ES2121000T5 - Composicion utilizada como agente terapeutico contra enfermedades hepaticas virales cronicas. - Google Patents

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Abstract

SE DA A CONOCER UNA COMBINACION, QUE COMPRENDE POR LO MENOS UNA SECUENCIA POLIPEPTIDA, MEDIADORA DE LA ANTIGENICIDAD DE UNO O MAS EPITOPES Y UN PORTADOR, CAPAZ DE PRESENTAR ESTA/ESTAS SECUENCIA(S) POLIPEPTIDA, LA CUAL ES UTIL PARA LA PREPARACION DE UN MEDICAMENTO PARA EL TRATAMIENTO DE HEPATITIS VIRAL CRONICA.

Description

Composición utilizada como agente terapéutico contra enfermedades hepáticas virales crónicas.
La presente invención se refiere a una composición que comprende una secuencia de polipéptidos y a un portador para proporcionar un agente para curar las enfermedades hepáticas crónicas causadas por el virus de la hepatitis B.
Al menos cinco virus diferentes, esto es el virus de la Hepatitis A, B, C, D y E, son susceptibles de desencadenar el aspecto clínico de una hepatitis aguda. A diferencia de la hepatitis A y E, que son transferidas entéricamente y pueden producir la muerte del paciente, la hepatitis B, C (denominada antes hepatitis parenteral No-A No-B), y D pueden progresar a un estado de inflamación crónica, que a su vez puede producir una cirrosis hepática y un carcinoma hepatocelular primario.
Hay relativamente pocos datos disponibles sobre la hepatitis C y D, sobre los métodos para la diagnosis y su tratamiento y sobre los respectivos virus. El virus de la hepatitis D es un virus con ARN que se sabe que es incompleto. Por lo tanto, necesita un virus coadyuvante para desarrollarse en pacientes y se encuentra solamente en individuos infectados con HBV. Solo muy recientemente el virus de la hepatitis C ha sido detectado, y se ha desarrollado un ensayo con anticuerpo (anti-HCV) que facilita la diagnosis de las infecciones de hepatitis C crónica. No obstante, existe una necesidad cada vez más urgente de un tratamiento para curar esta enfermedad.
Lo mismo es cierto por lo que se refiere a la hepatitis B crónica, una enfermedad mucho mejor estudiada con respecto a su reconocimiento mediante métodos inmunológicos, su virus causante y el ciclo de vida viral y la secuencia de ADN. Se dice que los pacientes son portadores crónicos del virus de la hepatitis B si el ADN viral perdura más de diez semanas, el antígeno HBe (HBeAg) durante más de 12 semanas, o si el antígeno de superficie de la hepatitis B (HBsAg) es persistente durante más de seis meses.
Se considera que aproximadamente trescientos millones de personas padecen hepatitis B crónica, la mayoría de las cuales viven en el Extremo Oriente. Para estas personas el principal riesgo de ser infectado parece ser durante o inmediatamente después del nacimiento, puesto que una madre infectada crónicamente transfiere el virus a su recién nacido. El 90 por ciento de los niños infectados de este modo se volverán crónicamente infectados, también, durante su vida posterior. En el Mundo Oriental la infección tiene lugar más comúnmente más tarde en la vida, durante la infancia o incluso en la edad adulta, principalmente por transmisión parenteral o sexual. En estos casos de infección por hepatitis B tras el nacimiento sólo del cinco al diez por ciento de los infectados se vuelven portadores crónicos. El virus transfectado, no obstante, no es responsable de las distintas reacciones mostradas por las personas infectadas ya sea para eliminar el virus ya sea para retenerlo en el organismo toda la vida. Por consiguiente, parece ser cuestión del estado inmunológico que determina el futuro estado físico.
El virión HB (partícula de Dane) está compuesto por diferentes proteínas estructurales, las proteínas del núcleo y las proteínas de la superficie (S). Las últimas son productos de la traducción de un marco de lectura abierto que abarca la secuencia codificadora de los tres dominios de tipo S, cada uno de las cuales empieza en un triplete AG susceptible de iniciar la traducción in vivo. Los dominios son referidos como preS1, preS2 y S en orden 5' al extremo 3' de la molécula. Existen seis productos proteicos derivados de este ORF (por Open Reading Frame = Marco de Lectura Abierto): una forma glicosilada y una no glicosilada de la proteína principal (gp27 y p24) traducidas a partir del dominio S solo (226 aminoácidos) (referidas de aquí en adelante como péptidos S de HBV), una proteína intermedia (281 aminoácidos) que tiene una o dos cadenas laterales de polisacáridos (gp33 y gp36, respectivamente), esto es codificada por la región preS2 y S (referida de aquí en adelante como péptidos S2 de HBV), y finalmente, tanto una forma glicosilada (gp42) como una no glicosilada (p39) de la gran proteína (389-400 aminoácidos, dependiendo del serotipo viral), que está formada por la traducción de preS1, preS2 y S (referidas de aquí en adelante como péptidos S1 de HBV). Las proteínas del núcleo son HBcAg y HBeAg, siendo la última posiblemente un producto de la maduración de HBcAg. La proteína del núcleo puede portar un pre-péptido del núcleo.
La partícula de Dane, que es el virión infeccioso, comprende las proteínas tanto del núcleo como de la superficie, mientras los filamentos constan de una mezcla de los seis antígenos de superficie. Los péptidos S, S2 y S1 de HBV (como se han definido aquí), se ensamblan solos para formar las denominadas partículas de 20 nm, que no son en absoluto infecciosas.
Los pacientes infectados con el virus de la HB pasan a través de diversas fases de la hepatitis, antes de que se considere que están crónicamente infectados por HBV. Inmediatamente después de la infección seguirá una fase infecciosa, caracterizada por la presencia de HBeAg en el suero. A pesar de la replicación inhibida del HBV, la antigenemia continuada de la HB indica la presencia de secuencias del ADN viral integradas en el genoma celular del paciente. Las secuencias virales integradas no permiten que la célula huésped sintetice el virus completo. No obstante, las células del hígado que tienen las secuencias del HBV integradas son susceptibles de producir sólo HBsAg, que a su vez es detectable en el suero del paciente y es un indicador de la hepatitis B crónica. Muy probablemente los hepatocitos transformados no son lisados por las células T citotóxicas, pero proliferan e inducen o bien la hepatitis persistente crónica (HPC) o bien la hepatitis activa crónica (HAC), que pueden después derivar en cirrosis del hígado o en carcinoma hepatocelular primario dando como resultado la muerte prematura del
paciente.
Recientemente se ha verificado que los pacientes que están crónicamente infectados por HBV muestran un defecto en la producción de interferón endógeno (Abb et al., 1.985: J. Med. Virol 16. 171-176). Esta fue la razón fundamental para tratar los pacientes que padecen hepatitis B crónica, como indica la presencia de HBeAg y ADN de HBV en el suero, con interferón \alpha (IFN\alpha). Pruebas controladas con gran número de pacientes demostraron que la administración de interferón \alpha daba como resultado un aumento significativo de la eliminación del virus de la hepatitis B, cuando se comparaban con los controles. Sin embargo, las personas infectadas en el momento del nacimiento o próximo a él no parecían producir seroconversión en respuesta a esta terapia. Este fenómeno desafortunadamente excluye alrededor del 75% de los portadores de la terapia con IFN\alpha.
En la actualidad, el modo exacto de acción del interferón \alpha sobre la hepatitis B permanece poco claro. Su actividad antiviral podría proteger células no infectadas de la infección por HBV o reducir la transcripción, traducción y replicación virales en las células infectadas por HBV. Adicionalmente el interferón tiene efectos inmunomoduladores activando células T, macrófagos y células NK e induciendo la expresión de las proteínas del MHC de clase
I.
Otro enfoque para tratar la hepatitis B crónica se basa en la idea de inhibir la replicación del virus, deteriorando de ese modo su defensa suficientemente para hacer el sistema inmune del huésped susceptible de eliminar el virus. Esto condujo a otros fármacos antivirales tales como el adeninarabinósido y el adeninarabinósido monofosfato para el tratamiento de los individuos infectados por HBV crónicamente. No obstante, menos de la mitad de los pacientes respondían a esta terapia, mediante seroconversión o bien sostenida o bien transitoria (HBeAg^{+} a anti-HBe^{+}). Un aspecto negativo adicional de estos fármacos antivirales son sus propiedades inmunosupresoras.
Entre otros fármacos que se han sometido a ensayo para el tratamiento de portadores crónicos se incluyen el interferón \beta y la acicloguanosina (aciclovir), la interleuquina 2, los esteroides, tales como la prednisolona, y las combinaciones de los mismos. Pero ninguno de ellos pudo proporcionar mejores resultados que el tratamiento con interferón \alpha. Sólo una terapia de combinación, incluyendo la administración inicial de esteroides seguido de la de IFN \alpha puede aumentar la velocidad de respuesta en los pacientes seleccionados.
Es sabido a partir de la técnica anterior, que los chimpancés infectados crónicamente por HBV no pueden ser curados mediante tratamiento con HBsAg (unido a un toxoide de tétanos) ni con anticuerpos anti-HBs. Además, se ha intentado inmunizar pacientes crónicamente infectados por HBV mediante la administración de los péptidos S, S2 y S1 de HBV (como se ha definido aquí). Este tratamiento no dio ni siquiera como resultado la formación de anticuerpos anti-HBs en estas personas.
En WO88/10300 se describe la utilización de epitopos de HBV, es decir péptidos del núcleo de HBV, regiones pre-S1 y Pre-S2, portados sobre una partícula inmunogénica formada a partir de un péptido secretado que causa la producción de anticuerpos en un modelo animal. En EP-A-243913 se describe la utilización de péptidos a partir de las regiones codificadoras de pre-S1 y/o pre-S2 del genoma de HBV sobre un portador para lograr la producción de anticuerpo. No obstante en ninguna de las aplicaciones anteriormente mencionadas se describió si la producción de estos anticuerpos tendría efecto alguno al eliminar las partículas del virus durmientes o latentes de los hepatocitos de animales infectados con hepatitis. A la luz de la técnica anterior mencionada previamente en la que los anticuerpos anti-HBV no curaban chimpancés infectados, parecía poco probable un efecto curativo.
Adicionalmente, según la definición, los portadores crónicos del virus de la hepatitis B se caracterizan porque es detectable el HBsAg en su suero. Por lo tanto, ha sido absolutamente imprevisible, que una combinación, que comprende un epitopo activador de las células T codificado por la región preS1-preS2 del genoma de HBV, según la presente invención, sea susceptible de inducir una inmunización y una curación final de portadores crónicos del virus de la hepatitis B.
Considerando el estado de la técnica anteriormente discutido el objetivo de la presente invención es proporcionar un agente terapéutico eficaz para el tratamiento de enfermedades de la hepátitis B crónicas que conduzca a una respuesta completa (es decir a la inhibición sostenida de la replicación del HBV, la pérdida del ADN de HBV y la ADN polimerasa y a una disminución y finalmente desaparición de HBeAg y HBsAg en el suero de los pacientes).
Según la presente invención esta meta se logra mediante la combinación de
a) al menos una secuencia de polipéptidos que tiene uno o más epitopos activadores de las células T antigénicas del virus de la hepatitis B y
b) un portador susceptible de presentar la secuencia o secuencias del epitopo a), donde la secuencia o secuencias de polipéptidos a) están unidas al portador b) mediante un enlace covalente o hidrofóbico.
Esta invención está dirigida a la utilización de esta combinación para la producción de un medicamento para el tratamiento de la hepatitis viral crónica.
Es importante que la secuencia de polipéptidos a), que pueden ser uno o más polipéptidos diferentes, medie la antigenicidad de un epitopo activador de células T en un sentido directo o indirecto.
Según la presente invención la secuencia o secuencias de polipéptidos a) pueden ser un polipéptido o una combinación de dos o más polipéptidos del virus de la hepatitis B de cualquier subtipo, concretamente adw, ayw, adr y ady. La secuencia o secuencias de polipéptidos a) pueden por lo tanto ser la secuencia de aminoácidos de uno o más miembros seleccionados entre los péptidos preS1, preS2 o S virales de HB (como se ha definido aquí) y los antígenos del núcleo de HB.
Además cualquiera de los polipéptidos anteriormente comentados o una combinación de dos o más polipéptidos que estén modificados o bien por deleciones de aminoácidos, con lo que al menos se puede conservar un epitopo que comprenda al menos seis restos aminoácido consecutivos, o bien añadiendo aminoácidos adicionales ya sea en el extremo N, o en el extremo C o bien por inserciones en la secuencia o secuencias de polipéptidos a) son útiles como secuencia o secuencias de polipéptidos a). En cada uno de estos casos es esencial, sin embargo, que se mantenga la actividad biológica. De ese modo la secuencia o secuencias de polipéptidos a) pueden ser un polipéptido del virus de la hepatitis B modificado:
i)
por tener deleciones arbitrarias, con lo que se conserva un epitopo que comprende al menos seis restos aminoácido consecutivos,
ii)
por tener sustituciones de uno o varios aminoácidos, o
iii)
por llevar una secuencia de aminoácidos adicional en su extremo N, su extremo C o en forma de inserción.
Más específicamente, la secuencia o secuencias de polipéptidos a) pueden ser la secuencia de aminoácidos de uno o más miembros seleccionados entre los péptidos pre-S1, pre-S2 y S virales de HB y los antígenos del núcleo de HB, modificados como antes.
Para ayudar al enlace o anclaje hidrofóbico, la secuencia o secuencias de polipéptidos son ventajosamente miristiladas.
Con el fin de desplegar la actividad farmacológica apropiada es necesario que la combinación de la secuencia o secuencias polipeptídicas de la presente invención a) se encuentre presente sobre un portador b). Este portador consta de una sustancia concreta que por ejemplo puede constar de partículas de un polímero hidrofóbico, de partículas orgánicas, o de partículas de un polisacárido. Preferiblemente, el portador b) es una segunda secuencia polipeptídica que forma partículas después de la secreción, teniendo dichas partículas preferiblemente un diámetro de al menos
10 nm.
Se prefiere que la secuencia polipeptídica b) formadora de partículas sea una parte sustancial de o una secuencia de aminoácidos completa de un polipéptido que puede ser seleccionado entre el péptido S de HBV (como se ha definido aquí), el antígeno del núcleo de HBV, el antígeno del núcleo de HAV, el antígeno de superficie de HAV, el antígeno de superficie de HIV y el antígeno del núcleo de HIV así como el antígeno de superficie del virus de la polio. Como portador formador de partículas b) se prefiere el péptido S de HBV y/o el péptido del núcleo.
Cuando se utilizan como secuencia portadora b) los polipéptidos anteriormente comentados pueden ser modificados mediante deleciones arbitrarias de aminoácidos, mediante sustituciones de uno o más aminoácidos o añadiendo uno o más aminoácidos ya sea en el extremo N, en el extremo C o mediante inserción de uno o más aminoácidos en la secuencia polipeptídica b), siempre que se conserve la capacidad formadora de partículas. De ese modo, la secuencia polipeptídica b) puede ser una parte sustancial o la secuencia completa de aminoácidos de un polipéptido seleccionado entre el péptido S de HBV; los antígenos del núcleo de HBV, del núcleo de HAV y del núcleo de HIV; y los antígenos de superficie del virus de la polio, HAV o HIV; modificados
i)
por tener deleciones arbitrarias, con lo que se conserva la capacidad formadora de partículas,
ii)
por tener sustituciones de uno o varios aminoácidos, o
iii)
por llevar una secuencia de aminoácidos adicional en su extremo N, su extremo C o en forma de inserción.
Para ayudar al enlace hidrofóbico, la secuencia polipeptídica b) es ventajosamente miristilada.
Si el portador b) es una secuencia polipeptídica, ambas secuencia a) y b) pueden ser enlazadas vía una o más de las siguientes interacciones: anclaje hidrofóbico (mediado por ácido mirístico), formación de puentes disulfuro, o ambas secuencias pueden ser conectadas mediante un enlace peptídico para formar un péptido de fusión. En el último caso se puede insertar opcionalmente una secuencia espaciadora entre la secuencia o secuencias polpeptídicas a) y la secuencia b), cuya secuencia espaciadora está enlazada a ambos polipéptidos vía enlaces peptídicos.
La secuencia o secuencias polipeptídicas a) y b) pueden ser producidas respectivamente mediante la expresión de una molécula de ADN recombinante. La molécula de ADN recombinante puede codificar para la combinación de la secuencia o las secuencias polipeptídicas a) y b). La molécula de ADN recombinante puede comprender por lo tanto al menos una primera secuencia de ADN y opcionalmente una segunda, una tercera y/o una cuarta secuencia de ADN donde
i)
al menos dicha primera secuencia de ADN codifica al menos para una secuencia polipeptídica a) como se ha definido antes,
ii)
dicha segunda secuencia de ADN codifica para una secuencia polipeptídica b) según la definición anterior del péptido formador de partículas,
iii)
dicha tercera secuencia de ADN codifica para una secuencia espaciadora, y
iv)
dicha cuarta secuencia de ADN codifica para un marcador de selección
y donde las secuencias de ADN son controladas por elementos de ADN esenciales para la expresión, y opcionalmente tienen un marco de lectura común.
La secuencia o secuencias polipeptídicas a) y la secuencia o secuencias polipeptídicas b) pueden por lo tanto ser codificadas en tándem sobre la misma molécula de ADN recombinante. La secuencia o secuencias polipeptídicas y la secuencia o secuencias polipeptídicas b) pueden de ese modo ser expresadas a partir de un único marco de lectura abierto sobre dicha molécula de ADN y están opcionalmente separadas por una secuencia polipeptídica espaciadora también codificada en el único marco de lectura abierto.
Debido al hecho de que los aminoácidos están designados por más de un triplete, existen diversas secuencias de ADN que codifican para las secuencias peptídicas a) y b) anteriormente definidas.
Aparte de esto, se pueden utilizar moléculas de ADN recombinante, que difieren de las moléculas de ADN recombinante anteriormente definidas por el hecho de que hasta el 30% de los nucleótidos pueden ser sustituidos.
Una célula huésped es transfectada con una molécula de ADN recombinante que codifica para la combinación anterior, que es útil para el tratamiento de pacientes infectados crónicamente por HBV. Esta célula huésped puede ser una célula de mamífero, de levadura o bacteriana. Para el propósito de esta invención se prefiere, que esta célula no produzca proteína de suero humano alguna o proteína de suero de primate alguna distintas del polipéptido o los polipéptidos que están siendo incluidos en la combinación anterior.
El término "péptido S de HBV" utilizado aquí hace referencia al péptido codificado por la región S completa del genoma de HBV es decir excluyendo las regiones pre-S1 y pre-S2. El término "péptido pre-S2 de HBV" utilizado aquí hace referencia al péptido codificado por las regiones pre-S2 y S completas del genoma de HBV. El término "péptido pre-S1 de HBV" utilizado aquí hace referencia al polipéptido codificado por las regiones pre-S1, pre-S2 y S completas del genoma de HBV. El término "epitopo" utilizado aquí hace referencia a una secuencia de la menos seis aminoácidos consecutivos codificada por la región de genoma designada (v.g. un "epitopo pre-S2 de HBV" hace referencia a una secuencia de al menos seis aminoácidos codificada por la región pre-S2 del genoma de HBV). El término "epitopo de la célula T" utilizado aquí hace referencia a un epitopo que interacciona con los receptores de la superficie de las células T para intensificar o efectuar de otro modo una respuesta inmune. Utilizado aquí "antigenicidad" representa la capacidad para provocar una respuesta inmune (v.g. actuando como antígeno), la capacidad para causar la producción de anticuerpos (v.g. actuando como antígeno) y/o la capacidad para interaccionar con un receptor de la superficie celular con el fin de intensificar una respuesta inmune o producción de anticuerpos.
El término "HBV" representa cualquier subtipo del virus, concretamente adw, ayw, adr y ayr, descritos en la literatura (P. Valenzuela, Nature Vol. 280, pág. 815 (1.979), Gerlich, EP-A-85.111.361, Neurath, EP-A-85.102.250). Los ejemplos de las secuencias peptídicas de los mismos, que constituyen la secuencia o secuencias polipeptídicas a), que median la antigenicidad de uno o más epitopos, se muestran en el Listado de Secuencias (SEC ID Núm. 17-20, 22).
Las realizaciones preferidas de la presente invención son las siguientes combinaciones:
-
partículas del antígeno S de HBV con epitopos específicos (determinantes) de los péptidos pre-S1, pre-S2 y/o del núcleo;
-
partículas del antígeno del núcleo de HBV con epitopos específicos (determinantes) de los péptidos pre-S1, pre-S2, S y/o de los antígenos del núcleo;
-
partículas del antígeno de la hepatitis A con epitopos específicos (determinantes) de los péptidos S, pre-S1, pre-S2 y/o del núcleo de la hepatitis B.
Las moléculas de ADN recombinante preferidas para la presente invención se caracterizan por la presencia de secuencias que codifican para la secuencia o secuencias polipeptídicas a), que median la antigenicidad de uno o más epitopos de las células T, y para el polipéptido b), que tras la secreción forma partículas que tienen un diámetro de 10 nm o más, de las cuales ambas están bajo el control de un promotor adecuado. Como ejemplos de las secuencias que codifican para a) se pueden mencionar cualquiera de las secuencias enumeradas bajo los Núm. de ID 1 a 24 del Listado de Secuencias. Los ejemplos de la secuencia de ADN que codifica para la secuencia b) están representados por cualquiera de las secuencias de ID 25 a 27 o 35 del Listado de Secuencias.
Cualquiera de las 24 secuencias (números de ID 1 a 24) puede ser combinada con cualquier secuencia descrita bajo el número de ID 25 a 27 del Listado de Secuencia, en éste están incluidos los órdenes tanto a-b como b-a.
Una realización preferida concreta de la presente invención consiste en una combinación de la secuencia del epitopo Núm. ID 28 (correspondiente a la secuencia que incluye los aminoácidos 9 a 28 de la secuencia S1 de HBV) combinada con la secuencia ID Núm. 26 y/o 27 como un formador de partículas.
Las secuencias del virus de la hepatitis utilizadas en el constructo de ADN recombinante puede ser formadas o aisladas por cualquier medio incluyendo el aislamiento y la ligadura de los fragmentos de restricción, la síntesis química de oligonucleótidos utilizando un sintetizador (Cyclon, Bio-Search), y la síntesis mediante el método de la PCR (T.J. White, N. Arnleim, H.E. Erlich, 1.989; The Polymerase Chain Reaction, Technical Focus 5 (6)).
Las moléculas de ADN recombinante preferidas fueron formadas mediante ligadura de oligonucleótidos sintéticos a un fragmento 5' XbaI-BglII 3' (número ID 27) de la región S del genoma de HBV, que está derivado de un fragmento BglII-BglII de HBV incluyendo la región pre-S1-pre-S2-S completa, o la ligadura a la región S completa. Los oligonucleótidos utilizados en la elaboración de tales constructos se resumen en la siguiente Tabla I.
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TABLA I
\vskip1.000000\baselineskip
1
2
Otras moléculas de ADN preferidas fueron formadas mediante la ligadura de secuencias del núcleo, que se preparan mediante el método de PCR y que codifican para los epitopos de las células T, a la secuencia del núcleo de HBV (SEC ID Núm. 25) que funciona como secuencia polipeptídica b). Los oligonucleótidos utilizados en la preparación de estos constructos se dan en la Tabla II-1.
TABLA II-1
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La Tabla II-2 muestra diversos ejemplos, en los que las secuencias de ADN que codifican para el epitopo de las células T han sido aisladas mediante fragmentación mediante restricción del genoma de HBV y han sido ligadas a la secuencia de ADN que codifica para la secuencia polipeptídica b) como se ha definido antes.
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TABLA II-2
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En la Tabla II-3 se enumeran las moléculas de ADN recombinante específicas. El procedimiento para su construcción se describirá con más detalle en los Ejemplos.
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TABLA II-3
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Las moléculas de ADN recombinante preferidas según la presente invención comprenden, aparte de las regiones que codifican para los polipéptidos a) y b), una secuencia de ADN adicional que codifica para un marcador de selección. Además, comprenden todos los elementos habituales esenciales para la expresión, tales como una secuencia promotora, un codon de iniciación y una señal de poliadenilación.
Los ejemplos de los promotores adecuados son el promotor de la metalotioneína (MT), U2 y H2K en caso de utilizar células de mamífero como célula huésped. Si se van a emplear células de levadura o bacterianas, se pueden utilizar promotores de levadura y bacterianos apropiados, tales como el promotor GCN4- y GAL 1/10 o los promotores trp- y tac procarióticos, respectivamente.
Con el fin de producir la combinación de polipéptido o polipéptidos a) y polipéptido b) según esta solicitud la molécula de ADN recombinante es insertada en las células huésped mediante transfección (en el caso de células de mamífero), mediante transformación (en el caso de células de levadura y bacterianas), o por otros medios. En cuanto al huésped, se pueden utilizar células de cualquier organismo que sean susceptibles de transcribir y traducir las moléculas de ADN recombinante, tales como células de mamífero, bacterianas y de levadura.
Las células de mamífero adecuadas según esta invención son por ejemplo las células VERO (una línea celular de riñón de mono), 3T3-C127 y las células L (líneas celulares de fibroblastos murinos), y las células CHO (ovario de hámster Chino), que son o bien positivas o bien negativas en deshidrofolato reductasa.
Según una realización específica de la presente invención es posible además que la primera secuencia de ADN definida anteriormente y la segunda secuencia de ADN definida anteriormente, que codifican para una secuencia o secuencias polipeptídicas a) y para una secuencia polipeptídica b), respectivamente, estén presentes en diferentes moléculas de ADN recombinante, en cuyo caso las células huésped son co-transfectadas con ambas moléculas de ADN recombinante.
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La Tabla III da una visión de conjunto sobre cómo combinar secuencias de ADN adecuadas para obtener constructos de ADN según la presente invención. Se debe observar que cualquiera de los constituyentes descritos en esta tabla puede ser combinado para proporcionar una secuencia de ADN que puede ser tomada, si es transfectada a una célula huésped, para producir una combinación (que comprende el polipéptido o polipéptidos a) y b)) como medicamento para el tratamiento de la hepatitis B crónica. Las secuencias de ADN que codifican para las secuencias del epitopo de las células T han sido preparadas sintéticamente (SIN) con un sintetizador Biosearch Cyclon, mediante el procedimiento de la PCR (PCR), o mediante fragmentación con enzimas de restricción del genoma viral (GEN).
Para el tratamiento de los pacientes que padecen hepatitis viral crónica se puede formular la combinación de la secuencia o secuencias polipeptídicas a) y un portador b) en cualquier tipo de composición farmacéutica, que además comprende un diluyente adecuado o un material portador farmacéutico, tal como una solución tampón.
La administración puede ser efectuada mediante cualquier método, es decir mediante administración parenteral (v.g. intravenosa o intramuscular) u oral (v.g. utilizando células bacterianas tifoideas para encapsular la sustancia activa).
La preparación farmacéutica comprende la combinación anteriormente descrita en una concentración suficiente para lograr una respuesta tras la administración.
Breve descripción de las figuras
Figura I muestra un constructo de ADN, que codifica para un promotor, una secuencia formadora de partículas y un gen de selección (descrito en el Ejemplo 3/4).
Figura II muestra un constructo de un gen-ADN que contiene un promotor, un epitopo con HB-S-Ag completo y un gen de selección (descrito en el Ejemplo 3/18).
Figura III muestra un constructo de ADN que presenta un promotor, un epitopo de célula T con un resto formador de partículas y un gen de selección (descrito en el Ejemplo 3/21).
Figura IV muestra los valores AST de chimpancé 1 durante el tratamiento con Hepa-Care (descrito en el Ejemplo 10/1).
Figura V muestra los valores de antígeno de chimpancé 1 durante el tratamiento con Hepa-Care (descrito en el Ejemplo 10/1).
Figura VI muestra los valores de las enzimas del hígado ALT y GGT de chimpancé 1 con tratamiento de refuerzo tres veces con Hepa-Care (descrito en el Ejemplo 10/2).
Figura VII muestra los valores de las enzimas del hígado ALT, AST, y GGT y de un antígeno de chimpancé 2 durante el tratamiento con Hepa-Care (descrito en el Ejemplo 10/3).
Figura VIII muestra las enzimas del hígado determinadas para un chimpancé de control no tratado (descrito en el Ejemplo 10/3).
Figuras IX & X muestran los títulos de antígeno y
anticuerpo del paciente 1 durante el tratamiento con Hepa-Care, respectivamente (descrito en el Ejemplo 11).
Figuras XI & XII muestran los títulos de antígeno y
anticuerpo del paciente 2 durante el tratamiento con Hepa-Care, respectivamente (descrito en el Ejemplo 11).
Figuras XIII & XIV muestran los títulos de antígeno y
anticuerpo del paciente 2 durante el tratamiento con Hepa-Care, respectivamente (descrito en el Ejemplo 11).
La invención es descrita más específicamente mediante los siguientes ejemplos.
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Ejemplo 1 1. Precipitación fraccionada con polietilenglicol (PEG)
Se recogió el sobrenadante de cultivos productores de proteína de HBV y se separó en porciones de 2.400 ml. A cada porción se añadieron 144 g de PEG 6000 (Serva) y se disolvieron agitando a la temperatura ambiente durante otras 6 horas a 4ºC. El precipitado se separó por centrifugación en botellas de 500 ml en un Rotor GS 3 a 9.000 rpm (15.000 x g) durante 30 minutos a 10ºC. El sobrenadante se recogió y se añadieron 144 g de PEG 6000 y se disolvieron como se ha descrito antes. La solución se agitó a 4ºC durante 3 horas. El precipitado de esta solución fue cosechado como se ha descrito antes excepto que la centrifugación continuó durante 60 minutos.
2. Cromatografía en Gel
El material obtenido tras la precipitación con PEG se redisolvió en 20 ml de PBS y se sometió a cromatografía en gel sobre A-5m (BioRad). Las dimensiones de la columna eran de 25 x 1000 mm y el volumen del lecho de 480 ml. En un ciclo de fraccionamiento típico se cargaron 1.000 \mug de proteína de HBV precipitada con PEG en 10 a 15 ml y se hicieron eluir con PBS a una velocidad de 6 gotas/minuto (18 ml/hora). Se recogieron fracciones de 3 ml. La proteína de HBV eluía con el primer pico. Las fracciones recogidas se sometieron a un gradiente de CsCl.
3. Sedimentación en gradiente de CsCl
Se recogieron aproximadamente 30 fracciones que cubrían el primer pico en la cromatografía en columna A-5m y que contenían la proteína de HBV prepurificada hasta aproximadamente 100 ml. Esta solución se ajustó a una densidad de 1,30 g/cc con CsCl y con posterioridad se transfirió a un tubo de polialómero que encajaba en un rotor SW 27/28 (Beckman). Se ajustó un gradiente extendiendo por debajo 4 ml de una solución de CsCl de 1,35 g/cc y cubriendo con 4 ml de 1,25 g/cc seguido de 4 ml de 1,20 g/cc de densidad. Este gradiente se había mantenido a 28.000 rpm durante 50 horas a 10ºC. Después de eso el gradiente fue fraccionado, y se recogió la proteína de HBV purificada que flotaba en la capa de 1,20 g/cc de densidad. La solución se desaló mediante tres ciclos de diálisis en bolsas frente a agua.
Ejemplo 2 Determinación Cuantitativa de la proteína de HBV 1. con Radioinmunoanálisis
En el radioinmunoanálisis "sándwich" AUSRIA II-125 (asequible comercialmente de Abbot), se incubaron bolitas revestidas con anticuerpo de cobaya para el antígeno de superficie de la Hepatitis B (Anti-HBs) con suero o plasma o proteína purificada y controles apropiados. Cualquier HBsAg presente se unía al anticuerpo en fase sólida. Tras la aspiración del material no unido y el lavado de las bolitas, se dejó que Anti-HBs-T125 humano reaccionara con el complejo anticuerpo-antígeno de la bolita. Las bolitas se lavaron después para separar el Anti-HBs-I^{125} no unido.
)-Anti-HBs HBsAg
)-Anti-HBs \cdot HBsAg Anti-HBs-I^{125}
)-Anti-HBs \cdot HBsAg \cdot Anti-HBs-I^{125}
La radioactividad que permanecía en las bolitas fue contada en un contador de centelleo gamma.
2. con ELISA
En el análisis "sándwich" Enzignost HBsAg micro (asequible comercialmente de Behring), se revistieron los pocillos con anti-HBs. Se añadieron a los pocillos suero, plasma o proteína purificada y se añadieron los controles apropiados a los pocillos y se incubaron. Después de lavar, se hicieron reaccionar anticuerpos para HBsAg marcados con peroxidasa con los determinantes antigénicos restantes. Los anticuerpos enlazados a enzima no unidos se separan lavando y se determinó la actividad de la enzima sobre la fase sólida. La reacción catalizada enzimáticamente de peróxido de hidrógeno y cromógeno se detuvo añadiendo ácido sulfúrico diluido. La intensidad de color era proporcional a la concentración de HBsAg de la muestra y se obtuvo mediante comparación fotométrica de la intensidad de color de las muestras no conocidas con las intensidades de color de los sueros de control negativo y positivo adjuntos.
Ejemplo 3 Preparación de constructos de genes de la presente invención que contienen el promotor, las secuencias de antígeno deseadas y el gen de selección 1. Aislamiento del promotor-MT
El plásmido pBPV-342-12 (ATCC 37224) fue digerido con las endonucleasas BglII y BamHI. Se generaron tres moléculas de ADN. El fragmento de interés contiene el promotor de la metalotioneína y una secuencia pBR322 que comprende 4,5 kb y es fácilmente detectable a partir de los otros fragmentos (2,0 kb y 7,6 kb).
La reacción se realizó en un volumen total de 200 \mul de tampón de reacción a una concentración final de 0,5 \mug/\mul de ADN incluyendo 100 unidades de cada enzima de restricción. La conclusión de la digestión fue verificada tras la incubación a 37ºC durante tres horas mediante electroforesis en gel de agarosa a un 0,8% de gel de agarosa. La reacción se detuvo añadiendo 4 \mul de EDTA 0,5 M.
El fragmento de 4,5 kb fue separado de los otros fragmentos mediante electroforesis en gel de agarosa al 1,2% preparativa. El ADN se hizo eluir del gel de agarosa en un papel de filtro DE-81 Whatman del que se separó el ADN en un tampón altamente salino. El ADN se purificó mediante extracción con fenol-cloroformo y dos precipitaciones en etanol.
2. Ligadura de un fragmento de 1,8 kb que codifica para el antígeno del núcleo de HBV
Se aisló un fragmento BamHI-BamHI de 1,8 kb, que contenía las regiones codificadoras del núcleo de HBV a partir de HBV que contenía ADN. Este fragmento fue ligado junto con el fragmento de 4,5 kb que contenía el promotor de MT y el resto pBR (descrito en el apartado 1).
Se mezclaron 2 \mul del fragmento de 1,8 kb con 3 \mul del fragmento de 4,5 kb y se ligaron juntos en un volumen total de 10 \mul de tampón de ligadura, que contenía 2 unidades de ADN ligasa de T4 y ATP 2 mM a 14ºC durante la noche.
La mezcla de ligadura se añadió a 150 \mul de una suspensión celular bacteriana competente para la absorción de ADN. Tras la absorción de ADN las células bacterianas fueron esparcidas sobre placas de agar LB que contenían 50 \mul de ampicilina a volúmenes de 50 a 300 \mul de suspensión celular por placa. Las placas de agar fueron incubadas a 37ºC durante la noche. Se rastreó la presencia de un plásmido que contuviera los fragmentos deseados en las colonias bacterianas aisladas sencillas.
3. Rastreo de las colonias bacterianas que contienen el plásmido deseado
Se escogieron colonias sencillas con un palillo y se transfirieron a un tubo que contenía medio LB-ampicilina (5 ml). Los tubos fueron incubados durante la noche a 37ºC en un medio ambiente con sacudimiento rápido. Se hizo una minipreparación del plásmido de cada suspensión bacteriana en desarrollo. Se comprobaron los diferentes ADN resultantes mediante digestión con la endonucleasa de restricción BglII. Se esperaban dos moléculas, un fragmento de 400 pb y un fragmento de 5,9 kb. La digestión fue analizada mediante electroforesis en gel de agarosa. El ADN del plásmido fue aislado de las células bacterianas.
4. Inserción de un marcador de selección para la neomicina
El plásmido resultante del apartado (3) anterior fue linealizado mediante digestión con la enzima de restricción EcoRI. La reacción se realizó en un volumen total de 50 \mul y una concentración final de 1 \mug/\mul de ADN del plásmido. Se añadieron 50 unidades de EcoRI y se comprobó la digestión tras la incubación a 37ºC durante tres horas mediante electroforesis en gel de agarosa. La reacción se detuvo añadiendo 1 \mul de EDTA 0,5 M y el ADN se hizo precipitar con una concentración final de acetato de sodio 0,3 M y 3-4 volúmenes de etanol a -80ºC durante 30 minutos. El ADN precipitado se disolvió en 50 \mul de agua destilada.
Se mezclaron 2 \mul del plásmido linealizado con 3 \mul del fragmento de ADN que contenía el promotor de la metalotioneína y el gen de selección de la neomicina (aislado del plásmido pMT-neo-E (asequible de ATCC/Exogene) mediante digestión con la endonucleasa EcoRI como un fragmento de 3,9 kb), y se ligaron entre sí. Se rastreó la presencia del plásmido deseado en las colonias bacterianas sencillas.
5. Aislamiento de un fragmento que contiene la secuencia promotora de U2
El plásmido pUC-8-42 (asequible de Exogene) fue digerido con las endonucleasas de restricción EcoRI y ApaI. Se generaron dos moléculas de ADN. El fragmento de interés contiene el promotor de U2 que comprende 340 pb y es fácilmente detectable respecto al otro fragmento (3160 pb). La digestión fue realizada en un volumen total de 200 \mul de tampón de reacción a una concentración final de 0,5 \mug/\mul de ADN incluyendo 100 unidades de cada enzima de restricción. La conclusión de la digestión fue verificada tras la incubación a 37ºC durante tres horas mediante electroforesis en gel de agarosa en un gel de agarosa al 0,7%. La reacción se detuvo añadiendo 4 \mul de EDTA 0,5 M. El fragmento de 340 pb fue separado del ADN del plásmido mediante electroforesis preparativa en gel de agarosa al 1,2%. El ADN se hizo eluir del gel de agarosa sobre un papel de filtro DE-81 Whatman del que se separó el ADN en un tampón altamente salino. El ADN fue purificado mediante extracción en fenol/cloroformo y dos precipitaciones en etanol.
6. Inserción del fragmento que contiene la secuencia promotora en un plásmido policonector
El plásmido pSP165 (asequible comercialmente de Promega Biotec) que contiene una secuencia policonectora (que contiene los siguientes sitios de restricción: EcoRI, SacI, SmaI, AvaI, BamHI, BglII, SalI, PstI, HindIII) fue linealizado con la enzima de restricción EcoRI. La reacción se realizó en un volumen total de 50 \mul y una concentración final de 1 \mug/\mul de ADN plasmídico. Se añadieron 50 unidades de EcoRI y la digestión se comprobó tras la incubación a 37ºC durante tres horas mediante electroforesis en gel de agarosa. La reacción se detuvo añadiendo 1 \mul de EDTA 0,5 M y el ADN se hizo precipitar con una concentración final de acetato de sodio 0,3 M y 3-4 volúmenes de etanol a -80ºC durante 30 minutos. El ADN precipitado se disolvió en 50 \mul de agua destilada.
Se mezclaron 2 \mul de ADN plasmídico con 10 \mul del ADN del fragmento que contenía la secuencia promotora de U2, y se ligaron entre sí en un volumen total de 25 \mul de tampón de ligadura que contenía 2 unidades de ADN ligasa de T4 y ATP 2 mM a 14ºC durante la noche. Después de eso, el ADN se purificó mediante extracciones con fenol/cloroformo seguido de dos precipitaciones en etanol y se disolvió en 10 \mul de agua destilada. Los extremos cohesivos resultantes de EcoRI y ApaI tuvieron que ser convertidos en extremos romos y ligados. Los extremos cohesivos fueron convertidos en extremos romos mediante reacción con la nucleasa de haba de Mung como sigue: a 25 \mul de ADN (concentración 1 \mug/\mul) en tampón de reacción se añadieron 20 unidades de enzima para dar una concentración final de glicerol al 1% y un volumen de reacción final de 35 \mul. Tras incubar durante 30 minutos a 30ºC el ADN fue purificado mediante extracciones con fenol-cloroformo seguido de dos precipitaciones en etanol. El ADN fue disuelto de nuevo en 5 \mul de agua destilada. Los extremos romos resultantes fueron ligados entre sí en 15 \mul de volumen de reacción que contenía 10 veces más ligasa de T4 que la utilizada antes y ATP 2 mM a 14ºC durante la noche.
La mezcla de ligadura fue añadida a 150 \mul de suspensión de células bacterianas competentes para la absorción de ADN. Tras la absorción del ADN las células bacterianas fueron esparcidas sobre placas de agar LB que contenían 50 \mug/ml de ampicilina a volúmenes de 50 a 300 \mul de suspensión celular por placa. Las placas de agar fueron incubadas a 37ºC durante la noche. Se rastreó la presencia de un plásmido que contenía el fragmento promotor de U2 deseado en las colonias bacterianas aisladas sencillas. El plásmido resultante fue aislado de las células bacterianas y caracterizado mediante análisis con enzimas de restricción.
7. Ligadura del oligonucleótido de ADN sintético 89 (SEC ID Núm. 30) junto con el fragmento promotor de MT (4,5 kb)
El fragmento de 4,5 kb (descrito en el apartado 1) que contenía el promotor de MT y un resto pBR fueron ligados entre sí con el oligonucleótido sintético 89 (SEC ID Núm.:30). La mezcla de ligadura se añadió a 150 \mul de suspensión celular de bacterias competentes para la absorción de ADN. Se rastreó la presencia del plásmido deseado en las colonias bacterianas aisladas sencillas. El nuevo plásmido fue comprobado mediante digestión con las endonucleasas de restricción EcoRI y XbaI. Se esperaban dos moléculas, una de 2,0 kb y una de 2,6 kb.
8. Ligadura del oligonucleótido sintético 101 (SEC ID Núm.:32) con el plásmido (descrito en el apartado 7)
El plásmido (descrito en 7) fue digerido con BglII y BamHI y se separó un fragmento de 13 nucleótidos (descrito en 1). El fragmento resultante que contenía el primer oligonucleótido 89 (SEC ID Núm.:30), fue ligado al oligonucleótido 101 (SEC ID Núm.:32), un fragmento BglII-BamHI. Tras la absorción de ADN se rastreó la presencia del plásmido deseado en las células sencillas. Se comprobó el nuevo plásmido mediante digestión con las endonucleasas EcoRI y XbaI, o EcoRI y BglII.
9. Ligadura del oligonucleótido de ADN sintético 99 (SEC ID Núm.:31) al fragmento de 4,5 kb (descrito en el apartado 1)
El fragmento de 4,5 kb (BglII-BamHI) fue ligado con el oligonucleótido de ADN 99 (SEC ID Núm.:31). Después de rastrear las colonias bacterianas sencillas, que contenían diferentes ADN, se caracterizó el plásmido deseado mediante digestión con EcoRI, dando como resultado dos fragmentos, de 1,9 kb y 2,7 kb, y mediante la linealización positiva con BglII o BamHI.
El nuevo plásmido fue digerido después con PstI y BamHI. Se esperaban dos moléculas, un fragmento de 2,6 kb, que contenía un resto pBR, el promotor de MT y el oligonucleótido y un resto pBR de 2,0 kb. El fragmento de 2,6 kb fue aislado.
10. Ligadura del fragmento de 2,6 kb del plásmido descrito en el apartado 9, con un fragmento aislado del plásmido (descrito en el apartado 8)
El plásmido (descrito en el apartado 8) que contenía los oligonucleótidos de ADN 89 y 101 (SEC ID Núm.:30 y 32, respectivamente) fueron digeridos con PstI y BglII. Se esperaban dos fragmentos. Un fragmento de 2,5 kb que contenía un resto pBR y el promotor de MT y un fragmento de 2,2 kb, que contenía un resto pBR y ambos
oligos.
Este fragmento de 2,2 kb se ligó con el fragmento de 2,6 kb, que contenía el resto pBR, el promotor de MT y oligo 99 (SEC ID Núm.:31) descrito en el apartado 8.
Después de rastrear el plásmido deseado, este fue caracterizado mediante digestión con endonucleasas de restricción con BglII-XbaI. Se esperaban dos fragmentos, un fragmento de 270 pb de los oligonucleótidos de ADN y un fragmento de 4,5 kb del promotor de MT y el pBR.
11. Ligadura del fragmento BglII-BglII de HBV de 2,3 kb
Un fragmento BglII-BglII de 2,3 kb que contenía las regiones codificadoras de pre-S1, pre-S2 y S de HBV fue aislado de HBV que contenía ADN. El fragmento de 2,3 kb fue ligado con el fragmento de 4,5 kb (obtenido como se ha descrito en el apartado 1) que contenía el promotor de la metalotioneína.
Se mezclaron 2 \mul del fragmento de 2,3 kb con 3 \mul del fragmento de 4,5 kb y se ligaron entre sí en un volumen total de 10 \mul de tampón de ligadura, que contenía 2 unidades de ADN ligasa de T4 y ATP 2 mM a 14ºC durante la noche.
La mezcla de ligadura fue añadida a 150 \mul de suspensión celular de bacterias competentes para la absorción de ADN. Tras la absorción de ADN las células bacterianas fueron esparcidas sobre una placa de agar LB que contenía 50 \mug/ml de ampicilina a volúmenes de 50 a 300 \mul de suspensión celular por placa. Las placas de agar fueron incubadas a 37ºC durante la noche. Se rastreó la presencia de un plásmido que contenía el fragmento deseado en las colonias bacterianas aisladas sencillas.
12. Conversión de una parte de la secuencia del gen de HBV con epitopos del núcleo de HBV
El plásmido resultante del apartado 11 anterior fue digerido con las endonucleasas BglII y XbaI. Se esperaban dos moléculas, un fragmento de 550 pb y un fragmento de 6,25 kb que se había aislado tras electroforesis en gel de agarosa.
El fragmento de 6,25 kb fue ligado al fragmento de 270 pb (tras la digestión con BglII y XbaI y aislamiento del fragmento como se ha descrito antes) del plásmido descrito en el apartado 10, que codifica para una parte del epitopo del gen del núcleo de HBV.
La mezcla de ligadura fue añadida a 150 \mul de suspensión celular de bacterias competentes para la absorción del ADN. Se rastreó la presencia del plásmido deseado en las colonias bacterianas aisladas sencillas. El nuevo plásmido fue comprobado mediante digestión con BamHI. Se esperaban tres moléculas, un fragmento de 950 pb, uno de 450 pb y uno de 5.150 pb.
13. Preparación de un plásmido "vehículo"
El plásmido (descrito en el apartado 11) fue digerido con EcoRI y XbaI. Se esperaban dos moléculas, un fragmento de 2.450 pb y un fragmento de 4.350 pb que había sido aislado tras electroforesis en gel.
Este fragmento de 4.350 pb fue ligado al oligo-nucleótido de ADN 39 (SEC ID Núm.:29) que codificaba para la secuencia de ADN completa del gen S de HBV desde ATG hasta el sitio XbaI, donde el ATG era cambiado por ATA.
14. Epitopo del núcleo aguas arriba del gen S de HBV completo
Este plásmido "vehículo" fue después digerido con PstI y XbaI, se esperaban dos moléculas, un resto del plásmido de 600 pb y un fragmento de 3.850 pb que fue aislado y ligado con un fragmento PstI-XbaI de 2.800 pb (2.700 pb) aislado tras la digestión del plásmido descrito en el apartado 10.
Tras rastrear el plásmido deseado, este fue caracterizado mediante digestión con las endonucleasas de restricción EcoRI y XbaI, EcoRI y BglII y BamHI.
15. Inserción de un marcador de selección
El plásmido (descrito en el apartado 14) fue linealizado con EcoRI. La reacción se llevó a cabo en un volumen total de 50 \mul y a una concentración final de 1 \mug/\mul de ADN plasmídico. Se añadieron 50 unidades de EcoRI y la digestión fue comprobada tras incubación a 37ºC durante tres horas mediante electroforesis en gel de agarosa.
La reacción se detuvo añadiendo 1 \mul de EDTA 0,5 M y el ADN fue precipitado con una concentración final de acetato de sodio 0,3 M y 3-4 volúmenes de etanol a -80ºC durante 30 minutos. El ADN precipitado fue disuelto en 50 \mul de agua destilada.
Se mezclaron 2 \mul del plásmido linealizado con 3 \mul del fragmento de ADN que contenía el promotor de la metalotioneína y el gen de selección de la neomicina (descrito en el apartado 4) y se ligaron entre sí. Se rastreó el plásmido deseado en las colonias bacterianas sencillas el cual fue aislado, purificado y caracterizado.
Cada constructo génico descrito antes puede ser construido también con el promotor de U2 con lo cual el fragmento de ADN que contiene el promotor de MT, tras la digestión con EcoRI y BglII, es reemplazado por un fragmento de ADN que contiene el promotor de U2 aislado tras la digestión con EcoRI y BglII.
16. Aislamiento del gen de selección de la xantina- guanina-fosforribosil transferasa de E. coli (egpt)
El fragmento que contenía el gen de selección egpt fue aislado tras la digestión del plásmido pMSG con BamHI y BglII (1,8 kb) y ligado con un fragmento de 4,5 kb (BglII-BamHI, descrito en el apartado 1) que contenía el promotor de MT.
Tras rastrear el plásmido deseado éste fue aislado, purificado y finalizado mediante una conversión del sitio BamHI en un sitio EcoRI.
17. Aislamiento de las secuencias de ADN deseadas mediante el método de la PCR
Se aisló un fragmento de ADN (400 pb) tras electroforesis en gel. Este fue generado mediante el método de la PCR (descrito en el Ejemplo 5) utilizando los oligonucleótidos específicos 131 y 132 (SEC ID Núm.:33 y 34) como cebadores.
El fragmento de ADN fue digerido con las endonucleasas BamHI y XbaI y purificado después mediante electroforesis en gel. El fragmento aislado mediante PCR fue ligado con un fragmento de 6,25 kb que había sido aislado del plásmido (descrito en el apartado 13) tras la digestión con BglII y XbaI. Tras la absorción de ADN y la transformación bacteriana se rastreó el plásmido deseado en las colonias bacterianas sencillas.
18. Inserción de un marcador de selección
El plásmido (descrito en el apartado 17) fue finalizado añadiendo un gen de selección al plásmido (descrito en el apartado 15).
19. Aislamiento del promotor H2K
El promotor H2K fue aislado en forma de un fragmento EcoRI y BglII (2kb) de pSP65H2 (asequible de Exogene).
En todos los constructos descritos todos los promotores son reemplazables como fragmentos EcoRI/BglII.
20. Conversión de una parte de la secuencia del gen de HBV
El plásmido resultante del apartado 11 anterior fue digerido con las endonucleasas BglII y XbaI. Se esperaban dos moléculas, una de las cuales es un fragmento de 6.250 kb que había sido aislado tras la electroforesis en gel de agarosa.
El fragmento de 6.250 kb fue ligado con el oligo-nucleótido de ADN 23 (SEC ID Núm.:28). La mezcla de ligadura fue añadida a 150 \mul de suspensión celular de bacterias competentes para la absorción del ADN. Se rastreó la presencia del plásmido deseado en las colonias bacterianas aisladas sencillas. El nuevo plásmido fue comprobado mediante digestión con las endonucleasas EcoRI y BglII. Se esperaban dos moléculas, una de 1,9 kb y una de 4.450 kb.
21. Inserción de un marcador de selección egpt
El plásmido (descrito en el apartado 20) fue linealizado con EcoRI. La reacción se realizó en un volumen total de 100 \mul y una concentración final de 0,6 \mug/\mul de ADN plasmídico. Se añadieron 60 unidades de EcoRI y la digestión se comprobó tras incubación a 37ºC durante tres horas mediante electroforesis en gel de agarosa. La reacción se detuvo añadiendo 2 \mul de EDTA 0,5 M y el ADN se hizo precipitar con una concentración final de acetato de sodio 0,3 M y 4 volúmenes de etanol a -80ºC durante 1 hora. El ADN precipitado se disolvió en 50 \mul de agua destilada.
Se mezclaron 2 \mul del plásmido linealizado con 3 \mul del fragmento de ADN (3,7 kb) que contenía el promotor de la metalotioneína y el gen de selección egpt (descrito en el apartado 16) mediante digestión con EcoRI y se ligaron entre sí. Se rastreó la presencia del plásmido deseado en las calles sencillas. Cada uno de los constructos génicos descritos en la Tabla III son preparables de la misma manera que se ha descrito antes.
Ejemplo 4 Transfección de Células de Mamíferos con Constructos de la Presente Invención
Con el fin de lograr la secreción de cantidades sustanciales de los péptidos de HBV codificados por los constructos de la presente invención, deben ser transfectadas células de mamífero con un constructo de ADN de la presente invención. La co-transfección se realizó en dos etapas (es decir una transfección separada para cada constructo) o en una sola etapa (es decir una transfección utilizando una preparación de ambos constructos). La co-transfección fue confirmada o bien mediante el uso de diferentes marcadores de selección sobre los dos constructos o bien mediante detección de la secreción de los productos de expresión de ambos constructos mediante inmunoanálisis.
Alternativamente, pudieron ser combinadas en un único constructo una secuencia que codificaba la secuencia peptídica del HBV de la presente invención y una secuencia separada que codificaba la proteína S o del núcleo o de HAV completa.
Ejemplo 5 Reacción en cadena de la polimerasa (PCR)
La reacción en cadena de la polimerasa permite amplificar secuencias nucleotídicas de ADN específicas de una región seleccionada de secuencia genómica conocida in vitro en más de un millón de veces (Thomas J. White, Norman Arnleim, Henry A. Erlich 1.989: The polymerase chainreaction. Technical Focus, Vol. 5. Núm. 6; S. Kwok y R. Higuchi 1.989: Avoiding false positives with PCR. Nature, Vol. 339, pág. 237-238).
El ADN aislado de células o el ADN de plásmidos es tratado para separar sus hebras complementarias. Estas hebras son después templadas con un exceso de dos oligonucleótidos de ADN (cada uno de una longitud de 20-25 pares de bases) que han sido sintetizados químicamente para emparejar secuencias separadas por X nucleótidos (donde X es generalmente entre 50 y 20.000 pares de bases).
Los dos oligonucleótidos sirven como cebadores específicos para la síntesis de ADN in vitro catalizada por ADN polimerasa que copia el ADN entre las secuencias correspondientes a los dos oligonucleótidos. Si los dos oligonucleótidos cebadores contienen la secuencia correcta es posible crear nuevos sitios de digestión en 5' y 3'.
Después de múltiples ciclos de reacción, se obtenía una gran cantidad de un fragmento de ADN de la longitud deseada, se purificaba mediante electroforesis en gel y se caracterizaba mediante digestión con enzimas de restricción y electroforesis en gel de agarosa. El fragmento de ADN purificado, amplificado era utilizado después para ligarlo con otros fragmentos es decir plásmidos.
Los fragmentos de ADN de la PCR eran amplificados con el extremo romo. Para obtener un extremo cohesivo (para el procedimiento de ligadura) el fragmento tiene que ser digerido con las endonucleasas deseadas y purificado de nuevo.
La reacción de la PCR funcionará durante 20 a 30 ciclos. Un ciclo se divide en tres etapas con diferentes tiempos de reacción y diferentes temperaturas de reacción que se controlan mediante un termo-ciclador de PCR. La primera etapa es la "Desnaturalización" del ADN matriz (1 min-95ºC), la segunda etapa es la "Hibridación" del ADN matriz y los cebadores (1 min/55ºC) seguida de la "Polimerización" (2 min/72ºC).
El volumen final para un análisis es de 30 \mul por ejemplo, que contiene las siguientes concentraciones finales: tampón de PCR (1 x), mezcla de nucleótidos con 200 \muM de cada uno de los cuatro nucleótidos, 200 ng para 30 \mul de cada uno de los dos cebadores, 0,5 unidades de Taq-Polymerase por 30 \mul de agua bidest.
Ejemplo 6 Cultivo de Células Transfectadas para Secretar la Proteína
Las células receptoras (células C127 o CHO asequibles de la ATTC) fueron sembradas en medio de crecimiento normal (DMEM + Suero Bovino Fetal al 10%, Glucosa y Glutamina) en placas de Petri (1-2 x 10^{6} células por placa, 10 cm de diámetro) el día 1. Al día siguiente se separó el medio (4 horas antes se añadió el precipitado de ADN a las células), y las células se lavaron dos veces con 1 x PBS. Después se añadieron 8 ml de DMEM sin FCS, 4 horas más tarde el precipitado de ADN (preparado como se describe más abajo) se añadió a las células. De nuevo al cabo de 4 horas se separó el medio, se añadieron 3 ml de Glycerol-Mix (50 ml x 2 tampón TBS, 30 ml de glicerol, 120 ml de agua destilada). El Glycerol-mix fue separado inmediatamente tras una incubación a 37ºC durante 3 minutos y las células se lavaron con 1 x PBS. Las células fueron cultivadas durante la noche con 8 ml de DMEM con FCS al 10%.
Al cabo de 48 horas, las células fueron recuperadas de la placa mediante tratamiento con Solución de Tripsina-EDTA (0,025% Tripsina + EDTA 1mM). Poco después, para separar la Tripsina-EDTA se lavaron las células con 1 x PBS, se suspendieron en DMEM con FCS al 10% y se distribuyeron en placas de 24 pocillos costar (células de una placa en cuatro placas de 24 pocillos).
Cuando las células habían crecido bien, se añadió medio de selección (concentración 0,5 - 1 mg/ml de neomicina o: xantina (250 \mug/ml), hipoxantina (15 \mug/ml) o adenina (25 \mug/ml), timidina (10 \mug/ml), aminopterina (2 \mug/ml), ácido micofenólico (25 \mug/ml) para eco-gpt, por ejemplo). El medió fue cambiado cada semana. Las primeras colonias celulares en crecimiento fueron observadas después de 2 semanas.
A 10 \mug de ADN plasmídico y 20 \mug de ADN portador (ADN de esperma de salmón, ADN de timo de ternera) se añadió tampón TE (Tris-HCl 10 mM, EDTA 1 mM, pH 7,05) hasta un volumen final de 440 \mul y se mezcló junto con 60 \mul de CaCl_{2} 2 M. Después se añadió la misma cantidad de 2 x TBS (Hepes 50 mM, NaCl 280 mM, NaHPO_{4} 1,5 mM, pH 7,05) y se mezcló bien. La solución de precipitación se incubó durante 30 minutos y se añadió directamente a las células que iban a ser transfectadas.
Ejemplo 7 Preparación del Coadyuvante de Partículas Purificadas
A la concentración deseada de antígeno suspendido en solución salina estéril, se añadieron 1 : 10.000 volúmenes de Thimerosol, 1/10 volúmenes de KAl(SO_{4})_{2}\diameter12 H_{2}O esterilizado por filtración. El pH se ajustó a 5,0 con NaOH 1 N estéril y la suspensión se agitó a la temperatura ambiente durante 3 horas. El antígeno precipitado con alum fue recuperado mediante centrifugación durante 10 minutos a 2.000 rpm, resuspendido en solución salina normal estéril que contenía Thimerosol 1:10.000 y se tomaron alícuotas en condiciones estériles.
Ejemplo 8 Purificación del Antígeno del Núcleo de la Hepatitis B
Se recogió el sobrenadante celular de las células secretoras de antígeno del núcleo de HB y se concentró por ultrafiltración. El producto concentrado se aclaró mediante centrifugación a 20.000 rpm durante 15 minutos a 4ºC en un rotor Beckman SW28.
La formación de partículas fue sometida a ensayo mediante centrifugación por densidad en sacarosa (sacarosa 0-45%) en un rotor Beckman SW28 durante 24 horas a 28.000 rpm y a 4ºC. El gradiente fue fraccionado y las fracciones sencillas fueron analizadas mediante Elisa.
Ejemplo 9
Las siguientes tablas dan algunos resultados del análisis de ELISA de partículas inmunogénicas de la presente invención como se describe más abajo:
La Tabla IV muestra los datos de Elisa de la partícula de antígeno de HBs purificada producida a partir de cualquier constructo de secuencia de HBV de la presente invención incluyendo los epitopos de pre-S1 y la región S con el anticuerpo monoclonal anti-pre-S1 MA 18/7 y el anticuerpo monoclonal anti-HBs GO22.
La Tabla IV muestra las fracciones (21) recogidas después del gradiente de densidad en CsCl.
TABLA IV-1
11
TABLA IV-2
12
13
La Tabla V muestra los datos de Elisa de las partículas de antígeno del núcleo de HB purificadas producidas a partir de cualquier constructo de la secuencia del núcleo de HB de la presente invención con anticuerpos policlonales contra al núcleo de HB y con anticuerpo monoclonal GO22 contra HB-S-Ag.
TABLA V-1
14
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TABLA V-2
15
16
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Ejemplo 10 Estudios de administración de Hepa-Care en chimpancés
Hepa-Care son partículas que presentan antígenos de superficie de la hepatitis B (S1 y S) en una formulación específica (proporción 50:50), que se utilizan para el tratamiento de portadores crónicos del virus de la hepatitis.
Experimento 1
Un chimpancé 1 portador de hepatitis B fue tratado (intramuscularmente) con Hepa-Care a 0, 4, y 8 semanas de tiempo con una dosificación de 18 \mug por inyección.
Se registraron las enzimas de hígado (Fig IV) así como el nivel de antígeno de hepatitis B (Fig. V).
\newpage
Experimento 2
Se administró al chimpancé 1 tras el tratamiento descrito antes un tratamiento de refuerzo a las 30, 34, y 38 semanas. Los resultados se muestran en la Fig. VI.
Experimento 3
Se trató el chimpancé 2 con Hepa-Care, pero al contrario que al chimpancé 1 se le administró intravenosamente. La dosificación fue de 2 mg. Los resultados se muestran en la Fig. VII.
Asimismo se registraron las enzimas del hígado de un chimpancé de control 3 y se muestra en la Fig. VIII.
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Ejemplo 11 Tratamiento con Hepa-Care: (para la definición ver el Ejemplo 10)
El paciente 1 (macho, edad = 65 años, enfermedad durante 2 años):
\vskip1.000000\baselineskip
300
fue tratado (i.m.) con Hepa-Care a 0, 1, 6, y 7 meses. Los resultados de las mediciones de antígeno y anticuerpo se dan en la Fig. IX y X.
El paciente 2 (hembra edad = 48 años, enfermedad durante 12 años):
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301
fue tratado (i.m.) con Hepa-Care a 0, 1, y 6 meses. Los resultados de las mediciones de antígeno y anticuerpo se dan en la Fig. XI y XII.
El paciente 3 (hembra, edad = 41 años, enfermedad durante 5 años):
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302
fue tratado a 0, 1, 2, y 5 meses (i.m.) con Hepa-Care. Los valores medidos de antígeno HBs y anticuerpos anti-HBs se muestran en la Fig. XIII y XIV.
SEC ID NUM: 1
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52

Claims (19)

1. Un procedimiento para la producción de una composición para el tratamiento de la hepatitis crónica causado por el virus de la hepatitis B, cuyo procedimiento comprende combinar
a) al menos una secuencia polipeptídica que tiene uno o más epitopos activadores de las células T antigénicas del virus de la hepatitis B y
b) un portador susceptible de presentar la secuencia o secuencias del epitopo a), donde la secuencia o secuencias polipeptídicas a) se unen a un portador b) mediante un enlace covalente o hidrofóbico.
2. Un procedimiento según la reivindicación 1, donde dicha secuencia o secuencias polipeptídicas a) son la secuencia de aminoácidos de uno o más miembros seleccionados entre los péptidos pre-S1, pre-S2 y S virales de HB y los antígenos del núcleo de HB.
3. Un procedimiento según la reivindicación 1, donde dicha secuencia o secuencias polipeptídicas a) son un polipéptido del virus de la hepatitis B modificado:
i) por tener deleciones arbitrarias, con lo cual se conserva un epitopo que comprende al menos seis restos aminoácido consecutivos,
ii) por tener sustituciones de uno o varios aminoácidos, o
iii) por llevar una secuencia de aminoácidos adicional en su extremo N, en su extremo C o en forma de inserción.
4. Un procedimiento según la reivindicación 3, donde dicha secuencia polipeptídica a) es la secuencia de aminoácidos de uno o más miembros seleccionados entre los péptidos pre-S1, pre-S2 y S virales de HB y los antígenos del núcleo de HB, modificados como se define en la reivindicación 3.
5. Un procedimiento según una cualquiera de las reivindicaciones anteriores, donde dicha secuencia o secuencias polipeptídicas a) están miristiladas.
6. Un procedimiento según una cualquiera de las reivindicaciones anteriores, donde dicha secuencia o secuencias polipeptídicas a) están producidas mediante la expresión de una molécula de ADN recombinante.
7. Un procedimiento según una cualquiera de las reivindicaciones anteriores, donde dicho portador b) es un polisacárido, un polímero hidrofóbico o una molécula inorgánica que tiene forma de partícula.
8. Un procedimiento según una cualquiera de las reivindicaciones 1 a 6, donde dicho portador b) es una segunda secuencia polipeptídica.
9. Un procedimiento según la reivindicación 8, donde dicha secuencia polipeptídica b) tras la secreción forma partículas que tienen un diámetro de al menos 10 nm.
10. Un procedimiento según la reivindicación 8 o 9, donde dicha secuencia polipeptídica b) es una parte sustancial o una secuencia de aminoácidos completa de un polipéptido seleccionado entre el péptido S de HBV; los antígenos del núcleo de HBV, del núcleo de HAV y del núcleo de HIV; y los antígenos de superficie del virus de la polio, HAV o HIV.
11. Un procedimiento según la reivindicación 8 o 9, donde dicha secuencia polipeptídica b) es una parte sustancial o una secuencia de aminoácidos completa de un polipéptido seleccionado entre el péptido S de HBV; los antígenos del núcleo de HBV, del núcleo de HAV y del núcleo de HIV; y los antígenos de superficie del virus de la polio, HAV o HIV modificados
i) por tener deleciones arbitrarias, con lo cual se conserva la capacidad formadora de partículas,
ii) por tener sustituciones de uno o varios aminoácidos, o
iii) por llevar una secuencia de aminoácidos adicional en su extremo N, en su extremo C o en forma de inserción.
12. Un procedimiento según una cualquiera de las reivindicaciones 8 a 11, donde dicha secuencia polipeptídica b) está miristilada.
13. Un procedimiento según una cualquiera de las reivindicaciones 8 a 12, donde dicha secuencia polipeptídica b) está producida mediante la expresión de una molécula de ADN recombinante.
\newpage
14. Un procedimiento según una cualquiera de las reivindicaciones 8 a 13, donde dichas secuencias polipeptídicas a) y b) están enlazadas vía puentes disulfuro.
15. Un procedimiento según una cualquiera de las reivindicaciones 8 a 13, donde dichas secuencias polipeptídicas a) y b) están enlazadas vía "anclaje hidrofóbico" (mediado por ácido mirístico).
16. Un procedimiento según una cualquiera de las reivindicaciones 8 a 13, donde dichas secuencias polipeptídicas a) y b) están enlazadas mediante un enlace peptídico, donde opcionalmente se inserta una secuencia espaciadora entre la secuencia o secuencias polipeptídicas a) y la secuencia polipeptídica b), estando enlazada dicha secuencia espaciadora vía enlaces peptídicos a las secuencias polipeptídicas a) y b).
17. Un procedimiento según la reivindicación 16, donde dicha secuencia o secuencias polipeptídicas a) y dicha secuencia polipeptídica b) han sido producidas mediante la expresión a partir de la misma molécula de ADN recombinante en la cual las secuencias están codificadas en tándem.
18. Un procedimiento según la reivindicación 17, donde dicha secuencia o secuencias polipeptídicas a) y dicha secuencia polipeptídica b) son expresadas a partir de un marco de lectura abierto sencillo sobre dicha molécula de ADN y están opcionalmente separadas por una secuencia polipeptídica espaciadora también codificada en el marco de lectura abierto sencillo.
19. Un procedimiento según una cualquiera de las reivindicaciones anteriores, donde dicha composición es para la administración mediante inyección intravenosa o intramuscular.
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