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Technisches Gebiet
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Die
vorliegende Erfindung betrifft das Gebiet der Pflanzenvermehrung
und insbesondere die Massenvermehrung von Pflanzen mit Pflanzenparasiten,
vorzugsweise von Pflanzen mit gründen
Pflanzenparasiten, sogenannten Hemi-Parasiten.
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Diese
Anmeldung beansprucht die Priorität der
Dänischen
Anmeldung Nr. PA 2001 01078 , die am 9. Juli 2001 eingereicht
wurde.
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Hintergrund
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Pflanzen
mit Pflanzenparasiten werden für
verschiedene Zwecke gezüchtet.
Einige Pflanzenparasiten, wie Misteln, enthalten aktive Inhaltsstoffe,
die als pharmazeutische Zubereitungen zur Behandlung einer Anzahl
von Erkrankungen, einschließlich
Krebs und AIDS, eingesetzt werden.
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Misteln
können
weiter zur Herstellung von Medikamenten zur Behandlung von Erkrankungen
des Dünndarms
(Störungen,
die durch Medikamente oder Infektionen hervorgerufen wurden), des
Knochenmarks (Aplasie und Mangel, beispielsweise als Ergebnis von
durch Medikamente oder Strahlung hervorgerufene Agranulitose), des
Thymus (Dysfunktion, Aplasie oder Hypoplasie), der Milz (Dysfunktion),
der Lymphknoten (Aplasie oder Hypoplasie, die von durch Medikamente
oder Strahlung hervorgerufenen Störungen herrühren), zur unterstützenden
Behandlung – auch
mit Chemopharmazeutika kombiniert – der Analgesie, der Leber,
des Pankreas und von Nierenstörungen,
sowie malignen Tumoren, insbesondere der Brust, des Cervix, des
Darms oder von Prostatakarzinom verwendet werden. Trockenextrakte
von Viscum können
darüber
hinaus auch dazu verwendet werden, die zelluläre Immunität zu stimulieren, Leukozytopenie,
Granulozytopenie, Lymphozytopenie, Erythrozytopenie sowie als Ergebnis
von Krebs auftretende Immunglobulin-Defizienzen, Störungen,
die durch eine Defizienz des Immunsystems gekennzeichnet sind, insbesondere
AIDS, sowie auch bakteriell und viral induzierte Symptome, wie entzündliche
Störungen
des Dünndarms,
des Pankreas und der Nieren, Hepatitis A, B und C, Hautläsionen (ulcus
cruis), Herpes Simplex I und II, sowie Herpes Zoster zu behandeln,
als auch Hyperlipoproteinämie mit
hohen Mengen an Cholesterin, LDL-Cholesterin, Triglyceriden und
niedrigen Mengen an HDL-Cholesterin zu behandeln (
WO 98/13053 ).
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Pflanzen
mit Parasiten, insbesondere Hemi-Parasiten, werden auch für Zierzwecke
gezüchtet
und als Topfpflanzen, Bonsais oder Dekorations-Gartenpflanzen verwendet.
Aufgrund der hohen Herstellungskosten war dieser Markt bis jetzt
sehr begrenzt. Es besteht jedoch weltweit eine erhöhte Nachfrage
nach unüblichen Pflanzen,
nicht nur bei Pflanzensammlern, sondern auch bei herkömmlichen
Abnehmern von Topfpflanzen. Misteln sind in einer Reihe von Ländern traditionell
mit Weihnachten assoziiert, und es wird davon ausgegangen, dass
der Preis das primäre
Hindernis gegen Topfpflanzen mit Misteln ist, die während der
Weihnachtszeit ein grosser Verkaufsschlager werden. Ein erheblicher
Markt für
Misteln ist der Verkauf als geschnittenes Grün. Normalerweise werden zu
diesem Zweck Äste
in der Natur in Gegenden mit massivem Mistelbefall geschnitten.
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Die
herkömmliche
Produktion von Topfpflanzen und Gartenzierpflanzen ist aufgrund
der mit den zur Herstellung einer Pflanze mit einem existierenden
Pflanzenparasiten erforderlichen Schritte assoziierten Kosten begrenzt.
Normalerweise erfolgt die Herstellung in zwei Schritten. In dem
ersten Schritt wird die Mutterpflanze mittels jedem herkömmlichen
Verfahren vermehrt, wie Keimung von Saat, Schnitt, Pfropfen oder
durch in vitro Züchten,
und anschließend
zu einer bestimmten Größe gezüchtet. In
einem zweiten Schritt wird der Pflanzenparasit an der Wirtspflanze
festgesetzt und nach erfolgreicher Festsetzung wird die Pflanze
gezüchtet,
bis der Pflanzenparasiten eine annehmbare Größe erreicht hat. Die Zeitspanne
vom Ausbringen der Saat auf der Wirtspflanze bis die Pflanze zum
Verkauf fertig ist kann leicht zwei bis drei Jahre oder mehr in
Anspruch nehmen. Bei einer Pflanze, die in einer gemäßigten Klimazone
verkauft werden soll, erfolgt die Herstellung normalerweise in Treibhäusern, da
die meisten Topfpflanzen tropischen oder subtropischen Ursprungs
sind. Der Preis für
ein derartiges Produkt ist aufgrund des Erfordernisses von Treibhauseinrichtungen
und der Dauer der Herstellungszeit für den Durchschnittskonsumenten
unerschwinglich hoch.
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Ein
Züchten
der Pflanzen mit den Pflanzenparasiten in der freien Natur unter
tropischen oder subtropischen Bedingungen kann die Kosten für die Klimasteuerung
senken, wobei die Transportkosten dies möglicherweise weniger attraktiv
machen. Darüber
hinaus bestehen in den meisten Ländern
oder Regionen Einfuhrbeschränkungen
für Wurzelpflanzen
mit Erde, da Pflanzenpathogene verbreitet werden könnten.
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In
der Folge ist der Preis derartiger Pflanzen sehr hoch und es besteht
ein Bedarf im Gebiet kostenbewusste Verfahren zur Herstellung von
Pflanzen mit festgesetzten Parasiten als Einsatz als Topfpflanzen, Zierpflanzen
und zur Herstellung von Pflanzenparasiten-Biomasse für pharmazeutische Zwecke bereitzustellen.
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Zusammenfassung der Erfindung
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In
einer ersten Ausführungsform
betrifft die Erfindung ein Verfahren zur Herstellung einer Pflanze,
das umfaßt,
in aufeinander folgender Reihenfolge, Ansiedeln mindestens eines
Pflanzenparasiten an mindestens einem Ast/Zweig einer Wirtspflanze,
Abschneiden mindestens eines Astes mit mindestens einem angesiedelten
Pflanzenparasiten, und Einpflanzen des mindestens einen abgeschnittenen
Astes, wobei der Pflanzenparasit eine Gefäß-/Topf-Pflanze ist.
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Die
Erfindung betrifft vorzugsweise Wirtspflanzen, für die normalerweise durchführbare Vermehrungsverfahren über Schneiden
erhältlich
sind oder entwickelt werden können.
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In
einer Reihe untersuchter Fälle
zeigte sich, dass die Schnitte/Stecklinge trotz Anwesenheit der
Parasiten in im Wesentlichen der gleichen Häufigkeit Wurzeln schlagen können, wie
Schnitte/Stecklinge ohne Pflanzenparasiten. Dies ist aufgrund der
Anwesenheit von Pflanzenparasiten unerwartet.
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Darüber hinaus
werden durch das erfindungsgemässe
Verfahren mehrere Vorteile erhalten.
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Viele
Pflanzenparasiten können
an der gleichen Mutterpflanze festgesetzt/angesiedelt werden. Dadurch
wird durch das Verfahren im Vergleich zu Verfahren des Standes der
Technik weniger Platz verbraucht. Darüber hinaus können große und starke
Mutterpflanzen als Wirte für
die Parasiten eingesetzt werden. Grosse Pflanzen können die
Anwesenheit von Parasiten leichter tolerieren und das Wachstum der
Parasiten besser unterstützen.
Nach Abschneiden der ersten Reihe von Schnitten/Setzlingen von der
Mutterpflanze kann eine neue Rehe von Pflanzenparasiten an den Ästen der
gleichen Mutterpflanze ausgebracht/ausgesäet werden, um eine neue Runde
an Schnitten/Setzlingen mit Pflanzenparasiten zu erzeugen.
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Ein
weiterer großer
Vorteil besteht darin, dass die Wirtspflanze mit dem Parasiten in
der freien Natur in einer Klimazone gezüchtet werden kann, die für die Wirtspflanze
geeignet ist, vorzugsweise in deren natürlichen Verteilungsgebiet.
Die die angesiedelten Parasiten tragenden Schnitte/Setzlinge können dann
in die Klimazone verschifft werden, in der die Pflanzen letztendlich
verkauft werden. Die Setzlinge können
normalerweise ohne Quarantäne-Beschränkungen
importiert werden. In der Klimazone, in der die Pflanzen verkauft
werden sollen, können
die Pflanzen wurzeln und wachsen gelassen werden, bis sie zum Verkauf
fertig sind. Dadurch kann die im Treibhaus erforderliche Zeitspanne
erheblich verkürzt
werden.
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Gemäß einer
anderen Ausführungsform
betrifft die Erfindung ein Verfahren zu Herstellung einer Pflanze,
welches umfasst, in aufeinander folgender Reihenfolge, Ansiedeln
mindestens eines Pflanzenparasiten an einer ersten Wirtspflanze,
Abschneiden mindestens eines Stückes
von der ersten Wirtspflanze mit dem mindestens einen angesiedelten
Pflanzenparasiten, und Pfropfen des mindestens einen abgeschnittenen
Stücks auf
eine zweite Wirtspflanze unter Verwendung von Spitzensprossung,
und wobei der Pflanzenparasit eine Gefäßpflanze ist.
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Ein
Vorteil dieser Ausführungsform
besteht darin, dass die Herstellungszeit verringert werden kann. Die
Pflanzenparasiten werden vorzugsweise an relativ großen und
gesunden Wirtspflanzen festgesetzt/angesiedelt, auf der die Parasiten
zu einer erheblichen Größe heranwachsen
können.
Sobald die Pfropfvereinigung erfolgreich ist, ist die Pflanze zum
Verkauf fertig.
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Gemäß einer
weiteren Ausführungsform
betrifft die Erfindung einen Schnitt/Setzling einer Wirtspflanze,
der Wurzel schlagen kann, und umfasst, mindestens einen angesiedelten
Pflanzenparasiten, wobei der Pflanzenparasit eine Gefäßpflanze
ist. Einige der Vorteile des Wurzel schlagenden Setzlings wurden
vorstehend aufgeführt.
Ein Wurzel schlagender Setzling mit mindestens einem Pflanzenparasiten
kann einfach und relativ schnell zum Wurzel schlagen und auf eine
zum Verkauf geeignete Größe gebracht
werden.
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Bei
Durchführung
des Schneidens/Herstellen des Setzlings muss das Erscheinungsbild
des fertigen Garten- oder Topfpflanzen-Produkt entsprechend berücksichtigt
werden. So kann beispielsweise der Setzling derart hergestellt werden,
so dass sich der Parasit im oberen oder unteren Teil der zu verkaufenden
Pflanze befindet. Der Parasit kann am Hauptstamm oder an einer Seitenverzweigung
angeordnet sein. Darüber
hinaus kann der Setzling oberhalb des Orts des Pflanzenparasiten
abgeschnitten werden, um eine Pflanze mit mehreren Seitenverzweigungen
herzustellen. In anderen Anwendungen kann es von Interesse sein,
eine Position für
den Pflanzenparasiten auszuwählen,
die es leicht macht, den Pflanzenparasiten entweder für Biomaßenproduktion
oder für
die Produktion von Grünschnitt
in Pflanzungen zu ernten.
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Gemäß einer
anderen Ausführungsform
betrifft die Erfindung ein Verfahren zur Herstellung einer pharmazeutischen
Zusammensetzung, welches umfasst, Herstellen einer Pflanze gemäß einem
vorstehend aufgeführten
Verfahren, Züchten
der Pflanzen, Ernten von Pflanzenparasiten-Biomasse, und Herstellen
einer pharmazeutischen Zusammensetzung aus der Pflanzenparasiten-Biomasse.
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Durch
Kombinieren des erfindungsgemässen
Pflanzenvermehrungsverfahrens mit dem Züchten von Pflanzenparasitenbiomasse
können
die mit dieser Herstellung assoziierten Kosten gesenkt werden. Sind
die Pflanzenparasiten an der Wirtspflanze angesiedelt und sind die
Setzlinge geschnitten, dann kann auf die Anordnung des Pflanzenparasiten
an der zu züchtenden
Pflanze in dem Feld Rücksicht
genommen werden, so dass der Parasit in eine Höhe gezüchtet wird, aus der dieser
händisch
oder mittels einer Maschine einfach geerntet werden kann.
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Definitionen
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Pflanzenparasit
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Parasitäre Pflanzen
sind hier als Gefäß-Pflanzen
definiert, die spezialisierte Organe zur Penetration in Gewebe anderer
Gefäßpflanzen
(Wirte) aufweisen, und zur Festsetzung von Verbindungen zu den vaskulären Strängen des
Wirts zum Ende der Absorption von Nährstoffen durch den Parasiten.
Diese Organe (trotz unterschiedlicher morphologischer Natur in unterschiedlichen
parasitären
Pflanzen) werden Haustoria (Hyphen-Spitzen) genannt. Die meisten
bekannten, so definierten parasitischen Pflanzen gehören zu den
zweikeimblättrigen
(Dicotyledonen).
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Bei
parasitären
Pflanzen erfolgt normalerweise eine Unterscheidung zwischen Holo-Parasiten (kein Chlorophyll
und keine Photosynthese, Absorption organischer Bestandteile vom
Wirt) und Hemi-Parasiten (grün,
Photosynthese, Absorption organischer Nährstoffe vom Wirt). Die Grenzen
sind jedoch nicht vollständig klar,
und es wurde gezeigt, das mehrere Vertreter der holoparasitären Gruppe
mindestens Spuren an Chlorophyll enthalten.
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Gemäß einer
besonders bevorzugten Ausführungsform
der Erfindung ist der Pflanzenparasit ein Hemi-Parasit. Beispiele
für erfindungsgemäss nützliche
Hemi-Parasiten umfassen, ohne darauf beschränkt zu sein, solche, die zu
den in Beispiel 2 aufgeführten
Gattungen gehören.
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Holo-Parasiten:
eine Liste von Gattungen mit hauptsächlich Holo-Parasiten ist in
Beispiel 3 der vorliegende Anmeldung offenbart.
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Festsetzen/Ansiedeln
eines Pflanzenparasiten: durch den Ausdruck Festsetzen/Ansiedeln
eines Pflanzenparasiten an eine(r) Wirtspflanze wird normalerweise
mindestens das Verfahren der Keimung/des Spriessens einer Saat oder
des Saatguts an der Wirtspflanze bezeichnet. Der Ausdruck Festsetzen/Ansiedeln kann
auch die Infektion der Wirtspflanze durch den Pflanzenparasiten
und nachfolgend Entstehen des Pflanzenparasiten von dem Wirt bedeuten.
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Für die meisten
Pflanzenparasiten ist die Saatkeimung/Saatspriessung der natürliche Weg
der Entwicklung. Die meisten Pflanzenparasiten bevölkern/kultivieren
den Bereich der Wirtspflanze über
der Erde, beispielsweise die Äste,
wobei jedoch einige Teile der Wirtspflanze unter der Erde bevölkern/kultivieren,
beispielsweise die Wurzeln.
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Für Misteln
kann die Ansiedlung an der Wirtspflanze in zwei unterschiedliche
Phasen unterteilt werden. Während
der ersten Phase verlängert
sich der Embryo und die Mistel entwickelt sich zu einem Haftorgan, mit
dem sich die Mistel an der Wirtspflanze fest haftet. Die erste Phase
ist nicht parasitär.
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Während der
nächsten
Phase, der parasitären
Phase, bevölkert/kultiviert
die Mistel das Innere der Wirtspflanze, in dem ein haustorischer
Komplex oder ein endophytisches System gebildet wird, das aus Hyphen-Spitzen
und kortikalen Strängen
besteht. Zu einem bestimmten Punkt während der parasitären Phase
tritt der Parasit aus dem Inneren der Wirtspflanze hervor. Das Hervortreten
kann an einer Stelle stattfinden, die verschieden ist von der Stelle
der Ansiedlung, da die Mistel in der Pflanze zu einer Länge von
mehreren cm gewachsen sein kann, wie bis zu 10–15 cm, bevor sic hervortritt.
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Wurzelschlagen
des geschnittenen Asts. Dieser Ausdruck betrifft das Verfahren des
Wurzelschlagens der Äste/Setzlinge/des
Schnitts, was einem Fachmann auf dem Gebiet von Topfpflanzen und
Zierpflanzen wohlbekannt ist.
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Gewünschte Anordnung
des Parasiten an dem Schnitt: betrifft die Art und Weise, wie ein
fertiges Pflanzenprodukt mit der gewünschten Anordnung des Parasiten
gestaltet wird. Bei Herstellung von Pflanzen für Zierzwecke (Topfpflanzen
und Verzierungen) ist es normalerweise wünschenswert, dass der Parasit
klar sichtbar ist. Dies kann dadurch erreicht werden, indem die
Höhe über Grund,
die Entfernung von dem Austriebs-Gipfel, die Anwesenheit von Austrieben/Trieben
berücksichtigt
wird. Bei der Herstellung von Pflanzen für die Parasitenbiomasseproduktion
ist der spätere
Erntevorgang in Betracht zu ziehen. Die Höhe über Grund ist normalerweise
der entscheidende Faktor.
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Ausführliche
Beschreibung
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Im
Folgenden werden weitere Details der Erfindung unter Bezugnahme
auf die Zeichnungen erläutert, in
denen
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1 eine schematische Erläuterung
des Verfahrens des Aussähens
von Misteln an einer Wirtspflanze (A) und das Hervortreten von Misteln
am Wirt (B) zeigt.
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2 schematisch das Verfahren des Schneidens
der Äste
mit dem angesiedelten Pflanzenparasiten, das Wurzelschlagen des
Schnitts/der Setzlinge und das Wachsen des Schnitts/der Setzlinge
zu einer Verkaufs-fertigen Pflanze zeigt.
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3 das Verfahren der Spitzen-Knospung eines
Stücks
einer Mutter-Wirtspflanze mit einem angesiedelten Pflanzenparasiten
an einer anderen Wirtspflanze zeigt.
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4 die Ansiedelung vom Misteln an einer
Salix spp. Mutterpflanze zeigt, die im Freien gezogen wurde, ein
Herausschneiden des Schnitts mit angesiedelten Misteln B und Schnitte,
fertig zur Verschiffung oder Wurzelschlagen C.
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5 die Verwendung von Schnitten für A) Ansiedelung
von Bäumen;
B) Ansiedelung von Salix-Topfpflanzen einschließlich Pflanzen an Hoops (hoops);
C) eine Reihen-Kultur von Salix spp. mit Misteln, die zur Produktion
von Mistel-Biomasse gepflanzt wurde.
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Schnitte mit Parasiten
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Gemäß einer
besonders bevorzugten Ausführungsform
der Erfindung wird die Vermehrung über Schnitte erreicht. Dieses
Verfahren ist in 1 und 2 erläutert. 1a zeigt schematisch eine Mutterpflanze
(2), die vorzugsweise eine Reihe an Seitenverzweigungen
aufweist. In dem gezeigten Fall wurde die Parasitensaat (1)
auf jeden der Zweige (3) aufgebracht, obwohl dies auch
auf eine kleinere Anzahl von Verzweigungen erreicht werden kann.
In vergleichbarer Art und Weise kann mehr als eine Parasitenstrichaussaat
auf jeden Zweig ausgebracht werden. In 1b ist
die gleiche Pflanze (2) an einem späteren Entwicklungsstadium gezeigt,
wenn die Aussaat gekeimt und angesiedelte Parasiten (1') gebildet hat.
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Auf
der linken Seite von 2 ist eine Reihe
von Linien (4) gezeigt, um die Positionen der Schnitte
zu zeigen, die zur Freisetzung der Schnitte von der Mutterpflanze
gemacht wurden. Verzweigungen mit Schnitten werden dann Wurzel schlagen
gelassen (5) und zu einer verkaufsfertigen, reifen Pflanze
(6) wachsen gelassen.
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Pfropfen mit Parasiten
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Gemäß einer
anderen Ausführungsform
betrifft die Erfindung ein Verfahren zur Herstellung einer Pflanze,
welches umfasst, in aufeinander folgender Reihenfolge, Ansiedeln
mindestens eines Pflanzenparasiten an einer ersten Wirtspflanze,
schneiden mindestens eines Stückes
der ersten Wirtspflanze mit dem mindestens einen angesiedelten Pflanzenparasiten
und Pfropfen des mindestens einen abgeschnittenen Stückes auf
eine zweite Wirtspflanze unter Verwendung von Spitzensprossung und
vergleichbaren Propfarten.
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Durch
Verwendung dieser speziellen Ausführungsform zur Vermehrung von
Pflanzen mit Pflanzenparasiten kann die Herstellungszeit verringert
werden. Die Pflanzenparasiten werden vorzugsweise an relativ großen und
gesunden Wirtspflanzen angesiedelt, an denen die Parasiten zu einer
erheblichen Größe wachsen können. Sobald
die Pfropfvereinigung erfolgreich ist, ist die Pflanze zum Verkauf
fertig.
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Beim
Schneiden des Pfropfs von der ersten Wirtspflanze ist es wichtig,
dass sich im wesentlichen das gesamte Haustoria- oder endophytische
System des Parasiten in dem von der ersten Wirtspflanze abgeschnitten
Stück befindet.
Andernfalls wird der Pflanzenparasit das Pfropfen nicht überleben.
In vergleichbarer Art und Weise sollte die Größe des von der ersten Wirtspflanze
genommenen Pfropfs in Vergleich zu der Größe des an dem Pfropf wachsenden
Pflanzenparasiten eine bestimmte Größe aufweisen, um ein Überleben
des Pfropfs sicherzustellen, bis dieser mit den Geweben in der zweiten
Wirtspflanze vereinigt ist.
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Das
Pfropfen wird vorzugsweise durch Spitzesprossung durchgeführt. Das
Verfahren der Spitzensprossung ist in 3 erläutert. Nach
Ansiedeln des Pflanzenparasiten (8) an der ersten Wirtspflanze
(7) wird ein kleiner Pfropf (9) wie ein Stück des Stamms
mit einem angesiedelten Pflanzenparasiten von der ersten Wirtspflanze
(7) genommen und in den Stamm oder eine Verzweigung der
zweiten Wirtspflanze (10) eingebracht. Nach Vereinigung
des Pfropfs und des Ablegers (scion) ist die Pflanze verkaufsfertig.
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Ansiedeln des Pflanzenparasiten
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Der
größte Teil
von Pflanzenparasiten reproduziert über Saatgut. Die Vermehrung über Saatgut
ist auch das bevorzugte Verfahren zum Ansiedeln von Pflanzenparasiten
gemäß der vorliegenden
Erfindung. Dies führt
häufig
dazu, dass ein Samen/das Saatgut des Pflanzenparasiten an eine Stelle
an der Wirtspflanze überführt wird,
a der sie keimen und die Wirtspflanze infizieren kann. Bei einigen
Pflanzenparasiten kann es durch in vitro Kultur möglich sein,
artifizielles Saatgut zu produzieren, das auf die Wirtspflanze zur
Umwandlung in einen Steckling (manchmal als somatischer Steckling
(embling) bezeichnet) aufgebracht werden kann, der die Wirtspflanze
wiederum infizieren kann.
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Die
Wahl des Orts, an dem das Saatgut aufgebracht wird, hängt im Grossen
und Ganzen von zwei Faktoren ab. Erstens sollte das Saatgut vorzugsweise
auf eine Stelle an der Wirtspflanze überführt werden, an der sie die
Wirtspflanze leicht infizieren kann. Als allgemeine Regel gilt,
dass eine Infektion in den krautigen Teilen der Pflanze einfacher
durchgeführt
wird, wobei in vielen Spezien eine Infektion auch in den hölzernen Teilen
der Pflanze durchgeführt
werden kann. In einigen Fällen
kann eine bessere Infektion erhalten werden, wenn die Baumrinde
oder das Periderma vor der Überführung des
Saatguts auf die Ober fläche
der Pflanze dünner
gemacht wird. Normalerweise ist es nicht von Vorteil, die Pflanze
zu verletzen.
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Saatgut-Keimung
ist für
die meisten Pflanzenparasiten der natürliche Weg der Infektion, welcher
in dem erfindungsgemässen
Verfahren zum Einsatz kommen kann. Die meiste Parasiten-Saat besitzt
Mechanismen, die sie bei deren Anheftung an die Wirtspflanze unterstützen. Misteln
haben daher in deren Saat eine zähflüssige Schicht,
die das Protein Viscin enthält,
das als Klebstoff wirkt und die Saat während der Keimung an der Wirtspflanze
anheftet. Die Anheftung kann durch leichtes Pressen der Saat gegen
die Wirtspflanze verbessert werden, um einen Teil des Viscin herauszuquetschen.
Andere Wege die Saat an die Wirtspflanze anzuheften umfassen die
Verwendung anderer artifizieller oder natürlicher Klebstoffe, oder Anheftung
unter Verwendung einer Schicht, die Luft- und Lichtdurchlässig ist.
Ein Beispiel einer derartigen Schicht ist Gaze.
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Ein
weiterer wichtiger Faktor, der bei der Aufbringung von Saat auf
die Wirtspflanze zu berücksichtigen ist,
ist das Erscheinungsbild des Schnitts mit dem Pflanzenparasiten.
Im Prinzip kann die Saat des Pflanzenparasiten irgendwo auf der
Wirtspflanze zwischen der Erdoberfläche und einer Sprossende/Triebgipfel
aufgebracht werden. Normalerweise ist es jedoch nicht erwünscht, dass
sich der Pflanzenparasit zu nah an der Erdoberfläche einer Topfpflanze befindet,
so dass infolgedessen sichergestellt werden soll, dass eine ausreichende
Trieblänge
unter der Stelle, auf die der Pflanzenparasit aufgebracht wurde,
vorhanden ist, damit die endgültige
Pflanze mit dem Pflanzenparasiten eine Entfernung über Grund
aufweist. Während
der Ansiedlungsperiode des Pflanzenparasiten an der Wirtspflanze
wächst
die Wirtspflanze weiter, so dass zu dem Zeitpunkt, an dem der Schnitt
abgeschnitten werden soll, eine erhebliche Länge des Triebs über dem
Pflanzenparasiten vorhanden ist. Dieses Stück der Wirtspflanze kann vor
oder nach dem Wurzelschlagen des Schnitts entfernt werden, um die
Grösse
der schlussendlichen Pflanze zu reduzieren.
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Um
den vollen Vorteil der vorliegenden Erfindung auszuschöpfen sollte
die Anzahl an an dem gleichen Wirt angesiedelten Pflanzenparasiten
gross sein, wobei die Belastung an Parasiten, die eine Wirtspflanze
tolerieren kann, berücksichtigt
werden sollte. So werden vorzugsweise mindestens 2 Pflanzenparasiten
an dem gleichen Wirt angesiedelt. Mehr bevorzugt werden mindestens
3 Pflanzenparasiten an dem gleichen Wirt angesiedelt, wie mindestens
4 Pflanzenparasiten, beispielsweise mindestens 5 Pflanzenparasiten,
wie mindestens 6 Pflanzenparasiten, beispielsweise mindestens 7
Pflanzenparasiten, wie mindestens 8 Pflanzenparasiten, beispielsweise
mindestens 9 Pflanzenparasiten, wie mindestens 10 Pflanzenparasiten,
beispielsweise mindestens 15 Pflanzenparasiten, wie mindestens 20
Pflanzenparasiten, beispielsweise mindestens 25 Pflanzenparasiten,
wie mindestens 50 Pflanzenparasiten, beispielsweise mindestens 75
Pflanzenparasiten, wie mindestens 100 Pflanzenparasiten. Die obere
Grenze ist durch die Grösse
der Wirtspflanze definiert, d.h. hauptsächlich durch die Anzahl an
Trieben für
die Ansiedlung der Pflanzenparasiten und dessen Kraft, die bestimmt,
wie viele Pflanzenparasiten getragen werden können.
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Unter
bestimmten Umständen
kann es vorteilhaft sein, mindestens 2 unterschiedliche Spezies
oder Sorten von Pflanzenparasiten auf den gleichen Trieb einer Wirtspflanze
aufzubringen, wenn die Verträglichkeit dies
zulässt.
Dadurch können
Pflanzen mit zwei oder mehreren unterschiedlichen Pflanzenparasiten
hergestellt werden.
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Kombination von Pflanzenparasit und Wirtspflanze
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Ein
anderer wichtiger Faktor, abgesehen von der Kompatibilität, bei der
Wahl der Kombination eines Pflanzenparasiten und einer Wirtspflanze
für Topfpflanzen
und Zierpflanzen ist das Erscheinungsbild der fertigen Pflanze mit
dem Parasiten. Für
derartige Pflanzen ist es wichtig, dass sich der Pflanzenparasit
zeigt und klar sichtbar ist. Es ist daher von Vorteil, einen Pflanzenparasiten
und eine Wirtspflanze zu wählen,
die eine erkennbar unterschiedliche Farbe besitzen. Dies kann beispielsweise
dadurch erhalten werden, wenn einer der beiden vom Typ variegata
ist, oder wenn einer dunkelgrün
und der andere blasser ist. Ein anderer Weg zur Verbesserung der
Art und Weise, in der sich der Pflanzenparasit auf der Wirtspflanze
zeigt, besteht darin, einen Pflanzenparasiten und eine Wirtspflanze
zu wählen,
die eine visuell erkennbar unterschiedliche Morphologie aufweisen,
wie das Wachstumsverhalten und/oder Blattform.
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Züchten
der Wirtspflanze
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Die
Wirtspflanze sollte während
des Ansiedens des Pflanzenparasiten optimale Wachstumsbedingungen
besitzen, bis der Schnitt durchgeführt wird. Dadurch werden auch
optimale Wachstumsbedingungen für die
Parasiten erhalten.
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Die
Wirtspflanze kann während
der Ansiedelung des Pflanzenparasiten in einem Treibhaus gezüchtet werden.
Die Wirtspflanze wird jedoch vorzugsweise im Freien in einem Klimabereich
gezüchtet,
der dem Klimabereich seiner natürlichen
Verbreitung entspricht. Durch Züchten
der Wirtspflanze im freien unter optimalen Klimabedingungen können Kosten
gespart und weiter die Stärke
der Wirtspflanze und der Pflanzenparasit im Vergleich zur Züchtung unter
Treibhausbedingungen in einer anderen Klimazone, beispielsweise
einer gemäßigten Klimazone,
verbessert werden.
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Zeitpunkt des Schnitts
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Der
Schnitt kann zu nahezu jedem Zeitpunkt nach Ansiedeln des Pflanzenparasiten
auf der Wirtspflanze hergestellt werden. Wichtig ist, dass der Schnitt
und der Pflanzenparasit überleben
können,
bis der Schnitt/der Setzling Wurzel geschlagen hat.
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Für die meisten
Kombinationen Wirt/Parasit wird der Ast mit dem Parasiten vorzugsweise
geschnitten, wenn der Pflanzenparasit aus der Wirtspflanze hervorgetreten
ist. Zu diesem Zeitpunkt ist der Pflanzenparasit an der Wirtspflanze
gut angesiedelt und beide Parteien können das Schneiden und Wurzel
schlagen leichter überstehen.
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Für einige
Kombinationen kann es jedoch von Vorteil sein, den Ast mit dem Parasiten
unmittelbar bevor der Pflanzenparasit die parasitäre Phase
erreicht abzuschneiden. Zu diesem Zeitpunkt wird das Schneiden durch
die Anwesenheit des Pflanzenparasiten nicht beeinträchtigt.
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Für einige
Kombinationen und Einsatzzwecke kann es von Vorteil sein, dass der
Parasit auf eine Größe von 3–20 cm wachst,
bevor der Ast geschnitten wird, um die Produktionszeit im Treibhaus
auf ein Minimum zu beschränken.
Im Hinblick auf einige Ausführungsformen
der Erfindung kann die Länge
des Parasiten vor dem Schneiden kleiner als 1 cm, von 1 bis 2 cm,
2–3 cm,
3–4 cm,
5–6 cm,
6–7 cm,
7–8 cm,
8–9 cm,
9–10 cm, 10–11 cm,
11–12
cm, 12–13
cm, 13–14
cm, 14–15
cm, 15–16
cm, 16–17
cm, 17–18
cm, 18–20
cm, 20–22
cm, 22–24
cm, 24–26
cm, 26–28
cm, 28–30
cm oder mehr betragen.
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Die
Wahl des Zeitpunkts hängt
vom physiologischen Zustand der Mutterpflanze und dem Parasiten
ab, der Fähigkeit
der Mutterpflanze aus einem grossen und älteren Schnitten Wurzeln zu
schlagen, und der Wachstumsrate des Parasiten und/oder des mit Wurzeln versehenen
Schnitts, und dem Verhältnis
der Wachstumsrate der zwei Elemente der Kombination Wirt/Parasit.
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Parasiten
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Obwohl
die Erfindung im weitesten Sinne jede Art von Pflanzenparasiten
betrifft, ist der Pflanzenparasit gemäß einer besonders bevorzugten
Ausführungsform
ein Hemi-Parasit. Eine Anzahl an Holo-Parasiten sind aktive Saprophyten
und zersetzen die Wirtspflanze. Darüber hinaus sind die Hemi-Parasiten
aufgrund ihrer grünen
Farbe für
Zier- und Topfpflanzen besser geeignet.
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Der
Pflanzenparasit ist vorzugsweise eine Mistel. Misteln sind beim
Verbraucher wohlbekannt und es besteht ein grosser Bedarf nach Pflanzen
mit dieser bestimmten Gruppe an Hemi-Parasiten. Die Anzahl an Pflanzengattungen
mit Misteln hängt
von dem Auge des Taxonomen ab, wobei jedoch einige Verallgemeinerungen
vorgenommen werden können.
Es besteht eine Übereinstimmung
bei den Familien Viscaceae (mit 7 Gattungen), Eremolepidaceae (3
geltende Gattungen), und Misodendraceae (mit 1 Gattung, Misodendron). Bei
den Loranthaceae ist dies jedoch eine andere Geschichte. Engler
(1894) führte
10 Gattungen auf, wobei jedoch die Anzahl an akzeptierten Gattungen
nun von 50 bis 70 reicht, je nach der Behandlung. Hunderte von Arten,
die ursprünglich
in der Gattung "Loranthus
L." beschrieben
waren (mit der Maßgabe
von L. europaeus Jacq.) wurden nun einer anderen Gattung zugeordnet.
Die Liste in Beispiel 2 zeigt, dass für Loranthaceae in der neuen
Welt gegenwärtig
etwa 15 Gattungen und in der alten Welt 50 Gattungen anerkannt sind.
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Unter
den Misteln sind die Folgenden insbesondere bevorzugt: Visum crasulae,
V. enleri, V. rotundifolia, V. album, V. capense, V. minimum, da
viele ihrer Wirte einfach zum Wurzel schlagen gebracht werden können und
da sie eine typische Mistel-Morphologie aufweisen.
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Andere
Parasiten gemäß der Erfindung
umfassen Cucucta spp., der mehrere hölzerne Spezien und auch Geranien
befallen kann. Weitere Beispiele bevorzugter Pflanzenparasiten umfassen,
ohne darauf beschränkt
zu sein, Tapinanthus leedertziae, Tapinanthus olefolius, Tapinanthus
kraussianus, Moquinella rubra. Ein anderer Pflanzenparasit ist Thysanotus
multiflorus.
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Wirtspflanze
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Die
bevorzugten Wirtspflanzen können
in drei Gruppen eingeordnet werden. Topfpflanzen, Zierpflanzen (für Gärten) und
Wirtspflanze, die zur Produktion von Pflanzenparasitenbiomasse geeignet
sind. Unter diesen sind die Topfpflanzen besonders bevorzugt, da
die Nachfrage nach dieser Gruppen von Pflanzen am grössten ist.
Darüber
hinaus werden die meisten Topfpflanzen heutzutage durch Schnitt
vermehrt, so dass dieser Schritt für die meisten Spezien keine
grossen Probleme darstellen.
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Unter
den Topfpflanzen-Spezien können
die folgenden als erläuternde
und nicht begrenzende Beispiele genannt werden: Croton spp., Elaeophoria
drupifera, Euphorbia spp., Eurphobia bubalina, E. canariensis, E.
candelabrum, E. cotinifolia, E. ingens, E. leuconeura (syn. E. fournieri),
E. lophogona, E. milii (Syn E. splendens), E. punicea, E. tirucalli,
E. trigona, E. undulatifolia, Jatroba spp., Portulacria afra (folia
var.) Pelargonia spp., Ficus spp., Citrus spp., Aloe spp., Cotyledon
spp.
-
Die
Zierpflanzen können
Zier-Spezies umfassen, welche zum Gartenbau verwendet werden, und
für die
Verfahren zur Vermehrung durch Schnitt existieren. Diese Spezien
können
umfassen, Malus spp., Crataegus spp., Rosa spp., Betula spp., Sorbus
spp., Olea spp., Nerium spp., Salix spp., Populus spp.
-
Es
ist daran gedacht, dass Spezien, wie Salix spp., Populus spp., Eukalyptus
spp. Und bestimmte Pinus spp., hauptsächlich P. radiata, als Wirtspflanzen
für die
Massenproduktion von Pflanzenparasitenbiomasse verwendet werden
können.
Ein Vorteil des Einsatzes des vorliegenden Verfahrens zur Herstellung
von Pflanzen mit Pflanzenparasiten für Pflanzenparasitenbiomasse
besteht darin, dass einheitliche Pflanzen hergestellt werden können, bei
denen sich der Parasit in einer gleichen Höhe befindet, von der er leicht
geerntet werden kann. Dies kann auch ein Vorteil sein, wenn Pflanzen
mit Pflanzenparasiten zur Herstellung von geschnittenem Grün oder geschnittenem
Grünzeug
gezüchtet
werden sollen.
-
Beispiele
bevorzugter Kombinationen von Wirt und Parasit sind in dieser Anmeldung
gezeigt.
-
Schneiden
-
Die
Erfindung betrifft weiter das Zwischenprodukt, das Wurzel schlagender
Setzling einer Wirtspflanze definiert wird, die einen angesiedelten
Parasiten aufweist.
-
Dieser
Schnitt kann verholzt sein oder krautartig, je nach dem Pflanzentyp
und dem Zeitpunkt der Entfernung von der Mutterpflanze.
-
Der
Pflanzenparasit kann auf einen Stamm oder einen Trieb aufgebracht
werden, oder einer Seitenverästelung
des Schnitts.
-
Wie
vorstehend aufgeführt
kann der Schnitt von der Mutterpflanze zu einem Zeitpunkt entfernt
werden, zu dem der Pflanzenparasit in den parasitären Stadium
vorliegt, so wie wenn der Pflanzenparasit aus der Wirtspflanze hervorgetreten
ist, oder wenn der Schnitt zu einem Zeitpunkt entfernt werden kann,
wenn sich der Pflanzenparasit in dem nicht-parasitären Zustand
befindet.
-
Der
Schnitt kann gemäß im Stand
der Technik bekannter Verfahren Wurzeln schlagen gelassen werden,
welche die Verwendung eines Pflanzenwachstumregulators umfassen,
wie ein Auxin, ausgewählt
aus der Gruppe umfassend, IAA, IBA, 2,4-D und NA. In vielen Fällen kann
ein Wurzel schlagen des Schnitts ohne einen exogenen Pflanzenwachstumregulator
erreicht werden.
-
Herstellung von Salix-Schnitten und Salix-Pflanzen
mit Misteln oder anderen parasitären
Pflanzen
-
Salix
(Salcaceae) ist ein grosse Gattung von Baumen oder Sträuchern mit
mehr als 1000 bekannten Spezien, von denen viele als Ziergartenpflanzen
gezüchtet
werden.
-
Herstellungsplan
für Salix-Schnitte
und Salix-Pflanzen mit Misteln oder anderen parasitären Pflanzen
-
Jahr
1, Mutter- oder Wirts-Pflanze von Salix spp. werden auf dem Feld
eingesetzt (die Pflanzen werden vorzugsweise ohne Blätter gepflanzt,
d.h. im späten
Herbst, Winter oder im frühen
Frühjahr).
-
Jahr
2, oder nach einem oder mehreren Wachstumszeiten, die Mutter- oder
Wirtspflanzen werden auf 5–60
cm über
Erdreich heruntergeschnitten.
-
Jahre
3–4, die
Mutter- oder Wirts-Pflanzen von zahlreichen vertikalen Trieben (4 A) auf denen die Parasiten-saaten wie
folgt sein könnten:
Moquinella rubra, Tapinanthus kraussianus, Viscum album, Viscum rotundifilium,
Viscum spp., Moquinella spp. oder Tapinanthus spp. werden ausgesät (4A).
-
Jahr
4–5 oder
6 oder 7 oder 8 oder 9 oder 10, die Parasiten keimen und kultivieren
das innere der Mutter- oder Wirts-Pflanze, die Parasiten-Pflanzen
treten dann aus der Wirts-Pflanze
hervor um deren Triebsystem an der Luft auszubilden (4B).
-
Jahr
5 oder 6 oder 7 oder 8 oder 9 oder 10 oder 11, die Triebe mit angesiedelten
Parasiten werden von der Mutter- oder Wirt-Pflanze (4B und
C) abgeschnitten. Die Mutter- oder Wirts-Pflanzen können im
Feld verbleiben, um einen neuen Satz an Trieben auszubilden, welche
erneut mit Parasiten besiedelt werden können.
-
Dieser
Produktionsplan gilt auch für
andere Kombinationen Wirt/Parasit, wie die folgenden, nachstehend
offenbarten bevorzugten Kombinationen:
Viscum
carsulae oder Viscum spp. | auf | Portulacaria
afra oder Euphorbia spp. |
Viscum
engleri oder Viscum spp. | auf | Ficus
spp. oder Citrus spp. |
Tapinanthus
leedertziae oder Tapinanthus spp. | auf | Croton
spp. oder Ficus spp. |
Tapinanthus
olefolius oder Tapinanthus spp. | auf | Aloe
spp. oder Cotyledon spp. oder Euphorbia spp. oder Ficus spp. |
Tapinanthus
kraussianus oder Tapinanthus spp. | auf | Ficus
spp. |
Moquinella
rubra oder Moquinella spp | auf | Ficus
spp. |
Viscum
capense oder Viscum spp. | auf | Euphorbia
spp. |
Viscum
minimum oder Viscum spp. | auf | Euphorbia
spp. |
oder jede andere Wirt/Parasiten-Kombination.
-
Verwendung von Salix-Schnitten mit Parasiten
(5):
-
Schnitte
von Salix oder jeder anderen Pflanzen-Gattung mit angesiedelten
Parasiten können
Wurzeln schlagen gelassen werden und unter Bildung von Zier-, Topf-
oder Garten-Pflanzen
zurückgeschnitten
werden (5A).
-
Schnitte
von Salix mit angesiedelten Parasiten können an beiden Enden Wurzel
schlagen gelassen werden und als Zier-, Topf- oder Garten-Pflanzen
wachsen gelassen werden, wobei die Pflanze ihr eigenes Gebinde (5B1 und 5B2)
darstellt, wenn die Schnitte mit einem Metalldraht gewunden werden
und in jede gewünscht
Form, wie beispielsweise die Form eines Nerzes (5B1)
gebogen werden.
-
Schnitte
von Salix oder jeder anderen Pflanzen-Gattung mit angesiedelten
Parasiten können
in Reihenkultur auf dem Gebiet der Herstellung von Biomasse aus
Parasiten oder zur Herstellung von geschnittenem Grün aus den
Parasiten (5C) gepflanzt werden.
-
Pharmazeutische Verwendung von Misteln
-
Mistel-Extrakte
wurden seit Jahrhunderten therapeutisch verwendet. Seit Beginn dieses
Jahrhunderts wurden Mistel-Zubereitungen bei der Therapie von Krebs
mit unterschiedlichem Erfolg eingesetzt. Es wurde gezeigt, dass
die therapeutischen Wirkungen insbesondere durch so genannte Mistel-Lektine
(Viscumine, Viscum album Agglutinine, VAA) vermittelt werden. Neben
einem zytotoxischem Effekt wird im Stand der Technik insbesondere
heutzutage eine (unspezifische) Immunstimulierung diskutiert, deren
positive Auswirkungen für die
begleitende Therapie und die Nachsorge von Tumorpatienten verwendet
werden. Ein Anstieg der Lebensqualität wird möglicher Weise in derartigen
Patienten durch Sekretion endogener Endorphine vermittelt. Zahlreiche
in vitro und in vivo Studien sowie klinische Studien berichten eine
gesteigerte Freisetzung von Entzündungs-Cytokinen
(TNF-α,
IL-1, IL-6) sowie über
eine Aktivierung zellulärer
Komponenten des immunologischen Systems (TH-Zellen,
NK-Zellen).
-
Heutzutage
wird ein 60 kDa Mistel-Lektinprotein als der aktive Inhaltsstoff
des Mistelextrakts angesehen, dass aus den Extrakten biochemische
erhalten werden kann. Das ML-Protein
besteht aus zwei kovalent S-S verknüpften Untereinheiten, dessen
A-Kette für
die enzymatische Inaktivierung von Ribosomen und dessen B-Kette
für die
Kohlenhydrat-Bindung verantwortlich ist. Die biologische Aktivität wird heutzutage
hauptsächlich
der Lektinaktivität
der B-Kette zugeordnet.
-
Am
Beginn des frühen
19. Jahrhunderts wurden Misteln und die pharmakologischen Eigenschaften von
Mistelextrakten einer stärkeren
wissenschaftlichen Untersuchung unterzogen. So wurden insbesondere Mistelextrakte
zur Verwendung bei der Behandlung einer Vielzahl bestimmter Erkrankung
vorgeschlagen, einschließlich
kardiovaskuläre
Erkrankungen, insbesondere Hypertension und Arteriosklerose, Krebs
und Arthrose. Fermentierte Mistelextrakt die unter dem Handelsnamen
ISCADOR®,
HELIXOR®,
und PLENOSOL® verkauft
wurden, wurden zur Verwendung bei der Behandlung einer Anzahl spezifischer
Erkrankungen vorgeschlagen. ISCADOR® und
HELIXOR® wurden
subkutan injiziert, während
PLENOSOL® sowohl
intrakutan als auch intravenös
verabreicht wurde. Diese drei im Handel erhältlichen Zubereitungen sind
von der in Europa aufzufindenden Mistel Viscum album L. abgeleitet.
-
Seit
1980 wurden Untersuchungen der Mistel aufgrund ihrer immunmodulatorischen
Eigenschaften und möglichen
Nützlichkeit
bei der Behandlung von Krebs gesteigert. Siehe International Journal
of Cancer Research Treatment-ONCOLOGY 43 Supplement 1 (1986). Ein
hauptsächliches
Problem, dem sich Mistel-Wissenschaftler gegenübersehen, beinhaltet die Analyse,
Identifizierung und Standardisierung der pharmakologisch aktiven
Inhaltsstoffe in Mistel und deren Extrakte. Dieses Problem wird
durch die Tatsache verschlimmert, dass die zahlreichen komplexen
Inhaltsstoffe, welche in Mistel-Extrakten aufzufinden sind, in Abhängigkeit
von der Mistel-Spezies, dem Wachstumsort der Pflanze, der Jahreszeit
der Ernte der Pflanze, dem jeweiligen Wirt-Baum, dem eingesetzten
Extraktionverfahren und einer Anzahl andere Faktoren weit variieren.
-
Die
hauptsächlichen
Klassen an Inhaltsstoffen in Misteln, bei denen gefunden wurde,
dass sie ein pharmakologische Aktivität bereitstellen, umfassen Lektine,
Phenylpropane, Viskotoxine, Alkaloide, Flavonoide, Lignane, Amine,
Phenylkarbonsäuren
und Polysaccharide. Obwohl die Typen an pharmakologisch wichtigen
Verbindungen, die im Allgemeinen in Misteln vorhanden sind, identifiziert
wurden war den Forschern hinsichtlich der Standardisierung der Vielzahl
verfügbarer
Extrakte kein großer
Erfolg beschienen um festzustellen ob ein oder mehrer Inhaltsstoffe
für die
verzeichnete Bioaktivität
verantwortlich sind und ob die Inhaltstoffe zusammen wirken oder
einzeln wirksam sein können.
Diese äußerst unterschiedliche
Natur von Mistelextrakten und die inhärente Variabilität der Extraktzusammensetzungen
macht es schwierig, die Extrakte zur Durchführung klinischer Studien zu
verwenden. Eine Standardisierung des pharmazeutischen Agents ist
wichtig, um aussagekräftige
klinische Daten zu erzeugen. Darüber
hinaus ist die Identifizierung und Standardisierung der aktiven
Inhaltsstoffe in Mistelextrakten bei der Routinebehandlung von Patienten
ebenfalls von Bedeutung. Es ist unabdingbar, dass der Mistelextrakt
konsistent und verifizierbarer Qualität ist um sicherzustellen, dass
die Dosismengen und Behandlungsprotokolle effektiv sind.
-
Wie
aus dem Vorstehenden ersichtlich sind Misteln und daraus hergestellt
Extrakte wirksame pharmakologische Mittel. Weitere Beispiele pharmakologischer
Verwendungen von Mistelextrakten sind beschrieben in den
WO 02/40041 ,
WO 01/60398 ,
WO 00/59464 ,
WO 99/40109 ,
WO 98/29540 ,
WO 98/13053 ,
WO 97/24136 ,
WO 97/11967 ,
WO 97/01636 ,
WO 96/32132 ,
WO96/32122 ,
WO 96/32122 ,
WO 96/32121 ,
WO 96/00239 ;
WO 87/05218 , von den alle hier mit
durch in Bezugnahme mit aufgenommen werden.
-
Mistelextrakte
-
Ein
mögliches
Verfahren beinhaltet den Schritt zuerst ein Mistelpulver herzustellen.
Das Mistelpulver wird dann mit einer wässrigen Lösung extrahiert, um einen wässrigen
Extrakt herzustellen. Das Mistelpulver oder der Mistelrückstand
kann auch durch Lyophilisieren eines bekannten Volumens von Mistelextrakte/-lösung erhalten
werden, das Standardisiert werden soll. Die Konzentration kann als
mg Pflanzenmaterial/ml ausgedrückt
werden, oder auf den Proteingehalt untersucht und als μg oder mg
Protein pro ml der Lösung
beschrieben werden. Ein Teil des wässrigen Extrakts wird analysiert,
um die Konzentration in mg/ml von einem oder mehreren Proteinen
zu bestimmen, welche Laktose, Galaktose, Melibiose, N-Acetyl-D-Galaktosamin oder
Fukose binden. Die Proteine werden auch weiter segregiert, basierend
auf der Tatsache, ob sie zur Bindung von Calciumionen abhängig sind.
Die Zucker-bindungsproteine können
auch analysiert werden um die Konzentration an Protein zu bestimmen,
welches erforderlich ist, das Wachstum einer bestimmten Krebs-Zelllinie, wie einer
Leukämie-Zelllinie
L1210, zu inhibieren. Der schlussendliche Schritt in dem Verfahren
beinhaltet die Identifizierung des Extrakts als arzneimitteltauglich,
d.h. der Extrakt wird entweder zur Verwendung in bestimmten Behandlungsprotokollen
akzeptiert oder verworfen. Der schlussendliche Schritt beinhaltet
die Bestimmung, ob der Extrakt innerhalb einer bestimmten Konzentration
und/oder Aktivitätsbereichen
zuckerbindende Proteinmengen aufweist. Der Extrakt muss in der Tat
einem bestimmten Zuckerbindungsprotein-Fingerprints genügen, um für ein bestimmtes Behandlungsprotokoll
als Arzneimitteltauglich identifiziert zu werden.
-
Andere
geeignete Verfahren zum Erhalten Arzneimittel-tauglicher Extrakte
aus Misteln sind offenbart in den:
US
6,379,714 ,
US 6,306,453 ,
US 6,106,876 ,
US 5,846,548 ,
US 5,780,037 ,
US 5,738,850 ,
US 5,565,200 ,
US 5,547,674 , von denen alle hier
durch in Bezugnahme mit aufgenommen werden.
-
Beispiel 1: Vermehrung von Portulacaria
afra mit Viscum crasulae
-
Mutterpflanzen
von Portulacaria afra wurden im Freien unter subtroptischen Bedingungen
in der südlichen
Hemisphäre
gezüchtet.
Auf Pflanzen mit einer ungefähren
Grösse von
80 cm, wurde eine 2 Jahre alte Saat von Visum crasulae auf die äusseren Äste der
oberen Hälfte
der Mutterpflanzen aufgebracht, wobei 15 Zweige pro Mutterpflanze
verwendet wurden und wobei die Saat etwa 5 cm von der Spitze im
November ausgebracht wurde. Nach etwa 1 Monat keimte die Saat und
begann sich im Inneren der Wirtspflanze, Portulacaria afra, zu kultivieren.
-
Im
November des folgenden Jahrs traten die Misteln aus der Wirtspflanze
hervor. Vom Zeitpunkt des Hervortretens müssen diese Misteln für weitere
1 bis 1,5 Jahre auf der Mutterpflanze wachsen, um eine optimale
Grösse
von 3–4
cm zu erreichen, wobei Schnitte mit 15–20 cm, mit 3–5 Knoten
oberhalb der Misteln von der Mutterpflanze genommen werden können. Um
eine kompaktere Verkaufsplantage zu erhalten kann es erforderlich
sein, die Äste
oberhalb der Misteln zu schneiden, um die Pflanze zu verkürzen und
das Wachstum von Seitentrieben zu fördern.
-
Durch
Gewinnen der Triebe im Juni/Juli können die Schnitte Wurzeln schlagen
und auf die Grösse
einer Verkaufspflanze vor Weihnachten heranwachsen.
-
Das
gleiche Protokoll kann für
Euphorbia Saftpflanzen eingesetzt werden (beispielsweise E. trigona, oder
E. quadrangularis), wobei Viscum crasulae als Parasit verwendet
wird.
-
Beispiel 2
-
Tabelle 1
-
Mehr
als 200 beschriebene Mistel-Gattungen, einschließlich jener, die allgemein
in modernen taxonomischen Datenbanken aufgenommen wurden und jenen
(in Klammern, die im Allgemeinen als Synonyme angesehen werden.
Viscacaea
Batsch
(Allobium Miers = Phoradendron)
Arceuthobium
M. Bieb
(Aspidixia Korthals = Viscum)
(Baratostachys
Uphof = Phoradendron)
DENDROPHTHORA Eichler
(Distichella
van Tieghem = Dendrophthora)
GINALLOA Korthals | Ileostylus
van Tieghem
(Ichnanthus van Tieghem = Tapinanthus)
Iticania
Rafinesque = Elytranthe)
(Kingella van Tieghem = Trithecanthera)
(Lichtensteinia
Wendl. = Tapinanthus)
LAMPAS Danser
(Lanthorus Presl
= Helixanthera)
LEPEOSTEGERES Blume
LEPIDARIA
van Tieghem
(Lepidella van Tieghem = Lepidaria) |
KORTHALSELLA
van Tieghem
NOTOTHIXOS Oliver
(Ozarthris Rafinesque
= Dendrophthora)
PHORADENDRON Nuttall
(Phoradendrum
Urban = Phoradendron)
(Razoumofskya Hoffmann = Arceuthobium)
(Spiciviscum
Engelmann = Phoradendron)
VISCUM Linn.
EREMOLEPIDACEAE
van Tieghem ex Kuijt
ANTIDAPHNE Poeppig & Endlicher
(Basicapus
van Tieghem = Antidaphne)
(Eremolepis Grisebach = Antidaphne)
EUBRACHION
Hooker f.
(Ixidium Eichler = Antidaphne)
LEPIDOCERAS
Hooker f.
(Myrtobium Miquel = Lepidoceras)
(Stachyphyllum
van Tieghem = Antidaphne)
LORANTHACEAE D. Don
NEW
WORLD
AETANTHUS Engler | (Leucobotrys
van Tieghem = Helixanthera)
(Lichtensteinia Wendl. = Tapinanthus)
(Locella
van Tieghem = Taxillus)
(Lonicera Gaertn. = Dendrophthoe)
LORANTHUS
Linn.
LOXANTHERA Blume
LYSIANA van Tieghem
MACROSOLEN
Blume
(Meiena Rafinesque = Dendrophthoe)
(Metula van Tieghem
= Tapinanthus)
MOQUINIELLA Balle
(Moquinia Spreng.
f. = Moquiniella)
MUELLERINA van Tieghem
(Neamyza
van Tieghem = Peraxilla)
(Neophylum van Tieghem = Amyema)
NUYTSIA
R. Br.
(Odontella van Tieghem = Tapinanthus)
(Oedina van
Tieghem = Dendrophthoe)
(Oliverella van Tieghem = Tapinanthus
ONCELLA
van Tieghem
(Oncocalyx van Tieghem = Tapinanthus) |
(Allohemia
Rafinesque = Oryctanthus)
CLADOCOLEA van Tieghem
DENDROPEMON
(Blume) Reichenb.
DESMARIA van Tieghem
(Desrousseauxia
van Tieghem = Aetanthus)
GALADENDRON G. Don
(Glutago
Poiret = Oryctanthus)
IXOCACTUS Rizzini
LIGARIA
van Tieghem
(Loxania van Tieghem = Cladocolea)
(Macrocalyx
van Tieghem = Aetanthus)
MARACANTHUS Kuijt
Metastachys
van Tieghem = Tristerix)
NOTANTHERA (DC.) Don
ORYCTANTHUS
Eichler
ORYCTINA van Tieghem
(Passowia Karsten =
Phthirusa)
PHTHIRUSA Martius
(Phrygilanthus Eichler
= Tristerix, Notanthera, Tripodanthus)
(Psathyranthus Ule =
Psittacanthus)
SITTACANTHUS Martius
(Phyllostephanus
van Tieghem = Aetanthus)
(Taguaria Rafinesque = Gaiadendron)
STRUTHANTHUS
Martius | PAPUANTHES Danser
PEDISTYLIS
Wiens
PERAXILLA van Tieghem
(Perella van Tieghem
= Peraxilla)
(Phoenicanthemum Blume = Helixanthera)
(Phragmanthera
van Tieghem = Tapinanthus)
(Phrygilanthus Eichler = Cecarria,
Muelierinia)
(Phyllodesmis van Tieghem = Taxillus)
(Pilostogma
van Tieghem = Amyema)
PLICOSEPALUS van Tieghem
(Rhizanthemum
van Tieghem = Amyema)
RHIZOMONANTHES Danser
(Schimperina
van Tieghem = Tapinanthus)
SCURRULA Linn.
(Septimetula
van Tieghem = Tapinanthus)
SEPTULINA van Tieghem
SOGERIANTHE
Danser
(Stegastrum van Tieghem = Lepeostegeres)
(Stemmatophyllum
van Tieghem = Amyema)
(Stephaniscus van Tieghem = Tapinanthus)
(Strepsimela
Rafinesque = Helixanthera)
(Sycophila Welw. ex van Tieghem
= Helixanthera)
TAPINANTHUS Blume
TAPINOSTEMMA
van Tieghem |
TRIPODANTHUS
van Tieghem
TRISTERIX Martius
OLD WORLD
(Aciella
van Tieghem = Amylotheca)
(Acrostachys van Tieghem = Helixanthera)
(Acrostephanus
van Tieghem = Tapinanthus)
ACTINANTHELLABalle
(Acranthemum
van Tieghem = Tapinanthus)
(Agelanthus van Tieghem = Tapinanthus)
ALEPIS
van Tieghem AMYEMA van Tieghem
AMYLOTHECA van Tieghem
(Antriba
Rafinesque = Scurrula)
(Arculus van Tieghem = Amylotheca)
ATKINSONIA
F. Muell.
(Bakerella van Tieghem = Taxillus)
BARATHRANTHUS
Miquel
(Beccarina van Tieghem = Trithecanthera)
(Benthamina
van Tieghem = Amyema)
(Blumella van Tieghem = Elytranthe, Macrosolen)
CECARRIA
Barlow
(Candollina van Tieghem = Amyema)
(Chiridium van
Tieghem = Helixanthera)
(Chorilepidella van Tieghem = Lepidaria)
(Chorilepis
van Tieghem = Lepidaria)
(Choristega van Tieghem = Lepeostegeres) | TAXILLUS
van Tieghem
TETRADYAS Danser
(Thelecarpus van Tieghem
= Tapinanthus)
TIEGHEMIA Balle
TOLYPANTHUS (Blume)
Reichenb.
(Treubania van Tieghem = Amylotheca)
(Treubella
van Tieghem = Amylotheca)
TRILEPIDEA van Tieghem
TRITHECANTHERA
van Tieghem
TUPEIACham. & Sclecht.
VANWYKIA Wiens
(Xylochlamys
Domin. = Amyema)
MISODENDRACEAE Agardh (?)
=
MYZODENDRACEAE)
MISODENDRON Banks & Solander
(Mizodendron = Misodendron)
GENERA
OF UNKNOWN STATUS
(Presumably most of these are synonyms in
Old World Loranthaceae)
Alveolina van Tieghem
Apodina
van Tieghem
Arculus van Tieghem
Arthraxon van Tieghem
Aspidixia
van Tieghem
Basicarpus van Tieghem
Behautia •
Bifaria
van Tieghem
Botryololoranthus |
(Choristegeres
van Tieghem = Lepeostegeres)
(Cichlanthus van Tieghem = Scurrula)
(Cleistoloranthus
Merrill = Amyema)
(Coleobotrys van Tieghem = Helixanthera)
(Cyathiscus
van Tieghem = Barathanthus)
CYNE Danser
DACTYLIOPHORA
van Tieghem
DECAISNINA van Tieghem
DENDROPHTHOE
Martius
(Dentimetula van Tieghem = Tapinanthus)
DICYMANTHES
Danser DIPLATIA van Tieghem
DISTRANTHES Danser
(Dithecina
van Tieghem = Helixanthera)
ELYTRANTHE Blume
EMELIANTHE
Danser
(Englerina van Tieghem = Tapinanthus)
ERIANTHEMUM
van Tieghem
(Etubila Rafinesque = Dendrophthoe, Scurrula)
GLOBIMETULA
van Tieghem
(Helicanthera Spreng. = Helixanthera)
HELICANTHES
Danser
(Helica Pers. = Helixanthera)
HELIXANTHERA Lour. | Chatinia
van Tieghem
Danserella
Dipodophyllum van Tieghem
Disrtichella
van Tieghem
Eichlerinia van Tieghem
Epicola
Furcilla
van Tieghem
Furarium Rizzini
Glossidea van Tieghem
Hemiarthron
van Tieghem
Heteranthus
Heterixia van Tieghem
Hookerella
van Tieghem
Isocaulon van Tieghem
Loxania van Tieghem
Lipotactes
Macrocalyx
van Tieghem
Martiella van Tieghem
Meranthera van Tieghem
Merismia
van Tieghem
Nalloga van Tieghem
Miquelina van Tieghem
Ptychostylus
van Tieghem
Peristethium van Tieghem
Ptychostylus van
Tieghem
Remotina
Siphanthemum van Tieghem
Socratina
Solenocalyx
van Tieghem
Spragueanella
Spyrostylis
Stachyphyllum
van Tieghem
Strothanthus
Thaumasianthes
Triarthron
van Tieghem
Ungula
Velvetia van Tieghem |
-
Beispiel 3
-
Beispiel für Gattungen mit parasitären Pflanzen
-
- Balanophoraceae (Balanophora 26, Chlamydophytum 1, Corynaea
2, Cynomorium 2, Dactylanthus 1, Ditepalanthtus 1, Exorhopala 1,
Hachettea 1, Helosis 2, Langsdorffia 3, Lathrophytum 1, Lophophytum
4, Mystropetalon 1, Ombrophytum 4, Rhopalocnemis 1, Sarcophyte 1,
Scybalium 4, Thonningia 1)
Hydnoraceae (Hydnora 4, Prosopanche
3)
Lauraceae p.p. (Cassytha 29)
Lennoaceae (Lennoa 2,
Pholisma 3)
Rafflesiaceae (Apodanthes 7, Bdallophyton 4, Berlinianche
2, Botryocytinus 1, Cytinus 9, Hypolepis 3, Mitrastema 2, Pilostyles
17, Rafflesia 13, Rhizanthes 2, Sapria 2)
Convolvulaceae p
p. (Cuscutaceae (Cuscuta 279)
Scrophulariaceae-Gerardieae p.p.
(Alectra 48, Harveya 41, Hyobanche 7, Striga 50)
Scrophulariaceae-Rhinatheae
p.p. (Lathraea 6, Tozzia 2)
Orobanchaceae (Aeginetia 10, Boschniakia
1, Christisonia 18, Cistanche 24, Conopholis 3, Epifagus 1, Gleadovia
3, Kopsiopsis 2, Mannagettaea 2, Necranthus 1, Orobanche 130, Phacellanthus
1, Phelypaea 2, Platypholis 1, -Xylanche 1)