ES2253790T3 - Analogos de talidomida del tipo piperidin-2,6-diona. - Google Patents

Analogos de talidomida del tipo piperidin-2,6-diona.

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ES2253790T3 ES98100259T ES98100259T ES2253790T3 ES 2253790 T3 ES2253790 T3 ES 2253790T3 ES 98100259 T ES98100259 T ES 98100259T ES 98100259 T ES98100259 T ES 98100259T ES 2253790 T3 ES2253790 T3 ES 2253790T3
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Abstract

SE DESCRIBEN COMPUESTOS ANALOGOS DE LA TALIDOMIDA DE LA CLASE DE LAS PIPERIDIN - 2,6 - DIONAS, PROCEDIMIENTO PARA SU PRODUCCION Y SU USO EN MEDICAMENTOS.

Description

Análogos de talidomida del tipo piperidin-2,6-diona.
La invención se refiere a compuestos análogos a la talidomida del tipo piperidin-2,6-diona, a un procedimiento para su preparación y también a su utilización en medicamentos.
El exceso de producción de citoquina TNF-\alpha (factor de necrosis tumoral \alpha) desempeña un papel central en la patogénesis en el síndrome injerto contra huésped, la esclerosis múltiple, el rechazo de trasplantes, la estomatitis aftósica, el eritema nudoso leproso, la enfermedad de Boeck, la artritis reumatoide y una serie de diversas enfermedades que van acompañadas de episodios inflamatorios. Una propuesta para la terapia de estas enfermedades consiste en la represión selectiva de la liberación de TNF-\alpha mediante la administración de principios activos inmunosupresores o inmunomoduladores, por ejemplo dexametasona, pentoxifilina o talidomida.
Sin embargo, es necesario diferenciar entre las indicaciones que requieren una inmunosupresión general y aquellas en las que se han de sopesar las ventajas y desventajas de una inmunosupresión. La talidomida ha demostrado ser superior a los inmunosupresores clásicos en el tratamiento de la estomatitis aftósica. Otros ejemplos de enfermedades en las que la talidomida ha mostrado una buena eficacia sin conducir a una inmunosupresión general son: lupus eritomatoso cutáneo (H+G 69, 816 a 822 (1994)), pioderma gangrenoso y úlcera orogenital en caso de síndrome de Behçet (The Lancet, 20.05.89, 1093 a 1095). Se consideran que los factores patogénicos de estas lesiones limitadas a la piel y las mucosas son mediadores endógenos con efectos sobre el endotelio y los leucocitos circulantes. La adhesividad del endotelio frente a los leucocitos aumenta puntualmente bajo la influencia de TNF-\alpha y otras citoquinas, y esto contribuye de modo decisivo al desarrollo de vasculitis. En caso de cuadros clínicos sistémicos, el efecto de la propia talidomida está limitado a la piel y las mucosas, lo que requiere una inmunosupresión (adicional). Como ejemplos se mencionan el lupus eritomatoso sistémico que, además de los síntomas en la piel, también provoca modificaciones en vasos internos, en particular de los riñones, representando un peligro para la vida del paciente; la reacción leprosa de tipo II con implicación de ojos y/o articulaciones; y también el síndrome de Behçet con implicación de ojos y/o articulaciones.
Aquellas sustancias que, como la talidomida, repriman esta modificación del endotelio, pero que además bloqueen total o parcialmente reacciones de las defensas inmunitarias celulares específicas, pueden representar un avance significativo para la terapia de los cuadros clínicos sistémicos arriba mencionados. Un mensajero clave de la respuesta inmune celular es la interleuquina 2, de la que depende la proliferación de linfocitos específicos de antígenos.
Por consiguiente, un objetivo del desarrollo de nuevos medicamentos consiste en expresar las propiedades antiinflamatorias de la talidomida junto con componentes activos inmunosupresores que la talidomida no tiene por sí sola en su aplicación clínica.
El objetivo en que se basaba la invención consistía en el desarrollo de compuestos análogos a la talidomida del tipo piperidin-2,6-diona que inhibieran la liberación de TNF-\alpha provocada por inflamaciones y también la síntesis de interleuquina 2 inducida por antígenos.
Se ha comprobado que los compuestos según la invención satisfacen los requisitos impuestos.
Por consiguiente, un objeto de la invención consiste en piperidin-2,6-dionas sustituidas en posición 3 y 5 de fórmula general (I)
1
donde
Z
\hskip5mm
representa uno de los grupos 2 estando unido el átomo de
{}\hskip8mmcarbono con el sustituyente R^{1} al grupo carbonilo y
R^{1}
es un grupo ftalimida (cuando Z = -C(R^{1}R^{2})-CH_{2}-) o representa un grupo ftalimida sustituido de forma simple o doble con grupos hidroxilo, metoxi o amino (cuando Z representa -C(R^{1}) = CH-),
R^{2}
es hidrógeno o alquilo(C_{1-6}) (de cadena lineal o ramificado),
R^{3}
representa hidrógeno, un grupo alquilo(C_{1-6}) (de cadena lineal o ramificado) o un sistema de anillo aromático o heteroaromático, y
R^{4}
significa un grupo alquilo(C_{1-6}) (de cadena lineal o ramificado) o un sistema de anillo aromático o heteroaromático.
Entre las piperidin-2,6-dionas de fórmula (I) en las que Z = -C(R^{1}R^{2})-CH_{2}-, R^{1} es ftalimida y R^{2} y R^{3} significan hidrógeno, es particularmente adecuado aquel compuesto donde R^{4} es fenilo.
Entre las piperidin-2,6-dionas de fórmula I en las que Z = -C(R^{1})=CH-, R^{3} es etilo y R^{4} significa fenilo, es particularmente adecuado aquel compuesto donde R^{1} es 3,4-dimetoxiftalimida.
Otro objeto de la invención consiste en un procedimiento para la preparación de compuestos análogos a la talidomida del tipo piperidin-2,6-diona de fórmula general (I).
Los compuestos de fórmula general (I) con Z = -C(R^{1}R^{2})-CH_{2}- se pueden preparar mediante condensación de anhídrido ftálico con un ácido glutamínico sustituido, por ejemplo ácido 4-fenilglutamínico o ácido 4-metilglutamínico, en un disolvente orgánico, preferentemente piridina, ciclización del producto en anhídrido acético y posterior transformación en la imida. La conversión del anhídrido en la imida tiene lugar mediante fusión con urea.
Estos compuestos de fórmula (I) también se pueden obtener mediante la reacción de anhídrido ftálico con una
3-aminoglutarimida sustituida en posición 5, preferentemente mediante calentamiento en ácido acético.
Los compuestos de fórmula general (I) con Z = -C(R^{1})=CH- se pueden sintetizar mediante condensación de un anhídrido ftálico sustituido, por ejemplo anhídrido 3,4-dimetoxiftálico, con 3-amino-3,4-dehidropiperidin-2,6-dionas sustituidas en posición 5, por ejemplo 3-amino-5-etil-5-fenilglutaconimida, en un disolvente orgánico, por ejemplo ácido acético.
\vskip1.000000\baselineskip
Ejemplo 1 2-(5-metil-2,6-dioxopiperidin-3-il)-1,3-dihidro-2H-isoindol-1,3-diona (1)
2,00 g (11 mmol) de ácido 4-metilglutamínico y 1,95 g (13 mmol) de anhídrido ftálico se calentaron a reflujo en 15 ml de piridina seca durante 6 h. Después de retirar el disolvente por destilación, el residuo se calentó hasta ebullición en 10 ml de anhídrido acético durante 1 h. El sólido resultante durante el enfriamiento se aspiró y el filtrado se concentró. Después de mezclar el filtrado con éter, el precipitado formado se aspiró y los precipitados reunidos se recristalizaron a partir de tolueno absoluto. 2,00 g (7 mmol) del producto cristalizado y 0,23 g (3,8 mmol) de urea se mezclaron bien y se fundieron en un baño de aceite a aproximadamente 200ºC durante 30 minutos. La masa fundida solidificada se calentó brevemente hasta ebullición sucesivamente con 4 ml de anhídrido acético y con 6 ml de etanol. El sólido resultante se aspiró y se recristalizó a partir de DMF/agua. Se obtuvieron 1,35 g (67% del valor teórico) de 2-(5-metil-2,6-dioxopiperidin-3-il)-1,3-dihidro-2H-isoindol-1,3-diona (1) con un punto de fusión
de 270 a 272ºC.
\vskip1.000000\baselineskip
Ejemplo 2 2-(5-fenil-2,6-dioxopiperidin-3-il)-1,3-dihidro-2H-isoindol-1,3-diona (2)
3,00 g (12 mmol) de ácido 4-fenilglutamínico y 2,12 g (14 mmol) de anhídrido ftálico se calentaron a reflujo en 40 ml de piridina seca durante 6 h. Después de retirar el disolvente por destilación, el residuo se recogió en 50 ml de HCl al 5% y se extrajo con acetato de etilo. La fase orgánica se lavó con agua, se decoloró con carbón activo y se secó sobre sulfato de sodio. Después de retirar el disolvente por destilación, el residuo se calentó a reflujo en 40 ml de anhídrido acético durante 1 h. A continuación, la solución se concentró y se mezcló con éter. El precipitado formado se aspiró y se recristalizó a partir de tolueno seco. 2,00 g (6 mmol) del producto cristalizado y 0,19 g (3 mmol) de urea se fundieron en un baño de aceite a aproximadamente 200ºC durante 30 minutos. La masa fundida solidificada se calentó brevemente hasta ebullición sucesivamente con 4 ml de anhídrido acético y con 8 ml de etanol. El sólido resultante se recristalizó a partir de DMF/agua. Se obtuvieron 0,80 g (40% del valor teórico) de 2-(5-fenil-2,6-dioxopiperidin-3-il)-1,3-dihidro-2H-isoindol-1,3-diona (2) con un punto de fusión de 228 a 231ºC.
Ejemplo 3 2-(5-etil-5-fenil-2,6-dioxopiperidin-3-il)-1,3-dihidro-2H-isoindol-1,3-diona (3)
1,00 g (4 mmol) de 3-amino-5-etil-5-fenilglutaconimida se disolvieron en 40 ml de etanol anhidro, la solución se mezcló con 0,1 g de paladio/carbono (10% Pd/C) y se agitó bajo atmósfera de hidrógeno durante 8,5 h. A continuación se filtró el catalizador y el filtrado se concentró hasta sequedad. El residuo se calentó a reflujo durante 4 h con 0,70 g (5 mmol) de anhídrido ftálico en 40 ml de ácido acético glacial. Después de retirar el disolvente por destilación, el residuo se recristalizó a partir de etanol. Se obtuvieron 0,99 g (63% del valor teórico) de 2-(5-etil-5-fenil-2,6-dioxopiperidin-3-il)-1,3-dihidro-2H-isoindol-1,3-diona (3) con un punto de fusión de 174 - 177ºC.
\vskip1.000000\baselineskip
Ejemplo 4 2-(5-etil-5-fenil-2,6-dioxo-1,2,5,6-tetrahidropiridin-3-il)-4,5-dimetoxi-1,3-dihidro-2H-isoindol-1,3-diona (4)
0,45 g (2 mmol) de 3-amino-5-etil-5-fenilglutaconimida y 0,45 g (2 mmol) de anhídrido 4,5-dimetoxiftálico se calentaron a reflujo en 15 ml de ácido acético glacial durante 5 h. A continuación, la mezcla se concentró hasta sequedad y el residuo se recristalizó a partir de etanol. Se obtuvieron 0,55 g (67% del valor teórico) de 2-(5-etil-5-fenil-2,6-dioxo-1,2,5,6-tetrahidropiridin-3-il)-4,5-dimetoxi-1,3-dihidro-2H-isoindol-1,3-diona (4) con un punto de fusión de 203 - 205ºC.
Los compuestos según la invención son toxicológicamente inocuos y por ello son adecuados como principios activos farmacéuticos. En consecuencia, otro objeto de la invención consiste en la utilización de los compuestos análogos a la talidomida del tipo piperidin-2,6-diona de fórmula (I) como principios activos en medicamentos, preferentemente como supresores para la liberación de TNF-\alpha provocada por inflamaciones y también la síntesis de interleuquina 2 inducida por antígenos.
Además de como mínimo un compuesto de fórmula general (I), los medicamentos según la invención contienen materiales de soporte, materiales de carga, disolventes, diluyentes, colorantes y/o ligantes. La elección de los materiales auxiliares y de las cantidades a utilizar de los mismos depende de si el medicamento se ha de administrar por vía oral, intravenosa, intraperitoneal, intradérmica, intramuscular, intranasal, bucal o local. Para la administración oral son adecuados los preparados en forma de tabletas, pastillas masticables, grageas, cápsulas, granulados, gotas, jugos y jarabes, y para la administración parenteral, tópica y por inhalación son adecuadas las soluciones, suspensiones, preparados secos de fácil reconstitución y aerosoles. Los compuestos según la invención en un depósito en forma disuelta, en una lámina de soporte o en un emplasto, dado el caso añadiendo agentes promotores de la penetración en la piel, son ejemplos de preparados adecuados para la administración percutánea. Los preparados a utilizar por vía oral o percutánea pueden liberar los compuestos según la invención de forma retardada.
La cantidad de principio activo que se ha de administrar a los pacientes varía en función de su peso, del tipo de administración, de la indicación y de la gravedad de la enfermedad. Normalmente se administran de 1 a 150 mg/kg de como mínimo un compuesto análogo a la talidomida de fórmula (I).
\vskip1.000000\baselineskip
Estudios farmacológicos
La liberación de TNF-\alpha se puede analizar in vitro en células mononucleares humanas de sangre periférica (células T, células B y monocitos) después de estimulación con lipopolisacáridos (LPS). El LPS es un componente de la pared celular bacteriana y estimula monocitos y macrófagos.
Además de la estimulación con LPS, la liberación de TNF-\alpha también se puede provocar por estimulación de células mononucleares humanas de la sangre periférica con anticuerpos monoclonales específicos de células T contra antígenos de activación (AntiCD2-AntiCD28) o con el superantígeno bacteriano tóxico Shock Syndrom Toxin-1 TSST-1. Aparte de la liberación de TNF-\alpha, estos estimulantes también conducen a la formación de interleuquina 2 (IL-2) entre otros efectos.
Estimulación de células mononucleares con LPS: efecto en TNF-\alpha
La liberación de TNF-\alpha se puede analizar in vitro en células mononucleares humanas de sangre periférica, es decir, células T, células B y monocitos, después de estimulación con lipopolisacáridos (LPS). El LPS es un componente de la pared celular bacteriana y estimula monocitos y macrófagos.
Se obtuvieron células mononucleares a partir de sangre heparinizada de como mínimo tres donantes voluntarios. Para ello, en cada caso se separaron 20 ml de sangre mediante métodos conocidos a través de un gradiente Ficoll-Paque, las células se recogieron y se lavaron tres veces con un medio de cultivo celular. Este medio de cultivo celular consistía en medio RPMI 1640, complementado con 2 mM de glutamina (Life Technologies, Eggenstein), un 10% de suero bovino fetal (Life Technologies), 50 \mug/ml de estreptomicina (Sigma, Deisenhofen), 50 IU/ml de penicilina (Sigma) y 100 \muM de \beta-mercaptoetanol (Merck, Darmstadt). Finalmente, las células mononucleares se recogieron en 15 ml de medio de cultivo celular y se distribuyeron en cargas de 1 ml en placas de incubación estériles de 24 pocillos (Sigma). A cada una de las cargas de 1 ml se le añadió bien 1 \mul de sulfóxido de dimetilo (DMSO, Merck) o bien 1 \mul de una solución de la sustancia de ensayo (en DMSO; concentración final en el ensayo: 0,5; 5; 12,5 y
50 \mug/ml), y las cargas se incubaron durante una hora en estufa incubadora con CO_{2} (5% CO_{2}, humedad del aire 90%). A continuación se añadieron en cada caso 2,5 \mug de LPS (de E. coli 0127: B8, Sigma), excepto en los controles. La incubación de los cultivos continuó durante 20 h. Después de la incubación se determinó la concentración de TNF-\alpha en los sobrenadantes del cultivo celular mediante análisis ELISA comercial (Boehringer Mannheim). La intensidad de la inhibición de TNF-\alpha se calculó a partir de los valores de medida de las cargas de control no tratadas con principio activo y las cargas incubadas con los compuestos de ensayo. Las concentraciones que conducían a una inhibición de un 50% de la liberación de TNF-\alpha (valores IC50) se calcularon con ayuda de una recta de regresión.
La Tabla 1 muestra la influencia inhibidora de los compuestos según la invención en la liberación de TNF-\alpha inducida por LPS:
TABLA 1
Ejemplo nº Inhibición de la liberación de TNF-\alpha con una IC_{50} [\mug/ml]
concentración final de 50 \mug/ml en el ensayo [%]
1 48% n.d.
2 69% 8,7
3 80% 11,0
4 90% 2,0
Estimulación de células T: inhibición de IL-2
La liberación de interleuquina 2 se puede analizar mediante estimulación in vitro de células mononucleares humanas de sangre periférica, que además de células T también contiene células B y monocitos. Mediante la estimulación policlonal a través de epítopes constantes del receptor de células T o las denominadas moléculas superficiales transmisoras de señales accesorias se obtiene un rango de medida más específico que en el caso de la estimulación con antígenos de poblaciones pequeñas de células T. Se utilizó la combinación de 2 de estas señales accesorias: a través de las moléculas superficiales CD2 y CD28.
Las células mononucleares se obtienen de sangre heparinizada de como mínimo tres donantes voluntarios. Para ello, en cada caso se separan 20 ml de sangre mediante métodos conocidos a través de un gradiente Ficoll-Paque, las células se recogen y se lavan tres veces con un medio de cultivo celular. Este medio de cultivo celular consiste en medio RPMI 1640, complementado con 2 mM de glutamina (Life Technologies, Eggenstein), un 10% suero bovino fetal (Life Technologies), 50 \mug/ml de estreptomicina (Sigma, Deisenhofen), 50 IU/ml de penicilina (Sigma) y
100 \muM de \beta-mercaptoetanol (Merck, Darmstadt). Finalmente, las células mononucleares se recogieron en 15 ml de medio de cultivo celular y se distribuyeron en cargas de 1 ml en placas de incubación estériles de 24 pocillos (Sigma). A cada una de las cargas de 1 ml se le añadió bien 1 \mul de sulfóxido de dimetilo (DMSO, Merck) o bien 1 \mul de una solución de la sustancia de ensayo (en DMSO; concentración final en el ensayo: 0,5; 5; 12,5 y 50 \mug/ml), y las cargas se incubaron durante una hora en estufa incubadora con CO_{2} (5% CO_{2}, humedad del aire 90%). A continuación se añadieron en cada caso 0,1 \mug/ml de los anticuerpos monoclonales (con nº AICD2.M1 del Prof. Dr. Meuer; anti-CD28 de CLB, Amsterdam), excepto en los controles. La incubación de los cultivos continuó durante 20 h. Después de la incubación se determinó la concentración de IL-2 en los sobrenadantes de cultivo celular mediante análisis ELISA comercial (Boehringer Mannheim). La intensidad de la inhibición de IL-2 se calculó a partir de los valores de medida de las cargas de control no tratadas con principio activo y las cargas incubadas con los compuestos de ensayo.
Bajo estas condiciones, la sustancia del Ejemplo 4 con una concentración de 50 \mug/ml inhibía la síntesis de IL-2 estimulada con CD2/CD28 en un 86 \pm 6%. Utilizando el superantígeno de estafilococo (de E. coli 0127: B8; Sigma, Deisenhofen) TSST-1 (0,1 \mug/ml) como estimulador de células T, la síntesis de IL-2 se inhibía en un 77 \pm 20%.
Estos estudios demuestran que los compuestos análogos a la talidomida del tipo piperidin-2,6-diona de fórmula (I) inhiben tanto la liberación de TNF-\alpha provocada por inflamaciones como la síntesis de interleuquina 2 inducida por antígenos.

Claims (7)

1. Piperidin-2,6-dionas sustituidas de fórmula (I)
3
donde
Z
\hskip5mm
representa uno de los grupos 2, estando unido el átomo de
{}\hskip8mmcarbono con el sustituyente R^{1} al grupo carbonilo y
R^{1}
es un grupo ftalimida (cuando Z = -C(R^{1}R^{2})-CH_{2}-) o representa un grupo ftalimida sustituido de forma simple o doble con grupos hidroxilo, metoxi o amino (cuando Z representa -C(R^{1}) = CH-),
R^{2}
es hidrógeno o alquilo(C_{1-6}) (de cadena lineal o ramificado),
R^{3}
representa hidrógeno, un grupo alquilo(C_{1-6}) (de cadena lineal o ramificado) o un anillo (hetero)aromático, y
R^{4}
significa un grupo alquilo(C_{1-6}) (de cadena lineal o ramificado) o un anillo (hetero)aromático.
2. Piperidín-2,6-dionas sustituidas de fórmula (I) según la reivindicación 1, caracterizadas porque
Z
es -C(R^{1}R^{2})-CH_{2}-,
R^{1}
significa ftalimida,
R^{2}
representa hidrógeno,
R^{3}
significa hidrógeno o etilo y
R^{4}
representa metilo o fenilo.
3. Piperidín-2,6-dionas sustituidas de fórmula I según la reivindicación 1, caracterizadas porque
Z
es -C(R^{1}) = CH-,
R^{1}
significa 3,4-dimetoxiftalimida,
R^{3}
representa etilo y
R^{4}
representa fenilo.
4. Procedimiento para la preparación de piperidín-2,6-dionas sustituidas de fórmula (I) según las reivindicaciones 1 y 2, caracterizado porque un anhídrido de ácido ftálico se condensa con un ácido glutamínico sustituido, el producto se cicla para obtener el anhídrido y éste se transforma en la imida.
5. Procedimiento para la preparación de piperidín-2,6-dionas sustituidas de fórmula I según las reivindicaciones 1 a 3, caracterizado porque un anhídrido de ácido ftálico se condensa con 3-aminoglutaconimidas sustituidas o 3-aminoglutarimidas sustituidas en posición 5.
6. Utilización de una piperidín-2,6-diona sustituida de fórmula I según las reivindicaciones 1 a 3 como principio activo en un medicamento.
7. Utilización según la reivindicación 6, caracterizada porque el medicamento es un inmunomodulador.
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