DK165358C - Renset Bordetella pertussis antigen, vaccine indeholdende et sådant antigen og fremgangsmåde til isolering af et sådant ant - Google Patents

Renset Bordetella pertussis antigen, vaccine indeholdende et sådant antigen og fremgangsmåde til isolering af et sådant ant Download PDF

Info

Publication number
DK165358C
DK165358C DK198502089A DK208985A DK165358C DK 165358 C DK165358 C DK 165358C DK 198502089 A DK198502089 A DK 198502089A DK 208985 A DK208985 A DK 208985A DK 165358 C DK165358 C DK 165358C
Authority
DK
Denmark
Prior art keywords
antigen
vaccine
pertussis
amino acid
supernatant
Prior art date
Application number
DK198502089A
Other languages
English (en)
Other versions
DK208985D0 (da
DK208985A (da
DK165358B (da
Inventor
Pavel Novotny
Original Assignee
Evans Medical Ltd
Priority date (The priority date is an assumption and is not a legal conclusion. Google has not performed a legal analysis and makes no representation as to the accuracy of the date listed.)
Filing date
Publication date
Family has litigation
First worldwide family litigation filed litigation Critical https://patents.darts-ip.com/?family=10560891&utm_source=google_patent&utm_medium=platform_link&utm_campaign=public_patent_search&patent=DK165358(C) "Global patent litigation dataset” by Darts-ip is licensed under a Creative Commons Attribution 4.0 International License.
Application filed by Evans Medical Ltd filed Critical Evans Medical Ltd
Publication of DK208985D0 publication Critical patent/DK208985D0/da
Publication of DK208985A publication Critical patent/DK208985A/da
Publication of DK165358B publication Critical patent/DK165358B/da
Application granted granted Critical
Publication of DK165358C publication Critical patent/DK165358C/da

Links

Classifications

    • CCHEMISTRY; METALLURGY
    • C07ORGANIC CHEMISTRY
    • C07KPEPTIDES
    • C07K14/00Peptides having more than 20 amino acids; Gastrins; Somatostatins; Melanotropins; Derivatives thereof
    • C07K14/195Peptides having more than 20 amino acids; Gastrins; Somatostatins; Melanotropins; Derivatives thereof from bacteria
    • C07K14/235Peptides having more than 20 amino acids; Gastrins; Somatostatins; Melanotropins; Derivatives thereof from bacteria from Bordetella (G)
    • AHUMAN NECESSITIES
    • A61MEDICAL OR VETERINARY SCIENCE; HYGIENE
    • A61PSPECIFIC THERAPEUTIC ACTIVITY OF CHEMICAL COMPOUNDS OR MEDICINAL PREPARATIONS
    • A61P31/00Antiinfectives, i.e. antibiotics, antiseptics, chemotherapeutics
    • AHUMAN NECESSITIES
    • A61MEDICAL OR VETERINARY SCIENCE; HYGIENE
    • A61PSPECIFIC THERAPEUTIC ACTIVITY OF CHEMICAL COMPOUNDS OR MEDICINAL PREPARATIONS
    • A61P31/00Antiinfectives, i.e. antibiotics, antiseptics, chemotherapeutics
    • A61P31/04Antibacterial agents
    • CCHEMISTRY; METALLURGY
    • C12BIOCHEMISTRY; BEER; SPIRITS; WINE; VINEGAR; MICROBIOLOGY; ENZYMOLOGY; MUTATION OR GENETIC ENGINEERING
    • C12NMICROORGANISMS OR ENZYMES; COMPOSITIONS THEREOF; PROPAGATING, PRESERVING, OR MAINTAINING MICROORGANISMS; MUTATION OR GENETIC ENGINEERING; CULTURE MEDIA
    • C12N9/00Enzymes; Proenzymes; Compositions thereof; Processes for preparing, activating, inhibiting, separating or purifying enzymes
    • C12N9/88Lyases (4.)
    • AHUMAN NECESSITIES
    • A61MEDICAL OR VETERINARY SCIENCE; HYGIENE
    • A61KPREPARATIONS FOR MEDICAL, DENTAL OR TOILETRY PURPOSES
    • A61K39/00Medicinal preparations containing antigens or antibodies
    • YGENERAL TAGGING OF NEW TECHNOLOGICAL DEVELOPMENTS; GENERAL TAGGING OF CROSS-SECTIONAL TECHNOLOGIES SPANNING OVER SEVERAL SECTIONS OF THE IPC; TECHNICAL SUBJECTS COVERED BY FORMER USPC CROSS-REFERENCE ART COLLECTIONS [XRACs] AND DIGESTS
    • Y10TECHNICAL SUBJECTS COVERED BY FORMER USPC
    • Y10STECHNICAL SUBJECTS COVERED BY FORMER USPC CROSS-REFERENCE ART COLLECTIONS [XRACs] AND DIGESTS
    • Y10S530/00Chemistry: natural resins or derivatives; peptides or proteins; lignins or reaction products thereof
    • Y10S530/806Antigenic peptides or proteins
    • YGENERAL TAGGING OF NEW TECHNOLOGICAL DEVELOPMENTS; GENERAL TAGGING OF CROSS-SECTIONAL TECHNOLOGIES SPANNING OVER SEVERAL SECTIONS OF THE IPC; TECHNICAL SUBJECTS COVERED BY FORMER USPC CROSS-REFERENCE ART COLLECTIONS [XRACs] AND DIGESTS
    • Y10TECHNICAL SUBJECTS COVERED BY FORMER USPC
    • Y10STECHNICAL SUBJECTS COVERED BY FORMER USPC CROSS-REFERENCE ART COLLECTIONS [XRACs] AND DIGESTS
    • Y10S530/00Chemistry: natural resins or derivatives; peptides or proteins; lignins or reaction products thereof
    • Y10S530/82Proteins from microorganisms
    • Y10S530/825Bacteria

Description

i
iDK 165358 C
Den foreliggende opfindelse angår et renset Bordetella pertussis antigen, en vaccine indeholdende et sådant antigen og en fremgangsmåde til isolering af et sådant antigen, samt anvendelse af antigenet til 5 fremstilling af en vaccine.
Bordetella pertussis forårsager en alvorlig og svækkende sygdom hos mennesker, idet børn er særlig modtagelige, hvilken sygdom holdes under kontrol i de udviklede lande ved hjælp af stort anlagte immuniserings-lOprogrammer. Det har vist sig, at immunisering er en meget vigtig faktor ved begrænsningen af sygdommen, og at undladelse af at vaccinere kan føre til forøget forekomst af sygdommen. Praktisk taget alle steder fremkaldes immunisering ved anvendelse af helcelle B. pertus-I5sis-vaccine, der har vist sig at være forholdsvis effektiv til forhindring af sygdommen. Man har imidlertid erkendt, at helcellevacciner kan have adskillige ulemper. Således optræder der f.eks. hos ca. l ud af hver 10.000 vaccinerede børn kliniske symptomer, som kan omfatte 20feber, lokale reaktioner og vedvarende skrigen. Endvidere vil det vise sig, at nogle batche af helcellevaccine overhovedet ikke giver nogen beskyttelse, medens de stadig indebærer muligheden for uønskede bivirkninger.
Med den for nærværende ringe forekomst af sygdom-25men i udviklede lande med immuniseringsprogrammer er nytte/risiko-forholdet dårligt defineret, og mange klinikere mener, at risiciene ved vaccinering vejer tungere end de fordele, der opnås ved immunisering. Som følge heraf vaccineres mange børn ikke, og der er derfor en 30alvorlig risiko for en pandemi af kighoste. En betydelig forskningsindsats er derfor blevet rettet mod udviklingen af forbedrede pertussis-vacciner og navnlig acellulære vacciner, der ikke indeholder de komponenter, som er forbundet med de toxiske virkninger af de hidtil an-35vendte helcellevacciner, medens de indeholder de komponenter, der er nødvendige til beskyttelse mod sygdommen.
2
2DK 165358 C
Eftersøgningen efter en sikrere, effektiv, acellulær B. pertussis-vaccine er tidligere blevet vanske-liggjort af knapheden på oplysninger vedrørende identiteten og virkningsmekanismerne af de patogene, toxiske 5 og beskyttende dele af i helcellevacciner indeholdt B. pertussis. Arbejdet har derfor koncentreret sig om at isolere og rense de 20 eller flere overfladeantigener hos B. pertussis-organismen og karakterisere deres evne til at fremkalde immunreaktioner (se f.eks. J. Am. Med. 10 Soc., 248 (1) 22-23). Som eksempler på antigener, der er blevet foreslået til undersøgelse, kan der nævnes lym-focytosis-fremmende faktor (pertussis toxin/LPF), filamentformet hæmagglutinin (FHA), lipopolysaccharid (LPS), agglutinogener, dermonekrotisk toxin (DNT), varmelabile 15 og varmestabile toxiner, polymorfonukleær leukocyt-inhi-bitorfaktor, adenylat-cyclase og andre overfladekomponenter (Pertussis Vaccine Workshop, 11. februar 1982, Bureau of Biologics, U.S.A.). Af andre til undersøgelse foreslåede antigener kan der nævnes trachealt cytotoxin 20 og forskellige ydre membran-proteiner.
En tidlig ekstraktvaccine udvikledes af L. Pille-mer (Proc. Soc. Exp. Biol. Med. (1950) 75, 704-705), hvilken vaccine var baseret på sprængte B. pertussis-celler og viste sig at give beskyttelse, men ikke vandt 25 indpas kommercielt som følge af præparatets toxicitet.
Som eksempler på senere B. pertussis-ekstraktvac-ciner, der er blevet foreslået, kan der nævnes de i britisk patentbeskrivelse nr. 2.083.358A (Takeda) beskrevne, der indebærer fjernelse af endotoxin fra kultur-su-30 pernatanter; de i fransk patentskrift nr. 2.047.886 (Institut Merrieux) beskrevne, der indebærer ekstraktion af en mikrobesuspension med et anionisk overfladeaktivt middel; og de i japansk patentbeskrivelse nr. 58-222032 (Teijin) beskrevne, der omfatter et underenheds-protein 35 baseret på pertussis-toxin (LPF).
Meget af det arbejde, der er udført på acellulære pertussis-vacciner, koncentrerer sig om muligheden for 3
3DK 165358 C
at basere en sådan vaccine på LPF. Det antages imidlertid, at de fleste af (om ikke alle) de hidtil observerede ugunstige virkninger, der forbindes med pertussis-vaccination, står i forbindelse med toxinet. I kombina-5 tion med tetanus- eller difteri-toxoid og LPS er det i stand til at fremkalde eksperimentel encephalopati hos modtagelige mus (L. Steinman et al., Nature (1982) 299 , 738-740; Redhead et al., Workshop on B. pertussis, Nat. Inst. of Biol. Standards & Controls, Holy Hiil, Hamp-10 stead, London, 1983). LPF kan således muligvis være ansvarligt for hjerneskader, hvis sådanne komplikationer optræder efter vaccination.
Det har nu vist sig, at et vist proteinmateriale, der er forbundet med adenylat-cyclase-aktivitet som be-15 skrevet i det følgende, og som findes i kulturer af B. pertussis, er i stand til at give beskyttelse mod angreb af B. pertussis, når det administreres til forsøgsdyr. Denne erkendelse, at det med adenylat-cyclase-aktivitet sædvanligvis forbundne proteinmateriale er et vigtigt 20 beskyttende antigen mod B. pertussis, muliggør fremstillingen af vaccineformuleringer omfattende antigene præparater, der er fri for, eller indeholder reducerede mængder af, andre kendte B. pertussis-komponenter, der kan være ansvarlige for de toxiske bivirkninger, som 25 helcellevacciner udviser.
Udtrykket "med adenylat-cyclase-aktivitet forbundet proteinmateriale" (i det følgende forkortet til "ACAP") anvendes heri som betegnelse for proteinmateriale, der ekstraheres sammen med adenylat-cyclase-aktivi-30 tet, når ekstraktionen af adenylat-cyclase-aktiviteten udføres under anvendelse af en vandig, sur (pH 3) opløsning af glycin (0,25 M). Adenylat-cyclase-aktiviteten bestemtes ved den metode, der er beskrevet af Hewlett, E., og Wolff, J. (J. Bacteriol. (1976) 127, 890-898).
Ifølge den foreliggende opfindelse tilvejebringes der et renset Bordetalle pertussis antigen, som eks- 35 4
4DK 165358 C
traheres sammen med adenylat-cyclase-aktivitet, når ekstraktion af aktiviteten udføres under anvendelse af en vandig, pH 3 opløsning af 0,25 M glycin, hvilket antigen er ejendommeligt ved følgende træk: 5 en relativ molekylvægt på 67.000-73.000 som bestemt ved 12% (vægt/vægt) polyacrylamidgel-elektroforese og et forhold mellem prolin og glutaminsyre på i det væsentlige 1:1 som bestemt ved aminosyreanalyse, hvorhos antigenet er i det væsentlige fri for intracel-io lulært B. pertussis materiale.
Antigenet kan yderligere karakteriseres ved at have følgende aminosyresammensætning:
Rester 15 Asparaginsyre (+asparagin) 48 Threonin 33 Serin 33 Glutaminsyre (+glutamin) 62 Prolin 60 20 Glycin 77 Alanin 82 Valin 54 Methionin 4 Isoleucin 22 25 Leucin 50 Tyrosin 7 Phenylalanin 11 Histidin 13 Lys in 19 30 Arginin 37
Aminosyreanalyse har desuden vist, at ACAP indeholder en usædvanlig høj andel af prolin, således at prolin:glutaminsyre-forholdet er ca. 1:1, og dette ka- 35 5
5DK 165358 C
rakteristiske træk tjener til at skelne ACAP fra andre B. pertussis-proteiner. Et yderligere karakteristisk kendemærke for ACAP er den omstændighed, at det ikke kan påvises ved radio-iodering af dets tyrosinrester hverken 5 ved chloramin-T- eller iodogen-metoden.
Antigenet ifølge den foreliggende opfindelse kan desuden karakteriseres ved at have et isoelektrisk punkt på 4,5-6,0 under analytiske isoelektriske betingelser under anvendelse af en agarosegel i nærværelse af 10% 10 sorbitol. Antigenet kan karakteriseres ved at være syre-labilt under en pH-værdi på ca. 3.
ACAP1et i de ovennævnte præparater har almindeligvis en relativ molekylvægt på ca. 67.000 til 73.000, især 69.000, og et isoelektrisk punkt på 7,0-7,4 under 15 præparative betingelser som beskrevet nedenfor. Med "relativ molekylvægt" menes den tilsyneladende molekylvægt som bestemt ved 12% (vægt/vægt) polyacrylamidgel-elektroforese og standardmolekylvægtmarkører. Molekylvægten for de antigene proteiner ifølge opfindelsen kan 20 således bekvemt bestemmes ved de metoder, der er beskrevet af U. K. Laemmli, Nature, 1970, 227, 680-685. Af passende standardmolekylvægtmarkører kan der f.eks. nævnes okseserumalbumin, chymotrypsinogen A og ribonuclease.
Nærmere angivet kan ACAP'et påvises ved isoelek-25 trisk fokusering som to bånd, det ene med et isoelektrisk punkt (pi) på ca. 7,0, det andet (diffuse) bånd med et isoelektrisk punkt på 7,2-7,4. Adenylat-cyclase-aktiviteten var næsten fuldstændig forbundet med det neutrale bånd (pi = 7,0), men monoklonale antistoffer 30 mod ACAP bandt begge bånd stærkt.
Sammenfattende kan det anføres som foretrukket, at det ovennævnte ACAP er et proteinmateriale, der er karakteriseret ved at have en eller flere af følgende egenskaber: 6
6DK 165358 C
(i) et forhold mellem prolin og glutaminsyre på i det væsentlige 1:1, (ii) tyrosinresterne er ikke ioderbare, (iii) det er i det væsentlige fri for intracel- 5 lulært B. pertussis-materiale, (iv) en relativ molekylvægt på 67.000 til 73.000, (v) et isoelektrisk punkt på 7,0 til 7,4, og (vi) det er syrelabilt under en pH-værdi på ca. 3.
Ifølge opfindelsen tilvejebringes der desuden en 10 vaccine som angivet i krav 2 og 3-6.
Opfindelsen angår desuden et antigen ifølge opfindelsen til anvendelse til terapi eller profyakse hos mennesker.
Opfindelsen angår endvidere en fremgangsmåde til 15 isolering af antigenet ifølge opfindelsen, hvilken fremgangsmåde er ejendommelig ved, at man behandler en kultur af B. pertussis-celler med en vandig aminosyre-puffer med pH 3,0-3,5 og indeholdende en hypertonisk koncentration af nævnte aminosyre med hensyn til 20 cellerne, skiller cellerne fra den fremkomne superna-tant og isolerer antigenet fra supernatanten.
i
Hensigtsmæssige udførelsesformer for fremgangsmåden ifølge opfindelsen er anført i krav 9-12.
Baseret på den foreliggende opfindelse kan der 25 tilvejebringes en vaccineformulering til beskyttelse mod B. pertussis, hvilken formulering omfatter $t antigen ifølge opfindelsen, der eventuelt er toxoideret f. eks. under anvendelse af formalin, glutaraldehyd eller β-propiolacton, sammen med en farmaceutisk 30 acceptabel' bærer herfor.
Den ovennævnte vaccineformulering kan om ønsket indeholde mindre mængder end andre antigene forbindelser, foruden ACAP'et, f.eks. materialer opnået sammen med det fra B. pertussis-organismen ekstraherede ACAP.
35 Sådanne materialer kan omfatte fragmenter af LPS og 7
7DK 165358 C
LPF, der som følge af deres mulige skadelige bivirkninger kræver toxoidering, f.eks. med formalin. Antigenet er imidlertid fortrinsvis i det væsentlige fri for andre antigene komponenter.
5 Den ved den overfor beskrevne fremgangsmåde til isolering af antigenet anvendte puffer giver fortrinsvis en pH-værdi på ca. 3 og indeholder fordelagtigt en minralsyre, fortrinsvis saltsyre, som den sure komponent i pufferen og enten glycin 10 eller alanin som aminosyren. Behandlingen af cellerne med pufferen foretages fortrinsvis ved en temperatur på 5 til 50°C, fortrinsvis 30 til 45°C, ideelt 37°C, fordelagtigt i 1 til 24 timer, fortrinsvis 10 til 20 15 timer, med en aminosyrekoncentration på 0,1-lM, fortrinsvis 0,25M. ACAP'et er syrelabilt og kan ødelægges, hvis pH-værdien falder til under 3 under ekstraktionen.
Efter inkubering af cellerne med pufferen bortkastes cellerne, og supernatanten, der opnås efter cen-20 trifugering, f.eks. ved ca. 100.000 g (til fjernelse af alt partikelformet materiale), underkastes om ønsket precipitation, f.eks. under anvendelse af ammoniumsulfat, koldt ethanol eller acetone.
Den opnåede supernatant-ekstrakt afprøvedes ved 25 Kendrick-testen, som beskrevet nedenfor, og viste sig at give beskyttelse hos mus mod intracerebrale angreb af B. pertussis. Kontrolvacciner, der ikke indeholdt adenylat-cyclase-aktivitet, viste sig at give kun ringe eller ingen beskyttelse mod angreb af B. pertussis, hvilket ty-30. der på, at ACAP faktisk kan være den vigtigste faktor med hensyn til immunitet. Analyse af batcher af ikke-be-skyttende helcellevaccine har desuden vist, at ikke-be- 8
8DK 165358 C
skyttelse viser tilbøjelighed til at være forbundet med manglende tilstedeværelse af adenylat-cyclase-aktivitet, hvilket yderligere tyder på, at ACAP kan være det nøgleantigen, der er nødvendigt til fremkaldelse af en immun-5 respons mod B. pertussis.
Den ved Kendrick-testen anvendte supernatant-eks-trakt kan imidlertid også indeholde ACAP'et i små mængder i kompleksforbindelse med andre proteiner, herunder fragmenter af LPS, i hvilke tilfælde det kan være ønske-10 ligt at rense materialet til anvendelse i vaccineformuleringerne ifølge opfindelsen yderligere. Således kan yderligere rensning f.eks. foretages ved ionbytnings-chromatografi og/eller ved præparativ isoelektro-fokusering til eliminering af som kompleksforbindelser fore-15 liggende materiale. Alternativt kan de to rensningsmetoder kombineres, dvs. det materiale, der ikke tilbageholdes af DEAE-gelen (dvs. det ikke-komplekserede materiale), kan underkastes elektrofokusering. Rensningsmetoden kan også omfatte chromatofokusering. Efter de ovenfor 20 beskrevne rensningstrin kan ACAP'et om ønsket renses yderligere, f.eks. ved at passere materialet gennem en immunosorbenskolonne indeholdende .et passende monoklo-nalt antistof mod ACAP'et.
Det ovenfor beskrevne antigen, herunder 25 det ved den ovenfor beskrevne fremgangsmåde ifølge opfindelsen fremstillede, kan inkorporeres i en vaccineformulering til fremkaldelse af immunitet mod kighoste hos mennesker. En vaccine ifølge den foreliggende opfindelse omfatter derfor et antigen ifølge opfindelsen i 30 blanding med en farmaceutisk acceptabel bærer.
Farmaceutisk acceptable bærere er i dette tilfælde flydende medier, der er egnede til anvendelse som vehikler til indføring af antigenet i patienten. Et eksempel på en sådan bærer er saltopløsning. Det antigene 35 protein kan være i opløsning eller suspenderet som et fast stof i bæreren.
9
9DK 165358 C
Vaccineformuleringen kan også indeholde et adju-vans til stimulering af immunresponsen og dermed forøgelse af virkningen af vaccinen. Passende adjuvanser til anvendelse ved den foreliggende opfindelse omfatter 5 f.eks. aluminiumhydroxid og aluminiumphosphat.
vaccineformuleringerne præsenteres passende således, at de indeholder en slutkoncentration af antigent protein i området fra 0,01 til 5 mg/ml, fortrinsvis 0,03 til 2 mg/ml, mest foretrukket 0,3 mg/ml. Efter formule-10 ring kan vaccinen inkorporeres i en steril beholder, som derefter lukkes tæt til og opbevares ved lav temperatur, f.eks. 4°C, eller den kan frysetørres.
Til fremkaldelse af immunitet hos mennesker mod kighoste kan der administreres en eller flere doser af 15 den passende formulerede vaccine. Det anbefales, at hver dosis er 0,1 til 2 ml, fortrinsvis 0,2 til 1 ml, mest foretrukket 0,5 ml vaccine.
Den foreliggende opfindelse omfatter også anvendelsen af et antigen ifølge opfindelsen til fremstilling 20 af en vaccine til anvendelse ved fremkaldelsen af immunitet mod kighoste hos mennesker.
Vaccinerne ifølge den foreliggende opfindelse kan administreres ved en vilkårlig konventionel fremgangsmåde til administrering af vacciner, herunder oral ind-25 givelse og parenteral (f.eks. subkutan eller intramu-skulær) injektion. Behandlingen kan bestå i en enkelt dosis vaccine eller flere doser over et vist tidsrum.
Vacciner ifølge den foreliggende opfindelse kan også omfatte en eller flere andre antigener, f.eks. pas-30 sende toxoiderede typhoid- og difteri-toxiner, eller andre B. pertussis-antigener, såsom toxoideret LPP, til formindskelse af sandsynligheden for at mutantstammer af B. pertussis undgår den ledsagende immunrespons.
Opfindelsen belyses nærmere ved hjælp af de ef-35 terfølgende eksempler.
10
10DK 165358 C
Eksempel 1
Sur glycln-hydrolyse og fremstilling af rå ydre-membran-proteiner.
5 Cellerne høstedes efter 3/4 af vejen gennem den eksponentielle fase og centrifugeredes ved 8000 g (Sor-vall, GSA vinkelhoved) i 20 minutter ved 4°C. Superna-tanten fjernedes ved hjælp af en hævert, og cellerne blev straks forsigtigt resuspenderet i destilleret vand 10 til en densitet på 20-30 mg/ml celletørvægt. En tredjedel af dette volumen af 1M glycin-HCl-puffer, pH 3,0, tilsattes under forsigtig omrøring til opnåelse af en slutkoncentration på 250 mM glycin. Glycinopløsningen indeholdt EDTA {til opnåelse af 5 mM i den endelige 15 blanding) til standsning af enzymatisk aktivitet. pH-Værdien kontrolleredes og genindstilledes om nødvendigt til pH 3,0 under anvendelse af 1-2 M HCl. Blandingen om-rørtes forsigtigt i et 37°C vandbad, indtil der var opnået temperaturligevægt, og inkuberedes derefter natten 20 over {18 timer) ved 37eC (uden omrøring). pH-Værdien indstilledes derefter på 7,2-7,4 ved anvendelse af 10M NaOH, der tilsattes langsomt for at undgå lokalt overskud. Cellerne sedimenteredes ved 5000 g i 20 minutter ved 5°C, supernatanten fjernedes ved hjalp af en hævert 25 og afkøledes i et is-vand-bad til 1-2°C, og der tilsattes langsomt 2 rumfang af for afkølet acetone (-20 til -40°C) for at undgå, at temperaturen steg over l-2°c. Blandingen holdtes derefter ved -20eC i 3-5 timer, og precipitatet opsamledes i et forafkølet (-10eC) vinkel-30 hoved ved 4000 g i 20 minutter. Supernatanten fjernedes ved hjælp af en hævert og bortkastedes. Det sedimenterede precipitat opløstes i isafkølet destilleret vand til ca. 1/20 af det oprindelige rumfang af cellesuspension. Opløsningen befriedes derefter for uopløselige 35 stoffer og småblærer ved centrifugering ved 50000 g i 90-120 minutter ved 5°C. Supernatanten opsamledes og 11
11DK 165358 C
holdtes nedfrosset eller frysetørredes. Der tilsattes l vægt/vol-% mannitol før frysetørring. Der opnåede 40-80 mg protein pr. gram celletørvægt.
5 Eksempel 2 (a) Fraskillelse af de rå ydre-membran-proteinpræpara-ter ved DEAE-trisacryl-chromatoqrafi.
En DEAE-trisacryl-kolonne, 3 x 16 cm, ækvilibre-redes med 0,025 M TRIS, 0,035 M NaCl-puffer, pH 8,8, og 10 det i eksempel l opnåede materiale (op til 1 g protein) dialyseredes mod den ækvilibrerende puffer og pumpedes med 60 ml/time gennem kolonnen. Fraktionerne (99 dråber pr. rørglas, ca. 5 ml) hældtes sammen i puljer 1-13. En del af det totalt anvendte protein (ca. 1/4) forsinkes 15 ikke af gellejet, og vil blive opsamlet som en stor top (0,035 M) . Det tilbageholdte materiale elueredes derefter under anvendelse af 0,1, 0,2, 0,3 og 1,0 M NaCl i 0,025 M tris-puffer (pH 8,8). Fraktionerne hældtes sammen og overførtes til en SDS-PAGE-plade for at iværk-20 sætte adskillelsen af proteiner. ACAP'et var til stede i det af kolonnen ikke-forsinkede materiale, som eftervist ved SDS-PAGE, men var også til stede i det forsinkede materiale, der elueredes med 0,2 M NaCl.
25 (b) Præparativ fladlaqs-lsoelektrofokuserinq 1 granuleret gel (IEF).
Denne operation udførtes i overensstemmelse med LKB-rekommanderingerne (anvendelsesnote 198, LKB-Produc-ter AB, Bromma, Sverige). En suspension af 4 g Ultrodex 3 0 (en granulær gel af en modificeret glucosepolymer) (LKB) og 5 ml forblandet ampholin (puffer, handelsbetegnelse), pH 3,5-9,5, suspenderedes i destilleret vand til et slutrumfang på 100 ml, hældtes ud i en vandret bakke 10,8 x 24,3 cm og inddampedes under en lufstrøm til den 35 anbefalede grænse. I lag samledes strimler af tre papirsvæge (LKB, 2117-106), gennemvædet i en l:20-fortyn- 12
12DK 165358 C
ding af det samme ampholin i destilleret vand, anbragtes i hver ende af bakken. Materialet fra eksempel 2a indlejredes i gelen under anvendelse af en indforingsskabelon (2 x 9,4 cm), som pressedes ind i gelen ved 1/3 til 5 1/4 af afstanden langs dens længde fra den anodiske en de, den indesluttede gel fjernedes, overførtes til en 10 ml engangssprøjte, suspenderedes i 3 ml af det nævnte materialet fra eksempel 2a (indeholdende op til 500 mg protein) og sprøjtedes til sidst tilbage i det tomme rum 10 dannet ved dens fjernelse. Gelen udglattedes derefter med en spatel, hvis det var nødvendigt, og man lod den henstå til ækvilibrering i 20 minutter. I mellemtiden gennemblødtes én papirsvæge i en 1:100-fortynding af phosphorsyre (vægtfylde 1,75 g/cm3) og føjedes til 15 strimlerne ved den anodiske ende, og en anden gennemvædedes i 1 M NaOH og anbragtes ved den katodiske ende. Bakkeunderstøtningen i fladlags-IEF-apparatet (Pharmacia type FBE-3000) afkøledes ved hjælp af rindende ledningsvand (15°C) under operationen. Gelen underkastedes ope-20 rationen ved konstant 8 watt.
ACAP'et kunne påvises som to bånd, det ene ved pi 7,0, og det andet (diffuse) bånd ved pi 7,2-7,4. Adeny-lat-cyclase-aktiviteten var næsten fuldstændigt forbundet med det centrale bånd (pi 7,0), men monoklonale an-25 tistoffer mod ACAP bandt begge bånd stærkt.
Under anvendelse af en metalskabelon deltes gellaget derefter i 30 parallelle felter, og gelen blev skrabet af hvert felt under anvendelse af en spatel og overførtes til reagensglas indeholdende l ml destilleret 30 vand. pH-Værdien af hver fraktion måltes på dette stade. Gelsuspensionerne overførtes derefter til små plastkolonner og elueredes med 2 ml 0,2 M ammoniumhydrogencar-bonatpuffer, pH 7,0, og de gelfri eluater blev nedfros-set (-40°C).
13
13DK 165358 C
(c) Analytisk isoelektrlsk fokusering.
(i) Der anvendtes den samme procedure som for 2(b) ovenfor, men der anvendtes en 12% polyacrylamid-gel i nærværelse af 8M urinstof. Der opnåedes de 5 samme resultater som for 2(b).
(ii) Den samme metode, men under anvendelse af en agarosegel i nærværelse af 10% sorbitol, viste 4 immuno-reaktive bånd ved pi 4,5-6,0. Båndet ved pi 4,0 tilbageholdt størstedelen af adenylat-10 cyclase-aktiviteten.
Eksempel 3
Rensning af ACAP under anvendelse af en monoklonal-lmmunsorbens-kolonne.
15 Museascitesvæske indeholdende et for ACAP speci fikt monoklonalt immunogiobulin underkastedes precipite-ring ved stuetemperatur ved tilsætning af 2 rumfang 27 vægt/vol-% Na2S04 og henstilledes i 2-4 timer, før den underkastedes sedimentering (2000 g i 15 minutter). Se-20 dimentet genopløstes og dialyseredes mod PBS. 500 mg af dette protein (UV-bestemmelse) kobledes til 70 ml pakket CNBr-Sepharose ® CL4B efter fabrikantens instruktioner (Pharmacia). Sephadex ® G-50 (medium) hældtes på en 500 mm x 25 mm kolonne til en laghøjde på 220 mm. Efter 25 vaskning af kolonnen med elueringspuffer (0,2 M ammoni-umhydrogencarbonat, pH 7,0, indholdende 0,01% thiomer-sal) hældtes et 5 mm tykt lag af nr. 12 Ballotini glasperler ovenpå Sephadex ®-laget. "Ballotini" er handelsnavnet for glasperler, der anvendes i en perlemølle-30 knuser. En suspension af bakterie- eller gærceller sættes f.eks. til glasperlerne, og perlerne rystes for at bryde cellerne itu. Efter yderligere vaskning hældtes immunosorbensgelen på Ballotini-glasperlelaget, idet dette var adskilt fra Sephadex ®-laget, hvilket mulig-35 gjorde fraskillelse af begge. Kolonnen vaskedes yderligere med elueringspuffer, og til sidst anbragtes der 14
14DK 165358 C
endnu et Ballotini-glasperlelag ovenpå det 100 mm høje immunosorbenslag til beskyttelse af toppen af kolonnen.
Til fraskillelse af ACAP'et på immunosorbensko-lonnen tilførtes 180 ml af det ikke-tilbageholdte eluat 5 fra DEAE-trisacryl-adskillelsen (eksempel 2) indeholdende l mg/ml protein (Lowry) ved 5°C til immunosorbens-kolonnen med 0,25 ml/min., vaskedes med elueringspuffer (0,2 M ammoniumhydrogencarbonat, pH 7, 0,01 vægt/vol-% thiomersal), og, efter at basislinien havde stabiliseret 10 sig, tilførtes der 50 ml 6M urinstof i elueringspuffer til kolonnen til eluering af det adsorberede materiale. Anbringelsen af immunosorbensmaterialet over et Sepha-dex ® -G-50-lag muliggjorde den samtidige fraskillelse af proteinet fra urinstoffet under oprationen.
15
Eksempel 4
Dyrkning af B. pertussls.
Det til organismens vækst anvendte definerede medium var baseret på den formel, der er angivet af 20 Steiner og Scholte (J. Gen. Microbiol. 63, 211-220, 1971) som tidligere beskrevet (Novotny og Brookes, J. Biol. Stand. 3, 11-29, 1975). Alle kulturer dyrkedes ved 36-37°C. De flydende kulturer, i løst tilkapslede rystekolber (500 ml konisk kolbe med 200 ml medium), podedes 25 med en kultur dyrket i 48 timer på Cohen-Wheeler-medium (dette medium er beskrevet i Novotny og Brookes, J. Biol. Stand. 3, 11-29, 1975) med 2% agar og 5% hesteblod og omrørtes til opnåelse af en gasudskiftningshastighed på 20-40 μΜ 02/time. Sådanne flydende kulturer anvendtes 30 til at pode mediet i 5 liter eller 70 liter fermentere fremstillet helt i glas, medens pH-værdien holdtes på 7,6 ved reguleret tilsætning af 2M HC1, og mætningen med opløst oxygen holdtes på 5-10% ved omrøring med en bladomrøre. Kulturerne høstedes før afslutningen af den 35 eksponentionelle fase, dvs. efter ca, 36 timers inkube-ring (Novotny og Cownley, "Effect of growth conditions 15
15DK 165358 C
on the composition and stability of the outer membrane of Bordetella pertussis" i Manclark and Hiil (editors), International Symposium on Pertussis, U.S. Government Printing Office, Washington D.C., 1979, 99-123).
Eksempel 5
Kendrick-test.
Denne test udfortes i overensstemmelse med W.H.O-kravene til pertussisvaccine under anvendelse af MFl eller NIH-mus (OLAC, kategori 3, fri for de fleste patogener indbefattet B. bronchiseptica) af en vægt på 14-16 g. Antigenet, i 0,5 ml rumfang, indpodedes intra-peritonealt og omfattede en topfortynding og tre fire-fold seriefortyndinger. Efter to ugers forlab udsattes musene for intracerebrale angreb under anvendelse af den anbefalede angrebsstamme 18-323 (100-200 LD50). Antallet af overlevende dyr i hver gruppe anvendtes til beregning af EDcjq og af den relative styrke i forhold til British Pertussis Reference Vaccine 66/84 under anvendelse af et program med parallellinie-probitanalyse. Der udførtes også en sammenligningstest under anvendelse af en kombineret FHA- og LPF-vaccine. Resultaterne er anført i tabel i.
Til nærmere forklaring af hvad tabel 1 angiver, skal der anføres følgende. Gruppen af mus injiceredes med graduerede doser som ovenfor anført af testmaterialet. Som ovenfor anført udsattes musene efter et vist tidsrum for Intracerebrale angreb, og antallet af overlevende dyr i hver gruppe registreredes. Procenttallene med hensyn til overlevende dyr i hver gruppe (udtrykt som probits) afsattes mod log-fortyndinger af de ved testen anvendte doser. På basis heraf beregnedes en dosis, efter hvilken 50% af dyrene overlevede, dvs. ED5Q (- 50% effektiv dosis) . Ved sammenligning af ED50 for testmateriale og referencepræparatet kan der bestemmes en "relativ styrke", dvs. hvor meget af testmaterialet
DK 165358 C
16 der har samme styrke som referencematerialet. Dette kan udtrykkes direkte i internationale enheder {= I.E.) (næstsidste kolonne i tabel 1) og, idet man kender den til beskyttelse nødvendige dosis, ved den sandsynlige mængde af testmateriale, der udgør en enkelt human dosis (sidste kolonne i tabel 1).
DK 165358 C
17
Tabel 1
Beskyttende styrke af Bordetella pertussis-fraktioner ved musebeskyttelsestesten mod Intracerebralt angreb af B. pertussls 18-323 ("Kendrick-test11) .
S _
Materiale ED50 yg
Relativ 4 I.E.i yg prostyrke tein (= enkelt I.E./yg human dosis) protein_ 10 Råt glycin-hydrol. af B.pertussis hydrolyseret ved 37°C 20 15 Råt glycin-hydrol. af B.pertussis hydrolyseret 20 ved 4°C 77 0,02 190 0,003 1333
Hydrolyseret ved 37°C 20 0,011 363 25 Hydrolyseret ved 53°C 149 0,001 4000 B.pertussis immunorenset 30 adenylat- cyclase 19 0,011 364 FHA/LPF vaccine 77 0,003 1333 18
18DK 165358 C
Eksempel 6
Amlnosyreanalyse af ACAP.
Aminosyreanalysen udførtes under anvendelse af en 5 Rank Hilger Chromaspek aminosyreanalysator. Prøver fremstilledes ved tilsætning af 250 yl af 6N HCl (fortyndet ud fra BDH Aristar-kvalitet) indeholdende 0,1% (vægt/ vol) phenol til det tørrede prøvemateriale i et tykvæg-get Pyrex-reagensglas (7,5 x 1,2 cm). Rørene blev der-10 efter trukket ud i en af oxygen og naturgas frembragt blæselampeflamme til frembringelse af en snæver åbning. Efter frysning af indholdet i et fast-C02-ethanol-bad blev hvert reagensglas forbundet gennem en manifold og fælde til en høj vakuumpumpe, og man lod det stå i 10 15 minutter til fjernelse af luft. Reagensglassene blev derefter lukket tæt til og anbragt i en ovn ved 110°C til hydrolyse. De hydrolyserede prøver tørredes i en vakuumekssikkator over natriumhydroxidperler. Den tørrede remanens opløstes i 250 yl aminosyreanalysator-startpuf-20 fer til automatisk analyse.
De i tabel 2 anførte aminosyreværdier er gennemsnitstal af resultaterne opnået fra dobbelte 24, 48 og 68 timers hydrolyser, undtagen i tilfaldene med valin og isoleucin, hvor der anvendtes 68 timers hydrolyseværdi-25 erne.
Værdier for cystin, cystein og tryptophan kunne ikke bestemmes ved denne metode.
DK 165358 C
19
Tabel 2
Rester
Asparaginsyre (+asparagin) 48 Threonin 33 5 Serin 33 Glutaminsyre (+glutamin) 62 Prolin 60 Glycin 77 Alanin 82 10 Valin 54 Methionin 4 Isoleucin 22 Leucin 50 Tyrosin 7 15 Phenylalanin 11 Histidin 13 Lysin 19 Arginin 37 20 Eksempel 7
Vacclneformulerinqer.
Vacciner til anvendelse ved immunisering kan fremstilles ved konventionelle metoder med følgende bestanddele: 25 a) Difteri-, tetanus- og pertussis-vacclne i simpel opløsning.
Hver 1 ml vaccine indeholder:
20DK 165358 C
Difteri-toxoid >60 I.E. Tetanus-toxoid >120 I.E. Pertussis-antigen ifølge opfindelsen >0,363 mg Natriumborat <10,03 mg Ravsyre <3,10 mg Thiomersal 0,04-0,2 mg Natriumchlorid <8,5 mg Vand til 1 ml b) Adsorberet difteri-, tetanus- oq pertussis-vaccine. Difteri-, tetanus- og pertussis-komponenterne ad- sorberes til aluminlumhydroxidgel ved hjælp af standard- metoder. Hver 1 ml vaccine indeholder: Difteri-toxoid >60 I.E. Tetanus-toxoid >120 U.L. Antigen ifølge opfindelsen >0,363 mg Uopløselige aluminiumsalte <ækvivalent Natriumborat med 0,093 mmol (2,5 mg) Al. <8,01 mg Ravsyre <2,48 mg Thiomersalt 0,04-0,2 mg Natriumchlorid <6,8 mg Vand til 1 ml c) Pertussis-vaccine. Hver 1 ml vaccine indeholder: Antigen ifølge opfindelsen >0,363 mg Thiomersal 0,04-0,2 mg Natriumchlorid <8,5 mg Vand til 1 ml

Claims (13)

1. Renset Bordetella pertussis antigen, som ek-straheres sammen med adenylat-cyclase-aktivitet, når ekstraktion af aktiviteten udføres under anvendelse af en vandig, pH3 opløsning af 0,25 M glycin, og som er 5 kendetegnet ved følgende træk: en relativ molekylvægt på 67.000-73.000 som bestemt ved 12% (vægt/vægt) polyacrylamidgel-elektroforese og et forhold mellem prolin og glutaminsyre på i det væsentlige 1:1 som bestemt ved aminosyreanalyse, 10 hvorhos antigenet er i det væsentlige fri for intracel-lulært B. pertussis materiale.
2. Vaccine, kendetegnet ved, at den omfatter et antigen ifølge krav 1 i blanding med en farmaceutisk acceptabel bærer.
3. Vaccine ifølge krav 2, kendetegnet ved, at antigenet er til stede i en mængde på fra 0,01 til 5 mg/ml.
4. Vaccine ifølge krav 3, kendetegnet ved, at antigenet er til stede i en mængde på fra 0,03 20 til 2 mg/ml.
5. Vaccine ifølge et vilkårligt af kravene 2-4, kendetegnet ved, at den yderligere indeholder en farmaceutisk acceptabel adjuvans.
6. Vaccine ifølge et vilkårligt af kravene 2-5, 25 kendetegnet ved, at den yderligere indeholder et eller flere andre antigener.
7. Antigen ifølge krav 1 til anvendelse til terapi eller profylakse hos mennesker.
8. Fremgangsmåde til isolering af et antigen 30 ifølge krav 1, kendetegnet ved, at man behandler en kultur af B. pertussis-celler med en vandig aminosyrepuffer med pH 3,0-3,5 og indeholdende en hyper-tonisk koncentration af nævnte aminosyre med hensyn til cellerne, skiller cellerne fra den fremkomne supernatant DK 165358 C og isolerer antigenet fra supernatanten.
9. Fremgangsmåde ifølge krav 8, kendetegnet ved, at aminosyren er glycin.
10. Fremgangsmåde ifølge krav 8 eller 9, k e n -5 detegnet ved, at den nævnte isolering fra supernatanten omfatter anvendelse af ionbytningschromatogra-fi.
11. Fremgangsmåde ifølge krav 8 eller 9, kendetegnet ved, at den nævnte isolering fra super- 10 natanten omfatter anvendelse af præparativ isoelektrisk fokusering.
12. Fremgangsmåde ifølge krav 8 eller 9, kendetegnet ved, at den nævnte isolering yderligere omfatter passage af det isolerede materiale gennem en 15 immunoabsorptionskolonne indeholdende et passende mono-klonalt antistof mod antigenet.
13. Anvendelse af et antigen ifølge krav 1 til fremstilling af en vaccine til anvendelse ved fremkaldelsen af immunitet mod kighoste hos mennesker.
DK198502089A 1984-05-12 1985-05-10 Renset Bordetella pertussis antigen, vaccine indeholdende et sådant antigen og fremgangsmåde til isolering af et sådant ant DK165358C (da)

Applications Claiming Priority (2)

Application Number Priority Date Filing Date Title
GB8412207 1984-05-12
GB848412207A GB8412207D0 (en) 1984-05-12 1984-05-12 Antigenic preparations

Publications (4)

Publication Number Publication Date
DK208985D0 DK208985D0 (da) 1985-05-10
DK208985A DK208985A (da) 1985-11-13
DK165358B DK165358B (da) 1992-11-16
DK165358C true DK165358C (da) 2000-11-06

Family

ID=10560891

Family Applications (1)

Application Number Title Priority Date Filing Date
DK198502089A DK165358C (da) 1984-05-12 1985-05-10 Renset Bordetella pertussis antigen, vaccine indeholdende et sådant antigen og fremgangsmåde til isolering af et sådant ant

Country Status (13)

Country Link
US (8) US5648080A (da)
EP (1) EP0162639B1 (da)
JP (3) JPH07116053B2 (da)
AT (1) ATE61937T1 (da)
CA (1) CA1253073A (da)
DE (1) DE3582272D1 (da)
DK (1) DK165358C (da)
ES (1) ES8802275A1 (da)
FI (1) FI81262C (da)
GB (1) GB8412207D0 (da)
LU (1) LU90203I2 (da)
NL (1) NL980006I1 (da)
NO (2) NO165478C (da)

Families Citing this family (25)

* Cited by examiner, † Cited by third party
Publication number Priority date Publication date Assignee Title
GB8412207D0 (en) * 1984-05-12 1984-06-20 Wellcome Found Antigenic preparations
FR2597344B1 (fr) * 1986-04-16 1989-06-23 Merieux Inst Perfectionnement au procede de purification d'antigenes proteiques de bacteries appartenant au genre bordetella, en vue de l'obtention d'un vaccin acellulaire.
US4762710A (en) * 1986-06-16 1988-08-09 The United States Of America As Represented By The Department Of Health And Human Services Novel method of preparing toxoid by oxidation and metal ions
SE455946B (sv) * 1986-10-20 1988-08-22 Trion Forskning & Utveckling Nya pertussistoxin-polypeptider och antigener samt testsatser, vacciner och intradermala hudtestkompositioner
EP0267998A1 (en) * 1986-11-17 1988-05-25 Institut Pasteur Means for protecting against bordetella infections and toxic processes
FR2606789B1 (fr) * 1986-11-17 1991-05-31 Pasteur Institut Preparations d'adenylate cyclase purifiees, procede d'obtention de ces preparations et leurs applications biologiques
CA1337859C (en) * 1987-04-24 1996-01-02 Masashi Chazono Method for culturing bordetella pertussis, a pertussis toxoid and a pertussis vaccine
US5139776A (en) * 1987-04-24 1992-08-18 The Research Foundation For Microbial Diseases Of Osaka University Method for culturing Bordetella pertussis, a pertussis toxoid and a pertussis vaccine
ES2091186T3 (es) * 1988-04-19 1996-11-01 Pasteur Institut Procedimiento para obtener antigenos protectores contra infecciones y procesos toxicos de bordetella.
EP0338170A1 (en) * 1988-04-19 1989-10-25 Institut Pasteur Immunoprotective antigenic protein against pathogenic bacteria
GB8910570D0 (en) 1989-05-08 1989-06-21 Wellcome Found Acellular vaccine
FR2646776B1 (fr) 1989-05-12 1994-06-03 Pasteur Institut Utilisation de preparations vaccinantes a base d'adenyl cyclase ou de bacteries les produisant en tant qu'antigenes protecteurs contre les effets des bordetella
DK0425082T3 (da) * 1989-09-04 1995-07-03 Evans Medical Ltd Vacciner
US5276142A (en) * 1989-12-11 1994-01-04 American Cyanamid Company Process for purification of a 69000 dalton antigenic protein from Bordetella pertussis
US6197548B1 (en) 1990-04-02 2001-03-06 Medeva Pharma Limited Transformed Pichia expressing the pertactin antigen
GB9007657D0 (en) * 1990-04-04 1990-05-30 Connaught Lab Purification of a pertussis outer membrane protein(omp69)
EP0484621A3 (en) * 1990-07-11 1992-08-26 American Cyanamid Company Efficacious vaccines against bordetella pertussis comprising a combination of individually purified pertussis antigens
GB9021004D0 (en) * 1990-09-27 1990-11-07 Wellcome Found Acellular vaccines
US6444211B2 (en) 1991-04-03 2002-09-03 Connaught Laboratories, Inc. Purification of a pertussis outer membrane protein
GB9304399D0 (en) * 1993-03-04 1993-04-21 Smithkline Beecham Biolog Novel process
FR2728170A1 (fr) * 1994-12-15 1996-06-21 Pasteur Institut Vaccin de type acellulaire anti-bordetella
FR2736064B1 (fr) 1995-06-30 1997-09-05 Pasteur Institut Epitopes protecteurs de l'adenyl cyclase-hemolysine(ac-hty). leur application au traitement ou a la prevention des infections par bordetella
ZA981370B (en) * 1997-02-20 1998-09-07 Cerberus Developments Bv Method and apparatus for continuous flow isoelectric focusing for purifying biological substances
GB201105981D0 (en) 2011-04-08 2011-05-18 Glaxosmithkline Biolog Sa Novel process
KR102236498B1 (ko) 2013-03-08 2021-04-06 얀센 백신스 앤드 프리벤션 비.브이. 무세포 백일해 백신

Family Cites Families (22)

* Cited by examiner, † Cited by third party
Publication number Priority date Publication date Assignee Title
US3141824A (en) * 1961-05-19 1964-07-21 Lilly Co Eli Pertussis antigen
US3395219A (en) * 1964-12-11 1968-07-30 Merck & Co Inc Process for production of pertussis antigen
US3465078A (en) * 1965-10-21 1969-09-02 Sydney Z Spiesel Method of recovering antigens from bordetella pertussis cells
FR2047886A1 (en) * 1969-06-30 1971-03-19 Merieux Inst Non-toxic anti-whooping cough vaccine
FR2393065A1 (fr) * 1977-05-31 1978-12-29 Merieux Inst Procede de separation de lipides d'endotoxines bacteriennes et notamment d'endotoxine de bordetella pertussis
DE2961293D1 (en) * 1978-02-17 1982-01-14 Nat Res Dev Immunogenic cell envelope preparations
GB2014452B (en) * 1978-02-17 1982-07-21 Secr Social Service Brit Producing cell envelope preparations
JPS5750925A (en) * 1980-09-12 1982-03-25 Takeda Chem Ind Ltd Preparation of pertussis toxoid
US4551429A (en) * 1983-09-15 1985-11-05 American Home Products Corporation Stimulation of antigen production by Bordetella pertussis
US5237052A (en) * 1984-05-12 1993-08-17 Burroughs Wellcome Company Antigenic preparations and isolation of such preparations
GB8412207D0 (en) * 1984-05-12 1984-06-20 Wellcome Found Antigenic preparations
US4705686A (en) * 1986-05-09 1987-11-10 American Cyanamid Process for the preparation of acellular Bordetalla pertussis vaccine
EP0267998A1 (en) * 1986-11-17 1988-05-25 Institut Pasteur Means for protecting against bordetella infections and toxic processes
FR2606789B1 (fr) * 1986-11-17 1991-05-31 Pasteur Institut Preparations d'adenylate cyclase purifiees, procede d'obtention de ces preparations et leurs applications biologiques
GB8807860D0 (en) * 1988-04-05 1988-05-05 Connaught Lab Pertussis vaccine
US5101014A (en) * 1989-02-10 1992-03-31 United States Of America Process for the purification of a 69,000 da outer membrane protein of Bordetella pertussis
GB8910570D0 (en) * 1989-05-08 1989-06-21 Wellcome Found Acellular vaccine
US5276142A (en) * 1989-12-11 1994-01-04 American Cyanamid Company Process for purification of a 69000 dalton antigenic protein from Bordetella pertussis
GB9007416D0 (en) * 1990-04-02 1990-05-30 Wellcome Found Expression of heterologous protein in yeast
GB9007657D0 (en) * 1990-04-04 1990-05-30 Connaught Lab Purification of a pertussis outer membrane protein(omp69)
IT1248735B (it) * 1990-06-21 1995-01-26 Sclavo Spa Vaccini acellulari contro la pertosse
EP0484621A3 (en) 1990-07-11 1992-08-26 American Cyanamid Company Efficacious vaccines against bordetella pertussis comprising a combination of individually purified pertussis antigens

Also Published As

Publication number Publication date
JPS60246321A (ja) 1985-12-06
DE3582272D1 (de) 1991-05-02
ES543026A0 (es) 1988-05-01
NO165478B (no) 1990-11-12
NO165478C (no) 1991-02-20
JP2000072690A (ja) 2000-03-07
NL980006I1 (nl) 1998-04-01
JP2000053585A (ja) 2000-02-22
EP0162639A2 (en) 1985-11-27
GB8412207D0 (en) 1984-06-20
DK208985D0 (da) 1985-05-10
US5648080A (en) 1997-07-15
LU90203I2 (fr) 1998-04-06
DK208985A (da) 1985-11-13
FI851859L (fi) 1985-11-13
ES8802275A1 (es) 1988-05-01
US6210685B1 (en) 2001-04-03
US6048700A (en) 2000-04-11
US20030077294A1 (en) 2003-04-24
EP0162639B1 (en) 1991-03-27
US5438120A (en) 1995-08-01
NO1997010I1 (no) 1997-08-25
FI81262C (fi) 1990-10-10
FI81262B (fi) 1990-06-29
NO851878L (no) 1985-11-13
JPH07116053B2 (ja) 1995-12-13
ATE61937T1 (de) 1991-04-15
US20020150595A1 (en) 2002-10-17
DK165358B (da) 1992-11-16
FI851859A0 (fi) 1985-05-10
US6127151A (en) 2000-10-03
CA1253073A (en) 1989-04-25
EP0162639A3 (en) 1988-02-03
US20030108572A1 (en) 2003-06-12

Similar Documents

Publication Publication Date Title
DK165358C (da) Renset Bordetella pertussis antigen, vaccine indeholdende et sådant antigen og fremgangsmåde til isolering af et sådant ant
CN101203605B (zh) 革兰氏阴性菌的lps的脱酰基化
EP0914153B1 (en) Multivalent dtp-polio vaccines
Blake et al. Purification and partial characterization of the opacity-associated proteins of Neisseria gonorrhoeae.
Di Tommaso et al. Formaldehyde treatment of proteins can constrain presentation to T cells by limiting antigen processing
EP0432203A1 (en) Legionellosis vaccines and methods for their production
JPS6051120A (ja) 単純ヘルペスサブユニットワクチン
AU641711B2 (en) Process for purification of a 69 000 dalton antigenetic protein from bordetella pertussis
KR101617464B1 (ko) Ipv―dpt 백신
Novotny et al. Biologic and protective properties of the 69-kDa outer membrane protein of Bordetella pertussis: a novel formulation for an acellular pertussis vaccine
PT90310B (pt) Processo para a obtencao de preparacoes de adenilato-ciclase
JPS61111695A (ja) B型肝炎ビールス又はb型肝炎ビールス成分からのdnaフラグメント、ポリペプチド及びオリゴペプチド、組み換えdna分子、dnaベクター、エシエリヒア・コリk12変異体、ポリペプチドの製法、b型肝炎ビールス疾患に対する接種物質、モノクロナール抗体ma18/7、マウス雑種細胞go1a18/7‐1並びにモノクロナール抗体ma18/7の製法
US5237052A (en) Antigenic preparations and isolation of such preparations
DK172329B1 (da) Polydisperse, native Pseudomonas-flagella(H)-antigener (FAg) i polymer form og fremgangsmåde til deres udvinding
GB2062463A (en) Babesiosis vaccine
EP0002645B1 (en) Antigenic complex from neisseria gonorrhoeae, process and vaccine
JPH0272200A (ja) 百日咳トキソイドワクチン
JPS59110626A (ja) B−オリゴマ−含有百日咳ワクチンおよびその製造方法
Bleakley Characteristics of Vibrio cholerae proteinases
BRPI0202458B1 (pt) Processo de obtenção de vacina pertussis acelular

Legal Events

Date Code Title Description
PPF Opposition filed
PUP Patent expired