JPS60246321A - 抗原性調製物および該調製物の単離法 - Google Patents
抗原性調製物および該調製物の単離法Info
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Abstract
(57)【要約】本公報は電子出願前の出願データであるた
め要約のデータは記録されません。
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Description
【発明の詳細な説明】
百日咳菌は人間において重いそして衰弱させる疾病を生
じきせ、子供が%Kかかりゃすく、それは先進国におい
て大規模免疫計画により管理下に保たれている。免疫は
この疾病の減少において非常に重要な因子であることお
よびワクチン接種の失敗はこの疾病の発生率の増加を導
きうろことが見出されている。特に、すべての地域にお
いて、この疾病の予防に比較的有効であると認められて
いる全細胞百日咳ワクチンを使用して免疫が行われてい
るo しかしながら、全細胞ワクチンはいくつかの欠点
のあることが認識されている。即ち、たとえば、接種さ
れた子供10,000人のうち約1人に、発熱、局所反
応および泣き続けを包含する臨床症状が生じる。更に1
全細胞ワクチンのいくつかのバッチは、望ましくない副
作用の可能性となお結合しながら全く保護を提供しない
らしい。
じきせ、子供が%Kかかりゃすく、それは先進国におい
て大規模免疫計画により管理下に保たれている。免疫は
この疾病の減少において非常に重要な因子であることお
よびワクチン接種の失敗はこの疾病の発生率の増加を導
きうろことが見出されている。特に、すべての地域にお
いて、この疾病の予防に比較的有効であると認められて
いる全細胞百日咳ワクチンを使用して免疫が行われてい
るo しかしながら、全細胞ワクチンはいくつかの欠点
のあることが認識されている。即ち、たとえば、接種さ
れた子供10,000人のうち約1人に、発熱、局所反
応および泣き続けを包含する臨床症状が生じる。更に1
全細胞ワクチンのいくつかのバッチは、望ましくない副
作用の可能性となお結合しながら全く保護を提供しない
らしい。
免疫計画により先進国におけるこの疾病の現在の低い発
現で、便宜/危険比率は不充分に定義されており、そし
て多くの臨床医師は接種の危険が免疫により獲得される
便宜にまさると信じている。
現で、便宜/危険比率は不充分に定義されており、そし
て多くの臨床医師は接種の危険が免疫により獲得される
便宜にまさると信じている。
その結果、多くの子供が接種されず、そこで百日咳の全
国流行の重大な危険が存在している。従って、かなりの
研究努力は改善された百日咳ワクチン、そして特にこの
疾病に対する保護に必要な成分を合体しながら、従来使
用された全細胞ワクチンと結合した成分を欠く無細胞ワ
クチンの開発に向けられてきた。
国流行の重大な危険が存在している。従って、かなりの
研究努力は改善された百日咳ワクチン、そして特にこの
疾病に対する保護に必要な成分を合体しながら、従来使
用された全細胞ワクチンと結合した成分を欠く無細胞ワ
クチンの開発に向けられてきた。
安全で有効な無細胞百日咳菌ワクチンについ℃の研究は
、過去において全細胞ワクチン中に含有される百日咳菌
の病原性、毒性そして保護性の部分の本体および作用の
メカニズムに関する情報不足により制約されてきた。従
って、作業は百日咳菌体の20種もしくはそれ以上の表
面抗原な単離および精製し、そして免疫反応を誘導する
それらの能力を特徴づけることに集中した〔たとえば、
ザ・ジャーナル・オシ・ジアメリヵン・メディカル・ン
サエティ(J、Am、Med、Soc、)、248 (
1)22〜26、参照〕。調査が示唆されてきた抗原の
例は、リンホサイトーシス・プロモーティング・ファク
ター(lymphocytoaie promotin
g factor)[パーツシス・トキシン(pert
ussia toxin)/IJP?]、フィラメンタ
ス・ヘムアグルチニン(filamentous ha
emagglutinin) [FHA ]、リポポリ
サッカライド(1ipopolysELocharid
e) [LPSI、アグルチノーrン(&ggluti
nogena)、デルモネクロチック・トキシン(de
rmonecrotic toxin)〔DNT〕、熱
不安定性および安定性トキシン、ボリモルホニュクレア
・リューコサイト・インヒビター8フアクター(pol
ymorphonuclear 1eukQoytei
nhibitor factor)、アデニレートΦサ
イクラーゼ(adenylate cyclaee)お
よび他の表面成分を包含スる〔パーツシス・バクシーン
・ワークショップ(Flertussis vacci
ne Workshop) 、1982年2月11日、
ビュロー・オプ・バイオロジックス(Bureau o
f Eiologios)、アメリカ〕。調査のための
他の提案された候補抗原は、トレイキアル・サイトトキ
シン(traoheal cytotoxin)および
各種外膜蛋白質を包含する。
、過去において全細胞ワクチン中に含有される百日咳菌
の病原性、毒性そして保護性の部分の本体および作用の
メカニズムに関する情報不足により制約されてきた。従
って、作業は百日咳菌体の20種もしくはそれ以上の表
面抗原な単離および精製し、そして免疫反応を誘導する
それらの能力を特徴づけることに集中した〔たとえば、
ザ・ジャーナル・オシ・ジアメリヵン・メディカル・ン
サエティ(J、Am、Med、Soc、)、248 (
1)22〜26、参照〕。調査が示唆されてきた抗原の
例は、リンホサイトーシス・プロモーティング・ファク
ター(lymphocytoaie promotin
g factor)[パーツシス・トキシン(pert
ussia toxin)/IJP?]、フィラメンタ
ス・ヘムアグルチニン(filamentous ha
emagglutinin) [FHA ]、リポポリ
サッカライド(1ipopolysELocharid
e) [LPSI、アグルチノーrン(&ggluti
nogena)、デルモネクロチック・トキシン(de
rmonecrotic toxin)〔DNT〕、熱
不安定性および安定性トキシン、ボリモルホニュクレア
・リューコサイト・インヒビター8フアクター(pol
ymorphonuclear 1eukQoytei
nhibitor factor)、アデニレートΦサ
イクラーゼ(adenylate cyclaee)お
よび他の表面成分を包含スる〔パーツシス・バクシーン
・ワークショップ(Flertussis vacci
ne Workshop) 、1982年2月11日、
ビュロー・オプ・バイオロジックス(Bureau o
f Eiologios)、アメリカ〕。調査のための
他の提案された候補抗原は、トレイキアル・サイトトキ
シン(traoheal cytotoxin)および
各種外膜蛋白質を包含する。
初期の抽出物ワクチンはビレマー(L、Pillθmθ
r)〔プロシーデイングズ・オプ・ソサエティ・エキス
ペリメンタル・バイオロジー・アンド・メデイシン(P
roc、Soc、Exp41o1.Med、)、(19
50)75.704〜705〕により開発され、それは
崩壊させた百日咳菌細胞に基くものであり、そして保護
を提供することが認められたがこの製剤の毒性の見地か
ら商業的には採用されなかった。
r)〔プロシーデイングズ・オプ・ソサエティ・エキス
ペリメンタル・バイオロジー・アンド・メデイシン(P
roc、Soc、Exp41o1.Med、)、(19
50)75.704〜705〕により開発され、それは
崩壊させた百日咳菌細胞に基くものであり、そして保護
を提供することが認められたがこの製剤の毒性の見地か
ら商業的には採用されなかった。
示唆されたより最近の百日咳菌抽出物ワクチンの例は、
培養物上澄液からのエンドトキシンの除去を含む英国特
許明細門弟2.083,358A号(武田)中に記載さ
れたもの;アニオン界面活性剤での微生物懸濁液の抽出
を含むフランス特許明細門弟2,047,886号〔イ
ンスチチュート・メリーL −(In5titut M
errieux)]中に記載されたもの;およびパーツ
シス・トキシン(LPF )に基くサシユニット蛋白質
からなる日本特許昭58−222.032号(量大)中
に記載されたものを包含する。
培養物上澄液からのエンドトキシンの除去を含む英国特
許明細門弟2.083,358A号(武田)中に記載さ
れたもの;アニオン界面活性剤での微生物懸濁液の抽出
を含むフランス特許明細門弟2,047,886号〔イ
ンスチチュート・メリーL −(In5titut M
errieux)]中に記載されたもの;およびパーツ
シス・トキシン(LPF )に基くサシユニット蛋白質
からなる日本特許昭58−222.032号(量大)中
に記載されたものを包含する。
無細胞百日咳ワクチンについて行われた作業の多くはた
とえばLPFについてのワクチンを基礎とすることの可
能性に集中している。しがしながら、百日咳ワクチン接
種と結合している従来観察された悪効果の大部分(全部
でないとしても)はトキシンに関係している。破傷風ま
たはシフテリアトキンイドおよびLPSの組合せにおい
て、感受性マウスに実験的脳障害(enoaphalo
pathy)を誘導することが可能である〔スティンマ
ン(L、Steinman)等、ネーチュ7 (Nat
ure)、(1982)、299.768〜74o;レ
ッドヘッド(ueaheaa)等、ワークショップ・オ
ン・ボルデテラ・パーツシス(Workshop on
B、pertussis)、ナショナルΦインスチチ
ュート・オブ・バイオロジ−(Nat、In5t。
とえばLPFについてのワクチンを基礎とすることの可
能性に集中している。しがしながら、百日咳ワクチン接
種と結合している従来観察された悪効果の大部分(全部
でないとしても)はトキシンに関係している。破傷風ま
たはシフテリアトキンイドおよびLPSの組合せにおい
て、感受性マウスに実験的脳障害(enoaphalo
pathy)を誘導することが可能である〔スティンマ
ン(L、Steinman)等、ネーチュ7 (Nat
ure)、(1982)、299.768〜74o;レ
ッドヘッド(ueaheaa)等、ワークショップ・オ
ン・ボルデテラ・パーツシス(Workshop on
B、pertussis)、ナショナルΦインスチチ
ュート・オブ・バイオロジ−(Nat、In5t。
、t BIOl、) 、スタンターツ・アンド・コント
ロールズ(5tandards & 0ontrols
)、ホリーヒル(Ho1ly Hlll)、ハンプステ
ッド(Hampsted)、ロンドン、1983]。従
つCLPFは、そのような合併症がワクチン接種の後に
生じるならば、多分脳損傷に責を有するであろう。
ロールズ(5tandards & 0ontrols
)、ホリーヒル(Ho1ly Hlll)、ハンプステ
ッド(Hampsted)、ロンドン、1983]。従
つCLPFは、そのような合併症がワクチン接種の後に
生じるならば、多分脳損傷に責を有するであろう。
a日咳菌の培養物中に見出され、以下に記載する如きア
デニレートサイクラーゼ活性と結合したある種の蛋白性
物質は、実験動物に投与するときη日咳菌による攻撃に
対し保護を提供しうろことが今や発見された。′アデニ
レートサイクラーゼ活性と通常結合した蛋白性物質が百
日咳菌に対する主要な保護抗原であるとのこの発見は、
全細胞ワクチンで実証された毒性副作用に責を有する他
の公知百日咳菌成分を含有しないかまたは減少した量で
含有する抗原製剤からなるワクチン調合物(vaoci
ne formul&tion)の製造を許容する。
デニレートサイクラーゼ活性と結合したある種の蛋白性
物質は、実験動物に投与するときη日咳菌による攻撃に
対し保護を提供しうろことが今や発見された。′アデニ
レートサイクラーゼ活性と通常結合した蛋白性物質が百
日咳菌に対する主要な保護抗原であるとのこの発見は、
全細胞ワクチンで実証された毒性副作用に責を有する他
の公知百日咳菌成分を含有しないかまたは減少した量で
含有する抗原製剤からなるワクチン調合物(vaoci
ne formul&tion)の製造を許容する。
“アデニレートサイクラーゼ活性と結合した蛋白性物質
(proteinaoeous material a
ssociatedwith adenylate o
yclase activity)’なる胎(以下、’
AOAP ′と略記する)は、ここではアデニレート
サイクラーゼ活性の抽出宛グリシン(a25M)の水性
の酸性(pH3)溶液を用いて行うとき、アデニレート
サイクラーゼ活性と一緒に抽出される蛋白性物質を示す
ものである。上記に限定した如きAOAPは、アデニレ
ートサイクラーゼ酵素力れ自体あるいはこの酵素のため
の結合蛋白質を包含しうる。
(proteinaoeous material a
ssociatedwith adenylate o
yclase activity)’なる胎(以下、’
AOAP ′と略記する)は、ここではアデニレート
サイクラーゼ活性の抽出宛グリシン(a25M)の水性
の酸性(pH3)溶液を用いて行うとき、アデニレート
サイクラーゼ活性と一緒に抽出される蛋白性物質を示す
ものである。上記に限定した如きAOAPは、アデニレ
ートサイクラーゼ酵素力れ自体あるいはこの酵素のため
の結合蛋白質を包含しうる。
アデニレートサイクラーゼ活性は、ヒユーレット(E、
J(ewlett)およびウォルフ(J、Wolff)
の方法〔ザ・ジャーナル・オブ・バクテリオロジ−(、
T、Baoteriol、)、(1976)、127.
890〜898〕により検定した。
J(ewlett)およびウォルフ(J、Wolff)
の方法〔ザ・ジャーナル・オブ・バクテリオロジ−(、
T、Baoteriol、)、(1976)、127.
890〜898〕により検定した。
本発明の第1の態様においては、医薬的に受容しうる担
体と一緒で、随意にたとえばホルマリン、ゲルタールア
ルデヒドまたはβ−プロピオノラクトンを使用してトキ
ンイド化されていてもよいAOA Pからなる百日咳菌
に由来する抗原製剤を包含する百日咳菌に対する保護の
ためのワクチン調合物が提供される。
体と一緒で、随意にたとえばホルマリン、ゲルタールア
ルデヒドまたはβ−プロピオノラクトンを使用してトキ
ンイド化されていてもよいAOA Pからなる百日咳菌
に由来する抗原製剤を包含する百日咳菌に対する保護の
ためのワクチン調合物が提供される。
より#[Kは、AOAPは等亀点濃@ (isoele
otri。
otri。
rocussing) Kより2つのバンドとして検出
でき、1つは等電点(Pl)約7.0を有し、他方(拡
散)のパンFは等1点7.2〜7.4を有する。アデニ
レートサイクララーゼ活性は中性パン)’(Piご7.
0)と殆んど完全に結合したが、AOAPに対するモノ
クロナール抗体は両方のバンドに強く結合した。
でき、1つは等電点(Pl)約7.0を有し、他方(拡
散)のパンFは等1点7.2〜7.4を有する。アデニ
レートサイクララーゼ活性は中性パン)’(Piご7.
0)と殆んど完全に結合したが、AOAPに対するモノ
クロナール抗体は両方のバンドに強く結合した。
上記製剤中のAOAPは一般に、下記の如き製造条件下
に、相対分子■約67.000から73.OoOまで、
特に69,000.および等電点7.0〜7.4を有す
る。
に、相対分子■約67.000から73.OoOまで、
特に69,000.および等電点7.0〜7.4を有す
る。
1相対分子量(relative molecular
weight) ’は、12%(w/w ) Xl?
’)アクリルアミドデル電気泳動および標準分子量標識
により決定されたみかけ分子量を意味する。従って、本
発明の抗原蛋白質の分子量はレムIJ (U、に、La
emmli)により記載された技術〔ネーチュア(Na
ture)、1970゜227.680〜685]Kよ
って便宜に決定し5る。便宜な標準分子量標識は、たと
えばウシ血清アルブミン、キモトリプシノーダンAおよ
びリボヌクレアーゼを包含する。
weight) ’は、12%(w/w ) Xl?
’)アクリルアミドデル電気泳動および標準分子量標識
により決定されたみかけ分子量を意味する。従って、本
発明の抗原蛋白質の分子量はレムIJ (U、に、La
emmli)により記載された技術〔ネーチュア(Na
ture)、1970゜227.680〜685]Kよ
って便宜に決定し5る。便宜な標準分子量標識は、たと
えばウシ血清アルブミン、キモトリプシノーダンAおよ
びリボヌクレアーゼを包含する。
アミノ酸分析はまた、AOAPが通常、たとえばプロリ
ン:グルタミン酸比率が約1=1であるように高比率の
ゾロリンを含有し、そしてこの%微はAOA Pを他の
百日咳蛋白質と区別するのに役立つ。更にAOAPを区
別する特徴は、それがクロラミンTまたはヨウドrン法
のいずれかKよるそのチロシン残基の放射ヨウ素化によ
り検出できないという事実である。
ン:グルタミン酸比率が約1=1であるように高比率の
ゾロリンを含有し、そしてこの%微はAOA Pを他の
百日咳蛋白質と区別するのに役立つ。更にAOAPを区
別する特徴は、それがクロラミンTまたはヨウドrン法
のいずれかKよるそのチロシン残基の放射ヨウ素化によ
り検出できないという事実である。
本発明の好ましい態様に従えば、上記AOAPは次の性
質の1つもしくはそれ以上を有することで特徴づけられ
る蛋白性物質である: (1) プロリン対グルタミン酸比率約1=1;(1)
チロシン残基がヨウ素化されない;(Il+) 細胞
内百日咳菌物質を実質的に含有しない;Ov)相対分子
量67.OD Oがら73,00 Dまで;(v) 等
電点7.0から7.4まで;および、(VD pH約6
以下で酸不安定性である。
質の1つもしくはそれ以上を有することで特徴づけられ
る蛋白性物質である: (1) プロリン対グルタミン酸比率約1=1;(1)
チロシン残基がヨウ素化されない;(Il+) 細胞
内百日咳菌物質を実質的に含有しない;Ov)相対分子
量67.OD Oがら73,00 Dまで;(v) 等
電点7.0から7.4まで;および、(VD pH約6
以下で酸不安定性である。
本発明に従うワクチン調合物における使用のための上記
抗原製剤は、もしも所望ならば、AOAPK加えて、F
IkMの他の抗原性化学物質、たとえば百日咳菌体から
抽出されるAOAPと一緒で得られる物質を含有しうる
。そのような物質はLPSおよびLPFの断片を包含し
え、それらは有害な副作用の可能性の見地において、た
とえばホルマリンでトキンイド化することが必要である
。しかしながら、本抗原製剤は、好ましくは他の抗原成
分を実質的に含有していない。
抗原製剤は、もしも所望ならば、AOAPK加えて、F
IkMの他の抗原性化学物質、たとえば百日咳菌体から
抽出されるAOAPと一緒で得られる物質を含有しうる
。そのような物質はLPSおよびLPFの断片を包含し
え、それらは有害な副作用の可能性の見地において、た
とえばホルマリンでトキンイド化することが必要である
。しかしながら、本抗原製剤は、好ましくは他の抗原成
分を実質的に含有していない。
アデニレートサイクラーゼは、以前に百日咳菌から単離
されている〔ヒユーレット(E、L、Hewlett)
等、ザ・ジャーナル・オプ・バクテリオロジ−(J、B
acterlol、)、127.890〜898、およ
びプロシーディングズ・オブ・ナショナル・アカデミ−
・オブ・サイエンス(Proo、Nat、Acad。
されている〔ヒユーレット(E、L、Hewlett)
等、ザ・ジャーナル・オプ・バクテリオロジ−(J、B
acterlol、)、127.890〜898、およ
びプロシーディングズ・オブ・ナショナル・アカデミ−
・オブ・サイエンス(Proo、Nat、Acad。
sel、)、アメリカ、■、1926〜1930]が、
この物質が百日咳菌に対する保護抗原を示すことについ
ては示唆されていない。ヒユーレット等の研究に従えば
、総酵素量の約0.5%を示す百日咳菌体かもの総アデ
ニレートサイクラーゼ活性の約20チのみが培養上澄液
中に見出され、残りの80チは細胞と結合していた。従
って、抽出工程は、上記抗原製剤における使用のために
充分な量のAOAPを商業規模で生成させるために、A
+1!APが高い純度および収率で得られることを必要
とする。そのような抽出工程で克服しなければならない
主要な困難は、他の蛋白質の中でAOAPは外膜のLP
S骨格に1部分非常に強固に結合していることである。
この物質が百日咳菌に対する保護抗原を示すことについ
ては示唆されていない。ヒユーレット等の研究に従えば
、総酵素量の約0.5%を示す百日咳菌体かもの総アデ
ニレートサイクラーゼ活性の約20チのみが培養上澄液
中に見出され、残りの80チは細胞と結合していた。従
って、抽出工程は、上記抗原製剤における使用のために
充分な量のAOAPを商業規模で生成させるために、A
+1!APが高い純度および収率で得られることを必要
とする。そのような抽出工程で克服しなければならない
主要な困難は、他の蛋白質の中でAOAPは外膜のLP
S骨格に1部分非常に強固に結合していることである。
過去においては、その結合した蛋白質を遊離させるため
に、洗浄剤が一般に膜の可溶化のために使用されてきた
。しかしながら、百日咳菌体かもの外膜蛋白質のための
洗浄剤の使用は、次の欠点を有することが見出されてい
る:(&) 外膜は外膜蛋白質の混合物からなるミセル
凝集物を形成するために可溶化される;(b)外膜蛋白
質は損傷されうる; (→ 細菌中忙存在しない新規抗原が創成される;そし
て、 (d) 抽出された物質は、通常洗浄剤が除去された後
に水不溶性であると認められる。
に、洗浄剤が一般に膜の可溶化のために使用されてきた
。しかしながら、百日咳菌体かもの外膜蛋白質のための
洗浄剤の使用は、次の欠点を有することが見出されてい
る:(&) 外膜は外膜蛋白質の混合物からなるミセル
凝集物を形成するために可溶化される;(b)外膜蛋白
質は損傷されうる; (→ 細菌中忙存在しない新規抗原が創成される;そし
て、 (d) 抽出された物質は、通常洗浄剤が除去された後
に水不溶性であると認められる。
我々は、洗浄剤の使用と対照的に、規制した緩和な酸性
条件を使用する百日咳菌体の抽出は、外膜から水溶性の
形でアデニレートサイクラーゼの著しく増加した収率(
先に報告された技術に比し約40X良い)の抽出を生じ
る。
条件を使用する百日咳菌体の抽出は、外膜から水溶性の
形でアデニレートサイクラーゼの著しく増加した収率(
先に報告された技術に比し約40X良い)の抽出を生じ
る。
従って、本発明の別態様においては、百日咳菌の培養物
を細胞に関しアミノ酸の高張濃度からなる−2.5〜6
.5の水性アミノ酸バッファーで処理し、生成した上澄
液から細胞を分離し、モしてAOAPを含有する抗原製
剤を上澄液から単離することからなる、百日咳菌からA
OAPを含有する抗原製剤の単離法が提供される。
を細胞に関しアミノ酸の高張濃度からなる−2.5〜6
.5の水性アミノ酸バッファーで処理し、生成した上澄
液から細胞を分離し、モしてAOAPを含有する抗原製
剤を上澄液から単離することからなる、百日咳菌からA
OAPを含有する抗原製剤の単離法が提供される。
上記方法において使用されるバッファーは、好ましくは
…約6を提供し、そして有利にはバッファーの酸成分と
して鉱酸、好ましくは塩酸、およびアミノ酸としてグリ
シンまたはアラニンのいずれかを有利に包含する。バッ
ファーでの細胞の処理は、5から50℃まで、好ましく
は60かも45℃まで、理想的には67°Cの湿度で、
有利には1か524時間、好ましくは10かも20時間
まで、0.1〜1M、好ましくは0.25 Mのアミノ
酸濃度で好適に行われる。AOAPは酸不安定性であり
、そしてもしも−が抽出の間に6以下に低下するならば
破壊されうる。
…約6を提供し、そして有利にはバッファーの酸成分と
して鉱酸、好ましくは塩酸、およびアミノ酸としてグリ
シンまたはアラニンのいずれかを有利に包含する。バッ
ファーでの細胞の処理は、5から50℃まで、好ましく
は60かも45℃まで、理想的には67°Cの湿度で、
有利には1か524時間、好ましくは10かも20時間
まで、0.1〜1M、好ましくは0.25 Mのアミノ
酸濃度で好適に行われる。AOAPは酸不安定性であり
、そしてもしも−が抽出の間に6以下に低下するならば
破壊されうる。
細胞とバッファーとのインキュベーションの後、細胞は
捨て、そしてたとえば100,000 Fにおける遠心
分離(粒子物質のすべてを除去)の後に得られた上澄液
は、もしも所望ならば、たとえば硫酸アンモニウム、冷
エタノールまたはアセトンを使用して沈澱させる。
捨て、そしてたとえば100,000 Fにおける遠心
分離(粒子物質のすべてを除去)の後に得られた上澄液
は、もしも所望ならば、たとえば硫酸アンモニウム、冷
エタノールまたはアセトンを使用して沈澱させる。
得られた上澄抽出液は下記の如きケンドリック試験(K
endrick Te5t)で試験し、そしてマウスに
おける百日咳菌での脳内攻撃に対し保護を提供すること
が見出された。アデニレートサイクラーゼ活性を含有し
ない対照ワクチンは百日咳菌での攻撃に対して保護を少
ししかまたは全く提供しないことが見出され、AOAP
は、実際に、免疫において最も重要な因子でありうるこ
とが示唆された。
endrick Te5t)で試験し、そしてマウスに
おける百日咳菌での脳内攻撃に対し保護を提供すること
が見出された。アデニレートサイクラーゼ活性を含有し
ない対照ワクチンは百日咳菌での攻撃に対して保護を少
ししかまたは全く提供しないことが見出され、AOAP
は、実際に、免疫において最も重要な因子でありうるこ
とが示唆された。
非保設全細胞ワクチンのパッチの分析はまた非保護がア
デニレートサイクラーゼ活性の欠乏と結合する傾向のあ
ることを示し、AOAPは百日咳菌に対する免疫応答の
誘導に必要な鍵抗原であり5ることを更に示唆した。
デニレートサイクラーゼ活性の欠乏と結合する傾向のあ
ることを示し、AOAPは百日咳菌に対する免疫応答の
誘導に必要な鍵抗原であり5ることを更に示唆した。
しかしながら、ケンドリンク試験に使用される上澄抽出
液はまたLPSの断片を包含する他の蛋白質と複合体化
したAOAPを少量含有し、この場合、本発明に従うワ
クチン調合物における使用のために本物質を更に精製す
ることが望ましい。従って、たとえば更にこの精製は、
複合体化物質を除去するためのイオン交換クロマトグラ
フィおよび(または)製造等電点濃縮法によって行いう
る。別途に、2つの精製法は組合せることができ、即ち
、DEA]Icデルに保持されない物1!(即ち、非複
合体化物質)は等電点濃縮されうる。精製法はまたクロ
マト濃縮(ohromatofoousaing )を
包含しうる。
液はまたLPSの断片を包含する他の蛋白質と複合体化
したAOAPを少量含有し、この場合、本発明に従うワ
クチン調合物における使用のために本物質を更に精製す
ることが望ましい。従って、たとえば更にこの精製は、
複合体化物質を除去するためのイオン交換クロマトグラ
フィおよび(または)製造等電点濃縮法によって行いう
る。別途に、2つの精製法は組合せることができ、即ち
、DEA]Icデルに保持されない物1!(即ち、非複
合体化物質)は等電点濃縮されうる。精製法はまたクロ
マト濃縮(ohromatofoousaing )を
包含しうる。
上記精製工程の後、AOAPは、もしも所望ならば、た
とえば本物質なAOAPK対する適当なモノクロナール
抗体を含有する免疫吸着カラムに通すことKより更に精
製し5る。
とえば本物質なAOAPK対する適当なモノクロナール
抗体を含有する免疫吸着カラムに通すことKより更に精
製し5る。
本発明に従う上記方法により製造されたものを包含する
上記抗原製剤は、人における百日咳に対する免疫を誘導
するためのワクチン調合物中に合体しうる。この目的の
ために1抗原蛋白質は、医薬的に受容しうる担体または
アジュバントとの結合において存在しうる。
上記抗原製剤は、人における百日咳に対する免疫を誘導
するためのワクチン調合物中に合体しうる。この目的の
ために1抗原蛋白質は、医薬的に受容しうる担体または
アジュバントとの結合において存在しうる。
この場合、医薬的に受容しうる担体は、患者に抗原を導
入するために担体として適当な液体媒質である。そのよ
うな担体の例は、食塩溶液である。
入するために担体として適当な液体媒質である。そのよ
うな担体の例は、食塩溶液である。
抗原蛋白質は溶液中に、あるいは担体中に固体として懸
濁化されうる。
濁化されうる。
ワクチン調合物はまた、免疫応答を刺激するためのアジ
ュバントを包含しえ、それによってワクチンの効果が高
められる。本発明における使用のための便宜なアジュバ
ントは、たとえば水酸化アルミニウムおよびリン酸アル
ミニウムを包含する。
ュバントを包含しえ、それによってワクチンの効果が高
められる。本発明における使用のための便宜なアジュバ
ントは、たとえば水酸化アルミニウムおよびリン酸アル
ミニウムを包含する。
便宜には、ワクチン調合物は、0.01がら5wy/m
lまで、好ましくは0.06から2111P/dまでの
範囲内、最も好ましくは0.3η/1の最終濃度の抗原
蛋白質を含有して存在する。調合の後、ワクチンは滅菌
容器中に入れられ、それはついで密封しそして低温たと
えば4℃で貯蔵され、あるいは凍結乾燥しうる。
lまで、好ましくは0.06から2111P/dまでの
範囲内、最も好ましくは0.3η/1の最終濃度の抗原
蛋白質を含有して存在する。調合の後、ワクチンは滅菌
容器中に入れられ、それはついで密封しそして低温たと
えば4℃で貯蔵され、あるいは凍結乾燥しうる。
百日咳に対し人間に免疫を誘導するために、適当に調合
されたワクチンの1もしくはそれ以上の用量が投薬され
うる。各投薬は、ワクチン0.1から2dまで、好まし
くは0.2から1Mまで、好ましくは0.511/であ
るのが推奨される。本発明は、更に他の態様において、
宿主に対し上記に限定した如きワクチン調合物の有効量
の投与からなる、六において百日咳に対する免疫を誘導
する方法を提供する。
されたワクチンの1もしくはそれ以上の用量が投薬され
うる。各投薬は、ワクチン0.1から2dまで、好まし
くは0.2から1Mまで、好ましくは0.511/であ
るのが推奨される。本発明は、更に他の態様において、
宿主に対し上記に限定した如きワクチン調合物の有効量
の投与からなる、六において百日咳に対する免疫を誘導
する方法を提供する。
本発明はまた、人において百日咳に対する免疫の誘導に
おける使用のためのワクチンの製造においてAC!AP
(上記に限定した如き)の使用を包含する。
おける使用のためのワクチンの製造においてAC!AP
(上記に限定した如き)の使用を包含する。
本発明のワクチンは、経口および非経口(たとえば皮下
または筋肉内)注射を包含するワクチンの投与のための
任意の通常の方法により投与しうる。処置はワクチンの
1回投薬、あるいはある時間内の複数回の投薬からなり
うる。
または筋肉内)注射を包含するワクチンの投与のための
任意の通常の方法により投与しうる。処置はワクチンの
1回投薬、あるいはある時間内の複数回の投薬からなり
うる。
本発明に従うワクチンはまた、1種もしくはそれ以上の
他の抗原性成分、たとえば適当にトキソイド化されたチ
フスおよびジフテリアトキシン、あるいは随伴する免疫
応答を回避する百日咳菌の変異株の出現可能性を減少さ
せるために他の百日咳菌抗原たとえばトキソイド化LP
Fを包含しうる。
他の抗原性成分、たとえば適当にトキソイド化されたチ
フスおよびジフテリアトキシン、あるいは随伴する免疫
応答を回避する百日咳菌の変異株の出現可能性を減少さ
せるために他の百日咳菌抗原たとえばトキソイド化LP
Fを包含しうる。
以下の実施例で本発明を説明する:
例1
酸グリシン加水分解および粗性膜蛋白質の製造細胞を指
数相に至るXで採取し、そして8000y〔ンルバール
(5Orvall )、GSA、アングルヘッド〕で、
4℃において20分間回転した。上澄液をサイホン除去
し、そして細胞を直ちに蒸留水中に、20〜30Fn9
/Iu細胞乾燥重量の濃度で緩和に再懸濁した。この容
量の兄の1Mグリシン−HOtバッファー(pi−13
,0)を緩和な攪拌下に加えて、250mMグリシンの
最終濃度を得た。グリシン溶液は、酵素活性を停止させ
るためにEDTA(最終混合物中に5 mMを得るため
)を含有しヘーをチェックし、そして必要な場合、1〜
2Mpatを使用して…6.0に再調節した。混合物を
67℃の水浴上で温度が平衡に達するまで緩和に攪拌し
、ついで67°Cで(攪拌なしK)1夜(18時間)イ
ンキュベートした。−をついで、1oMNaOHを使用
して7.2〜7.4に調節し、それは局所過剰を避ける
ためKゆっくり加えた。細胞を50[10gで、5℃に
おいて20分間沈降させ、上澄液をサイホンで取り出し
、氷水浴中で1〜2°Gに冷却し、そして予冷却アセト
ン(−20から一40’Cまで)2容量を温度が1〜2
°C以上に上昇するのを避けるためにゆつ<p7J]え
た。ついで混合物を一20°Cに6〜5時間保ち、そし
て沈澱を予冷却(−100G)アングルヘッド中に40
00&、20分間で採取した。上澄液をサイホンで取り
出し、そして捨てた。沈降した沈澱を、水冷蒸留水中に
、細胞懸濁液のもとの容量の約l/2oK溶がした。つ
いで溶液から、50000&で、5°Cにおいて90〜
120分間回転することにより不溶物および担体を除去
した。上澄液を採取し、そして凍結して保存しまたは凍
結乾燥した。凍結乾燥前に1%W/Vマンニトールを加
えた。細胞の乾燥重量1y当り40から801R9まで
の蛋白質が得られた。
数相に至るXで採取し、そして8000y〔ンルバール
(5Orvall )、GSA、アングルヘッド〕で、
4℃において20分間回転した。上澄液をサイホン除去
し、そして細胞を直ちに蒸留水中に、20〜30Fn9
/Iu細胞乾燥重量の濃度で緩和に再懸濁した。この容
量の兄の1Mグリシン−HOtバッファー(pi−13
,0)を緩和な攪拌下に加えて、250mMグリシンの
最終濃度を得た。グリシン溶液は、酵素活性を停止させ
るためにEDTA(最終混合物中に5 mMを得るため
)を含有しヘーをチェックし、そして必要な場合、1〜
2Mpatを使用して…6.0に再調節した。混合物を
67℃の水浴上で温度が平衡に達するまで緩和に攪拌し
、ついで67°Cで(攪拌なしK)1夜(18時間)イ
ンキュベートした。−をついで、1oMNaOHを使用
して7.2〜7.4に調節し、それは局所過剰を避ける
ためKゆっくり加えた。細胞を50[10gで、5℃に
おいて20分間沈降させ、上澄液をサイホンで取り出し
、氷水浴中で1〜2°Gに冷却し、そして予冷却アセト
ン(−20から一40’Cまで)2容量を温度が1〜2
°C以上に上昇するのを避けるためにゆつ<p7J]え
た。ついで混合物を一20°Cに6〜5時間保ち、そし
て沈澱を予冷却(−100G)アングルヘッド中に40
00&、20分間で採取した。上澄液をサイホンで取り
出し、そして捨てた。沈降した沈澱を、水冷蒸留水中に
、細胞懸濁液のもとの容量の約l/2oK溶がした。つ
いで溶液から、50000&で、5°Cにおいて90〜
120分間回転することにより不溶物および担体を除去
した。上澄液を採取し、そして凍結して保存しまたは凍
結乾燥した。凍結乾燥前に1%W/Vマンニトールを加
えた。細胞の乾燥重量1y当り40から801R9まで
の蛋白質が得られた。
例2
DEAE−トリスアクリルカラム(3X16傭)を0.
025 M T RI S 、0.035 M Na0
tバツフアー(FJ(8,8)で平衡化し、そして例1
で得られた物質(蛋白質111まで)を平衡化バッファ
ーに対し透析し、そしてカラムに6011/時間でポン
プ注入した。画分(1管当り99滴、約51)を、プー
ル(pools ) 1〜13において組合せた。適用
した全蛋白質の1部分(約4)はゲルベラ)Kよって遅
延されず、そして大きなピークとして採取されたく第1
図、0.035M)。ついで保持された物質を、0.0
25 M )リスバッファー(pH8,8)中の0.1
.0.2.0.6および1.0 M Na0tを使用し
て溶出した。画分を保持し、そして蛋白の分離を確認す
るためKSDS−PAGE板に適用した。ACAPは、
5DS−PAGEにより示される如くカラムによって遅
延されない物質中に存在したが、0.2 M NaC!
tIcより溶出される遅延された物質中にまた存在した
。
025 M T RI S 、0.035 M Na0
tバツフアー(FJ(8,8)で平衡化し、そして例1
で得られた物質(蛋白質111まで)を平衡化バッファ
ーに対し透析し、そしてカラムに6011/時間でポン
プ注入した。画分(1管当り99滴、約51)を、プー
ル(pools ) 1〜13において組合せた。適用
した全蛋白質の1部分(約4)はゲルベラ)Kよって遅
延されず、そして大きなピークとして採取されたく第1
図、0.035M)。ついで保持された物質を、0.0
25 M )リスバッファー(pH8,8)中の0.1
.0.2.0.6および1.0 M Na0tを使用し
て溶出した。画分を保持し、そして蛋白の分離を確認す
るためKSDS−PAGE板に適用した。ACAPは、
5DS−PAGEにより示される如くカラムによって遅
延されない物質中に存在したが、0.2 M NaC!
tIcより溶出される遅延された物質中にまた存在した
。
(b)顆粒化ゲル中の製造フラットベット等電薫製縮(
IEF) これはLKB勧告(recommendation )
(アプリケーション・ノー) (Applicati
on Note ) 198、LKB−プロダクターA
B (L K B −ProductarAB)、プ
o ’v (Br0mm& )、スエーデン〕K従い行
った。ウルトロデックス(Ultrodex ) (L
KE )1’および予混合アムポリン(’Amphol
ine ) 5 dの懸濁液(pi−13,5〜9.5
)を、蒸留水中に最終容量10 Qd1c懸濁し、水平
) 1’ −C10,8X 24.3cIn) K注入
いそして空気流下洗勧告限界内に蒸発した。蒸留水中の
同じアムポリンの1:21釈中に浸した砥石(pape
r wick8) (L K B %2117−106
)3個の層にした片をトレーの各片に置いた。例2aか
らの物質を、適用型板(application te
mplate ) (2X 9.4 cm )を使用し
て埋めこみ、それは陰イオン末端からのその長さに沿っ
て込〜スの距離においてデル中に圧しつけ、密封したデ
ルを除去し、10d容の使い捨て注射器に移し、例2a
かもの該物質3m(蛋白質500R9までを含有)中に
懸濁し、そして最後にその除去によ勺形成した空のスペ
ースに戻し注入した。ついでデルを必要ならばへらで平
滑にし、そして20分間平衡化した。その間、砥石1個
をリン酸(比重1.75)の1:100希釈中に浸し、
そして陰イオン末端において紙片に加え、そしてl M
NaOH中の他のものは陽イオン末端においた。
IEF) これはLKB勧告(recommendation )
(アプリケーション・ノー) (Applicati
on Note ) 198、LKB−プロダクターA
B (L K B −ProductarAB)、プ
o ’v (Br0mm& )、スエーデン〕K従い行
った。ウルトロデックス(Ultrodex ) (L
KE )1’および予混合アムポリン(’Amphol
ine ) 5 dの懸濁液(pi−13,5〜9.5
)を、蒸留水中に最終容量10 Qd1c懸濁し、水平
) 1’ −C10,8X 24.3cIn) K注入
いそして空気流下洗勧告限界内に蒸発した。蒸留水中の
同じアムポリンの1:21釈中に浸した砥石(pape
r wick8) (L K B %2117−106
)3個の層にした片をトレーの各片に置いた。例2aか
らの物質を、適用型板(application te
mplate ) (2X 9.4 cm )を使用し
て埋めこみ、それは陰イオン末端からのその長さに沿っ
て込〜スの距離においてデル中に圧しつけ、密封したデ
ルを除去し、10d容の使い捨て注射器に移し、例2a
かもの該物質3m(蛋白質500R9までを含有)中に
懸濁し、そして最後にその除去によ勺形成した空のスペ
ースに戻し注入した。ついでデルを必要ならばへらで平
滑にし、そして20分間平衡化した。その間、砥石1個
をリン酸(比重1.75)の1:100希釈中に浸し、
そして陰イオン末端において紙片に加え、そしてl M
NaOH中の他のものは陽イオン末端においた。
フラットベッドIKF装置〔ファルマシア(Pharm
acia )型yBx−3000)中のトレー支持体を
、操作の間、水道水(15°G)を流すこと忙より冷却
した。ピルを一定の8ワツトで操作した。
acia )型yBx−3000)中のトレー支持体を
、操作の間、水道水(15°G)を流すこと忙より冷却
した。ピルを一定の8ワツトで操作した。
AOAPは2つのバンドとして検出され、1つはpI
7.0のもの、そして他方(拡散)バンドは1)I 7
.2〜7.4のものであった。アデニレートサイクラー
ゼ活性は中心バンド(pr 7.0 )と殆んど完全に
結合したが、ACAP’に対するモノクロナール抗体は
両方のパンPに強く結合した。
7.0のもの、そして他方(拡散)バンドは1)I 7
.2〜7.4のものであった。アデニレートサイクラー
ゼ活性は中心バンド(pr 7.0 )と殆んど完全に
結合したが、ACAP’に対するモノクロナール抗体は
両方のパンPに強く結合した。
ついで、金属型板を使用して30の平行な場に分割し、
ピルをへらで冬場からかき取り、そして蒸留水1dを含
有する試験管に移した。各画分の−をこの段階で測定し
た。ついでゲル懸濁液を小さなプラスチックカラムに移
し、0.2M重炭酸アンモニウムバッファー(pH7,
0)2.wJで溶出し、そしてrル不含溶出液を凍結(
−40°O)した。
ピルをへらで冬場からかき取り、そして蒸留水1dを含
有する試験管に移した。各画分の−をこの段階で測定し
た。ついでゲル懸濁液を小さなプラスチックカラムに移
し、0.2M重炭酸アンモニウムバッファー(pH7,
0)2.wJで溶出し、そしてrル不含溶出液を凍結(
−40°O)した。
(C) 分析等電点濃縮
(1)上記例2(b)と同じ方法を用いたが、8M尿素
の存在における12%ポリアクリルアミドデルを使用し
た。例2(b)と同じ結果が得られた。
の存在における12%ポリアクリルアミドデルを使用し
た。例2(b)と同じ結果が得られた。
(−)同じ技術であるが10%ンルビトールの存在にお
けるアガロースデルを使用して、I)I 4.5から6
.0までの4つの免疫反応性バンドが示された。
けるアガロースデルを使用して、I)I 4.5から6
.0までの4つの免疫反応性バンドが示された。
pI 4.0のバンドは大部分のアデニレートサイクラ
ーゼ活性を保持した。
ーゼ活性を保持した。
例 3
モノクロナール免疫吸着カラムを使用するACAPの精
製 ACAPに特異のモノクロナールイムノグロブリンを含
有するマウス腹水を、室温において27%w/v Na
2SO42容量の添加により沈殿させ、そして2〜4時
間放置し、その後沈降(2000,9゜15分間)させ
た。沈降物を再溶解し、そしてPBSに対し透析した。
製 ACAPに特異のモノクロナールイムノグロブリンを含
有するマウス腹水を、室温において27%w/v Na
2SO42容量の添加により沈殿させ、そして2〜4時
間放置し、その後沈降(2000,9゜15分間)させ
た。沈降物を再溶解し、そしてPBSに対し透析した。
この蛋白質500η(UV決定)を、製造者(ファルマ
シア)の指示に従い、充填CN Br−セファロースC
L 4 B 70dKカツプリングさせた。セファデッ
クスG−50(中程度)を5001mX25龍カラムに
220o++のベッドの高さにつめた。カラムを溶出バ
ッファー(0,01%チオメルサール(Thiomer
sal )を含有する0、2M重炭酸アンモニウム、p
H7,0)で溶出した後、腐12バロチーニ(Ba1l
otini )ガラス玉を5 mmの層の厚さにセファ
デックスベットの頂上部に注入した。更に洗滌した後、
免疫吸着rルをバロチーニガラス玉層に注入し、これは
セフ7デツクスベツドから分離して両者を分離させた。
シア)の指示に従い、充填CN Br−セファロースC
L 4 B 70dKカツプリングさせた。セファデッ
クスG−50(中程度)を5001mX25龍カラムに
220o++のベッドの高さにつめた。カラムを溶出バ
ッファー(0,01%チオメルサール(Thiomer
sal )を含有する0、2M重炭酸アンモニウム、p
H7,0)で溶出した後、腐12バロチーニ(Ba1l
otini )ガラス玉を5 mmの層の厚さにセファ
デックスベットの頂上部に注入した。更に洗滌した後、
免疫吸着rルをバロチーニガラス玉層に注入し、これは
セフ7デツクスベツドから分離して両者を分離させた。
カラムを溶出バッファーで更に洗滌し、そして最後に別
のバロチー二ガラス玉層を100朋の高さの免疫吸着ベ
ッドの頂上部に入れてカラムの頂上部を保護した。
のバロチー二ガラス玉層を100朋の高さの免疫吸着ベ
ッドの頂上部に入れてカラムの頂上部を保護した。
免疫吸着カラム上のACAPを分離するために、蛋白質
〔ロウリー(Lowry ) ) 1 ’R9/ il
jを含有するDEAE−)リスアクリル分離(例2)か
らの非保持溶出液を、免疫吸着カラムに5°Oにおいて
0.25+wJ/分で適用し、溶出バッファー(0,2
M重炭酸アンモニウム、−7,0,01%W/Vチオメ
ルサール〕で洗滌し、そしてベースラインが安定化され
た後KX溶出バッファー中の6M尿$501−/νをカ
ラムに適用して吸着物質を溶出した。セファデックスG
−50ペツげ上の免疫吸着物質の位置決定は、操作中に
尿素からの蛋白質の同時分離を可能とした。
〔ロウリー(Lowry ) ) 1 ’R9/ il
jを含有するDEAE−)リスアクリル分離(例2)か
らの非保持溶出液を、免疫吸着カラムに5°Oにおいて
0.25+wJ/分で適用し、溶出バッファー(0,2
M重炭酸アンモニウム、−7,0,01%W/Vチオメ
ルサール〕で洗滌し、そしてベースラインが安定化され
た後KX溶出バッファー中の6M尿$501−/νをカ
ラムに適用して吸着物質を溶出した。セファデックスG
−50ペツげ上の免疫吸着物質の位置決定は、操作中に
尿素からの蛋白質の同時分離を可能とした。
例 4
百日咳菌の培養
微生物の生育のために使用した限定培地は従来記載〔ノ
ボ) ニー (Novotny )およびプルマウス(
Br0Oke5 )、1975 )された如きスタイナ
ー(8teiner )およびショルト(5chO1t
e) (1971)の組成に基(ものであった。すべて
の培地は36〜37℃で生育させた。ゆる(栓をした振
盪フラスコ(培地200−を入れた500d容円錐フラ
スコ)中の液体培地に、2%寒天および5%ウマ血液を
加えたニーエン・ウイラー培地(Cohen −Whe
eler medium )上48時間生育させ、セし
てを使用して51または701容の全ガラス醗酵器中の
培地に接種し、−男声は2 M HCjの管理した添加
により7.6に維持し、セして渦動振盪により5〜10
チ罠おける溶存酸素飽和を維持した。培養物を指数相終
末期の前、即ち約66時間のインキュベーションの後採
取した〔ノボトニー(Novot、ffy)およびコラ
ンレイ(Cownley )、1978)。
ボ) ニー (Novotny )およびプルマウス(
Br0Oke5 )、1975 )された如きスタイナ
ー(8teiner )およびショルト(5chO1t
e) (1971)の組成に基(ものであった。すべて
の培地は36〜37℃で生育させた。ゆる(栓をした振
盪フラスコ(培地200−を入れた500d容円錐フラ
スコ)中の液体培地に、2%寒天および5%ウマ血液を
加えたニーエン・ウイラー培地(Cohen −Whe
eler medium )上48時間生育させ、セし
てを使用して51または701容の全ガラス醗酵器中の
培地に接種し、−男声は2 M HCjの管理した添加
により7.6に維持し、セして渦動振盪により5〜10
チ罠おける溶存酸素飽和を維持した。培養物を指数相終
末期の前、即ち約66時間のインキュベーションの後採
取した〔ノボトニー(Novot、ffy)およびコラ
ンレイ(Cownley )、1978)。
例 5
ケンドリック(Kendrick )試験これは、体重
14〜16gのMFlまたはNIHマウス(OLAC,
カテゴリー3、気管支敗血多くを含まない〕を使用し、
百日咳ワクチンについてのW、 H,O,要求に従い遂
行した。0.5d容量中の抗原を腹腔内に接種し、そし
て最高希釈および6回の4倍連続希釈からなった。2週
間後K、推奨された攻撃株18−323 (100〜2
00LDao )を使用して、マウスを攻撃した。各群
の生存数を、パラノル・ライン・ゾロ♂ット分析(pa
rallel 1ine probit analys
ls )の計画表を使用し、プリティッシュ・パーツシ
ス・リファレンス・ワクチン(Br1tish Per
tusis ReferenceVaccine )
66 / 84に関係して、RD、oおよび相対強度の
計算に使用した。FHA/LPFワクチンを使用して、
比較試験をまた行った。結果を表1に示す。
14〜16gのMFlまたはNIHマウス(OLAC,
カテゴリー3、気管支敗血多くを含まない〕を使用し、
百日咳ワクチンについてのW、 H,O,要求に従い遂
行した。0.5d容量中の抗原を腹腔内に接種し、そし
て最高希釈および6回の4倍連続希釈からなった。2週
間後K、推奨された攻撃株18−323 (100〜2
00LDao )を使用して、マウスを攻撃した。各群
の生存数を、パラノル・ライン・ゾロ♂ット分析(pa
rallel 1ine probit analys
ls )の計画表を使用し、プリティッシュ・パーツシ
ス・リファレンス・ワクチン(Br1tish Per
tusis ReferenceVaccine )
66 / 84に関係して、RD、oおよび相対強度の
計算に使用した。FHA/LPFワクチンを使用して、
比較試験をまた行った。結果を表1に示す。
例 6
ACAPのアミノ酸分析
アミノ酸分析を、ランク・ヒルが−・クロマスペック(
Rank Hllger Chromaspek )ア
ミノ酸分析機を使用して行った。検体は、厚壁(thi
Ck−walled )パイレックス試験管(7,5X
1.2cm )中の乾燥した検体物質K、0.1%(
W/v)フェノールを含有する6NHCj(BDHアリ
スター(Ar15tar )等級から希釈〕250μl
の添加により製造した。ついで狭い穴を導くために試験
管を、酸素−天然ガス流−トーチ焔中で引き延ばした。
Rank Hllger Chromaspek )ア
ミノ酸分析機を使用して行った。検体は、厚壁(thi
Ck−walled )パイレックス試験管(7,5X
1.2cm )中の乾燥した検体物質K、0.1%(
W/v)フェノールを含有する6NHCj(BDHアリ
スター(Ar15tar )等級から希釈〕250μl
の添加により製造した。ついで狭い穴を導くために試験
管を、酸素−天然ガス流−トーチ焔中で引き延ばした。
内容物をドライアイス−エタノール浴中で凍結した後、
各試験管を分岐管およびトラップを経て高真空ポンプに
連結し、そして空気を除去するために10分間放置した
。ついで試験管を封印し、そして加水分解のために11
0°Cにおいて炉中に入れた。加水分解した検体を真空
乾燥器中、粒状水酸化ナトリウム上で乾燥した。乾燥し
た残渣を、自動分析のために、アミノ酸分析器出発バッ
ファー250μjに溶かした。表2に示すアミノ酸値は
、68時間加水分解値を使用したバリンおよびインロイ
シンの場合を除いて、2回の24.48および68時間
加水分解から得られた結果の平均である。
各試験管を分岐管およびトラップを経て高真空ポンプに
連結し、そして空気を除去するために10分間放置した
。ついで試験管を封印し、そして加水分解のために11
0°Cにおいて炉中に入れた。加水分解した検体を真空
乾燥器中、粒状水酸化ナトリウム上で乾燥した。乾燥し
た残渣を、自動分析のために、アミノ酸分析器出発バッ
ファー250μjに溶かした。表2に示すアミノ酸値は
、68時間加水分解値を使用したバリンおよびインロイ
シンの場合を除いて、2回の24.48および68時間
加水分解から得られた結果の平均である。
シスチン、システィンおよびトリプトファンの値は、こ
の方法によっては決定できなかった。
の方法によっては決定できなかった。
表 2
残基
アスパライン酸(+アスパライン)48スレオニン 3
3 セリン 66 グルタミン酸(+グルタミン)62 プロリン 60 グリシン 77 アラニン 82 バリン 54 メチオニン 4 インロイシン 22 0イシン 50 チ0シン 7 フェニルアラニン 11 ヒスチゾン 16 リジン 19 アルギニン 37 例 7 ワクチン調合物 免疫における使用のためのワクチンは、通常の技術によ
り次の成分から製造し5る: 咳ワクチン ワクチン各1dは次のものを含有する:ジフテリアトキ
ンイド >60x、tr。
3 セリン 66 グルタミン酸(+グルタミン)62 プロリン 60 グリシン 77 アラニン 82 バリン 54 メチオニン 4 インロイシン 22 0イシン 50 チ0シン 7 フェニルアラニン 11 ヒスチゾン 16 リジン 19 アルギニン 37 例 7 ワクチン調合物 免疫における使用のためのワクチンは、通常の技術によ
り次の成分から製造し5る: 咳ワクチン ワクチン各1dは次のものを含有する:ジフテリアトキ
ンイド >60x、tr。
破傷風トキソイド >1201.U。
本発明罠従う百日咳菌抗体 > 0.363■ホウ酸ナ
トリウム < 10.03 ダコハク酸 < 3.10
〜 チオメルサール 0.04〜0.2ダ 塩化ナトリクム <8.5 雫 水 適量 全量1d b)吸着したジフテリア、破傷風および百日咳ワジフテ
リア、破傷風および百日咳菌成分を、水酸化アルミニウ
ムデル上に標準技術により吸着させる。
トリウム < 10.03 ダコハク酸 < 3.10
〜 チオメルサール 0.04〜0.2ダ 塩化ナトリクム <8.5 雫 水 適量 全量1d b)吸着したジフテリア、破傷風および百日咳ワジフテ
リア、破傷風および百日咳菌成分を、水酸化アルミニウ
ムデル上に標準技術により吸着させる。
ワクチン各1罰は次のものを含有する:ジフテリアトキ
ンイド > 6D 1.U。
ンイド > 6D 1.U。
破傷風トキソイド > 1200.L。
本発明に従う抗原 >0.363 1Ry不溶性アルミ
ニウム塩 <0.093ミリモル(2,51R9)A/
、に当量ホウ酸ナトリウム <8.01m9 コハク酸 < 2.481J9 チオメルサール 0.04〜0.2■ 塩化ナトリウム <6.8 ダ 水 適量 全量1d C)百日咳ワクチン ワクチン各1dは次のものを含有する:本発明に従5抗
原> 0.3631116チオ)kt−ル0.04〜0
.2119塩化ナトリウム <8.5 ダ 水 適量 全量 1d
ニウム塩 <0.093ミリモル(2,51R9)A/
、に当量ホウ酸ナトリウム <8.01m9 コハク酸 < 2.481J9 チオメルサール 0.04〜0.2■ 塩化ナトリウム <6.8 ダ 水 適量 全量1d C)百日咳ワクチン ワクチン各1dは次のものを含有する:本発明に従5抗
原> 0.3631116チオ)kt−ル0.04〜0
.2119塩化ナトリウム <8.5 ダ 水 適量 全量 1d
Claims (1)
- 【特許請求の範囲】 (1)医薬的に受容しうる担体と一緒で、アデニレート
サイクラーゼ活性と結合した蛋白性物質日咳菌に対する
保鏝のためのワクチン調合物。 (2)該AOAPが相対分子量(MY ) 67.00
0〜73.000を有する、特許請求の範囲第1項に従
うワクチン調合物。 (3)該AOAPが分子量約69,000を有する、特
許請求の範囲第1項および第2項のいずれかに従うワク
チン調合物。 (4)該AOAPが製造光電点濃縮法(工ICP)条件
下に等電点(PI)7.0〜7.4を有する、特許請求
の範囲第1項から第4項までのいずれかに従うワクチン
調合物。 (5) AOAPが等電点約7.0を有する、特許請求
の範囲第4項に従うワクチン調合物。 (6)該AOAPにおけるプロリン対グルタミン酸残基
の比率がほぼ1:1である、特許請求の範囲第1項から
第5項までのいずれかに従うワクチン調合物。 (力 該A OAP中に含有されるチロシン残基がヨー
ド化しえないものである、特許請求の範囲第1項から第
6項までのいずれかに従うワクチン調合物。 (8)百日咳菌に由来する細胞内物質を実質的に含有し
℃いない、特許請求の範囲第1項から第7項までのいず
れかに従うワクチン調合物。 (9)医薬的に受容しうるアゾユパントを特徴とする特
許請求の範囲第1項から第8項までのいずれかに従うワ
クチン調合物。 CI(11種もしくはそれ以上の他の抗原成分を特徴と
する特許請求の範囲第1項から第9項までのいずれかに
従うワクチン調合物。 仕り 百日咳菌細胞の培養物を、細胞に関しアミノ酸の
高張濃度からなるp)12.5〜6.5の水性アミノ酸
バッファーで処理し、生成した上澄液から細胞を分離し
、干してAOAPを含有する抗原製剤を上澄液から単離
することからなる、百日咳菌からAOAPを含有する抗
原製剤を単離する方法。 O2アミノ酸がグリシンおよびアラニンから選択される
、特許請求の範囲第11項に従う方法。 O31上澄液からの該単離がイオン交換クロマトグラフ
ィからなる、特許請求の範囲第11項および第12項の
いずれかに従う方法。 04)上澄液からの該単離が等′畦点濃縮からなる、特
許請求の範囲第11項から第16項までのいずれかに従
5方法。 (l!9 該単離が該AOAPに対する適当なモノクロ
ナール抗体を包含する免疫吸着カラムへの単離した物質
の通過から更になる、特許請求の範囲第13項および第
14項のいずれかに従う方法。 OQ 該AOA Pが特許請求の範囲第11項がら第1
5項までのいずれかに従う方法により製造される、特許
請求の範囲第1項から第10項までのいずれかに従5ワ
クチン調合物。 0η AOAPo 0〜 次の性質を有することを特徴とする、AOAP:
(1) ゾロリン対グルタミン酸の比率約1=1;(M
) チロシン残基がヨード化されない;(#I) M胸
肉百日咳菌物質を実質的に含有しない;Gy) 相対分
子ff167,000カラ73,0001T;(v)等
電点7.0から7.4まで;および、(VOpH約6以
下で酸不安定性である。
Applications Claiming Priority (2)
Application Number | Priority Date | Filing Date | Title |
---|---|---|---|
GB8412207 | 1984-05-12 | ||
GB848412207A GB8412207D0 (en) | 1984-05-12 | 1984-05-12 | Antigenic preparations |
Related Child Applications (2)
Application Number | Title | Priority Date | Filing Date |
---|---|---|---|
JP11193416A Division JP2000072690A (ja) | 1984-05-12 | 1999-07-07 | ワクチンの製造方法 |
JP11193312A Division JP2000053585A (ja) | 1984-05-12 | 1999-07-07 | 抗原の精製方法 |
Publications (2)
Publication Number | Publication Date |
---|---|
JPS60246321A true JPS60246321A (ja) | 1985-12-06 |
JPH07116053B2 JPH07116053B2 (ja) | 1995-12-13 |
Family
ID=10560891
Family Applications (3)
Application Number | Title | Priority Date | Filing Date |
---|---|---|---|
JP60099413A Expired - Lifetime JPH07116053B2 (ja) | 1984-05-12 | 1985-05-10 | 抗原性調製物および該調製物の単離法 |
JP11193416A Pending JP2000072690A (ja) | 1984-05-12 | 1999-07-07 | ワクチンの製造方法 |
JP11193312A Pending JP2000053585A (ja) | 1984-05-12 | 1999-07-07 | 抗原の精製方法 |
Family Applications After (2)
Application Number | Title | Priority Date | Filing Date |
---|---|---|---|
JP11193416A Pending JP2000072690A (ja) | 1984-05-12 | 1999-07-07 | ワクチンの製造方法 |
JP11193312A Pending JP2000053585A (ja) | 1984-05-12 | 1999-07-07 | 抗原の精製方法 |
Country Status (13)
Country | Link |
---|---|
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EP (1) | EP0162639B1 (ja) |
JP (3) | JPH07116053B2 (ja) |
AT (1) | ATE61937T1 (ja) |
CA (1) | CA1253073A (ja) |
DE (1) | DE3582272D1 (ja) |
DK (1) | DK165358C (ja) |
ES (1) | ES8802275A1 (ja) |
FI (1) | FI81262C (ja) |
GB (1) | GB8412207D0 (ja) |
LU (1) | LU90203I2 (ja) |
NL (1) | NL980006I1 (ja) |
NO (2) | NO165478C (ja) |
Families Citing this family (25)
Publication number | Priority date | Publication date | Assignee | Title |
---|---|---|---|---|
GB8412207D0 (en) * | 1984-05-12 | 1984-06-20 | Wellcome Found | Antigenic preparations |
FR2597344B1 (fr) * | 1986-04-16 | 1989-06-23 | Merieux Inst | Perfectionnement au procede de purification d'antigenes proteiques de bacteries appartenant au genre bordetella, en vue de l'obtention d'un vaccin acellulaire. |
US4762710A (en) * | 1986-06-16 | 1988-08-09 | The United States Of America As Represented By The Department Of Health And Human Services | Novel method of preparing toxoid by oxidation and metal ions |
SE455946B (sv) * | 1986-10-20 | 1988-08-22 | Trion Forskning & Utveckling | Nya pertussistoxin-polypeptider och antigener samt testsatser, vacciner och intradermala hudtestkompositioner |
FR2606789B1 (fr) * | 1986-11-17 | 1991-05-31 | Pasteur Institut | Preparations d'adenylate cyclase purifiees, procede d'obtention de ces preparations et leurs applications biologiques |
EP0267998A1 (en) * | 1986-11-17 | 1988-05-25 | Institut Pasteur | Means for protecting against bordetella infections and toxic processes |
CA1337859C (en) * | 1987-04-24 | 1996-01-02 | Masashi Chazono | Method for culturing bordetella pertussis, a pertussis toxoid and a pertussis vaccine |
US5139776A (en) * | 1987-04-24 | 1992-08-18 | The Research Foundation For Microbial Diseases Of Osaka University | Method for culturing Bordetella pertussis, a pertussis toxoid and a pertussis vaccine |
EP0338170A1 (en) * | 1988-04-19 | 1989-10-25 | Institut Pasteur | Immunoprotective antigenic protein against pathogenic bacteria |
ES2091186T3 (es) * | 1988-04-19 | 1996-11-01 | Pasteur Institut | Procedimiento para obtener antigenos protectores contra infecciones y procesos toxicos de bordetella. |
GB8910570D0 (en) * | 1989-05-08 | 1989-06-21 | Wellcome Found | Acellular vaccine |
FR2646776B1 (fr) | 1989-05-12 | 1994-06-03 | Pasteur Institut | Utilisation de preparations vaccinantes a base d'adenyl cyclase ou de bacteries les produisant en tant qu'antigenes protecteurs contre les effets des bordetella |
DE69018926T2 (de) * | 1989-09-04 | 1995-08-24 | Wellcome Found | Vakzine gegen Bordetella. |
US5276142A (en) * | 1989-12-11 | 1994-01-04 | American Cyanamid Company | Process for purification of a 69000 dalton antigenic protein from Bordetella pertussis |
US6197548B1 (en) | 1990-04-02 | 2001-03-06 | Medeva Pharma Limited | Transformed Pichia expressing the pertactin antigen |
GB9007657D0 (en) * | 1990-04-04 | 1990-05-30 | Connaught Lab | Purification of a pertussis outer membrane protein(omp69) |
EP0484621A3 (en) * | 1990-07-11 | 1992-08-26 | American Cyanamid Company | Efficacious vaccines against bordetella pertussis comprising a combination of individually purified pertussis antigens |
GB9021004D0 (en) * | 1990-09-27 | 1990-11-07 | Wellcome Found | Acellular vaccines |
US6444211B2 (en) | 1991-04-03 | 2002-09-03 | Connaught Laboratories, Inc. | Purification of a pertussis outer membrane protein |
GB9304399D0 (en) * | 1993-03-04 | 1993-04-21 | Smithkline Beecham Biolog | Novel process |
FR2728170A1 (fr) | 1994-12-15 | 1996-06-21 | Pasteur Institut | Vaccin de type acellulaire anti-bordetella |
FR2736064B1 (fr) | 1995-06-30 | 1997-09-05 | Pasteur Institut | Epitopes protecteurs de l'adenyl cyclase-hemolysine(ac-hty). leur application au traitement ou a la prevention des infections par bordetella |
ZA981370B (en) * | 1997-02-20 | 1998-09-07 | Cerberus Developments Bv | Method and apparatus for continuous flow isoelectric focusing for purifying biological substances |
GB201105981D0 (en) | 2011-04-08 | 2011-05-18 | Glaxosmithkline Biolog Sa | Novel process |
US8916173B2 (en) | 2013-03-08 | 2014-12-23 | Crucell Holland B.V. | Acellular pertussis vaccine |
Family Cites Families (22)
Publication number | Priority date | Publication date | Assignee | Title |
---|---|---|---|---|
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US3395219A (en) * | 1964-12-11 | 1968-07-30 | Merck & Co Inc | Process for production of pertussis antigen |
US3465078A (en) * | 1965-10-21 | 1969-09-02 | Sydney Z Spiesel | Method of recovering antigens from bordetella pertussis cells |
FR2047886A1 (en) * | 1969-06-30 | 1971-03-19 | Merieux Inst | Non-toxic anti-whooping cough vaccine |
FR2393065A1 (fr) * | 1977-05-31 | 1978-12-29 | Merieux Inst | Procede de separation de lipides d'endotoxines bacteriennes et notamment d'endotoxine de bordetella pertussis |
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