DK156253B - Fremgangsmaade til fremstilling af pyruvatoxidase - Google Patents

Fremgangsmaade til fremstilling af pyruvatoxidase Download PDF

Info

Publication number
DK156253B
DK156253B DK119679AA DK119679A DK156253B DK 156253 B DK156253 B DK 156253B DK 119679A A DK119679A A DK 119679AA DK 119679 A DK119679 A DK 119679A DK 156253 B DK156253 B DK 156253B
Authority
DK
Denmark
Prior art keywords
pyruvate
analysis
enzyme
pyruvate oxidase
phosphate
Prior art date
Application number
DK119679AA
Other languages
English (en)
Other versions
DK119679A (da
DK156253C (da
Inventor
Saburo Harada
Yoshifumi Horiuchi
Kazuo Matsuura
Hideo Misaki
Satoshi Takenaka
Original Assignee
Toyo Jozo Kk
Priority date (The priority date is an assumption and is not a legal conclusion. Google has not performed a legal analysis and makes no representation as to the accuracy of the date listed.)
Filing date
Publication date
Priority claimed from JP3468778A external-priority patent/JPS5840465B2/ja
Priority claimed from JP8635078A external-priority patent/JPS5915637B2/ja
Application filed by Toyo Jozo Kk filed Critical Toyo Jozo Kk
Publication of DK119679A publication Critical patent/DK119679A/da
Priority to DK257986A priority Critical patent/DK158681C/da
Publication of DK156253B publication Critical patent/DK156253B/da
Application granted granted Critical
Publication of DK156253C publication Critical patent/DK156253C/da

Links

Classifications

    • CCHEMISTRY; METALLURGY
    • C12BIOCHEMISTRY; BEER; SPIRITS; WINE; VINEGAR; MICROBIOLOGY; ENZYMOLOGY; MUTATION OR GENETIC ENGINEERING
    • C12NMICROORGANISMS OR ENZYMES; COMPOSITIONS THEREOF; PROPAGATING, PRESERVING, OR MAINTAINING MICROORGANISMS; MUTATION OR GENETIC ENGINEERING; CULTURE MEDIA
    • C12N9/00Enzymes; Proenzymes; Compositions thereof; Processes for preparing, activating, inhibiting, separating or purifying enzymes
    • C12N9/0004Oxidoreductases (1.)
    • C12N9/0008Oxidoreductases (1.) acting on the aldehyde or oxo group of donors (1.2)
    • CCHEMISTRY; METALLURGY
    • C12BIOCHEMISTRY; BEER; SPIRITS; WINE; VINEGAR; MICROBIOLOGY; ENZYMOLOGY; MUTATION OR GENETIC ENGINEERING
    • C12QMEASURING OR TESTING PROCESSES INVOLVING ENZYMES, NUCLEIC ACIDS OR MICROORGANISMS; COMPOSITIONS OR TEST PAPERS THEREFOR; PROCESSES OF PREPARING SUCH COMPOSITIONS; CONDITION-RESPONSIVE CONTROL IN MICROBIOLOGICAL OR ENZYMOLOGICAL PROCESSES
    • C12Q1/00Measuring or testing processes involving enzymes, nucleic acids or microorganisms; Compositions therefor; Processes of preparing such compositions
    • C12Q1/26Measuring or testing processes involving enzymes, nucleic acids or microorganisms; Compositions therefor; Processes of preparing such compositions involving oxidoreductase
    • CCHEMISTRY; METALLURGY
    • C12BIOCHEMISTRY; BEER; SPIRITS; WINE; VINEGAR; MICROBIOLOGY; ENZYMOLOGY; MUTATION OR GENETIC ENGINEERING
    • C12YENZYMES
    • C12Y102/00Oxidoreductases acting on the aldehyde or oxo group of donors (1.2)
    • C12Y102/03Oxidoreductases acting on the aldehyde or oxo group of donors (1.2) with oxygen as acceptor (1.2.3)
    • C12Y102/03003Pyruvate oxidase (1.2.3.3)
    • YGENERAL TAGGING OF NEW TECHNOLOGICAL DEVELOPMENTS; GENERAL TAGGING OF CROSS-SECTIONAL TECHNOLOGIES SPANNING OVER SEVERAL SECTIONS OF THE IPC; TECHNICAL SUBJECTS COVERED BY FORMER USPC CROSS-REFERENCE ART COLLECTIONS [XRACs] AND DIGESTS
    • Y10TECHNICAL SUBJECTS COVERED BY FORMER USPC
    • Y10STECHNICAL SUBJECTS COVERED BY FORMER USPC CROSS-REFERENCE ART COLLECTIONS [XRACs] AND DIGESTS
    • Y10S435/00Chemistry: molecular biology and microbiology
    • Y10S435/81Packaged device or kit
    • YGENERAL TAGGING OF NEW TECHNOLOGICAL DEVELOPMENTS; GENERAL TAGGING OF CROSS-SECTIONAL TECHNOLOGIES SPANNING OVER SEVERAL SECTIONS OF THE IPC; TECHNICAL SUBJECTS COVERED BY FORMER USPC CROSS-REFERENCE ART COLLECTIONS [XRACs] AND DIGESTS
    • Y10TECHNICAL SUBJECTS COVERED BY FORMER USPC
    • Y10STECHNICAL SUBJECTS COVERED BY FORMER USPC CROSS-REFERENCE ART COLLECTIONS [XRACs] AND DIGESTS
    • Y10S435/00Chemistry: molecular biology and microbiology
    • Y10S435/8215Microorganisms
    • Y10S435/822Microorganisms using bacteria or actinomycetales
    • YGENERAL TAGGING OF NEW TECHNOLOGICAL DEVELOPMENTS; GENERAL TAGGING OF CROSS-SECTIONAL TECHNOLOGIES SPANNING OVER SEVERAL SECTIONS OF THE IPC; TECHNICAL SUBJECTS COVERED BY FORMER USPC CROSS-REFERENCE ART COLLECTIONS [XRACs] AND DIGESTS
    • Y10TECHNICAL SUBJECTS COVERED BY FORMER USPC
    • Y10STECHNICAL SUBJECTS COVERED BY FORMER USPC CROSS-REFERENCE ART COLLECTIONS [XRACs] AND DIGESTS
    • Y10S435/00Chemistry: molecular biology and microbiology
    • Y10S435/8215Microorganisms
    • Y10S435/822Microorganisms using bacteria or actinomycetales
    • Y10S435/885Streptococcus

Landscapes

  • Chemical & Material Sciences (AREA)
  • Life Sciences & Earth Sciences (AREA)
  • Organic Chemistry (AREA)
  • Health & Medical Sciences (AREA)
  • Wood Science & Technology (AREA)
  • Zoology (AREA)
  • Engineering & Computer Science (AREA)
  • Bioinformatics & Cheminformatics (AREA)
  • Genetics & Genomics (AREA)
  • Biochemistry (AREA)
  • General Health & Medical Sciences (AREA)
  • General Engineering & Computer Science (AREA)
  • Proteomics, Peptides & Aminoacids (AREA)
  • Molecular Biology (AREA)
  • Microbiology (AREA)
  • Biotechnology (AREA)
  • Biomedical Technology (AREA)
  • Medicinal Chemistry (AREA)
  • Physics & Mathematics (AREA)
  • Analytical Chemistry (AREA)
  • Biophysics (AREA)
  • Immunology (AREA)
  • Measuring Or Testing Involving Enzymes Or Micro-Organisms (AREA)
  • Enzymes And Modification Thereof (AREA)
  • Micro-Organisms Or Cultivation Processes Thereof (AREA)

Description

DK 156253 B
Opfindelsen angâr en fremgangsmâde til fremstilling af pyruvatoxidase, og denne fremgangsmâde er ejendommelig ved det i krav 1 anf0rte.
Et pyruvatoxidaseenzym kan indgâ som katalysator ved 5 folgende tre reaktioner: (1) Pyruvat + P + 02—^Ac/vP + C02 + H2 02 (2) Pyruvat + DPN+ + CoA —>Ac.f*/SCoA + DPNH + H+ + CC>2 (3) Pyruvat + l/202"^Ac + CC>2 hvor P = phosphat, Ac^vP = acetylphosphat, DPN = disphospho-10 pyridinnucleotid, CoA = coenzym A og Acr\/SCoA = acetyl- coenzym A.
Der findes med andre ord tre typer pyruvatoxidase, som hver katalyserer en af reaktionerne (1)-(3).
Pyruvatoxidasen ifolge opfindelsen er katalysator for 15 reaktionen (1).
Pyruvatoxidase er et kendt enzym. I "Methods in En-zymology", bind 1, side 482 (1955) og i "Enzymes", 2. ud-gave, side 684 (1964) er omtalt pyruvatoxidase, som katalysator for reaktionen (1Jhidrorende fra Lactobacillus del-20 brückii. Ved fremgangsmâden ifolge opfindelsen er de produ- cerende organismer Pediococcus,Streptococcus og Aerococcus, som aile er forskellige derfra.
I "Chemical Abstracts", bind 43, nr. 7l8i nævnes pyruvatoxidase hidrcrende fra Streptococcus faecalis, men denne 25 pyruvatoxidase er katalysator for reaktionen (2) eller (3), da der ikke dannes H2C>2 ved processen.
I "Chemical Abstracts", bind 57, nr. 17176f omtales pyruvatoxidase hidrorende fra Pediococcus casei, men denne pyruvatoxidase er afhængig af DPN, hvorfor den katalyserede 30 reaktion er reaktionen (2).
I det folgende menes ved "pyruvatoxidase" et enzym, som katalyserer reaktionen (1).
DK 156253 B
2
Det har vist sig, at enzymet pyruvatoxidase dannes i en bakteriestamme B-0667 tilh0rende slægten Pediococcus og B-0668 tilh0rende slægten Streptococcus isoleret fra en jordprove taget i en radisemark i Ohito-cho, Tagata-gun, 5 Shizuoka-ken, Japan, og at pyruvatoxidasen fremstillet der- fra kan benyttes til pyrodruesyreanalyse i en prove indehold-ende pyrodruesyre eller forskellige systemer, som frigor pyrodruesyre. Det har ogsà vist sig, at dette enzym kan benyttes til kvantitativ analyse af pyrodruesyre, mâling af en-10 zymaktiviteten af enzymreaktionssystemer, som danner pyruvat, kvantitativ bestemmelse af enzymet og substratet deraf. Pyrodruesyre kan analyseres ved omsætning af en prove indehold-ende pyrodruesyre med et reaktionsSystem omfattende i det mindste pyruvatoxidase, flavinadenindinucleotid (i det folg-15 ende kaldet FAD), thiaminpyrophosphat, oxygen og phosphat -
Opfindelsen skal forklares nærmere i forbindelse med tegningen, hvor fig. 1 viser den optimale pH-værdi for pyruvatoxidase, fig. 2 varmestabiliteten af pyruvatoxidase, 20 fig. 3 pH-stabiliteten af pyruvatoxidase, fig. 4 resultatet af analyse af pyrodruesyre med oxy-genelektrode under anvendelse af pyruvatoxidase, fig. 5 resultatet af analyse af sérum med oxygenelek-trode under anvendelse af pyruvatoxidase, 25 fig. 6 resultatet af analyse af pyrodruesyre ved kolometrisk metode under anvendelse af pyruvatoxidase, fig. 7 resultatet af kvantitativ analyse af se-rumpyrodruesyre under anvendelse af pyruvatoxidase, fig. 8 resultatet af analyse af ÂDP under anven-30 delse af pyruvatoxidase, fig. 9 resultatet af analyse af glyoerol, triglyce-rid og serumtriglycerid under anvendelse af pyruvatoxidase, fig. 10 resultatet af analyse af GPÏ- og GOT-ak-tivitet under anvendelse af pyruvatoxidase, •3
DK 156253 B
fig. 11 et korrelationsdiagram for analyse af GPT-aktivitet under anvendelse af pyruvatoxidase, og fig. 12 et korrelationsdiagram for analyse af GOT-aktivitet under anvendelse af pyruvatoxidase.
5 Enzymet pyruvatoxidase katalyserer en oxidativ reaktion fra pyrodruesyre, uorganisk phosphat og oxygen til dannelse af acetylphosphat, carbondioxid og hydrogen-peroxid. Enzymet fremstilles ved dyrkning af de pyruvat-oxidaseproôucerende mikrobestammer 10 Pediococcus sp. B-0667, Streptococcus sp, B-0668, Aero-coccus viridans IPO 12219 eller IPO 12317.
Ben isolerede staminé B-0667 og B-0668 ovenfor har fzlgende taksonomiske egenskaber.
A. Iagttagelser pâ forskellige medier, dyrket ved 30°0 15 i 2 dage;
Stamme B-0667 Stamme B-0668
Tryptosog'a- svag vækst, homogent svag vægt, homogent •væske uklar, senere uldag- uklar, senere uldag- tig udfældning tig udfældning
Tryptosoja- svag vækst, bleggul- svag vækst, bleggul- agarskrâ- liggrâ, ingen glans, liggrâ, ingenglans, flade ingen produktion af ingen produktion af 20 oplzseligt pigment oploseligt pigment
Tryptosoja- koloni, lille og koloni, lille og .agarplade flad flad gelatineplade vækst langs stukket vækst langs stukket
Unie, ingen fly- linie, ingen fly- 25 dendegzrelse af ge- deliggerelse af gélatine latine BOP mælk ingen ændring ingen ændring (14 dage) B. Mikroskopisk iagttagelse;
Stamme B-0667 Stamme B-0668 30 Porm sfærisk, ovoid, par sfærisk, ovoid, par tetraformet eller kort- tetraformet eller kort-kædet kædet
DK 156253 B
4 stsrrelse: 0,5 - 1,0 x 0,5 - 1,0 μ 0,8 - 1,0 x 1,0 - 1,2 μ motilitet spore : gramfarvning + + 5 syrefast - - faire C. ff.vsiologiske egenskaber:
Stamme B-06 6 7_ Stamme B-0668 væksttemperatur
45°C
10 37°C + + 30°0 + + 26°G + + 10°C + + 5°C + eller (+) + eller (+) 15 halogemtolerance
UaCl 10# + 6,5# + 5,0# + + 1,0# + + 20 0 # + OB-prove fermentativ fermentativ opforsel i fakultativt anae- fakultativt anae- oxygen: robisk robisk nitratreduktion: 25 indoldannelse: hydrogensulfat-dannelse: gelatinehydro- lyse: stivelseshydro-30 lyse: esculinhydrolyse: + + acetoindannelse: ME-prove: katalase: 35 oxidase
DK 156253 B
5 urease (SSR): urease (Christen-sen): udnyttelse af 5 citronsyre (Christensen): label fortsat
Syredannelse fra sukker: adosifcol L(+;-arabinose cellobiose + .+ dulcitol 15 meso-erythritol fructose + + fucose galactose + + glucose + + 2o glycerol inositol - inu:lin lactose + + maltose + + 25 mannitol + mannose + + melezitose melibiose + 30 raffinose + l(+)-rhamnose salicin (+) L-sorbose sorbitol 35 stivelse saccharose + + trehalose + + xylose tolérance ved 60°C i 30 minutter - +
DK 156253 B
6
Yed konsultation af Bergers Manual of Déterminative Bacteriology, 8. udgave 1974* og S.T. Cowan og K.J.
Steel, Manual for the Identification of Medical Bacteria, Cambridge Press, 1974 betegnes stammen B-0667 og B-0668 5 med de ovenfor angivne taksonomiske egenskaber, især grampositive cocci, catalase og oxidase negativ, fermen-tativ syredannelse fra glucose og ingen gasdannelse fra sukker (glucose), som tilhorende slægten Pediococcus og slægten Streptococcus.
10 Sammenligning af disse stammer med ovennsevnte identifikationsreferencer er som felgerî I tabellen: + = positiv mere end 85$ - = negativ mere end 85$ d = varierer blandt stammer eller 15 arter.
staminé stamme slægt slægt B-0667 B-0668 Pediococcus Streptocossus vækst ved 45°C + d tolérance 20 ved 60°C i 30 min. - + - d glycerol (syredan- 25 nelse) - d arabi-nose (syredannelse) - - + d 30 halogen- tolerance (FaCl 10$) + - +
Pelgelig skal stammen B-0667 betegnes som slægten Pediococcus eller Streptococcus. Ved konsultation af oven-55 nævnte*Manual for the Identification of Medical Bacteria og J. Gen. Microbiol., 26, 185-197 (1961). Er de taksonomiske egenskaber af stammen B-0667 næsten identiske med egenskaberne af Pediococcus urina-equi, men egenskaberne
DK 156253 E
7 beskrevet i Bergey’s Manual of Beterminative Bacterio-logy, 8, udgave, 1974 er en smule forskellige âerfra, Ber-for betegnes stammen B-0667 som slægten Pediocoocus og betegnes som Pediocoocus sp. B-0667.
5 Stammen B-0668 ligner slægten Streptococcus snare* re end slægten Pediocoocus. Yderligere konsultation af Manual for the ' Identification of Medical Bacteria re-sulterer i, at stammen B-0668 ligner Streptococcus faecium var. durans, men ingen taksonomiske egenskaber er beskre-10 vet i Bergey's Manual, hvorfor sammenligning i enkelt-heder er umulig, Stammen B-0668 betegnes derfor som Streptococcus sp. B-0668.
Stammerne B-0667 og B-0668 er deponeret i Instituts for Microbial Industry and Technology, Agency of 15 Industrial Science'and Technology, M.I.T.I., Japan, un-der de respektive numre PEEM-P nr. 4438 og FERM-P nr.
4439.
I en udforelsesform for den foreliggende opfindel-se dyrkes ovennævnte Pediocoocus sp, B-0667, Streptococcus 20 sp, B-0668, Aerococcus viridans IFO-12219 eller Aerococcus viridans IPO-12317 i et konventionelt medium til enzympro-duktion. Dyrkning kan foretages ved konventionel væskedyrk-ning, og submers luftningskultur foretrækkes til industriel produktion. Ber kan fortrinsvis benyttes et konventionelt 25 medium til mikroorganismer. Som kulstofkiîder kan benyttes assimilerbare carbonkilder sâsom glucose, saccharose, lactose, maltose, fructose, mêlasse og pyrodruesyre, Assimilerbare nitrogenkilder sâsom pepton, kcdekstrakt, gærekstrakt og caseinhydrolysat kan benyttes, Forskellige uorganiske 30 salte sâsom phosphat, carbonat og sulfat af magnésium, calcium, kalium, jern, mangan eller zink kan benyttes.
DK 156253 B
8
Dyrkningstemperaturen kan vælges i omrâdet for dyrkning af mikrobeceller og produktion af pyruvatoxidase, fortrinsvis 25-37°0. Dyrkningstiden kan ændrea afhængende af betingelserne og afsluttes nâr pyruvatoxidaseproduktio-5 nen er praktisk taget fuldstændig, normalt 18-48 timer.
Pyruvatoxidase ekaisterer i cellerne af mikroorga- nismer.
Œil adskillelse af pyruvatoxidase fra de dyrkede celler filtreres eller centrifugeres den dyrkede masse 10 til samling af cellerne, og den oplukkes ved behandling med mekaniske midler eller en enzymatisk procès sâsom et lysozym. Om fornodent solubiliseres pyruvatoxi-dase ' ved tilsætning af ethylendiamintetraeddikesyre (EDTA) og et overfladeaktivt middel sâsom Triton X-100 15 (indregistreret varemærke) eller Adecatol S0-120 (indre- gistreret varemærke)til fraskillelse af enzymet, Den sâ-ledes opnâede oplzsning af pyruvatoxidase behandles med eller uden inddampning, og derefter fældes enzymet ved udsaltning ved tilsætning af et oploseligt sait sâsom 20 ammoniumsulfat eller natriumchlorid· lavmolekylære uren- heder fjemes ved dialyse. Endvidere fjernes urenheder i oplosningen af pyruvatoxidase fortrinsvis ved adsorp-tionschromâtografi, ionbytningschromâtografi eller gel-filtrering. Den sâledes opnâede benzyloplzsning behand-25 les ved vakuuminddampning og lyofilisering til fremstil- ling af pulverformetpymvatoxidase. Yderligere rensning kan opnâs ved konventionelle rensningsmetoder for proteiner og enzymer sâsom adsorptionschromatografi, ionbytningschro-matografi eller gelfiltrering.
20 Pyruvatoxidase fremstillet ved fremgangsmâden ifzl- ge opfindelsen har folgende fysisk-kemiske egenskaber, hvor der benyttes fzlgende forkortelse:
Pedioeoccus sp. B-0667 forkortes B-0667
Streptococcus sp. B-0668 forkortes B-0668 35 Aerococcus viridans IFO- -12219 forkortes IFO-12219
DK 156253 B
9
Aerococcus viridans IPO-12317 forkortes IPO-12317 (1) Enzymvirkning:
Enzymet katalyserer oxidativ reaktion fra pyro-5 druesyre, uorganisk phosphat og oxygen til dannelse af acetylphosphat, carbondioxid og hydrogenperoxid: CH^COCOOH + H0P0J“ + 02 CH^COOPO^" + C02 + H202 (2) Optimal pH-værdi:
Virkningen af pH-værdien pâ aktiviteten af pyru-10 vatoxidase mâles. Phosphatstzdpudeoplosninger med pH-vær- di 6-8 benyttes til undersegelsen. Eesultaterne fremgâr af fig, 1, hvor den optimale pH-værdi er som fzlger: B-0667: pH-værdi 6,3-7»5 B-0668: pH-værdi 7,5-8,5 15 IPO-12219: pH-værdi 7,0-8,0 IPO-12317: pH-værdi 6,8-7,5
Smâ variationer iagttages ved phosphatkoncentra- tion og art af metalion.
(3) Varmestabilitet: 20 Varmestabiliteten af enzymet bestemmes ved in- kubering i 10 mM phosphatstodpude (pH-værdi 6,5) inde-holdende 10 μΜ. EAD ved 0, 40, 50, 60 og 70°C i 10 mi-nutter efter metoden til enzymbestemmelse. Som det ses af fig. 2 bliver enzymerne opnâet fra B-0667, IP0-12219 25 og IPO-12317 en smule aktiveret ved 40°C og denatureret over 60°C. Det enzym, som opnâs fra B-0668, aktiveres ikke ved 40°G og denatureres næsten over 60°C.
(4) pH-stabilitet:
Til hver enzymoplesning (0,1 ml) sættes 0,2 M 30 phosphatstzdpude for pH 6-8 (0,9 ml) eller 0,2 M af
Tris- HCl-stzdpude for pH 7-9 (0,9) og hver indeholden-de 10 μΜ PAD efterfulgt af henstand i 10 minutter ved 40°C. Der tages 20 μϋίβΓ enzymoplesning, og enzymakti-viteten bestemmes. Som det fremgâr af tabel 3, er enzy-35 met opnâet fra B-0667, IP0-12219 og IPO-12317 mest sta- bilt ved ca. pïï 7, og enzymet opnâet fra B-0668 er sta-bilt ved en sur pH-værdi.
DK 156253 B
10 (5) Virkning af forskellige stoffer: l) Virkningen af forskellige stoffer pâ enzymak-tiviteten underseges ved tilsætning af 5 mM af de neden-for angivne stoffer i stedet for MgClp i analysesystemet.
5 Relativ aktivitet ($) siîûf _ B-0667 B-0668 IPO-12219 IPO-12317 ingen tilsætning 25,4 72,0 42,0 50,3 EDTA 0 0 0 0
MgCl2 100 100 100 100 0aCl2 69,4 75,0 83,4 78,7
MnClp 129,1 102,7 116,2 111,0 10 c C0C12 81,3 81,1 85,0 84,0
BaCl2 20,6 58,8 23,9 28,8
ZnCl2 16,0 38,2 14,9 22,8
Som det ses ovenfor inhiberas enzymet af EDTA 0g 15 aktiveres af Mg++, Ca++, Mn++ og Co-"*"^.
2) Virkningen af eliminering af folgende stoffer fra analysesystemet pâ enzymaktiviteten er vist neden-for. 0,1 M dimethylglutarat-EaOH-stodpude benyttes i til-fælde af phosphateliminering.
20 Eliminerai stof -Belativ aktlyltet ,W- _ B-0667 B-0668 IEO-12219 IE0-12317
Ingen eliminering 100 100 100 100
Thiaminpyrophosphat 000 0 PAD 33,9 100 32,7 41,7
Thiaminpyrophosphat og PAD 000 0 25 phosphat 000 0
Det fremgâr heraf, at enzymet kræver thiaminpyro-phosphat og PAD som oofaktor og phosphat som substrat.
Oxygenforbruget ved enzyiureaktionen mâles med oxy-genelektrode, og oxygenet forbruges i forhold til en en-30 zymaktivitet (dannelse af hydrogenperoxid). Resultaterne fremgâr af folgende:
DK 156253 B
11
Oxygen- Reaktionsproâukt (umol/min.
Æ%fn. ) ¥>8 Xflph0S- B-0667 0,042 0,042 0,038 5 B-0668 0,022 0,0213 0,020 IP0-12219 0,040 0,038 0,037 IPO-12317 0,035 0,036 0,034
Analyserne udfores soin folger:
Qxygenforbrug: Mâleapparat for oplzst oxygen 10 (Handelsnavn: YSI-dissolved oxygen meter model 53)«
Acetylphosphat: P, Bipmann m,fl«, J« Biol, Chem., 134, 463*464 (1940).
Hydrogenperoxid: Metode under anvendelse af Ν,Ι-dimethylanilin, 4-aminoantipyrin og peberrodoxidase.
15 Som forklaret ovenfor betegnes det enzym, sont fâs fra de fire ovennævnte stammer, som pyruvatoxidase og flavinprotein. Analysemetoden for pyruvatoxidase ifolge opfindelsen er som folger: 0,5 M kaliumpyruvat 0,1 ml 20 0,5 M phosphatstsflpude (pH 7,0) 0,2 ml 0,2$ 4-aminoantipyrin 0,1 ml 0,2$ RjE-dimethylanilin 0,2 ml 0,2 M MgCl2 50 pliter 10 MM thiaminpyrophosphat 20 aliter 25 peroxidase (45 enheder/ml) 0,1 ml 1 mM PAB 10 μϋΐβr destilleret vand 0,22 ml
Ovenstâende reaktionsblanding (1,0 ml) forinku-beres ved 37°C i 3 minutter, Til denne oplosning sættes 30 enzymoplosningen (20 μliter), og man inkuberer ved 37°C
i 10 minutter. 0,1 M citratstodpude (pïï 6,0, 2 ml) in-deholdende 0,1 M EDTA tilsættes til standsning af reak-tionen. Ben dannede violette farve mâles ved kolori-metrisk metode ved 665 nm.
35 En enhed for enzymaktivitet defineres som den ak- tivitet, som frembringer 1 μmol hydrogenperoxid pr. minut.
DK 156253 B
12
Til aktivering af pyruvatoxidasereaktionssystemet tilsættes FAD, thiamin-pyïophosphat og phosphat. Til aktivering af enzymet tilsættes der fortrinsvis yderligere ionfrigzrende sait, som frigzr calciumiofc, cobaltion, . 5. magnesiumion eller manganion i form af chlorid. Der væl-ges fortrinsvis en indikator sâsom en farveindikator eller fluoressensindikator for hydrogenperoxid.
Mængden og mængdeforholdet af komponenter i enzym-reaktionssystemet kan vælges til hovedsagelig enzymreak-10 tion og vil variere efter mængden af pyruyat, temperatur og tid af enzymreaktionen.
F.eks. kan der fortrinsvis benyttes 1-20 enhe-der pyruvatoxidase, 0,1-20 nmol FAD og 0,05-0,5 μπιο] thiaminpyrophosphat, 1-10 μιηοΐ uorganisk phosphat og 15 0,05-10 μιηοΐ ionfrigzrende sait pr. forszg. Pyruvatoxi dase kan være i mikroindkapslet form ellerimmobiliseret form af covalent binding med organisk eller uorganisk bærer eller adsorption med bærer. Det mo3ære forhold af indikator for hydrogenperoxid er i det mindste et ækvi- 20 molært forhold eller et overskud af dannet hydrogenperoxid. I tilfælde af peroxidase benyttes der fortrinsvis 0,5-20 enheder pr. forsog. Disse komponenter af enzyma-tisk reaktionsblanding benyttes fortrinsvis ved oplzs-ning i den passende indstillede pH-værdi af stodpuden.
25 Det sâledes fremstillede enzymatiske reaktions- system kan benyttes til analyse af pyrodruesyre. Enhver przve, som indeholder pyruvat, kan analyseres. F.eks, pyrodruesyre selv, pyrodruesyre i sérum eller urin og pyrodruesyredannende enzymreaktionssystemer sâsom mælke-30 syre og lactasedehydrogenase (IDH), ADP og pyruvatkinase og glycerol, glycerolkinase og pyruvatkinase. Yderligere eksempler i enkeltheder pâ enzymatiske reaktioner, som dann-er pyrodruesyre og er genstande for analyse, er fzl-gendeï
DK 156253 B
13 (1) Analyse af mælkesyre- eller IDH-aktivitet: lactat —jjjgy»· pyruvat + BADHg (2) Analyse af ADP eller pyruvatkinase (PK) aktivitet: ptr ADP + phosphoenolpyruvat -H ATP + pyruvat 5 (3) Analyse af glutamat-pyruvat-transaminase (G-TP) aktivitet eller α-ketoglutarat:
GrPT
alanin + a-ketoglutarat -=—h pyruvat + glutamat (4) Analyse af glutamat-oxaloacetat-transaminase (GOT) aktivitet: 10 asparaginat + a-ketoglutarat —> oxaloacetat + glutamat oxaloacetat °^loacetatae.carbox.ylaee^ pyruvat + co2 (5) Analyse af glycerol eller glycerophosphokinase (GK) aktivitet:
glycerol + ATP -glycerol-3-phosphat + .ADP
15 pxr
ADP + phosphoenolpyruvat —pyruvat + ATP
(6) Analyse af triglyeerid: triglyoerid üpase eller lipoproteinllpase., glyoe.
rol-3-
-phos-phat + ADP
PK
20 ADP + phosphoenolpyruvat -r· pyruvat + ATP
(7) Analyse af creatinin eller creatiniriphosphokinase (CPK):
Creatinin oreatin π-ρττ
creatin + ATP -creatinphosphat + ADP
PK
25 ADP + phosphoenolpyruvat ->· pyruvat + ATP
(8) Analyse af myokinase:
ATP + AMP 2 ADP
PK
ADP + phosphoenolpyruvat -> pyruvat + ATP
(9) Analyse af aktivitet af fede syrer eller thio- 30 kinase: fed syre + CoA + ATP thi'°k—acyl-CoA + AMP + PPi
AMP + ATP 2 ADP
PK
ADP + phosphoenolpyruvat -^ pyruvat + ATP
DK 156253 B
14
Disse enzymreaktioner er blot illustre rende, og disse pyruvatdannende reaktioner kan findes i kombination af enzym og dets substrat, f.eks. en biologisk prove. Som eks-emplificeret ovenfor kan analysen ikke blot foretages til 5 analyse af pyruvat, men ogsâ til analyse af enzym, enzymak- tivitet eller substrat.
En analyse foretages ved inkubering med en prsve og reagensblanding. Reagensblandingen er fortrinsvis et udstyr af de fornsdne reagenser. Til analyse mâles for-10 brugt komponent eller dannet komponent. Mâling af mæng-den af oxygenforbrug ved hjælp af et mâleapparat for op-lost oxygen er en foretrukken analysemetode. I dette til-fælde kræves der ingen indikator for hydrogenperoxid.
Hvad angâr analyse for frembragt eller dannet komponent, 15 foretrækkes mâling af mængden af hydrogenperoxid, f.eks.
ved hjælp af en hydrogenperoxidelektrodemâler sâsom YSI--oxidasemâler eller ved kolorimetrisk eller fluorometrisk analyse med indikator for hydrogenperoxid, Analysen kan fortrinsvis foretages i 10-60 minutter og ved 20-40°0, 20 fortrinsvis 35-37°0.
En indikator for hydrogenperoxid er en kombination af en eller flere chromogen- eller fluoressensindi- katorer, som pâvirkes ved kobling med hydrogenperoxid.
Eksempler pâ sàdanne indikatorer er kombinationer af 25 tetravalent titaniumforbindelse og xylenolorange, som kobles med hydrogenperoxid til dannelse af en stabil red farve, eller kombinationer af phénol eller Ιί,Ιϊ'-dimethyl-anilin eller homovanilinsyre, 4-aminoantipyrin og peroxi-dase til mâling af farve eller fluoressens, 4-aminoanti-30 pyrin kan erstattes med 4-aminophenazon. En kombination af 2,6-diohlorphenolindophenol og peroxidase og af guaia-col og peroxidase kan ogsâ benyttes. Indikatoren kan frera-stilles i forvejen som oplesning. Kolorimetriske eller fluorometriske analyser udfzres ved mâling af absorptionen 35 af passende bolgelængder sâsom 565 nm.
DK 156253 B
15 Mængden af pyrodruesyre kan mâles ved beregning ud fra en tilsvarende standardkurve af forbrugt oxygen eller dannet hydrogenperoxid,
Phosphat soin en forbrugt komponent eller acetyl-5 phosphat som en dannet komponent kan ogsâ analyseres ved konventionelle metoder,
Som forklaret ovenfor kan pyruvatoxidase anvendes i forskellige analysemetoder. Diagnostisk analyse sâsom analyse af pyruvat i pyruvatholdige reagenser eller i se-10 rum eller urin, analyse af enzymaktivitet af LDH, pyruvat- kinase, GPT, GOT, glycerolkinase, lipase, lipoproteinlipase, creatininphosphokinase, myokinase eller thiokinase og analyse af biologiske komponenter sâsom lactat, ADP, glycerol, triglycerid, creatinin eller fede syrer kan med fordel ud-15 fores ved hjaelp af et udstyr baseret pâ pyruvatoxidase, som er fremstillet ved fremgangsmâden ifolge opfindelsen.
Nedenstâende eksempler illustrerer udforelsesformer for opfindelsen samt anvendelser heraf.
Eksempel 1, 2o Pt medium (hver 100 ml pH-værdi 7) omfattende glucose (1$), pepton (1 $), gærekstrakt (0,5 $), NaCl (0,2 KH2P04 (0^), K2HP04 (0,1 $), MgS04 (0,05$) og CaCO^ (0,3$) i en 500 ml erlenmeyerkolbe steriliseres ved 12.0°C i 20 minutter. I hvert medium podes en stamme af Pediococcus 25 sp, B-0667, EERI-P nr. 4438, Streptococcus sp. B-0668, EEBM-P nr, 4439, Aerococcus viridans IE0-12218 eller Aerococcus viridans IFO-12317, og man dyrker under ryst-ning ved 30°C i 24 timer ved 300 omdrejninger pr, minut, Derefter samles de dyrkede celler ved centrifugering og 30 vaskes med 10 mM phosphatstedpude (pH-værdi 6,5) og cen- trifugeres igen til samling af bakteriecellerne. De sàle-des opnâede celler suspenderes i 10 mM phosphatstzdpude (10 ml, pH-værdi 7,0) indeholdende 0,02$ lysozym og 0,1$
Triton X-100 og inkuberes ved 37°C i 60 minutter. Ben op-
DK 156253 B
16 nâede fracentrifugerede overliggende væske, aom indeholder pyruvatoxidase, samles. Enzymaktiviteten af den overliggen- de væske fremgâr af felgende tabel:
Staminé Enzymaktivitet .
enheder/ml 5 B-0667 0,60 B-0668 0,38 IEO-12219 0,52 IP0-12317 0,46
Eksempel 2.
10 Et medium (20 liter) bestâende af de samme kompo- nenter som beskrevet i eksempel 1 i en 30 liter forgæ-ringsbeholder dampsteriliseres. Byrkningsvæske (200 ml) af Pediococeus sp. B-0667 PERM-P nr. 4438 dyrket pâ samme mâde som i eksempel 1 overfores dertil og dyrkes ved 15 30°C i 24 timer. De ved centrifugering samlede bakterie- celler (ca, 100 g) suspenderes i lysozymoplosningen (0,2 mg/ml, 4 liter) og tilsættes yderligere Triton X-100 (4 g), EDTA (3 g) og 1 M phosphatstodpude (pH-vær-di 6,5, 40 ml), og man omrorer ved 37°C i 60 minutter.
20 Til den ved centrifugering opnàede overliggende væske sættes ammoniumsulfat, og udfældningen ved 0,54 - 0,73 mætning samles ved centrifugering. Udfældningen oploses i 10 mM phospbatstodpude (pH-værdi 6,5, 1000 ml) (5160 enheder, udbytte 86$), og der tilsættes derpà kold ace- 25 tone (0,65 rumfang), og den urene udfældning skilies fra.
Der tilsættes yderligere acetone (0,3 rumfang), og udfældningen, som samles ved centrifugering, oploses i 10 mM phosphatstzdpude (pH-værdi 6,5, 70 ml) (4750 enheder, udbytte 79,2$).
30 Til oplosningen sættes ammoniumsulfat, og udfæld ningen ved 0,54 - 0,70 mætning samles ved centrifugering^
Efter oplosning af udfældningen i 10 ml phosphat-stedpude (pH-værdi 6,5) hældes oplosningen pâ en sejle
DK 156253 B
17 af Sephadex G-25 (indregistreret varemærke) (6,0 x 70 cm), og man samler en fraktion, som viser absorbens ved 280 nm.
De aktive fraktioner slâs sammen og frysetorres til opnâ-else af et pulver af pyruvatoxidase (3940 enheder, 758 mg, 5 udbytte 65,7$).
Eksempel 3« üdstyr til pyruvatanalyse (til oxygénélektrode): pyruvatoxidase opnâet i eksempel 2 (samme som i de fslgende eksempler) 300 enheder FAD 0,5 μmol 10 thiaminpyrophosphat 10 pmol nm Clg 25 pmol 0,2 M phosphatstodpude (pH 7,5) 1,0 ml saccharose 0,5 g 0,2 M dimethylglutarat-lîaOH-stodpude 15 (PH 7,5) 5 ml
Ovenstâende blanding lyofiliseres til fremstil- ling af udstyret til analyse af pyrodruesyre (til oxy- genelektrodemâling, 50 forssg),
Eksempel 4.
Udstyr til pyruvatanalyse (til kolorimetrisk 20 analyse ) :
Reagens (I) pyruvatoxidase 200 enheder FAD 0,5 μιηοΐ thiaminpyrophosphat 10 pmol 25 0,2 M phosphatstodpude (pH 7,5) 1,0 ml saccharose 0,5 g 0,2 M dimethylglutarat-NaOH-stad- pude (7,5) 5 ml peroxidase (100 enheder/mg, peberrod) 2,5 mg 30 0,3$ 4-aminoantipyrin 5 ml
Ovenstâende blanding lyofiliseres til dannelse af reagens (I) i udstyret til pyruvatanalyse (til ko-lorimetri, 50 forssg).
18
DK1S6253B
Yderligere reagens (II) bestâende af: 0,2io vandig Ε,ΙΤ-dimethylanilin indeholdende 25 μmol nm 012 (50 ml) samt stopreagens (III) bestâende af: 5 0,1 M citratstodpude (pH 6,0, 100 ml) indehol dende 0,1 M EDTA tilfojes.
Eksempel 5«
Et udstyr illustreret i eksempel 3 oplsses i de-stilleret vand (50 ml),og en portion oplosning (1,0 ml) 1° deraf anbringes i en reaktionsbeholder. Der tilsættes 5,0 mM pyruvatoplosning (hver 0-100 μϋΐβΓ) eller humant sérum 50 μΐ^βη og 5,0 ml pyruvatoplosning (hver yderli-gere 0-100 μϋΐβΓ), og man inkuberer ved 37°C og mâler derpà oxygenforbruget med galvanisk oxygénélektrode.
15 Resultaterne fremgâr af fig, 4.
Yderligere oploses et udstyr ifolge eksempel 3 i destilleret vand (25 ml), og en portion oplosning (0,5 ml) deraf anbringes i reaktionsbeholdere og inkuberes under tilsætning af vandig oplosning (0,5 ml) indeholdende hu-20 mant sérum (0-0,5 ml) ved 37°C. I fig. 5 ses resultatet af en analyse af oxygenforbrug mâlt med galvanisk oxygen-elektrode.
Som det fremgâr af fig. 4 og 5, iagttages der gode lineære relationer.
25 Eksempel 6.
Det i eksempel 4 fremstillede lyofiliserede reagens (I) oplsses ved tilsætning af reagens (II) (50 ml), og hver portion oplosning (1 ml) i de smâ reagensglas inkuberes ved 37°C. Der tilsættes 5 mM kalium pyruvatop-losning (hver 0 -50 μϋΐβτ) eller humant sérum (50 μϋ-30 ter) tilsat 5 mM kaliumpyruvatoplosning (hver 0-50 μϋ-ter), og man inkuberer ved 37°C i 10 minutter. Stopop-losning (2 ml) tilsættes,og man mâler absorptionen ved
DK 156253B
19 565 nm. Som vist i fig. 6 fâs der gode lineære relatio-ner og kvantitative resultater i ovenstâende analyser og ogsâ i dette tilfælde falder dette résultat sammen med kalibreringskurven ved (2,5 mM £^2, 0-50 μΙ^βΓ).
5 En yderligere proveportion af humant sérum (0-0,5 ml) anbringes i smâ reagensglas og indstilles til 0,5 ml ved tilsætning af destilleret vand. ïïver oplosning (1,0 ml) af reagens (I) fremstillet ved tilsætning af reagens (II) i eksempel 4 tilsættes og inkuberes ved 37°C i 10 minutter.
10 Reaktionen standses ved tilsætning af stopreagens (III) (1,5 ml)» og man analyserer kolorimetrisk ved 565 nm.
Som det ses i fig 7 fâs der et godt kvantitativt résultat.
Eksempel 7.
Reakti onsbland ing: 15 0,2 M dimethylglutarat-liaOH-stod- pude (pH7,5) 0,2 ml 10 mM MÎ1CI2 50 μΙ^βΓ 0,2$ ίΤ,ΙΓ-dimethylanilin 0,2 ml 0,3$ 4-aminoantipyrin 0,1 ml 20 peroxidase (45 enheder/ml) 0,1 ml 10 mM thiaminpyrophosphat 20 μϋΐβΓ 0,2 M phosphatstodpude (pH 7,5) 25 μliter 20 mM phosphoenolpyruvat 0,1 ml pyruvatkinase (4000 enheder/ml) 5 μϋΐβΓ 25 5 mM ADP 0-50 μ
Ovenstâende reaktionsblanding indstilles'til 1,0 ml ved tilsætning af destilleret vand og forinkuberes ved 37 C, og derpâ tilsættes der en oplssning af pyru-vatoxidase (200 enheder/ml, 20 μϋΐβΓ), og man inkuberer 30 ved 37°C i 10 minutter. Efter standsning af reaktionen ved tilsætning af 0,1 M EDTA i 0,1 M citratstodpude (pH 6,0, 2,0 ml) mâles absorptionen ved 565 nm. Som det ses i fig, 8,opnâs der gode kvantitative resulta-ter for ADP-analyse, idev man analyserer det hydrogen-35 peroxid, som dannes af reaktionsblandingen af ADP, pyru vatkinase og phosphoenolpyruvat.
DK 156253 B
20
Ligeledes ses det i fig. 8, at der iagttages en god linearitet, nâr der benyttes 2,5 mM hydrogenperoxid i stedet for 5 mM .ADP,
Eksempel 8.
5 Triglyceridanalyseudstyr:
Reagens (I): 0,2 M dimethylglutarat-HaOÏÏ-st0dpude (pH 7#5) 10 ml 0,3$ 4-aminoantipyrin 5 ml 10 peroxidase (100 enheder/mg) 2,5 mg thiaminpyrophosphat 10 μιηοΐ 0,2 M phosphatstodpude (pH 7,5) 1,25 ml phosphoenolpyruvat 100 μΐΰοΐ pyruvatkinase (4000 enheder/ml) 0,1 ml 15 pyruvatoxidase (200 enheder/ml) 2 ml lipoproteinlipase (3000 enheder/ml) 0,5 ml glyoerolphosphokinase (300 enheder/ml) 1,0 ml AT P 100 μπιοί
Ovenstâende reagens lyofiliseres, 20 Reagens (II): 25 pmol MhOlg i 0,2$ dimethylanilin 50 ml
Reagens (III): (stopoplosning) 0,1 M EDTA i 0,1 M .citratstodpude (pH 6,0) 100 ml 25 Eksempel 9.
Reagens (i) i eksempel 8 oploses i reagens (II), og hver portion oplosning (1,0 ml) deraf anbringes i reagensglas,
Hver portion prove (0-50. μΐ^βη) af humant sérum 3ΰ indeholdende 1,02 μmûl/ml triglycerid, 5 mM glycerolop- losning, 4,2 mM triolein i 0,1$ Triton X-lOO-oplosning eller 2,5 mM hydrogenperoxid tilsættes og inkuberes ved 37°C i 10 minutter. Som det ses i fig, 9, opnâs der god linearitet.
DK 156253 B
21
Eksenrpel 10.
Et udstyr til analyse af serumtransaminase (til 100 forsog): (1) en udrustning til GPT-analyse (til 100 5 prpver):
Reagens (I): Lyofiliseret reagens bestâende af: pyruvatoxidase 400 enheder FAE 500 nmol thiaminpyrophosphat 150 μηιοί 10 1-alanin 20 mmol α-ketoglutarat 1 mmol saccharose 1 g t 4-aminoantipyrin 150 μπιοί peroxidase 450 enheder 15 0,2 M phosphatstodpude (pH 7,5) 2,5 ml 0,2 M dimethylglutarat-NaOH-stodpude (pH 7,5) 50 ml
Reagens (II) (100 ml benyttes til reagens (1) T: 42 μmol MnClo i 0,2?fe dimethylanilinoplos-20 ning 21° “i
Reagens (III) (sto:popl0sning) (200 ml til reagens (I), 0,2 ml for hvert forsog): 0,1 Μ EDTA i 0,2 M citratstodpude (pH 5,0) 420 ml (2) et udstyr til GOT-analyse (til 100 forsog):
Reagens (I): lyofiliseret reagens bestâende af: 25 pyruvatoxidase ...... 400 enheder FAE 500 nmol thiaminpyrophosphat 150 μιηοΐ L-asparaginsyre 20 mmol 30 α-ketoglutarat 1 mmol oxaloacetatdecarboxylase 200 enheder saccharose 1 g 4-aminoantipyrin 150 μυχοί peroxidase 450 enheder 35 0,2 M phosphatstodpude (pH 7,5) 2,5 ml 0,2 M d imethylglut arat-EaOH-s 10d pud e (pH 7,5) 30 ml
Reagens (II) og reagens (III):
Samme eom ovennævnte (l).
DK 156253 B
. 22
Eksempel 11.
Reagenser (I) fremstillet i eksempel 1, (l) (for analyse af GPT-aktivitet) og (2) (til analyse af GOT-aktivitet ) oplzses ved tilsætning af reagens (II) (100 ml). Hver 5 portion (1,0 ml) af oplzsningen anbringes separat i smâ reagensglas og forinkuberes ved 37°C i 5 minutter (for-inkuberet oplzsning af reagens (I))# Standardserumoplzs-ningen (20 μϋΐθΓ) (Calbioohem Co,, handelsnavn: Maxitol, indeholdende G-PT 700 K enheder/ml og GOT 1000 K/ml) for-10 tyndet med konstant forhold tilsættes og inkuberes ved 37°G i 10 minutter. Reaktionen standses ved tilssstning af stopreagens (III) (2,0 ml), og man mâler absorptionen ved 565 nm.
Som vist i fig. 10 har begge enzymaktiviteter 15 linearitet op til den optiske tæthed pâ ca, 1,0 (enzym-aktivitet: ca. 750 K enheder/ml).
Eksempel 12.
Til hver forinkuberet oplzsning af reagens (I) fremstillet i eksempel 11 sættes 20 μΐ^βτ humant sérum 20 (45 prover), og man inkuberer ved 37°C i 20 minutter.
Der tilsættes stopreagens (III) (2,0 ml), og man mâler absorptionen ved 565 nm.
Samme prover af humant sérum analyseres ligeledes ved EKB-metoden (ultraviolet absorptionsmetode, GOT-ana-25 lyseudstyr og GPT-analyseudstyr, fremstillet af LKB Oorp.) og korrelationen.afhlndes. grafisk.med aktiviteten af GPT og GOT.
Som det ses i fig, 11, iagttages korrelations-koefficienten r = 0,998 og regressionsligningen ; 30 y = 0,00295 x + 0,0032 for GPT-analysen,
Yed GOT-analysen fremgâr korrelationsmonstret af fig, 12, hvor man fâr korrelationskoefficienten r = 0,966 og regressionsligningen y = 0,00287 x + 0,0180.

Claims (1)

  1. DK 156253B Fremgangsmâde til fremstilling af pyruvatoxidase, som katalyserer en reaktion fra pyrodruesyre, phosphat og oxygen til dannelse af acetylphosphat, carbondioxid og hydrogenperoxid, kendetegnet ved, at den omfat-5 ter dyrkning af en pyruvatoxidaseproducerende mikroorganis- me udvalgt blandt Pediococcus sp. B-0667 FERM-P nr. 4438, Streptococcus sp. B-0668 FERM-P nr. 4439, Aerococcus viri-dans IFO-12219 og Aerococcus viridans IFO-12317 i et nærings-dyrkningsmedium og isolation af den sâledes dannede pyru-10 vatoxidase fra de dyrkede celler.
DK119679A 1978-03-25 1979-03-23 Fremgangsmaade til fremstilling af pyruvatoxidase DK156253C (da)

Priority Applications (1)

Application Number Priority Date Filing Date Title
DK257986A DK158681C (da) 1978-03-25 1986-06-02 Udstyr til pyrodruesyreanalyse.

Applications Claiming Priority (4)

Application Number Priority Date Filing Date Title
JP3468778 1978-03-25
JP3468778A JPS5840465B2 (ja) 1978-03-25 1978-03-25 ピルビン酸オキシダ−ゼの製造法
JP8635078A JPS5915637B2 (ja) 1978-07-14 1978-07-14 ピルビン酸オキシダ−ゼを用いる分析用キツトおよび分析法
JP8635078 1978-07-14

Publications (3)

Publication Number Publication Date
DK119679A DK119679A (da) 1979-09-26
DK156253B true DK156253B (da) 1989-07-17
DK156253C DK156253C (da) 1989-12-11

Family

ID=26373526

Family Applications (1)

Application Number Title Priority Date Filing Date
DK119679A DK156253C (da) 1978-03-25 1979-03-23 Fremgangsmaade til fremstilling af pyruvatoxidase

Country Status (8)

Country Link
US (1) US4246342A (da)
CA (1) CA1143640A (da)
DE (2) DE2954385C2 (da)
DK (1) DK156253C (da)
FR (2) FR2420760B1 (da)
GB (2) GB2043650B (da)
IT (1) IT1165650B (da)
SE (1) SE445928B (da)

Families Citing this family (18)

* Cited by examiner, † Cited by third party
Publication number Priority date Publication date Assignee Title
US4246342A (en) * 1978-03-25 1981-01-20 Toyo Jozo Kabushiki Kaisha Process for the manufacture of pyruvate oxidase, and analytical method and kit for the use of the same
DE2950381A1 (de) * 1979-12-14 1981-06-19 Boehringer Mannheim Gmbh, 6800 Mannheim Verfahren und reagens zur bestimmulng von triglyceriden
US4316954A (en) 1980-04-18 1982-02-23 Eastman Kodak Company Assay for neuraminic acids
JPS57144996A (en) * 1981-02-27 1982-09-07 Fuji Photo Film Co Ltd Film for quantitative analysis
JPS57208998A (en) * 1981-06-17 1982-12-22 Fuji Photo Film Co Ltd Multi-layered analytical film for determination of transaminase
DE3221730A1 (de) * 1982-06-09 1983-12-15 Boehringer Mannheim Gmbh, 6800 Mannheim Verfahren und analytische mittel zur aktivitaetsbestimmung von glutamat-oxalacetat-transaminase
DE3306719A1 (de) * 1983-02-25 1984-08-30 Boehringer Mannheim Gmbh, 6800 Mannheim Pyruvatoxidase
JPS6034181A (ja) * 1983-08-04 1985-02-21 Kyowa Hakko Kogyo Co Ltd ノイラミニダ−ゼの製造法
IT1205338B (it) * 1983-08-09 1989-03-15 Miles Italiana Composizione e metodo per la determinazione enzimatica di urea in liquidi organici
US4812400A (en) * 1986-07-14 1989-03-14 Steinman Gary D Process for measuring sodium levels in biological fluids
US4965194A (en) * 1986-08-21 1990-10-23 Toyo Boseki Kabushiki Kaisha Pyruvate oxidase and an analytical method using the same
JPS63137699A (ja) * 1986-11-28 1988-06-09 Fuji Photo Film Co Ltd 酵素活性測定用分析要素
DE3886225T2 (de) * 1987-01-06 1994-03-31 Asahi Chemical Ind Pyruvat-Oxidase, ihre Herstellung und Verwendung.
JP3034969B2 (ja) * 1991-03-01 2000-04-17 旭化成工業株式会社 アンモニア、α−アミノ酸類またはα−ケト酸の高感度定量法および高感度定量用組成物
US5462858A (en) * 1993-12-29 1995-10-31 Eastman Kodak Company Dry multilayer analytical elements for assaying transaminases
CA2365668C (en) 1999-03-17 2014-05-20 The Board Of Trustees Of The Leland Stanford Junior University In vitro macromolecule biosynthesis methods using exogenous amino acids and a novel atp regeneration system
US7410755B2 (en) * 2005-02-22 2008-08-12 Discoverx ADP detection using an enzyme-coupled reaction
CN101177686B (zh) * 2006-11-10 2011-05-18 中国科学院上海生命科学研究院 一种丙酮酸氧化酶基因、其重组表达质粒及转化的菌株

Family Cites Families (2)

* Cited by examiner, † Cited by third party
Publication number Priority date Publication date Assignee Title
DK678474A (da) 1974-02-15 1975-10-13 Hoffmann La Roche
US4246342A (en) 1978-03-25 1981-01-20 Toyo Jozo Kabushiki Kaisha Process for the manufacture of pyruvate oxidase, and analytical method and kit for the use of the same

Also Published As

Publication number Publication date
IT7967627A0 (it) 1979-03-26
SE445928B (sv) 1986-07-28
FR2420760A1 (fr) 1979-10-19
DK119679A (da) 1979-09-26
DE2954385C2 (da) 1989-10-26
FR2436182A1 (fr) 1980-04-11
DK156253C (da) 1989-12-11
DE2911481A1 (de) 1979-10-04
GB2020018B (en) 1982-11-10
IT1165650B (it) 1987-04-22
FR2420760B1 (fr) 1985-04-19
DE2911481C2 (de) 1985-01-24
US4246342A (en) 1981-01-20
GB2020018A (en) 1979-11-07
GB2043650B (en) 1982-10-20
GB2043650A (en) 1980-10-08
SE7902648L (sv) 1979-09-26
CA1143640A (en) 1983-03-29
FR2436182B1 (da) 1983-09-09

Similar Documents

Publication Publication Date Title
DK156253B (da) Fremgangsmaade til fremstilling af pyruvatoxidase
US5972671A (en) Fructosyl amino acid oxidase and process for producing the same
EP0204283B1 (en) Uricase and a method for the preparation thereof
GB1575249A (en) Enzyme
GB2105843A (en) Fatty acid assay
US4740465A (en) Heat-resistant sarcosine oxidase N and process for producing the same
WO1997031103A1 (fr) Methode de determination du 1,5-anhydroglucitol
US4237222A (en) Lactate oxidase process for the manufacture thereof and analytical method and kit for the use of the same
JP3041840B2 (ja) 新規なグリセロールデヒドロゲナーゼ、その製法及びその用途
JPH0284178A (ja) N−アセチルヘキソサミンデヒドロゲナーゼ、その製造法及び該酵素を用いるn−アセチルグルコサミン又はn−アセチルガラクトサミンの定量法及びその定量用キット
US4965194A (en) Pyruvate oxidase and an analytical method using the same
KR950012760B1 (ko) 신규 nad 합성효소 및 그 제조법 및 이를 이용한 측정방법
JP3782621B2 (ja) ヒスタミンデヒドロゲナーゼ及びその製造法
JPH0284177A (ja) L―フコースデヒドロゲナーゼ
JP2984043B2 (ja) ミオ・イノシトールデヒドロゲナーゼおよびその製造法
GB2030149A (en) Process for l- -glycerophosphate oxidase
JPS6368099A (ja) ピルビン酸オキシダーゼを用いるピルビン酸の測定法およびその試薬
DK158681B (da) Udstyr til pyrodruesyreanalyse.
JP2684238B2 (ja) アシルカルニチンエステラーゼ及びその製造法
JP3114838B2 (ja) 新規なクレアチンアミジノハイドロラーゼおよびその用途
JP3824244B2 (ja) コレステロール・エステラーゼの製造方法
SE441931B (sv) Forfarande och medel for bestemning av pyrodruvsyra eller pyruvat
JPH0661278B2 (ja) ミオイノシトールの高感度定量法および定量用組成物
JP2678155B2 (ja) 新規なnad合成酵素を用いた測定法
JPS5915637B2 (ja) ピルビン酸オキシダ−ゼを用いる分析用キツトおよび分析法

Legal Events

Date Code Title Description
PBP Patent lapsed