ES2203118T3 - Concentrados de ester de trans-xantofila de pureza aumentada y metodos de obtencion de los mismos. - Google Patents

Concentrados de ester de trans-xantofila de pureza aumentada y metodos de obtencion de los mismos.

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ES2203118T3 ES99917487T ES99917487T ES2203118T3 ES 2203118 T3 ES2203118 T3 ES 2203118T3 ES 99917487 T ES99917487 T ES 99917487T ES 99917487 T ES99917487 T ES 99917487T ES 2203118 T3 ES2203118 T3 ES 2203118T3
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Abstract

Método para obtener un concentrado de éster de trans- xantofila de elevada pureza que comprende: (a) poner en contacto el material vegetal que contiene los ésteres de xantofila con un disolvente de hidrocarburo durante un tiempo suficiente para extraer los ésteres de xantofila del material vegetal; (b) separar el disolvente de hidrocarburo y el extracto disuelto en el mismo del resto del material vegetal; (c) evaporar el disolvente de hidrocarburo del extracto disuelto para obtener un concentrado crudo de éster de xantofila; (d) mezclar el concentrado crudo de éster de xantofila con un alcohol a temperatura ambiente para disolver las impurezas no xantofílicas y ésteres de cis-xantofila del concentrado; y (e) eliminar las impurezas que contienen alcohol y los ésteres de cis-xantofila del concentrado crudo de trans- xantofila para obtener un concentrado purificado de éster de xantofila.

Description

Concentrados de ester de trans-xantofila de pureza aumentada y metodos de obtención de los mismos.
Antecedentes de la invención
Los ésteres de xantofila pertenecen al grupo de los compuestos naturales conocidos como carotenoides y están ampliamente distribuidos en la naturaleza. Son ésteres de ácidos grasos (por ejemplo, ésteres de palmitato y miristato) de tales carotenoides como la luteína y la zeaxantina. El éster de zeaxantina es el pigmento contenido en las bayas, tales como las del género Lycium y Physalis. El éster de luteína es el pigmento que da el color amarillo/rojo a frutas tales como las naranjas, los melocotones, las papayas, las ciruelas y los mangos. Los ésteres de luteína también están presentes en muchas flores, particularmente en las flores de caléndula del género Tagetes. Los ésteres de xantofila se encuentran generalmente en la naturaleza como el isómero geométrico trans de la xantofila.
La flor de caléndula es la fuente más rica del éster de trans-luteína encontrada en la naturaleza. Las flores de caléndula secas y molidas se han usado comercialmente desde 1966 como componentes botánicos en alimentos animales y desde 1969 como materiales de partida para la producción de extractos de caléndula, que contienen ésteres de xantofila como el componente comercialmente importante, véase, por ejemplo, Lackey, patente alemana número 1.224.597; Levy et al., patente ecuatoriana número 44. Los extractos de caléndula son productos de comercio internacional. Se usan como agentes de pigmentación en las formulaciones de los alimentos animales y como agentes colorantes alimenticios, tal como el colorante natural europeo E161/luteína, véase, por ejemplo, Levy et al., patente ecuatoriana número 44; Rosenberg, patente de los EE. UU. número 3.539.686; Oficial Journal of de European Communities número L-226/37.
La investigación científica reciente ha demostrado que los extractos de caléndula pueden usarse como complementos nutricionales humanos, basados en las importantes funciones biológicas de la luteína en humanos, tales como prevención del cáncer y prevención de un estado conocido como degeneración relacionada con la edad de la mácula del ojo humano, entre otros posibles usos de los ésteres de la luteína en la nutrición y la medicina, véase, por ejemplo, Chew et al., Anticancer Research, 16:3689 (1996); Marchand et al., "An Ecologican Study of Diet and Lung Cancer in the South Pacific," International Journal of Cancer, 63; 18-23 (1995); Park et al., "The Effect of Dietary Lutein on Growth of Mammary tumor in BALB/c Mice", The FASEB Journal, 11:2586 (1997); H.P.Kim et al., "Hepatoprotective Actino of Zeaxanthin Palmitate from Lycium chinense", Research Communications Molecular Pathology and Pharmacology, 97:301-314 (1997); Landrum et al., Experimental Eye Research, 65:1:57 (1997). Para que sea adecuado para estas importantes aplicaciones nuevas en humanos, los extractos de caléndula deben satisfacer requisitos de calidad más estrictos que los que fueron necesarios en el pasado.
Para su uso en complementos nutricionales humanos, los concentrados de éster de xantofila deben estar esencialmente libres de contaminación de pesticidas. Deben contener el éster de xantofila en concentración suficientemente elevada, por ejemplo, al menos el 40% en peso, para permitir la formulación en cápsulas y comprimidos, aunque todavía pueden ser satisfactorias concentraciones inferiores para su uso como un complemento nutricional. Para lograr la máxima biodisponibilidad posible para los complementos nutricionales que contienen xantofila, las xantofilas deben estar presentes en su forma éster que se produce de manera natural, no en la forma saponificada (es decir, alcohol o diol libre) y debe predominar el isómero trans de la xantofila que se produce naturalmente, véase por ejemplo, Herbst et al., FASEB J. Abstract 11:2587 (1997); Johnson et al., J Nutrition 127:1993 (1997).
Desgraciadamente, los extractos comerciales de caléndula no cumplen uno o más de estos criterios de calidad. Los mayores productores de extractos de caléndula (empresas en Perú, Méjico y Ecuador) producen extractos que contienen entre el 14% y el 20% del éster de luteína, principalmente para formulaciones de alimentación animal. Inexa, Industria Extractora C.A. de Quito, Ecuador, también produce un grado superior que contiene aproximadamente el 35% en peso del éster de luteína como un colorante alimenticio. Normalmente estos productos tienen una gran presencia de lípidos no xantofílicos que se extraen del material vegetal con las xantofilas cuando se emplean técnicas de extracción estándar. Además, los concentrados comerciales del éster de luteína también contienen normalmente aproximadamente del 20 al 30% en peso del éster de luteína total en la forma isomérica cis, de nuevo debido a las condiciones estándar del tratamiento industrial.
Finalmente los concentrados conocidos del éster de luteína a menudo contienen restos de pesticidas, que se introducen en la materia vegetal que contiene xantofila a través de las técnicas comunes de cultivo, tal como las usadas en las plantaciones de caléndula y se extraen junto con los ésteres de xantofila mediante procesos de extracción estándar. Todo esto hace que los concentrados comerciales del éster de luteína disponibles en la actualidad no sean adecuados para su uso como complementos nutricionales humanos.
Se han propuesto varios métodos diferentes con el fin de superar estas desventajas. La patente de los EE. UU. número 4.048.203 de Philip describe la extracción de ésteres de luteína del material vegetal y la purificación adicional de los ésteres usando alcohol a 75ºC. Sin embargo, este tratamiento térmico da como resultado una proporción indeseablemente grande del isómero cis de la xantofila menos biodisponible en el producto final. Véase el ejemplo comparativo 1 más adelante.
La patente de los EE. UU. número 5.382.714 de Khachik describe un procedimiento para el aislamiento, purificación y recristalización de la luteína de la oleorresina saponificada de caléndula y la patente de los EE. UU. número 5.648.564 de Ausich et al., describe un procedimiento para la extracción, aislamiento y purificación de cristales comestibles de xantofila procedentes de plantas. Sin embargo, ninguno de estos procedimientos produce xantofilas en su forma éster natural, más biodisponible, porque ambos requieren una etapa de saponificación, por lo que la forma éster de xantofila natural presente en el material vegetal se destruye.
La patente de los EE. UU. número 4.105.855 de Schulz enseña un método para sintetizar carotenoides simétricos que pueden ser ésteres en la forma isomérica todo trans. Sin embargo, la luteína no es un carotenoide simétrico y, aunque la zeaxantina es simétrica, el único éster de la zeaxantina mencionado por Schulz es el diacetato como una última etapa intermedia en la obtención del diol. Schulz no enseña la síntesis ni la extracción del palmitato de xantofila ni de los ésteres de miristato o de sus concentrados.
Por tanto, es evidente que se necesita en la técnica un método para producir, mediante la extracción y la purificación del material vegetal, concentrados de xantofila que tengan una pureza mejorada y que contengan predominantemente trans-xantofilas en su forma éster natural.
Breve sumario de la invención
Según la presente invención, se obtienen concentrados de éster de trans-xantofila, en los cuales el contenido del éster de trans-xantofila del concentrado es al menos 4 veces mayor, preferiblemente al menos aproximadamente 9 veces mayor, que el contenido del éster de cis-xantofila del concentrado. La concentración total de los ésteres de trans y cis-xantofila es al menos de aproximadamente el 40% en peso del concentrado, y los restos de pesticida están sustancialmente ausentes del concentrado en niveles de detección de partes por mil millones ("parts per billion (ppb)"). Los ésteres preferidos son los de la luteína y zeaxantina de las xantofilas. Adicionalmente, los concentrados de éster de trans-xantofila de la invención pueden tener un contenido total de éster de xantofila de más de aproximadamente el 55% en peso del concentrado y a menudo del 70% en peso o más.
La presente invención también incluye un método de obtención de un concentrado de éster de trans-xantofila de elevada pureza, que comprende poner en contacto el material vegetal que contiene los ésteres de xantofila con un disolvente hidrocarburo durante un tiempo suficiente para extraer los ésteres de xantofila del material vegetal, separando el disolvente hidrocarburo y el extracto disuelto en el mismo del resto del material vegetal, evaporar el disolvente hidrocarburo del extracto disuelto para obtener un concentrado crudo de éster de xantofila, mezclar el concentrado crudo de éster de xantofila con un alcohol a temperatura ambiente para disolver impurezas no xantofílicas y ésteres de cis-xantofila del concentrado y eliminar las impurezas que contienen alcohol y los ésteres de cis-xantofila del concentrado crudo de trans-xantofila para obtener un concentrado purificado de éster de xantofila.
La invención incluye además un método para obtener un concentrado de éster de trans-luteína de elevada pureza, que comprende eliminar todas las partes de la flor excepto la corola de flores de caléndula, poner en contacto las corolas de caléndula con un disolvente hidrocarburo durante un tiempo suficiente para extraer ésteres de luteína de las corolas, separar el disolvente hidrocarburo y el extracto disuelto en el mismo de las coloras restantes, evaporar el disolvente hidrocarburo del extracto disuelto para obtener un concentrado crudo del éster de luteína, mezclar el concentrado crudo de éster de luteína con un alcohol, preferiblemente un alcohol alifático inferior, a temperatura ambiente para disolver las impurezas no xantofílicas y los ésteres de cis-luteína del concentrado y eliminar las impurezas que contienen alcohol y ésteres de cis-luteína del concentrado crudo de trans-luteína para obtener un concentrado purificado del éster de trans-luteína.
Descripción detallada de la invención
Según la presente invención, el material vegetal que contiene ésteres de xantofila se deshidrata, se muele y se extrae con un disolvente hidrocarburo alifático apropiado. El disolvente se elimina, dando como resultado un extracto libre de disolvente que contiene ésteres de xantofila, denominado en la técnica oleorresina. En la presente invención, la oleorresina así formada, que generalmente tiene una razón de isómeros trans:cis de la xantofila de 75:25, se agita con un alcohol a temperatura ambiente, con el fin de eliminar las impurezas no xantofílicas y fraccionar los isómeros cis y trans de la xantofila. La fracción líquida de la suspensión que contiene impurezas y el isómero cis de la xantofila se eliminan entonces dejando la fracción sólida: un concentrado de éster purificado de trans-xantofila que tiene elevada pureza, un contenido de éster de xantofila de al menos el 40% en peso y una razón de isómero trans:cis de la xantofila de al menos 4:1 y, preferiblemente, de al menos 9:1.
Los materiales de partida para la presente invención pueden incluir cualquier material vegetal que contenga éster de xantofila. Las flores de caléndula, especialmente las corolas, son una materia prima preferida para los concentrados de éster de luteína y las bayas del género Lycium y Physalis son materias primas especialmente preferidas para los concentrados de éster de zeaxantina. Otros materiales de partida preferidos para los concentrados de éster de luteína incluyen frutas como las naranjas, los melocotones, las papayas, las ciruelas y los mangos.
Una realización preferida de la presente invención implica la producción de concentrados de éster de luteína de las corolas de las flores de caléndula. En el momento de la recogida, sólo se eligen las flores de caléndula completamente desarrolladas y las corolas se separan cuidadosamente de las otras partes de la flor. La separación puede realizarse a mano o a máquina, pero se prefiere la separación a mano debido a la naturaleza delicada de las flores y a las dificultades de la automatización. El examen microscópico de la fracción de la corola de la recogida debe demostrar que está esencialmente libre de sépalos, cálices y especialmente de semillas maduras o inmaduras. Estas partes de la flor distintas a la colora, especialmente la semilla, tienden a tener mayores concentraciones de pesticida que las corolas, de manera que la eliminación de las partes de la flor distintas a la corola tras la recogida funciona como una etapa de purificación antes de la extracción en la presente invención. Esta etapa de purificación adicional permite la producción de concentrados de éster de luteína de pureza aumentada, que no tienen restos detectables de pesticida, de manera que pueden usarse en complementos nutricionales humanos.
En el método de la presente invención, la materia vegetal que contiene éster de xantofila se deshidrata y se muele. La materia vegetal reciente contiene normalmente un 80% de humedad. La deshidratación se lleva a cabo generalmente haciendo pasar aire caliente forzado a través de la materia vegetal hasta que la humedad se ha reducido hasta aproximadamente el 10%, usando secadores de bandeja extraíble estacionarios o secadores rotatorios comercialmente disponibles. El molido del material vegetal deshidratado se realiza normalmente en molinos de martillos fijado con un tamiz que asegura el grado de finura que permite una buena extracción del éster de xantofila, pero no tan fino como para que pudiera evitar el drenaje rápido y adecuado del disolvente de extracción. La material vegetal se mezcla entonces con un disolvente de hidrocarburo alifático para extraer los ésteres de xantofila.
Según las prácticas actuales en la técnica, el hexano es el disolvente hidrocarburo alifático preferido para la extracción del éster de xantofila, porque tiene buena selectividad y su punto de ebullición permite la completa eliminación de los restos de disolvente del extracto resultante. Otros disolventes hidrocarburos alifáticos de extracción incluyen pentano, heptano y mezclas de estos con hexano.
La extracción usando hexano u otro disolvente hidrocarburo se lleva a cavo según los procedimientos conocidos en la técnica. En el laboratorio, un kg de materia vegetal se percola preferiblemente con seis litros de hexano a temperatura ambiente durante al menos cuatro horas. Para la producción a escala industrial de los concentrados de éster de xantofila, preferiblemente se usa una planta estándar de extracción en contracorriente de hexano, de manera que se extraiga completamente un lote de 2.000 kg de materia prima botánica con 12.000 litros de disolvente a temperatura ambiente y se descargue del equipamiento cada dos horas.
Tras la extracción, el disolvente hidrocarburo que contiene los ésteres de xantofila extraídos se eliminan del material vegetal restante. Tal eliminación se realiza preferiblemente por filtración a través de una tela filtrante. El disolvente hidrocarburo se evapora entonces de los ésteres de xantofila disueltos en el mismo, dejando un extracto libre de disolvente u oleorresina. La evaporación se realiza preferiblemente a baja temperatura, más preferiblemente a una temperatura de entre 40ºC y 50ºC, a una presión reducida de aproximadamente 4*10^{2} [Pa] (3 mm Hg). La oleorresina resultante generalmente tiene una razón de isómero de xantofila trans:cis de 75:25, tal como se determina por las alturas de los picos de la HPLC.
La oleorresina se mezcla con un alcohol a aproximadamente temperatura ambiente para disolver las impurezas no xantofílicas y fraccionar los isómeros cis y trans de la xantofila. El tiempo necesario para la purificación y el fraccionamiento depende de las características de la oleorresina, a niveles de impureza más elevados se requieren tiempos más largos. El mezclado se continúa preferiblemente durante entre una y seis horas, más preferiblemente, durante aproximadamente 3 horas. El progreso de purificación de la oleorresina puede monitorizarse tomando muestras periódicas de la mezcla de reacción, separando el sólido por filtración y determinando analíticamente el contenido de éster e isómero cis y trans de la muestra sólida separada, con el fin de garantizar que el mezclado se concluye inmediatamente una vez que se ha logrado el grado deseado de purificación.
Se cree que el fraccionamiento de los isómeros cis y trans de la xantofila en las fracciones líquida y sólida, respectivamente, de las suspensiones de oleorresina se produce porque el isómero cis de la xantofila es bastante soluble en alcohol a temperatura ambiente, mientras que la disolución sustancial del isómero trans de la xantofila no se produce en el alcohol en este intervalo de temperatura. Por tanto, con el fin de lograr el fraccionamiento deseado de los isómeros cis y trans de la xantofila, el mezclado se realiza a aproximadamente temperatura ambiente. Deberían evitarse temperaturas suficientemente elevadas como para permitir la disolución sustancial del isómero trans de la xantofila o la conversión del isómero trans en el cis de la xantofila. Preferiblemente, la temperatura para la etapa de mezcla con alcohol no debe superar los 25ºC y, más preferiblemente, debería usarse una temperatura de entre 18ºC y 22ºC.
Una vez que se ha mezclado la oleorresina con alcohol a aproximadamente temperatura ambiente, la fracción sólida de la suspensión de oleorresina/alcohol, que se convertirá en un concentrado purificado de trans-xantofila tras la eliminación de disolventes, tiene al menos una razón de isómero trans:cis de xantofila de 4:1 y, preferiblemente al menos 9:1 tal como se determina por las alturas de los picos de la HPLC, aunque la oleorresina original tenía aproximadamente la razón de isómero trans:cis de xantofila en equilibrio de 75:25. La mayoría de los concentrados de éster de xantofila de la técnica anterior, que se purifican mezclando con un alcohol suficientemente caliente como para disolver ambos isómeros de xantofila, también tiene aproximadamente una razón de isómero trans:cis de 75:25. El aumento de la razón de isómero trans:cis lograda mediante los métodos de la presente invención es deseable para los concentrados de éster de xantofila que han de usarse en los complementos nutricionales, porque el isómero trans de la xantofila es el isómero que se encuentra naturalmente y se cree que es más biodisponible que el isómero cis.
El alcohol seleccionado para su uso con la presente invención debe tener un punto de ebullición lo suficientemente bajo como para que se elimine completamente del producto final a temperaturas suficientemente bajas para evitar la conversión del isómero trans al cis de la xantofila, que se cree que se produce gradualmente con el aumento de la temperatura. Los alcoholes preferidos para su uso con la presente invención incluyen los alcanoles inferiores (por ejemplo, C_{1}-C_{6}).
La solubilidad de las impurezas no xantofílicas, así como las solubilidades de ambos isómeros cis y trans de la xantofila, aumenta con el aumento del peso molecular del disolvente alcohol. Por tanto, el uso de alcoholes con pesos moleculares elevados da como resultado concentrados de éster de trans-xantofila de mayor pureza pero menor rendimiento, puesto se pierden más ésteres de trans-xantofila mediante la disolución en la fracción líquida de la suspensión de alcohol/oleorresina. Por tanto, debería escogerse un alcohol de peso molecular intermedio con el fin de equilibrar las tendencias opuestas de pureza aumentada y rendimiento disminuido con el aumento del peso molecular del alcohol. Por tanto, entre los alcanoles inferiores preferidos, el isopropanol es el más preferible, porque su peso molecular intermedio permite lograr una buena purificación, así como un buen rendimiento de concentrado de éster de trans-xantofila.
Debería usarse una cantidad suficiente de alcohol para lavar la mayoría de los componentes de éster no xantofílico y para fraccionar los isómeros cis/trans de la xantofila. La cantidad de alcohol necesaria depende de las características de la oleorresina, que pueden resultar afectadas por la variación en factores tales como el clima (por ejemplo, la cantidad de lluvia y la cantidad de sol durante el crecimiento y la recogida del material vegetal que contiene éster de xantofila), las condiciones de deshidratación tras la recogida, la temperatura de la extracción, etc. En general, la cantidad de alcohol usado para la etapa de mezcla de alcohol de la presente invención puede variarse basándose en datos de laboratorio, es decir, el contenido de éster e isómero cis, obtenido antes y durante el mezclado de oleorresina con alcohol. El progreso de la purificación de la oleorresina se monitoriza durante toda la etapa de mezcla de alcohol, de manera que el volumen de alcohol usado, al igual que la duración de tiempo del mezclado, puede ajustarse para lograr la pureza más elevada posible con un coste de tratamiento lo más bajo posible. Preferiblemente, se emplean entre dos y cinco partes de alcohol por volumen para cada parte en volumen de la oleorresina para la etapa de mezclado de alcohol. Sin embargo, puede usarse un exceso mucho mayor de alcohol, según la presente invención.
Una vez obtenido el grado deseado de pureza y fraccionamiento de los isómeros, mediante la etapa de mezcla de alcohol, la fracción sólida de la disolución de alcohol/oleorresina se separa de la mezcla, preferiblemente por filtración o centrifugación. Se eliminan adicionalmente los disolventes de la fracción sólida en un secador de bandejas extraíbles vacío, para obtener un concentrado de éster de trans-xantofila purificado.
El concentrado de éster de trans-xantofila purificado puede fundirse luego a una temperatura que no exceda los 50ºC bajo una atmósfera inerte, preferiblemente de gas nitrógeno, y verterse en moldes de la forma deseada, preferiblemente moldes de barra. Tras enfriar hasta que alcance un estado sólido, normalmente a aproximadamente 20ºC durante 3-4 horas (dependiendo del tamaño y la forma de la barra), el concentrado de éster de trans-xantofila moldeado se extrae de los moldes en forma sólida, preferiblemente como barras sólidas. Alternativamente, el concentrado de éster de trans-xantofila purificado se puede moler hasta alcanzar un estado granular. Tanto las formas el granulares como en barra del concentrado de éster de trans-xantofila son útiles para tratarse dando lugar a complementos nutricionales humanos en forma de comprimidos o cápsulas o para utilizarlos como colorantes alimenticios.
Los concentrados finales de éster de trans-xantofila purificados obtenidos con los métodos de la presente invención contienen éster de xantofila en una cantidad superior al 40% en peso, preferiblemente superior al 55% en peso, a menudo superior al 70% en peso, medido por espectrofotometría (según Davies, "Carotenoids", en Chemistry and Biochemistry of Plant Pigments editado por Goodwin, Academic Press, Londres, 1976) en hexano con la longitud de onda de absorción máxima (aproximadamente 445 nm para el éster de luteína, utilizando el coeficiente de extinción \in al 1% de 1394 y aproximadamente 450 nm para el éster de zeaxantina utilizando el coeficiente % de extinción \in al 1% de 1260), con una ausencia sustancial de restos de pesticidas incluso en niveles de detección de partes por mil millones determinados con el método EPA SW-846 8080A, y una razón de isómeros trans:cis de xantofila de al menos 9:1 medido como las alturas de los picos de la HPLC. Todo esto implica una mejora sustancial frente a concentrados de éster de luteína comerciales, que a menudo contienen únicamente como máximo un 25% en peso de ésteres de xantofila, con una razón de isómeros trans:cis de aproximadamente 75:25. El contenido de éster aumentado, la razón de isómeros trans:cis aumentada, y la forma sólida resultante de los concentrados de éster de trans-xantofila de la presente invención los hacen deseables frente a concentrados de técnicas anteriores para su tratamiento y uso en complementos nutricionales humanos en forma de comprimidos, cápsulas o preparaciones líquidas.
De este modo, los métodos de la presente invención proporcionan alternativas deseables a los métodos conocidos en la técnica para producir concentrados de xantofila. Los métodos de la presente invención son comparativamente sencillos y dan como resultado directamente concentrados que contienen xantofilas en su forma de éster natural y también tienen las características deseadas de pureza aumentada, concentraciones altas de éster de xantofila, y razones altas de isómeros de xantofila trans:cis. Los extractos obtenidos con los métodos de la presente invención son, por ello, ideales para el uso en complementos nutricionales humanos para aplicaciones como el tratamiento de cáncer y de degeneración macular del ojo, relacionada a la edad.
La invención se describe ahora con referencia a los siguientes ejemplos no limitativos.
Ejemplo 1
Un kg de corolas de caléndula secas, con un contenido de éster de luteína del 2,9% en peso, tal como se ha determinado en una alícuota mediante extracción Soxhlet y la posterior medición espectrofotométrica a 445 nm, que era la longitud de onda de máxima absorción óptica, se percolaron con 8 litros de hexano en una columna de vidrio dotada de un filtro de cerámica. El hexano de la disolución resultante se evaporó a 60ºC en vacío. Se obtuvieron 100 g de oleorresina, con un contenido de éster de luteína de 27,9% y una razón de isómeros de luteína trans:cis de 75:25, tal como se determinó con la altura de los picos de la HPLC. La oleorresina se agitó durante 3 horas con 200 g de isopropanol a 20ºC. La suspensión resultante se filtró a través de papel de filtro, se eliminaron los disolventes en vacío a temperatura ambiente, se fundió a 65ºC y vertió en moldes. Tras 3 horas de enfriamiento espontáneo hasta temperatura ambiente, se obtuvieron dos barras de éster de luteína, con un peso de 10 g cada una y con un contenido de éster de luteína de 69,0% en peso (mediante espectrofotometría en hexano) y una razón de isómeros trans:cis (mediante la altura de los picos de la HPLC) de 90:10.
Ejemplo comparativo 1
Este ejemplo, que está incluido únicamente con un fin comparativo, explica el procedimiento descrito en la patente de los EE. UU. número 4.048.203 de Philip, para la purificación de ésteres de ácidos grasos de luteína.
Corolas de caléndula (un kg) tal como se ha utilizado en el ejemplo 1 se extrajeron con éter de petróleo (3 litros) a temperatura ambiente. El extracto se evaporó hasta la sequedad al vacío a 50ºC (rendimiento, 100 g). Una alícuota de 65 g de la oleorresina se disolvió en isopropanol caliente (300 ml) a 75ºC; la disolución se filtró a través de un embudo de vidrio sinterizado; y el filtrado se enfrió a 15ºC. Los ésteres de ácidos grasos de luteína precipitados se recuperaron mediante filtración y se secaron al vacío a 30ºC, con un rendimiento de 23,4 g de concentrado. El contenido de éster de luteína fue 54% en peso (mediante espectrofotometría). La composición isomérica del éster de ácido graso de luteína fue del 70% en peso de trans-luteína y del 30% en peso de cis-luteína (mediante HPLC).
Se cree que el bajo predominio del isómero trans (2,3 veces) de este concentrado de xantofila y su alto contenido de isómero cis son el resultado del tratamiento con isopropanol, llevado a cabo a la alta temperatura de 75ºC. Por ello, el concentrado de xantofila hecho con este método no cumple las condiciones de alto predominio de isómero trans, requeridas para un óptimo rendimiento como complemento nutricional.
Ejemplo 2
Este ejemplo, junto con el ejemplo comparativo 2, demuestra la pureza aumentada, con respecto al contenido de pesticidas, de concentrados de éster de luteína obtenidos de corolas de caléndula, según los métodos de la presente invención, tal como se compara con los concentrados de éster de luteína obtenidos de flores completas de caléndula según procedimientos comúnmente utilizados.
Un kg de flores de caléndula de una cosecha normal, con un contenido de éster de luteína del 1,67% en peso, tal como se determina en una alícuota por extracción Soxhlet con éter de petróleo y la posterior medición espectrofotométrica a 445 nm, utilizando \in1% = 1394, se separa a mano en corolas y partes de la flor que no sean corolas. Se extrajeron 500 g de corolas, que contenían un 3,34% en peso de éster de luteína, mediante el método utilizado en el ejemplo 1, lo que tuvo un rendimiento de 48,6 g de oleorresina, con un contenido de éster de luteína del 33,0% en peso mediante espectrofotometría. Esta oleorresina se agitó durante 3 horas con 150 ml de alcohol isopropílico a temperatura ambiente (19ºC). La suspensión se filtró a través de tela filtrante, y se eliminaron los disolventes del sólido al vacío a temperatura ambiente. El sólido resultante (26,6 g) contenía un 41,0% en peso de ésteres de luteína, determinado mediante espectrofotometría, sin rastros detectables de restos de pesticidas según el método de EPA SW-846 8080A (límite de detección: 48 microgramos/kilogramo). El concentrado de éster de luteína se fundió a 60ºC, se vertió en moldes, y se dejó enfriar hasta convertirse en barras sólidas, durante 4 horas, hasta alcanzar la temperatura ambiente (20ºC).
Ejemplo comparativo 2
Un kg de flores de caléndula de la misma cosecha utilizada en el ejemplo 2 se extrajo con el método utilizado en el ejemplo 1, y dio un rendimiento de 88,8 g de oleorresina cruda con un contenido de éster de xantofila del 16,9% en peso. La oleorresina cruda se agitó durante 3 horas con 200 ml de alcohol isopropílico a temperatura ambiente (19ºC), se filtró, y se secó tal como se describe en el ejemplo 2. Se obtuvo un sólido resultante (23,0 g) con un contenido de éster de xantofila del 40,5% en peso. El análisis de restos de pesticidas de la oleorresina utilizando el método EPA SW-846 8080A mostró la presencia de 0,9 partes por millón del pesticida endosulfano.
Ejemplo 3
Otro lote de flores de caléndula se extrajo y la oleorresina se procesó como en el ejemplo 2. El sólido resultante (19,4 g) contenía un 56,1% en peso de ésteres de luteína.
Ejemplo Comparativo 3
Otro lote de flores de caléndula se extrajo y la oleorresina se procesó como en el ejemplo comparativo 2. El sólido resultante (16,7 g) contenía un 55,6% en peso de ésteres de luteína. El análisis de restos de pesticidas del sólido utilizando el método EPS SW-846 8080A mostró la presencia de 0,9 partes por millón del pesticida endosulfano.
Ejemplo 4
Se preextrajeron 5 kg de cambrona de Ningxia (Lycium chinense) en una columna de vidrio, dotada de un filtro de cerámica, por percolación con 90 litros de agua caliente (80ºC) durante 2 horas, para eliminar gomas solubles en agua. Los cambronas de Ningxia se deshidrataron luego en un secador de lecho fluidizado a 60ºC, se molieron utilizando un molino de martillo, y lentamente (durante 8 horas) se extrajeron mediante percolación a temperatura ambiente (21ºC) con 40 litros de hexano en una columna de vidrio dotada de un filtro de cerámica. Se eliminaron los disolventes del extracto al vacío a 60ºC. La oleorresina resultante y libre de disolvente pesó 58 g y contuvo un 11,5% en peso de éster de zeaxantina mediante espectrofotometría de una alícuota disuelta en hexano, tal como se describió anteriormente. Esta oleorresina se mezcló con 250 ml de alcohol isopropílico y se agitó durante 5 horas a 19ºC. Los sólidos insolubles se separaron mediante filtración y se eliminaron los disolventes en un evaporador giratorio al vacío a 25ºC durante 3 horas, con un rendimiento de 11,9 g de concentrado de éster de zeaxantina, con un contenido de éster de zeaxantina del 56,0% en peso (determinado por espectrofotometría como anteriormente) y una razón de isómeros trans:cis de zeaxantina de 9:1 (determinada con la altura de los picos de la HPLC).

Claims (30)

1. Método para obtener un concentrado de éster de trans-xantofila de elevada pureza que comprende:
(a)
poner en contacto el material vegetal que contiene los ésteres de xantofila con un disolvente de hidrocarburo durante un tiempo suficiente para extraer los ésteres de xantofila del material vegetal;
(b)
separar el disolvente de hidrocarburo y el extracto disuelto en el mismo del resto del material vegetal;
(c)
evaporar el disolvente de hidrocarburo del extracto disuelto para obtener un concentrado crudo de éster de xantofila;
(d)
mezclar el concentrado crudo de éster de xantofila con un alcohol a temperatura ambiente para disolver las impurezas no xantofílicas y ésteres de cis-xantofila del concentrado; y
(e)
eliminar las impurezas que contienen alcohol y los ésteres de cis-xantofila del concentrado crudo de trans-xantofila para obtener un concentrado purificado de éster de xantofila.
2. Método de la reivindicación 1, en el que el material vegetal se selecciona del grupo compuesto por flores de caléndula, bayas del género Lycium y bayas del género Physalis.
3. Método de la reivindicación 1, en el que el disolvente de hidrocarburo se selecciona del grupo que consiste en pentano, hexano, heptano, y mezclas de los mismos.
4. Método dela reivindicación 1, en el que el alcohol es un alcohol alifático inferior.
5. Método de la reivindicación 1, en el que la temperatura ambiente para mezclar con el alcohol se mantiene entre 18ºC y 22ºC.
6. Método de la reivindicación 1, que comprende además las etapas de fundir el concentrado de éster de trans-xantofila purificado dentro de moldes, enfriar el concentrado de éster de trans-xantofila moldeado, y extraer el concentrado enfriado de los moldes como barras sólidas.
7. Método de la reivindicación 1, que comprende además moler el concentrado de éster de trans-xantofila purificado hasta alcanzar un estado granular.
8. Método para obtener un concentrado de éster de trans-luteína de elevada pureza que comprende:
(a)
eliminar de flores de caléndula todas las partes de la flor excepto la corola;
(b)
poner en contacto las corolas de caléndula con un disolvente de hidrocarburo durante un tiempo suficiente para extraer ésteres de luteína de las corolas;
(c)
separar el disolvente de hidrocarburo y el extracto disuelto en el mismo de las coloras restantes;
(d)
evaporar el disolvente de hidrocarburo del extracto disuelto para obtener un concentrado crudo del éster de luteína;
(e)
mezclar el concentrado crudo de éster de luteína con un alcohol a temperatura ambiente para disolver las impurezas no xantofílicas y los ésteres de cis-luteína del concentrado; y
(f)
eliminar las impurezas que contienen alcohol y ésteres de cis-luteína del concentrado crudo de trans-luteína para obtener un concentrado purificado del éster de trans-luteína.
9. Método de la reivindicación 8, en el que el disolvente de hidrocarburo se selecciona del grupo que consiste en pentano, hexano, heptano, y mezclas de los mismos.
10. Método de la reivindicación 8, en el que el alcohol es un alcohol alifático inferior.
11. Método de la reivindicación 8, en el que la temperatura ambiente para mezclar con el alcohol se mantiene entre 18ºC y 22ºC.
12. Concentrado de éster de trans-xantofila, excluyendo el éster de diacetato de zeaxantina, en el que el contenido de éster de trans-xantofila del concentrado es al menos cuatro veces mayor que el contenido de éster de cis-xantofila del concentrado.
13. Concentrado de éster de trans-xantofila según la reivindicación 12, en el que la concentración total de los ésteres de trans y cis-xantofila es al menos del 40% en peso del concentrado.
14. Concentrado de éster de trans-xantofila según la reivindicación 12, en el que los restos de pesticida están sustancialmente ausentes del concentrado en niveles de detección de partes por mil millones.
15. Concentrado de éster de trans-xantofila según la reivindicación 12, en el que el éster de xantofila comprende al menos sustancialmente éster de luteína.
16. Concentrado de éster de trans-xantofila según la reivindicación 12, en el que el éster de xantofila comprende al menos sustancialmente éster de zeaxantina.
17. Complemento dietético para la nutrición humana que comprende un concentrado de éster de trans-xantofila según la reivindicación 12.
18. Concentrado de éster de trans-xantofila, en el que el contenido de éster de xantofila es superior al 55% en peso del concentrado.
19. Concentrado de éster de trans-xantofila según la reivindicación 18, en el que el contenido de éster de trans-xantofila del concentrado es al menos cuatro veces mayor que el contenido de éster de cis- xantofila del concentrado.
20. Concentrado de éster de trans-xantofila según la reivindicación 18, en el que los restos de pesticida están sustancialmente ausentes del concentrado en niveles de detección de partes por mil millones.
21. Concentrado de éster de trans-xantofila según la reivindicación 18, en el que el éster de xantofila comprende al menos sustancialmente éster de luteína.
22. Concentrado de éster de trans-xantofila según la reivindicación 18, en el que el éster de xantofila comprende al menos sustancialmente éster de zeaxantina.
23. Complemento dietético para la nutrición humana que comprende un concentrado de trans-xantofila según la reivindicación 18.
24. Complemento dietético para la nutrición humana según la reivindicación 17, en el que los ésteres de xantofila comprenden al menos sustancialmente ésteres de luteína.
25. Complemento dietético para la nutrición humana según la reivindicación 24, en el que el contenido total de ésteres de trans y cis-xantofila es al menos del 40% en peso del concentrado y los restos de pesticida están sustancialmente ausentes del concentrado en niveles de detección de partes por mil millones.
26. Complemento dietético para la nutrición humana según la reivindicación 24, en el que el contenido total de éster de xantofila es superior al 55% en peso del concentrado.
27. Complemento dietético para la nutrición humana según la reivindicación 24, en el que el contenido total de éster de xantofila es superior al 70% en peso del concentrado.
28. Complemento dietético para la nutrición humana según la reivindicación 23, en el que el éster de xantofila comprende al menos sustancialmente ésteres de luteína.
29. Complemento dietético para la nutrición humana según la reivindicación 23, en el que el contenido de éster de xantofila es superior al 70% en peso del concentrado.
30. Complemento dietético para la nutrición humana según la reivindicación 23, en el que los restos de pesticida están sustancialmente ausentes del concentrado en niveles de detección de partes por mil millones.
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