DK165358B - Acellulaert eller renset bordetella pertussis antigen, vaccine indeholdende et saadant antigen og fremgangsmaade til isolering af et antigent praeparat indeholdende et saadant antigen, samt anvendelse af antigenet - Google Patents

Acellulaert eller renset bordetella pertussis antigen, vaccine indeholdende et saadant antigen og fremgangsmaade til isolering af et antigent praeparat indeholdende et saadant antigen, samt anvendelse af antigenet Download PDF

Info

Publication number
DK165358B
DK165358B DK208985A DK208985A DK165358B DK 165358 B DK165358 B DK 165358B DK 208985 A DK208985 A DK 208985A DK 208985 A DK208985 A DK 208985A DK 165358 B DK165358 B DK 165358B
Authority
DK
Denmark
Prior art keywords
antigen
pertussis
vaccine
amino acid
supernatant
Prior art date
Application number
DK208985A
Other languages
English (en)
Other versions
DK208985A (da
DK208985D0 (da
DK165358C (da
Inventor
Pavel Novotny
Original Assignee
Wellcome Found
Priority date (The priority date is an assumption and is not a legal conclusion. Google has not performed a legal analysis and makes no representation as to the accuracy of the date listed.)
Filing date
Publication date
Family has litigation
First worldwide family litigation filed litigation Critical https://patents.darts-ip.com/?family=10560891&utm_source=google_patent&utm_medium=platform_link&utm_campaign=public_patent_search&patent=DK165358(B) "Global patent litigation dataset” by Darts-ip is licensed under a Creative Commons Attribution 4.0 International License.
Application filed by Wellcome Found filed Critical Wellcome Found
Publication of DK208985D0 publication Critical patent/DK208985D0/da
Publication of DK208985A publication Critical patent/DK208985A/da
Publication of DK165358B publication Critical patent/DK165358B/da
Application granted granted Critical
Publication of DK165358C publication Critical patent/DK165358C/da

Links

Classifications

    • CCHEMISTRY; METALLURGY
    • C07ORGANIC CHEMISTRY
    • C07KPEPTIDES
    • C07K14/00Peptides having more than 20 amino acids; Gastrins; Somatostatins; Melanotropins; Derivatives thereof
    • C07K14/195Peptides having more than 20 amino acids; Gastrins; Somatostatins; Melanotropins; Derivatives thereof from bacteria
    • C07K14/235Peptides having more than 20 amino acids; Gastrins; Somatostatins; Melanotropins; Derivatives thereof from bacteria from Bordetella (G)
    • AHUMAN NECESSITIES
    • A61MEDICAL OR VETERINARY SCIENCE; HYGIENE
    • A61PSPECIFIC THERAPEUTIC ACTIVITY OF CHEMICAL COMPOUNDS OR MEDICINAL PREPARATIONS
    • A61P31/00Antiinfectives, i.e. antibiotics, antiseptics, chemotherapeutics
    • AHUMAN NECESSITIES
    • A61MEDICAL OR VETERINARY SCIENCE; HYGIENE
    • A61PSPECIFIC THERAPEUTIC ACTIVITY OF CHEMICAL COMPOUNDS OR MEDICINAL PREPARATIONS
    • A61P31/00Antiinfectives, i.e. antibiotics, antiseptics, chemotherapeutics
    • A61P31/04Antibacterial agents
    • CCHEMISTRY; METALLURGY
    • C12BIOCHEMISTRY; BEER; SPIRITS; WINE; VINEGAR; MICROBIOLOGY; ENZYMOLOGY; MUTATION OR GENETIC ENGINEERING
    • C12NMICROORGANISMS OR ENZYMES; COMPOSITIONS THEREOF; PROPAGATING, PRESERVING, OR MAINTAINING MICROORGANISMS; MUTATION OR GENETIC ENGINEERING; CULTURE MEDIA
    • C12N9/00Enzymes; Proenzymes; Compositions thereof; Processes for preparing, activating, inhibiting, separating or purifying enzymes
    • C12N9/88Lyases (4.)
    • AHUMAN NECESSITIES
    • A61MEDICAL OR VETERINARY SCIENCE; HYGIENE
    • A61KPREPARATIONS FOR MEDICAL, DENTAL OR TOILETRY PURPOSES
    • A61K39/00Medicinal preparations containing antigens or antibodies
    • YGENERAL TAGGING OF NEW TECHNOLOGICAL DEVELOPMENTS; GENERAL TAGGING OF CROSS-SECTIONAL TECHNOLOGIES SPANNING OVER SEVERAL SECTIONS OF THE IPC; TECHNICAL SUBJECTS COVERED BY FORMER USPC CROSS-REFERENCE ART COLLECTIONS [XRACs] AND DIGESTS
    • Y10TECHNICAL SUBJECTS COVERED BY FORMER USPC
    • Y10STECHNICAL SUBJECTS COVERED BY FORMER USPC CROSS-REFERENCE ART COLLECTIONS [XRACs] AND DIGESTS
    • Y10S530/00Chemistry: natural resins or derivatives; peptides or proteins; lignins or reaction products thereof
    • Y10S530/806Antigenic peptides or proteins
    • YGENERAL TAGGING OF NEW TECHNOLOGICAL DEVELOPMENTS; GENERAL TAGGING OF CROSS-SECTIONAL TECHNOLOGIES SPANNING OVER SEVERAL SECTIONS OF THE IPC; TECHNICAL SUBJECTS COVERED BY FORMER USPC CROSS-REFERENCE ART COLLECTIONS [XRACs] AND DIGESTS
    • Y10TECHNICAL SUBJECTS COVERED BY FORMER USPC
    • Y10STECHNICAL SUBJECTS COVERED BY FORMER USPC CROSS-REFERENCE ART COLLECTIONS [XRACs] AND DIGESTS
    • Y10S530/00Chemistry: natural resins or derivatives; peptides or proteins; lignins or reaction products thereof
    • Y10S530/82Proteins from microorganisms
    • Y10S530/825Bacteria

Landscapes

  • Health & Medical Sciences (AREA)
  • Chemical & Material Sciences (AREA)
  • Organic Chemistry (AREA)
  • Life Sciences & Earth Sciences (AREA)
  • Genetics & Genomics (AREA)
  • General Health & Medical Sciences (AREA)
  • Medicinal Chemistry (AREA)
  • Engineering & Computer Science (AREA)
  • Molecular Biology (AREA)
  • Biochemistry (AREA)
  • Zoology (AREA)
  • Wood Science & Technology (AREA)
  • Bioinformatics & Cheminformatics (AREA)
  • Communicable Diseases (AREA)
  • Pharmacology & Pharmacy (AREA)
  • Public Health (AREA)
  • Oncology (AREA)
  • Chemical Kinetics & Catalysis (AREA)
  • Biomedical Technology (AREA)
  • Biotechnology (AREA)
  • Nuclear Medicine, Radiotherapy & Molecular Imaging (AREA)
  • Microbiology (AREA)
  • Animal Behavior & Ethology (AREA)
  • General Chemical & Material Sciences (AREA)
  • Veterinary Medicine (AREA)
  • General Engineering & Computer Science (AREA)
  • Gastroenterology & Hepatology (AREA)
  • Biophysics (AREA)
  • Proteomics, Peptides & Aminoacids (AREA)
  • Medicines Containing Antibodies Or Antigens For Use As Internal Diagnostic Agents (AREA)
  • Peptides Or Proteins (AREA)
  • Medicines Containing Material From Animals Or Micro-Organisms (AREA)
  • Preparation Of Compounds By Using Micro-Organisms (AREA)
  • Medicinal Preparation (AREA)

Description

DK 165358B
Den foreliggende opfindelse angår et acellulært eller renset Bordetella pertussis antigen, vacciner indeholdende et sådant antigen og en fremgangsmåde til isolering af et antigent præparat indeholdende et sådant antigen, samt anvendelse af antigenet til fremstilling 5 af en vaccine.
Bordetella pertussis forårsager en alvorlig og svækkende sygdom hos mennesker, idet børn er særlig modtagelige, hvilken sygdom holdes under kontrol i de udviklede lande ved hjælp af stort anlagte immuniserings-10 programmer. Det har vist sig, at immunisering er en meget vigtig faktor ved begrænsningen af sygdommen, og at undladelse af at vaccinere kan føre til forøget forekomst af sygdommen. Praktisk taget alle steder fremkaldes immunisering ved anvendelse af helcelle B. pertus-15 sis-vaccine, der har vist sig at være forholdsvis effektiv til forhindring af sygdommen. Man har imidlertid erkendt, at helcellevacciner kan have adskillige ulemper.
Således optræder der f.eks. hos ca. 1 ud af hver 10.000 vaccinerede børn kliniske symptomer, som kan omfatte 20 feber, lokale reaktioner og vedvarende skrigen. Endvidere vil det vise sig, at nogle batche af helcellevaccine overhovedet ikke giver nogen beskyttelse, medens de stadig indebærer muligheden for uønskede bivirkninger.
Med den for nærværende ringe forekomst af sygdom-25 men i udviklede lande med immuniseringsprogrammer er nytte/risiko-forholdet dårligt defineret, og mange klinikere mener, at risiciene ved vaccinering vejer tungere end de fordele, der opnås ved immunisering. Som følge heraf vaccineres mange børn ikke, og der er derfor en 30 alvorlig risiko for en pandemi af kighoste. En betydelig forskningsindsats er derfor blevet rettet mod udviklingen af forbedrede pertussis-vacciner og navnlig acellulære vacciner, der ikke indeholder de komponenter, som er forbundet med de toxiske virkninger af de hidtil an-35 vendte helcellevacciner, medens de indeholder de komponenter, der er nødvendige til beskyttelse mod sygdommen.
DK 165358 B
2
Eftersøgningen efter en sikrere, effektiv, acellulær B. pertussis-vaccine er tidligere blevet vanskeliggjort af knapheden på oplysninger vedrørende identiteten og virkningsmekanismerne af de patogene, toxiske 5 og beskyttende dele af i helcellevacciner indeholdt B. pertussis. Arbejdet har derfor koncentreret sig om at isolere og rense de 20 eller flere overfladeantigener hos' B. pertussis-organismen og karakterisere deres evne til at fremkalde immunreaktioner (se f.eks. J. Am. Med.
10 Soc., 248 (1) 22-23). Som eksempler på antigener, der er blevet foreslået til undersøgelse, kan der nævnes lym-focytosis-fremmende faktor (pertussis toxin/LPF), filamentformet hæmagglutinin (FHA), lipopolysaccharid (LPS), agglutinogener, dermonekrotisk toxin (DNT), varmelabile 15 og varmestabile toxiner, polymorfonukleær leukocyt-inhibitor faktor, adenylat-cyclase og andre overfladekomponenter (Pertussis Vaccine Workshop, 11. februar 1982,
Bureau of Biologies, U.S.A.). Af andre til undersøgelse foreslåede antigener kan der nævnes trachealt cytotoxin 20 og forskellige ydre membran-proteiner.
En tidlig ekstraktvaccine udvikledes af L. Pille-mer (Proc. Soc. Exp. Biol. Med. (1950) 75, 704-705), hvilken vaccine var baseret på sprængte B. pertussis-celler og viste sig at give beskyttelse, men ikke vandt 25 indpas kommercielt som følge af præparatets toxicitet.
Som eksempler på senere B. pertussis-ekstraktvac-ciner, der er blevet foreslået, kan der nævnes de i britisk patentbeskrivelse nr. 2.083.358A (Takeda) beskrevne, der indebærer fjernelse af endotoxin fra kultur-su-30 pernatanter; de i fransk patentskrift nr. 2.047.886 (Institut Merrieux) beskrevne, der indebærer ekstraktion af en mikrobesuspension med et anionisk overfladeaktivt middel; og de i japansk patentbeskrivelse nr. 58-222032 (Teijin) beskrevne, der omfatter et underenheds-protein 35 baseret på pertussis-toxin (LPF).
Meget af det arbejde, der er udført på acellulære pertussis-vacciner, koncentrerer sig om muligheden for
DK 165358B
3 at basere en sådan vaccine på LPF. Det antages imidlertid, at de fleste af (om ikke alle) de hidtil observerede ugunstige virkninger, der forbindes med pertussis-vaccination, står i forbindelse med toxinet. I kombina-5 tion med tetanus- eller difteri-toxoid og LPS er det i stand til at fremkalde eksperimentel encephalopati hos modtagelige mus (L. Steinman et al., Nature (1982) 299, 738-740; Redhead et al., Workshop on B. pertussis. Nat.
Inst, of Biol. Standards & Controls, Holy Hill, Hamp-10 stead, London, 1983). LPF kan således muligvis være ansvarligt for hjerneskader, hvis sådanne komplikationer optræder efter vaccination.
Det har nu vist sig, at et vist proteinmateriale, der er forbundet med adenylat-cyclase-aktivitet som be-15 skrevet i det følgende, og som findes i kulturer af B. pertussis, er i stand til at give beskyttelse mod angreb af B. pertussis, når det administreres til forsøgsdyr.
Denne erkendelse, at det med adenylat-cyclase-aktivitet sædvanligvis forbundne proteinmateriale er et vigtigt 20 beskyttende antigen mod B. pertussis, muliggør fremstillingen af vaccineformuleringer omfattende antigene præ-• parater, der er fri for, eller indeholder reducerede mængder af, andre kendte B. pertussis-komponenter, der kan være ansvalige for de toxiske bivirkninger, som .25 helcellevacciner udviser.
Udtrykket "med adenylat-cyclase-aktivitet forbundet proteinmateriale" (i det følgende forkortet til "AGAP") anvendes heri som betegnelse for proteinmateriale, der ekstraheres sammen med adenylat-cyclase-aktivi-30 tet, når ekstraktionen af adenylat-cyclase-aktiviteten udføres under anvendelse af en vandig, sur (pH 3) opløsning af glycin (0,25 M). Adenylat-cyclase-aktiviteten bestemtes ved den metode, der er beskrevet af Hewlett, E., og Wolff, J. (J. Bacteriol. (1976) 127, 890-898).
35 Ifølge den foreliggende opfindelse tilvejebringes der et acellulært eller renset Bordetella pertussis an-
DK 165358 B
4 tigen, der er ejendommeligt ved følgende træk: en relativ molekylvægt på 67.000-73.000 som bestemt ved 12% (vægt/vægt) polyacrylamidgel-elektroforese og et forhold mellem prolin og glutaminsyre på i det væ-5 sentlige 1:1 som bestemt ved aminosyreanalyse, hvorhos antigenet er i det væsentlige fri for intracel-lulært B. pertussis materiale.
Antigenet kan yderligere karakteriseres ved at have følgende aminosyresammensætning: 10
Rester
Asparaginsyre (+asparagin) 48
Threonin 3 3
Serin 33 15 Glutaminsyre (+glutamin) 62
Prolin 60
Glycin 77
Alanin 82
Valin 54 20 Methionin 4
Isoleucin 22
Leucin 50
Tyrosin 7
Phenylalanin li 25 Histidin 13
Lysin 19
Arginin 37
Aminosyreanalyse har desuden vist, at ACAP inde-30 holder en usædvanlig høj andel af prolin, således at prolin:glutaminsyre-forholdet er ca. 1:1, og dette karakteristiske træk tjener til at skelne ACAP fra andre B. pertussis-proteiner. Et yderligere karakteristisk kendemærke for ACAP er den omstændighed, at det ikke kan 35 påvises ved radio-iodering af dets tyrosinrester hverken ved chloramin-T- eller iodogen-metoden.
DK 165358B
5
Antigenet ifølge den foreliggende opfindelse kan desuden karakteriseres ved at have et isoelektrisk punkt på 4,5-6,0 under analytiske isoelektriske betingelser under anvendelse af en agarosegel i nærværelse af 10% 5 sorbitol. Antigenet kan karakteriseres ved at være syre-• labilt under en pH-værdi på ca. 3.
ACAP'et i de ovennævnte præparater har almindeligvis en relativ molekylvægt på ca. 67.000 til 73.000, især 69.000, og et isoelektrisk punkt på 7,0-7,4 under 10 præparative betingelser som beskrevet nedenfor. Med "relativ molekylvægt" menes den tilsyneladende molekylvægt som bestemt ved 12% (vægt/vægt) polyacrylamidgel-elektroforese og standardmolekylvægtmarkører. Molekylvægten for de antigene proteiner ifølge opfindelsen kan 15 således bekvemt bestemmes ved de metoder, der er beskrevet af U. K. Laemmli, Natur, 1970, 227, 680-685. Af passende standardmolekylvægtmarkører kan der f.eks. nævnes okseserumalbumin, chymotrypsinogen A og ribonuclease.
Nærmere angivet kan ACAP'et påvises ved isoelek-20 trisk fokusering som to bånd, det ene med et isoelektrisk punkt (pi) på ca. 7,0, det andet (diffuse) bånd med et isoelektrisk punkt på 7,2-7,4. Adenylat-cyclase-aktiviteten var næsten fuldstændig forbundet med det neutrale bånd (pi = 7,0), men monoklonale antistoffer 25 mod ACAP bandt begge bånd stærkt.
Ifølge en foretrukken udførelsesform for den foreliggende opfindelse er det ovennævnte ACAP et proteinmateriale, der er karakteriseret ved at have en eller flere af følgende egenskaber: 30 (i) et forhold mellem prolin og glutaminsyre på i det væsentlige 1:1, (ii) tyrosinresterne er ikke ioderbare, (iii) det er i det væsentlige fri for intracel-lulært B. pertussis-materiale,
DK 165358 B
6 (iv) en relativ molekylvægt på 67.000 til 73.000, (v) et isoelektrisk punkt på 7,0 til 7,4, og (vi) det er syrelabilt under en pH-værdi på ca. 3.
Ifølge opfindelsen tilvejebringes der desuden en 5 vaccine som angivet i krav 8 og 9-12.
Opfindelsen angår endvidere en fremgangsmåde til isolering af et antigent præparat indeholdende et B. pertussis antigen, hvilken fremgangsmåde er ejendommelig ved, at man behandler en kultur af B. pertussis-celler 10 med en vandig aminosyrepuffer med pH 2,5-3,5 og indeholdende en hypertonisk koncentration af nævnte aminosyre med hensyn til cellerne, skiller cellerne fra den fremkomne supernatant og isolerer et antigent præparat indeholdende antigenet ifølge opfindelsen fra supernatanten.
15 Ifølge den foreliggende opfindelse tilvejebringes der også en vaccineformulering til beskyttelse mod B. pertussis, hvilken formulering omfatter et fra B. .pertussis afledt antigent præparat omfattende ACAP, der eventuelt er toxoideret f.eks. under anvendelse af for-20 malin, glutaraldehyd eller β-propiolacton, sammen med en farmaceutisk acceptabel bærer herfor..
De ovennævnte antigene præparater til anvendelse i vaccineformuleringen ifølge opfindelsen kan om ønsket indeholde mindre mængder af andre antigene forbin-25 delser, foruden ACAP'et, f.eks. materialer opnået sammen med det fra B. pertussis-organismen ekstraherede ACAP. Sådanne materialer kan omfatte fragmenter af LPS og LPF, der som følge af deres mulige skadelige bivirkninger kræver toxoidering, f.eks. med formalin. De antigene 30 præparater er imidlertid fortrinsvis i det væsentlige fri for andre antigene komponenter.
Adenylat-cyclase er tidligere blevet isoleret fra B. pertussis (Chemical Abstracts 85^, 105868x, 1976; E.
L. Hewlett et al., J. Bacteriol, 127, (1976) 890-898, og 35 Proc. Nat. Acad. Sci., U.S.A., 73, (1976) 1926-1930).
Adskillige kommercielle pertussis vacciner har vist sig
DK 165358B
7 at indeholde adenylcyclaseaktivitet (Chemical Abstracts 87, 130172 g, 1977). Der har imidlertid ikke været nogen som helst antydning af, at dette materiale repræsenterer et beskyttende antigen mod B. pertussis. Ifølge det af 5 Hewlett et al. udførte arbejde fandt man i kultur-super-natanten kun ca. 20% af den totale adenylat-cyclase-aktivitet fra B. pertussis-organismen, hvilket repræsenterer ca. 0,5% af det totale enzym, idet de resterende 80% var bundet til celler. Det er derfor nødvendigt med 10 en ekstraktionsproces, ved hvilken ACAP'et kan opnås i høj renhed og højt udbytte, for i kommerciel målestok at opnå tilstrækkelige mængder af ACAP til anvendelse i de ovennævnte antigene præparater. En betydelig vanskelighed, der skal overvindes med en sådan ekstrakt:onspro-15 ces, er, at ACAP'et, blandt andre proteiner, er bundet, en del af det meget fast, til LPS-grundstammen i den ydre membran. Tidligere har man almindeligvis anvendt detergenter til opløseliggørelse af membranen for at frigøre de hertil knyttede proteiner. Anvendelsen af de-20 tergenter til ekstraktion af ydre membran-proteiner fra B. pertussis-organismer har imidlertid vist sig at have følgende ulemper: a) den ydre membran opløseliggøres til dannelse af micellære aggregater omfattende blandinger af 25 ydre membran-proteiner, b) de ydre membran-proteiner kan beskadiges, c) nye antigener, der ikke forekommer i bakterien, kan frembringes, og d) det ekstraherede materiale viser sig sædvanligvis 30 at være vanduopløseligt, efter at detergenten er fjernet.
I modsætning til hvad der opnås ved anvendelse af detergenter, har det nu vist sig, at ekstraktion af B. pertussis-organismer under anvendelse af regulerede, 35 svagt sure betingelser resulterer i ekstraktion af væsentligt forøgede udbytter (ca. 40 gange bedre end tid-
DK 165358 B
8 ligere rapporterede metoder) af adenylat-cyclase fra den ydre membran i en form, der er vandopløselig.
Den foreliggende fremgangsmåde til isolering af et antigent præparat indeholdende ACAP fra B. pertussis 5 består i, at man behandler en kultur af B. pertussis-celler med en vandig aminosyrepuffer med pH 2,5-3,5 og indeholdende en hypertonisk koncentration af nævnte aminosyre med hensyn til cellerne, skiller cellerne fra den opnåede supernatant og isolerer et antigent præparat 10 indeholdende ACAP fra supernatanten.
Den ved den ovenfor beskrevne fremgangsmåde anvendte puffer giver fortrinsvis en pH-værdi på ca. 3 og indeholder fordelagtigt en mineralsyre, fortrinsvis saltsyre, som den sure komponent i pufferen og enten 15 glycin eller alanin som aminosyren. Behandlingen af cellerne med pufferen foretages fortrinsvis ved en temperatur på 5 til 50°C, fortrinsvis 30 til 45°C, ideelt 37°C, fordelagtigt i 1 til 24 timer, fortrinsvis 10 til 20 timer, med en aminosyrekoncentration på 0,1-1M, for-20 trinsvis 0,25M. ACAP'et er syrelabilt og kan ødelægges, hvis pH-værdien falder til under 3 under ekstraktionen.
Efter inkubering af cellerne med pufferen bortkastes cellerne, og supernatanten, der opnås efter centrifugering, f.eks. ved ca. 100.000 g (til fjernelse af 25 alt partikelformet materiale), underkastes om ønsket precipitation, f.eks. under anvendelse af ammoniumsulfat, koldt ethanol eller acetone.
Den opnåede supernatant-ekstrakt afprøvedes ved Kendrick-testen, som beskrevet nedenfor, og viste sig at 30 give beskyttelse hos mus mod intracerebrale angreb af B. pertussis. Kontrolvacciner, der ikke indeholdt adenylat-cyclase-aktivitet, viste sig at give kun ringe eller ingen beskyttelse mod angreb af B. pertussis, hvilket tyder på, at ACAP faktisk kan være den vigtigste faktor 35 med hensyn til immunitet. Analyse af batcher af ikke-be-skyttende helcellevaccine har desuden vist, at ikke-be-
DK 165358B
9 skyttelse viser tilbøjelighed til at være forbundet med manglende tilstedeværelse af adenylat-cyclase-aktivitet, hvilket yderligere tyder på, at ACAP kan være det nøgleantigen, der er nødvendigt til fremkaldelse af en immun-5 respons mod B. pertussis.
Den ved Kendrick-testen anvendte supernatant-eks-trakt kan imidlertid også indeholde ACAP'et i små mængder i kompleksforbindelse med andre proteiner, herunder fragmenter af LPS, i hvilke tilfælde det kan være ønske-10 ligt at rense materialet til anvendelse i vaccineformuleringerne ifølge opfindelsen yderligere. Således kan yderligere rensning f.eks. foretages ved ionbytnings-chromatografi og/eller ved præparativ isoelektro-fokuse-. ring til eliminering af som kompleksforbindelser fore-15 liggende materiale. Alternativt kan de to rensningsmetoder kombineres, dvs. det materiale, der ikke tilbageholdes af DEAE-gelen (dvs. det ikke-komplekserede materiale), kan underkastes elektrofokusering. Rensningsmetoden kan også omfatte chromatofokusering. Efter de ovenfor 20 beskrevne rensningstrin kan ACAP*et om ønsket renses yderligere, f.eks. ved at passere materialet gennem en immunosorbenskolonne indeholdende et passende monoklo-nalt antistof mod ACAP'et.
De ovenfor beskrevne antigene præparater, herun-25 der de ved den ovenfor beskrevne fremgangsmåde ifølge opfindelsen fremstillede, kan inkorporeres i en vaccineformulering til fremkaldelse af immunitet mod kighoste hos mennesker. En vaccine ifølge den foreliggende opfindelse omfatter derfor et antigen ifølge opfindelsen i 30 blanding med en farmaceutisk acceptabel bærer.
Farmaceutisk acceptable bærere er i dette tilfælde flydende medier, der er egnede til anvendelse som vehikler til indføring af antigenet i patienten. Et eksempel på en sådan bærer er saltopløsning. Det antigene 35 protein kan være i opløsning eller suspenderet som et fast stof i bæreren.
DK 165358 B
10
Vaccineformuleringen kan også indeholde et adju-vans til stimulering af immunresponsen og dermed forøgelse af virkningen af vaccinen. Passende adjuvanser til anvendelse ved den foreliggende opfindelse omfatter 5 f.eks. aluminiumhydroxid og aluminiumphosphat.
Vaccineformuleringerne præsenteres passende således, at de indeholder en slutkoncentration af antigent protein i området fra 0,01 til 5 mg/ml, fortrinsvis 0,03 til 2 mg/ml, mest foretrukket 0,3 mg/ml. Efter formule-10 ring kan vaccinen inkorporeres i en steril beholder, som derefter lukkes tæt til og opbevares ved lav temperatur, f.eks. 4°C, eller den kan frysetørres.
Til fremkaldelse af immunitet hos mennesker mod' kighoste kan der administreres en eller flere doser af 15 den passende formulerede vaccine. Det anbefales, at hver dosis er 0,1 til 2 ml, fortrinsvis 0,2 til 1 ml, mest foretrukket 0,5 ml vaccine.
Den foreliggende opfindelse omfatter også anvendelsen af et antigen ifølge opfindelsen til fremstilling 20 af en vaccine til anvendelse ved fremkaldelsen af immunitet mod kighoste hos mennesker.
Vaccinerne ifølge den foreliggende opfindelse kan administreres ved en vilkårlig konventionel fremgangsmåde til administrering af vacciner, herunder oral ind-25 givelse og parenteral (f.eks. subkutan eller intramu-skulær) injektion. Behandlingen kan bestå i en enkelt dosis vaccine eller flere doser over et vist tidsrum.
Vacciner ifølge den foreliggende opfindelse kan også omfatte en eller flere andre antigener, f.eks. pas-30 sende toxoiderede typhoid- og difteri-toxiner, eller andre B. pertussis-antigener, såsom toxoideret LPF, til formindskelse af sandsynligheden for at mutantstammer af B. pertussis undgår den ledsagende immunrespons.
Opfindelsen belyses nærmere ved hjælp af de ef-35 terfølgende eksempler.
DK 165358B
11
Eksempel 1
Sur qlycin-hydrolyse og fremstilling af rå ydre-membran-proteiner♦ 5 Cellerne høstedes efter 3/4 af vejen gennem den eksponentielle fase og centrifugeredes ved 8000 g (Sor-vall, GSA vinkelhoved) i 20 minutter ved 4°C. Superna-tanten fjernedes ved hjælp af en hævert, og cellerne blev straks forsigtigt resuspenderet i destilleret vand 10 til en densitet på 20-30 mg/ml celletørvægt. En tredjedel af dette volumen af 1M glycin-HCl-puffer, pH 3,0, tilsattes under forsigtig omrøring til opnåelse af en slutkoncentration på 250 mM glycin. Glycinopløsningen indeholdt EDTA (til opnåelse af 5 mM i den endelige 15 blanding) til standsning af enzymatisk aktivitet. pH-Værdien kontrolleredes og genindstilledes om nødvendigt til pH 3,0 under anvendelse af 1-2 M HC1. Blandingen om-rørtes forsigtigt i et 37°C vandbad, indtil der var opnået temperaturligevægt, og inkuberedes derefter natten 20 over (18 timer) ved 37°C (uden omrøring). pH-Værdien indstilledes derefter på 7,2-7,4 ved anvendelse af 10M NaOH, der tilsattes langsomt for at undgå lokalt overskud. Cellerne sedimenteredes ved 5000 g i 20 minutter ved 5°C, supernatanten fjernedes ved hjælp af en hævert 25 og afkøledes i et is-vand-bad til 1-2°c, og der tilsattes langsomt 2 rumfang af forafkølet acetone (-20 til -40°C) for at undgå, at temperaturen steg over 1-2°C. Blandingen holdtes derefter ved -20°C i 3-5 timer, og precipitatet opsamledes i et forafkølet (-10°C) vinkel-30 hoved ved 4000 g i 20 minutter. Supernatanten fjernedes ved hjælp af en hævert og bortkastedes. Det sedimenterede precipitat opløstes i isafkølet destilleret vand til ca. 1/20 af det oprindelige rumfang af cellesuspension. Opløsningen befriedes derefter for uopløselige 35 stoffer og småblærer ved centrifugering ved 50000 g i 90-120 minutter ved 5°C. Supernatanten opsamledes og *
DK 165358 B
12 holdtes nedfrosset eller frysetørredes. Der tilsattes l vægt/vol-% mannitol før frysetørring. Der opnåede 40-80 mg protein pr. gram celletørvægt.
5 Eksempel 2 (a) Fraskillelse af de rå ydre-membran-proteinpræpara-ter ved DEAE-trisacryl-chromatoqrafi.
En DEAE-trisacryl-kolonne, 3 x 16 cm, ækvilibre-redes med 0,025 M TRIS, 0,035 M NaCl-puffer, pH 8,8, og.
10 det i eksempel 1 opnåede materiale (op til 1 g protein) dialyseredes mod den ækvilibrerende puffer og pumpedes med 60 ml/time gennem kolonnen. Fraktionerne (99 dråber pr. rørglas, ca. 5 ml) hældtes sammen i puljer 1-13. En del af det totalt anvendte protein (ca. 1/4) forsinkes 15 ikke af gellejet, og vil blive opsamlet som en stor top (0,035 M). Det tilbageholdte materiale elueredes derefter under anvendelse af 0,1, 0,2, 0,3 og 1,0 M NaCl i 0,025 M tris-puffer (pH 8,8). Fraktionerne hældtes sammen og overførtes til en SDS-PAGE-plade for at iværk-20 sætte adskillelsen af proteiner. ACAP'et var til stede i det af kolonnen ikke-forsinkede materiale, som eftervist ved SDS-PAGE, men var også til stede i det forsinkede materiale, der elueredes med 0,2 M NaCl.
25 (b) Præparativ fladlags-isoelektrofokusering i granuleret gel (IEF).
Denne operation udførtes i overensstemmelse med LKB-rekommanderingerne (anvendelsesnote 198, LKB-Produc-ter AB, Bromma, Sverige). En suspension af 4 g Ultrodex 30 (en granulær gel af en modificeret glucosepolymer) (LKB) og 5 ml forblandet ampholin (puffer, handelsbetegnelse), pH 3,5-9,5, suspenderedes i destilleret vand til et slutrumfang på 100 ml, hældtes ud i en vandret bakke 10,8 x 24,3 cm og inddampedes under en lufstrøm til den 35 anbefalede grænse. I lag samledes strimler af tre papirsvæge (LKB, 2117-106), gennemvædet i en l:20-fortyn- 13 DK Ί6ϋ3ϋ8 Β ding af det samme ampholin i destilleret vand, anbragtes i hver ende af bakken. Materialet fra eksempel 2a indlejredes i gelen under anvendelse af en indføringsskabelon (2 x 9,4 cm), som pressedes ind i gelen ved 1/3 til 5 1/4 af afstanden langs dens længde fra den anodiske en de, den indesluttede gel fjernedes, overførtes til en 10 ml engangssprøjte, suspenderedes i 3 ml af det nævnte materialet fra eksempel 2a (indeholdende op til 500 mg protein) og sprøjtedes til sidst tilbage i det tomme rum 10 dannet ved dens fjernelse. Gelen udglattedes derefter med en spatel, hvis det var nødvendigt, og man lod den henstå til ækvilibrering i 20 minutter. I mellemtiden gennemblødtes én papirsvæge i en l:l00-fortyr.ding af phosphorsyre (vægtfylde 1,75 g/cm3) og føjedes til 15 strimlerne ved den anodiske ende, og en anden gennemvædedes i 1 M NaOH og anbragtes ved den katod i ske ende. Bakkeunderstøtningen i fladlags-IEF-apparatet (Pharmacia type FBE-3000) afkøledes ved hjælp af rindende ledningsvand (15°C) under operationen. Gelen underkastedes ope-20 rationen ved konstant 8 watt.
ACAP'et kunne påvises som to bånd, det ene ved pi 7,0, og det andet (diffuse) bånd ved pi 7,2-7,4. Adeny-lat-cyclase-aktiviteten var næsten fuldstændigt forbundet med det centrale bånd (pi 7,0), men monoklonale an-25 tistoffer mod ACAP bandt begge bånd stærkt.
Under anvendelse af en metalskabelon deltes gellaget derefter i 30 parallelle felter, og gelen blev skrabet af hvert felt under anvendelse af en spatel og overførtes til reagensglas indeholdende 1 ml destilleret 30 vand. pH-Værdien af hver fraktion måltes på dette stade. Gelsuspensionerne overførtes derefter til små plastkolonner og elueredes med 2 ml 0,2 M ammoniumhydrogencar-bonatpuffer, pH 7,0, og dé gelfri eluater blev nedfrosset (-40°C).
DK 165358 B
14 (c) Analytisk isoelektrisk fokusering.
(i) Der anvendtes den samme procedure som for 2(b) ovenfor, men der anvendtes en 12% polyacrylamid-gel i nærværelse af 8M urinstof. Der opnåedes de 5 samme resultater som for 2(b).
(ii) Den samme* metode, men under anvendelse af en agarosegel i nærværelse af 10% sorbitol, viste 4 immuno-reaktive bånd ved pi 4,5-6,0. Båndet ved pi 4,0 tilbageholdt størstedelen af adenylat-10 cyclase-aktiviteten.
Eksempel 3
Rensning af ACAP under anvendelse af en monoklonal-immunsorbens-kolonne.
15 Museascitesvæske indeholdende et for ACAP speci fikt monoklonalt immunoglobulin underkastedes precipite-ring ved stuetemperatur ved tilsætning af 2 rumfang 27 vægt/vol-% Na2S04 og henstilledes i 2-4 timer., før den underkastedes sedimentering (2000 g i 15 minutter). Se-20 dimentet genopløstes og dialyseredes mod PBS. 500 mg af dette protein (UV-bestemmelse) kobledes til 70 ml pakket CNBr-Sepharose ® CL4B efter fabrikantens instruktioner (Pharmacia). Sephadex® G-50 (medium) hældtes på en 500 mm x 25 mm kolonne til en laghøjde på 220 mm. Efter 25 vaskning af kolonnen med elueringspuffer (0,2 M ammoni-umhydrogencarbonat, pH 7,0, indholdende 0,01% thiomer-sal) hældtes et 5 mm tykt lag af nr. 12 Ballotini glasperler ovenpå Sephadex ®-laget. "Ballotini" er handelsnavnet for glasperler, der anvendes i en perlemølle-30 knuser. En suspension af bakterie- eller gærceller sættes f.eks. til glasperlerne, og perlerne rystes for at bryde cellerne itu. Efter yderligere vaskning hældtes immunosorbensgelen på Ballotini-glasperlelaget, idet dette var adskilt fra Sephadex ®-laget, hvilket mulig-35 gjorde fraskillelse af begge. Kolonnen vaskedes yderligere med elueringspuffer, og til sidst anbragtes der
LHV 109090 D
15 endnu et Ballotini-glasperlelag ovenpå det 100 mm høje immunosorbenslag til beskyttelse af toppen af kolonnen.
Til fraskillelse af ACAP'et på immunosorbensko-lonnen tilførtes 180 ml af det ikke-tilbageholdte eluat 5 fra DEAE-trisacryl-adskillelsen (eksempel 2) indeholdende 1 mg/ml protein (Lowry) ved 5°C til immunosorbens-kolonnen med 0,25 ml/min., vaskedes med elueringspuffer (0,2 M ammoniumhydrogencarbonat, pH 7, 0,01 vægt/vol-% thiomersal), og, efter at basislinien havde stabiliseret 10 sig, tilførtes der 50 ml 6M urinstof i elueringspuffer til kolonnen til eluering af det adsorberede materiale. Anbringelsen af immunosorbensmaterialet over et Sepha-dex ® -G-50-lag muliggjorde den samtidige fraskillelse af proteinet fra urinstoffet under oprationen.
15
Eksempel 4
Dyrkning af B. pertussis.
Det til organismens vækst anvendte definerede medium var baseret på den formel, der er angivet af 20 Steiner· og Scholte (J. Gen. Microbiol. 6_3, 211-220, 1971) som tidligere beskrevet (Novotny og Brookes, J.
Biol. Stand. 3, 11-29, 1975). Alle kulturer dyrkedes ved 36-37°C. De flydende kulturer, i løst tilkapslede rystekolber (500 ml konisk kolbe med 200 ml medium), podedes 25 med en kultur dyrket i 48 timer på Cohen-Wheeler-medium (dette medium er beskrevet i Novotny og Brookes, J.
Biol. Stand. 3, 11-29, 1975) med 2% agar og 5% hesteblod og omrørtes til opnåelse af en gasudskiftningshastighed på 20-40 yM 02/time. Sådanne flydende kulturer anvendtes 30 til at pode mediet i 5 liter eller 70 liter fermentere fremstillet helt i glas, medens pH-værdien holdtes på 7,6 ved reguleret tilsætning af 2M HC1, og mætningen med opløst oxygen holdtes på 5-10% ved omrøring med en bladomrøre. Kulturerne høstedes før afslutningen af den 35 eksponentionelle fase, dvs. efter ca. 36 timers inkube-ring (Novotny og Cownley, "Effect of growth conditions
DK 165358B
16 on the composition and stability of the outer membrane of Bordetella pertussis11 i Manclark and Hill (editors), International Symposium' on Pertussis, U.S. Government Printing Office, Washington D.C., 1979, 99-123).
5
Eksempel 5
Kendrick-test.
Denne test udførtes i overensstemmelse med W.H.O-kravene til pertussisvaccine under anvendelse af 10 MF1 eller' NIH-mus (OLAC, kategori 3, fri for de fleste patogener indbefattet B. bronchiseptica) af en vægt på 14-16 g. Antigenet, i 0,5 ml rumfang, indpodedes intra-peritonealt og omfattede en topfortynding og tre fire-fold seriefortyndinger. Efter to ugers forløb udsattes 15 musene for intracerebrale angreb under anvendelse af den anbefalede angrebsstamme 18-323 (100-200 LD50). Antallet af overlevende dyr i hver gruppe anvendtes til beregning af EDgg og af den relative styrke i forhold til British Pertussis Reference Vaccine 66/84 under anvendelse af et 20 program med parallellinie-probitanalyse. Der udførtes også en sammenligningstest under anvendelse af en kombineret FHA- og LPF-vaccine. Resultaterne er anført i tabel l.
Til nærmere forklaring af hvad tabel 1 angiver, 25 skal der anføres følgende. Gruppen af mus injiceredes med graduerede doser som ovenfor anført af testmaterialet. Som ovenfor -anført udsattes musene efter et vist tidsrum for intracerebrale angreb, og antallet af overlevende dyr i hver gruppe registreredes. Procenttallene 30 med hensyn til overlevende dyr i hver gruppe (udtrykt som probits) afsattes mod log-fortyndinger af de ved testen anvendte doser. På basis heraf beregnedes en dosis, efter hvilken 50% af dyrene overlevede, dvs. ED50 (= 50% effektiv dosis). Ved sammenligning af ED50 for 35 testmateriale og referencepræparatet kan der bestemmes en "relativ styrke", dvs. hvor meget af testmaterialet 17 DK TbbcJbb b der har samme styrke som referencematerialet. Dette kan udtrykkes direkte i internationale enheder (= i.e.) (næstsidste kolonne i tabel 1) og, idet man kender den til beskyttelse nødvendige dosis, ved den sandsynlige 5 mængde af testmateriale, der udgør en enkelt human dosis (sidste kolonne i tabel 1).
DK 165358B
18
Tabel 1
Beskyttende styrke af Bordetella pertussis-fraktioner ved musebeskyttelsestesten mod intracerebralt angreb af B. pertussis 18-323 ( "Kendrick-test11).
5
Materiale ED50 Relativ 4 I.E.i yg pro- yg styrke tein (= enkelt I.E./yg human dosis) _protein_ 10 Råt glycin-hydrol. af B.pertussis hydrolyseret ved 37°C 20 0,02 190 15 Råt glycin-hydrol. af B.pertussis hydrolyseret 20 ved 4°C 77 0,003 1333
Hydrolyseret ved 37°C 20 0,011 363 25 Hydrolyseret ved 53°C 149 0,001 4000 B.pertussis immunorenset 30 adenylat- cyclase 19 0,011 364
FHA/LPF
vaccine 77 0,003 1333
DK 165358B
19
Eksempel 6
Aminosyreanalyse af ACAP.
Aminosyreanalysen udførtes under anvendelse af en 5 Rank Hilger Chromaspek aminosyreanalysator. Prøver fremstilledes ved tilsætning af 250 μΐ af 6N HC1 (fortyndet ud fra BDH Aristar-kvalitet) indeholdende 0,1% (vægt/ vol) phenol til det tørrede prøvemateriale i et tykvæg-get Pyrex-reagensglas (7,5 x 1,2 cm). Rørene blev der-10 efter trukket ud i en af oxygen og naturgas frembragt blæselampeflamme til frembringelse af en snæver åbning.
Efter frysning af indholdet i et fast-C02--ethanol-bad blev hvert reagensglas forbundet gennem en manifold og fælde til en høj vakuumpumpe, og man lod det stå i 10 15 minutter til fjernelse af luft. Reagensglassene blev derefter lukket tæt til og anbragt i en ovn ved 110°C til hydrolyse. De hydrolyserede prøver tørredes i en vakuumekssikkator over natriumhydroxidperler. Den tørrede remanens opløstes i 250 μΐ aminosyreanalysator-startpuf-20 fer til automatisk analyse.
De i tabel 2 anførte aminosyreværdier er gennemsnitstal af resultaterne opnået fra dobbelte 24, 48 og 68 timers hydrolyser, undtagen i tilfældene med valin og isoleucin, hvor der anvendtes 68 timers hydrolyseværdi-25 erne.
Værdier for cystin, cystein og tryptophan kunne ikke bestemmes ved denne metode.
DK 165358B
20
Tabel 2
Rester
Asparaginsyre (+asparagin) 48
Threonin 3 3 5 Serin , 33
Glutaminsyre (+glutamin) 6 2
Prolin 60
Glycin 77
Alanin 82 10 Valin 54
Methionin 4
Isoleucin 22
Leucin 50
Tyrosin 7 15 Phenylalanin 11
Histidin 13
Lysin 19
Arginin 37 20 Eksempel 7
Vaccineformulerinqer.
Vacciner til anvendelse ved immunisering kan fremstilles ved konventionelle metoder med følgende bestanddele: 25 a) Difteri-/ tetanus- og pertussis-vaccine i simpel opløsning.
Hver 1 ml vaccine indeholder: 21
Difteri-toxoid >60 I.E.
Tetanus-toxoid >120 I.E.
Pertussis-antigen ifølge opfindelsen >0,363 mg Natriumborat <10,03 mg 5 Ravsyre <3,10 mg
Thiomersal 0,04-0,2 mg
Natriumchlorid <8,5 mg
Vand til 1 ml 10 b) Adsorberet difteri-, tetanus- og pertussis-vaccine.
Difteri-, tetanus- og pertussis-komponenterne ad-sorberes til aluminiumhydroxidgel ved hjælp af standardmetoder.
Hver 1 ml vaccine indeholder: 15 Difteri-toxoid >60 I.E.
Tetanus-toxoid >120 U.L.
Antigen ifølge opfindelsen >0,363 mg
Uopløselige aluminiumsalte <ækvivalent med 0,093 20 mmol (2,5 mg)
Al.
Natriumborat <8,01 mg
Ravsyre <2,48 mg
Thiomersalt 0,04-0,2 mg 25 Natriumchlorid <6,8 mg vand til l ml c) Pertussis-vaccine.
Hver 1 ml vaccine indeholder: 30 Antigen ifølge opfindelsen >0,363 mg
Thiomersal 0,04-0,2 mg
Natriumchlorid <8,5 mg
Vand til 1 ml

Claims (19)

1. Acellulært eller renset Bordetella pertussis antigen, kendetegnet ved følgende træk: en relativ molekylvægt på 67.000-73.000 som bestemt ved 12% (vægt/vægt) polyacrylamidgel-elektroforese og 5 et forhold mellem prolin og glutaminsyre på i det væsentlige 1:1 som bestemt ved aminosyreanalyse, hvorhos antigenet er i det væsentlige fri for intracel-lulært B. pertussis materiale.
2. Antigen ifølge krav 1, kendetegnet 10 ved, at det har følgende aminosyresammensætning: Rester Asparaginsyre (+asparagin) 48 Threonin 3 3
3. Antigen ifølge krav 1 eller 2, kende tegnet ved, at dets tyrosinrester er ikke-ioder-bare ved hverken chloramin-T- eller iodogen-metoden.
4. Antigen ifølge et vilkårligt af de foregående krav, kendetegnet ved, at det har relativ mo- DK 165358B lekylvægt på 69.000 som bestemt ved 12% (vægt/vægt) polyacrylamldgel-elektroforese.
5. Antigen ifølge et vilkårligt af de foregående krav, kendetegnet ved, at det har et isoe- 5 lektrisk punkt på 7,0-7,4 under betingelserne for præparativ isoelektrisk fokusering.
6. Antigen ifølge et vilkårligt af de foregående krav, kendetegnet ved, at det har et isoelektrisk punkt på 4,5-6,0 under analytiske isoelektriske 10 betingelser under anvendelse af en agarosegel i nærværelse af 10% sorbitol.
7. Antigen ifølge et vilkårligt af de foregående krav, kendetegnet ved, at det er syrelabilt under en pH-værdi på ca. 3.
8. Vaccine, kendetegnet ved, at den omfatter et antigen ifølge et vilkårligt af de foregående krav i blanding med en farmaceutisk acceptabel bærer.
9. Vaccine ifølge krav 8, kendetegnet ved, at antigenet er til stede i en mængde på fra 0,01 20 til 5 mg/ml.
10. Vaccine ifølge krav 9, kendetegnet ved, at antigenet er til stede i en mængde på fra 0,03 til 2 mg/ml.
11. Vaccine ifølge et vilkårligt af kravene 8-10, 25 kendetegnet ved, at den yderligere indeholder en farmaceutisk acceptabel adjuvans.
12. Vaccine ifølge et vilkårligt af kravene 8-11, kendetegnet ved, at den yderligere indeholder et eller flere andre antigener.
13. Fremgangsmåde til isolering af et antigent præparat indeholdende et B. pertussis antigen, kendetegnet ved, at man behandler en kultur af B. pertussis-celler med en vandig aminosyrepuffer med pH 2,5-3,5 og indeholdende en hypertonisk koncentration af 35 nævnte aminosyre med hensyn til cellerne, skiller cellerne fra den fremkomne supernatant og isolerer et an- DK 165358B tigent præparat indeholdende antigenet ifølge et vilkårligt af kravene 1-7 fra supernatanten.
14. Fremgangsmåde ifølge krav 13, kendetegnet ved, at aminosyren er valgt blandt glycin 5 og alanin.
15. Fremgangsmåde ifølge krav 13 eller 14, kendetegnet ved, at den nævnte isolering fra supernatanten omfatter anvendelse af ionbytningschroma-tografi. 10
16: Fremgangsmåde ifølge krav 13 eller 14, kendetegnet ved, at den nævnte isolering fra supernatanten omfatter anvendelse af isoelektrisk fokusering .
15 Serin 33 Glutaminsyre (+glutamin) 62 Prolin 60 Glycin 77 Alanin 82
20 Valin 54 Methionin 4 Isoleucin 22 Leucin 50 f Tyrosin 7
25 Phenylalanin 11 Histidin 13 Lysin 19 Arginin 37
17. Fremgangsmåde ifølge krav 15 eller 16, 15 kendetegnet ved, at den nævnte isolering yderligere omfatter passage af det isolerede materiale gennem en immunoabsorptionskolonne indeholdende et passende monoklonalt antistof mod antigenet.
18. Antigen ifølge et vilkårligt åf kravene 1-7 20 til anvendelse til terapi eller profylakse hos mennesker.
19. Anvendelse af et antigen ifølge et vilkårligt af kravene 1-7 til fremstilling af en vaccine til anvendelse ved fremkaldelsen af immunitet mod kighoste hos 25 mennesker.
DK198502089A 1984-05-12 1985-05-10 Renset Bordetella pertussis antigen, vaccine indeholdende et sådant antigen og fremgangsmåde til isolering af et sådant ant DK165358C (da)

Applications Claiming Priority (2)

Application Number Priority Date Filing Date Title
GB8412207 1984-05-12
GB848412207A GB8412207D0 (en) 1984-05-12 1984-05-12 Antigenic preparations

Publications (4)

Publication Number Publication Date
DK208985D0 DK208985D0 (da) 1985-05-10
DK208985A DK208985A (da) 1985-11-13
DK165358B true DK165358B (da) 1992-11-16
DK165358C DK165358C (da) 2000-11-06

Family

ID=10560891

Family Applications (1)

Application Number Title Priority Date Filing Date
DK198502089A DK165358C (da) 1984-05-12 1985-05-10 Renset Bordetella pertussis antigen, vaccine indeholdende et sådant antigen og fremgangsmåde til isolering af et sådant ant

Country Status (13)

Country Link
US (8) US5648080A (da)
EP (1) EP0162639B1 (da)
JP (3) JPH07116053B2 (da)
AT (1) ATE61937T1 (da)
CA (1) CA1253073A (da)
DE (1) DE3582272D1 (da)
DK (1) DK165358C (da)
ES (1) ES8802275A1 (da)
FI (1) FI81262C (da)
GB (1) GB8412207D0 (da)
LU (1) LU90203I2 (da)
NL (1) NL980006I1 (da)
NO (2) NO165478C (da)

Families Citing this family (25)

* Cited by examiner, † Cited by third party
Publication number Priority date Publication date Assignee Title
GB8412207D0 (en) 1984-05-12 1984-06-20 Wellcome Found Antigenic preparations
FR2597344B1 (fr) * 1986-04-16 1989-06-23 Merieux Inst Perfectionnement au procede de purification d'antigenes proteiques de bacteries appartenant au genre bordetella, en vue de l'obtention d'un vaccin acellulaire.
US4762710A (en) * 1986-06-16 1988-08-09 The United States Of America As Represented By The Department Of Health And Human Services Novel method of preparing toxoid by oxidation and metal ions
SE455946B (sv) * 1986-10-20 1988-08-22 Trion Forskning & Utveckling Nya pertussistoxin-polypeptider och antigener samt testsatser, vacciner och intradermala hudtestkompositioner
EP0267998A1 (en) * 1986-11-17 1988-05-25 Institut Pasteur Means for protecting against bordetella infections and toxic processes
FR2606789B1 (fr) * 1986-11-17 1991-05-31 Pasteur Institut Preparations d'adenylate cyclase purifiees, procede d'obtention de ces preparations et leurs applications biologiques
CA1337859C (en) * 1987-04-24 1996-01-02 Masashi Chazono Method for culturing bordetella pertussis, a pertussis toxoid and a pertussis vaccine
US5139776A (en) * 1987-04-24 1992-08-18 The Research Foundation For Microbial Diseases Of Osaka University Method for culturing Bordetella pertussis, a pertussis toxoid and a pertussis vaccine
ATE140729T1 (de) * 1988-04-19 1996-08-15 Pasteur Institut Verfahren zur gewinnung von schutzantigenen gegen bordetella-infektionen und toxische prozesse
EP0338170A1 (en) * 1988-04-19 1989-10-25 Institut Pasteur Immunoprotective antigenic protein against pathogenic bacteria
GB8910570D0 (en) * 1989-05-08 1989-06-21 Wellcome Found Acellular vaccine
FR2646776B1 (fr) 1989-05-12 1994-06-03 Pasteur Institut Utilisation de preparations vaccinantes a base d'adenyl cyclase ou de bacteries les produisant en tant qu'antigenes protecteurs contre les effets des bordetella
DE69018926T2 (de) * 1989-09-04 1995-08-24 Wellcome Found Vakzine gegen Bordetella.
US5276142A (en) * 1989-12-11 1994-01-04 American Cyanamid Company Process for purification of a 69000 dalton antigenic protein from Bordetella pertussis
US6197548B1 (en) 1990-04-02 2001-03-06 Medeva Pharma Limited Transformed Pichia expressing the pertactin antigen
GB9007657D0 (en) * 1990-04-04 1990-05-30 Connaught Lab Purification of a pertussis outer membrane protein(omp69)
EP0484621A3 (en) * 1990-07-11 1992-08-26 American Cyanamid Company Efficacious vaccines against bordetella pertussis comprising a combination of individually purified pertussis antigens
GB9021004D0 (en) * 1990-09-27 1990-11-07 Wellcome Found Acellular vaccines
US6444211B2 (en) 1991-04-03 2002-09-03 Connaught Laboratories, Inc. Purification of a pertussis outer membrane protein
GB9304399D0 (en) * 1993-03-04 1993-04-21 Smithkline Beecham Biolog Novel process
FR2728170A1 (fr) * 1994-12-15 1996-06-21 Pasteur Institut Vaccin de type acellulaire anti-bordetella
FR2736064B1 (fr) * 1995-06-30 1997-09-05 Pasteur Institut Epitopes protecteurs de l'adenyl cyclase-hemolysine(ac-hty). leur application au traitement ou a la prevention des infections par bordetella
ZA981370B (en) * 1997-02-20 1998-09-07 Cerberus Developments Bv Method and apparatus for continuous flow isoelectric focusing for purifying biological substances
GB201105981D0 (en) 2011-04-08 2011-05-18 Glaxosmithkline Biolog Sa Novel process
MX362793B (es) 2013-03-08 2019-02-13 Janssen Vaccines & Prevention Bv Vacuna acelular contra pertussis.

Family Cites Families (22)

* Cited by examiner, † Cited by third party
Publication number Priority date Publication date Assignee Title
US3141824A (en) * 1961-05-19 1964-07-21 Lilly Co Eli Pertussis antigen
US3395219A (en) * 1964-12-11 1968-07-30 Merck & Co Inc Process for production of pertussis antigen
US3465078A (en) * 1965-10-21 1969-09-02 Sydney Z Spiesel Method of recovering antigens from bordetella pertussis cells
FR2047886A1 (en) * 1969-06-30 1971-03-19 Merieux Inst Non-toxic anti-whooping cough vaccine
FR2393065A1 (fr) * 1977-05-31 1978-12-29 Merieux Inst Procede de separation de lipides d'endotoxines bacteriennes et notamment d'endotoxine de bordetella pertussis
DE2961293D1 (en) * 1978-02-17 1982-01-14 Nat Res Dev Immunogenic cell envelope preparations
GB2014452B (en) * 1978-02-17 1982-07-21 Secr Social Service Brit Producing cell envelope preparations
JPS5750925A (en) * 1980-09-12 1982-03-25 Takeda Chem Ind Ltd Preparation of pertussis toxoid
US4551429A (en) * 1983-09-15 1985-11-05 American Home Products Corporation Stimulation of antigen production by Bordetella pertussis
US5237052A (en) * 1984-05-12 1993-08-17 Burroughs Wellcome Company Antigenic preparations and isolation of such preparations
GB8412207D0 (en) * 1984-05-12 1984-06-20 Wellcome Found Antigenic preparations
US4705686A (en) * 1986-05-09 1987-11-10 American Cyanamid Process for the preparation of acellular Bordetalla pertussis vaccine
EP0267998A1 (en) * 1986-11-17 1988-05-25 Institut Pasteur Means for protecting against bordetella infections and toxic processes
FR2606789B1 (fr) * 1986-11-17 1991-05-31 Pasteur Institut Preparations d'adenylate cyclase purifiees, procede d'obtention de ces preparations et leurs applications biologiques
GB8807860D0 (en) * 1988-04-05 1988-05-05 Connaught Lab Pertussis vaccine
US5101014A (en) * 1989-02-10 1992-03-31 United States Of America Process for the purification of a 69,000 da outer membrane protein of Bordetella pertussis
GB8910570D0 (en) * 1989-05-08 1989-06-21 Wellcome Found Acellular vaccine
US5276142A (en) * 1989-12-11 1994-01-04 American Cyanamid Company Process for purification of a 69000 dalton antigenic protein from Bordetella pertussis
GB9007416D0 (en) * 1990-04-02 1990-05-30 Wellcome Found Expression of heterologous protein in yeast
GB9007657D0 (en) 1990-04-04 1990-05-30 Connaught Lab Purification of a pertussis outer membrane protein(omp69)
IT1248735B (it) * 1990-06-21 1995-01-26 Sclavo Spa Vaccini acellulari contro la pertosse
EP0484621A3 (en) 1990-07-11 1992-08-26 American Cyanamid Company Efficacious vaccines against bordetella pertussis comprising a combination of individually purified pertussis antigens

Also Published As

Publication number Publication date
US20030077294A1 (en) 2003-04-24
JPS60246321A (ja) 1985-12-06
EP0162639B1 (en) 1991-03-27
JP2000072690A (ja) 2000-03-07
DK208985A (da) 1985-11-13
NL980006I1 (nl) 1998-04-01
JP2000053585A (ja) 2000-02-22
GB8412207D0 (en) 1984-06-20
EP0162639A2 (en) 1985-11-27
NO165478C (no) 1991-02-20
NO851878L (no) 1985-11-13
CA1253073A (en) 1989-04-25
DK208985D0 (da) 1985-05-10
US6210685B1 (en) 2001-04-03
ATE61937T1 (de) 1991-04-15
US6048700A (en) 2000-04-11
US5648080A (en) 1997-07-15
US20020150595A1 (en) 2002-10-17
ES543026A0 (es) 1988-05-01
US6127151A (en) 2000-10-03
FI851859A0 (fi) 1985-05-10
NO1997010I1 (no) 1997-08-25
LU90203I2 (fr) 1998-04-06
FI851859L (fi) 1985-11-13
JPH07116053B2 (ja) 1995-12-13
NO165478B (no) 1990-11-12
EP0162639A3 (en) 1988-02-03
DE3582272D1 (de) 1991-05-02
ES8802275A1 (es) 1988-05-01
DK165358C (da) 2000-11-06
US5438120A (en) 1995-08-01
FI81262C (fi) 1990-10-10
US20030108572A1 (en) 2003-06-12
FI81262B (fi) 1990-06-29

Similar Documents

Publication Publication Date Title
DK165358C (da) Renset Bordetella pertussis antigen, vaccine indeholdende et sådant antigen og fremgangsmåde til isolering af et sådant ant
Blake et al. Purification and partial characterization of the opacity-associated proteins of Neisseria gonorrhoeae.
EP0432203A1 (en) Legionellosis vaccines and methods for their production
AU641711B2 (en) Process for purification of a 69 000 dalton antigenetic protein from bordetella pertussis
KR950010323B1 (ko) 백일해 항원의 정제 방법
KR101617464B1 (ko) Ipv―dpt 백신
JP2999480B2 (ja) 百日咳感染及び毒性過程に対する保護抗原を得るための方法
US4220638A (en) Antigenic complex from N. Gonorrhoeae
WO2010074126A1 (ja) 組換え鶏伝染性コリーザワクチン及びその製造方法
JPS61111695A (ja) B型肝炎ビールス又はb型肝炎ビールス成分からのdnaフラグメント、ポリペプチド及びオリゴペプチド、組み換えdna分子、dnaベクター、エシエリヒア・コリk12変異体、ポリペプチドの製法、b型肝炎ビールス疾患に対する接種物質、モノクロナール抗体ma18/7、マウス雑種細胞go1a18/7‐1並びにモノクロナール抗体ma18/7の製法
RU97108362A (ru) Главный белок cd внешней мембраны moraxella
US5237052A (en) Antigenic preparations and isolation of such preparations
DK172329B1 (da) Polydisperse, native Pseudomonas-flagella(H)-antigener (FAg) i polymer form og fremgangsmåde til deres udvinding
EP0298991B1 (en) Novel lectins derived from bacterial pili
US4288557A (en) Antigenic complex from N. gonorrhoeae
GB2062463A (en) Babesiosis vaccine
EP0002645B1 (en) Antigenic complex from neisseria gonorrhoeae, process and vaccine
JPS59110626A (ja) B−オリゴマ−含有百日咳ワクチンおよびその製造方法
RU2109520C1 (ru) Способ получения протективного гликопротеина возбудителя мелиоидоза

Legal Events

Date Code Title Description
PPF Opposition filed
PUP Patent expired