ES2241129T3 - Inmunoterapia de malignidad de linfocitos b utilizando anticuerpos anti-cd22. - Google Patents
Inmunoterapia de malignidad de linfocitos b utilizando anticuerpos anti-cd22.Info
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Abstract
Las manifestaciones de procesos malignos asociados a células B, como el subtipo de células B del linfoma de no Hodgkin y de la leucemia linfocítica crónica, son contribuyentes significativos a la mortalidad por cáncer. Se combina la respuesta de los procesos malignos asociados a las células B a diferentes formas de tratamiento. Los procedimientos tradicionales de tratamiento de los procesos malignos asociados a células B, incluidos quimioterapia y radioterapia, tienen una utilización limitada, debido a los efectos tóxicos secundarios. La inmunoterapia con anticuerpos anti-CD22 igualmente ha dado un éxito limitado. Sin embargo, el uso de anticuerpos que se unen al antígeno CD22 da lugar a un medio efectivo para tratar las manifestaciones de procesos malignos tales como formas indolentes y agresivas de linfomas de células B y formas agudas y crónicas de leucemias linfáticas. Además, la inmunoterapia con anticuerpos anti-CD22 requiere dosis comparativamente más bajas de proteínas de anticuerpos y puede ser utilizada con efectividad en terapias multimodales.
Description
Inmunoterapia de malignidad de linfocitos B
utilizando anticuerpos anti-CD22.
La presente invención se refiere a los medios
inmunoterapéuticos para tratar la malignidad de linfocitos B. En
particular, la presente invención se refiere al tratamiento de la
malignidad de linfocitos B administrando comparativamente bajas
dosis de anticuerpos que se unen al antígeno CD22. La presente
invención se refiere asimismo a terapias multimodales en las que la
terapia con anti-CD22 se complementa con
quimioterapia, o con proteínas terapéuticas, tales como
inmunoconjugados y proteínas de fusión del anticuerpo.
Los linfomas de linfocitos B, tales como el
subtipo de linfocito B del linfoma distinto del de Hodgkin,
contribuyen significativamente a la mortalidad por cáncer. La
respuesta de la malignidad de linfocitos B a varias formas de
tratamiento es mixta. Por ejemplo, en los casos en los que es
posible la estadificación clínica adecuada de un linfoma distinto
del de Hodgkin, la terapia de radiación del campo puede proporcionar
tratamiento satisfactorio. Todavía, aproximadamente la mitad de los
pacientes mueren de esta enfermedad. Devesa et al., J.
Nat'l Cancer Inst. 79:701 (1987).
La mayoría de las leucemias linfocíticas crónicas
son de la estirpe del linfocito B. Freedman, Hematol. Oncol.
Clin. North Am. 4:405 (1990). Este tipo de malignidad de
linfocitos B es la leucemia más frecuente en el mundo occidental.
Goodman et al., Leukemia and Lymphoma 22:1 (1996). La
historia natural de la leucemia linfocítica crónica comprende varias
fases. En la fase inicial, la leucemia linfocítica crónica es una
enfermedad poco activa, caracterizada por la acumulación de la
malignidad de pequeños linfocitos B, maduros, funcionalmente
incompetentes que presentan una vida prolongada. A la larga,
disminuye la duplicación del tiempo de la malignidad de los
linfocitos B y los pacientes se vuelven cada vez más sintomáticos.
Mientras que el tratamiento puede proporcionar alivio sintomático,
la supervivencia general de los pacientes está sólo afectada al
mínimo. Las últimas etapas de la leucemia linfocítica crónica se
caracterizan por la anemia y/o trombocitopenia significativas. En
este momento, la supervivencia media es menor de dos años. Foon
et al., Annals Int. Medicine 113:525 (1990). Debido a
la tasa muy baja de proliferación celular, la leucemia linfocítica
crónica es resistente al tratamiento.
Los procedimientos de tratamiento tradicionales
de la malignidad de linfocitos B incluyendo la quimioterapia y la
radioterapia, presentan utilidad limitada debido a los efectos
secundarios tóxicos. La utilización de anticuerpos monoclonales
contra radionúclidos directos, toxinas u otros agentes terapéuticos
ofrece la posibilidad de que dichos agentes se puedan administrar de
forma selectiva en las zonas tumorales, limitando de este modo la
toxicidad a los tejidos normales.
Los anticuerpos contra el antígeno CD20 se han
investigado para la terapia de los linfomas con linfocitos B. Por
ejemplo, un anticuerpo anti-CD20 híbrido, denominado
"IDEC-C2B8", presenta actividad contra los
linfomas por linfocitos B cuando se suministra en forma de
anticuerpos no conjugados en inyecciones repetidas de dosis que
superan los 500 mg por inyección. Maloney et al., Blood
84:2457 (1994); Longo, Curr. Opin. Oncol. 8:353 (1996).
Aproximadamente el 50 por ciento de los pacientes distintos del de
Hodgkin, que presentan la forma poco activa en bajo grado, tratados
con este régimen presentaban respuestas. Las respuestas terapéuticas
se han obtenido también utilizando anticuerpo monoclonal murino
anti-CD-20 de B1 marcado con
^{131}I cuando se administraban dosis repetidas que superaban los
600 mg por inyección. Kaminski et al., N. Engl. J. Med.
329:459 (1993); Press et al., N. Engl. J. Med.
329:1219(1993); Press et al., Lancet
346:336 (1995). Sin embargo, estos anticuerpos, si se
suministran como formas no conjugadas o formas radiomarcadas no han
presentado respuestas objetivas en pacientes con la forma más
corriente y letal del linfoma por linfocitos B, el producto
intermedio o el tipo
agresivo.
agresivo.
Por consiguiente, es necesario desarrollar una
inmunoterapia para la malignidad de linfocitos B que permita la
administración repetida de dosis comparativamente bajas de un
anticuerpo, y que no esté limitada por la necesidad de añadir un
agente tóxico para conseguir una respuesta terapéutica de duración
significativa.
Por consiguiente, un objetivo de la presente
invención consiste en proporcionar la utilización de por lo menos un
anticuerpo anti-CD22 completo que no esté conjugado
con un agente íntegro del mismo, para la preparación de un
medicamento destinado al tratamiento de la malignidad de linfocitos
B.
Otro objetivo adicional de la presente invención
consiste en proporcionar la utilización en la que bajas dosis de
anticuerpos anti-CD22 se complementan con la
administración de una proteína terapéutica, tal como un
inmunoconjugado o una proteína de fusión del anticuerpo, o mediante
un régimen quimioterapéutico.
Estos y otros objetivos se consiguen, según una
forma de realización de la presente invención, mediante el
suministro de un anticuerpo anti-CD22 y un portador
farmacéuticamente aceptable.
Tal como se expuso anteriormente, los anticuerpos
anti-CD20, ya sean no conjugados o marcados con un
radionúclido terapéutico, no han podido proporcionar respuestas
objetivas en pacientes con formas intermedias o agresivas de linfoma
por linfocitos B. Sorprendentemente, los estudios clínicos en
pacientes con linfoma distinto del de Hodgkin (ambas formas poco
activas y agresivas) o leucemia linfática aguda han demostrado que
dosis relativamente bajas (es decir, 20 a 100 mg de proteína por
dosis) de anticuerpo anti-CD22 murino o humanizado
no conjugado, denominado "EPB-2" o"LL2",
pueden producir remisiones parciales o completas que duran hasta 24
meses. Esto, a pesar del hecho de que dichos pacientes están a
menudo en recaída tras múltiples ciclos de quimioterapia agresiva e
incluso tras el trasplante de médula ósea. Los resultados positivos
con anticuerpos anti-CD22 no conjugados son
particularmente sorprendentes en pacientes avanzados con la forma
agresiva (intermedia) de linfoma distinto del de Hodgkin y en la
leucemia linfática crónica y aguda, ya que los anticuerpos
anti-CD20 no conjugados o radiomarcados no han
podido presentar tales efectos, particularmente a bajas dosis de
proteína. Además, los resultados positivos con los anticuerpos
anti-CD22 no son de esperar a la vista del informe
de Freedman, Hematol.Oncol. Clin. North Am. 4:405 (1990), de
que las leucemias linfocíticas crónicas de tipo linfocitos B no
expresan generalmente a CD22.
En la descripción siguiente, se utilizan
extensamente numerosos términos. Para facilitar la comprensión de la
invención se proporcionan las siguientes definiciones.
Un gen estructural es una secuencia de ADN
que se transcribe en el ARN mensajero (ARNm) que se traduce a
continuación en una secuencia de aminoácidos característica de un
polipéptido específico.
Un activador es una secuencia de ADN que
dirige la transcripción de un gen estructural. Normalmente, se sitúa
un activador en la zona 5' de un gen, próximo al punto de partida de
la transcripción de un gen estructural. Si un activador es un
activador inducible, entonces la velocidad de transcripción aumenta
en respuesta a un agente inductor. En cambio, la velocidad de
transcripción no está regulada por un agente inductor si el
activador es un activador esencial.
Una molécula de ADN aislada es un
fragmento de ADN que no está integrado en un ADN genómico de un
organismo. Por ejemplo, un gen del anticuerpo clonado es un
fragmento de ADN que ha sido separado del ADN genómico de una célula
de mamífero. Otro ejemplo de una molécula de ADN aislada es una
molécula de ADN sintetizada químicamente que no está integrada en el
ADN genómico de un organismo.
Un potenciador es un elemento regulador de
ADN que puede aumentar la eficacia de la transcripción,
independientemente de la distancia u orientación del potenciador con
respecto al punto de partida de la transcripción.
ADN complementario (ADNc) es una molécula
de ADN de una sola cadena que forma la enzima transcriptasa inversa
a partir de una plantilla de ARNm. Normalmente, para la iniciación
de la transcripción inversa se emplea un cebador complementario de
las partes de ARNm. Los expertos en la materia utilizan también el
término "ADNc" para referirse a la molécula de ADN de doble
cadena que consiste en dicha molécula de ADN de una sola cadena y en
su cadena de ADN complementaria.
El término expresión se refiere a la
biosíntesis de un producto génico. Por ejemplo, en el caso de un gen
estructural, la expresión implica la transcripción del gen
estructural en el ARNm y la traducción del ARNm en uno o más
polipéptidos.
Un vector de clonación es una molécula de
ADN, tal como un plásmido, cósmido o bacteriófago, que tiene
capacidad de replicación de forma autónoma en una célula anfitriona.
Los vectores de clonación contienen normalmente uno o un número
pequeño de puntos de reconocimiento de la endonucleasa de
restricción en la que se pueden insertar las secuencias de ADN
extrañas de una manera determinable sin pérdida de una función
biológica esencial del vector, así como un gen marcador que es
adecuado para su utilización en la identificación y selección de las
células transformadas con el vector de clonación. Los genes
marcadores incluyen normalmente genes que proporcionan resistencia a
la tetraciclina o resistencia a la ampicilina.
Un vector de expresión es una molécula de
ADN que comprende un gen que se expresa en una célula anfitriona.
Normalmente, la expresión del gen se sitúa bajo el control de
determinados elementos reguladores, incluyendo activadores
esenciales o inducibles, elementos reguladores específicos para el
tejido y potenciadores. Dicho gen se dice que está "operativamente
ligado a" los elementos reguladores.
Un anfitrión recombinante puede ser
cualquier célula procariótica o eucariótica que contenga un vector
de clonación o un vector de expresión. Esta expresión incluye
también a las células procarióticas o eucarióticas que han sido
modificadas genéticamente para contener el/los gen(es)
clonado(s) en el cromosoma o genoma de la célula
anfitriona.
Un fragmento de anticuerpo es una parte de
un anticuerpo tal como F(ab')_{2},
F(ab)_{2}, Fab', Fab, y similares.
Independientemente de la estructura, un fragmento de anticuerpo se
une al mismo antígeno que es reconocido por el anticuerpo íntegro.
Por ejemplo, un fragmento de anticuerpo monoclonal
anti-CD22 se une a un epítopo de CD22.
La expresión "fragmento de anticuerpo"
incluye asimismo cualquier proteína sintética o modificada
genéticamente que actúe como anticuerpo uniéndose a un antígeno
específico para formar un complejo. Por ejemplo, los fragmentos de
anticuerpo incluyen los fragmentos aislados consistentes en una zona
variable de cadena ligera, los fragmentos "Fv" consistentes en
zonas variables de cadenas pesada y ligera, moléculas de polipéptido
de una sola cadena recombinante en las que las zonas variables
ligera y pesada están conectadas por un enlace péptido ("proteínas
sFv"), y las unidades de reconocimiento mínimas consistentes en
los restos de aminoácidos que simulan la zona hipervariable.
Un anticuerpo híbrido es una proteína
recombinante que contiene los dominios variables y las zonas
determinantes complementarias procedentes de un anticuerpo de
roedor, mientras que el resto de la molécula de anticuerpos procede
de un anticuerpo humano.
Anticuerpos humanizados son proteínas
recombinantes en las que las zonas determinantes de
complementariedad murina de un anticuerpo monoclonal han sido
transferidas desde las cadenas variables pesada y ligera de la
inmunoglobulina murina a un dominio variable humano.
Tal como se utiliza en la presente memoria, un
agente terapéutico es una molécula o átomo que está conjugado
con un fragmento de anticuerpo para producir un conjugado que es
útil en terapia. Ejemplos de agentes terapéuticos incluyen los
fármacos, toxinas, inmunomoduladores, quelantes, compuestos de boro,
agentes fotoactivos o colorantes y radioisótopos.
Un anticuerpo desnudo es un anticuerpo
completo, opuesto a un fragmento de anticuerpo, que no está
conjugado con un agente terapéutico. Los anticuerpos desnudos
incluyen tanto los anticuerpos policlonales como los monoclonales,
así como determinados anticuerpos recombinantes, tales como los
anticuerpos híbridos y humanizados.
Tal como se utiliza en la presente memoria, el
término componente del anticuerpo incluye tanto un
anticuerpo completo como un fragmento de anticuerpo.
Un inmunoconjugado es un conjugado de un
componente del anticuerpo con un agente terapéutico.
Tal como se utiliza en la presente memoria, el
término proteína de fusión del anticuerpo se refiere a una
molécula recombinante que comprende un componente del anticuerpo y
un agente terapéutico. Ejemplos de agentes terapéuticos adecuados
para dichas proteínas de fusión incluyen los inmunomoduladores
("proteína de fusión
anticuerpo-inmunomodulador") y toxinas
("proteína de fusión anticuerpo y toxina").
Los anticuerpos monoclonales de roedor contra
CD22 se pueden obtener por los procedimientos conocidos por los
expertos en la materia. Véase en general, por ejemplo, Kohler y
Milstein, Nature 256:495 (1975), y Coligan et al.,
(eds.), CURRENT PROTOCOLS IN IMMUNOLOGY, VOL. 1, páginas
2.5.1-2.6.7 (John Wiley & Sons1991)
["Colligan"]. En resumen, los anticuerpos monoclonales se
pueden obtener inyectando a ratones con una composición que
comprende CD22, modificando la presencia de la producción de
anticuerpos extrayendo una muestra de suero, extirpando el bazo para
obtener los linfocitos B, fusionando los linfocitos B con las
células del mieloma para producir hibridomas, clonando los
hibridomas, seleccionando los clones positivos que producen
anticuerpos anti-CD22, cultivando los clones que
producen anticuerpos contra el antígeno y aislando los anticuerpos
de los cultivos de hibridoma.
Se pueden aislar anticuerpos monoclonales y
purificar de los cultivos de hibridoma mediante una variedad de
técnicas bien probadas. Dichas técnicas de aislamiento incluyen la
cromatografía por afinidad con Proteína-A Sepharose,
cromatografía por exclusión de tamaño y cromatografía de intercambio
iónico. Véase, por ejemplo, Coligan en las páginas
2.7.1-2.7.12 y en las páginas 2.9.1 a 2.9.3.
Asimismo, véase Baines et al., "Purification of
Immunoglobulin G (IgG)", en METHODS IN MOLECULAR
BIOLOGY, VOL. 10, páginas 79-104 (The Humana
Press, Inc. 1992).
Se pueden obtener cantidades adecuadas del
antígeno CD22 bien caracterizado para la producción de anticuerpos
utilizando técnicas normalizadas. Como ejemplo, se puede
inmunoprecipitar el CD22 a partir de la proteína del linfocito B
utilizando los anticuerpos depositados descritos por Tedder et
al., patente U.S. nº 5.484.892(1996).
Como alternativa, se puede obtener la proteína
CD22 a partir de células cultivadas transfectadas que sobreproducen
CD22. Los vectores de expresión que comprenden las moléculas de ADN
que codifican las proteínas CD22 se pueden construir utilizando las
secuencias publicadas de nucleótidos de CD22. Véase, por ejemplo,
Wilson et al., J. Exp. Med. 173:137 (1991); Wilson
et al., J. Immunol. 150:5013 (1993). A título
ilustrativo, se pueden obtener moléculas de ADN que codifican CD22
sintetizando las moléculas de ADN que utilizan oligonucleótidos
largos que se ceban mutuamente. Véase, por ejemplo, Ausubel et
al., (eds.), CURRENT PROTOCOLS IN MOLECULAR BIOLOGY,
páginas 8.2.8 a 8.2.13 (1990) ["Ausubel"]. Además, véase
Wosnick et al., Gene 60:115 (1987); y Ausubel et
al. (eds.), SHORT PROTOCOLS IN MOLECULAR BIOLOGY, 3ª
edición, páginas 8-8 a 8-9 (John
Wiley & Sons, Inc. 1995). Las técnicas demostradas que utilizan
la reacción en cadena de polimerasa proporcionan la capacidad para
sintetizar genes tan largos como de 1,8 kilobases de longitud. Adang
et al., Plant Molec. Biol. 21:1131 (1993); Bambot
et al., PCR Methods and Applications 2:266 (1993);
Dillon et al., "Use of the Polymerase Chain Reaction for
the Rapid Construction of Synthetic Genes", en METHODS IN
MOLECULAR BIOLOGY, Vol. 15: PCR PROTOCOLS: CURRENT METHODS
AND APPLICATIONS, White (ed.), páginas 263-268,
(Humana Press, Inc. 1993).
En una variación de este método, se puede obtener
el anticuerpo monoclonal anti-CD22 fusionando las
células de mieloma con las células del bazo de ratones inmunizados
con una línea de linfocitos pre-B murina
transfectada de forma estable con ADNc de CD22. Véase Tedder et
al., patente U.S. nº 5.484.892 (1996).
Un ejemplo de un anticuerpo monoclonal
anti-CD22 murino adecuado es el anticuerpo
monoclonal LL2 (anteriormente EPB-2), que se produjo
contra las células Raji humanas procedentes de un linfoma de
Burkitt. Pawlak-Byczkowska et al., Cancer
Res. 49:4568 (1989). Este anticuerpo monoclonal posee un isótopo
de IgG_{2\alpha}, y el anticuerpo se introduce rápidamente en las
células del linfoma. Shih et al., Int. J. Cancer
56:538 (1994). Los estudios de inmunotinción y de
radioinmunodetección in vivo han demostrado la excelente
sensibilidad de LL2 en la detección de los linfomas con linfocitos
B. Pawlak-Byczkowska et al., Cancer Res.
49:4568 (1989); Murthy et al., Eur. J. Nucl. Med.
19:394 (1992). Además, los fragmentos de
LL2-Fab' marcados con ^{99m}Tc han demostrado ser
útiles en la estadificación por incremento de los linfomas por
linfocitos B, mientras que los fragmentos LL2 íntegros marcados con
^{131}I y F(ab')_{2} de LL2 marcados se han utilizado en
las zonas del linfoma diana y para producir respuestas terapéuticas.
Murthy et al., Eur. J. Nucl. Med. 19:394 (1992); Mills
et al., Proc. Am. Assoc. Cancer Res. 34:479 (1993)
[Abstract 2857]; Baum et al., Cancer 73 (Supl.
3):896 (1994); Goldenberg et al., J. Clin. Oncol.
9:548 (1991). Además, los fragmentos LL2 de Fab' conjugados con
un derivado de exotoxina de Pseudomonas han demostrado que
producen remisiones completas para los xenotransplantes de linfoma
humano mensurables que se desarrollan en ratones lampiños. Kreitman
et al., Cancer Res. 53:819 (1993).
En una forma de realización adicional, un
anticuerpo de la presente invención es un anticuerpo híbrido en el
que las zonas variables de un anticuerpo humano se han sustituido
por las zonas variables de un anticuerpo anti-CD22
de roedor. Las ventajas de los anticuerpos híbridos incluyen la
inmunogenicidad disminuida y la estabilidad aumentada in
vivo.
Las técnicas para la construcción de anticuerpos
híbridos son bien conocidas por los expertos en la materia. Como
ejemplo, Leung et al., Hybridoma 13:469 (1994),
describen cómo produjeron un híbrido de LL2 combinando las
secuencias de ADN que codifican los dominios V_{g} y V_{H} del
anticuerpo monoclonal de LL2 con los respectivos dominios humanos de
la zona constante de \kappa e IgG_{1}. Esta publicación
proporciona asimismo las secuencias de nucleótidos de las zonas
variables de las cadenas ligera y pesada de LL2, V_{d} y V_{H},
respectivamente.
En otra forma de realización, un anticuerpo de la
presente invención es un anticuerpo de primate subhumano. Las
técnicas generales para aumentar los anticuerpos terapéuticamente
útiles en los mandriles se pueden encontrar, por ejemplo, en
Goldenberg et al., publicación de patente internacional nº WO
91/11465 (1991), y en Losman et al., Int. J. Cancer
46:310 (1990).
Todavía en otra forma de realización, un
anticuerpo de la presente invención es un anticuerpo monoclonal
"humanizado". Esto es, las zonas determinantes de
complementariedad del ratón se transfieren desde las cadenas
variables pesada y ligera de la inmunoglobulina de ratón a un
dominio variable humano, seguido de la sustitución de algunos restos
humanos en las zonas de la estructura de sus contrapartidas murinas.
Los anticuerpos monoclonales humanizados según la presente invención
son adecuados para su utilización en los procedimientos
terapéuticos. Las técnicas generales para la clonación de los
dominios variables de la inmunoglobulina murina se describen, por
ejemplo, en la publicación de Orlandi et al., Proc. Nat'l.
Acad. Sci. USA 86:3833 (1989). Las técnicas para producir
anticuerpos monoclonales humanizados se describen, por ejemplo, en
Jones et al., Nature 321:522 (1986), Riechmann et
al., Nature 332:323 (1988), Verhoeyen et al.,
Science 239:1534 (1988), Carter et al., Proc.
Nat'l. Acad. Sci. USA 89:4285 (1992), Sandhu, Crit.
Rev. Biotech. 12:437 (1992), y Singer et al., J.
Immun. 150:2844 (1993). La publicación de Leung et al.,
Mol. Immunol. 32:1413 (1995), describe la construcción del
anticuerpo LL2 humanizado.
En otra forma de realización, un anticuerpo de la
presente invención es un anticuerpo monoclonal humanizado. Dichos
anticuerpos se obtienen a partir de ratones transgénicos que se han
"modificado genéticamente" para producir anticuerpos
específicos en respuesta a una prueba de provocación antigénica. En
esta técnica, los elementos del locus de la cadena pesada y ligera
humana se introducen en las cepas de ratones procedentes de las
líneas de células madre embrionarias que contienen interrupciones
dirigidas de los locus de la cadena pesada y de la cadena ligera
endógenas. Los ratones transgénicos pueden sintetizar anticuerpos
humanos específicos para antígenos humanos y se pueden utilizar
ratones para producir hibridomas humanos que segreguen anticuerpos.
Los métodos para obtener anticuerpos humanos a partir de ratones
transgénicos están descritos por Green et al., Nature
Genet. 7:13 (1994), Lonberg et al., Nature 368:856
(1994), y Taylor et al., Int.Immun. 6 :579 (1994).
La presente invención contempla la utilización de
fragmentos de anticuerpos anti-CD22 u otros
anticuerpos terapéuticamente útiles. Los fragmentos de anticuerpo se
pueden preparar por hidrólisis proteolítica de un anticuerpo o por
expresión en E. coli del ADN que codifica el fragmento.
Se pueden obtener fragmentos de anticuerpo por
digestión de anticuerpos completos con pepsina o papaína por los
procedimientos convencionales. Por ejemplo, se pueden producir
fragmentos de anticuerpo por escisión enzimática de anticuerpos con
pepsina para proporcionar un fragmento de 5S denominado
F(ab')_{2}. Este fragmento se puede escindir más utilizando
un agente reductor de tiol y opcionalmente un grupo de bloqueo para
los grupos sulfhidrilo resultantes de la escisión de los enlaces
disulfuro, para producir los fragmentos monovalentes Fab' de 3,5S.
Como alternativa, una escisión enzimática que utiliza pepsina
produce directamente dos fragmentos monovalentes Fab y un fragmento
Fc. Estos procedimientos están descritos, por ejemplo, por
Goldenberg, en las patentes U.S. nº 4.036.945 y nº 4.331.647 y en
las referencias contenidas en las mismas. También, véase Nisonoff
et al., Arch Biochem. Biophys. 89:230 (1960); Porter,
Biochem. J. 73:119 (1959), Edelman et al., en
METHODS IN ENZYMOLOGY VOL. 1, página 422 (Academic Press
1967), y Coligan en las páginas 2.8.1-2.8.10 y
2.10.-2.10.4.
Se pueden también utilizar otros procedimientos
de escisión de anticuerpos, tal como la separación de cadenas
pesadas para formar fragmentos de cadena
ligera-pesada monovalentes, además de la escisión de
fragmentos, u otras técnicas enzimáticas, químicas o genéticas, con
tal que los fragmentos se unan al antígeno que es reconocido por el
anticuerpo íntegro.
Por ejemplo, los fragmentos Fv comprenden una
asociación de las cadenas V_{H} y V_{L}. Esta asociación puede
ser no covalente, como la descrita en Inbar et al., Proc.
Nat'l. Acad. Sci. USA 69:2659 (1972). Como alternativa, las
cadenas variables pueden estar unidas por un enlace disulfuro
intermolecular o reticuladas por productos químicos tal como
glutaraldehído. Véase, por ejemplo, Sandhu, supra.
Preferentemente, los fragmentos Fv comprenden
cadenas de V_{H}y V_{L}que están conectadas por un enlace
péptido. Estas proteínas (sFv) que se unen al antígeno de una sola
cadena se preparan construyendo un gen estructural que comprende
secuencias de ADN que codifican los dominios V_{H} y V_{L} que
están conectados por un oligonucleótido. El gen estructural se
inserta en un vector de expresión que se introduce posteriormente en
una célula anfitriona, tal como E. coli. Las células
anfitrionas recombinantes sintetizan una sola cadena de polipéptido
con un péptido de enlace que abarca los dos dominios V. Los
procedimientos para producir sFvs están descritos, por ejemplo, por
Whitlow et al., Methods: A Companion to Methods in
Enzymology 2:97 (1991). Véase también Bird et al.,
Science 242:423 (1988), Ladner et al., patente U.S. nº
4.946.778, Pack et al., Bio/Technology 11:1271 (1993),
y Sandhu, supra.
Otra forma de un fragmento de anticuerpo es un
péptido que codifica una sola zona determinante de complementariedad
(CDR). Se pueden obtener péptidos de la CDR ("unidades de
reconocimiento mínimas") construyendo los genes que codifican la
CDR de un anticuerpo de interés. Dichos genes se preparan
utilizando, por ejemplo, la reacción en cadena de polimerasa para
sintetizar la zona variable del ARN de las células productoras de
anticuerpos. Véase, por ejemplo, Larrick et al., Methods:
A Companion to Methods in Enzymology 2:106 (1991);
Courtenay-Luck, "Genetic Manipulation of
Monoclonal Antibodies", en MONOCLONAL ANTIBODIES:
PRODUCTION, ENGINEERING AND CLINICAL APPLICATION, Ritter et
al. (eds.), páginas 166-179 (Cambridge
University Press 1995); y Ward et al., "Genetic
Manipulation and Expression of Antibodies", en MONOCLONAL
ANTIBODIES: PRINCIPLES AND APPLICATIONS, Birch et al.,
(eds.), páginas 137-185 (Wiley-Liss,
Inc. 1995).
La presente invención contempla la utilización de
anticuerpos "desnudos" anti-CD22, así como la
utilización de inmunoconjugados para efectuar el tratamiento de la
malignidad de linfocitos B. Dichos inmunoconjugados se pueden
preparar conjugando indirectamente un agente terapéutico con un
componente del anticuerpo. Las técnicas generales están descritas en
Shih et al., Int. J. Cancer 41:832-839
(1988); Shih et al., Int. J. Cancer
46:1101-1106 (1990); y Shih et al.,
patente U.S. nº 5.057.313. El procedimiento general implica hacer
reaccionar un componente del anticuerpo que tiene una parte de
carbohidrato oxidada con un polímero portador que tiene por lo menos
una función amina libre y que está cargado con multitud de fármacos,
toxinas, quelantes, aditivos de boro u otros agentes terapéuticos.
Esta reacción produce un enlace de base de Schiff (imina) inicial,
que se puede estabilizar por reducción a una amina secundaria para
formar el conjugado final.
El polímero portador preferentemente es un
aminodextrano o un polipéptido de por lo menos 50 restos de
aminoácido, aunque también se pueden utilizar otros portadores de
polímeros sustancialmente equivalentes. Preferentemente, el
inmunoconjugado final es soluble en una solución acuosa, tal como
suero de mamífero, para facilidad de administración y
direccionamiento eficaz para su utilización en terapia. De este
modo, las funciones solubilizantes en el polímero portador
aumentarán la solubilidad en el suero del inmunoconjugado final. En
particular, se preferirá un aminodextrano.
El procedimiento para preparar un inmunoconjugado
con un portador de aminodextrano comienza normalmente con un
polímero de dextrano, ventajosamente un dextrano de peso molecular
medio de aproximadamente 10.000 a 100.000. El dextrano se hace
reaccionar con un agente oxidante para efectuar una oxidación
controlada de una parte de sus anillos de carbohidrato para generar
grupos aldehído. La oxidación se efectúa convenientemente con
reactivos químicos glucolíticos tales como NaIO_{4}, según
procedimientos convencionales.
El dextrano oxidado se hace reaccionar a
continuación con una poliamina, preferentemente una diamina, y más
preferentemente, una mono- o polihidroxidiamina. Las aminas
adecuadas incluyen la etilendiamina, propilendiamina u otras como
las polimetilendiaminas, dietilentriamina o como las poliaminas,
1,3-diamino-2-hidroxipropano
u otras como las diaminas o poliaminas hidroxiladas y similares. Se
utiliza un exceso de la amina en comparación con los grupos aldehído
del dextrano para asegurar la transformación sustancialmente
completa de las funciones aldehído a grupos de base de Schiff.
Se utiliza un agente reductor, tal como
NaBH_{4}, NaBH_{3}CN o similares, para efectuar la
estabilización reductora del producto intermedio de la base de
Schiff resultante. El aducto resultante se puede purificar mediante
paso a través de una columna de tamaño convencional para eliminar
los dextranos reticulados.
Se pueden utilizar asimismo otros procedimientos
convencionales de modificación de un dextrano para introducir
funciones amina, p. ej, la reacción con bromuro de cianógeno,
seguida de reacción con una diamina.
El aminodextrano se hace reaccionar a
continuación con un derivado de un determinado fármaco, toxina,
quelante, inmunomodulador, aditivo de boro, u otros agentes
terapéuticos que se deben cargar, en una forma activada,
preferentemente, un derivado activado por carboxilo, preparado por
medios convencionales, p. ej, utilizando diciclohexilcarbodiimida
(DCC) o una variante soluble en agua de la misma, para formar un
aducto intermedio.
Como alternativa, se pueden acoplar toxinas de
polipéptido tal como la proteína antivírica de la uva de américa o
de la cadena A del ricino, y similares, al aminodextrano por
condensación con glutaraldehído o por reacción de los grupos
carboxilo activados en la proteína con aminas en el
aminodextrano.
Los quelantes para radiometales o los
potenciadores de resonancia magnética son bien conocidos en la
técnica. Son típicos los derivados del ácido
etilendiamintetraacético (EDTA) y del ácido
dietilentriaminpentaacético (DTPA). Estos quelantes tienen
normalmente grupos en la cadena lateral mediante los cuales el
quelante se puede unir a un portador. Dichos grupos incluyen, p. ej,
bencilisotiocianato, mediante el cual el DTPA o el EDTA se pueden
acoplar a un grupo amino del portador. Como alternativa, se pueden
acoplar grupos carboxilo o grupos aminos o un quelante a un portador
por activación o derivación previa y a continuación acoplamiento,
todo por medios bien
conocidos.
conocidos.
Los aditivos de boro, tales como los carboranos,
se pueden unir a componentes del anticuerpo por procedimientos
convencionales. Por ejemplo, se pueden preparar carboranos con
funciones carboxilo o cadenas laterales pendientes, como es bien
conocido en la técnica. La unión de dichos carboranos a un portador,
p. ej., aminodextrano, se puede conseguir por activación de los
grupos carboxilo de los carboranos y condensación con aminas en el
portador para producir un conjugado intermedio. Dichos conjugados
intermedios se unen a continuación a componentes del anticuerpo para
producir inmunoconjugados terapéuticamente útiles, tal como se
describe a continuación.
Se puede utilizar un portador de polipéptido en
lugar de aminodextrano, pero el portador del polipéptido puede tener
por lo menos 50 restos de aminoácido en la cadena, preferentemente
entre 100 y 5000 restos de aminoácido. Por lo menos algunos de los
aminoácidos deberían ser restos de lisina o restos de glutamato o de
aspartato. Las aminas pendientes de los restos de lisina y los
carboxilatos pendientes de glutamina y aspartato son convenientes
para unir un fármaco, toxina, inmunomodulador, quelante, aditivo de
boro u otro agente terapéutico. Ejemplos de portadores de
polipéptido adecuados comprenden polilisina, ácido poliglutámico,
ácido poliaspártico, sus copolímeros y los polímeros mixtos de estos
aminoácidos y otros, p. ej., serinas, para comunicar propiedades
deseables de solubilidad al portador e inmunoconjugado cargados
resultantes.
La conjugación del conjugado intermedio con el
componente del anticuerpo se efectúa oxidando la parte de
carbohidrato del componente del anticuerpo y haciendo reaccionar los
carbonilos del aldehído (y de la cetona) resultantes con los grupos
amina restantes en el portador después de la carga de un fármaco,
toxina, quelante, inmunomodulador, aditivo de boro u otro agente
terapéutico. Como alternativa, se puede unir un conjugado intermedio
a un componente del anticuerpo oxidado mediante grupos amina que se
han introducido en el conjugado intermedio tras la carga del agente
terapéutico. La oxidación se efectúa de modo conveniente ya sea
químicamente, p. ej., con NaIO_{4} u otro reactivo glucolítico, o
enzimáticamente, p. ej, con neuraminidasa y
galactosa-oxidasa. En el caso de un portador de
aminodextrano, no todas las aminas del aminodextrano se utilizan
normalmente para cargar un agente terapéutico. Las restantes aminas
del aminodextrano condensan con el componente oxidado del anticuerpo
para formar aductos con la base de Schiff, que se estabilizan a
continuación de forma reductora, normalmente con un agente reductor
de borohidruro.
Se utilizan procedimientos análogos para producir
otros inmunoconjugados según la invención. Los portadores de
polipéptido cargados poseen preferentemente restos de lisina libre
restantes para la condensación con la parte oxidada del carbohidrato
de un componente del anticuerpo. Los carboxilos en el portador del
polipéptido pueden, si es necesario, transformarse en aminas, p.
ej., por activación con DCC y reacción con un exceso de una
diamina.
El inmunoconjugado final se purifica utilizando
técnicas convencionales, tales como cromatografía por tamaño o
Sephacryl S-300.
Como alternativa, los inmunoconjugados se pueden
preparar directamente conjugando un componente del anticuerpo con un
agente terapéutico. El procedimiento general es análogo al
procedimiento indirecto de conjugación excepto que un agente
terapéutico se une directamente a un componente oxidado del
anticuerpo.
Se valorará que se puedan sustituir otros agentes
terapéuticos por los quelantes descritos en la presente memoria. Los
expertos en la materia podrán idear esquemas de conjugación sin la
indebida experimentación.
A título ilustrativo adicional, un agente
terapéutico se puede unir en una zona bisagra de un componente
reducido del anticuerpo mediante la formación de un enlace
disulfuro. Por ejemplo, se pueden construir péptidos de la vacuna
antitetánica con un solo resto de cisteína que se utiliza para unir
el péptido a un componente del anticuerpo. Como alternativa, dichos
péptidos se pueden unir al componente del anticuerpo utilizando una
reticulación heterobifuncional, tal como
3-(2-piridilditio)propionato de
N-succinilo (SPDP). Yu et al., Int. J. Cancer
56:244 (1994). Las técnicas generales para dicha conjugación son
bien conocidas en la materia. Véase, por ejemplo, Wong, CHEMISTRY
OF PROTEIN CONJUGATION AND CROSS-LINKING (CRC
Press 1991); Upeslacis et al., "Modification of
Antibodies by Chemical Methods", en MONOCLONAL ANTIBODIES:
PRINCIPLES AND APPLICATIONS, Birch et al. (eds.), páginas
187-230 (Wiley-Liss, Inc. 1995);
Price, "Production and Characterization of Synthetic
Peptide-Derived Antibodies", en MONOCLONAL
ANTIBODIES: PRODUCTION, ENGINEERING AND CLINICAL APPLICATION,
Ritter et al. (eds.), páginas 60-84
(Cambridge University Press 1995).
Como se describió anteriormente, se pueden
utilizar fracciones de carbohidrato en la zona Fc de un anticuerpo
para conjugar un agente terapéutico. Sin embargo, la zona Fc está
ausente si se utiliza un fragmento de anticuerpo como componente del
anticuerpo del inmunoconjugado. No obstante, es posible introducir
un fragmento de carbohidrato en la zona variable de la cadena ligera
de un anticuerpo o un fragmento de anticuerpo. Véase, por ejemplo,
Leung et al., J. Immunol. 154:5919 (1995); Hansen
et al., patente U.S. nº 5.443.953 (1995). El fragmento de
carbohidrato modificado genéticamente se utiliza a continuación para
unirse a un agente terapéutico.
Además, los expertos en la materia reconocerán
numerosas variaciones posibles de los procedimientos de conjugación.
Por ejemplo, se puede utilizar el fragmento de carbohidrato para
unir polietilenglicol con el fin de prolongar la vida media de un
anticuerpo íntegro, o un fragmento de unión al antígeno del mismo,
en la sangre, linfa u otros fluidos extracelulares. Además, es
posible construir un "inmunoconjugado divalente" uniendo
agentes terapéuticos a un fragmento de carbohidrato y a un grupo
sulfhidrilo libre. Dicho grupo sulhidrilo libre puede estar situado
en la zona bisagra del componente del anticuerpo.
La presente invención contempla la utilización de
anticuerpos anti-CD22 desnudos como la composición
terapéutica primaria para el tratamiento de la malignidad de
linfocitos B. Dicha composición puede contener anticuerpos
anti-CD22 policlonales o anticuerpos
anti-CD22 monoclonales.
Además, una composición terapéutica de la
presente invención puede contener una mezcla de anticuerpos
anti-CD22 monoclonales dirigida a diferentes
epítopos de CD22 no bloqueantes. Los estudios de inhibición cruzada
del anticuerpo monoclonal han identificado cinco epítopos en CD22,
denominados epítopos A-E. Véase, por ejemplo,
Schwartz-Albiez et al., "The
Carbohydrate Moiety of the CD22 Antigen Can Be Modulated by
Inhibitors of the Glycosylation Pathway", en LEUKOCYTE
TYPING IV. WHITE CELL DIFFERENTIATION ANTIGENS, Knapp et
al. (eds.), pág. 65 (Oxford University Press 1989). A título
ilustrativo, el anticuerpo LL2 se une con el epítopo B. Stein et
al., Cancer Immunol. Immunother. 37:293 (1993). Por
consiguiente, la presente invención contempla composiciones
terapéuticas que comprenden una mezcla de anticuerpos
anti-CD22 monoclonales que se unen por lo menos a
dos epítopos de CD22. Por ejemplo, dicha mezcla puede contener
anticuerpos monoclonales que se unen al menos con dos epítopos CD22
seleccionados de entre el grupo constituido por el epítopo A,
epítopo B, epítopo C, epítopo D y epítopo E.
Los procedimientos para determinar la
especificidad de unión de un anticuerpo anti-CD22
son bien conocidos por los expertos en la materia. Los
procedimientos generales son proporcionados, por ejemplo, por Mole,
"Epitope Mapping", en METHODS IN MOLECULAR
BIOLOGY, VOLUMEN 10: IMMUNOCHEMICAL PROTOCOLS, Manson
(ed.), páginas 105-116 (The Humana Press, Inc.
1992). Más específicamente, los ensayos competitivos de bloqueo para
determinar la especificidad del epítopo de CD22 están descritos por
Stein et al., Cancer Immunol. Immunother. 37:293
(1993), y por Tedder et al., patente U.S. nº 5.484.892
(1996).
La patente de Tedder describe además la
producción de mutantes de CD22 que carecen de uno o más dominios de
tipo inmunoglobulina. Estas proteínas mutantes se utilizaron para
determinar que los dominios 1, 2, 3 y 4 de tipo inmunoglobulina se
corresponden con los epítopos A, D, B y C, respectivamente. Así
pues, la especificidad del epítopo de CD22 se puede identificar
también uniendo un anticuerpo del ensayo con un panel de proteínas
de CD22 que carecen del particular dominio de tipo
inmunoglobulina.
Aunque los anticuerpos anti-CD22
desnudos constituyen la composición terapéutica principal para el
tratamiento de la malignidad de linfocitos B, se puede mejorar la
eficacia de dicha terapia con anticuerpo anti-CD22
complementando los anticuerpos desnudos con inmunoconjugados y otras
formas de terapia complementaria descritas en la presente memoria.
En dichos resúmenes multimodales, se pueden administrar
composiciones terapéuticas complementarias antes, simultáneamente o
después de la administración de anticuerpos
anti-CD22 desnudos.
Los inmunoconjugados preferidos comprenden
componentes de anticuerpo radiomarcado y conjugados de un componente
de anticuerpo anti-CD22 y un inmunomodulador. Las
composiciones terapéuticas descritas en la presente memoria son
particularmente útiles para el tratamiento de formas poco activas de
linfomas por linfocitos B, formas agresivas de linfomas por
linfocitos B, leucemias linfáticas crónicas y leucemias linfáticas
agudas. Por ejemplo, se pueden utilizar componentes del anticuerpo
anti-CD22 e inmunoconjugados para tratar tanto las
formas poco activas como las agresivas del linfoma distinto del de
Hodgkin.
Un inmunoconjugado radiomarcado puede comprender
un radioisótopo emisor de radiación \alpha, un radioisótopo emisor
de radiación \beta, un radioisótopo emisor de radiación \gamma,
un emisor de electrones de Auger, un agente capturador de neutrones
que emite partículas á o un radioisótopo que se desintegra por
captura electrónica. Los radioisótopos adecuados comprenden
^{198}Au, ^{32}P, ^{125}I, ^{131}I, ^{90}Y, ^{186}Re,
^{188}Re, ^{67}Cu, ^{211}At y similares.
Tal como se expuso anteriormente, un radioisótopo
se puede unir a un componente del anticuerpo directa o
indirectamente, mediante un agente quelante. Por ejemplo,
^{67}Cu, considerado uno de los radioisótopos más prometedores
para radioinmunoterapia debido a sus 61,5 horas de vida media y el
abundante suministro de partículas beta y rayos gamma, se puede
conjugar con un componente del anticuerpo utilizando un agente
quelante, el ácido
p-bromoacetamido-bencil
tetraetilamintetracético (TETA). Chase, "Medical Applications
of Radioisotopes", en REMINGTON'S PHARMACEUTICAL SCIENCES,
18ª edición, Gennaro et al. (eds.), páginas
624-652 (Mack Publishing Co. 1990). Como
alternativa, ^{90}Y, que emite una partícula energética beta, se
puede acoplar a un componente del anticuerpo utilizando ácido
dietilentriaminpentaacético (DTPA). Además, un procedimiento para el
radiomarcado directo del componente del anticuerpo con ^{131}I
está descrito por Stein et al., Antibody Immunoconj.
Radiopharm. 4:703 (1991).
Como alternativa, se pueden unir aditivos de
boros tales como los carboranos a componentes del anticuerpo, tal
como se expuso anteriormente.
Además, los inmunoconjugados terapéuticos pueden
comprender un fragmento inmunomodulador. Tal como se utiliza en la
presente memoria, el término "inmunomodulador" incluye
citocinas, factores de crecimiento de células madre, linfotoxinas,
tal como el factor de la necrosis tumoral (TNF), y factores
hematopoyéticos, tales como las interleucinas (p. ej.,
interleucina-1 (IL-1),
IL-2, IL-3, IL-6,
IL-10 e IL-12), los factores
estimulantes de colonias (p. ej. el factor estimulante de colonias
de granulocitos (G-CSF) y el factor estimulante de
colonias de granulocitos y macrófagos (GM-CSF)),
interferones (p. ej., interferones-\alpha,
-\beta y -\gamma), el factor de crecimiento de células madre
denominado "factor S1", eritropoyetina y trombopoyetina.
Ejemplos de fragmentos inmunomoduladores adecuados comprenden
IL-2, IL-6, IL-10,
IL-12, interferón-\alpha,
TNF-\alpha y similares.
Una forma relacionada de proteína terapéutica es
una proteína de fusión que comprende un fragmento de anticuerpo y un
fragmento de inmunomodulador. Los fragmentos de anticuerpo útiles
comprenden los componentes del anticuerpo que se unen con CD19, CD20
o CD22.
Los procedimientos de preparación de proteínas de
fusión de anticuerpo e inmunomodulador son conocidos por los
expertos en la materia. Por ejemplo, las proteínas de fusión del
anticuerpo que comprenden un fragmento de
interleucina-2 están descritas por Boleti et
al., Ann. Oncol. 6:945 (1995), Nicolet et al.,
Cancer Gene Ther. 2:161 (1995), Becker et al.,
Proc. Nat'l. Acad. Sci. USA 93:7826 (1996), Hank et
al., Clin. Cancer Res. 2:1951 (1996), y Hu et
al., Cancer Res. 56:4998 (1996). Además, Yang et
al., Hum. Antibodies Hybridomas 6:129 (1995), describe
una proteína de fusión que comprende un fragmento
F(ab')_{2} y un fragmento alfa del factor de la necrosis
tumoral. Además, la utilización terapéutica de una proteína de
fusión hLL2-IL-2 está ilustrada en
el Ejemplo 3 de la presente solicitud.
Dichos inmunoconjugados y las proteínas de fusión
del anticuerpo e inmunomodulador proporcionan medios para
administrar un inmunomodulador a una célula diana y son
particularmente útiles contra las células tumorales. Los efectos
citotóxicos de los inmunomoduladores son bien conocidos por los
expertos en la materia. Véase, por ejemplo, Klegerman et al.,
"Lymphokines and Monokines", en BIOTECHNOLOGY AND
PHARMACY, Pessuto et al. (eds.), páginas
53-70 Chapman & Hall 1993). A título
ilustrativo, los interferones pueden inhibir la proliferación
celular provocando el aumento de expresión de los antígenos de
histocompatibilidad de clase I en la superficie de varias células y
de este modo, aumentar la tasa de destrucción de las células por los
linfocitos T citotóxicos. Además, los factores de necrosis tumoral,
tal como TNF-\alpha, se cree que producen efectos
citotóxicos provocando la fragmentación del ADN.
Además, pueden prepararse inmunoconjugados
terapéuticamente útiles en los cuales un componente del anticuerpo
se conjuga con una toxina o con un fármaco quimioterapéutico. Son
ilustrativos de las toxinas que se crean de forma adecuada en la
preparación de dichos conjugados el ricino, la abrina, la
ribonucleasa, la ADNasa I, la enterotoxina-A
Staphylococcal, la proteína antivírica de la uva de América,
la gelonina, la toxina de difterina, la exotoxina de
Pseudomonas y la endotoxina de Pseudomonas. Véase, por
ejemplo, Pastan et al., Cell 47:641 (1986), y
Goldenberg, CA-A Cancer Journal for Clinicians
44:43 (1994). Los expertos en la materia conocen otras toxinas
adecuadas.
Las proteínas de fusión de anticuerpo y toxina
proporcionan un método alternativo para introducir la combinación de
anticuerpo terapéutico y toxina. Una proteína de fusión de
anticuerpo y toxina es una proteína de fusión que comprende un
fragmento de anticuerpo y un fragmento de toxina. Los fragmentos de
anticuerpo útiles incluyen los componentes de anticuerpo que se unen
con CD19, CD20 o CD22. Los procedimientos para preparar proteínas de
fusión de anticuerpo y toxina son conocidos por los expertos en la
materia. Por ejemplo, las proteínas de fusión de la exotoxina A de
anticuerpo y Pseudomonas han sido descritos por Chaudhary
et al., Nature 339:394 (1989), Brinkmann et
al., Proc. Nat'l Acad. Sci. USA 88:8616 (1991), Batra
et al., Proc. Nat'l. Acad. Sci. USA 89:5867
(1992), Friedman et al., J. Immunol. 150:3054 (1993),
Wels et al., Int. J. Can. 60 :137 (1995), Fominaya
et al., J. Biol. Chem. 271 :10560 (1996), Kuan et
al., Biochemistry 35 :2872 (1996), y Schmidt et
al., Int. J. Can. 65 :538 (1996). Las proteínas de fusión
de anticuerpo y toxina que contienen un fragmento de toxina de
difteria han sido descritas por Kreitman et al., Leukemia
7:553 (1993), Nicholls et al., J. Biol. Chem.
268:5302 (1993), Thompson et al., J. Biol. Chem.
270:28037 (1995), y Vallera et al., Blood 88 :2342
(1996). Deonarain et al., Tumor Targeting 1 :177
(1995), ha descrito una proteína de fusión de anticuerpo y toxina
con un fragmento de ARNasa, mientras que Linardou et al.,
Cell Biophys. 24-25:243 (1994), produjo una
proteína de fusión de anticuerpo y toxina que comprende un
componente de ADNasa I. Se utilizó gelonina como fragmento de toxina
en la proteína de fusión de anticuerpo y toxina de Wang et
al., Abstracts of the 209th ACS National Meeting,
Anaheim, CA, 2-6 abril, 1995, parte 1, BIOT005. Como
ejemplo adicional, Dohlsten et al., Proc. Nat'l. Acad.
Sci. USA 91:8945 (1994), describió una proteína de fusión
de anticuerpo y toxina que comprende la
enterotoxina-A Staphylococcal.
Los fármacos quimioterapéuticos para el cáncer
útiles para la preparación de inmunoconjugados comprenden las
mostazas de nitrógeno, sulfonatos de alquilo, nitrosoureas,
triazenos, análogos del ácido fólico, análogos de pirimidina,
análogos de purina, antibióticos, epipodofilotoxinas, complejos de
coordinación de platino, hormonas y similares. Los agentes
quimioterapéuticos adecuados están descritos en REMINGTON'S
PHARMACEUTICAL SCIENCES, 19ª ed. (Mack Publishing Co.1995), y en THE
PHARMACOLOGICAL BASIS OF THERAPEUTICS de Goodman y Gilman, 7ª ed.
(MacMillan Publishing Co. 1985). Los expertos en la materia conocen
otros agentes quimioterapéuticos adecuados, tales como los fármacos
experimentales.
Además, se pueden obtener inmunoconjugados
terapéuticamente útiles conjugando agentes fotoactivos o colorantes
con un compuesto del anticuerpo. Se han utilizado fluorescentes y
otros cromógenos, o colorantes, tales como las porfirinas sensibles
a la luz visible, para detectar y tratar lesiones dirigiendo la luz
adecuada a la lesión. En la terapia, esto se ha denominado
fotorradiación, fototerapia o terapia fotodinámica (Jori et
al. (eds.), PHOTODYNAMIC THERAPY OF TUMORS AND OTHER DISEASES
(Libreria Progetto 1985); van den Bergh, Chem. Britain 22:430
(1986)). Además, se han acoplado anticuerpos monoclonales con
colorantes fotoactivados para conseguir la fototerapia. Mew et
al., J. Immunol. 130:1473 (1983); idem., Cancer Res.
45:4380 (1985); Oseroff et al., Proc. Natl. Acad. Sci.
USA 83:8744 (1986); idem., Photochem. Photobiol. 46:83
(1987); Hasan et al., Prog. Clin. Biol. Res. 288:471
(1989); Tatsuta et al., Lasers Surg. Med. 9:422
(1989); Pelegrin et al., Cancer 67:2529 (1991). Sin
embargo, estos primeros estudios no incluían la utilización de las
aplicaciones de la terapia endoscópica, especialmente en la
utilización de fragmentos o subfragmentos de anticuerpos. Por lo
tanto, la presente invención contempla la utilización terapéutica de
inmunoconjugados que comprenden agentes fotoactivos o
colorantes.
Las terapias multimodales de la presente
invención comprenden además la inmunoterapia con anticuerpos
anti-CD22 desnudos complementados con la
administración de anticuerpos anti-CD19 o
anti-CD20 en forma de anticuerpos desnudos o como
inmunoconjugados. Los anticuerpos anti-CD19 y
anti-CD20 son conocidos por los expertos en la
materia. Véase, por ejemplo, Ghetie et al., Cancer Res.
48:2610 (1988); Hekman et al., Cancer Immunol.
Immunother. 32:364 (1991); Kaminski et al., N. Engl.
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Curr. Opin. Oncol. 8:353 (1996).
En otra forma de terapia multimodal, los
pacientes reciben anticuerpos anti-CD22 desnudos y
quimioterapia para el cáncer habitual. Por ejemplo, "CVB" (1,5
g/m^{2} de ciclofosfamida, 200 a 400 mg/m^{2} de etopósido y 150
a 200 mg/m^{2} de carmustina) es un régimen utilizado para tratar
linfoma distinto del de Hodgkin. Patti et al., Eur. J.
Haematol. 51:18 (1993). Otros regímenes quimioterapéuticos por
combinación adecuados son bien conocidos por los expertos en la
materia. Véase, por ejemplo, Freedman et al.,
"Non-Hodgkin's Lymphomas", en CANCER
MEDICINE, VOLUMEN 2, 3ª edición, Holland et al. (eds.),
páginas 2028-2068 (Lea y Febiger 1993). A título
ilustrativo, los regímenes quimioterapéuticos de primera generación
para el tratamiento del grado intermedio del linfoma distinto del de
Hodgkin comprenden C-MOPP (ciclofosfamida,
vincristina, procarbazina y prednisona) y CHOP (ciclofosfamida,
doxorrubicina, vincristina y prednisona). Un régimen
quimioterapéutico de segunda generación útil es
m-BACOD (metotrexato, bleomicina, doxorrubicina,
ciclofosfamida, vincristina, dexametasona y leucovorina), mientras
que un régimen de tercera generación adecuado es
MACOP-B (metotrexato, doxorrubicina, ciclofosfamida,
vincristina, prednisona, bleomicin y leucovorina). Los fármacos
útiles adicionales incluyen butirato de fenilo y
brostatina-1.
En general, la dosificación de los anticuerpos
anti-CD22, de los componentes del anticuerpo
anti-CD22, de los inmunoconjugados y de las
proteínas de fusión administrados variará dependiendo de factores
tales como la edad, el peso, la altura, el sexo, la enfermedad
general y los antecedentes médicos anteriores del paciente.
Normalmente, es deseable proporcionar al receptor una dosis de
componente del anticuerpo, inmunoconjugado o proteína de fusión que
esté comprendida en el intervalo entre 1 pg/kg y 10 mg/kg (cantidad
de agente/peso corporal del paciente), aunque también se puede
administrar una dosificación menor o mayor según determinen las
circunstancias.
La administración de componentes del anticuerpo,
inmunoconjugados o proteínas de fusión a un paciente puede ser
intravenosa, intraarterial, intraperitoneal, intramuscular,
subcutánea, intrapleural, intratecal, por perfusión a través de un
catéter en la zona o por inyección directa en el interior de la
lesión. Cuando se administran proteínas terapéuticas por inyección,
la administración puede ser por infusión continua o a emboladas
individuales o múltiples.
Los expertos en la materia están al corriente de
que la inyección intravenosa proporciona un modo útil de
administración debido a la perfección de la circulación en los
anticuerpos que se distribuyen rápidamente. La administración
intravenosa, sin embargo, está sometida a la limitación mediante una
barrera vascular que comprende las células endoteliales de los vasos
sanguíneos y la matriz subendotelial. Todavía, la barrera vascular
es el problema más notable para la absorción de los anticuerpos
terapéuticos por los tumores sólidos. Los linfomas tienen
velocidades de flujo de la sangre relativamente elevadas,
contribuyendo a la administración eficaz del anticuerpo. Las vías
intralinfáticas de administración, tales como la subcutánea o la
inyección intramuscular, o por caterización de vasos linfáticos,
proporcionan asimismo un medio útil de tratamiento de los
linfomas.
Preferentemente, se pueden administrar
anticuerpos anti-CD22 desnudos a bajas dosis de
proteína, tales como de 20 a 100 miligramos de proteína por dosis,
administrados una vez, o de forma repetida, por vía parenteral. Como
alternativa, se administran anticuerpos anti-CD22
desnudos en dosis de 30 a 90 miligramos de proteína por dosis, de 40
a 80 miligramos de proteína por dosis, o de 50 a 70 miligramos de
proteína por dosis.
Tal como se describió anteriormente, la presente
invención contempla asimismo métodos terapéuticos en los que los
componentes del anticuerpo anti-CD22 desnudos se
complementan con inmunoconjugados o proteínas de fusión para su
administración. En una variación, se pueden administrar anticuerpos
anti-CD22 desnudos con anticuerpos o fragmentos de
anti-CD22 radiomarcados a baja dosis. Como segunda
alternativa, se pueden administrar anticuerpos
anti-CD22 desnudos con inmunoconjugados de
anti-CD22-citocina radiomarcados a
baja dosis. Como una tercera alternativa, se administran anticuerpos
anti-CD22 desnudos con inmunoconjugados de
anti-CD22-citocina que no están
radiomarcados. Con respecto a las "bajas dosis" de
inmunoconjugados marcados con ^{131}I, una dosis preferible está
comprendida en el intervalo entre 15 y 40 mCi, mientras que el
intervalo más preferido está entre 20 y 30 mCi. En cambio, una dosis
preferida de inmunoconjugados marcados con ^{90}Y está comprendida
en el intervalo entre 10 y 30 mCi, mientras que el intervalo más
preferido está entre 10 y 20 mCi. Los componentes del anticuerpo
preferidos incluyen anticuerpos y fragmentos procedentes de
anticuerpos LL2, incluyendo el anticuerpo monoclonal LL2 murino, el
anticuerpo LL2 híbrido y el anticuerpo LL2 humanizado.
Los inmunoconjugados que poseen un portador
cargado con aditivo para la terapia térmica por activación de
neutrones normalmente se efectuarán de modo similares. Sin embargo,
presenta ventajas esperar hasta que el inmunoconjugado no
direccionado se purifique antes que se lleve a cabo la irradiación
con neutrones. La purificación se puede acelerar utilizando un
anticuerpo que se una al inmunoconjugado. Véase la patente U.S. nº
4.624.846 para una descripción de este principio general.
Se pueden formular componentes del anticuerpo
anti-CD22, inmunoconjugados y proteínas de fusión de
la presente invención según procedimientos conocidos para preparar
composiciones farmacéuticamente útiles, de este modo las proteínas
se combinan en una mezcla con un portador farmacéuticamente
aceptable. Se dice que una composición es un "portador
farmacéuticamente aceptable" si su administración puede ser
tolerada por un paciente receptor. La solución salina esterilizada
tamponada con fosfato es un ejemplo de portador farmacéuticamente
aceptable. Otros portadores adecuados son bien conocidos por los
expertos en la materia. Véase, por ejemplo, REMINGTON'S
PHARMACEUTICAL SCIENCES, 19ª ed. (1995).
Con fines terapéuticos, los componentes del
anticuerpo (o inmunoconjugados/proteínas de fusión) y un portador
farmacéuticamente aceptable se deben administrar a un paciente en
una cantidad terapéuticamente eficaz. Una combinación de un
componente del anticuerpo, opcionalmente con un
inmunoconjugado/proteína de fusión y un portador farmacéuticamente
aceptable se dice que se debe administrar en una "cantidad
terapéuticamente eficaz" si la cantidad administrada es
fisiológicamente significativa. Un agente es fisiológicamente
significativo si su presencia produce un cambio detectable en la
fisiología de un paciente receptor. En el presente contexto, un
agente es fisiológicamente significativo si su presencia produce la
inhibición del crecimiento de las células diana del tumor.
Se pueden emplear procedimientos farmacéuticos
adicionales para controlar la duración de la acción de un componente
del anticuerpo, inmunoconjugado o proteína de fusión en una
aplicación terapéutica. Las preparaciones de liberación controlada
se pueden preparar mediante la utilización de polímeros para
acomplejar o adsorber el componente del anticuerpo, inmunoconjugado
o proteína de fusión. Por ejemplo, los polímeros biocompatibles
comprenden las matrices de poli(acetato de
etileno-co-vinilo) y las matrices de
un copolímero de polianhídrido de un dímero de ácido esteárico y
ácido sebácico. Sherwood et al., Bio/Technology
10:1446 (1992). El ritmo de liberación de un componente del
anticuerpo (o inmunoconjugado) de dicha matriz depende del peso
molecular de la proteína, de la cantidad de componente del
anticuerpo/inmunoconjugado/proteína de fusión en el interior de la
matriz y del tamaño de las partículas dispersas. Saltzman et
al., Biophys. J. 55:163 (1989); Sherwood et al.,
supra. Otras formas de dosificación sólidas se describen en
REMINGTON'S PHARMACEUTICAL SCIENCES, 19ª ed. (1995).
La presente invención también contempla una
utilización en la que se deben administrar inmunomoduladores para
prevenir, mitigar o anular la toxicidad provocada por la radiación o
provocada por fármacos de las células normales y especialmente de
las células hematopoyéticas. La terapia inmunomoduladora asociada
permite la administración de dosis mayores de agentes citotóxicos
debido al aumento de tolerancia del mamífero receptor. Además, la
terapia inmunomoduladora asociada puede prevenir, paliar o invertir
la toxicidad de la médula limitada por la dosis. Ejemplos de
inmunomoduladores adecuados para la terapia asociada comprenden
G-CSF, GM-CSF, trombopoyetina,
IL-1, IL-3, IL-12 y
similares. El procedimiento de la terapia inmunomoduladora asociada
está descrito por Goldenberg, patente U.S. nº5.120.525.
Por ejemplo, se puede administrar por vía
intravenosa o a emboladas IL-2 recombinante a 6
\times 10^{5} IU/kg o en infusión continua a una dosis de 18
\times 10^{6} IU/m^{2}/d. Weiss et al., J. Clin.
Oncol. 10:275 (1992). Como alternativa, se puede administrar
IL-2 recombinante por vía subcutánea a una dosis de
12 \times 10^{6} IU. Vogelzang et al., J. Clin. Oncol.
11:1809 (1993). Además, se puede administrar
INF-\gamma por vía subcutánea a una dosis de 1,5
\times 10^{6} U. Lienard et al., J. Clin. Oncol.
10:52(1992). Además, Nadeau et al., J.
Pharmacol. Exp. Ther. 274:78 (1995), ha demostrado que una sola
dosis intravenosa de IL-12 recombinante (42,5
\mug/kilogramo) elevó las concentraciones de
IFN-\gamma en macacos rhesus.
Las formulaciones adecuadas de
IL-2 comprenden PROLEUKINA (Chiron Corp./Cetus
Oncology Corp.; Emeryville, CA) y TECELEUKINA
(Hoffmann-La Roche, Inc.; Nutley, NJ). ACTIMMUNE
(Genentech, Inc.; South San Francisco, CA) es una preparación
adecuada de INF-\gamma.
La presente invención, descrita de este modo en
general, se pondrá más claramente de manifiesto al hacer referencia
a los siguientes ejemplos, que se proporcionan a título de
ilustración y no pretenden ser limitativos de la presente
invención.
La quimioterapia agresiva anterior consistente en
CHOP \times 6, no ha surtido efecto en un paciente con linfoma
distinto del de Hodgkin de grado intermedio, lo que condujo a una
remisión completa durante cinco meses, otro ciclo de CHOP \times
6, dando como resultado la evolución, D-MOPP
\times 2, dando como resultado enfermedad estable durante seis
meses y CVB con trasplante de células madre periféricas, que condujo
a una remisión parcial durante cuatro meses. El paciente presenta
linfoma cíclico en el pecho y en el ganglio linfático del cuello,
que se pueden medir ambos por tomografía computerizada y palpación
respectivamente.
Se infunde al paciente con 50 mg de anticuerpo
monoclonal LL2 humanizado los días 2, 5, 9, 12 de las dos semanas
seguidas sin notarse efectos desfavorables. Tres semanas después,
la palpación del alargamiento del ganglio del cuello presenta una
disminución de aproximadamente el 60% que se puede medir, mientras
que una exploración por tomografía computerizada con repetición del
pecho presenta una reducción marcada del 70% del tumor. El
seguimiento de las mediciones realizado diez semanas tras la terapia
no presenta ninguna prueba de la enfermedad en el cuello o en el
pecho. Ya que la nueva enfermedad no se detecta en ninguna parte, se
considera que el paciente está en completa remisión. Los estudios de
seguimiento cada 10 a 12 semanas confirman una completa remisión
durante por lo menos 16 meses tras la terapia.
Un paciente presenta linfoma agresivo con células
grandes difusas y se diagnostica que presenta un pronóstico escaso,
con abultamiento en el abdomen, otros numerosos puntos de enfermedad
extraganglionar y lactato deshidrogenasa (LDH) del suero elevada. Se
coloca al paciente en CHOP y después de tres ciclos de terapia, se
observa una respuesta parcial con resolución de numerosos puntos de
la enfermedad extraganglionar fuera del abdomen. Sin embargo, el
abultamiento en el abdomen continúa aumentando en volumen y la LDH
del suero continua elevada.
Al inicio del tercer ciclo de CHOP, se infunde al
paciente con 50 mg de anticuerpo monoclonal LL2 humanizado los días
2, 5, 9 y 12. Este régimen terapéutico de hLL2 se repite
simultáneamente con cuatro ciclos más de CHOP. Durante la terapia,
la concentración de LDH en el suero disminuye dentro del intervalo
normal. Un mes después del tercer ciclo de CHOP y LL2, una
exploración por tomografía computerizada del tumor voluminoso en el
abdomen presenta más de un 90% de reducción de la masa. Los estudios
de seguimientos cada 10 a 12 semanas confirman una reducción
completa durante más de 9 meses tras la terapia.
Un paciente con linfoma agresivo de células
grandes difusas respondió a la quimioterapia de primera línea (CHOP)
y de segunda línea (m-BACOD), pero la quimioterapia
de tercera línea (MACOP-B) no surtió efecto. Una vez
terminada la quimioterapia de tercera línea, el paciente presenta
enfermedad difusa en la médula ósea, esplenomegalia masiva y
numerosos puntos de ganglios linfáticos dilatados que podrían
palpitar. A continuación se hace infusión al paciente con 50 mg de
LL2 humanizado los días 2, 5, 9 y 12. Este régimen se repite cada
semana durante cuatro semanas. La enfermedad de la médula ósea
responde de manera evolutiva al tratamiento con hLL2 y el tamaño de
los ganglios también disminuye. Sin embargo, muchos ganglios pueden
palpitar todavía y se observa poca disminución en el tamaño del
bazo.
Aunque la terapia con hLL2 continua cada dos
semanas, el paciente recibe también 10 mg de proteína de fusión de
hLL2 e IL2. Después del primer tratamiento, existe una disminución
profunda del tamaño del bazo, y tras el segundo tratamiento con
hLL2/hLL2-IL2, los ganglios no son palpables y el
tamaño del bazo ha disminuido más. No se observa ninguna evolución
de la enfermedad durante más de seis meses.
Claims (26)
1. Utilización de por lo menos un anticuerpo
anti-CD22 completo que no está conjugado con un
agente terapéutico, para la preparación de un medicamento destinado
al tratamiento de la malignidad de linfocitos B.
2. Utilización según la reivindicación 1, en la
que dicho anticuerpo anti-CD22 se debe administrar
por vía parenteral a una dosis de 20 a 100 miligramos de proteína
por dosis.
3. Utilización según la reivindicación 1, en la
que el anticuerpo anti-CD22 se debe administrar a
dosis parenterales repetidas de 20 a 100 miligramos de proteína por
dosis.
4. Utilización según la reivindicación 1, en la
que dicho anticuerpo anti-CD22 se selecciona de
entre el grupo constituido por anticuerpo de primate subhumano,
anticuerpo monoclonal murino, anticuerpo híbrido y anticuerpo
humanizado.
5. Utilización según la reivindicación 1, en la
que dicho anticuerpo anti-CD22 es el anticuerpo
LL2.
6. Utilización según la reivindicación 1, en la
que dicha malignidad de linfocitos B se selecciona de entre el grupo
constituido por formas poco activas de linfomas con linfocitos B,
formas agresivas de linfomas con linfocitos B, leucemias linfáticas
crónicas y leucemias linfáticas agudas.
7. Utilización según la reivindicación 1, en la
que dicha malignidad de linfocitos B es un linfoma distinto del de
Hodgkin.
8. Utilización según la reivindicación 1, en la
que dicho medicamento comprende por lo menos dos anticuerpos
monoclonales que se unen con distintos epítopos de CD22, en la que
dichos epítopos de CD22 se seleccionan de entre el grupo constituido
por el epítopo A, epítopo B, epítopo C, epítopo D y epítopo E.
9. Utilización según la reivindicación 1, que
comprende además la utilización de una proteína terapéutica o un
tratamiento quimioterapéutico para la preparación de un medicamento
destinado al tratamiento de la malignidad de linfocitos B, en la que
dicha proteína terapéutica se selecciona de entre el grupo
constituido por anticuerpo, inmunoconjugado, proteína de fusión de
anticuerpo e inmunomodulador y proteína de fusión de anticuerpo y
toxina.
10. Utilización según la reivindicación 9, en la
que dicha proteína terapéutica es un anticuerpo
anti-CD19 o un anticuerpo CD20.
11. Utilización según la reivindicación 9, en la
que dicha proteína terapéutica es una combinación de por lo menos un
anticuerpo anti-CD19 y por lo menos un anticuerpo
anti-CD20.
12. Utilización según la reivindicación 11, en la
que dicha proteína terapéutica es un anticuerpo
anti-CD19 completo que no está conjugado con un
agente terapéutico o un anticuerpo anti-CD20
completo que no está conjugado con un agente terapéutico.
13. Utilización según la reivindicación 9, en la
que dicha proteína terapéutica es un inmunoconjugado o una proteína
de fusión, en la que dicho inmunoconjugado o proteína de fusión
comprende un fragmento inmunomodulador seleccionado de entre el
grupo constituido por interleucina-1
(IL-1), IL-2, IL-3,
IL-6 e IL-10, IL-12,
interferón-\alpha,
interferón-\beta,
interferón-\gamma, factor estimulante de colonias
de granulocitos, factor estimulante de colonias de macrófagos y de
granulocitos, y linfotoxina.
14. Utilización según la reivindicación 13, en la
que dicho inmunoconjugado o dicha proteína de fusión de anticuerpo e
inmunomodulador se une a un antígeno seleccionado de entre el grupo
constituido por CD19, CD20 y CD22.
15. Utilización según la reivindicación 9, en la
que dicho inmunoconjugado comprende un factor estimulante de
colonias seleccionado de entre el grupo constituido por el factor
estimulante de colonias de granulocitos (G-CSF) y el
factor estimulante de colonias de macrófagos y granulocitos
(GM-CSF).
16. Utilización según la reivindicación 9, en la
que dicha proteína terapéutica es un inmunoconjugado
radiomarcado.
17. Utilización según la reivindicación 16, en la
que dicho inmunoconjugado radiomarcado comprende un radionúclido
seleccionado de entre el grupo constituido por ^{198}Au, ^{32}P,
^{125}I, ^{131}I, ^{90}Y, ^{186}Re, ^{188}Re, ^{67}Cu y
^{211}At.
18. Utilización según la reivindicación 16 ó 17,
en la que dicho inmunoconjugado radiomarcado comprende un anticuerpo
o fragmento de anticuerpo que se une a un antígeno seleccionado de
entre el grupo constituido por CD19, CD20 o CD22.
19. Utilización según la reivindicación 18, en la
que dicho inmunoconjugado radiomarcado es un inmunoconjugado
anti-CD22 radiomarcado.
20. Utilización según la reivindicación 19, en la
que dicho inmunoconjugado anti-CD22 radiomarcado
comprende además un fragmento de citocina, en la que dicho fragmento
de citocina se selecciona de entre el grupo constituido por
interleucina-1 (IL-1),
IL-2, IL-3, IL-6,
IL-10, IL-12,
interferón-\alpha,
interferón-\beta e
interferón-\gamma.
21. Utilización según la reivindicación 9, en la
que dicha proteína terapéutica es un inmunoconjugado o una proteína
de fusión de anticuerpo y toxina que comprende una toxina
seleccionada de entre el grupo constituido por ricino, abrina,
ribonucleasa, DNasa I, enterotoxina-A
Staphylococcal, proteína antivírica de la uva de América,
gelonina, toxina de difterina, exotoxina de Pseudomonas y
endotoxina de Pseudomonas.
22. Utilización según la reivindicación 21, en la
que dicho inmunoconjugado o dicha proteína de fusión de anticuerpo y
toxina comprende un anticuerpo o fragmento de anticuerpo que se une
a un antígeno seleccionado de entre el grupo constituido por CD19,
CD20 y CD22.
23. Utilización según la reivindicación 1, en la
que dicho medicamento comprende una combinación de por lo menos un
anticuerpo anti-CD22 completo que no está conjugado
con un agente terapéutico y un anticuerpo anti-CD19,
una combinación de por lo menos un anticuerpo
anti-CD22 completo que no está conjugado con un
agente terapéutico y un anticuerpo anti-CD20.
24. Utilización según la reivindicación 23, en la
que dicho anticuerpo anti-CD19 es un anticuerpo
anti-CD19 completo que no está conjugado con un
agente terapéutico.
25. Utilización según la reivindicación 23, en la
que dicho anticuerpo anti-CD20 es un anticuerpo
anti-CD20 completo que no está conjugado con un
agente terapéutico.
26. Utilización según la reivindicación 9, en la
que dicho tratamiento quimioterapéutico consiste en la
administración de por lo menos un fármaco seleccionado de entre el
grupo constituido por ciclofosfamida, etopósido, vincristina,
procarbazina, prednisona, carmustina, doxorrubicina, metotrexato,
bleomicina, dexametasona, butirato de fenilo,
briostatina-1 y leucovorina.
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