de las láminas de tejido submucoso. Las técnicas de
esterilización preferentes incluyen la exposición del injerto a
ácido peracético, irradiación gamma de 1 - 4 Mrads (de manera más
preferente 1 - 2,5 Mrads de irradiación gamma), tratamiento con
óxido de etileno o esterilización con gas plasma; la esterilización
con ácido peracético es el procedimiento de esterilización más
preferente. De manera típica, el tejido submucoso se somete a dos o
más procesos de esterilización. Después que el tejido submucoso es
esterilizado, por ejemplo, mediante un tratamiento químico, el
tejido puede ser envuelto en un plástico o funda laminar y
esterilizado nuevamente utilizando técnicas de esterilización de
irradiación con haz de electrones o radiación gamma.
El tejido submucoso puede almacenarse en un
estado hidratado o deshidratado. El tejido submucoso liofilizado o
secado por aire puede hidratarse nuevamente y utilizarse de acuerdo
con la presente invención sin una pérdida significativa de sus
propiedades biotrópicas y mecánicas.
Las láminas flexibles de tejido submucoso con
áreas de superficie de gran tamaño están formadas por múltiples
tiras de tejido submucoso. Las dimensiones de las tiras individuales
de tejido submucoso utilizadas no resultan críticas y el término
"tira de tejido submucoso" se define en el presente documento
de modo que incluya el tejido submucoso procedente de una o más
fuentes u órganos de vertebrados con una amplia diversidad de
tamaños y formas. En una realización, las tiras se conforman a
partir de un segmento delaminado de tejido intestinal que de forma
opcional, pero preferentemente, se corta y se extiende para
conseguir tiras alargadas de tejido submucoso con dos lados,
generalmente paralelos, y extremos opuestos. El término "lámina de
tejido submucoso" se define en el presente documento de forma
que incluya construcciones de tejido que comprenden múltiples tiras
de tejido submucoso, estando las tiras superpuestas de manera que
conformen una construcción con un área de superficie mayor que
cualquiera de las láminas individuales utilizadas para conformar
dicha construcción. El término "capas de tejido submucoso" se
refiere a la lámina individual de una construcción de tejido
submucoso de láminas múltiples.
Las láminas unitarias de tejido submucoso con
áreas de superficie de gran tamaño se conforman superponiendo tiras
de tejido submucoso individuales y aplicando presión sobre las
partes superpuestas para fusionar los tejidos entre sí. La presión
se aplica sobre el tejido superpuesto en condiciones que permitan la
deshidratación del tejido submucoso. Las láminas de tejido
submucoso con áreas de superficie de gran tamaño pueden conformarse
o bien como una lámina heterolaminar o bien como una lámina
homolaminar. El término "heterolaminar", según se utiliza en
el presente documento, se refiere a un tejido de láminas múltiples
con un número variable de láminas de submucosa superpuestas (y
fusionadas) en distintos puntos de la construcción para injertos
unitaria. El término "homolaminar", según se utiliza en el
presente documento, se refiere a una construcción de láminas
múltiples de injerto de tejidos con un número uniforme de láminas de
submucosa
\hbox{superpuestas en todos los puntos de la construcción para injertos unitaria.}
En una realización, el procedimiento de
formación de láminas de tejido submucoso con áreas de superficie de
gran tamaño comprende las fases de superposición de una parte como
mínimo de una tira de tejido submucoso con una parte como mínimo de
una segunda tira de tejido submucoso, y la aplicación de una presión
como mínimo a dichas partes superpuestas en condiciones que
permitan la deshidratación del tejido submucoso. La cantidad de
superposición de tejido entre las tiras adyacentes de tejido
submucoso se puede variar en función del uso previsto y de las
propiedades deseadas de la construcción para injertos de área de
superficie de gran tamaño, siempre que como mínimo una parte de
cada tira de tejido submucoso se superponga con una parte de otra
tira de tejido submucoso. La presión aplicada fusiona las tiras de
tejido submucoso entre sí a lo largo de las partes superpuestas,
dando lugar a una lámina de tejido submucoso unitaria, heterolaminar
y flexible.
En otra realización, se puede preparar una
lámina unitaria de tejido submucoso homolaminar a partir de tiras
de tejido submucoso. El procedimiento de conformación de la
construcción para injertos a base de tejidos homolaminar comprende
los pasos de conformar una primera capa de tejido submucoso, en la
que las tiras de tejido submucoso se sitúan lado a lado sobre una
primera superficie. Las tiras de tejido submucoso de la primera capa
se sitúan adyacentes entre sí, de modo que los bordes de las tiras
individuales se encuentren en contacto entre sí sin superponerse
sustancialmente. Seguidamente, la primera capa de tejido submucoso
es superpuesta con una segunda capa de tejido submucoso. Las tiras
de tejido submucoso de la segunda capa se sitúan adyacentes entre
sí, de un modo similar a las tiras de tejido submucoso de la
primera capa (es decir, adyacentes entre sí de modo que los bordes
de las tiras individuales se encuentren en contacto entre sí sin
superponerse sustancialmente). En una realización, las tiras de
tejido submucoso de la segunda capa están orientadas en la misma
dirección que las tiras de tejido submucoso de la primera capa,
pero desplazadas en relación con las tiras submucosas de la primera
capa, de modo que los bordes de contacto de las tiras individuales
de tejido submucoso de la primera capa están conectadas mediante
las tiras individuales de tejido submucoso de la segunda capa (ver
las figuras 1a-c). A continuación, las partes
superpuestas de las tiras de tejido submucoso se comprimen entre
dos superficies, siendo como mínimo una de las dos superficies
permeable al agua, en condiciones que permitan como mínimo la
deshidratación parcial del tejido submucoso comprimido.
De forma ventajosa, tanto las láminas de tejido
submucoso con áreas de superficie de gran tamaño heterolaminares
como homolaminares comprenden esencialmente tejido submucoso,
presentan una resistencia mecánica perfeccionada y poseen una mayor
área de superficie que cualquiera de las tiras individuales
utilizadas para conformar las láminas submucosas.
El tejido submucoso tiene de manera típica una
superficie abluminal y una superficie luminal. La superficie
luminal es la superficie submucosa que se encuentra enfrentada al
lumen o cavidad del órgano fuente y de manera típica es adyacente a
una capa mucosa interna in vivo, mientras que la superficie
abluminal es la superficie submucosa que se encuentra orientada en
la dirección contraria al lumen del órgano fuente y de manera típica
se encuentra en contacto con tejido muscular liso in vivo.
Las múltiples tiras de tejido submucoso pueden ser superpuestas por
la superficie abluminal en contacto con la superficie luminal, por
la superficie luminal en contacto con la superficie luminal, o por
la superficie abluminal en contacto con la superficie abluminal de
una tira de tejido submucoso adyacente. Todas estas combinaciones de
tiras de tejido submucoso superpuestas procedentes de la misma o
distintas fuentes u órganos de vertebrados darán lugar a una lámina
de tejido submucoso con área de superficie de gran tamaño al
comprimir como mínimo las partes superpuestas en condiciones que
permitan la deshidratación del tejido.
Las tiras de tejido submucoso se pueden
acondicionar, según se describe en la Patente U.S.A. Nº 5.275.826
de modo que se alteren las propiedades viscoelásticas del tejido
submucoso. Según una realización, la submucosa delaminada de la
túnica muscular y de la parte luminal de la túnica mucosa se
acondiciona de forma que sufra una deformación no superior al 20%.
El tejido submucoso se acondiciona mediante estiramiento,
tratamiento químico, tratamiento enzimático o exposición del tejido
a otros factores ambientales. En una realización, las tiras de
tejido submucoso intestinal se acondicionan mediante estiramiento en
una dirección longitudinal o lateral de forma que las tiras de
tejido submucoso intestinal sufran una deformación no superior al
20%. Las tiras submucosas acondicionadas se pueden utilizar para
conformar láminas con áreas de superficie de gran tamaño o
estructuras de láminas múltiples según la presente invención. De
manera alternativa, el material submucoso se puede acondicionar
tras la conformación de láminas con áreas de superficie de gran
tamaño o construcciones de láminas múltiples con áreas de
superficie de gran tamaño para producir un material de tejido
submucoso con una deformación no superior al 20%.
Durante la conformación de las láminas de tejido
submucoso con áreas de superficie de gran tamaño, se aplica presión
sobre las partes superpuestas comprimiendo el tejido submucoso entre
dos superficies. Las dos superficies pueden estar hechas de
diversos materiales y presentar cualquier forma, dependiendo de la
forma y especificaciones deseadas de la construcción para injertos
unitaria. De manera típica, las dos superficies están conformadas
como placas planas, pero también pueden presentar otras formas tales
como rejillas, cilindros o rodillos opuestos y superficies no
planas complementarias. Cada una de estas superficies puede estar
opcionalmente calentada o perforada. En las realizaciones
preferentes, como mínimo una de las dos superficies es permeable al
agua. El término superficie permeable al agua, según se utiliza en
el presente documento, incluye superficies que son
hidroabsorbentes, microporosas o macroporosas. Entre los materiales
macroporosos se incluyen las placas perforadas o mallas hechas de
plástico, metal, cerámica o madera.
El tejido submucoso se comprime, de acuerdo con
una realización, colocando las partes superpuestas de las tiras de
tejido submucoso sobre una primera superficie y colocando una
segunda superficie sobre la superficie submucosa expuesta. A
continuación se aplica una fuerza para obligar a dichas superficies
una hacia la otra, comprimiendo el tejido submucoso entre las
mismas. La fuerza de sesgo se puede generar mediante cualquier
número de procedimientos conocidos por los expertos en la materia,
incluyendo el paso del aparato a través de un par de rodillos de
pinzado (siendo la distancia entre la superficie de los dos rodillos
menor que la distancia original entre las dos placas), la
aplicación de un peso sobre la placa superior, y el uso de una
prensa hidráulica o la aplicación de presión atmosférica sobre las
dos superficies.
En una realización preferente, las tiras de
tejido submucoso se someten a condiciones que permiten la
deshidratación del tejido submucoso concurrente con la compresión
del tejido. El término "condiciones que permitan la deshidratación
del tejido submucoso" se define de modo que incluya cualquier
situación mecánica o ambiental que promueva o induzca la
eliminación de agua del tejido submucoso como mínimo en los puntos
de superposición. Para promover la deshidratación del tejido
submucoso comprimido, como mínimo una de las dos superficies que
comprimen el tejido es permeable al agua. Opcionalmente, la
deshidratación del tejido se puede aumentar aún más aplicando un
material secante, calentando el tejido o haciendo circular aire a lo
largo del exterior de las dos superficies de compresión.
Las múltiples tiras de tejido submucoso se
comprimen típicamente durante 12-48 horas a
temperatura ambiente, aunque también se puede aplicar calor. Por
ejemplo, se puede aplicar una manta calefactora al exterior de las
superficies de compresión para aumentar la temperatura del tejido
comprimido hasta entre aproximadamente 40ºC y aproximadamente 50ºC.
Por lo general, las partes superpuestas se comprimen durante un
tiempo determinado por el grado de deshidratación del tejido. La
utilización de calor aumenta la tasa de deshidratación y, así pues,
disminuye el tiempo que se deben comprimir las partes superpuestas
de tejido. De manera típica, el tejido se comprime durante un
tiempo suficiente para producir un material fuerte pero flexible. La
deshidratación suficiente del tejido es también indicada por un
incremento de la impedancia de la corriente eléctrica que fluye a
través del tejido. Cuando la impedancia ha aumentado unos
100-200 ohmios, el tejido está suficientemente
deshidratado y se puede liberar la presión.
El tejido submucoso comprimido se puede retirar
de las dos superficies como una construcción unitaria flexible de
tejido de área de superficie de gran tamaño. La construcción se
puede manipular adicionalmente (es decir, cortarse, doblarse,
suturarse, etc.) de forma que se adapte a diversas aplicaciones
médicas en las que se requiere en material submucoso de la presente
invención.
De manera opcional, se puede aplicar un vacío a
un tejido submucoso durante el procedimiento de compresión. El
vacío aplicado potencia la deshidratación del tejido y puede ayudar
a la compresión del mismo. De manera alternativa, la aplicación de
un vacío puede representar la única fuerza de compresión para
comprimir las partes superpuestas de las múltiples tiras de tejido
submucoso. Por ejemplo, el tejido submucoso superpuesto se extiende
entre dos superficies, siendo preferentemente una de las mismas
permeable al agua. El aparato se cubre con material secante, para
absorber el agua, y una capa de ventilación para permitir que fluya
en aire. A continuación, el aparato se coloca en una cámara de
vacío y se aplica vacío, comprendido de manera general entre
14-70 pulgadas (36-179 cm) de Hg
(0,48-2,41 bar) (7-35 psi).
Preferentemente, se aplica un vacío de aproximadamente 51 pulgadas
(131 cm) de Hg (1,72 bar) (25 psi). De manera opcional, se puede
disponer una manta calefactora en la parte superior de la cámara
para calentar el tejido submucoso durante la compresión del tejido.
Los expertos en la materia están familiarizados con las cámaras
adecuadas para la utilización de esta realización, y éstas incluyen
cualquier dispositivo que esté equipado con una toma de vacío. La
caída de presión atmosférica resultante actúa conjuntamente con las
dos superficies para comprimir el tejido submucoso y deshidratarlo
de manera simultánea.
De manera opcional, las construcciones de tejido
con áreas de superficie de gran tamaño se pueden conformar en una
serie de formas para aplicaciones de injerto de tejidos. Por
ejemplo, en aplicaciones de reconstrucción de órganos, las láminas
con áreas de superficie de gran tamaño se pueden conformar en forma
de una esfera hueca o bolsa. Dicha construcción conformada
resultará ventajosa en la sustitución de regiones de gran tamaño de
la vejiga urinaria o del estómago. Estas construcciones conformadas
de tejido submucoso se pueden conformar mediante técnicas
convencionales, tales como corte y sutura del tejido para conseguir
una forma deseada.
De manera alternativa, las tiras de tejido
submucoso se pueden conformar como una lámina de tejido submucoso
de gran tamaño con una forma no plana mediante un procedimiento de
fabricación sencillo. El procedimiento consta de las etapas de
disponer múltiples tiras de tejido submucoso entre dos superficies
con formas no planas complementarias y comprimir entre las dos
superficies las tiras superpuestas de tejido submucoso. Las
superficies con formas complementarias se conforman de modo que las
dos superficies se puedan comprimir entre sí de forma que las
superficies alcancen un contacto total entre sí sin dejar
prácticamente ninguna bolsa de aire entre las dos superficies.
Preferentemente, como mínimo una de las dos superficies
complementarias es permeable al agua.
Un procedimiento para la conformación de una
construcción submucosa conformada consiste en disponer múltiples
tiras de tejido submucoso sobre una superficie porosa conformada no
plana de tal modo que el tejido submucoso se amolde a la forma de
la superficie porosa. Preferentemente, el tejido submucoso se
dispone sobre la superficie porosa sin estirar el material, no
obstante, el tejido submucoso se puede estirar para facilitar el
recubrimiento de la superficie porosa conformada. Cada una de las
tiras de tejido submucoso se dispone sobre la superficie porosa de
forma que se superponga sobre como mínimo una parte de una tira
adyacente de tejido submucoso. A continuación, las partes
superpuestas del tejido submucoso se cubren con una segunda
superficie conformada que presenta una forma complementaria de la
primera superficie porosa y se aplica presión para comprimir el
tejido submucoso entre las dos superficies en condiciones que
permitan la deshidratación del tejido submucoso.
De manera alternativa, las láminas con áreas de
superficie de gran tamaño de la presente invención se pueden
conformar con una forma no plana estirando la lámina con área de
superficie de gran tamaño mediante la utilización de un
procedimiento de prensa de matriz, en el que el tejido submucoso se
prensa hasta conseguir una forma no plana mediante una matriz
porosa en condiciones de deshidratación, de manera que el injerto de
tejidos conformado mantenga su forma. Preferentemente, en tal
procedimiento se utiliza un elemento laminar de láminas múltiples
con áreas de superficie de gran tamaño.
Las construcciones de tejido submucoso de
láminas múltiples se conforman, de acuerdo con la presente
invención, superponiendo una parte de una tira de tejido submucoso
con una parte de otra tira de tejido submucoso. De un modo similar,
se pueden conformar construcciones para injertos a base de tejidos
de láminas múltiples con áreas de superficie de gran tamaño, de
acuerdo con la presente invención, superponiendo una lámina de
tejido submucoso (conformada según se ha descrito anteriormente)
sobre, como mínimo, una parte de una segunda lámina de tejido
submucoso. El tamaño y las propiedades físicas de la construcción de
tejido submucoso de láminas múltiples se puede regular mediante el
número de tiras de tejido submucoso superpuestas y el porcentaje de
parte superpuesta de cada
tira.
tira.
Las construcciones de tejido de láminas
múltiples se conforman, de acuerdo con la presente invención,
superponiendo sobre, como mínimo, una parte de una tira de tejido
submucoso una parte de otra tira de tejido submucoso, para formar
una primera lámina. Se disponen tiras adicionales de tejido
submucoso sobre las partes superpuestas de la primera lámina para
formar una segunda lámina, donde los bordes de las tiras de la
segunda lámina se encuentran situadas, opcionalmente, formando un
ángulo agudo con respecto a los bordes de las tiras de la primera
lámina, y donde dicha segunda lámina conformada es coplanar con
respecto a la primera lámina. Las tiras de tejido submucoso de la
segunda lámina se pueden colocar de forma que como mínimo una parte
de una tira de tejido submucoso de la segunda lámina se superponga
sobre como mínimo una parte de otra tira de tejido submucoso de la
segunda lámina. Se pueden disponen tiras adicionales de tejido
submucoso sobre las partes superpuestas de la primera y segunda
láminas para conseguir capas adicionales de tejido submucoso.
Seguidamente, las múltiples capas de tejido submucoso se comprimen
en condiciones de deshidratación para conformar una construcción de
tejido submucoso heterolaminar de pliegues múltiples con una área de
superficie mayor que cualquiera de las tiras individuales de tejido
submucoso utilizadas para conformar dicha construcción de capas
múltiples.
En una realización de la presente invención, el
tejido submucoso se corta en forma de tiras, presentando cada tira,
de manera general, lados paralelos, y se utilizan para conformar la
construcción heterolaminar de capas múltiples de la presente
invención. En esta realización, las tiras de tejido submucoso de la
segunda lámina se disponen sobre las partes superpuestas de la
primera lámina de tal forma que los bordes de las tiras submucosas
de la primera lámina se encuentren formando un ángulo relativo a los
bordes de las tiras submucosas de la segunda lámina. Las partes
superpuestas de tejido submucoso se comprimen en condiciones de
deshidratación para conformar la construcción heterolaminar de
capas múltiples.
Se pueden conformar las construcciones para
injertos a base de tejidos de láminas múltiples de manera que
presenten propiedades pseudoisotrópicas. Estos injertos de tejidos
pseudoisotrópicos se preparan a partir de como mínimo tres tiras de
tejido submucoso intestinal delaminado, tanto de la túnica muscular
como de la parte luminal de la túnica mucosa de un vertebrado de
sangre caliente. Cada una de las tiras de tejido submucoso
intestinal comprende un eje longitudinal correspondiente a la
orientación predominante de las fibras de colágeno en las tiras de
tejido submucoso. El procedimiento para la conformación de las
construcciones para injertos pseudoisotrópicas consiste en disponer
una primera tira de tejido submucoso sobre una primera superficie,
superponer dicha primera tira sobre como mínimo dos tiras
adicionales de tejido submucoso de forma que los ejes
longitudinales de cada tira individual de tejido submucoso formen un
ángulo de aproximadamente 180º/N con el eje longitudinal de como
mínimo otras dos tiras de tejido submucoso que conformen el injerto
heterolaminar, siendo N = el número total de tiras de tejido
submucoso. (Ver las figuras 2a-c). Por ejemplo, una
construcción para injertos pseudoisotrópicas conformada a partir de
cuatro (4) tiras de tejido submucoso formará un ángulo de 45º
(180º/4 = 45º) entre los ejes longitudinales centrales de cada tira
con referencia a dos de las otras tres tiras que conforman la
construcción para injertos. (Ver las figuras 2a-c).
A continuación, el tejido submucoso (como mínimo las partes
superpuestas) se comprime entre la primera superficie y una segunda
superficie. En una realización, el tejido se comprime en
condiciones que permitan, como mínimo, la deshidratación parcial
del tejido submucoso comprimido y, en una realización preferente,
como mínimo una de dichas superficies es permeable al agua. De
forma ventajosa, los injertos de tejido submucoso se fusionan entre
sí según la presente invención en ausencia de adhesivos o
suturas.
Asimismo, se pueden preparar construcciones para
injertos a base de tejidos con áreas de superficie de gran tamaño,
con propiedades pseudoisotrópicas, a partir de láminas de tejido
submucoso con áreas de superficie de gran tamaño. Estas
construcciones para injertos a base de tejidos pseudoisotrópicas
comprenden múltiples capas de láminas de tejido submucoso, en donde
las láminas de tejido submucoso comprenden tiras superpuestas de
tejido submucoso. Según lo descrito anteriormente, se pueden
conformar láminas de tejido submucoso con áreas de superficie de
gran tamaño a partir de tejido submucoso superpuesto para formar
láminas de tejido submucoso heterolaminares u homolaminares. Tanto
las láminas heterolaminares como las homolaminares resultan
adecuadas para conformar construcciones para injertos a base de
tejidos pseudoisotrópicas con áreas de superficie de gran tamaño
según la presente invención (Ver las figuras
3a-c).
Un procedimiento para la preparación de una
construcción para injertos a base de tejidos de láminas múltiples
con áreas de superficie de gran tamaño, con propiedades
pseudoisotrópicas, comprende la conformación de una primera lámina
de tejido submucoso a partir de múltiples tiras de tejido submucoso
y superponer la primera lámina sobre como mínimo dos láminas
adicionales. Las tiras individuales de tejido submucoso que forman
cada lámina presentan un eje longitudinal correspondiente a la
orientación predominante de las fibras de colágeno en las tiras de
tejido submucoso. La primera lámina se conforma sobre una primera
superficie superponiendo las tiras individuales de tejido
submucoso, de manera que cada tira esté alineada con las tiras
adyacentes y el eje longitudinal de cada tira de tejido submucoso
sea sustancialmente paralelo a los demás. De este modo, las fibras
de colágeno de la primera lámina están alineadas de manera
predominante con una única orientación, de forma que la lámina se
puede caracterizar por tener un eje longitudinal correspondiente a
la orientación predominante de las fibras de colágeno. La lámina
posee una área de superficie mayor que cualquiera de las tiras
individuales utilizadas para conformar la
lámina.
lámina.
Después de conformar la primera lámina de tejido
submucoso, se disponen láminas submucosas adicionales sobre la
parte superior de la primera lámina de la misma manera que se
conformó la primera lámina (es decir, cada lámina de tejido
submucoso del elemento multilaminar comprende tiras superpuestas de
tejido submucoso en las que los ejes longitudinales de las tiras de
tejido submucoso, que comprende cada tira son sustancialmente
paralelos entre sí). Cada lámina individual se superpone con otra
lámina, de manera que los ejes longitudinales de las tiras de
tejido submucoso de la lámina superpuesta forman un ángulo de
aproximadamente 180º/S (S = el número total de láminas de tejido
submucoso), con respecto a los ejes longitudinales de las tiras de
tejido submucoso como mínimo de dos de las otras láminas que
conforman la construcción de láminas múltiples. Una vez superpuesto
el número total de láminas, las láminas de tejido submucoso se
comprimen entre la primera superficie y una segunda superficie en
condiciones que permitan como mínimo la deshidratación parcial del
tejido submucoso comprimido. En las realizaciones preferentes, como
mínimo una de dichas superficies es permeable al agua.
En una realización, tras superponer las
múltiples tiras de tejido submucoso entre sí, las partes
superpuestas son manipuladas para eliminar el aire atrapado y la
mayor parte del agua antes de fusionar las tiras a fin de formar
una única lámina de tejido submucoso. En general, las burbujas de
aire atrapadas y la mayor parte del agua se expulsan utilizando una
fuerza de compresión que se mueve a lo largo de la superficie de las
partes superpuestas. La fuerza de compresión puede tomar la forma
de un cilindro que se hace rodar por toda la superficie de las
partes superpuestas, o, de manera alternativa, las partes
superpuestas se pueden hacer pasar entre dos o más rodillos, siendo
la distancia entre la superficie de los rodillos opuestos menor que
el espesor de la lámina submucosa. Seguidamente, las partes
superpuestas pueden ser comprimidas, si resulta necesario, durante
un período de tiempo adicional en condiciones de deshidratación, con
el fin de fusionar las múltiples tiras en una única lámina de
tejido submucoso según la presente invención.
Las partes en exceso de los injertos
pseudoisotrópicos de láminas múltiples (es decir, aquellas partes
del injerto que tengan un número de lámina menor que N o S) se
pueden retirar tras la conformación del elemento multilaminar.
Además, las propiedades mecánicas del material submucoso de láminas
múltiples se puede adaptar a las necesidades de la aplicación
médica ajustando el porcentaje de superposición entre las tiras
adyacentes de tejido submucoso, alterando el número de capas de
tejido submucoso, variando el ángulo de las capas adyacentes entre
sí, cambiando la permeabilidad al agua de las superficies de
compresión y/o la composición de las superficies de compresión,
seleccionando la forma de las superficies de compresión, y variando
la carga aplicada para comprimir el tejido submucoso
superpuesto.
La presente invención se dirige a una
modificación que mejora la eficacia de las construcciones para
injertos submucosos de láminas múltiples y con áreas de superficie
de gran tamaño como materiales de injerto implantables. Recientes
experimentos han demostrado que el proceso de remodelado resulta más
lento con las construcciones para injertos a base de tejido
submucoso, de láminas múltiples, implantadas que en el caso de los
injertos de tejido submucoso de una o dos capas. Además, las
construcciones para injertos a base de tejido submucoso de láminas
múltiples tienden a acumular fluidos del tejido en bolsas en forma
de quiste situadas entre las láminas adyacentes durante los
primeros 14-28 días posteriores al implante en
lugares de los tejidos blandos (tales como la pared muscular de las
ratas). Las bolsas de fluido resultan perjudiciales para la curación
de las heridas, dado que retrasan crecimiento interno del tejido
conectivo, constituyen un entorno propicio para el crecimiento
bacteriano, y evitan la coaptación de los tejidos corporales
naturales (nativos), que promueve la curación y la resistencia a
la
tracción.
tracción.
La presente invención minimiza las desventajas
asociadas con las construcciones para injertos a base de tejido
submucoso de láminas múltiples practicando perforaciones en las
construcciones para injertos. Se ha descubierto que la realización
de perforaciones en las construcciones para injertos potencian las
propiedades de remodelado in vivo del injerto y potencian la
adhesión de las capas del injerto de tejidos entre sí. Se cree que
las perforaciones promueven el contacto del tejido submucoso con los
fluidos endógenos y las células (aumentando el área de superficie
del injerto implantado) y las perforaciones también sirven como
conducto que permite el paso de los fluidos extracelulares a través
del injerto.
Según la presente invención, el término
"perforación" designa a un agujero que se extiende a través de
toda la construcción para injertos. No obstante, las construcciones
para injertos a base de tejidos que tengan "orificios",
definidos en el presente documento como una cavidad que penetra en
el tejido pero que no se extiende a través de toda la construcción
para injertos, también se encuentran dentro del alcance de la
presente invención. La separación y el tamaño de las perforaciones,
así como la profundidad hasta la que las perforaciones penetran en
el tejido, serán variadas según la resistencia mecánica, porosidad,
tamaño y espesor (número de capas) y otro factores deseados
relacionados con la aplicación del injerto de tejidos. El tamaño de
las perforaciones varía entre 0,5 y 3 mm, más preferentemente entre
0,6 y 2 mm. Las perforaciones están separadas entre sí por una
distancia comprendida entre 2 y 20 mm, de manera más preferente
entre 3 y 7 mm, y, en una realización, las perforaciones se
encuentran separadas de manera uniforme entre sí.
Las perforaciones se practican en el tejido
submucoso mientras el tejido permanece como mínimo parcialmente
hidratado. En las construcciones de tejido submucoso de láminas o
láminas múltiples con áreas de superficie de gran tamaño,
compuestas por múltiples tiras de tejido submucoso fusionadas entre
sí, las perforaciones se practican preferentemente tras la
conformación de la construcción de láminas/láminas múltiples con
áreas de superficie de gran tamaño, y cuando el tejido se ha secado
hasta un contenido de agua de aproximadamente el
10-20% en peso de agua (10-20%
hidratado). El secado suficiente del tejido se puede determinar
pesando el tejido fresco y secando el tejido hasta el
10-20% del peso fresco, o se puede determinar el
secado suficiente midiendo la impedancia, según se ha descrito
anteriormente. Después de la perforación del tejido, el tejido
submucoso se somete a una esterilización terminal y se almacena
según se ha descrito anteriormente.
En una realización, se pueden practicar
orificios (que se extienden sólo parcialmente a través del tejido)
o perforaciones en ambos lados del injerto de tejidos. Además, el
tejido puede ser modificado de manera que incluya perforaciones,
así como orificios, que se extienden sólo parcialmente a través del
tejido. Además, el tejido submucoso puede ser modificado de manera
que incluya una pluralidad de orificios, donde los diversos
subconjuntos de orificios se extienden hasta distintas profundidades
en el tejido, en relación con los demás orificios practicados. Esto
se puede conseguir, por ejemplo, perforando las capas individuales
de tejido submucoso antes de superponer las capas para conformar la
construcción de láminas múltiples. En caso de que alguna de las
capas no sean perforadas o si las perforaciones de las capas
individuales no están alineadas, la construcción de láminas
múltiples conformada tendrá orificios que se extienden hasta
distintas profundidades en el tejido. De manera preferente, el
tejido se perfora siguiendo una distribución uniforme a lo largo de
las superficies del injerto de tejidos, formando de este modo una
serie de agujeros que permiten la comunicación de fluido desde una
primera superficie plana hasta una segunda superficie plana opuesta
del injerto de tejidos. En una realización preferente, la
construcción para injertos se perfora, como mínimo, con 2,0
perforaciones por cm^{2}.
En una realización, las perforaciones se
practican perpendiculares a la superficie de la construcción para
injertos a base de tejidos, es decir, el eje longitudinal de la
perforación/orificio forma un ángulo de 90º con el plano que define
la superficie del injerto. De manera alternativa, las perforaciones
se pueden practicar de forma que el eje de perforación no sea
perpendicular a la superficie del injerto (es decir, de modo que un
eje longitudinal paralelo a la pared que define la
perforación/orificio forme un ángulo de 90º con el plano de la
superficie del injerto). Según una realización, las perforaciones se
practican con un ángulo comprendido entre 45º y 90º con respecto a
la superficie del
injerto.
injerto.
Se prevé que la perforación del tejido submucoso
tenga su mayor impacto sobre las construcciones para injertos
submucosos de láminas múltiples. Los injertos de tejidos de láminas
múltiples pueden ser cortados sin disgregarse y no se delaminan al
sumergirse en agua durante un período (superior a una hora) que
corresponde con el tiempo necesario para implantar la lámina en un
huésped. No obstante, las construcciones de tejido de láminas
múltiples tienden a acumular fluidos del tejido en bolsas en forma
de quiste situadas entre las láminas adyacentes durante los
primeros 14-28 días posteriores al implante en
lugares de los tejidos blandos (tales como la pared muscular de las
ratas). Las perforaciones de la construcción para injertos de
láminas múltiples aliviarán la acumulación de fluidos entre las
capas de la construcción de láminas múltiples disponiendo un
conducto a través de cual el fluido puede salir del tejido. Además,
las perforaciones tendrán un efecto de "grapado" que aumentará
la adhesión de las láminas entre sí.
Por consiguiente, la disposición de orificios en
todo el espesor o en parte del espesor de los injertos de tejidos
de láminas múltiples aporta las siguientes ventajas con respecto a
los elementos laminares de láminas múltiples no perforadas:
- 1.
- Un mayor paso de fluidos (incluidos los fluidos del tejido) a través del material; y
- 2.
- Mayor fuerza adhesiva entre las capas adyacentes.
El tejido submucoso puede ser perforado
utilizando una amplia gama de dispositivos conocidos por los
expertos en la materia. El procedimiento utilizado para perforar el
tejido submucoso no resulta crítico, siempre que se mantenga la
integridad estructural agregada del tejido submucoso.
En las realizaciones preferentes, la perforación
del tejido submucoso no tiene como resultado la eliminación de
cantidades significativas de tejido. Por ejemplo, las perforaciones
se practican clavando un objeto sólido puntiagudo a través del
tejido, de forma que durante la inserción de un objeto sólido el
tejido sea apartado a un lado, en contraposición con la eliminación
del material como consecuencia de la horadación. Otros medios para
la perforación del tejido incluyen el uso de proyectiles,
instrumentos de corte, haces de láser o tratamientos enzimáticos
o
químicos.
químicos.
En una realización, el tejido submucoso se
perfora clavando un alfiler o aguja sólida en el tejido o a través
del mismo. De manera típica, se utiliza una aguja sólida del calibre
20-23 para practicar las perforaciones. De este
modo, durante el proceso de realización de las perforaciones, no se
elimina una cantidad significativa de tejido, sino que una parte de
cada capa es desgarrada y presionada contra una capa adyacente,
consiguiendo un efecto de grapado. Este efecto de "grapado" se
puede potenciar adicionalmente practicando una parte de las
perforaciones desde un lado del injerto y practicando las
perforaciones restantes desde el lado opuesto del injerto.
La figura 4 representa una realización de un
dispositivo para la perforación de las construcciones para injertos
a base de tejido submucoso. El dispositivo comprende una base (1) y
una pluralidad de alfileres de acero inoxidable (2) embebidos en
una base (1) y sobresaliendo a través de la superficie de la base.
La base está formada por partes de Epoxy (E) y Delrin® (D) y tiene
una longitud de 3,2 pulgadas (8.2 cm), una anchura de 1,85 pulgadas
(4,74 cm) y su espesor es de 0,5 pulgadas (1,3 cm). Las partes de
Epoxy y Delrin® tienen, cada una de ellas, una longitud de 3,2
pulgadas (8.2 cm), una anchura de 1,85 pulgadas (4,74 cm) y su
espesor es de 0,25 pulgadas (0,64 cm). Según esta realización, los
alfileres (2) son sustancialmente paralelos entre sí y forman un
ángulo de 90º con la superficie de la base. Los alfileres (2)
tienen un diámetro de 0,040 pulgadas (0,1 cm), están separados por
0,264 pulgadas (0,67 cm) (distancia entre centros de alfileres
adyacentes) dentro de una franja de 0,4 pulgadas (1 cm) desde el
borde del dispositivo, y sobresalen 0,25 pulgadas (0,64 cm) desde la
base. Por lo tanto, el dispositivo incluye un total de cincuenta
alfileres.
\newpage
Ejemplo
1
Se preparó un tejido submucoso a partir de
tejido intestinal de un vertebrado según el procedimiento descrito
en la Patente U.S.A. Nº 4.902.508. Se conformaron tiras de tejido
submucoso a partir de un segmento de tejido intestinal de un
vertebrado de sangre caliente, comprendiendo dicho segmento la
túnica submucosa delaminada tanto de la túnica muscular como de,
como mínimo, la parte luminal de la túnica mucosa de dicho segmento
de tejido intestinal. El segmento de tejido intestinal se cortó a
lo largo del eje longitudinal del segmento y se extendió sobre una
superficie plana. A continuación, el tejido se troceó adicionalmente
en una serie de tiras, cada una de las cuales tenía lados, de
manera general, paralelos.
Se organizaron múltiples tiras de tejido
submucoso sobre una placa perforada de acero inoxidable de 12 por
12 pulgadas (31 por 31 cm), superponiendo una parte de una tira de
tejido submucoso en una parte de la tira adyacente de tejido
submucoso. A continuación se colocó sobre el tejido submucoso una
segunda placa perforada de acero inoxidable de 12 por 12 pulgadas
(31 por 31 cm). Las placas perforadas de acero inoxidable utilizadas
en esta realización presentan perforaciones de 0,045 pulgadas (0,11
cm) dispuestas en un diseño de centros alineados y separadas por
0,066 pulgadas (0.17 cm) entre sí. Se colocó una pesa de
50(100 libras (22,7-45,4 kg) sobre la
segunda placa de acero inoxidable y el tejido se comprimió durante
24 horas a temperatura ambiente.
\vskip1.000000\baselineskip
Ejemplo
2
Se prepararon tiras de tejido submucoso según lo
descrito en el ejemplo 1. Se dispusieron múltiples tiras de tejido
submucoso entre dos placas perforadas de acero inoxidable, de forma
que una parte de una tira de tejido submucoso quedó superpuesta en
una parte de la tira adyacente de tejido submucoso. El aparato
"placa-submucosa-placa" se
colocó sobre una superficie plana y se cubrió con material secante,
para absorber el agua, y una capa de ventilación para permitir que
fluya en aire. A continuación, el aparato se selló en una bolsa de
nailon dotada de una toma de vacío. Se aplicó un vacío (mayor de 28
pulgadas (71,8 cm) de Hg) para extraer el aire del bolsa de vacío,
y la caída de presión atmosférica resultante comprimió y deshidrató
de forma simultánea el tejido submucoso. Después de 24 horas de
aplicación del vacío, la lámina producida resultó estar húmeda y muy
flexible. No se observaron líneas de unión como consecuencia de la
disposición en capas del tejido submucoso, y la resistencia de una
lámina prototipo con un espesor de 8, determinada mediante una
prueba de reventamiento mediante bola (ball burst), resultó de 80
libras (36,3 kg).
\vskip1.000000\baselineskip
Ejemplo
3
Se prepararon tiras de tejido submucoso según lo
descrito en el ejemplo 1. Las tiras de tejido submucoso se
organizaron sobre una rejilla de forma que una parte de una tira de
tejido submucoso quedó superpuesta en una parte de la tira
adyacente de tejido submucoso. Una vez que la rejilla se cubrió con
una capa de tejido submucoso, se aplicó una segunda capa de tejido
submucoso sobre la primera capa, de manera que los bordes de las
tiras submucosas de la segunda capa formasen un ángulo relativo a
los bordes de las tiras submucosas de la primera
capa.
capa.
Después de colocar todas las tiras de tejido
submucoso sobre la rejilla, se colocó otra rejilla sobre las capas
de tejido submucoso y el sándwich "rejilla-tejido
submucoso-rejilla" se comprimió con una carga y
se secó. Este proceso produjo una lámina submucosa seca con áreas
de superficie de gran tamaño que se despegó de la rejilla como una
construcción para injertos unitaria.
\vskip1.000000\baselineskip
Ejemplo
4
El tejido submucoso se sumerge en una solución
de ácido peracético/etanol durante 2 horas a temperatura ambiente
utilizando una relación de 20:1 (mL de solución peracética: gramos
de tejido submucoso) o superior. La solución de ácido
peracético/etanol está formada por un 4% de etanol, un 0,1%
(volumen:volumen) de ácido peracético, y el resto es agua. El 0,1%
del componente de ácido peracético es una dilución de una solución
madre de ácido peracético al 35% disponible comercialmente y
definida según se muestra en la tabla 1. Preferentemente, el tejido
submucoso se agita en un rotor mientras se mantiene sumergido en la
solución de ácido peracético. Transcurridas dos horas, la solución
de ácido peracético se elimina y se sustituye con una cantidad
equivalente de solución de Ringer lactada o solución salina con
tampón fosfato (PBS) y se mantiene la inmersión (con agitación)
durante 15 minutos. El tejido submucoso se somete a cuatro ciclos
adicionales de lavado con Ringer lactada o PBS y a continuación se
aclara con agua estéril durante 15 minutos más.
Composición, % en peso | |
\hskip0,3cm Ácido peracético | 35,5 |
\hskip0,3cm Peróxido de hidrógeno | 6,8 |
\hskip0,3cm Ácido acético | 39,3 |
\hskip0,3cm Ácido sulfúrico | 1,0 |
\hskip0,3cm Agua | 17,4 |
\hskip0,3cm Peróxido de acetilo | 0,0 |
\hskip0,3cm Estabilizador | 500 PPM |
Análisis típico del oxígeno activo, % en peso | |
\hskip0,3cm Oxígeno activo como perácido | 7,97 |
\hskip0,3cm Oxígeno activo como H_{2}O_{2} | 2,40 |
\hskip0,3cm Oxígeno activo total | 10,67 |
Después de la preparación de las construcciones
de láminas múltiples en condiciones estériles, el material se
envasa y se somete a una segunda ronda de esterilización
(esterilización terminal). El tejido se puede envasar en un
plástico que sea permeable al óxido de etileno y someterse a
esterilización mediante etileno según los procedimientos conocidos
por los expertos en la materia. De manera esencial, el material
envasado se expone a óxido de etileno durante cuatro horas a 115ºF
(46ºC). Durante la esterilización, el tejido también se mantiene
con una humedad relativa del 65% durante al menos 75 minutos de las
cuatro horas de tratamiento. La elevada humedad facilita la
absorción del óxido de etileno por parte del tejido. Después de
cuatro horas, el óxido de etileno, la etileno clorhidrina y el
etilenglicol se expulsan con nitrógeno y aire.
Se determina la resistencia de los injertos de
tejido submucosos de láminas múltiples mediante la utilización de
un analizador de tracción con sistema de evaluación de material
(MTS). La construcción de tejido de láminas múltiples se fija
dentro de un bastidor de tensado de cuatro lados (bastidor para
muestras) para conseguir una distribución uniforme del esfuerzo por
toda la construcción de tejido. El nivel inicial del dispositivo se
establece de manera que la parte superior de la bola de acero se
encuentre situada inmediatamente debajo de la muestra de ensayo a
analizar. La manilla del bastidor para muestras se levanta hasta su
posición más elevada, de manera que las mandíbulas de la mordaza
puedan atrapar la muestra de ensayo. La construcción de tejido
submucoso se corta de forma que quepa dentro del bastidor para
muestras, teniendo la apertura de la mordaza un diámetro de una
pulgada y tres cuartos (1,9 cm). Debe incluirse media pulgada (1,3
cm) de material en exceso alrededor del perímetro de la muestra de
ensayo para garantizar una suficiente área de sujeción. El tejido
submucoso se coloca en las mandíbulas de la mordaza, controlándose
la fuerza de apriete por medio de una rueda de pulgar situada en la
mordaza superior.
A continuación, el tejido submucoso sujeto se
presiona sobre una bola metálica con una velocidad controlada
utilizando una interfaz de software del analizador de tracción para
controlar y medir la fuerza ejercida sobre la muestra de ensayo. La
fuerza se incrementan hasta que se produce el fallo de la muestra.
El fallo se define como la carga máxima que corresponde a la
primera aparición de la bola a través de discontinuidades visibles
no naturales en el plano de la muestra. En el caso de que se alcance
la posición más elevada del dispositivo antes del fallo, los
límites del software se accionarán y detendrán el ensayo. El valor
de la carga máxima mostrado en el Microprofiler 458.01 queda
registrado y se retira la muestra.
Se preparó una construcción para injertos a base
de tejidos de láminas múltiples del siguiente modo:
Se prepara una abundante cantidad de tejido
submucoso a partir de intestino de vertebrado, se corta y se
extiende, y se desinfecta con ácido peracético según lo descrito en
el ejemplo 4 (se precisan aproximadamente 70 gramos de tejido
submucoso para un dispositivo de 10 cm x 15 cm). Tras la
esterilización del tejido con ácido peracético deben utilizarse
guantes quirúrgicos, mascarilla facial y gorro para minimizar la
contaminación por materia orgánica y partículas presentes en el
aire.
Se colocan tiras de tejido submucoso sobre una
primera placa perforada de acero inoxidable en la orientación
deseada. Las placas de acero inoxidable utilizadas son placas de
acero inoxidable perforadas con perforaciones redondas de 0,045
pulgadas (0,11 cm) dispuestas en un diseño de centros alineados y
separadas por 0,066 pulgadas (0.17 cm) entre sí. Después de la
formación de una capa de tejido submucoso, el tejido submucoso se
alisa para eliminar las burbujas de aire. Pueden superponerse capas
adicionales hasta que el dispositivo esté completo. El material en
exceso se elimina de alrededor de la estructura de láminas múltiples
con unas tijeras. Se registra el peso de la estructura submucosa de
láminas múltiples. Se coloca una segunda placa de acero inoxidable
(perforadas con perforaciones redondas de 0,045 pulgadas (0,11 cm)
dispuestas en un diseño de centros alineados y separadas por 0,066
pulgadas (0.17 cm) entre sí) sobre la construcción de láminas
múltiples.
De manera opcional, la construcción de láminas
múltiples se puede hacer pasar a través de rodillos de presión para
eliminar el aire atrapado y el agua. Para hacer pasar el material a
través de rodillos de presión, las dos placas metálicas perforadas
que rodean al tejido submucoso se colocan entre dos láminas de
polipropileno (Kimberly Clark, clase 100 "Crew Wipe") y el
aparato completo se coloca entre dos capas de película de bolsa de
nailon (Zip Vac, Auburn WA) que sean mayores de 1º x 1º.
Seguidamente, se hace rodar un cilindro con peso numerosas veces
(como mínimo tres veces) a lo largo del aparato.
Para perforar la construcción para injertos a
base de tejido submucoso de láminas múltiples, el aparato se
desmonta parcialmente para exponer la superficie superior del
injerto de tejidos y se coloca un trozo de película de bolsa de
nailon directamente sobre la capa superior de tejido submucoso. A
continuación, la construcción para injertos a base de tejido
submucoso de láminas múltiples se coloca invertida sobre una
superficie de trabajo de Styrofoam®, y se retira cuidadosamente la
primera placa de acero inoxidable. A continuación, la superficie de
submucosa expuesta se cubre con un trozo de película de bolsa de
nailon. Seguidamente, la construcción para injertos a base de
tejidos se perfora y, entonces, se retira la película superior de
bolsa de nailon. Tras ello, la construcción para injertos a base de
tejido submucoso de láminas múltiples se invierte de nuevo y se
vuelve a colocar sobre la placa perforada de acero inoxidable. La
película de bolsa de nailon se retira de la superficie superior de
la submucosa y se coloca una segunda placa perforada de acero
inoxidable sobre la construcción para injertos a base de tejido
submucoso de láminas múltiples.
A continuación, la construcción para injertos a
base de tejido submucoso de láminas múltiples se comprime en
condiciones de deshidratación del siguiente modo:
Se coloca en una repisa (u otra superficie
horizontal lisa) una capa de material secante (NuGauze) de mayores
dimensiones que el tamaño de las placas perforadas. Las placas de
acero inoxidable con la construcción para injertos a base de tejido
submucoso de láminas múltiples entre las mismas se coloca sobre el
material secante. Se dispone otra capa de material secante (del
mismo tamaño aproximadamente que la primera lámina de material
secante) encima de las placas de acero inoxidable. Se coloca una
capa de ventilación (Zip Vac, Auburn, WA) sobre el material
secante. Preferentemente, la capa de ventilación es ligeramente más
grande que los objetos que cubre.
De manera opcional, se pueden poner electrodos
en contacto con el tejido submucoso para permitir la medición de la
impedancia a través del tejido. De manera típica, el tejido se
comprime durante un tiempo suficiente para producir un material
fuerte pero flexible. La deshidratación suficiente del tejido viene
indicada por un incremento de la impedancia de la corriente
eléctrica que fluye a través del tejido. Cuando la impedancia ha
aumentado unos 100-200 ohms, el tejido está
suficientemente deshidratado y se puede liberar la presión.
Se coloca sobre la repisa un borde de cinta
cromada alrededor del aparato y del área que se va a prensar al
vacío. Se despega la parte posterior de la cinta y se coloca un
trozo de película de bolsa de nailon, que ya tiene unido el puerto
de la tobera, sobre el área encerrada por la cinta cromada (ver las
figuras 3a y 3b) y se adhiere a la cinta. Se enciende la manta
calefactora, si se utiliza, y se pone en marcha la bomba de vacío.
Debe comprobarse que la bolsa no presenta arrugas (y alisarlas si se
encuentran) y que no exista un sellado incorrecto entre la cinta
cromada y la película de bolsa de nailon (y corregirlo si se
detecta). Se debe llevar el vacío hasta un nivel comprendido entre
25 y 30 psi_{vac} (entre 1,72 y 2,07 bar). Después de mantener el
vacío hasta conseguir el nivel de deshidratación deseado
(aproximadamente 24 horas), se rompe el cierre estanco de la bolsa
en una región encintada, se apaga la bomba y se retira la
construcción perforada unitaria de injerto de tejido submucoso de
láminas múltiples. Se pueden utilizar unas tijeras para cortar
cualquier parte de injerto de tejidos que no haya recibido la
cantidad completa de
superposición.
superposición.
\vskip1.000000\baselineskip
Ejemplo
7
La construcción para injertos a base de tejido
submucoso también se puede perforar tras la formación de la
construcción unitaria de láminas múltiples, del siguiente modo. La
construcción de láminas múltiples se conforma según el ejemplo 3.
El sándwich de rejilla/tejido submucoso se retiró del aparato de
secado y se perforó el tejido. El injerto se perforó insertando un
clavo entre la rejilla de alambre y empujando el clavo a través del
tejido en múltiples puntos de la superficie del injerto. A
continuación, el tejido submucoso perforado de láminas múltiples se
cortó en forma de cuadrado (4 1/2 x 4 1/2 pulg.) (11,4 cm x 11,4 cm)
y se marcó para su identificación.
Se preparó una construcción pseudoisolaminar
perforada del siguiente modo: Se dispusieron tiras de tejido
submucoso en 4 capas sobre una rejilla de alambre. La primera capa
se dispuso directamente sobre la rejilla y las tres capas restantes
se superpusieron sobre la primera capa en ángulos de 45º, 90º y 135º
relativos a la primera capa, respectivamente (ver las figuras
2a-c). Se colocó una segunda rejilla sobre el tejido
submucoso, y el tejido se abrazó en sándwich entre la rejilla y se
fijó en forma de C al estante de secado. Se colocó un ventilador
delante del estante y se puso en marcha. Se practicaron orificios en
el tejido siguiendo un diseño de damero, utilizando la rejilla como
guía (es decir, cada espacio alternativo de la rejilla se utilizó
para perforar el tejido). De acuerdo con ello, el diseño presentó el
diseño siguiente:
La perforación del tejido se detuvo antes de su
finalización debido a que el tejido submucoso se estaba
desorganizando. Por consiguiente, el tejido submucoso se secó
durante 25 minutos con el ventilador funcionando. A continuación,
se practicaron el resto de perforaciones en el tejido de acuerdo con
el diseño original.
La lámina se dejó secar toda la noche, se
retiró, se cortó en forma de cuadrado y se etiquetó para su
identificación.
Se prepararon construcciones para injertos a
base de tejidos de láminas múltiples pseudoisotrópicas de ocho
capas según la presente invención. Las construcciones se perforaron
(de manera uniforme) y se comparó la resistencia de estas
construcciones con las construcciones no perforadas utilizando la
prueba de resistencia a la ruptura descrita en el ejemplo 5. Se
llevaron a cabo tres experimentos separados y se registró la fuerza
aplicada en el momento del fallo (en libras).
- a)
- La construcción perforada incluyó perforaciones de 1,0 mm separadas uniformemente por 6,71 mm. Se analizaron cuatro construcciones no perforadas y cuatro construcciones perforadas, y se determinaron los valores medios. La construcción no perforada falló a 94,11 \pm 7 libras (42,7 kg), mientras que la construcción perforada falló a 83,572 \pm 6 libras (37,9 kg).
- b)
- La construcción perforada incluyó perforaciones de 1,0 mm separadas uniformemente por 6,71 mm. Se analizaron cuatro construcciones no perforadas y cuatro construcciones perforadas, y se determinaron los valores medios. La construcción no perforada falló a 73,71 \pm 9 libras (33,4 kg), mientras que la construcción perforada falló a 62,35 \pm 2 libras (28,3 kg).
- c)
- En este experimento se compararon dos construcciones perforadas con el control no perforado: la primera construcción perforada tenía perforaciones de 1,0 mm separadas uniformemente por 6,71 mm y la segunda construcción perforada tenía perforaciones de 1,0 mm separadas uniformemente por 3,35 mm. Se analizaron dos construcciones no perforadas, dos de las primera construcción perforada y siete de la segunda construcción perforada, y se determinaron los valores medios. La construcción no perforada falló a 70,17 \pm 12 libras (31,8 kg), mientras que la primera construcción perforada falló a 79,94 \pm 8 libras (36,3 kg) y la segunda construcción a 62,39 \pm 7 libras (28,3 kg).
En el siguiente ejemplo se prepararon
construcciones para injertos a base de tejidos de láminas múltiples
que comprenden ocho capas, tanto en forma perforada como no
perforada. Las construcciones perforadas se perforaron utilizando
el dispositivo representado en la figura 4. Las construcciones
perforadas de tejidos resultantes tenían agujeros de 0,40 pulgadas
de diámetro separados en intervalos regulares (distanciados 6,7 mm
entre sí).
El estudio realizado incluyó 24 ratas. Las ratas
se dividieron en dos grupos de 12 cada uno. En el primer grupo, se
implantó una lámina no perforada de tejido submucoso de láminas
múltiples, de ocho capas. En el segundo grupo, se implantó una
lámina perforada de láminas múltiples, de ocho capas. Las 12 ratas
de cada grupo se subdividieron adicionalmente en grupos más
reducidos, que se
\hbox{diferenciaron únicamente en el procedimiento de esterilización terminal.}
- 1.
- El subgrupo nº 1 de cada grupo principal no se sometió a esterilización terminal en el dispositivo final.
- 2.
- En el subgrupo nº 2, se aplicó una irradiación gamma de 2,5 Mrad sobre el dispositivo, como procedimiento de esterilización terminal.
- 3.
- En el subgrupo nº 3, se aplicó una irradiación gamma de 1,5 Mrad sobre el dispositivo final, como procedimiento de esterilización terminal.
- 4.
- En el subgrupo nº 4, se aplicó una irradiación con haz de electrones de 1,5 Mrad sobre el dispositivo final, como procedimiento de esterilización terminal.
- 5.
- En el subgrupo nº 5, se aplicó 1,5 de óxido de etileno (realizado en la Universidad de Purdue) sobre el dispositivo final, como procedimiento de esterilización terminal.
- 6.
- En el subgrupo nº 6, se aplicó 1,5 de óxido de etileno (realizado en Centurion Labs) sobre el dispositivo final, como procedimiento de esterilización terminal.
Los resultados de estos estudios (excluyendo la
esterilización terminal como variable) mostraron que la perforación
disminuyó significativamente la acumulación de líquidos entre los
elementos laminares de láminas de láminas múltiples durante el
período de remodelado. Se sacrificó un animal de cada subgrupo a los
14 días, sacrificándose un segundo animal de cada subgrupo a los 28
días. A los 14 días, en los animales que recibieron los injertos de
tejidos sin perforaciones, se habían acumulado numerosos
"quistes" de líquido serosanguíneo entre los elementos
laminares de láminas múltiples y alrededor del injerto. En los
animales que recibieron los injertos de tejidos dotados de
perforaciones, la magnitud de la acumulación de fluidos fue
significativamente menor, tanto en términos del número de quistes
como de tamaño de los mismos.
A los 28 días, prácticamente no existió
evidencia de acumulación de fluidos en el injerto del grupo que
recibió los injertos de tejidos dotados de perforaciones, mientras
que el grupo que recibió los injertos de tejidos no dotados de
perforaciones aún presentaron pequeñas bolsas de fluido.
Por consiguiente, la perforación del tejido
submucoso antes del implante en el huésped tiene un efecto
significativo sobre la curación y la remodelación. Las
perforaciones parecían servir como conducciones a través de las
cuales los fluidos podrían discurrir por todo el injerto, en lugar
de acumularse entre las láminas. Además, no se observó una
separación visible de las capas de injertos de tejidos dotados de
perforaciones de láminas múltiples, lo que se atribuyó, al menos en
parte, a las perforaciones.
Se analizará la eficacia del tejido submucoso,
Dexon® y Marlex® como construcciones para injertos a base de
tejidos en dos estudios separados en animales. En estudio nº 1
utiliza un modelo de perro y el estudio nº 2 utiliza un modelo de
rata.
Estudio Nº
1
Se dividieron de manera aleatoria treinta perros
en tres grupos de diez perros cada uno. Se crea un defecto en la
pared corporal de espesor completo en la pared abdominal lateral
ventral de cada perro. El defecto mide 5 cm x 5 cm (A x L) y deja
el peritoneo intacto. El defecto se creará en posición lateral a la
línea central, en el lado izquierdo, e implica principalmente a la
aponeurosis abdominal. La parte lateral del defecto alcanza la
parte distal de las capas de músculo esquelético abdominal. El sitio
del defecto se repara con uno de los tres dispositivos: submucosa
del intestino delgado, Dexon® o rejilla Marlex ®. Se utilizan diez
animales en cada grupo (es decir, cada uno de los tres dispositivos
se implanta en diez animales). Se sacrifican dos animales de cada
grupo en cada uno de los siguientes momentos: una semana, un mes,
tres meses, seis meses y dos años después del implante. El criterio
de valoración del estudio es la morfología (tanto macroscópica como
microscópica) de los materiales de injerto y del tejido circundante
en el momento del sacrificio.
Estudio Nº
2
El diseño experimental para el estudio en ratas
es idéntico al descrito anteriormente para el estudio en perros,
con una excepción: cada grupo incluye treinta animales, y en cada
punto temporal se sacrifican seis ratas de cada grupo. El criterio
de valoración del estudio será el mismo, es decir, el aspecto
macroscópico y microscópico del material de injerto y del tejido
circundante en el momento del sacrificio.
Los dispositivos de reparación de hernias se
prepararán del siguiente modo:
- 1.
- Tejido submucoso intestinal: las construcciones para injertos a base de tejido submucoso para implante se prepararán según lo descrito en el ejemplo 3. Se analizará la materia prima mediante una prueba de ruptura axial. En la fabricación sólo se utilizarán lotes con una fuerza de ruptura media de 3,0 libras (13,3 N) o superior. Los parámetros de configuración del dispositivo incluirán lo siguiente:
- a)
- Las tiras de tejido submucoso se superpondrán (superposición del 50%) con las tiras adyacentes para formar una lámina de tejido submucoso con áreas de superficie de gran tamaño de dos capas.
- b)
- Se conforma una segunda lámina de tejido submucoso y se dispone sobre la primera lámina con un ángulo de 45º relativo a la primera lámina de tejido submucoso.
- c)
- Se conforma una tercera lámina de tejido submucoso y se dispone sobre la primera lámina con un ángulo de 45º relativo a la segunda lámina.
- d)
- Se conforma una cuarta lámina de tejido submucoso y se dispone sobre la primera lámina de tejido submucoso con un ángulo de 45º relativo a la tercera lámina.
- Por lo tanto, se prepara una construcción homolaminar que comprende ocho capas de tejido submucoso intestinal (delaminado tanto de la túnica muscular como de la parte luminal de la túnica mucosa de una especie vertebrada). La construcción es de forma esencialmente rectangular con una longitud y anchura de 10 cm x 15 cm. La construcción para injertos se pasa a través de rodillos de presión para eliminar el aire y el agua atrapada entre las capas laminadas, y el tejido se perfora utilizando agujas sólidas del calibre 20. Las perforaciones se encuentran separadas entre sí uniformemente por 6-7 mm. La construcción se comprime en condiciones de deshidratación y se esteriliza con óxido de etileno.
- 2.
- Dexon®: el material utilizado para la reparación de hernias será suministrado por Owens & Minor de Indianapolis.
- 3.
- Marlex®: el material utilizado para la reparación de hernias será suministrado por Owens & Minor de Indianapolis.
Las propiedades físicas de los injertos de
tejido submucoso se caracterizarán del siguiente modo: Se prepararán
cinco construcciones multilaminares de injerto de tejido según lo
descrito en este ejemplo. En primer lugar, las construcciones para
injertos serán sometidas a análisis de esterilidad y pirógenos,
respectivamente, por NAmSA (Northwood, OH). Una construcción para
injertos de cada lote de dispositivos será sometida a una prueba de
resistencia a la ruptura según lo descrito en el ejemplo 7. Una
construcción se almacenará como muestra de reserva para el archivo.
Se implementarán tres de las construcciones para injertos. Cada
construcción para injertos se identificará mediante la fecha de
fabricación y el número de construcción para injertos. En los casos
de Dexon® y Marlex®, los dispositivos se caracterizarán mediante el
número de lote y la fecha de fabricación, según lo indicado en la
etiqueta del
dispositivo.
dispositivo.
Los perros utilizados en este estudio se
comprarán a LBL Kennels y las ratas utilizadas en este estudio se
comprarán a Harlan Sprague Dawley, Inc.
Perros: Cada animal pesa entre 18 y 25 kg. Cada
animal será anestesiado con tiopental sódico intravenoso, será
intubado y se mantendrá en anestesia por inhalación con isoflurano y
oxígeno. Bajo un plano quirúrgico de anestesia, el sitio quirúrgico
se marcará y se limpiará. El sitio quirúrgico estará localizado al
menos 3 cm en dirección lateral (a la izquierda) con respecto a la
línea media, y se encontrará en posición caudal de tal forma que el
sitio sólo incluya fibras distales del músculo recto del
abdomen.
Se practicará una incisión longitudinal en la
piel, realizándose la disección del tejido subcutáneo para exponer
un área con unas dimensiones de 5 cm x 5 cm. Se creará un defecto de
espesor completo en la pared abdominal, retirando todos los tejidos
excepto la piel, la hipodermis y el peritoneo. El peritoneo y la
fascia transversalis de revestimiento permanecerán intactos.
El sitio del defecto se reparará con la
construcción de tejido submucoso, con el dispositivo de reparación
de hernias Dexon®, o con el dispositivo de rejilla de reparación de
hernias Marlex®. El sitio del defecto se rellenará con una sección
de cada uno de estos dispositivos que sea de igual tamaño que el
defecto. Los dispositivos se suturarán a los tejidos normales
adyacentes de la pared corporal con material de sutura
2-0 prolene. El tejido subcutáneo de revestimiento
se cerrará tras colocar un tubo de drenaje de Penrose que saldrá de
la piel adyacente a la línea de
sutura.
sutura.
Ratas: cada animal será anestesiado con una
inyección intraperitoneal de pentobarbital sódico (40 mg/kg) seguido
de inhalación (mascarilla nasal) de metoxiflurano y oxígeno, según
sea necesario, para mantener un plano quirúrgico de anestesia. El
procedimiento quirúrgico será idéntico al descrito anteriormente
para el perro, con la siguiente excepción: el sitio del defecto
tendrá unas dimensiones de 1,5 cm x 1,5 cm. La ubicación del defecto
será la misma ubicación relativa descrita para el estudio del
perro: en la pared abdominal lateral ventral. La sutura utilizada
para fijar los dispositivos de reparación será 2-0
prolene.
Claims (23)
1. Construcción unitaria de láminas múltiples
para injerto de tejidos, que comprende múltiples tiras de submucosa,
en la que cada una de dichas múltiples tiras presenta una primera y
segunda superficies planas, y cada tira comprende tejido submucoso
de un vertebrado de sangre caliente, en la que dicha construcción
para injertos presenta una superficie plana con un área de
superficie de mayores dimensiones que el área de superficie de
cualquiera de las superficies planas de las tiras individuales
utilizadas para conformar dicha construcción, estando dotada además
dicha construcción para injertos de una pluralidad de perforaciones
que permiten el paso de fluidos a través de la construcción para
injertos.
2. Construcción para injertos, según la
reivindicación 1, en la que la submucosa es submucosa
intestinal.
3. Construcción para injertos, según la
reivindicación 1 ó 2, en la que las perforaciones definen un eje de
perforación longitudinal, y cada perforación se practica de manera
que el eje de perforación no sea perpendicular a la superficie
plana.
4. Construcción para injertos, según la
reivindicación 1 ó 2, en la que la construcción para injertos es una
construcción para injertos heterolaminar.
5. Construcción para injertos, según la
reivindicación 1 ó 2, en la que la construcción para injertos es una
construcción unitaria para injertos homolaminar.
6. Construcción para injertos, según las
reivindicaciones 1 ó 2, en la que las tiras submucosas se
acondicionan de manera que presenten una deformación no mayor del
20%.
7. Construcción para injertos, según las
reivindicaciones 1 ó 2, en la que las perforaciones se distribuyen
de manera uniforme a lo largo de las superficies de la construcción
para injertos.
8. Construcción para injertos, según las
reivindicaciones 1 ó 2, en la que las perforaciones están separadas
entre sí por una distancia comprendida entre 2 y 20 mm
aproximadamente.
9. Construcción para injertos, según la
reivindicación 8, en la que las perforaciones se distribuyen de
manera uniforme a lo largo de las superficies de la construcción
para injertos.
10. Construcción para injertos, según las
reivindicaciones 1 ó 2, en la que las perforaciones presentan un
tamaño sustancialmente uniforme y tienen un diámetro comprendido
entre aproximadamente 0,5 y 3 mm.
11. Construcción para injertos a base de
tejidos, según la reivindicación 1 ó 2, en la que las tiras de
tejido submucoso constan esencialmente de la túnica submucosa, la
túnica muscular y el stratum compactum de la túnica
mucosa.
12. Construcción para injertos a base de
tejidos, según las reivindicaciones 1 ó 2, en la que las tiras de
tejido submucoso que conforman dicha construcción están orientadas
de manera que la construcción presente propiedades
pseudoisotrópicas.
13. Construcción para injertos a base de
tejidos, según la reivindicación 4, en la que las láminas de tejido
submucoso que conforman dicha construcción están orientadas de
manera que la construcción presente propiedades
pseudoisotrópicas.
14. Procedimiento para la preparación de una
construcción unitaria de láminas múltiples perfeccionada de injerto
de tejidos, consistiendo dicho procedimiento en:
- superponer como mínimo una parte de una tira de tejido submucoso con otra tira de tejido submucoso, estando delaminadas las tiras de tejido submucoso a partir de la túnica muscular y la parte luminal de la túnica mucosa de un vertebrado de sangre caliente;
- comprimir como mínimo las partes superpuestas de las tiras de tejido submucoso en condiciones que permitan, como mínimo, la deshidratación parcial del tejido submucoso comprimido, de manera que el área de superficie de la construcción para injertos sea mayor que el área de superficie de cualquiera de las tiras individuales utilizadas para conformar dicha construcción, y
- perforar, como mínimo, las partes superpuestas del tejido submucoso.
15. Procedimiento, según a reivindicación 14,
caracterizado porque se distribuyen las perforaciones de
manera uniforme sobre las superficies de la construcción para
injertos.
16. Procedimiento, según a reivindicación 14, en
el que las perforaciones en el tejido se practican clavando
alfileres (2) en el tejido.
17. Procedimiento, según la reivindicación 16,
en el que los alfileres (2) se clavan en el tejido con un ángulo
distinto de 90º con respecto al plano de la superficie del
injerto.
18. Procedimiento, según la reivindicación 14,
en el que el tejido ha sido secado hasta conseguir un contenido de
agua de aproximadamente 10%-20% en peso en el momento en el que se
perfora el tejido.
19. Procedimiento, según la reivindicación 14,
en la que las tiras de tejido submucoso que conforman dicha
construcción están orientadas de manera que la construcción presente
propiedades pseudoisotrópicas.
20. Procedimiento, según la reivindicación 14,
en la que las tiras submucosas componentes se acondicionan de
manera que presenten una deformación no mayor del 20%.
21. Procedimiento, según la reivindicación 14,
que comprende además las etapas de conformar múltiples láminas de
tejido submucoso a partir de dichas tiras superpuestas;
y superponer una primera lámina de tejido
submucoso con una lámina adicional de tejido submucoso.
22. Procedimiento, según la reivindicación 21,
en el que las láminas de tejido submucoso se conforman como láminas
homolaminares.
23. Construcción para injertos a base de
tejidos, según la reivindicación 1 ó 2, en la que la construcción
para injertos es perforada con al menos 2,0 perforaciones por
cm^{2}.
Applications Claiming Priority (2)
Application Number | Priority Date | Filing Date | Title |
---|---|---|---|
US628789 | 1996-04-05 | ||
US08/628,789 US5755791A (en) | 1996-04-05 | 1996-04-05 | Perforated submucosal tissue graft constructs |
Publications (1)
Publication Number | Publication Date |
---|---|
ES2281099T3 true ES2281099T3 (es) | 2007-09-16 |
Family
ID=24520313
Family Applications (1)
Application Number | Title | Priority Date | Filing Date |
---|---|---|---|
ES97917752T Expired - Lifetime ES2281099T3 (es) | 1996-04-05 | 1997-03-31 | Construcciones para injertos a base de tejidos submucosos, dotados de perforaciones. |
Country Status (9)
Country | Link |
---|---|
US (3) | US5755791A (es) |
EP (1) | EP0891165B1 (es) |
JP (2) | JP4510939B2 (es) |
AR (1) | AR006540A1 (es) |
AT (1) | ATE352266T1 (es) |
AU (1) | AU710788B2 (es) |
DE (1) | DE69737285T2 (es) |
ES (1) | ES2281099T3 (es) |
WO (1) | WO1997037614A1 (es) |
Families Citing this family (373)
Publication number | Priority date | Publication date | Assignee | Title |
---|---|---|---|---|
DE10237531A1 (de) * | 2002-08-16 | 2004-02-26 | Tutogen Medical Gmbh | Implantat |
US6653291B1 (en) * | 1992-11-13 | 2003-11-25 | Purdue Research Foundation | Composition and method for production of transformed cells |
US6334872B1 (en) | 1994-02-18 | 2002-01-01 | Organogenesis Inc. | Method for treating diseased or damaged organs |
US7001328B1 (en) * | 1994-11-15 | 2006-02-21 | Kenton W. Gregory | Method for using tropoelastin and for producing tropoelastin biomaterials |
US20020095218A1 (en) | 1996-03-12 | 2002-07-18 | Carr Robert M. | Tissue repair fabric |
US5755791A (en) * | 1996-04-05 | 1998-05-26 | Purdue Research Foundation | Perforated submucosal tissue graft constructs |
US5788625A (en) * | 1996-04-05 | 1998-08-04 | Depuy Orthopaedics, Inc. | Method of making reconstructive SIS structure for cartilaginous elements in situ |
US6171344B1 (en) * | 1996-08-16 | 2001-01-09 | Children's Medical Center Corporation | Bladder submucosa seeded with cells for tissue reconstruction |
US5919234A (en) * | 1996-08-19 | 1999-07-06 | Macropore, Inc. | Resorbable, macro-porous, non-collapsing and flexible membrane barrier for skeletal repair and regeneration |
US8716227B2 (en) * | 1996-08-23 | 2014-05-06 | Cook Biotech Incorporated | Graft prosthesis, materials and methods |
US6666892B2 (en) * | 1996-08-23 | 2003-12-23 | Cook Biotech Incorporated | Multi-formed collagenous biomaterial medical device |
CZ54899A3 (cs) * | 1996-08-23 | 1999-08-11 | Cook Biotech, Incorporated | Štěpová protéza, materiály s ní spojené a způsoby její výroby |
MXPA00012064A (es) * | 1998-06-05 | 2003-04-22 | Organogenesis Inc | Protesis de injerto tubular biodisenadas. |
EP1083843A4 (en) * | 1998-06-05 | 2005-06-08 | Organogenesis Inc | BIOTECHNICALLY MANUFACTURED VACUUM IMPLANT |
AU2003212023B2 (en) * | 1998-06-05 | 2006-07-06 | Duke University School Of Medicine | Bioengineered vascular graft support prostheses |
ATE424164T1 (de) * | 1998-06-05 | 2009-03-15 | Organogenesis Inc | Verfahren zur herstellung einer gefässprothese |
EP1083828B1 (en) * | 1998-06-05 | 2009-03-04 | Organogenesis Inc. | Bioengineered vascular graft prostheses |
US6458109B1 (en) * | 1998-08-07 | 2002-10-01 | Hill-Rom Services, Inc. | Wound treatment apparatus |
US6918396B1 (en) | 1998-12-01 | 2005-07-19 | Purdue Research Foundation | Method for vocal cord reconstruction |
US8882850B2 (en) * | 1998-12-01 | 2014-11-11 | Cook Biotech Incorporated | Multi-formed collagenous biomaterial medical device |
BR9908043A (pt) * | 1998-12-01 | 2001-12-18 | Cook Biotech Inc | Dispositivo médico de biomaterial colagenosomulti-formado |
US20040267349A1 (en) * | 2003-06-27 | 2004-12-30 | Kobi Richter | Amorphous metal alloy medical devices |
US8382821B2 (en) | 1998-12-03 | 2013-02-26 | Medinol Ltd. | Helical hybrid stent |
US6179840B1 (en) | 1999-07-23 | 2001-01-30 | Ethicon, Inc. | Graft fixation device and method |
US20020095157A1 (en) | 1999-07-23 | 2002-07-18 | Bowman Steven M. | Graft fixation device combination |
EP1207819B1 (en) * | 1999-08-06 | 2009-03-04 | Cook Biotech, Inc. | Tubular graft construct |
US6423381B1 (en) | 1999-11-12 | 2002-07-23 | Martin Colton | Protective, transparent UV curable coating method |
US6824533B2 (en) | 2000-11-29 | 2004-11-30 | Hill-Rom Services, Inc. | Wound treatment apparatus |
US6764462B2 (en) | 2000-11-29 | 2004-07-20 | Hill-Rom Services Inc. | Wound treatment apparatus |
US6579538B1 (en) | 1999-12-22 | 2003-06-17 | Acell, Inc. | Tissue regenerative compositions for cardiac applications, method of making, and method of use thereof |
US20040043006A1 (en) * | 2002-08-27 | 2004-03-04 | Badylak Stephen F. | Tissue regenerative composition |
US6576265B1 (en) | 1999-12-22 | 2003-06-10 | Acell, Inc. | Tissue regenerative composition, method of making, and method of use thereof |
DK1749543T3 (da) | 1999-12-22 | 2009-06-15 | Acell Inc | Sammensætning til vævsregeneration |
US7104996B2 (en) * | 2000-01-14 | 2006-09-12 | Marctec. Llc | Method of performing surgery |
US6770078B2 (en) | 2000-01-14 | 2004-08-03 | Peter M. Bonutti | Movable knee implant and methods therefor |
US7635390B1 (en) | 2000-01-14 | 2009-12-22 | Marctec, Llc | Joint replacement component having a modular articulating surface |
US6702821B2 (en) * | 2000-01-14 | 2004-03-09 | The Bonutti 2003 Trust A | Instrumentation for minimally invasive joint replacement and methods for using same |
AU2001230982A1 (en) | 2000-01-18 | 2001-07-31 | Xros, Inc., Nortel Networks | Wafer bonding techniques to minimize built-in stress of silicon microstructures and micro-mirrors |
US6866686B2 (en) * | 2000-01-28 | 2005-03-15 | Cryolife, Inc. | Tissue graft |
DK1255510T5 (da) * | 2000-01-31 | 2009-12-21 | Cook Biotech Inc | Stentventilklapper |
AU3803801A (en) | 2000-02-03 | 2001-08-14 | Cook Inc | Implantable vascular device |
CA2403276C (en) | 2000-05-04 | 2009-10-20 | Oregon Health Sciences University | Endovascular stent graft |
KR20030042441A (ko) | 2000-05-22 | 2003-05-28 | 아써 씨. 커피 | Sis와 진공 붕대의 복합체 및 상처 치유 방법 |
US6638312B2 (en) * | 2000-08-04 | 2003-10-28 | Depuy Orthopaedics, Inc. | Reinforced small intestinal submucosa (SIS) |
US8366787B2 (en) * | 2000-08-04 | 2013-02-05 | Depuy Products, Inc. | Hybrid biologic-synthetic bioabsorbable scaffolds |
CA2777791A1 (en) * | 2000-09-18 | 2002-03-21 | Organogenesis Inc. | Methods for treating a patient using a bioengineered flat sheet graft prostheses |
US20020132871A1 (en) * | 2000-11-13 | 2002-09-19 | Martin Colton | Transparent UV curable coating system |
US6679914B1 (en) * | 2000-11-14 | 2004-01-20 | Shlomo Gabbay | Implantable orthopedic support apparatus |
US6685681B2 (en) * | 2000-11-29 | 2004-02-03 | Hill-Rom Services, Inc. | Vacuum therapy and cleansing dressing for wounds |
US6855135B2 (en) | 2000-11-29 | 2005-02-15 | Hill-Rom Services, Inc. | Vacuum therapy and cleansing dressing for wounds |
US6599323B2 (en) * | 2000-12-21 | 2003-07-29 | Ethicon, Inc. | Reinforced tissue implants and methods of manufacture and use |
US6852330B2 (en) * | 2000-12-21 | 2005-02-08 | Depuy Mitek, Inc. | Reinforced foam implants with enhanced integrity for soft tissue repair and regeneration |
CA2365376C (en) * | 2000-12-21 | 2006-03-28 | Ethicon, Inc. | Use of reinforced foam implants with enhanced integrity for soft tissue repair and regeneration |
DE60141166D1 (de) * | 2000-12-28 | 2010-03-11 | Fidia Advanced Biopolymers Srl | Verwendung eines biologischen materials mit dreidimensionalen gerüsten aus hyaluronsäure-derivaten |
US7326564B2 (en) | 2001-02-20 | 2008-02-05 | St. Jude Medical, Inc. | Flow system for medical device evaluation and production |
CA2446362A1 (en) * | 2001-05-07 | 2002-11-14 | Crosscart, Inc. | Submucosal xenografts |
EP1416874A4 (en) * | 2001-07-16 | 2007-04-18 | Depuy Products Inc | BIOLOGICAL / SYNTHETIC POROUS EXTRACELLULAR HYBRID MATRIX SCUFF |
JP4197158B2 (ja) | 2001-07-16 | 2008-12-17 | デピュイ・プロダクツ・インコーポレイテッド | 天然に発生する生物学的に誘導されている材料による装置 |
DE60239342D1 (de) | 2001-07-16 | 2011-04-14 | Depuy Products Inc | Gerät zur reparatur von knorpelmaterial |
US8092529B2 (en) * | 2001-07-16 | 2012-01-10 | Depuy Products, Inc. | Meniscus regeneration device |
US7163563B2 (en) * | 2001-07-16 | 2007-01-16 | Depuy Products, Inc. | Unitary surgical device and method |
WO2003007786A2 (en) * | 2001-07-16 | 2003-01-30 | Depuy Products, Inc. | Porous delivery scaffold and method |
US7819918B2 (en) | 2001-07-16 | 2010-10-26 | Depuy Products, Inc. | Implantable tissue repair device |
AU2002316696B2 (en) * | 2001-07-16 | 2007-08-30 | Depuy Products, Inc. | Cartilage repair and regeneration scaffold and method |
US8025896B2 (en) | 2001-07-16 | 2011-09-27 | Depuy Products, Inc. | Porous extracellular matrix scaffold and method |
JP4197159B2 (ja) * | 2001-07-16 | 2008-12-17 | デピュイ・プロダクツ・インコーポレイテッド | 混成の生物学的合成の生体吸収性支持骨格材料 |
US7708741B1 (en) | 2001-08-28 | 2010-05-04 | Marctec, Llc | Method of preparing bones for knee replacement surgery |
WO2003030966A1 (en) | 2001-10-11 | 2003-04-17 | Hill-Rom Services, Inc. | Waste container for negative pressure therapy |
AU2002336670B2 (en) * | 2001-10-26 | 2008-02-07 | Cook Biotech Incorporated | Medical graft device with meshed structure |
US7318833B2 (en) | 2001-12-19 | 2008-01-15 | Nmt Medical, Inc. | PFO closure device with flexible thrombogenic joint and improved dislodgement resistance |
US7867250B2 (en) | 2001-12-19 | 2011-01-11 | Nmt Medical, Inc. | Septal occluder and associated methods |
US20030118560A1 (en) * | 2001-12-20 | 2003-06-26 | Kelly Sheila J. | Composite biocompatible matrices |
AU2002359830A1 (en) * | 2001-12-26 | 2003-07-24 | Hill-Rom Services, Inc. | Wound vacuum therapy dressing kit |
AU2002359828A1 (en) * | 2001-12-26 | 2003-07-24 | Hill-Rom Services Inc. | Vented vacuum bandage and method |
ATE387919T1 (de) * | 2001-12-26 | 2008-03-15 | Hill Rom Services Inc | Vakuumbindenverpackung |
EP1471835A4 (en) | 2002-01-14 | 2008-03-19 | Nmt Medical Inc | METHOD AND DEVICE FOR CLOSING AN OPEN FORM OVALE (PFO) |
US8529956B2 (en) * | 2002-03-18 | 2013-09-10 | Carnell Therapeutics Corporation | Methods and apparatus for manufacturing plasma based plastics and bioplastics produced therefrom |
US20100254900A1 (en) * | 2002-03-18 | 2010-10-07 | Campbell Phil G | Biocompatible polymers and Methods of use |
AU2003220502A1 (en) | 2002-03-25 | 2003-10-13 | Nmt Medical, Inc. | Patent foramen ovale (pfo) closure clips |
CA2481016C (en) | 2002-04-10 | 2012-04-03 | Hill-Rom Services, Inc. | Access openings in vacuum bandage |
EP1494594B1 (en) | 2002-04-15 | 2011-07-06 | Cook Biotech Incorporated | Apparatus and method for producing a reinforced surgical staple line |
WO2003092546A2 (en) * | 2002-04-30 | 2003-11-13 | Cook Urological Inc. | Sling for supporting tissue |
US7828839B2 (en) * | 2002-05-16 | 2010-11-09 | Cook Incorporated | Flexible barb for anchoring a prosthesis |
US20040117004A1 (en) * | 2002-05-16 | 2004-06-17 | Osborne Thomas A. | Stent and method of forming a stent with integral barbs |
WO2003101346A1 (en) * | 2002-05-29 | 2003-12-11 | William A. Cook Australia Pty. Ltd. | Multi-piece prosthesis deployment apparatus |
US20040098042A1 (en) | 2002-06-03 | 2004-05-20 | Devellian Carol A. | Device with biological tissue scaffold for percutaneous closure of an intracardiac defect and methods thereof |
EP1538994A4 (en) | 2002-06-05 | 2008-05-07 | Nmt Medical Inc | DEVICE FOR CLOSING A PATENT FORAMS OVALE (PFO) WITH RADIAL AND COMPLEMENTARY SUPPORT |
CA2487462C (en) * | 2002-06-26 | 2012-05-15 | Cook Incorporated | Stent-graft fastening |
US20040166169A1 (en) * | 2002-07-15 | 2004-08-26 | Prasanna Malaviya | Porous extracellular matrix scaffold and method |
US20040019360A1 (en) * | 2002-07-25 | 2004-01-29 | Farnsworth Ted R. | Tissue repair device with a removable support member |
CA2495390A1 (en) | 2002-08-15 | 2004-02-26 | Cook Incorporated | Implantable vascular device |
US7550004B2 (en) * | 2002-08-20 | 2009-06-23 | Cook Biotech Incorporated | Endoluminal device with extracellular matrix material and methods |
AU2002359833A1 (en) | 2002-08-21 | 2004-03-11 | Hill-Rom Services, Inc. | Wound packing for preventing wound closure |
US7824701B2 (en) * | 2002-10-18 | 2010-11-02 | Ethicon, Inc. | Biocompatible scaffold for ligament or tendon repair |
US20040078090A1 (en) | 2002-10-18 | 2004-04-22 | Francois Binette | Biocompatible scaffolds with tissue fragments |
EP1556117A1 (en) | 2002-10-25 | 2005-07-27 | NMT Medical, Inc. | Expandable sheath tubing |
US7682392B2 (en) * | 2002-10-30 | 2010-03-23 | Depuy Spine, Inc. | Regenerative implants for stabilizing the spine and devices for attachment of said implants |
CA2506423C (en) * | 2002-12-04 | 2011-04-19 | Cook Incorporated | Method and device for treating aortic dissection |
AU2003294682A1 (en) | 2002-12-09 | 2004-06-30 | Nmt Medical, Inc. | Septal closure devices |
US8551100B2 (en) | 2003-01-15 | 2013-10-08 | Biomet Manufacturing, Llc | Instrumentation for knee resection |
US7887542B2 (en) | 2003-01-15 | 2011-02-15 | Biomet Manufacturing Corp. | Method and apparatus for less invasive knee resection |
US7789885B2 (en) | 2003-01-15 | 2010-09-07 | Biomet Manufacturing Corp. | Instrumentation for knee resection |
US7837690B2 (en) | 2003-01-15 | 2010-11-23 | Biomet Manufacturing Corp. | Method and apparatus for less invasive knee resection |
US20040175366A1 (en) * | 2003-03-07 | 2004-09-09 | Acell, Inc. | Scaffold for cell growth and differentiation |
US20040176855A1 (en) * | 2003-03-07 | 2004-09-09 | Acell, Inc. | Decellularized liver for repair of tissue and treatment of organ deficiency |
US8197837B2 (en) | 2003-03-07 | 2012-06-12 | Depuy Mitek, Inc. | Method of preparation of bioabsorbable porous reinforced tissue implants and implants thereof |
US7658747B2 (en) | 2003-03-12 | 2010-02-09 | Nmt Medical, Inc. | Medical device for manipulation of a medical implant |
US7067123B2 (en) | 2003-04-29 | 2006-06-27 | Musculoskeletal Transplant Foundation | Glue for cartilage repair |
US7901457B2 (en) | 2003-05-16 | 2011-03-08 | Musculoskeletal Transplant Foundation | Cartilage allograft plug |
US7235093B2 (en) * | 2003-05-20 | 2007-06-26 | Boston Scientific Scimed, Inc. | Mechanism to improve stent securement |
US7105001B2 (en) * | 2003-05-21 | 2006-09-12 | Mandelbaum Jon A | Surgical method and composition utilizing submucosal tissue to prevent incisional hernias |
US20040260315A1 (en) * | 2003-06-17 | 2004-12-23 | Dell Jeffrey R. | Expandable tissue support member and method of forming the support member |
AU2004253508A1 (en) | 2003-06-25 | 2005-01-13 | Acell, Inc. | Conditioned matrix compositions for tissue restoration |
US8226715B2 (en) | 2003-06-30 | 2012-07-24 | Depuy Mitek, Inc. | Scaffold for connective tissue repair |
US8480706B2 (en) | 2003-07-14 | 2013-07-09 | W.L. Gore & Associates, Inc. | Tubular patent foramen ovale (PFO) closure device with catch system |
WO2005006990A2 (en) | 2003-07-14 | 2005-01-27 | Nmt Medical, Inc. | Tubular patent foramen ovale (pfo) closure device with catch system |
US9861346B2 (en) | 2003-07-14 | 2018-01-09 | W. L. Gore & Associates, Inc. | Patent foramen ovale (PFO) closure device with linearly elongating petals |
US10583220B2 (en) | 2003-08-11 | 2020-03-10 | DePuy Synthes Products, Inc. | Method and apparatus for resurfacing an articular surface |
DE602004017750D1 (de) | 2003-08-19 | 2008-12-24 | Nmt Medical Inc | Expandierbarer Schleusenschlauch |
US7645229B2 (en) * | 2003-09-26 | 2010-01-12 | Armstrong David N | Instrument and method for endoscopic visualization and treatment of anorectal fistula |
EP1677703A4 (en) * | 2003-10-02 | 2009-09-02 | Depuy Spine Inc | CHEMICAL TREATMENT FOR THE REMOVAL OF CELLULAR AND NUCLEAR MATERIAL FROM NATURALLY OBTAINING BIOMATERIALS ON EXTRACELLULAR MATRIX BASIS |
ATE440564T1 (de) * | 2003-10-10 | 2009-09-15 | Cleveland Clinic Foundation | Endoluminale prothese mit verbindbaren modulen |
US8734501B2 (en) | 2003-10-10 | 2014-05-27 | Cook Medical Technologies Llc | Composite stent graft |
US8043357B2 (en) | 2003-10-10 | 2011-10-25 | Cook Medical Technologies Llc | Ring stent |
AU2004279458B2 (en) * | 2003-10-10 | 2009-12-10 | Cook Incorporated | Fenestrated stent grafts |
US6976679B2 (en) * | 2003-11-07 | 2005-12-20 | The Boeing Company | Inter-fluid seal assembly and method therefor |
US7316822B2 (en) | 2003-11-26 | 2008-01-08 | Ethicon, Inc. | Conformable tissue repair implant capable of injection delivery |
JP2007528237A (ja) | 2003-11-28 | 2007-10-11 | クック・インコーポレーテッド | 脈管の閉塞方法、システム及び装置 |
US7901461B2 (en) * | 2003-12-05 | 2011-03-08 | Ethicon, Inc. | Viable tissue repair implants and methods of use |
US7488324B1 (en) | 2003-12-08 | 2009-02-10 | Biomet Manufacturing Corporation | Femoral guide for implanting a femoral knee prosthesis |
US20050273119A1 (en) | 2003-12-09 | 2005-12-08 | Nmt Medical, Inc. | Double spiral patent foramen ovale closure clamp |
WO2005058207A1 (en) | 2003-12-11 | 2005-06-30 | Isto Technologies, Inc. | Particulate cartilage system |
US20050159810A1 (en) * | 2004-01-15 | 2005-07-21 | Farzan Filsoufi | Devices and methods for repairing cardiac valves |
US20060074447A2 (en) * | 2004-01-21 | 2006-04-06 | Cook Incorporated | Implantable graft to close a fistula |
US8262694B2 (en) | 2004-01-30 | 2012-09-11 | W.L. Gore & Associates, Inc. | Devices, systems, and methods for closure of cardiac openings |
US11395865B2 (en) * | 2004-02-09 | 2022-07-26 | DePuy Synthes Products, Inc. | Scaffolds with viable tissue |
GB2449784B8 (en) * | 2004-02-09 | 2009-04-29 | Cook Biotech Inc | Stent graft devices having collagen coating. |
US8337545B2 (en) | 2004-02-09 | 2012-12-25 | Cook Medical Technologies Llc | Woven implantable device |
AU2005212335B2 (en) * | 2004-02-09 | 2010-01-28 | Cook Biotech, Inc. | Cast bioremodelable graft |
CA2556422A1 (en) * | 2004-02-17 | 2005-08-01 | Cook Biotech Incorporated | Medical devices and methods for applying bolster material |
WO2005092203A1 (en) | 2004-03-03 | 2005-10-06 | Nmt Medical, Inc. | Delivery/recovery system for septal occluder |
AU2005229075A1 (en) | 2004-03-29 | 2005-10-13 | Cook Biotech Incorporated | Medical graft products with differing regions and methods and systems for producing the same |
US9498322B2 (en) * | 2004-03-31 | 2016-11-22 | Cook Medical Technologies Llc | Multi-portion endoluminal prosthesis |
AU2005232545B2 (en) * | 2004-03-31 | 2010-08-12 | Cook Medical Technologies Llc | Stent deployment device |
WO2005096988A1 (en) | 2004-04-01 | 2005-10-20 | Cook Incorporated | A device for retracting the walls of a body vessel with remodelable material |
US20050267524A1 (en) | 2004-04-09 | 2005-12-01 | Nmt Medical, Inc. | Split ends closure device |
US8137686B2 (en) | 2004-04-20 | 2012-03-20 | Depuy Mitek, Inc. | Nonwoven tissue scaffold |
US8657881B2 (en) * | 2004-04-20 | 2014-02-25 | Depuy Mitek, Llc | Meniscal repair scaffold |
US8221780B2 (en) * | 2004-04-20 | 2012-07-17 | Depuy Mitek, Inc. | Nonwoven tissue scaffold |
US8361110B2 (en) | 2004-04-26 | 2013-01-29 | W.L. Gore & Associates, Inc. | Heart-shaped PFO closure device |
US7569233B2 (en) * | 2004-05-04 | 2009-08-04 | Depuy Products, Inc. | Hybrid biologic-synthetic bioabsorbable scaffolds |
US20050249772A1 (en) * | 2004-05-04 | 2005-11-10 | Prasanna Malaviya | Hybrid biologic-synthetic bioabsorbable scaffolds |
US8308760B2 (en) | 2004-05-06 | 2012-11-13 | W.L. Gore & Associates, Inc. | Delivery systems and methods for PFO closure device with two anchors |
US7842053B2 (en) | 2004-05-06 | 2010-11-30 | Nmt Medical, Inc. | Double coil occluder |
US8257389B2 (en) | 2004-05-07 | 2012-09-04 | W.L. Gore & Associates, Inc. | Catching mechanisms for tubular septal occluder |
US7704268B2 (en) | 2004-05-07 | 2010-04-27 | Nmt Medical, Inc. | Closure device with hinges |
US20050288796A1 (en) * | 2004-06-23 | 2005-12-29 | Hani Awad | Native soft tissue matrix for therapeutic applications |
US20060029633A1 (en) * | 2004-08-03 | 2006-02-09 | Arthrotek, Inc | Biological patch for use in medical procedures |
CA2581677C (en) | 2004-09-24 | 2014-07-29 | Nmt Medical, Inc. | Occluder device double securement system for delivery/recovery of such occluder device |
US7837740B2 (en) * | 2007-01-24 | 2010-11-23 | Musculoskeletal Transplant Foundation | Two piece cancellous construct for cartilage repair |
US7513866B2 (en) * | 2004-10-29 | 2009-04-07 | Depuy Products, Inc. | Intestine processing device and associated method |
US7905826B2 (en) | 2004-11-03 | 2011-03-15 | Cook Incorporated | Methods for modifying vascular vessel walls |
US8088130B2 (en) | 2006-02-03 | 2012-01-03 | Biomet Sports Medicine, Llc | Method and apparatus for coupling soft tissue to a bone |
US7749250B2 (en) | 2006-02-03 | 2010-07-06 | Biomet Sports Medicine, Llc | Soft tissue repair assembly and associated method |
US8118836B2 (en) | 2004-11-05 | 2012-02-21 | Biomet Sports Medicine, Llc | Method and apparatus for coupling soft tissue to a bone |
US7857830B2 (en) * | 2006-02-03 | 2010-12-28 | Biomet Sports Medicine, Llc | Soft tissue repair and conduit device |
US7909851B2 (en) | 2006-02-03 | 2011-03-22 | Biomet Sports Medicine, Llc | Soft tissue repair device and associated methods |
US8840645B2 (en) | 2004-11-05 | 2014-09-23 | Biomet Sports Medicine, Llc | Method and apparatus for coupling soft tissue to a bone |
US8137382B2 (en) | 2004-11-05 | 2012-03-20 | Biomet Sports Medicine, Llc | Method and apparatus for coupling anatomical features |
US9801708B2 (en) | 2004-11-05 | 2017-10-31 | Biomet Sports Medicine, Llc | Method and apparatus for coupling soft tissue to a bone |
US8128658B2 (en) | 2004-11-05 | 2012-03-06 | Biomet Sports Medicine, Llc | Method and apparatus for coupling soft tissue to bone |
US7905904B2 (en) | 2006-02-03 | 2011-03-15 | Biomet Sports Medicine, Llc | Soft tissue repair device and associated methods |
US8361113B2 (en) | 2006-02-03 | 2013-01-29 | Biomet Sports Medicine, Llc | Method and apparatus for coupling soft tissue to a bone |
US9017381B2 (en) | 2007-04-10 | 2015-04-28 | Biomet Sports Medicine, Llc | Adjustable knotless loops |
US7658751B2 (en) | 2006-09-29 | 2010-02-09 | Biomet Sports Medicine, Llc | Method for implanting soft tissue |
US8298262B2 (en) | 2006-02-03 | 2012-10-30 | Biomet Sports Medicine, Llc | Method for tissue fixation |
US8303604B2 (en) | 2004-11-05 | 2012-11-06 | Biomet Sports Medicine, Llc | Soft tissue repair device and method |
US8998949B2 (en) | 2004-11-09 | 2015-04-07 | Biomet Sports Medicine, Llc | Soft tissue conduit device |
US8329202B2 (en) | 2004-11-12 | 2012-12-11 | Depuy Products, Inc. | System and method for attaching soft tissue to an implant |
WO2006062976A2 (en) | 2004-12-07 | 2006-06-15 | Cook Incorporated | Methods for modifying vascular vessel walls |
US8864819B2 (en) * | 2004-12-17 | 2014-10-21 | Cook Medical Technologies Llc | Stented side branch graft |
US7354627B2 (en) * | 2004-12-22 | 2008-04-08 | Depuy Products, Inc. | Method for organizing the assembly of collagen fibers and compositions formed therefrom |
US20060206139A1 (en) * | 2005-01-19 | 2006-09-14 | Tekulve Kurt J | Vascular occlusion device |
US20060257447A1 (en) * | 2005-03-09 | 2006-11-16 | Providence Health System | Composite graft |
US20100112543A1 (en) * | 2005-03-16 | 2010-05-06 | Manh-Dan Ngo | Processing soft tissue, methods and compositions related thereto |
AU2006227711A1 (en) * | 2005-03-16 | 2006-09-28 | Musculoskeletal Transplant Foundation | Soft tissue processing |
EP1868507A1 (en) | 2005-03-18 | 2007-12-26 | NMT Medical, Inc. | Catch member for pfo occluder |
US7695479B1 (en) | 2005-04-12 | 2010-04-13 | Biomet Manufacturing Corp. | Femoral sizer |
AU2012201042B2 (en) * | 2005-04-29 | 2013-09-12 | Cook Biotech Incorporated | Volumetric grafts for treatment of fistulae and related methods and systems |
JP4995811B2 (ja) * | 2005-04-29 | 2012-08-08 | クック・バイオテック・インコーポレーテッド | 瘻治療用容積式移植片並びに関連の方法及びシステム |
WO2007011443A2 (en) * | 2005-04-29 | 2007-01-25 | Cook Biotech Incorporated | Fistula graft with deformable sheet-form material |
US20060251702A1 (en) * | 2005-05-05 | 2006-11-09 | Cook Biotech Incorporated | Implantable materials and methods for inhibiting tissue adhesion formation |
EP2989995B1 (en) | 2005-06-21 | 2019-09-04 | Cook Medical Technologies LLC | Implantable graft to close a fistula |
US20060292227A1 (en) * | 2005-06-23 | 2006-12-28 | Mcpherson Timothy B | Extracellular matrix material particles and methods of preparation |
US9271817B2 (en) * | 2005-07-05 | 2016-03-01 | Cook Biotech Incorporated | Tissue augmentation devices and methods |
US7850985B2 (en) * | 2005-07-05 | 2010-12-14 | Cook Biotech Incorporated | Tissue augmentation devices and methods |
US7815926B2 (en) * | 2005-07-11 | 2010-10-19 | Musculoskeletal Transplant Foundation | Implant for articular cartilage repair |
US7833259B2 (en) * | 2005-07-25 | 2010-11-16 | Cook Incorporated | Fenestrated endoluminal stent system |
US7595062B2 (en) | 2005-07-28 | 2009-09-29 | Depuy Products, Inc. | Joint resurfacing orthopaedic implant and associated method |
JP5475283B2 (ja) | 2005-07-28 | 2014-04-16 | カーネギー メロン ユニバーシティ | 生体適合性ポリマーおよび使用方法 |
US20070038299A1 (en) * | 2005-08-12 | 2007-02-15 | Arthrotek, Inc | Multilayer microperforated implant |
WO2007025290A2 (en) | 2005-08-26 | 2007-03-01 | Isto Technologies, Inc. | Implants and methods for repair, replacement and treatment of joint disease |
US9259267B2 (en) | 2005-09-06 | 2016-02-16 | W.L. Gore & Associates, Inc. | Devices and methods for treating cardiac tissue |
WO2007030433A2 (en) | 2005-09-06 | 2007-03-15 | Nmt Medical, Inc. | Removable intracardiac rf device |
WO2007035778A2 (en) | 2005-09-19 | 2007-03-29 | Histogenics Corporation | Cell-support matrix and a method for preparation thereof |
AU2006304908B2 (en) * | 2005-10-18 | 2012-03-22 | Organogenesis, Inc. | Antimicrobial collagenous constructs |
WO2007064819A2 (en) * | 2005-12-02 | 2007-06-07 | Cook Incorporated | Devices, systems, and methods for occluding a defect |
US7658706B2 (en) * | 2005-12-05 | 2010-02-09 | Rti Biologics, Inc. | Vascular graft sterilization and decellularization |
US20070150063A1 (en) * | 2005-12-22 | 2007-06-28 | Depuy Spine, Inc. | Devices for intervertebral augmentation and methods of controlling their delivery |
WO2007073566A1 (en) | 2005-12-22 | 2007-06-28 | Nmt Medical, Inc. | Catch members for occluder devices |
US20070150064A1 (en) * | 2005-12-22 | 2007-06-28 | Depuy Spine, Inc. | Methods and devices for intervertebral augmentation |
US20070150059A1 (en) * | 2005-12-22 | 2007-06-28 | Depuy Spine, Inc. | Methods and devices for intervertebral augmentation using injectable formulations and enclosures |
US20070166396A1 (en) | 2006-01-06 | 2007-07-19 | University Of Pittsburgh | Extracellular matrix based gastroesophageal junction reinforcement device |
GB2447400B (en) * | 2006-01-31 | 2011-11-02 | Cook Biotech Inc | Fistula grafts and related methods and systems for treating fistulae |
US8574235B2 (en) | 2006-02-03 | 2013-11-05 | Biomet Sports Medicine, Llc | Method for trochanteric reattachment |
US8652171B2 (en) | 2006-02-03 | 2014-02-18 | Biomet Sports Medicine, Llc | Method and apparatus for soft tissue fixation |
US8801783B2 (en) | 2006-09-29 | 2014-08-12 | Biomet Sports Medicine, Llc | Prosthetic ligament system for knee joint |
US11311287B2 (en) | 2006-02-03 | 2022-04-26 | Biomet Sports Medicine, Llc | Method for tissue fixation |
US8771352B2 (en) | 2011-05-17 | 2014-07-08 | Biomet Sports Medicine, Llc | Method and apparatus for tibial fixation of an ACL graft |
US8652172B2 (en) | 2006-02-03 | 2014-02-18 | Biomet Sports Medicine, Llc | Flexible anchors for tissue fixation |
US8562647B2 (en) | 2006-09-29 | 2013-10-22 | Biomet Sports Medicine, Llc | Method and apparatus for securing soft tissue to bone |
US9538998B2 (en) | 2006-02-03 | 2017-01-10 | Biomet Sports Medicine, Llc | Method and apparatus for fracture fixation |
US8562645B2 (en) | 2006-09-29 | 2013-10-22 | Biomet Sports Medicine, Llc | Method and apparatus for forming a self-locking adjustable loop |
US8506597B2 (en) | 2011-10-25 | 2013-08-13 | Biomet Sports Medicine, Llc | Method and apparatus for interosseous membrane reconstruction |
US9149267B2 (en) | 2006-02-03 | 2015-10-06 | Biomet Sports Medicine, Llc | Method and apparatus for coupling soft tissue to a bone |
US8597327B2 (en) | 2006-02-03 | 2013-12-03 | Biomet Manufacturing, Llc | Method and apparatus for sternal closure |
US8936621B2 (en) | 2006-02-03 | 2015-01-20 | Biomet Sports Medicine, Llc | Method and apparatus for forming a self-locking adjustable loop |
US9271713B2 (en) | 2006-02-03 | 2016-03-01 | Biomet Sports Medicine, Llc | Method and apparatus for tensioning a suture |
US8251998B2 (en) | 2006-08-16 | 2012-08-28 | Biomet Sports Medicine, Llc | Chondral defect repair |
US8968364B2 (en) | 2006-02-03 | 2015-03-03 | Biomet Sports Medicine, Llc | Method and apparatus for fixation of an ACL graft |
US11259792B2 (en) | 2006-02-03 | 2022-03-01 | Biomet Sports Medicine, Llc | Method and apparatus for coupling anatomical features |
US10517587B2 (en) | 2006-02-03 | 2019-12-31 | Biomet Sports Medicine, Llc | Method and apparatus for forming a self-locking adjustable loop |
US9078644B2 (en) | 2006-09-29 | 2015-07-14 | Biomet Sports Medicine, Llc | Fracture fixation device |
CA2871840A1 (en) | 2006-02-10 | 2007-08-23 | Tengion, Inc. | Scaffolds for organ reconstruction and augmentation |
US10278711B2 (en) | 2006-02-27 | 2019-05-07 | Biomet Manufacturing, Llc | Patient-specific femoral guide |
US9289253B2 (en) | 2006-02-27 | 2016-03-22 | Biomet Manufacturing, Llc | Patient-specific shoulder guide |
US9907659B2 (en) | 2007-04-17 | 2018-03-06 | Biomet Manufacturing, Llc | Method and apparatus for manufacturing an implant |
US9113971B2 (en) | 2006-02-27 | 2015-08-25 | Biomet Manufacturing, Llc | Femoral acetabular impingement guide |
US9339278B2 (en) | 2006-02-27 | 2016-05-17 | Biomet Manufacturing, Llc | Patient-specific acetabular guides and associated instruments |
US7780672B2 (en) | 2006-02-27 | 2010-08-24 | Biomet Manufacturing Corp. | Femoral adjustment device and associated method |
US8407067B2 (en) | 2007-04-17 | 2013-03-26 | Biomet Manufacturing Corp. | Method and apparatus for manufacturing an implant |
US8603180B2 (en) | 2006-02-27 | 2013-12-10 | Biomet Manufacturing, Llc | Patient-specific acetabular alignment guides |
US8591516B2 (en) | 2006-02-27 | 2013-11-26 | Biomet Manufacturing, Llc | Patient-specific orthopedic instruments |
US9173661B2 (en) | 2006-02-27 | 2015-11-03 | Biomet Manufacturing, Llc | Patient specific alignment guide with cutting surface and laser indicator |
US9345548B2 (en) | 2006-02-27 | 2016-05-24 | Biomet Manufacturing, Llc | Patient-specific pre-operative planning |
US8070752B2 (en) | 2006-02-27 | 2011-12-06 | Biomet Manufacturing Corp. | Patient specific alignment guide and inter-operative adjustment |
US20150335438A1 (en) | 2006-02-27 | 2015-11-26 | Biomet Manufacturing, Llc. | Patient-specific augments |
US9918740B2 (en) | 2006-02-27 | 2018-03-20 | Biomet Manufacturing, Llc | Backup surgical instrument system and method |
US8870913B2 (en) | 2006-03-31 | 2014-10-28 | W.L. Gore & Associates, Inc. | Catch system with locking cap for patent foramen ovale (PFO) occluder |
US8551135B2 (en) | 2006-03-31 | 2013-10-08 | W.L. Gore & Associates, Inc. | Screw catch mechanism for PFO occluder and method of use |
CA2647505C (en) | 2006-03-31 | 2014-07-29 | Nmt Medical, Inc. | Deformable flap catch mechanism for occluder device |
WO2007124053A1 (en) | 2006-04-19 | 2007-11-01 | William A. Cook Australia Pty. Ltd. | Twin bifurcated stent graft |
US7695520B2 (en) | 2006-05-31 | 2010-04-13 | Biomet Manufacturing Corp. | Prosthesis and implementation system |
US9795399B2 (en) | 2006-06-09 | 2017-10-24 | Biomet Manufacturing, Llc | Patient-specific knee alignment guide and associated method |
JP5269779B2 (ja) * | 2006-06-21 | 2013-08-21 | クック・バイオテック・インコーポレーテッド | 胃腸瘻の治療に有用な瘻グラフト及び関連する方法とシステム |
US8974542B2 (en) | 2006-06-27 | 2015-03-10 | University of Pittsburgh—of the Commonwealth System of Higher Education | Biodegradable elastomeric patch for treating cardiac or cardiovascular conditions |
EP2409669A1 (en) * | 2006-07-31 | 2012-01-25 | Organogenesis, Inc. | Mastopexy and breast reconstruction prostheses |
US8372437B2 (en) | 2006-08-17 | 2013-02-12 | Mimedx Group, Inc. | Placental tissue grafts |
US8021412B2 (en) * | 2006-08-18 | 2011-09-20 | William A. Cook Australia Pty. Ltd. | Iliac extension with flared cuff |
US20080051831A1 (en) * | 2006-08-24 | 2008-02-28 | Wilson-Cook Medical Inc. | Devices And Methods For Occluding A Fistula |
US9918826B2 (en) | 2006-09-29 | 2018-03-20 | Biomet Sports Medicine, Llc | Scaffold for spring ligament repair |
US11259794B2 (en) | 2006-09-29 | 2022-03-01 | Biomet Sports Medicine, Llc | Method for implanting soft tissue |
US8672969B2 (en) | 2006-09-29 | 2014-03-18 | Biomet Sports Medicine, Llc | Fracture fixation device |
US8500818B2 (en) | 2006-09-29 | 2013-08-06 | Biomet Manufacturing, Llc | Knee prosthesis assembly with ligament link |
US8529959B2 (en) | 2006-10-17 | 2013-09-10 | Carmell Therapeutics Corporation | Methods and apparatus for manufacturing plasma based plastics and bioplastics produced therefrom |
DK2079490T3 (da) * | 2006-10-23 | 2012-12-10 | Cook Biotech Inc | Bearbejdede ECM-materialer med forbedrede komponentprofiler |
WO2008060973A1 (en) * | 2006-11-10 | 2008-05-22 | Vance Products Incorporated D/B/A Cook Urological Incorporated | Graft for hysterotomy closure |
US7871440B2 (en) | 2006-12-11 | 2011-01-18 | Depuy Products, Inc. | Unitary surgical device and method |
US8163549B2 (en) | 2006-12-20 | 2012-04-24 | Zimmer Orthobiologics, Inc. | Method of obtaining viable small tissue particles and use for tissue repair |
US20080154233A1 (en) * | 2006-12-20 | 2008-06-26 | Zimmer Orthobiologics, Inc. | Apparatus for delivering a biocompatible material to a surgical site and method of using same |
US8343536B2 (en) | 2007-01-25 | 2013-01-01 | Cook Biotech Incorporated | Biofilm-inhibiting medical products |
US8361503B2 (en) * | 2007-03-02 | 2013-01-29 | University of Pittsburgh—of the Commonwealth System of Higher Education | Extracellular matrix-derived gels and related methods |
US8435551B2 (en) | 2007-03-06 | 2013-05-07 | Musculoskeletal Transplant Foundation | Cancellous construct with support ring for repair of osteochondral defects |
WO2008124603A1 (en) | 2007-04-05 | 2008-10-16 | Nmt Medical, Inc. | Septal closure device with centering mechanism |
WO2008124361A2 (en) * | 2007-04-06 | 2008-10-16 | Cook Biotech Incorporated | Fistula plugs having increased column strength and fistula plug delivery apparatuses and methods |
US20090012629A1 (en) | 2007-04-12 | 2009-01-08 | Isto Technologies, Inc. | Compositions and methods for tissue repair |
US9138562B2 (en) | 2007-04-18 | 2015-09-22 | W.L. Gore & Associates, Inc. | Flexible catheter system |
US20080279833A1 (en) * | 2007-05-10 | 2008-11-13 | Matheny Robert G | Laminate sheet articles for tissue regeneration |
US8535349B2 (en) * | 2007-07-02 | 2013-09-17 | Cook Biotech Incorporated | Fistula grafts having a deflectable graft body portion |
US9113851B2 (en) | 2007-08-23 | 2015-08-25 | Cook Biotech Incorporated | Fistula plugs and apparatuses and methods for fistula plug delivery |
CA2736663C (en) | 2007-09-07 | 2018-01-02 | Surgical Biologics, Llc. | Placental tissue grafts and improved methods of preparing and using the same |
US20090069843A1 (en) * | 2007-09-10 | 2009-03-12 | Agnew Charles W | Fistula plugs including a hydration resistant component |
US20090082816A1 (en) * | 2007-09-20 | 2009-03-26 | Graham Matthew R | Remodelable orthopaedic spacer and method of using the same |
WO2009040768A2 (en) * | 2007-09-27 | 2009-04-02 | Carlos Alvarado | Tissue grafting method |
US9023342B2 (en) | 2007-09-27 | 2015-05-05 | Carlos A. Alvarado | Tissue grafting method |
US20090112238A1 (en) * | 2007-10-26 | 2009-04-30 | Vance Products Inc., D/B/A Cook Urological Inc. | Fistula brush device |
JP5214223B2 (ja) * | 2007-11-15 | 2013-06-19 | 船井電機株式会社 | プロジェクタ |
US7846199B2 (en) | 2007-11-19 | 2010-12-07 | Cook Incorporated | Remodelable prosthetic valve |
JP2011505904A (ja) * | 2007-12-07 | 2011-03-03 | シー・アール・バード・インコーポレーテッド | 植込み型補綴 |
US20090157177A1 (en) * | 2007-12-18 | 2009-06-18 | Matheny Robert G | Sewing Ring for a Prosthetic Tissue Valve |
US20090157170A1 (en) * | 2007-12-18 | 2009-06-18 | Matheny Robert G | Trileaflet Semi-Lunar Prosthetic Tissue Valve |
US8257434B2 (en) * | 2007-12-18 | 2012-09-04 | Cormatrix Cardiovascular, Inc. | Prosthetic tissue valve |
US8679176B2 (en) | 2007-12-18 | 2014-03-25 | Cormatrix Cardiovascular, Inc | Prosthetic tissue valve |
US8956378B2 (en) | 2008-02-29 | 2015-02-17 | Cook Biotech Incorporated | Coated embolization device |
CA2717725A1 (en) | 2008-03-05 | 2009-09-11 | Musculoskeletal Transplant Foundation | Cancellous constructs, cartilage particles and combinations of cancellous constructs and cartilage particles |
US20130165967A1 (en) | 2008-03-07 | 2013-06-27 | W.L. Gore & Associates, Inc. | Heart occlusion devices |
US20100082113A1 (en) * | 2008-04-29 | 2010-04-01 | Peter Gingras | Tissue repair implant |
EP3130360B1 (en) * | 2008-06-10 | 2023-06-28 | Cook Biotech Incorporated | Quilted implantable graft |
US9295757B2 (en) | 2008-06-10 | 2016-03-29 | Cook Biotech Incorporated | Quilted implantable graft |
CN102256609B (zh) | 2008-07-30 | 2014-02-19 | 米辛瑟斯有限公司 | 衍生自前胃胞外基质的组织支架 |
JP5722217B2 (ja) | 2008-09-02 | 2015-05-20 | アラーガン・ホールディングス・フランス・ソシエテ・パール・アクシオン・サンプリフィエAllergan Holdings France S.A.S. | ヒアルロン酸および/またはその誘導体の糸、その作製方法、ならびにその使用 |
US20100274362A1 (en) * | 2009-01-15 | 2010-10-28 | Avner Yayon | Cartilage particle tissue mixtures optionally combined with a cancellous construct |
US8980296B2 (en) * | 2009-02-18 | 2015-03-17 | Cormatrix Cardiovascular, Inc. | Compositions and methods for preventing cardiac arrhythmia |
US8672993B2 (en) * | 2009-03-26 | 2014-03-18 | Cook Medical Technologies Llc | Pararenal stent graft |
AU2010245115B2 (en) | 2009-05-06 | 2014-09-18 | Hansa Medical Products, Inc. | Self-adjusting medical device |
US20100305710A1 (en) | 2009-05-28 | 2010-12-02 | Biomet Manufacturing Corp. | Knee Prosthesis |
US8956389B2 (en) | 2009-06-22 | 2015-02-17 | W. L. Gore & Associates, Inc. | Sealing device and delivery system |
US20120029556A1 (en) | 2009-06-22 | 2012-02-02 | Masters Steven J | Sealing device and delivery system |
US8986377B2 (en) | 2009-07-21 | 2015-03-24 | Lifecell Corporation | Graft materials for surgical breast procedures |
US8652500B2 (en) | 2009-07-22 | 2014-02-18 | Acell, Inc. | Particulate tissue graft with components of differing density and methods of making and using the same |
US8298586B2 (en) | 2009-07-22 | 2012-10-30 | Acell Inc | Variable density tissue graft composition |
AU2010201676B1 (en) | 2010-04-23 | 2010-07-22 | Cook Medical Technologies Llc | Curve forming stent graft |
US9421307B2 (en) | 2010-08-17 | 2016-08-23 | University of Pittsburgh—of the Commonwealth System of Higher Education | Biohybrid composite scaffold |
CN106619723A (zh) | 2010-08-24 | 2017-05-10 | 加利福尼亚大学董事会 | 用于心脏治疗的组合物和方法 |
US9788933B2 (en) | 2010-10-29 | 2017-10-17 | Cook Medical Technologies Llc | Medical device delivery system and deployment method |
US9968376B2 (en) | 2010-11-29 | 2018-05-15 | Biomet Manufacturing, Llc | Patient-specific orthopedic instruments |
AU2011200858B1 (en) | 2011-02-28 | 2012-04-05 | Cook Medical Technologies Llc | Stent graft with valve arrangement |
US9241745B2 (en) | 2011-03-07 | 2016-01-26 | Biomet Manufacturing, Llc | Patient-specific femoral version guide |
AU2012262549B2 (en) | 2011-05-27 | 2016-02-11 | Cormatrix Cardiovascular, Inc. | Extracellular matrix material valve conduit and methods of making thereof |
EP2720619B1 (en) | 2011-06-14 | 2016-10-26 | Cook Medical Technologies LLC | Fistula closure devices |
US9770232B2 (en) | 2011-08-12 | 2017-09-26 | W. L. Gore & Associates, Inc. | Heart occlusion devices |
US9357991B2 (en) | 2011-11-03 | 2016-06-07 | Biomet Sports Medicine, Llc | Method and apparatus for stitching tendons |
US9314241B2 (en) | 2011-11-10 | 2016-04-19 | Biomet Sports Medicine, Llc | Apparatus for coupling soft tissue to a bone |
US9370350B2 (en) | 2011-11-10 | 2016-06-21 | Biomet Sports Medicine, Llc | Apparatus for coupling soft tissue to a bone |
US9381013B2 (en) | 2011-11-10 | 2016-07-05 | Biomet Sports Medicine, Llc | Method for coupling soft tissue to a bone |
WO2013078315A2 (en) | 2011-11-24 | 2013-05-30 | Cook Biotech Incorporated | Modifiable medical grafts and related methods and apparatuses |
DK3081189T3 (en) | 2012-01-13 | 2018-10-22 | Lifecell Corp | BREAST PROSTHESIS AND PROCEDURES FOR MAKING BREAST PROSTHESIS |
EP2811939B8 (en) | 2012-02-10 | 2017-11-15 | CVDevices, LLC | Products made of biological tissues for stents and methods of manufacturing |
WO2013158742A2 (en) | 2012-04-18 | 2013-10-24 | Cook Biotech Incorporated | Surgical grafts, and implements for delivering same |
DK3281607T3 (da) | 2012-06-21 | 2019-06-11 | Lifecell Corp | Implanterbar protese med acellulære vævsvedhæftninger. |
US9220586B2 (en) * | 2012-09-28 | 2015-12-29 | Covidien Lp | Surgical implant and applicator |
US9956072B2 (en) | 2012-10-04 | 2018-05-01 | Lifecell Corporation | Surgical template and delivery device |
KR102258565B1 (ko) | 2012-11-15 | 2021-05-28 | 알로소스 | 세절 연골 시스템 및 방법 |
US20140178343A1 (en) | 2012-12-21 | 2014-06-26 | Jian Q. Yao | Supports and methods for promoting integration of cartilage tissue explants |
US10828019B2 (en) | 2013-01-18 | 2020-11-10 | W.L. Gore & Associates, Inc. | Sealing device and delivery system |
WO2014124356A2 (en) | 2013-02-11 | 2014-08-14 | Cook Medical Technologies Llc | Expandable support frame and medical device |
CA2894750C (en) | 2013-02-22 | 2021-12-14 | Allosource | Cartilage mosaic compositions and methods |
US9757119B2 (en) | 2013-03-08 | 2017-09-12 | Biomet Sports Medicine, Llc | Visual aid for identifying suture limbs arthroscopically |
US9918827B2 (en) | 2013-03-14 | 2018-03-20 | Biomet Sports Medicine, Llc | Scaffold for spring ligament repair |
AU2014236705B2 (en) | 2013-03-15 | 2018-04-12 | Allosource | Perforated osteochondral allograft compositions |
EP3027149B1 (en) | 2013-08-01 | 2019-04-10 | Cook Medical Technologies LLC | Tissue adjustment implant |
JP2016529057A (ja) * | 2013-09-02 | 2016-09-23 | マフィン・インコーポレイテッドMuffin Incorporated | 細胞外マトリックス組織物質および骨原性タンパク質を含む生成物 |
WO2015031809A1 (en) * | 2013-09-02 | 2015-03-05 | Muffin Incorporated | Cell-seeded compositions and methods useful for treating bone regions |
AU2013254913B1 (en) | 2013-11-04 | 2014-09-25 | Cook Medical Technologies Llc | Stent graft with valve arrangement |
US10136886B2 (en) | 2013-12-20 | 2018-11-27 | Biomet Sports Medicine, Llc | Knotless soft tissue devices and techniques |
EP2893884A1 (en) | 2014-01-08 | 2015-07-15 | Cook Medical Technologies LLC | ECM strip to plug percutaneous heart valve leaks |
CN111265719B (zh) | 2014-03-21 | 2023-01-10 | 匹兹堡大学-联邦高等教育体系 | 最终消毒的来自细胞外基质的水凝胶的制备方法 |
US9615822B2 (en) | 2014-05-30 | 2017-04-11 | Biomet Sports Medicine, Llc | Insertion tools and method for soft anchor |
US9700291B2 (en) | 2014-06-03 | 2017-07-11 | Biomet Sports Medicine, Llc | Capsule retractor |
US9808230B2 (en) | 2014-06-06 | 2017-11-07 | W. L. Gore & Associates, Inc. | Sealing device and delivery system |
US10039543B2 (en) | 2014-08-22 | 2018-08-07 | Biomet Sports Medicine, Llc | Non-sliding soft anchor |
JP6470842B2 (ja) * | 2014-09-18 | 2019-02-13 | ヒューマサイト インコーポレイテッド | 繊維性管を形成するための方法および装置 |
CN113209379B (zh) | 2014-10-10 | 2022-10-14 | 奥托细胞有限公司 | 胶原构建物及用于产生所述胶原构建物的方法 |
US10959826B2 (en) | 2014-10-16 | 2021-03-30 | Cook Medical Technology LLC | Support structure for scalloped grafts |
US10077420B2 (en) | 2014-12-02 | 2018-09-18 | Histogenics Corporation | Cell and tissue culture container |
EP3237028B1 (en) * | 2014-12-22 | 2021-01-27 | Aroa Biosurgery Limited | Laminated tissue graft product |
US9238090B1 (en) | 2014-12-24 | 2016-01-19 | Fettech, Llc | Tissue-based compositions |
US9955980B2 (en) | 2015-02-24 | 2018-05-01 | Biomet Sports Medicine, Llc | Anatomic soft tissue repair |
CA2980917A1 (en) * | 2015-03-25 | 2016-09-29 | University Of Washington | Thermally conductive graft |
US9974534B2 (en) | 2015-03-31 | 2018-05-22 | Biomet Sports Medicine, Llc | Suture anchor with soft anchor of electrospun fibers |
WO2016186803A1 (en) | 2015-05-15 | 2016-11-24 | Lifecell Corporation | Tissue matrices for plastic surgery |
US10842612B2 (en) | 2015-08-21 | 2020-11-24 | Lifecell Corporation | Breast treatment device |
WO2017062762A2 (en) | 2015-10-07 | 2017-04-13 | Sigmon John C | Methods, medical devices and kits for modifying the luminal profile of a body vessel |
US10687934B2 (en) | 2016-07-05 | 2020-06-23 | Carlos A. Alvarado | Serous membrane for ocular surface disorders |
MX2019002263A (es) | 2016-08-31 | 2019-09-19 | Lifecell Corp | Dispositivo de tratamiento de seno. |
WO2018161034A1 (en) | 2017-03-02 | 2018-09-07 | University Of Pittsburgh - Of The Commonwealth System Of Higher Education | Extracellular matrix (ecm) hydrogel and soluble fraction thereof for the treatment of cancer |
AU2018226867B2 (en) | 2017-03-02 | 2023-11-02 | University Of Pittsburgh - Of The Commonwealth System Of Higher Education | ECM hydrogel for treating esophageal inflammation |
US11633520B2 (en) | 2017-03-06 | 2023-04-25 | Tei Biosciences, Inc. | Perforated tissue graft |
US10722310B2 (en) | 2017-03-13 | 2020-07-28 | Zimmer Biomet CMF and Thoracic, LLC | Virtual surgery planning system and method |
WO2018204848A1 (en) | 2017-05-05 | 2018-11-08 | University Of Pittsburgh - Of The Commonwealth System Of Higher Education | Ocular applications of matrix bound vesicles (mbvs) |
US11291570B2 (en) | 2018-04-27 | 2022-04-05 | Cook Medical Technologies Llc | Hybrid stent and delivery system |
US11298220B2 (en) | 2019-05-03 | 2022-04-12 | Lifecell Corporation | Breast treatment device |
US11826490B1 (en) | 2020-12-29 | 2023-11-28 | Acell, Inc. | Extracellular matrix sheet devices with improved mechanical properties and method of making |
Family Cites Families (22)
Publication number | Priority date | Publication date | Assignee | Title |
---|---|---|---|---|
US2127903A (en) * | 1936-05-05 | 1938-08-23 | Davis & Geck Inc | Tube for surgical purposes and method of preparing and using the same |
AT261800B (de) * | 1966-08-22 | 1968-05-10 | Braun Internat Gmbh B | Verfahren zur Herstellung von röhrenförmigen, glatten bzw. mit einem Gewinde versehenen Gewebe-Blutgefäß-Prothesen |
SE444640B (sv) * | 1980-08-28 | 1986-04-28 | Bergentz Sven Erik | I djur eller menniska implanterbar kerlprotes samt sett for dess framstellning |
US4932973A (en) * | 1983-09-30 | 1990-06-12 | El Gendler | Cartilage and bone induction by artificially perforated organic bone matrix |
US5002572A (en) * | 1986-09-11 | 1991-03-26 | Picha George J | Biological implant with textured surface |
US5350583A (en) * | 1988-03-09 | 1994-09-27 | Terumo Kabushiki Kaisha | Cell-penetrable medical material and artificial skin |
US4902508A (en) * | 1988-07-11 | 1990-02-20 | Purdue Research Foundation | Tissue graft composition |
US4956178A (en) * | 1988-07-11 | 1990-09-11 | Purdue Research Foundation | Tissue graft composition |
US5219361A (en) * | 1988-09-16 | 1993-06-15 | Clemson University | Soft tissue implant with micron-scale surface texture to optimize anchorage |
US5112354A (en) * | 1989-11-16 | 1992-05-12 | Northwestern University | Bone allograft material and method |
EP0483944B1 (en) * | 1990-10-31 | 1995-07-05 | El Gendler | Flexible membranes produced from organic bone matrix for skeletal repair and reconstruction |
US5348788A (en) * | 1991-01-30 | 1994-09-20 | Interpore Orthopaedics, Inc. | Mesh sheet with microscopic projections and holes |
US5315684A (en) * | 1991-06-12 | 1994-05-24 | John Mezzalingua Assoc. Inc. | Fiber optic cable end connector |
US5281422A (en) * | 1991-09-24 | 1994-01-25 | Purdue Research Foundation | Graft for promoting autogenous tissue growth |
US5496372A (en) * | 1992-04-17 | 1996-03-05 | Kyocera Corporation | Hard tissue prosthesis including porous thin metal sheets |
US5275826A (en) * | 1992-11-13 | 1994-01-04 | Purdue Research Foundation | Fluidized intestinal submucosa and its use as an injectable tissue graft |
US5352463A (en) * | 1992-11-13 | 1994-10-04 | Badylak Steven F | Tissue graft for surgical reconstruction of a collagenous meniscus and method therefor |
TW335351B (en) * | 1993-08-31 | 1998-07-01 | Depuy Inc | Orthopaedic appliance, absorbable orthopaedic appliance, and method for forming an orthopaedic appliance |
AU692094B2 (en) * | 1995-04-07 | 1998-05-28 | Methodist Health Group, Inc. | Tissue graft and method for urinary bladder reconstruction |
US5711969A (en) * | 1995-04-07 | 1998-01-27 | Purdue Research Foundation | Large area submucosal tissue graft constructs |
US5733337A (en) * | 1995-04-07 | 1998-03-31 | Organogenesis, Inc. | Tissue repair fabric |
US5755791A (en) * | 1996-04-05 | 1998-05-26 | Purdue Research Foundation | Perforated submucosal tissue graft constructs |
-
1996
- 1996-04-05 US US08/628,789 patent/US5755791A/en not_active Expired - Lifetime
-
1997
- 1997-03-31 JP JP53626797A patent/JP4510939B2/ja not_active Expired - Lifetime
- 1997-03-31 EP EP97917752A patent/EP0891165B1/en not_active Expired - Lifetime
- 1997-03-31 AU AU25999/97A patent/AU710788B2/en not_active Expired
- 1997-03-31 AT AT97917752T patent/ATE352266T1/de active
- 1997-03-31 ES ES97917752T patent/ES2281099T3/es not_active Expired - Lifetime
- 1997-03-31 DE DE69737285T patent/DE69737285T2/de not_active Expired - Lifetime
- 1997-03-31 WO PCT/US1997/005268 patent/WO1997037614A1/en active IP Right Grant
- 1997-04-04 AR ARP970101360A patent/AR006540A1/es active IP Right Grant
- 1997-08-06 US US08/908,151 patent/US5968096A/en not_active Expired - Lifetime
- 1997-09-18 US US08/932,868 patent/US5997575A/en not_active Expired - Lifetime
-
2007
- 2007-08-01 JP JP2007200616A patent/JP2007289734A/ja active Pending
Also Published As
Publication number | Publication date |
---|---|
ATE352266T1 (de) | 2007-02-15 |
US5997575A (en) | 1999-12-07 |
JP4510939B2 (ja) | 2010-07-28 |
EP0891165A4 (en) | 2000-04-05 |
AU2599997A (en) | 1997-10-29 |
DE69737285D1 (de) | 2007-03-15 |
JP2007289734A (ja) | 2007-11-08 |
US5968096A (en) | 1999-10-19 |
JP2000508202A (ja) | 2000-07-04 |
EP0891165B1 (en) | 2007-01-24 |
US5755791A (en) | 1998-05-26 |
AU710788B2 (en) | 1999-09-30 |
DE69737285T2 (de) | 2007-12-06 |
AR006540A1 (es) | 1999-09-08 |
EP0891165A1 (en) | 1999-01-20 |
WO1997037614A1 (en) | 1997-10-16 |
Similar Documents
Publication | Publication Date | Title |
---|---|---|
ES2281099T3 (es) | Construcciones para injertos a base de tejidos submucosos, dotados de perforaciones. | |
EP0821590B1 (en) | Large area submucosal graft constructs and method for making the same | |
ES2230627T3 (es) | Injertos tubulares a partir de submucosa purificada. | |
ES2375875T3 (es) | Prótesis de mastopexia y de reconstrucción mamaria. | |
ES2426668T3 (es) | Injertos de ICL no antigénicos reticulados con ácido peracético | |
ES2352879T3 (es) | Membrana biopolimérica orientada. | |
ES2323661T3 (es) | Metodo de preparacion de una protesis vascular. | |
ES2662647T3 (es) | Uso de una biomatriz de colágeno biofuncional regenerativa para tratar defectos viscerales o parietales | |
TW501934B (en) | Collagen material and process for making the same | |
JP2002516703A (ja) | 生物工学により作成した血管移植片支持体補綴 | |
ES2754025T3 (es) | Implantes resistentes a la compresión y a la deformación | |
BR112017013411B1 (pt) | produto de enxerto de tecido, seu método e aparelho para preparação | |
ES2874082T3 (es) | Procedimiento de fabricación de película de colágeno con luz ultravioleta, película de colágeno fabricada con el mismo y biomaterial preparado con película de colágeno | |
CA2248212C (en) | Perforated submucosal tissue graft constructs | |
US20240009348A1 (en) | Multi-layer amnion product, related devices, and related methods | |
ES2388916T3 (es) | Sistema y método para formar prótesis tubulares de injerto de ingeniería biológica | |
BR112019018581A2 (pt) | dispositivo médico para cirurgia da mama. |