DK172936B1 - Fremgangsmåde til samtidig fremstilling af lymphocytosefremkaldende faktor (LPF), filamentøst hæmagglutinin (FHA) og mindst - Google Patents

Fremgangsmåde til samtidig fremstilling af lymphocytosefremkaldende faktor (LPF), filamentøst hæmagglutinin (FHA) og mindst Download PDF

Info

Publication number
DK172936B1
DK172936B1 DK198700272A DK27287A DK172936B1 DK 172936 B1 DK172936 B1 DK 172936B1 DK 198700272 A DK198700272 A DK 198700272A DK 27287 A DK27287 A DK 27287A DK 172936 B1 DK172936 B1 DK 172936B1
Authority
DK
Denmark
Prior art keywords
lpf
fha
agglutinogens
fimbrial
fraction
Prior art date
Application number
DK198700272A
Other languages
English (en)
Other versions
DK27287A (da
DK27287D0 (da
Inventor
Andrew Robinson
Lawrence Ian Irons
Original Assignee
Microbiological Res Authority
Priority date (The priority date is an assumption and is not a legal conclusion. Google has not performed a legal analysis and makes no representation as to the accuracy of the date listed.)
Filing date
Publication date
Application filed by Microbiological Res Authority filed Critical Microbiological Res Authority
Publication of DK27287D0 publication Critical patent/DK27287D0/da
Publication of DK27287A publication Critical patent/DK27287A/da
Application granted granted Critical
Publication of DK172936B1 publication Critical patent/DK172936B1/da

Links

Classifications

    • CCHEMISTRY; METALLURGY
    • C07ORGANIC CHEMISTRY
    • C07KPEPTIDES
    • C07K14/00Peptides having more than 20 amino acids; Gastrins; Somatostatins; Melanotropins; Derivatives thereof
    • C07K14/195Peptides having more than 20 amino acids; Gastrins; Somatostatins; Melanotropins; Derivatives thereof from bacteria
    • C07K14/235Peptides having more than 20 amino acids; Gastrins; Somatostatins; Melanotropins; Derivatives thereof from bacteria from Bordetella (G)
    • AHUMAN NECESSITIES
    • A61MEDICAL OR VETERINARY SCIENCE; HYGIENE
    • A61PSPECIFIC THERAPEUTIC ACTIVITY OF CHEMICAL COMPOUNDS OR MEDICINAL PREPARATIONS
    • A61P31/00Antiinfectives, i.e. antibiotics, antiseptics, chemotherapeutics
    • A61P31/04Antibacterial agents
    • AHUMAN NECESSITIES
    • A61MEDICAL OR VETERINARY SCIENCE; HYGIENE
    • A61KPREPARATIONS FOR MEDICAL, DENTAL OR TOILETRY PURPOSES
    • A61K39/00Medicinal preparations containing antigens or antibodies
    • A61K39/02Bacterial antigens
    • A61K2039/10Brucella; Bordetella, e.g. Bordetella pertussis; Not used, see subgroups
    • AHUMAN NECESSITIES
    • A61MEDICAL OR VETERINARY SCIENCE; HYGIENE
    • A61KPREPARATIONS FOR MEDICAL, DENTAL OR TOILETRY PURPOSES
    • A61K39/00Medicinal preparations containing antigens or antibodies
    • YGENERAL TAGGING OF NEW TECHNOLOGICAL DEVELOPMENTS; GENERAL TAGGING OF CROSS-SECTIONAL TECHNOLOGIES SPANNING OVER SEVERAL SECTIONS OF THE IPC; TECHNICAL SUBJECTS COVERED BY FORMER USPC CROSS-REFERENCE ART COLLECTIONS [XRACs] AND DIGESTS
    • Y10TECHNICAL SUBJECTS COVERED BY FORMER USPC
    • Y10STECHNICAL SUBJECTS COVERED BY FORMER USPC CROSS-REFERENCE ART COLLECTIONS [XRACs] AND DIGESTS
    • Y10S530/00Chemistry: natural resins or derivatives; peptides or proteins; lignins or reaction products thereof
    • Y10S530/82Proteins from microorganisms
    • Y10S530/825Bacteria

Landscapes

  • Chemical & Material Sciences (AREA)
  • Health & Medical Sciences (AREA)
  • Organic Chemistry (AREA)
  • General Health & Medical Sciences (AREA)
  • Medicinal Chemistry (AREA)
  • Life Sciences & Earth Sciences (AREA)
  • Gastroenterology & Hepatology (AREA)
  • Proteomics, Peptides & Aminoacids (AREA)
  • Molecular Biology (AREA)
  • Genetics & Genomics (AREA)
  • Biophysics (AREA)
  • Biochemistry (AREA)
  • Pharmacology & Pharmacy (AREA)
  • Public Health (AREA)
  • Veterinary Medicine (AREA)
  • Communicable Diseases (AREA)
  • Animal Behavior & Ethology (AREA)
  • Chemical Kinetics & Catalysis (AREA)
  • Oncology (AREA)
  • Nuclear Medicine, Radiotherapy & Molecular Imaging (AREA)
  • General Chemical & Material Sciences (AREA)
  • Medicines Containing Antibodies Or Antigens For Use As Internal Diagnostic Agents (AREA)
  • Peptides Or Proteins (AREA)
  • Preparation Of Compounds By Using Micro-Organisms (AREA)

Description

i DK 172936 B1
Opfindelsen angår en fremgangsmåde til samtidig fremstilling af lymphocytose-fremkaldende faktor (LPF), filamentøst hæmagglutinin (FHA) og mindst et fimbrielt agglutinogen ud fra en flydende kultur af Bordetella 5 pertussis til anvendelse ved fremstilling af vacciner mod infektioner med Bordetella pertussis.
Hidtil har det været gjort udstrakt anvendelse af vacciner med dræbte hele Bordetella pertussis celler til bekæmpelse af pertussis, uheldige reaktioner overfor 10 helcellevacciner og den resulterende dårlige offentlige accept af disse vacciner har ført til udførelse af en betydelig forskning i et forsøg på at fremstille en mere sikker acellulær vaccine indeholdende isolerede pertus-sisantigener.
15 Tre bestemte antigenfraktioner betragtes som væ rende nyttige komponenter af acellulære vacciner, nemlig {1) lymphocytosefremkaldende faktor (LPF), (2) filamentøst hæmagglutinin (FHA) og (3) fimbrielle ag-glutinogener (fimbriae).
20 Agglutinogenerne betegnet "agglutinogen 2 og 3" er indbefattet i antigenklassen betegnet fraktionen (3), dvs. de fimbrielle agglutinogener. (Agglutinogenerne 2 og 3 kan også betegnes "Ag2+3")· Aggutinogenerne 2 og 3 kan betragtes som bestående af fimbriae isoleret fra or-25 ganismer, der besidder 1 det mindste agglutinogen 2- og 3-antigener. (Agglutinogen 3 betegnes "agglutinogen 6" af visse forskere, og det er muligt at agglutinogen 3 og agglutinogen 6 er det samme).
Skønt der findes fremgangsmåder til isolation af 30 disse fraktioner i lille skala, har ingen producenter hidtil været i stand til at fremstille alle tre fraktioner separat og effektivt ud fra Bordetella pertussis kulturer. I EP-A-0003916 beskrives der f.eks. en frem- 2 DK 172936 B1 gangsmåde til opnåelse af lymphocytosefremkaldende faktor (LPF) ved at udsætte et flydende præparat opnået ud fra Bordetella pertussis-celler for affinitetschromato-grafi ved anvendelse af et sialo-protein som stationær 5 fase. Det flydende præparat, som anvendtes, opnåedes Imidlertid ud fra en homogeniseret cellepasta, og skønt de beskrevne fremgangsmåder er effektive til fremstil-< ling af LPF, angår dette patentskrift ikke den særskilte isolation af filamentøst haemagglutinin (FHA) og agglu-10 tinogen 2 og 3 (Ag 2+3)·
Der er også foreslået fremgangsmåder til opnåelse af lymphocytosefremkaldende faktor (LPF) og filamentøst haemagglutinin (FHA) ud fra kultursupernatanten af Bordetella pertussis. Sato et al (Infection and Immuni-^ 15 ty, juli 1983, Vol 41, s. 313-320 ) beskriver f.eks.
i oprensningen af LPF og FHA fra kultursupernatanter ved differentialadsorption på en hydroxyapatit kolonne.
: Disse tidligere skrifter angår imidlertid ikke j den samtidige fremstilling af alle de tre komponenter, 1 20 lymphocytosefremkallende faktor (LPF), filamentøst haemagglutinin (FHA) og fimbrielle agglutinogener.
" Til fremstilling af vaccinepræparater omfattende i alle disse tre antigenfraktioner ville det være ønske- aj ligt at opnå de tre ønskede fraktioner i sammenlignelige 25 udbytter, idet det kan være hensigtsmæssigt at fraktio-
J
« nerne er tilstede I omtrent lige store mængder i den I endelige vaccine.
.!
Ifølge den foreliggende opfindelse tilvejebringes en fremgangsmåde til samtidig fremstilling af 30 lymphocytose fremkaldende faktor (LPF), filamentøs hæmagglutinin (FHA) og mindst et fimbrielt agglutinogen ud fra en flydende Bordetella pertussis-kultur, omfattende, at man 3 DK 172936 B1 (a) skiller kulturen i celle- og supernatant-fraktioner, (b) koncentrerer supernatantfraktionen til mindre end 50%, 5 (c) fraktionerer den koncentrerede supernatant- fraktion til isolering af LPF- og FHA-holdige fraktioner, og (d) isolerer mindst et fimbrielt agglutinogen fra cellefraktionen.
10 I trin (d) isoleres fortrinsvis fimbrielle agglu- tinogener indeholdende i det mindste agglutinogenerne 2 og 3 (Ag2+3) fra cellefraktionen. De isolerede aggluti-nogener kan eventuelt desuden indeholde et eller flere af agglutinogenerne 4, 5 og 6.
15 Ifølge opfindelsen tilvejebringes der også en fremgangsmåde til fremstilling af en vaccine indeholdende lymphocytosefremkaldende faktor (LPF), filamentøst hæmagglutinin (FHA) og mindst et fimbrielt agglutinogen, omfattende at man blander (i) LPF, (ii) FHA og 20 (iii) mindst et fimbrielt agglutinogen, hvilket LPF, FHA og fimbrielle agglutinogen fremstilles ved trinnene (a) til (d) beskrevet ovenfor og detoxificeres inden eller efter blandingen. De fimbrielle agglutinogener indeholder fortrinsvis i det mindste agglutinogenerne 2 og 25 3 <AG2+3). De fimbrielle agglutinogener kan også inde holde mindst en af agglutinogenerne 4, 5 og 6.
Ved Isolation af LPF, FHA og i det mindste et fimbrielt agglutinogen ifølge opfindelsen er det mulig't at opnå disse komponenter ud fra en enkelt flydende kul-30 tur i udbytter, der muliggør kombination af disse komponenter igen i terapeutisk effektive mængder i vaccinepræparater.
Ved udførelse af fremgangsmåden ifølge opfindelsen koncentreres supernatantfraktionen som tidligere 4 DK 172936 B1 angivet inden udførelse af fraktioneringstrinnet (c), og det har overraskende vist sig, at uacceptable tab af FHA kan undgås ved udførelse af denne sekvens af trin, dvs. ved udførelse af koncentreringstrinnet (b) efter 5 fraskillelse af supernatantfraktionen fra cellefraktionen .
; Separationen af kulturen i celle- og supernatant- fraktioner udføres fortrinsvis ved centrifugering, mens kulturens pH-værdi er større end 7,0, fortrinsvis ved 10 en pH-værdi større end eller lig 8,0. Kulturens pH- værdi er helst i området fra 7,5-9,0.
Efter centrifugering koncentreres supernatantfraktionen fortrinsvis til reduktion af dens volumen til mindre end 50%, fortrinsvis mindre end 25% af det op-15 rindelige volumen. Koncentreringen kan hensigtsmæssigt udføres ved en vilkårlig sædvanlig afvandingsmetode, f.eks. ved Pellicon-koncentrering. Efter koncentreringstrinnet og inden fraktioneringen af supernatanten i LPH- og FHA-holdige fraktioner udsættes supernatanten 20 fortrinsvis for membranfiltrering til fjernelse af alle resterende organismer. Fraktioneringstrinnet (c) kan dernæst hensigtsmæssigt udføres ved at bringe supernatanten i kontakt med hydroxyapatit, f.eks. i en kolonne, hvorved en FHA-holdig fraktion tilbageholdes, og 25 et eluat omfattende en LPF-holdig fraktion kan opsamles.
Den LPF-holdige fraktion kan renses ved sædvanlige proteinfraktioneringsteknikker, f.eks. ved udfældning af proteinmateriale ved stigende saltkoncentration, f.eks. ved anvendelse af ammoniumsulfat, efterfulgt af 30 ekstraktion af bundfaldet ved anvendelse af en egnet jj buffer. Ekstraktet kan dernæst dialyseres, og den såle- _ des opnåede dialyserede LPF-holdige opløsning kan renses yderligere til fjernelse af andre proteiner og lipo- DK 172936 B1 * 5 polysaccharid, f.eks. ved fremgangsmåden beskrevet I EP-A-0003916.
Den dialyserede LPF-holdige opløsning kan således f.eks. påføres en fetuin-sepharosekolonne, og tilbage-5 holdt LPF kan elueres ved anvendelse af en magnesium-chloridbuffer.
Den således rensede LPF-holdige fraktione kan dernæst dialysers igen, filtreres og derefter udsættes for en detoxificeringsbehandling.
10 Rensning af den FHA-holdige fraktion kan opnås ved eluering af fraktionen fra hydroxyapatitadsorben-ten ved envendelse af puffere med stigende ionstyrke efterfulgt af sædvanlige proteinrensningstrin, herunder f.eks. udfældning ved høje saltkoncentrationer og chro-15 matografi. Endelig kan de rensede FHA-holdige fraktioner udsættes for membranfiltrering og derefter et detoxifi-ceringstrin.
Til isolation af fimbrielle agglutinogener, f.eks. agglutinogenerne 2 og 3 (Ag2+3), fra cellefrak-20 tionen bliver cellerne fortrinsvis vasket og dernæst homogeniseret i en passende buffer. Efter centrifugering kan supernatanten dernæst renses ved sædvanlige proteinrensningsmetoder til isolation af en fraktion indeholdende fimbrielle agglutinogener. En fraktion, der inde-25 holder fimbrielle agglutinogener kan således f.eks. udfældes ved stigende ionstyrke af opløsningen efterfulgt af en eller flere ekstraktioner med buffer, genudfældninger og dialyse. Endelig kan den rensede fraktion indeholdende fimbrielt agglutinogen membranfiltreres og 30 dernæst detoxificeres.
Om ønsket kan lipopolysaccharidindholdet af fraktionen af det fimbrielle agglutinogen reduceres ved affinitetschromatografi, f.eks. på en polymyxin-sepharose 4B kolonne.
6 DK 172936 B1
Detoxificesringstrinnerne udføres fortrinsvis ved behandling af de LPF-, FHA- og fimbrielle agglutinogen-holdige fraktioner enkeltvis eller sammen med et sædvanligt toxoideringsmiddel, som f.eks. formaldehyd.
5 Til fremstilling af vaccinepræparater ud fra de LPF-, FHA- og fimbrielle agglutinogenfraktioner, kan disse fraktioner kombineres i terapeutisk effektive mængder og formuleres til dosisenheder, der f.eks. indeholder mindst 1-5, fortrinsvis mindst 2 yg af hver kom-10 ponent per enhedsdosis.
Sædvanlige vækstmedier kan anvendes til fremstil-= ling af den flydende Bordetella pertussis-kultur, der anvendes som udgangsmateriale ved fremgangsmåden ifølge opfindelsen. Til fremstilling af kommercielt rentable 15 udbytter af FHA har det vist sig at være ønskeligt at anvende Stainer and Scholte's medium, indeholdende J 2-6 mg/ml dimethyl-B-cyclodextrin (MeCD), især 1 ryste- - kulturer eller omrørte fermentorer. Dyrkning af den sam lede kultur kan hensigtsmæssigt udføres i 1 liters 20 Thompson-flasker, indeholdende 300 ml medium, eller i 10 liters fermentorer. En egnet stamme af Bordetella pertussis er Wellcome 28-stammen, der er af 1.2.3-sero-typen. Ander stammer af 1.2.3-serotypen, der giver tilstrækkelige antigenudbytter kan anvendes. Fremstillingen 25 af lymphocytosefremkaldende faktor -(LPF), filamentøst hæmagglutinin (FHA) og agglutinogenerne 2 og 3 (Ag2+3) vil i det følgende blive belyst nærmere ved hjælp af s» et eksempel.
30 Eksempel
En kultur af Bordetella pertussis fremstilledes som følger:
En frysetørret ampul med B. pertussis, stamme Wellcome 28, åbnedes, indholdet dispergeredes i sterilt 7 DK 172936 B1 vand og afpipetteredes over på en trækuls-agarplade indeholdende 10% defibrineret hesteblod. Efter inkubation ved 35°C i 48 timer dyrkedes organismerne videre på flere trækuls-agarplader, som inkuberedes ved 35eC i 48 5 timer.
Organismerne skrabedes dernæst ned i adskillige 250 ml's koniske kolber indeholdende 100 ml Stainer and Scholte's medium tilsat 1% casaminosyrer og 1 mg MeCD/ml. Kolberne blev rystet orbitalt (180 omdr./min) i 10 24 timer ved 35°C, hvorefter 5-10 ml overførtes til hver af 60 Thompson-flasker, indeholdende 300 ml medium.
Flaskerne blev rystet på en skånsom frem og tilbagegående ryster ved 35°C i 48 timer inden flaskernes Indhold hældtes sammen og inden høst.
15 Den resulterende flydende kultur af Bordetella pertussis centrifugeredes i en Sorvall RC3B centrifuge i en time ved 5000 omdr./min.. Supernatanten dekanteredes fra, og cellerne blev opbevaret ved 4eC til fældning af agglutinogenerne 2 og 3 (Ag2+3>.
20 Supernatanten koncentreredes ved anvendelse af et
Millipore Pellicon apparat forsynet med et filter med en molekylvægt-cut-off-værdi på 10.000. 18 liter superna tant koncentreredes til en volumen på ca. 4 liter. Koncentratet sterilfiltreredes dernæst gennem et Gelman 25 o,2 ym polysulfon-minikapselfilter.
1. Oprensning af filamentøst hæmagglutinin (FHA).
Oprensning af det filamentøse hæmagglutinin (FHA) fra kultursupernatanten opnåedes ved de følgende 30 trin efter hinanden; hydroxyapatitchromatografi, ammoniumsulfatfældning og Sepharose CL-6B-chromatografi.
8 DK 172936 B1 A. Hydroxyapatitchromatografi .
400 g sfærisk hydroxyapatit (BDH Chemical Ltd) suspenderedes i 500 ml 0,1M NaOH. Man lod pulveret bundfælde i ca. 20 min. ved stuetemperatur og den oversky-5 dende væske dekanteredes fra. Vaskningen med natriumhydroxid blev gentaget to gange og efterfulgt af gentagen vaskning med destilleret vand indtil eluatets pH-værdi var ca. 8,0.
Det vaskede pulver suspenderedes i 500 ml 0,01M 10 phosphatbuffer, og efter 20 min. dekanteredes bufferen fra. Vaskningen med phosphatbufferen blev gentaget tre gange.
Det vaskede hydroxyapatit pakkedes i en chromato-grafisk kolonne, ækvilibreret med 0,01M phosphatbuffer 15 ved pH 8,0.
Kolonnen blev dernæst forbundet til et reservoir - indeholdende den koncentrerede supernatant, som pumpedes gennem kolonnen med en strømningshastighed på ca. 500 ml/time ved hjælp af en peristaltisk pumpe. Eluatet gem-20 tes til isolation af LPF (se nedenfor).
Den tilbageholdte FHA-fraktion elueredes fra kolonnen ved succesiv vaskning med (i) 0,01M phosphat- ϋϋ buffer med pH 8, (ii) 0,1M phosphatbuffer med pH B og (iii) 0,1M phosphat-0,5M natriumchloridbuffer med pH 25 ¢,5. Under den sidste vaskning opsamledes 17 8 ml's fraktioner, og den optiske tæthed ved 2 80 mm for hver fraktion registreredes. Desuden testedes hæmagglutina-tiorisaktiviteten af forskellige fraktioner ved anvendelse af frisk vaskede gedeerythrocyter. Fraktioner med en I 30 hæmagglutinationstiter (log 2) større end eller lig 7 hældtes sammen. En afbildning af elueringen er vist i fig. 1.
' “C
9 DK 172936 B1 B. Ammonliumsulfatfældning.
FHA blev fældet fra de sammenhældte fraktioner ved tilsætning af ammoniumsulfat til opnåelse af en 30% mættet opløsning og dernæst centrifugering. Supernatan-5 ten dekanteredes fra og kasseredes, og bundfaldet opløstes i 0,05M phosphat-0,5M natriumchloridbuffer ved pH
7,2 og dialyseredes mod den samme buffer. Den dialyserede suspension centrifugeredes, og supernatanten bevaredes til efterfølgende oprensning.
10 C. Sepharose CL-6B-chromatografi.
Supernatanten chromatograferedes dernæst på Sepharose CL-6B-gel, som i forvejen var ækvilibrert med o,05M phosphat-0,5M natriumchloridbuffer med pH 7,2.
15 FHA'et blev dernæst elueret fra kolonnen ved an vendelse af 0,05M phosphat-0,5M natriumchloridbuffer med pH 7,2, og 80 5 ml's fraktioner opsamledes. Eluatfrak-tionerne måltes for proteinindhold og hæmagglutinations-aktivitet på samme måde som beskrevet ovenfor, og frak-20 tioner med en hæmagglutinationstiter større end eller lig med 7 hældtes sammen. En afbildning af elueringen er vist i fig. 2.
2. Oprensning af LPF.
25 Eluatet fra hydroxyapatitchromatograferings- 35 trinnet behandledes dernæst til udvinding af LPF.
A. Ammoniumsulfatfældning.
Ved et indledende trin blev urent LPF fældet ved 30 tilsætning af ammoniumsulfat til opnåelse af en 74% mættet opløsning. Den resulterende suspension centrifugeredes, og supernatanten kasseredes. Bundfaldet resuspende-redes i 0,05M phosphat-0,05M natriumchloridbuf fer ved pH
7,2. Suspensionen centrifugeredes dernæst ved 15.000 35 omdr./min. og supernatanten opsamledes. Produktet ek-straheredes yderligere 4 gange ved anvendelse af samme buffer, og de resulterende supernatanter haldtes sammen.
10 DK 172936 B1 B. Fetuin-sepharosechromatografi.
De sanunenhældte supernatanter dialyseredes dernæst med 0,05M phosphat-0,05M natriumchloridbuffer med , pH 7,2 og chromatograferedes dernæst på en fetuin- 5 sepharosegel, som var forækviljbreret i 0,05M phosphat-0,05M natriumchloridbuffer med pH 7,2. Kolonne vaskedes dernæst med den samme buffer, og eluatet kasseredes.
En renset LPF-holdig fraktion elueredes dernæst fra kolonnen ved anvendelse af 7,6mM tris-0,013M
10 natriumchlorid/3M magnesiumchloridbuffer med pH 6,4, og 30 50-dråbers fraktioner opsamledes.
Fraktioner med en hæmagglutinatiostiter større end eller lig 7 opsamledes og dialyseredes mod 2 liter 0,05M tris HCL, 1M NaCl-buffer med pH 8,0. De LPF-15 holdige fraktioner blev dernæst dialyseret igen ved anvendelse af 0,05M phosphat-0,5M natriumchloridbuffer a med pH 7,2, og den resulterende rensede LPF-holdige fraktion opsamledes.
20 3, Fremstilling af agglutinogenerne 2 of 3 (Ag2+3)·
Den centrifugerede cellefraktion vaskedes ved η anvendelse af sterielt, pyrogenfrit, destilleret vand, I centrifugeredes og homogeniseredes dernæst ved an- _ vendelse af 0,014M phosphat-0,14M natriumchloridbuffer 25 med pH 7,2. Den homogeniserede bakteriesuspension cen trifugeredes dernæst ved 9000 omdr./min. til fjernelse ^ af .bakterieceller, og supernatanten, der indeholdt Bor- ^etella pertussis fimbrae opsamledes. Ammoniumsulfat sattes til supernatanten til opnåelse af en slut-30 koncentration på 30%'s mætning, og suspensionen op- bevaredes ved 4°C natten over til fældning af fimbrielle proteiner. Efter centrifugering ved 9000 omdr./min. kas-seredes supernatanten, og pillen ekstraheredes ved anvendelse af forkølet phosphatbuffer. Suspensionen cen-35 trifugeredes ved 15.000 omdr./min., og supernatanten I« sam 1i DK 172936 B1 opsamledes. Ekstraktionen blev gentaget 4 gange, og de resulterende supernatanter blev hældt sammen.
Ammoniumsulfat sattes til de sammenhældte supernatanter til opnåelse af en slutkoncentration på 15% 5 mætning, og den resulterende suspension opbevaredes natten over ved 4°C til fældning af fimbrielle proteiner.
Suspensionen centrifugeredes ved 15.000 omdr./min., og supernatanten kastedes bort.
Pillen ekstraheredes med phosphatbuffer og cen-10 trifugeredes ved 15.000 omdr./min.. Supernatanten opsamledes, ekstraktionen blev gentaget 4 gange og de resulterende supernatanter blev hældt sammen.
Ammoniumsulfat sattes til de sammenhældte supernatanter til opnåelse af en slutkoncentration på 15% 15 mætning, og den resulterende suspension opbevaredes natten over ved 4eC til fældning af fimbrielle proteiner. Suspensionen centrifugeredes ved 15.000 omdr./min. og supernatanten kastedes bort. (Yderligere ammonium-sulfatfældninger kan om nødvendigt anvendes).
20
Pillen ekstraheredes med phosphatbuffer og centrifugeredes ved 15.000 omdr./min.. Supernatanten opsamledes, og ekstraktionen blev gentaget 4 gange, og de resulterende supernatanter blev hældt sammen.
De sammenhældte supernatanter dialyseredes mod 2 5 phosphatbuffer og membranfiltreredes.
4.-Detoxificering.
Alle antigener filtreredes gennem en Millex GV 30 0,22 μιη filterenhed. LPF-præparatet fortyndedes til en slutproteinkoncentration på 200 pg/ml ved anvendelse af 0,05M phosphat-0,5M natriumchloridbuffer med pH 7,2.
En 40%'s formaldehydopløsning tilsattes til opnåelse af en slutkoncentration af formaldehyd på 0,5%. Den LPF-35 holdige fraktion inkuberedes dernæst ved 37°C i 14 dage, idet indholdet blev vendt mindst en gang hver anden dag til dispergering af eventuelt dannet bundfald.
T
12 DK 172936 B1
Den resulterende detoxificerede LPF-fraktion dialyseredes dernæst mod PBS-buffer indeholdende 0,01% formaldehyd og 0,01% thiomersal og dekanteredes over i en beholder til opbevaring, idet man sikrede sig, at alt 5 fældet materiale var overført.
En lignende detoxificeringsmetode anvendtes til FHA-fraktionen og agglutinogen 2 og 3 (Ag2+3)- frektionen, bortset fra at inkubationen ved 37°C varede i 7 dage.
10 De detoxifiserede antigener i PBS, Indeholdende 0,01% formaldehyd og 0,01% thiomersal, blandedes i lige store mængder og fortyndedes med sterilt vand, 4 x koncenteret PBS, indeholdende 0,04% formaldehyd og 0,04% thiomersal, og alhydogel. Den resulterende vaccine, i 15 isotonisk PBS, indeholder 120 pg protein/ml, 25% alhy- drogel, 0,01% formaldehyd og 0,01% thiomersal. Som et alternativt adjuvans til alhydrogel, kan aluminiumphos-phat (tilsat som aluminiumchlorid) anvendes. Vaccinen kan fortyndes yderligere med PBS, diptheria- og tetanus-20 toxoider og alhydrogel til opnåelse af en koncentration af pertussis antigener på 60 pg/ml.
De følgende udbytter af FHA, LPF og agglutinoge-1 nerne 2 og 3 (AG2+3) opnåedes fra 18 liter kultur: FHA - 190 mg 25 LPF - 50 mg agglutinogenerne 2 og 3 (Ag2+3) - 50 mg.

Claims (9)

13 DK 172936 B1 PATENT' KRAV
1. Fremgangsmåde til samtidig fremstilling af lymphocytose-fremkaldende faktor (LPF), filamentøst hæ-magglutinin (FHA) og mindst et fimbrielt agglutinogen ud fra en flydende kultur af Bordetella pertussis, k e n -5 detegnet ved, at man (a) skiller kulturen i celle- og supernatant-fraktioner, (b) koncentrerer supernatantfraktionen til mindre end 50% 10 (c) fraktionerer den koncentrerede supernatant- fraktion til isolation af LPF- og FHA-holdige fraktioner, og (d) isolerer mindst et fimbrielt agglutinogen fra cellefraktionen.
2. Fremgangsmåde ifølge krav l, kendeteg net ved, at de fimbrielle agglutinogener isoleret i trin (d) omfatter mindst et af agglutinogenerne 2, 3, 4, 5 og 6.
3. Fremgangsmåde ifølge krav i, kendeteg- 20 net ved, at de fimbrielle agglutinogener isoleret i trin (d) omfatter i det mindste agglutinogenerne 2 og 3 (Ag2+3)·
4. Fremgangsmåde ifølge krav 3, kendetegnet ved, at de isolerede agglutinogener desuden inde- 25 holder et eller flere af agglutinogenerne 4, 5 og 6.
5. Fremgangsmåde ifølge et vilkårligt af de foregående krav, kendetegnet ved, at separationstrinnet (a) udføres ved en pH-værdi, der er større end 7,0.
6. Fremgangsmåde ifølge krav 5, kendeteg net ved, at separationstrinnet (a) udføres ved en pH-værdi i området fra 7,5-9,0. 14 DK 172936 B1 j
‘ 7. Fremgangsmåde ifølge et vilkårligt af de fore gående krav, .kendete g'net ved, at super-natanten i trin (b) koncentreres til mindre end 50%, I fortrinsvis mindre end 25% af dens oprindelige volumen. ! 5
8. Fremgangsmåde ifølge et vilkårligt af de fore- : gående krav, kendetegnet ved, at den LPF- holdige fraktion i trin (c) renses ved adsorption på fetuin-sepharose efterfulgt af eluering ved anvendelse : af magnesiumchloridbuffer. - 10
9. Fremgangsmåde til fremstilling af et vaccine- _ præparat indeholdende lymphocytosefremkaldende faktor (LPF), filamentøst hæmagglutinin (FHA) og mindst et fimbrielt agglutinogen, kendetegnet ved, at den omfatter at man blander (i) LPF, (ii) FHA og (i il) 15 mindst et fimbrielt agglutinogen, fremstillet ifølge et vilkårligt af kravene 1-8, og at LPF'et, FHA'et og det/de fimbrielle agglutinogener detoxificeres inden eller efter blandingen. ϋϋ Ί
DK198700272A 1986-01-20 1987-01-19 Fremgangsmåde til samtidig fremstilling af lymphocytosefremkaldende faktor (LPF), filamentøst hæmagglutinin (FHA) og mindst DK172936B1 (da)

Applications Claiming Priority (2)

Application Number Priority Date Filing Date Title
GB868601279A GB8601279D0 (en) 1986-01-20 1986-01-20 Purification of pertussis antigens
GB8601279 1986-01-20

Publications (3)

Publication Number Publication Date
DK27287D0 DK27287D0 (da) 1987-01-19
DK27287A DK27287A (da) 1987-07-21
DK172936B1 true DK172936B1 (da) 1999-10-11

Family

ID=10591636

Family Applications (1)

Application Number Title Priority Date Filing Date
DK198700272A DK172936B1 (da) 1986-01-20 1987-01-19 Fremgangsmåde til samtidig fremstilling af lymphocytosefremkaldende faktor (LPF), filamentøst hæmagglutinin (FHA) og mindst

Country Status (11)

Country Link
US (1) US4784589A (da)
EP (1) EP0231083B1 (da)
JP (1) JP2538224B2 (da)
KR (1) KR950010323B1 (da)
CN (1) CN1028206C (da)
AT (1) ATE92335T1 (da)
AU (1) AU592727B2 (da)
CA (1) CA1280693C (da)
DE (1) DE3786806T2 (da)
DK (1) DK172936B1 (da)
GB (1) GB8601279D0 (da)

Families Citing this family (16)

* Cited by examiner, † Cited by third party
Publication number Priority date Publication date Assignee Title
CA1337859C (en) * 1987-04-24 1996-01-02 Masashi Chazono Method for culturing bordetella pertussis, a pertussis toxoid and a pertussis vaccine
GB8807860D0 (en) * 1988-04-05 1988-05-05 Connaught Lab Pertussis vaccine
CA1341123C (en) * 1988-10-27 2000-10-17 David A. Relman Filamentous hemagglutinin of b. pertussis
JP2706792B2 (ja) * 1988-11-29 1998-01-28 財団法人化学及血清療法研究所 百日咳毒素のトキソイド化法
GB8910570D0 (en) * 1989-05-08 1989-06-21 Wellcome Found Acellular vaccine
US5391715A (en) * 1989-11-06 1995-02-21 Smithkline Beecham Biologicals Method for isolating and purifying bordetella pertussis antigenic factors
ATE134194T1 (de) 1989-11-06 1996-02-15 Smithkline Beecham Biolog Verfahren
ATE129159T1 (de) * 1990-02-12 1995-11-15 Smithkline Beecham Biolog Impfstoff.
EP0484621A3 (en) * 1990-07-11 1992-08-26 American Cyanamid Company Efficacious vaccines against bordetella pertussis comprising a combination of individually purified pertussis antigens
US5445817A (en) * 1992-08-21 1995-08-29 The United States Of America As Represented By The Department Of Health And Human Services Pertussis toxin used as a carrier protein with non-charged saccharides in conjugate vaccines
ATE183194T1 (de) * 1994-04-28 1999-08-15 Takeda Chemical Industries Ltd Verfahren zur trennung von protektiven verbindungen aus bordetella pertussis
DK0824358T3 (da) * 1995-05-04 2003-01-27 Aventis Pasteur Acellulære pertussisvacciner og fremgangsmåder til fremstilling deraf
US7091311B2 (en) * 1996-06-07 2006-08-15 Smithkline Beecham Corporation Peptides and compounds that bind to a receptor
NZ566812A (en) 2002-09-18 2009-07-31 Ortho Mcneil Pharm Inc Methods of increasing platelet and hematopoietic stem cell production
ES2597832T3 (es) 2013-03-08 2017-01-23 Janssen Vaccines & Prevention B.V. Vacuna acelular contra la tosferina
CN110358802B (zh) * 2019-08-16 2021-06-18 长春百克生物科技股份公司 一种去除百日咳组分菌毛蛋白2/3内毒素的方法

Family Cites Families (8)

* Cited by examiner, † Cited by third party
Publication number Priority date Publication date Assignee Title
US4247452A (en) * 1978-03-01 1981-01-27 The Secretary Of State For Defence In Her Britannic Majesty's Government Of The United Kingdom Of Great Britain And Northern Ireland Purification of pertussis haemagglutinins
JPS5750925A (en) * 1980-09-12 1982-03-25 Takeda Chem Ind Ltd Preparation of pertussis toxoid
US4474758A (en) * 1981-11-19 1984-10-02 American Cyanamid Company Haemophilus influenzae type b and pertussis outer membrane component combined vaccine
HU188847B (en) * 1983-02-22 1986-05-28 Human Oltoanyagtermeloe Es Kutato Intezet,Hu Process for producing liophylized combined vaccines
CA1213234A (en) * 1983-03-30 1986-10-28 Akihiro Ginnaga Method for the production of ha fraction containing protective antigens of bordetella pertussis and pertussis vaccine
US4551429A (en) * 1983-09-15 1985-11-05 American Home Products Corporation Stimulation of antigen production by Bordetella pertussis
JPS6098988A (ja) * 1983-11-01 1985-06-01 Chemo Sero Therapeut Res Inst Lpf−haの精製法
AU571078B2 (en) * 1984-04-14 1988-03-31 Juridical Foundation The Chemo-Sero-Therapeutic Research Institute Purification of filamentous hemagglutinin

Also Published As

Publication number Publication date
JP2538224B2 (ja) 1996-09-25
DK27287A (da) 1987-07-21
CN1028206C (zh) 1995-04-19
DE3786806D1 (de) 1993-09-09
KR950010323B1 (ko) 1995-09-14
DK27287D0 (da) 1987-01-19
EP0231083A3 (en) 1988-06-08
ATE92335T1 (de) 1993-08-15
EP0231083A2 (en) 1987-08-05
KR870006902A (ko) 1987-08-13
JPS62234031A (ja) 1987-10-14
EP0231083B1 (en) 1993-08-04
AU592727B2 (en) 1990-01-18
CN87100399A (zh) 1987-09-09
CA1280693C (en) 1991-02-26
US4784589A (en) 1988-11-15
DE3786806T2 (de) 1993-12-09
AU6766487A (en) 1987-07-23
GB8601279D0 (en) 1986-02-26

Similar Documents

Publication Publication Date Title
DK172936B1 (da) Fremgangsmåde til samtidig fremstilling af lymphocytosefremkaldende faktor (LPF), filamentøst hæmagglutinin (FHA) og mindst
DK165358C (da) Renset Bordetella pertussis antigen, vaccine indeholdende et sådant antigen og fremgangsmåde til isolering af et sådant ant
US5444159A (en) Purification of a pertussis outer membrane protein
JPH03191789A (ja) 百日咳菌からの69000ダルトンの抗原性タンパク質の精製方法
KR940004541B1 (ko) 트레포네마 히오디센테리아 박테린의 제조방법
US4220638A (en) Antigenic complex from N. Gonorrhoeae
JPH0834742B2 (ja) 百日せき内毒素の除去法,百日せきトキソイドおよびその製造法
CN103242434B (zh) 无细胞百日咳疫苗的制备方法
CN104311647A (zh) 一种分离纯化百日咳毒素和丝状血凝素的方法
US4288557A (en) Antigenic complex from N. gonorrhoeae
US6106842A (en) Extraction of cell-bound protein from bordetella
RU2041716C1 (ru) Способ получения миелопида
EP0002645B1 (en) Antigenic complex from neisseria gonorrhoeae, process and vaccine
US6444211B2 (en) Purification of a pertussis outer membrane protein
CA2224052C (en) Pertussis outer membrane protein
US20010051163A1 (en) Purification of a pertussis outer membrane protein
NO171147B (no) Fremgangsmaate for fremstilling av en vaksine mot hepatittb
JPS60218326A (ja) 線維状赤血球凝集素の精製方法

Legal Events

Date Code Title Description
B1 Patent granted (law 1993)
PUP Patent expired