FI81262B - Foerfarande foer isolering av ett med adenylat-cyklas-aktivitet associerat antigenpreparat ur bakterien bordetella pertussis. - Google Patents

Foerfarande foer isolering av ett med adenylat-cyklas-aktivitet associerat antigenpreparat ur bakterien bordetella pertussis. Download PDF

Info

Publication number
FI81262B
FI81262B FI851859A FI851859A FI81262B FI 81262 B FI81262 B FI 81262B FI 851859 A FI851859 A FI 851859A FI 851859 A FI851859 A FI 851859A FI 81262 B FI81262 B FI 81262B
Authority
FI
Finland
Prior art keywords
pertussis
acap
vaccine
process according
buffer
Prior art date
Application number
FI851859A
Other languages
English (en)
Swedish (sv)
Other versions
FI81262C (fi
FI851859L (fi
FI851859A0 (fi
Inventor
Pavel Novotny
Original Assignee
Wellcome Found
Priority date (The priority date is an assumption and is not a legal conclusion. Google has not performed a legal analysis and makes no representation as to the accuracy of the date listed.)
Filing date
Publication date
Family has litigation
First worldwide family litigation filed litigation Critical https://patents.darts-ip.com/?family=10560891&utm_source=google_patent&utm_medium=platform_link&utm_campaign=public_patent_search&patent=FI81262(B) "Global patent litigation dataset” by Darts-ip is licensed under a Creative Commons Attribution 4.0 International License.
Application filed by Wellcome Found filed Critical Wellcome Found
Publication of FI851859A0 publication Critical patent/FI851859A0/fi
Publication of FI851859L publication Critical patent/FI851859L/fi
Application granted granted Critical
Publication of FI81262B publication Critical patent/FI81262B/fi
Publication of FI81262C publication Critical patent/FI81262C/fi

Links

Classifications

    • CCHEMISTRY; METALLURGY
    • C07ORGANIC CHEMISTRY
    • C07KPEPTIDES
    • C07K14/00Peptides having more than 20 amino acids; Gastrins; Somatostatins; Melanotropins; Derivatives thereof
    • C07K14/195Peptides having more than 20 amino acids; Gastrins; Somatostatins; Melanotropins; Derivatives thereof from bacteria
    • C07K14/235Peptides having more than 20 amino acids; Gastrins; Somatostatins; Melanotropins; Derivatives thereof from bacteria from Bordetella (G)
    • AHUMAN NECESSITIES
    • A61MEDICAL OR VETERINARY SCIENCE; HYGIENE
    • A61PSPECIFIC THERAPEUTIC ACTIVITY OF CHEMICAL COMPOUNDS OR MEDICINAL PREPARATIONS
    • A61P31/00Antiinfectives, i.e. antibiotics, antiseptics, chemotherapeutics
    • AHUMAN NECESSITIES
    • A61MEDICAL OR VETERINARY SCIENCE; HYGIENE
    • A61PSPECIFIC THERAPEUTIC ACTIVITY OF CHEMICAL COMPOUNDS OR MEDICINAL PREPARATIONS
    • A61P31/00Antiinfectives, i.e. antibiotics, antiseptics, chemotherapeutics
    • A61P31/04Antibacterial agents
    • CCHEMISTRY; METALLURGY
    • C12BIOCHEMISTRY; BEER; SPIRITS; WINE; VINEGAR; MICROBIOLOGY; ENZYMOLOGY; MUTATION OR GENETIC ENGINEERING
    • C12NMICROORGANISMS OR ENZYMES; COMPOSITIONS THEREOF; PROPAGATING, PRESERVING, OR MAINTAINING MICROORGANISMS; MUTATION OR GENETIC ENGINEERING; CULTURE MEDIA
    • C12N9/00Enzymes; Proenzymes; Compositions thereof; Processes for preparing, activating, inhibiting, separating or purifying enzymes
    • C12N9/88Lyases (4.)
    • AHUMAN NECESSITIES
    • A61MEDICAL OR VETERINARY SCIENCE; HYGIENE
    • A61KPREPARATIONS FOR MEDICAL, DENTAL OR TOILETRY PURPOSES
    • A61K39/00Medicinal preparations containing antigens or antibodies
    • YGENERAL TAGGING OF NEW TECHNOLOGICAL DEVELOPMENTS; GENERAL TAGGING OF CROSS-SECTIONAL TECHNOLOGIES SPANNING OVER SEVERAL SECTIONS OF THE IPC; TECHNICAL SUBJECTS COVERED BY FORMER USPC CROSS-REFERENCE ART COLLECTIONS [XRACs] AND DIGESTS
    • Y10TECHNICAL SUBJECTS COVERED BY FORMER USPC
    • Y10STECHNICAL SUBJECTS COVERED BY FORMER USPC CROSS-REFERENCE ART COLLECTIONS [XRACs] AND DIGESTS
    • Y10S530/00Chemistry: natural resins or derivatives; peptides or proteins; lignins or reaction products thereof
    • Y10S530/806Antigenic peptides or proteins
    • YGENERAL TAGGING OF NEW TECHNOLOGICAL DEVELOPMENTS; GENERAL TAGGING OF CROSS-SECTIONAL TECHNOLOGIES SPANNING OVER SEVERAL SECTIONS OF THE IPC; TECHNICAL SUBJECTS COVERED BY FORMER USPC CROSS-REFERENCE ART COLLECTIONS [XRACs] AND DIGESTS
    • Y10TECHNICAL SUBJECTS COVERED BY FORMER USPC
    • Y10STECHNICAL SUBJECTS COVERED BY FORMER USPC CROSS-REFERENCE ART COLLECTIONS [XRACs] AND DIGESTS
    • Y10S530/00Chemistry: natural resins or derivatives; peptides or proteins; lignins or reaction products thereof
    • Y10S530/82Proteins from microorganisms
    • Y10S530/825Bacteria

Landscapes

  • Health & Medical Sciences (AREA)
  • Chemical & Material Sciences (AREA)
  • Organic Chemistry (AREA)
  • Life Sciences & Earth Sciences (AREA)
  • Genetics & Genomics (AREA)
  • General Health & Medical Sciences (AREA)
  • Medicinal Chemistry (AREA)
  • Biochemistry (AREA)
  • Molecular Biology (AREA)
  • Zoology (AREA)
  • Wood Science & Technology (AREA)
  • Bioinformatics & Cheminformatics (AREA)
  • Engineering & Computer Science (AREA)
  • Veterinary Medicine (AREA)
  • Biotechnology (AREA)
  • Gastroenterology & Hepatology (AREA)
  • Oncology (AREA)
  • Biophysics (AREA)
  • Communicable Diseases (AREA)
  • Public Health (AREA)
  • Proteomics, Peptides & Aminoacids (AREA)
  • Chemical Kinetics & Catalysis (AREA)
  • Animal Behavior & Ethology (AREA)
  • Biomedical Technology (AREA)
  • Nuclear Medicine, Radiotherapy & Molecular Imaging (AREA)
  • Microbiology (AREA)
  • General Chemical & Material Sciences (AREA)
  • Pharmacology & Pharmacy (AREA)
  • General Engineering & Computer Science (AREA)
  • Medicines Containing Antibodies Or Antigens For Use As Internal Diagnostic Agents (AREA)
  • Peptides Or Proteins (AREA)
  • Medicines Containing Material From Animals Or Micro-Organisms (AREA)
  • Preparation Of Compounds By Using Micro-Organisms (AREA)
  • Medicinal Preparation (AREA)

Description

1 81262
Menetelmä adenylaatti-syklaasi-aktiivisuuteen liittyvän antigeenipreparaatin eristämiseksi Bordetella pertussis-bakteerista 5 Keksinnön kohteena on menetelmä antigeenipreparaa tin, joka sisältää proteiiniainesta, johon liitty adeny-laatti-syklaasi-aktiivisuus (ACAP), eristämiseksi bakteerista Bordetella pertussis. Antigeenipreparaatteja käytetään soluttomissa rokotteissa Bordetella pertussis'ta 10 vastaan.
Bordetella pertussis aiheuttaa ihmisillä vakavan ja uuvuttavan sairauden, jolle lapset ovat erityisen alttiita ja joka pidetään kurissa kehittyneissä maissa suurmitta-kaavaisilla immunisointiohjelmilla. On havaittu, että im-15 munisointi on hyvin tärkeä tekijä vähennettäessä tätä sairautta ja että epäonnistuminen rokottamisessa voi johtaa tämän taudin lisääntyneeseen esiintymiseen. Käytännöllisesti katsoen kaikilla alueilla immunointi suoritetaan käyttäen kokosolu B.pertussis-rokotetta, jonka on havaittu 20 olevan suhteellisen tehokas taudin estämisessä. On kuiten kin todettu, että kokosolurokotteita rasittavat useat haitat. Siten esimerkiksi noin yhdellä jokaisesta 10 000 rokotetusta lapsesta esiintyy kliinisiä oireita, joita voivat olla kuume, paikalliset reaktiot ja jatkuva kirkumi-25 nen. Lisäksi tapahtuu, että jotkut erät kokosolurokotteesta eivät anna ollenkaan suojaa, vaikka niihin silti liittyy ei-toivottujen sivuvaikutusten mahdollisuus.
Tämän taudin nykyisellä vähäisellä esiintymisellä kehittyneissä maissa, joilla on immunisointiohjelmat, hyö-30 ty/vaara-suhde on huonosti määritelty ja monet lääkärit uskovat, että rokottamisen vaarat painavat enemmän kuin immunisoinnilla saavutetut edut. Tämän tuloksena monia lapsia ei rokoteta ja siten on olemassa vakava yleis-kulkutaudin luontoinen hinkuyskävaara. Sentähden on huo-35 mattavasti tutkimusponnisteluja suunnattu parannettujen 2 81262 hinkuyskärokotteiden kehittämiseksi ja erityisesti solut-tomien rokotteiden kehittämiseksi, joista puuttuvat aineosat, jotka liittyvät tähän asti käytettyjen kokosolurokotteiden myrkyllisiin vaikutuksiin sisältäen samalla ne 5 aineosat, jotka ovat välttämättömät suojaamaan tautia vastaan.
Turvallisemman, tehokkaan, soluttoman B.pertus-sis-rokotteen etsintää on aikaisemmin haitannut niukka informaatio, kokosolurokotteiden sisältämien B.pertussik-10 sien tautia synnyttävien, myrkyllisten ja suojaavien osien vaikutuksen luonteesta ja mekanismista. Työ on sen tähden keskitetty 20 tai useamman B.pertussis-organismin pinta-antigeenin eristämiseen ja puhdistamiseen ja niiden immuunireaktioita aikaansaavan kyvyn luonnehtimiseen (ks. 15 esimerkiksi J. Am. Med. Soc., 248 (1) 22-23). Esimerkkejä antigeeneistä, joita on ehdotettu tutkittaviksi, ovat imu-solurunsautta edistävä faktori (pertussis-toksiini/LPF), rihmainen hemagglutiniini (FHA), lipopolysakkaridi (LPS), agglutinogeenit, dermonekroottinen toksiini (DNT), lämpöä 20 kestämättömät ja lämmönkestävät toksiinit, liuskatumainen valkosolu-estofaktori, adenylaattisyklaasi sekä muut pin-takomponentit (Pertussis Vaccine Workshop. 11. helmikuu 1982, Bureau of Biologies, USA). Muita ehdotettuja eh-dokasantigeenejä tutkimusta varten ovat henkitorvi-sytok-25 siini ja erilaiset muut membraaniproteiinit.
L.Pillemer kehitti erään varhaisen uutosrokotteen (Proc. Soc. Exp. Biol. Med. (1950) 75, 704-705), joka perustui rikottuihin B.pertussis-soluihin ja jonka havaittiin antavan suojaa, mutta sitä ei hyväksytty kaupallises-30 ti preparaatin myrkyllisyyden takia.
Esimerkkejä tuoreemmista B.pertussis-uutosrokot-teista, joita on ehdotettu, ovat UK-patentissa 2 083 358A (Takeda) selostetut, joka patentti käsittää endotoksiinin poistamisen viljelyn päällä olevista nesteistä; ranska-35 lainen patentti FR-2 047 886 (Institut Merrieux) käsittää li 3 81262 mikrobisuspension uuttamisen anionisella pinta-aktiivi-sella aineella; ja japanilainen patentti JP-58-222032 (Teijin) käsittää alayksikkö-proteiinin, joka perustuu pertussis-toksiini (LPF):ään.
5 Suuri osa työstä, joka on suoritettu soluttomilla hinkuyskärokotteilla, on keskittynyt mahdollisuuteen perustaa tällainen rokote LPFiään. Uskotaan kuitenkin, että suurin osa (ellei kaikki) haitallisista vaikutuksista, joiden tähän asti on havaittu liittyvän hinkuyskärokotuk-10 seen, liittyneet toksiiniin. Yhdistelmänä tetanus- tai difteriatoksoidin ja LPS:n kanssa se pystyy aiheuttamaan kokeellisen aivotaudin herkissä hiirissä (L. Steinman, et ai. Nature (1982) 299, 738-740; Redhead et ai, Workshop on B.pertussis, Nat. Inst, of Biol. Standards & Controls, 15 Holy Hill, Hampstead, Lontoo, 1983). Siten LPF voi mahdollisesti olla vastuussa aivovauriosta, jos tällaisia komplikaatioita ilmenisi rokottamisen jälkeen.
Nyt on keksitty, että tietty proteiiniaines, joka liittyy adenylaattisyklaasi-aktiivisuuteen, kuten jäljem-20 pänä selostetaan, ja jota löytyy B.pertussiksen viljelmistä, pystyy aikaansaamaan suojan B.pertussis-altistumis-ta vastaan, kun sitä annetaan koe-eläimille. Tämä havainto, että proteiiniaines, joka tavallisesti liittyy adeny-laatti-syklaasi-aktiivisuuteen, on tärkein suoja-antigeeni 25 B.pertussista vastaan, sallii rokotevalmisteiden valmis tamisen, jotka sisältävät antigeenipreparaatteja, jotka ovat vapaita, muista tunnetuista B.pertussis-komponenteis-ta, jotka ovat vastuussa kokosolurokotteiden omaavista myrkyllisistä sivuvaikutuksista tai jotka sisältävät pie-30 niä määriä niitä.
Käsitettä "proteiiniaines, joka liittyy adenylaat-ti-syklaasi-aktiivisuuteen" (lyhennetty tämän jälkeen "ACAP":ksi) käytetään tässä tarkoittamaan proteiiniaines-ta, joka uuttuu yhdessä adenylaatti-syklaasi-aktiivisuuden 35 kanssa, kun adenylaatti-syklaasi-aktiivisuuden uuttaminen 4 81262 suoritetaan käyttäen glysiinin vesipitoista, hapanta (pH 3) liuosta (0,25 M). ACAP, kuten se edellä määritellään, voi olla itse adenylaatti-syklaasi-entsyymi tai entsyymiä sitoava proteiini.
5 Adenylaatti-syklaasi-aktiivisuus määritettiin E.
Hewlett'in ja J.Wolff'in (J. Bacteriol. (1976) 127, 890-898) menetelmällä. Ensimmäiseksi tässä esitetään rokote-valmiste, joka suojaa B.pertussis'ta vastaan ja joka sisältää antigeeni-valmisteen, joka on peräisin ACAP':tä 10 sisältävästä B.pertussiksesta, joka on valinnaisesti tok-soidoitu käyttäen esim. formaliinia, glutaraldehydiä tai β-propiolaktonia, yhdessä sen farmaseuttisesti hyväksyttävän kantimen kanssa.
Yksityiskohtaisemmin ACAP voidaan havaita isoelekt-15 risella fokusoinilla kahtena nauhana, joista toisen iso-elektrinen piste (pl) on noin 7,0 ja toisen (haja)nauhan isoelektrinen piste on 7,2-7,4. Adenylaatti-syklaasi-ak-tiivisuus liittyy miltei kokonaan neutraaliin nauhaan (pl noin 7,0), mutta monoklonaaliset vasta-aineet ACAP:lie 20 sitoutuivat voimakkaasti kumpaankin nauhaan.
Edellä mainituissa valmisteissa olevan ACAP:n suhteellinen molekyylipaino on yleensä noin 67000-73000, erityisesti 69000, ja isoelektrinen piste 7,0-7,4 jäljempänä selostettavissa valmistusolosuhteissa.
25 "Suhteellisella molekyylipainolla” tarkoitetaan näennäistä molekyylipainoa määritettynä 12-%:isella (pai-no/paino) polyakryyliamidigeelielektroforeesilla ja stan-dardimolekyylipainon merkkiaineilla. Kuvattujen antigee-niproteiinien molekyylipaino voidaan siten mukavasti mää-30 rittää menetelmällä, jonka on selostanut U.K. Laemmli, Nature, 1970, 227, 680-685. Sopivia standardi molekyyli-painon merkkiaineita ovat esimerkiksi naudan seerumialbu-miini, kymotrypsinogeeni A ja ribonukleaasi.
Myös aminohappoanalyysi on osoittanut, että ACAP 35 sisältää epätavallisen suuren osuuden proliinia, niin että
II
5 81262 proliini/glutamiinihappo-suhde on noin 1:1 ja tämä ominaispiirre tekee mahdolliseksi ACAP:n erottamisen muista B.pertussis-proteiineista. Eräs toinen ACAP:n erottava ominaispiirre on, että sitä ei voida havaita tyrosiini-5 tähteiden radiojodauksella, ei klooriamiini T- eikä jodo-geenimenetelmin.
Erään edullisen suoritusmuodon mukaisesti edellä mainittu ACAP on proteiiniaines, jota luonnehditaan sillä, että sillä on yksi tai useampi seuraavista ominaisuuk-10 sista: (i) proliini/glutamiinihappo-suhde pääasiallisesti 1:1; (ii) tyrosiini-tähteet eivät ole jodattavia; (iii) pääasiallisesti vapaa solunsisäisestä B.pertussis-aineksesta; 15 (iv) suhteellinen molekyylipaino 67000-73000; (v) isoelektrinen piste 7,0-7,4 ja (vi) se on happoa kestämätön pH:ssa alle noin 3.
Edellä mainitut rokotevalmisteissa käytettävät antigeenipreparaatit voivat, jos niin halutaan, sisältää 20 pieniä määriä muita antigeeni-yhdisteitä ACAP:n lisäksi, esimerkiksi aineksia, jotka saadaan yhdessä B.pertussis-organismista uutetun ACAP:n kanssa. Tällaiset ainekset voivat olla LPS- ja LPF-osasia, jotka ottaen huomioon niiden mahdolliset vahingolliset sivuvaikutukset, vaativat 25 toksoidoimista, esim. formaliinilla. Antigeenivalmisteet ovat kuitenkin, edullisesti, pääasiallisesti vapaat muista antigeenikomponenteista.
Adenylaatti-syklaasia on aikaisemmin eristetty B. pertussiksesta (E. L. Hewlett et ai., J. Bacteriol., 127, 30 890-898 ja Proc. Nat. Acad. Sei., USA, 73, 1926-1930), mutta ei ole missään ehdotettu että tämä aines on B.pertussis’ ta vastaan suojaava antigeeni. Hewlett'in et ai., työn mukaisesti havaittiin ainoastaan noin 20 % B.per-tussis-organismin adenylaatti-syklaasi kokonaisaktiivi-35 suudesta, mikä edustaa noin 0,5 % kokonaisentsyymistä, 6 81262 viljelmän päällä olevasta nesteestä, jolloin loput 80 % on sitoutuneena soluihin. Sentähden tarvitaan uuttoprosessi, jolla ACAP voidaan saada hyvin puhtaana ja suurella saannolla, jotta saadaan riittäviä määriä, kaupallisessa mit-5 takaavassa, ACAPriä käytettäväksi edellä valmistetuissa antigeenipreparaateissä. Eräs päävaikeus, joka on voitettava tällaisessa uuttoprosessissa on, että ACAP, muiden proteiinien joukossa on osittain sitoutunut hyvin lujasti, ulkomembraanin LPS-runkoon. Aikaisemmin on yleisesti käy-10 tetty detergenttejä membraanin liuentamiseksi siihen liittyneiden proteiinien vapauttamiseksi. Detergenttien käytöllä ulkomembraanin proteiinien uuttamiseen B.pertussis-organismeista on kuitenkin havaittu olevan seuraavat haitat: 15 a) ulkomembraani liukenee, jolloin muodostuu misel-likasaumia, jotka sisältävät ulkomembraanin proteiinien seoksia; b) ulkomembraanin proteiinit voivat vahingoittua; c) saattaa syntyä uusia antigeenejä, joita ei esiinny bak- 20 teerissä; ja d) yleensä todetaan että uutettu aines on veteen liukenematonta detergentin poistamisen jälkeen.
Nyt on keksitty, että vastakohtana detergenttien käytölle, B.pertussis-organismien ulkomembraanin uutta-25 minen käyttäen säädeltyjä, lievästi happamia olosuhteita johtaa olennaisesti lisääntyneisiin adenylaatti-syklaasin saantoihin (noin 40 kertaa parempi kuin tähän asti esitetyillä menetelmillä) muodossa, joka on vesiliukoinen.
Siten tämä keksintö kohdistuu menetelmään antigee-30 nipreparaatin, joka sisältää ACAP B.pertussiksesta, eristämiseksi. Menetelmälle on tunnusomaista, että Bordetella pertussis -solujen viljelmää käsitellään vesipitoisella aminohappopuskurilla, jonka pH on 2,5 - 3,5 ja joka sisältää tätä aminohappoa hypertoonisena pitoisuutena solu-35 jen suhteen, solut erotetaan syntyneestä supernatantista li 7 81262 ja eristetään ACAP'tä sisältävä antigeenipreparaatti su-pernatantista.
Edellä selostetussa menetelmässä käytetty puskuri antaa edullisesti pH:n noin 3 ja se sisältää edullisesti 5 epäorgaanista happoa, edullisesti kloorivetyhappoa, puskurin happamana komponenttina ja joko glysiiniä tai alanii-nia aminohappona. Solujen käsitteleminen puskurilla suori-teyaan edullisesti lämpötilassa 5-50°C, erityisesti 30-45eC:ssa ja ihanteellisesti 37°C:ssa, edullisesti 1-24 10 tunnin ajan, erityisesti 10-20 tunnin ajan aminohappoväke-vyydellä 0,1-1M, edullisesti 0,25 M. ACAP on happoa kestämätön ja voi tuhoutua, jos pH laskee alle 3:n uuton aika na.
Sen jälkeen kun solut on inkuboitu puskurin kanssa 15 solut hävitetään ja sentrifugoinnin jälkeen, esim. noin 100000 g:ssä (kaiken osasmaisen aineksen poistamiseksi) saatu päällä oleva neste saostetaan haluttaessa, esim. käyttäen ammoniumsulfaattia, kylmää etanolia tai asetonia.
Päällä olevasta nesteestä saatu uute on testattu 20 Kendrick-testissä, kuten seuraavassa selostetaan, ja sen on havaittu antavan suojan hiirillä aivojen sisäistä B. pertussis-altistumista vastaan. Vertailurokotteiden, jotka eivät sisältäneet adenylaatti-syklaasi-aktiivisuutta, havaittiin antavan vähän tai ei ollenkaan suojaa B.pertus-25 sis-altistumista vastaan, mikä tuo mieleen, että ACAP voi itse asiassa olla tärkein tekijä immnisuudessa. Ei-suojaa-vien kokosolurokotteiden panosten analyysi on myös osoittanut, että suojaamattomuudella on taipumus liittyä adeny-laatti-syklaasi-aktiivisuuden puutteeseen, mikä edelleen 30 johdattaa mieleen, että ACAP voi olla avain-antigeeni, joka on tarpeen immuunivasteen synnyttämiseksi B.pertus-sista vastaan.
Kendrick-testissä käytetty päällä olevasta nesteestä saatu uute voi kuitenkin sisältää myös ACAP:n pienissä 35 määrissä kompleksoituneena muiden proteiinien kanssa, jot- 8 81262 ka sisältävät LPS-osasia, jossa tapauksessa on toivottavaa puhdistaa ainesta edelleen, kun sitä käytetään ro-kotevalmisteissa. Siten edelleenpuhdistaminen voidaan suorittaa esimerkiksi ioninvaihtokromatografiällä ja/tai pre-5 paratiivisella isoelektrofokusoinnilla kompleksoituneen aineksen poistamiseksi. Vaihtoehtoisesti kaksi puhdistus-menetelmää voidaan yhdistää, ts aines, joka ei ole pidättynyt DEAE-geeliin (ts kompleksoitumaton aines) voidaan elektrofokusoida. Puhdistusmenetelmä voi käsittää myös 10 kromatofokusoinnin. Edellä selostettujen puhdistus- vaiheiden jälkeen ACAP':tä voidaan haluttaessa puhdistaa edelleen, esimerkiksi viemällä aines immunosorbentti-pylvään läpi, joka sisältää sopivaa monoklonaalista vasta-ainetta ACAP:tä vastaan.
15 Edellä selostettuja antigeenipreparaatteja, edellä selostetulla keksinnön mukaisella menetelmällä valmistetut mukaanlukien, voidaan yhdistää rokotevalmisteisiin immunisoinnin aikaansaamiseksi hinkuyskää vastaan ihmisellä. Tätä tarkoitusta varten antigeeniproteiinia voidaan antaa 20 yhdessä farmaseuttisesti hyväksyttävän kantimen tai apuai neen kanssa.
Farmaseuttisesti hyväksyttäviä kantimia ovat tässä tapauksessa nestemäiset väliaineet, jotka sopivat käytettäviksi välitysaineina antigeenin viemiseksi potilaaseen. 25 Eräs esimerkki tällaisesta kantimesta on suolaliuos. Anti-geeniproteiini voi olla liuoksessa tai suspendoituna kiinteänä aineena kantimeen.
Rokotepreparaatti voi sisältää myös apuaineen immuunivasteen stimuloimiseksi jolloin rokotteen vaikutus 30 lisääntyy. Sopivia käytettäviä apuaineita ovat esimerkiksi alumiinihydroksidi ja alumiinifosfaatti.
Sopivasti rokotevalmisteet tehdään sisältämään antigeeniproteiinia loppuväkevyydessä alueelta 0,01-5 mg/ml, edullisesti 0,03-2 mg/ml ja edullisimmin 0,3 mg/ml. Val-35 miiksimuodostamisen jälkeen rokote voidaan sisällyttää
II
9 81262 steriiliin säiliöön, joka sitten suljetaan ja varastoidaan matalassa lämpötilassa, esimerkiksi 4°C:ssa, tai se voidaan kylmäkuivata.
Immuuniteetin aikaansaamiseksi hinkuyskälle ih-5 misellä annetaan sopivasti muodostettua rokotetta yhtenä tai useampana annoksena. Suositellaan, että jokainen annos on 0,1-2 ml, edullisesti 0,2-1 ml, edullisimmin 0,5 ml rokotetta. Tässä kuvataan edelleen menetelmä immuniteetin aikaansaamiseksi hinkuyskälle ihmisellä, minkä mukaan te-10 hokas määrä edellä määriteltyä rokotevalmistetta annetaan isännälle.
Keksinnön mukaisesti valmistettu ACAP:n voidaan siis käyttää rokotteen valmistamiseksi, jota käytetään immuniteetin aikaansaamiseksi hinkuyskälle ihmisellä.
15 Näitä rokotteita voidaan antaa jollakin tavanomai sella menetelmällä rokotteiden antamista varten, kuten suun kautta ja ruoansulatuskanavan ulkopuolisesta (esim. ihonalaisesti tai lihaksensisäisesti) ruiskeena. Käsittely voi käsittää yhden ainoan annoksen rokotetta tai jou-20 kon annoksia jonakin ajanjaksona.
Tässä esitetyt rokotteet voivat sisältää myös yhden tai useampia muita antigeenikomponentteja, kuten esimerkiksi sopivasti toksoidoituja tyfoidi- ja difteriatoksiineja tai muita B.pertussis-antigeenejä, kuten tok-25 soidoitua LPF, vähentämään B.pertussiksen mutanttikantojen todennäköisyyttä välttää samanaikainen immuunivaste.
Seuraavat esimerkit valaisevat keksintöä:
Esimerkki 1
Hapan glysiini-hydrolyysi ja ulkomembraanin raaka-30 proteiinien valmistus
Solut kerättiin talteen 3/4-osassa eksponentiaali-vaihetta ja sentrifugoitiin 8000 g:ssä (Sorvali, GSA-kar-tiopää) 20 min 4°C:ssa. Solujen päällä oleva neste erotettiin lappoa käyttäen ja solut suspendoitiin välittömästi 35 uudelleen varoen tislattuun veteen tiheyteen 20-30 mg/ml 10 81 262 solujen kuivapainoa. Lisättiin kolmannes tästä tilavuudesta IM glysiini-HCl-puskuria, pH 3,0, lievästi sekoittaen glysiinin loppuväkevyyden 250 mM saamiseksi. Glysiini-liuos sisälsi EDTA (antamaan 5 mM lopulliseen seokseen) 5 entsyymiaktiivisuuden pysähdyttämiseksi. pH tarkistettiin ja kun oli tarpeen, asetettiin uudelleen pH 3,0:aan käyttäen 1-2 M HC1. Seosta sekoitettiin varoen 37°C:sella vesihauteella kunnes lämpötila tasapainottui ja inkuboitiin sitten yli yön (18 tuntia) 37°C:ssa (ilman sekoittamista). 10 pH asetettiin sitten 7,2-7,4:ään käyttäen 10 M NaOH, joka lisättiin hitaasti paikallisten ylimäärien välttämiseksi. Soluja sedimentoitiin 5000 g:ssä 20 min 5°C:ssa, niiden päällä oleva neste erotettiin lapolla, jäähdytettiin jää-vesihauteella 1-2°C:seen ja lisättiin hitaasti 2 tilavuut-15 ta esijäähdytettyä asetonia (-20 - -40°C) välttäen lämpötilan nousua yli l-2°C:n. Seosta pidettiin -20eC:ssa 3-5 tuntia ja sakka koottiin esijäähdytetyssä (-10*C) kar-tiopäässä 4000 g:ssä 20 minuutin aikana. Päällä oleva neste lapottiin eroon ja hävitettiin. Sedimentoitu sakka 20 liuotettiin jäillä jäähdytettyyn tislattuun veteen noin 1/20-osaan solususpension alkuperäisestä tilavuudesta. Liuos vapautettiin sitten liukenemattomista aineksista ja rakkuloista sentrifugoimalla 50 000 g:ssä 90-120 min 5°C:ssa. Päällä oleva neste kerättiin ja pidettiin jäähdy-25 tettynä tai kylmäkuivattiin. Ennen kylmäkuivausta lisät tiin 1 %, paino/tilav., mannitolia. Saatiin 40-80 mg proteiinia grammaa kohti solujen kuivapainoa.
Esimerkki 2 (a) Ulkomembraanin raakaproteiini-valmisteiden erot-30 taminen DEAE-trisakryyli-kromatografiällä.
DEAE-trisakryyli-pylväs, 3 x 16 cm, tasapainotettiin 0,025 M Tris'illä, 0,035 M NaCl-puskurilla, pH 8,8, ja esimerkissä 1 saatu aines (korkeintaan 1 g proteiinia) dialysoitiin tasapainottavaa puskuria vastaan ja pumpat-35 tiin nopeudella 60 ml/h pylvään läpi. Jakeet 1-13 (99 pi-
II
11 81262 saraa/putki, noin 5 ml) yhdistettiin yhteispanokseksi. Osa käytetystä kokonaisproteiinista (noin 1/4) ei pidäty gee-likerrokseen ja kerääntyy laajaksi huipuksi (kuv. 1, 0,035 M). Pidättynyt aines eluoitiin sitten käyttäen 0,1, 5 0,2, 0,3 ja 1,0 M NaCl 0,025 M trispuskurissa (pH 8,8).
Jakeet yhdistettiin ja levitettiin SDS-PAGE-levylle proteiinien erottumisen toteamiseksi. ACAP oli läsnä aineksessa, jota pylväs ei pidättänyt, kuten SDS-PAGE osoittaa, mutta sitä oli läsnä myös pidättyneessä aineksessa, joka 10 eluoitui 0,2 M NaCl:lla.
(b) Preparatiivinen vaakakerros-isoelektrofokusointi rakeistetussa geelissä (IEF) Tämä suoritettiin LKB-suositusten mukaisesti (Application Note 198, LKB-Producter AB, Bromma, Ruotsi). 15 Suspensio, jossa oli 4 g Ultrodex (LKB) ja 5 ml esisekoi-tettua Ampholinea, pH 3,5-9,5, suspendoitiin tislattuun veteen 100 ml:n lopputilavuuteen, kaadettiin vaakasuoraan kaukaloon 10,8 x 24,3 cm ja haihdutettiin ilmavirran avulla suositeltuun rajaan. Kerrostettuja kolmen paperitukon 20 (LKB, 2117-106) liuskoja, joita oli liotettu saman
Ampholinen 1:20-laimennuksessa tislatussa vedessä, pantiin kaukalon kumpaankin päähän. Aines esimerkistä 2a upotettiin geeliin käyttäen levitysmatriisia (2 x 9,4 cm), joka puristettiin geeliin pituussuunnassaan 1/3-1/4-osan etäi-25 syydelle anodipäästä, sisäänsuljettu geeli poistettiin, siirrettiin 10 ml:n kertakäyttöruiskuun, suspendoitiin 3 ml:aan ainesta esimerkistä 2a (joka sisälsi korkeintaan 500 mg proteiinia) ja ruiskutettiin lopuksi takaisin tyhjään tilaan, joka syntyi sen poistamisesta. Geeliä tasoi-30 tettiin sitten lastalla tarpeen mukaan ja annettiin tasapainottua 20 minuuttia. Sillä välin yksi paperitukko imeytettiin fosforihapon (ominaispaino 1,75) 1:100-laimen-nuksella ja lisättiin liuskoihin anodi-päässä ja toinen imeytettiin 1 M Na0H:ssa ja pantiin katodi-päähän. Kauka-35 loalustaa vaakakerros IEF-laitteessa (Pharmacia tyyppi FBE-3000) jäähdytettiin juoksuttamalla vesijohtovettä (15°C) käytön aikana. Geeliä käytettiin muuttumattomalla 8 watin teholla.
i2 81 262 ACAP oli havaittavissa kahtena nauhana, toinen pl 7,0 ja toinen (haja) nauha pl 7,2-7,4:ssä. Adenylaatti-syklaasi-aktiivisuus yhdistyi miltei kokonaan keskus-nauhaan (pl 7,0), mutta monoklonaaliset vasta-aineet 5 ACAP:lie sitoutuivat voimakkaasti kumpaankin nauhaan.
Metallimatriisia käyttäen geelikerros jaettiin sitten 30reen rinnakkaiseen kenttään, geeli raaputettiin jokaisesta kentästä käyttäen lastaa ja siirrettiin koeputkiin, jotka sisälsivät 1 ml tislattua vettä. Jokaisen ja-10 keen pH mitattiin tässä vaiheessa. Geelisuspensiot siirrettiin sitten pieniin muovipylväisiin, eluoitiin 2 ml:11a 0,2 M ammoniumbikarbonaatti-puskuria, pH 7,0 ja geeli-vapaat eluaatit jäädytettiin (-40°C).
(c) Analyyttinen isoelektrinen fokusointi 15 (i) Käytettiin samaa menettelytapaa kuin edellä 2(b):lle, mutta käytettiin 12-%:sta polyakryyliamidigeeliä 8 M urean läsnäollessa. Saatiin samat tulokset kuin 2(b):lle.
(ii) Sama menetelmä, mutta käyttäen agaroosigeeliä 10 %:n 20 sorbitolia läsnäollessa antoi 4 immunoreaktiivista nauhaa pi 4,5-6,0. pl 4,0:n nauha pidätti adenylaatti-syklaasi-aktiivisuuden pääosan.
Esimerkki 3 ACAP:n puhdistaminen käyttäen monoklonaalista immu-25 nosorbentti-pylvästä
Hiiren vesivatsanestettä, joka sisälsi monoklonaalista immunoglobuliinia, joka on spesifinen ACAP:lie, saostettiin huoneen lämpötilassa lisäämällä 2 tilavuutta 27-%:sta, paino/tilav., Na2S04 ja annettiin seistä 2-4 tun-30 tia ennen sedimentoimista (2000 g, 15 min). Sedimentti liuotettiin uudelleen ja dialysoitiin PBS vastaan. 500 mg tätä proteiinia (UV-määritys) kytkettiin 70 ml:aan sullottua CNBr-Sepharose® CL4B’tä valmistajan (Pharmacia) ohjeita seuraten. Sephadex® g-50 (väliainetta) pantiin 35 500 mm x 25 mm:n pylvääseen kerroskorkeuteen 220 mm. Pyi-
II
i3 81 262 vään pesemisen jälkeen eluoimispuskurilla (0,2 M ammonium-bikarbonaatti, pH 7,0, joka sisälsi 0,01 % Thiomersal) kaadettiin Sephadex®- kerroksen päälle 5 mm: n paksuinen kerros nro 12 Ballotini-lasihelmiä. Lisäpesun jälkeen im-5 munosorbenttigeeliä kaadettiin Ballotini-lasihelmikerrok-selle, jolloin tämä erottui Sephadex^' ista sallien kummankin erottamisen. Pylvästä pestiin edelleen eluoimispuskurilla ja lopuksi pantiin 100 mm korkean immunosorbentti-kerroksen päälle toinen Ballotini-lasihelmikerros suojaa-10 maan pylvään yläpäätä.
ACAP:n erottamiseksi immunosorbentti-pylväällä lisättiin 180 ml pidättymätöntä eluaattia DEAE-tris-ak-ryyli-erotuksesta (esimerkki 2), joka sisälsi 1 mg/ml proteiinia (Lowry), 5°C:ssa immunosorbenttipylvääseen 15 nopeudella 0,25 ml/min, pestiin eluoimispuskurilla (0,2 M ammoniumbikarbonaatti, pH 7, 0,01 %, paino/tilav., Thiomersal) ja, senjälkeen kun perusviiva oli stabiloitunut, pylvääseen pantiin 50 ml 6 M ureaa eluoimispuskurissa absorboituneen aineksen eluoimiseksi.Immunosorbentti-ainek-20 sen sijoittaminen Sephadex® G-50-kerroksen päälle salli proteiinin samanaikaisen erottamisen ureasta käytön aikana.
Esimerkki 4 B.pertussiksen viljely 25 Määritelty elatusaine, jota käytettiin organismin viljelyyn, perustui Steiner'in ja Scholte'n (1971) kaavaan, kuten aikaisemmin on selostettu (Novotny ja Brookes, 1975). Kaikkia viljelyjä viljeltiin 36-37°C:ssa. Nestevil-jelyt irtonaisesti tulpilla suljetuissa ravistuspulloissa 30 (500 ml:n kartiomainen pullo, jossa on 200 ml elatusainet- ta) siirrostettiin viljelyllä, jota oli viljelty 48 tuntia Cohen-Wheeler-ravintoalustalla, jossa oli 2 % agaria ja 5 % hevosen verta, ja sekoitettiin antamaan kaasunvaih-tonopeus 20-40 μΜ 02/h. Tällaisia nesteviljelyjä käytettiin 35 elatusaineen siirrostamiseen 5 l:n tai 70 l:n kokonaan i4 81 262 lasista tehdyissä fermentoreissa, samalla pitäen pH 7,6:ssa lisäämällä säädetysti 2 M HC1 ja pitäen liuenneen hapen kyllästys 5-10 %:ssa potkurisekoituksella. Viljelyt korjattiin talteen eksponentiaalivaiheen päätyttyä, ts.
5 noin 36 tunnin inkuboinnin jälkeen (Novotny ja Cownley, 1978).
Esimerkki 5
Kendrick-koe T
Tämä suoritettiin WHO-vaatimusten mukaisesti Per-10 tussis-rokotetta varten käyttäen MFI tai NIH hiiriä (OLAC, kategoria 3, vapaat useimmista taudin synnyttäjistä B. bronchiseptica mukaanlukien), jotka painoivat 14-16 g. Antigeeni, 0,5 ml:n tilavuuksissa, annettiin vatsaontelon sisäisesti ja käsittivät huippulaimennuksen ja kolme 4-15 kertaista sarjalaimennusta. Kahden viikon kuluttua hiiriä provosoitiin aivojen sisäisesti käyttäen suositeltua pro-vosointikantaa 18-323 (100-200 LD50). Eloonjääneiden lukumäärää kussakin ryhmässä käytettiin ED50:n ja suhteellisen tehokkuuden laskemiseen suhteessa British Pertussis Refe-20 rence Vaccine 66/84:ään käyttäen yhdensuuntaisviivatoden-näköisyysanalyysiohjelmaa. Suoritettiin myös vertailukoe käyttäen FHA/LPF-rokotetta. Tulokset on esitetty taulukossa 1.
25 30 35
II
is 81262
Taulukko 1
Bordetella pertussis-jakeiden suojausteho hiirien suojaustestissä B.pertussis 18-323:n aivojen sisäistä provokaatiota vastaan ("Kendrick-testi" ) 5 Aines ED50 Suhteel- 41.U pg:ssa prote- pg linen te- iinia (=yksinker-hokkuus täinen ihmisen an- I.U./pg annos) proteii- 10 _nia_ B.pertussiksen 20 0,02 190 raaka glysiini-hydrolysaatti, 15 hydrolysoitu 37eC:ssa B.pertussiksen 77 0,003 1333 raaka glysiini-hydrolysaatti, 20 hydrolysoitu 4°C:ssa - hydrolysoitu 20 0,011 363 37°C:ssa - hydrolysoitu 149 0,001 4000 25 53eC:ssa B.pertussis-immu- 19 0,011 364 nopuhdistettu ade- nylaatti-syklaasi FHA/LPF-rokote 77 0,003 1333 30
Esimerkki 6 ACAP:n aminohappoanalyysi
Aminohappoanalyysi suoritettiin käyttäen Rank Hil-ger Chromaspek-aminohappoanalysaattoria. Näytteet valmis-35 tettiin lisäämällä 250 pl 6N HC1 (laimennettu BDH
Aristar-laadusta), joka sisälsi 0,1 % (paino/tilav.) fenolia, kuivattuun näyteainekseen paksuseinäisessä Pyrex-koeputkessa (7,5 x 1,2 cm). Putkia vedettiin sitten happi /luonnonkaasu poltinliekillä kapean aukon aikaansaami-40 seksi. Sisällön pakastamisen jälkeen kiinteässä C02- etanolihauteessa, jokainen putki yhdistettiin jakoputkis- ie 81262 ton ja loukun kautta suurtyhjöpumppuun ja annettiin olla 10 minuuttia ilman poistamiseksi. Putket sulatettiin sitten umpeen ja pantiin 110°C:seen uuniin hydrolyysiä varten. Hydrolysoidut näytteet kuivattiin tyhjöeksikaatto-5 rissa natriumhydroksidipelleteillä. Kuivattu jäännös liuotettiin 250 pl:aan aminohappoanalysaattorin lähtöpusku-ria automaattista analyysiä varten.
Taulukossa 2 esitetyt aminohappoarvot ovat keskiarvoja tuloksista, jotka saatiin rinnakkaisista 24:n, 10 48:n ja 68:n tunnin hydrolyyseistä paitsi valiinin ja isoleusiinin tapauksessa, jolloin käytettiin 68 tunnin hydrolyysiarvoja.
Kystiinin, kysteiinin ja tryptofaanin arvoja ei voitu määrittää tällä menetelmällä.
15 Taulukko 2 Tähteet
Asparagiinihappo(+ asparagiini) 48
Treoniini 33 20 Seriini 33
Glutamiinihappo(+ glutamiini) 62
Proliini 60
Glysiini 77
Alaniini 82 25 Väliini 54
Metioniini 4
Isoleusiini 22
Leusiini 50
Tyrosiini 7 30 Fenyylialaniini 11
Histidiini 13
Lysiini 19
Arginiini 37 35 17 81 262
Esimerkki 7 Rokotevalmisteita
Immunisoinnissa käytettäviä rokotteita valmistetaan tavallisin menetelmin seuraavin aineosin: 5 a) Difteria-, Tetanus- ja Pertussis-rokote yksinkertaisessa liuoksessa. Jokainen 1 ml rokotetta sisältää: Difteria-toksoidia >60 I.U.
Tetanus-toksoidia >120 I.U.
Keksinnön mukaisesti valmistettua 10 Pertussis-antigeeniä >0,363 mg
Natriumboraattia <10,03 mg
Meripihkahappoa <3,10 mg
Thiomersal 0,04-0,2 mg
Natriumkloridia <8,5 mg 15 Vettä 1 ml:ksi b) Adsorboitu Difteria-, Tetanus- ja Pertussis-rokote Difteria-, Tetanus- ja Pertussis-komponentit adsorboidaan alumiinihydroksidigeelille standardimenetelmin. Jokainen 20 1 ml rokotetta sisältää:
Difteria-toksoidia >60 I.U.
Tetanus-toksoidia >120 U.L.
Keksinnön mukaisesti valmistettua >0,363 mg antigeeniä 25 Liukenemattomia alumiini-suoloja < samanarvoinen 0,093 moolille (2,5 mg) AI.
Natriumboraattia <8,01 mg
Meripihkahappoa <2,48 mg 30 Thiomersal 0,04-0,2 mg
Natriumkloridia <6,8 mg
Vettä 1 ml:ksi c) Pertusiss-rokote
Jokainen 1 ml rokotetta sisältää: 35 Keksinnön mukaisesti valmistettua >0,363 mg antigeeniä
Thiomersal 0,04-0,2 mg
Natriumkloridia <8,5 mg
Vettä 1 ml:ksi

Claims (9)

1. Menetelmä antigeenipreparaatin, joka sisältää proteiiniainesta, johon liitty adenylaatti-syklaasi-ak- 5 tiivisuus (ACAP), eristämiseksi bakteerista Bordetella pertussis, tunnettu siitä, että Bordetella pertussis -solujen viljelmää käsitellään vesipitoisella ami-nohappopuskurilla, jonka pH on 2,5 - 3,5 ja joka sisältää tätä aminohappoa hypertoonisena pitoisuutena solujen suh-10 teen, solut erotetaan syntyneestä supernatant!sta ja eristetään ACAP'tä sisältävä antigeenipreparaatti super-natantista.
2. Patenttivaatimuksen 1 mukainen menetelmä, tunnettu siitä, että pH on pääasiallisesti 3.
3. Patenttivaatimuksen 1 tai 2 mukainen menetelmä, tunnettu siitä, että käsittely puskurilla kestää 10 - 20 tuntia.
4. Jonkin patenttivaatimuksista 1-3 mukainen menetelmä, tunnettu siitä, että käsittely pus- 20 kurilla suoritetaan lämpötilassa 30 - 45 °C.
5. Patenttivaatimuksen 4 mukainen menetelmä, tunnettu siitä, että lämpötila on pääasiallisesti 37 °C.
6. Jonkin patenttivaatimuksista 1-5 mukainen me-25 netelmä, tunnettu siitä, että aminohappo on gly- siini tai alaniini.
7. Jonkin patenttivaatimuksista 1-6 mukainen menetelmä, tunnettu siitä, että eristäminen super-natantista käsittää ioninvaihtokromatografiaa.
8. Jonkin patenttivaatimuksista 1-7 mukainen me netelmä, tunnettu siitä, että eristäminen super-natantista käsittää isoelektrista fokusointia.
9. Patenttivaatimuksen 7 tai 8 mukainen menetelmä, tunnettu siitä, että eristäminen käsittää edel-35 leen eristetyn aineksen viemisen immunosorbenttipylvään läpi, joka sisältää sopivaa monoklonaalista vasta-ainetta ACAP'tä vastaan. Il is 81262
FI851859A 1984-05-12 1985-05-10 Foerfarande foer isolering av ett med adenylat-cyklas-aktivitet associerat antigenpreparat ur bakterien bordetella pertussis. FI81262C (fi)

Applications Claiming Priority (2)

Application Number Priority Date Filing Date Title
GB8412207 1984-05-12
GB848412207A GB8412207D0 (en) 1984-05-12 1984-05-12 Antigenic preparations

Publications (4)

Publication Number Publication Date
FI851859A0 FI851859A0 (fi) 1985-05-10
FI851859L FI851859L (fi) 1985-11-13
FI81262B true FI81262B (fi) 1990-06-29
FI81262C FI81262C (fi) 1990-10-10

Family

ID=10560891

Family Applications (1)

Application Number Title Priority Date Filing Date
FI851859A FI81262C (fi) 1984-05-12 1985-05-10 Foerfarande foer isolering av ett med adenylat-cyklas-aktivitet associerat antigenpreparat ur bakterien bordetella pertussis.

Country Status (13)

Country Link
US (8) US5648080A (fi)
EP (1) EP0162639B1 (fi)
JP (3) JPH07116053B2 (fi)
AT (1) ATE61937T1 (fi)
CA (1) CA1253073A (fi)
DE (1) DE3582272D1 (fi)
DK (1) DK165358C (fi)
ES (1) ES8802275A1 (fi)
FI (1) FI81262C (fi)
GB (1) GB8412207D0 (fi)
LU (1) LU90203I2 (fi)
NL (1) NL980006I1 (fi)
NO (2) NO165478C (fi)

Families Citing this family (25)

* Cited by examiner, † Cited by third party
Publication number Priority date Publication date Assignee Title
GB8412207D0 (en) 1984-05-12 1984-06-20 Wellcome Found Antigenic preparations
FR2597344B1 (fr) * 1986-04-16 1989-06-23 Merieux Inst Perfectionnement au procede de purification d'antigenes proteiques de bacteries appartenant au genre bordetella, en vue de l'obtention d'un vaccin acellulaire.
US4762710A (en) * 1986-06-16 1988-08-09 The United States Of America As Represented By The Department Of Health And Human Services Novel method of preparing toxoid by oxidation and metal ions
SE455946B (sv) * 1986-10-20 1988-08-22 Trion Forskning & Utveckling Nya pertussistoxin-polypeptider och antigener samt testsatser, vacciner och intradermala hudtestkompositioner
FR2606789B1 (fr) * 1986-11-17 1991-05-31 Pasteur Institut Preparations d'adenylate cyclase purifiees, procede d'obtention de ces preparations et leurs applications biologiques
EP0267998A1 (en) * 1986-11-17 1988-05-25 Institut Pasteur Means for protecting against bordetella infections and toxic processes
CA1337859C (en) * 1987-04-24 1996-01-02 Masashi Chazono Method for culturing bordetella pertussis, a pertussis toxoid and a pertussis vaccine
US5139776A (en) * 1987-04-24 1992-08-18 The Research Foundation For Microbial Diseases Of Osaka University Method for culturing Bordetella pertussis, a pertussis toxoid and a pertussis vaccine
EP0338170A1 (en) * 1988-04-19 1989-10-25 Institut Pasteur Immunoprotective antigenic protein against pathogenic bacteria
EP0338169B1 (en) * 1988-04-19 1996-07-24 Institut Pasteur Method for obtaining protective antigens against bordetella infections and toxic processes
GB8910570D0 (en) 1989-05-08 1989-06-21 Wellcome Found Acellular vaccine
FR2646776B1 (fr) 1989-05-12 1994-06-03 Pasteur Institut Utilisation de preparations vaccinantes a base d'adenyl cyclase ou de bacteries les produisant en tant qu'antigenes protecteurs contre les effets des bordetella
DE69018926T2 (de) * 1989-09-04 1995-08-24 Wellcome Found Vakzine gegen Bordetella.
US5276142A (en) * 1989-12-11 1994-01-04 American Cyanamid Company Process for purification of a 69000 dalton antigenic protein from Bordetella pertussis
US6197548B1 (en) 1990-04-02 2001-03-06 Medeva Pharma Limited Transformed Pichia expressing the pertactin antigen
GB9007657D0 (en) * 1990-04-04 1990-05-30 Connaught Lab Purification of a pertussis outer membrane protein(omp69)
EP0484621A3 (en) * 1990-07-11 1992-08-26 American Cyanamid Company Efficacious vaccines against bordetella pertussis comprising a combination of individually purified pertussis antigens
GB9021004D0 (en) * 1990-09-27 1990-11-07 Wellcome Found Acellular vaccines
US6444211B2 (en) 1991-04-03 2002-09-03 Connaught Laboratories, Inc. Purification of a pertussis outer membrane protein
GB9304399D0 (en) * 1993-03-04 1993-04-21 Smithkline Beecham Biolog Novel process
FR2728170A1 (fr) * 1994-12-15 1996-06-21 Pasteur Institut Vaccin de type acellulaire anti-bordetella
FR2736064B1 (fr) 1995-06-30 1997-09-05 Pasteur Institut Epitopes protecteurs de l'adenyl cyclase-hemolysine(ac-hty). leur application au traitement ou a la prevention des infections par bordetella
ZA981370B (en) * 1997-02-20 1998-09-07 Cerberus Developments Bv Method and apparatus for continuous flow isoelectric focusing for purifying biological substances
GB201105981D0 (en) 2011-04-08 2011-05-18 Glaxosmithkline Biolog Sa Novel process
NZ630868A (en) 2013-03-08 2017-02-24 Janssen Vaccines & Prevention Bv Acellular pertussis vaccine

Family Cites Families (22)

* Cited by examiner, † Cited by third party
Publication number Priority date Publication date Assignee Title
US3141824A (en) * 1961-05-19 1964-07-21 Lilly Co Eli Pertussis antigen
US3395219A (en) * 1964-12-11 1968-07-30 Merck & Co Inc Process for production of pertussis antigen
US3465078A (en) * 1965-10-21 1969-09-02 Sydney Z Spiesel Method of recovering antigens from bordetella pertussis cells
FR2047886A1 (en) * 1969-06-30 1971-03-19 Merieux Inst Non-toxic anti-whooping cough vaccine
FR2393065A1 (fr) * 1977-05-31 1978-12-29 Merieux Inst Procede de separation de lipides d'endotoxines bacteriennes et notamment d'endotoxine de bordetella pertussis
GB2014452B (en) * 1978-02-17 1982-07-21 Secr Social Service Brit Producing cell envelope preparations
DE2961293D1 (en) * 1978-02-17 1982-01-14 Nat Res Dev Immunogenic cell envelope preparations
JPS5750925A (en) * 1980-09-12 1982-03-25 Takeda Chem Ind Ltd Preparation of pertussis toxoid
US4551429A (en) * 1983-09-15 1985-11-05 American Home Products Corporation Stimulation of antigen production by Bordetella pertussis
GB8412207D0 (en) * 1984-05-12 1984-06-20 Wellcome Found Antigenic preparations
US5237052A (en) * 1984-05-12 1993-08-17 Burroughs Wellcome Company Antigenic preparations and isolation of such preparations
US4705686A (en) * 1986-05-09 1987-11-10 American Cyanamid Process for the preparation of acellular Bordetalla pertussis vaccine
FR2606789B1 (fr) * 1986-11-17 1991-05-31 Pasteur Institut Preparations d'adenylate cyclase purifiees, procede d'obtention de ces preparations et leurs applications biologiques
EP0267998A1 (en) * 1986-11-17 1988-05-25 Institut Pasteur Means for protecting against bordetella infections and toxic processes
GB8807860D0 (en) * 1988-04-05 1988-05-05 Connaught Lab Pertussis vaccine
US5101014A (en) * 1989-02-10 1992-03-31 United States Of America Process for the purification of a 69,000 da outer membrane protein of Bordetella pertussis
GB8910570D0 (en) * 1989-05-08 1989-06-21 Wellcome Found Acellular vaccine
US5276142A (en) * 1989-12-11 1994-01-04 American Cyanamid Company Process for purification of a 69000 dalton antigenic protein from Bordetella pertussis
GB9007416D0 (en) * 1990-04-02 1990-05-30 Wellcome Found Expression of heterologous protein in yeast
GB9007657D0 (en) * 1990-04-04 1990-05-30 Connaught Lab Purification of a pertussis outer membrane protein(omp69)
IT1248735B (it) * 1990-06-21 1995-01-26 Sclavo Spa Vaccini acellulari contro la pertosse
EP0484621A3 (en) 1990-07-11 1992-08-26 American Cyanamid Company Efficacious vaccines against bordetella pertussis comprising a combination of individually purified pertussis antigens

Also Published As

Publication number Publication date
NL980006I1 (nl) 1998-04-01
NO851878L (no) 1985-11-13
ES8802275A1 (es) 1988-05-01
EP0162639B1 (en) 1991-03-27
LU90203I2 (fr) 1998-04-06
US20020150595A1 (en) 2002-10-17
CA1253073A (en) 1989-04-25
NO165478B (no) 1990-11-12
US5648080A (en) 1997-07-15
EP0162639A3 (en) 1988-02-03
NO165478C (no) 1991-02-20
JPH07116053B2 (ja) 1995-12-13
ATE61937T1 (de) 1991-04-15
US6127151A (en) 2000-10-03
US6210685B1 (en) 2001-04-03
FI81262C (fi) 1990-10-10
JP2000053585A (ja) 2000-02-22
DK208985A (da) 1985-11-13
DK165358B (da) 1992-11-16
DE3582272D1 (de) 1991-05-02
NO1997010I1 (no) 1997-08-25
US5438120A (en) 1995-08-01
DK165358C (da) 2000-11-06
ES543026A0 (es) 1988-05-01
DK208985D0 (da) 1985-05-10
US6048700A (en) 2000-04-11
US20030108572A1 (en) 2003-06-12
JPS60246321A (ja) 1985-12-06
GB8412207D0 (en) 1984-06-20
US20030077294A1 (en) 2003-04-24
FI851859L (fi) 1985-11-13
JP2000072690A (ja) 2000-03-07
FI851859A0 (fi) 1985-05-10
EP0162639A2 (en) 1985-11-27

Similar Documents

Publication Publication Date Title
FI81262B (fi) Foerfarande foer isolering av ett med adenylat-cyklas-aktivitet associerat antigenpreparat ur bakterien bordetella pertussis.
Huebner et al. Production of type-specific C antigen in virus-free hamster tumor cells induced by adenovirus type 12
Forni et al. Heterologous sera: a target for in vitro cell-mediated cytotoxicity
EP0432203A1 (en) Legionellosis vaccines and methods for their production
AU641711B2 (en) Process for purification of a 69 000 dalton antigenetic protein from bordetella pertussis
Novotny et al. Adenylate cyclase activity of a 68,000-molecular-weight protein isolated from the outer membrane of Bordetella bronchiseptica
RU2447898C2 (ru) Вакцина ipv-dpt
ES2095874T5 (es) Vacuna acelular.
JP2999480B2 (ja) 百日咳感染及び毒性過程に対する保護抗原を得るための方法
CN1059471A (zh) 副鸡嗜血杆菌疫苗
Garcia et al. Characterization of antigens from the yeast phase of Histoplasma capsulatum
US5237052A (en) Antigenic preparations and isolation of such preparations
EP0180012A1 (de) Immunogene Polypeptidsequenz des Hepatitis B-Virus
Lopez-Merino et al. Immunization by an insoluble fraction extracted from Brucella melitensis: immunological and chemical characterization of the active substances
Petersen et al. Proliferative responses to purified and fractionated Bordetella pertussis antigens in mice immunized with whole-cell pertussis vaccine
Cameron et al. Identification of the protective and toxic antigens of Corynebacterium pseudotuberculosis
PT95396B (pt) Processo para a preparacao duma vacina para a proteccao contra a hemofilose suina
Khabas et al. An investigation of purified tetanus toxoid by the method of precipitation in agar
Joint Publications Research Service JPRS Report: Science and Technology, USSR.. Life Sciences
Horaud Joint IABS/WHO congress on standardization and control of biologicals produced by recombinant DNA technology

Legal Events

Date Code Title Description
PC Transfer of assignment of patent

Owner name: EVANS MEDICAL LIMITED

SPCG Supplementary protection certificate granted

Spc suppl protection certif: L145

Extension date: 20100509

Spc suppl protection certif: L144

Extension date: 20090327

FG Patent granted

Owner name: EVANS MEDICAL LIMITED

MA Patent expired