DE3317702A1 - Anthracyclinglykoside, verfahren zu deren herstellung und arzneimittel, welche diese enthalten - Google Patents
Anthracyclinglykoside, verfahren zu deren herstellung und arzneimittel, welche diese enthaltenInfo
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Description
FARMITALIA CARLO ERBA S.ρ.Α., MAILAND / ITALIEN
Änthracyclinglykoside, Verfahren zu deren Herstellung und Arzneimittel, welche diese enthalten
Die Erfindung betrifft ein Verfahrenzur Herstellung
von Anthracyclinglykosiden, Änthracyclinglykoside, die so hergestellt wurden, und Arzneimittel, welche diese enthalten.
von Anthracyclinglykosiden, Änthracyclinglykoside, die so hergestellt wurden, und Arzneimittel, welche diese enthalten.
Die Erfindung betrifft ein Verfahren zur Herstellung
von Anthracyclinglykosiden der allgemeinen Formel (I) oder der allgemeinen Formel (II)
von Anthracyclinglykosiden der allgemeinen Formel (I) oder der allgemeinen Formel (II)
OH
OK
(I)
(ID
worin R1 ein Wasserstoffatom oder eine Hydroxygruppe
und R2 ein Wasserstoffatom oder eine Methoxygruppe bedeuten.
Bei dem Verfahren wird ein Anthracyclinon der
allgemeinen Formel (III), worin R ein Wasserstoffatom oder eine t-Butyl-diphenyl-siloxy-gruppe darstellt und
R_ die oben angegebene Bedeutung hat, mit 3,4-Di-O-acetyl-2,
6-dideoxy-oi- -L-arabino-hexopyranosylchlorid
der Formel (IV) kondensiert und dann werden die Acetyl-Schutzgruppe(n)
und erforderlichenfalls die t-Butyldiphenyl-sily!-Schutzgruppe
aus den gebildeten Anthracyclinglykosiden der allgemeinen Formeln (V) und (VI),
worin R und R2 die vorher angegebenen Bedeutungen haben,
entfernt.
Das Verfahren wird im nachfolgenden Reaktionsschema
beschrieben:
— 1 1 —
(IV)
(VI )
Entfernung der Schutzgruppen
Entfernung der Schutzgruppen
Die als Ausgangsmaterialien verwendeten Änthraeyclinone
. (III) sind die bekannten Verbindungen Daunomycinon
(III, R=H, R2=CH3O: nachfolgend lila) und 4-Demethoxy-
daunomycinon (III, R=R3=H: nachfolgend IIIb) und die
neuen Verbindungen 14-0-(t-Butyl-diphenyl-silyl)-adriamycinon
(III, R=t-Butyl-diphenyl-siloxy, R3=CH3O: nachfolgend
IHc) und 14-O-(t-Butyl-diphenyl-silyl)-4-demethoxy-adriamycinon
(III, R=t-Butyl-diphenyl-siloxy, R2=H; nachfolgend Illd). Die Verbindungen (IHc) und
t *4 « ν « W V * ■» *» «ι·
! " I I - w 3 "5*: ■
- 12 -
(IIId) können durch Kondensation der bekannten Verbindungen
Adriamycinon und 4-Demethoxy-adriamycinon mit t-Butyl-diphenyl-chlorosilan in einem Lösungsmittel,
wie wasserfreiem Dimethylformamid in Gegenwart einer 5· organischen Base, wie Imidazol/ hergestellt werden. Die
t-Butyl-diphenyl-silyl-Schutzgruppe bietet den Vorteil/
dass sie während der Kondensation und der Entfernung der.Acetylschutzgruppe(n) nicht beeinflusst
wird und ass man sie leicht durch Behandlung mit Tetran-butylammoniumfluorid
abspalten kann. Die anderen Ausgangsmaterialien, der geschützte Chlorzucker (IV), ist
eine bekannte Verbindung (H.S. El Khadem et al., Carbohydr.
Res. 5_8, 1977, 230).
Die Kondensation kann unter modifizierten Koenigs-Knorr-Reaktionsbedingungen
durchgeführt werden, indem man das Anthracyclinon (III) in einem Lösungsmittel,
wie Dichlormethan, löst und es mit dem Chlorzucker (IV)
in einer heterogenen Phase, katalysiert durch Mercuribromid
und Mercurioxid, oder in homogener Phase,katalysiert
durch Silbertrifluoromethansulfonat, umsetzt. Man erhält eine Mischung der Anthracyclinglykoside (V)
• und (VI). Bei Verwendung des Anthracyclinons (lila) erhält man eine Mischung der Anthracyclinonglykoside
(V), R=H, R2=CH3O (nachfolgend Va) und (VI), R=H,
R2=CH3O (nachfolgend VIa). Bei Verwendung des Anthracyclinons
(IHb) erhält man eine Mischung der Anthracyclonglykoside (V), R=R2=H (nachfolgend Vb) und (VI),
R=R2=H (nachfolgend VIb). Bei Verwendung des Anthracyclinons
(IIIc) erhält man eine Mischung der Anthracyclinonglykoside
(V), R=t-Butyl-diphenyl-siloxy,
(t. ,)« j· ft » * ϊ» Λ f* V * * »b ft
Λ * n "t · ft" ι»β Λ
— 13 — '
R2=CH3O (nachfolgend Vc) und (VI), R=t-Butyl-diphenylsiloxy,
R2=CH3O (nachfolgend VIc). Bei Verwendung des
Anthracyclinons (HId) erhält man eine Mischung der Anthracyclinglykoside (V), R=t-Butyl-diphenyl-siloxy,
R2=H (nachfolgend Vd) und (VI), R=t~Butyl-diphenylsiloxy,
R2 =H (nachfolgend VId).
Die Mischungen der Anthracyclinglykoside (Va) und (VIa), (Vb) und (VIb) , (Vc) und (VIc) , (Vd) und (VId) können
in ihre jeweiligen Komponenten durch fraktionierte
Kristallisation oder chromatografisch aufgetrennt werden.
Durch Entfernung der Acetylschutzgruppe(n) durch • Behandeln mit katalytischen Mengen von Natriummethoxid
in Methanol oder mit einer wässrigen Natriumhydroxidlösung von (Va), (Vb), (VIa) bzw.,(VIb) ergibt die Anthracyclinglykoside
7-0- (2 ,6-Dideoxy- oCz-L-arabino-hexopyranosyl)-daunomycinon
(I, R1=H, R3=CH3O; nachfolgend
Ia), 4-Demethoxy-7-0-(2,6-dideoxy-o6 -L-arabino-hexopyranosyl)-daunomycinon
(I, R1=R7=H: nachfolgend Ib),
1-0- (2/3,6-Trideoxy-o(/ -L-erythro-hex-2-enopyranosyl) daunomycinon
(II, R1=H, R2=CH3O); nachfolgend Ha) und
4-Demethoxy-7-0-(2,3,6-trideoxy- <& -L-erythro-hex-2™
enopyranosyl)-daunomycinon (II; R =R2=H; nachfolgend Hb). ■
Nach Entfernung der Acetylschutzgruppe(n) in der vorbeschriebenen
Weise und anschliessendem Entfernen der t-Butyl-diphenyl-silyl-Schutzgruppe durch Behandeln
mit Tetra-n-butyl-ammoniumfluorid in Tetrahydrofuran,
aus (Vc), (Vd), (VIc) und (VId), erhält man die entsprechendenAnthracyclinglykoside
7-0-(2,6-Dideoxy-oC-
L-arabino-hexopyranosyl)-adriamycinon (Ϊ, R1=OH, R„=
CH_O; nachfolgend Ic), 4-Demethoxy-7-0-(2,6-dideoxyco
-L-arabino-hexopyranosyl)-adriamycinon (I, R1=OH,
R2=H; nachfolgend Id), 7-0-(2,3,6-Trideoxy-oC-L-erythro-hex-2-enopyranosyl)-adriamycinon (II, R1=OH, R2=CH3O; nachfolgend lic) und 4-Demethoxy-7-0-(2,3,6-trideoxy-o^-L-erythro-hex-2-enopyranosyl)-adriamycinon (II, R1=OH, R2=H;. nachfolgend lld).
R2=H; nachfolgend Id), 7-0-(2,3,6-Trideoxy-oC-L-erythro-hex-2-enopyranosyl)-adriamycinon (II, R1=OH, R2=CH3O; nachfolgend lic) und 4-Demethoxy-7-0-(2,3,6-trideoxy-o^-L-erythro-hex-2-enopyranosyl)-adriamycinon (II, R1=OH, R2=H;. nachfolgend lld).
Die Verbindungen (Ia) und (Ic) sind bekannte Verbindungen, die in der britischen Patentbeschreibung
8 128 252 beschrieben werden. Die weiteren Anthracyclinglykoside (I) und (II), nämlich die Verbindungen (Ib, (Id, (Ha) , (lib), (lic) und (lld) sind neue Verbindungen und werden erfindungsgemäss beansprucht.
8 128 252 beschrieben werden. Die weiteren Anthracyclinglykoside (I) und (II), nämlich die Verbindungen (Ib, (Id, (Ha) , (lib), (lic) und (lld) sind neue Verbindungen und werden erfindungsgemäss beansprucht.
Ähnlich wiedie Verbindungen (Ia) und (Ic) sind diese Verbindungen zur Behandlung von bestimmten Tumoren
in Lebenwesen geeignet und die Erfindung betrifft deshalb auch Arzneimittel, welche ein Anthracyclinglykosid (Ib) , (Id) , (Ha) , (Hb) , (lic) oder (Hd) in
in Lebenwesen geeignet und die Erfindung betrifft deshalb auch Arzneimittel, welche ein Anthracyclinglykosid (Ib) , (Id) , (Ha) , (Hb) , (lic) oder (Hd) in
Mischung mit einem pharmazeutisch annehmbaren Träger oder Verdünnungsmittel enthält.
In den nachfolgenden Beispielen beschreiben die Beispiele 3 bis 6 die vorliegende Erfindung und die Beispiele
1 und 2 betreffen die Herstellung der bestimmten Ausgangsmaterialien.
η β ι* * * β
- 1.5 -
mvcinon__(IIIc)_
5
5
Eine Lösung aus 0,414 g Adriamycinon in 20 ml wasserfreiem
Dimethylformamid wurde mit 0,28 ml t-Butyldiphenyl-chlor-silan
und 0,15 g Imidazol behandelt. Das Reaktionsgemisch wurde über Nacht bei Raumtemperatür
stehen gelassen, anschliessend wurden 200 ml Wasser zugegeben und die Lösung wurde dann mit Methylendichlorid
extrahiert. Die organische Schicht wurde abgetrennt/ über wasserfreiem Natriumsulfat getrocknet,
filtriert und im Vakuum zur Trockne abgedampft. Der Rückstand wurde chromatografisch über Kieselgel unter
Verwendung eines Lösungsmittelgemisches aus Ethylacetat:Toluol (1:2 v/v) als Eluiersystem gereinigt. Das
reine (HIc) (0,46 g) schmilzt bei 208 bis 2090C.
FD-MS: m/z 652 (M+')
PMR (CDCl-.): inter alia bei 1,14 d(s, (CH-),-C),
3,98 ί Cs, CH3O) und 4,89 (s, CH2-Si-).
Beispiel 2
30
30
Eine Lösung aus 0,385 g 4-Demethoxyadriamycinon in 15 ml
wasserfreiem Dimethylformamid wurde mit 0,3 ml t-Butyl-diphenyl-chlor-silan
und 0,15 g Imidazol behandelt. Das Reaktionsgemisch wurde 4 Stunden bei Raumtemperatur
stehen gelassen und anschliessend wurden
200 ml Wasser zugegeben und die Lösung wurde mit
200 ml Wasser zugegeben und die Lösung wurde mit
Methylendichlorid extrahiert. Die organische Schicht
wurde abgetrennt, über wasserfreiem Natriumsulfat getrocknet, filtriert und im Vakuum zur Trockne eingedampft.
Der Rückstand wurde dann chromatografisch
über Kieselgel, unter Verwendung eines Lösungsmittelgemisches aus Toluol: Aceton "{95:5 v/v) als Eluiersystem, gereinigt. Das reine (HId) (0,6 g) schmilzt
bei 101 bis 1020C.
über Kieselgel, unter Verwendung eines Lösungsmittelgemisches aus Toluol: Aceton "{95:5 v/v) als Eluiersystem, gereinigt. Das reine (HId) (0,6 g) schmilzt
bei 101 bis 1020C.
FD-MS: m/z 622 (M+")
PMR (CDCl3): inter alia bei 1,13 tf(s, CH3J3,
3,41 6 (d, OH-C-7),
4,87 (s, CH2-Si-),
5,24 6 (m, C-H-7).
4,87 (s, CH2-Si-),
5,24 6 (m, C-H-7).
Beispiel 3
25-
25-
Zu einer Losung aus 2 g Daunomycinon (Illa)in 200 ml
wasserfreiem Methylendichlorid wurden 1,25 g 3,4-Di-O-acetyl-2,6-dideoxy-uk-L-arabino-hexopyranosylchlorid
(IV), gelöst in 30 ml Methylendichlorid, in Gegenwart
von 12 mg eines Molekularsiebes (4 A Merck) gegeben.
Die Mischung wurde mit 1,28 g Silbertrifluormethansulfonat,
gelöst in 30 ml wasserfreiem Diethylether, behandelt. Nach 5 Minuten wurde das Reaktionsgemisch
mit 0,65 ml wasserfreiem Kollidin neutralisiert. Nach 30 Minuten bei Raumtemperatur wurde die organische Lösung
miteiner gesättigten wässrigen Lösung von Natriumbikarbonat, mit Wasser, mit wässriger 0,1N SaIzsäure
und schliesslich mit Wasser gewaschen. Die organische Phase wurde abgetrennt und im Vakuum zur Trockne
eingedampft. Der Rückstand wurde chromatografisch über einer Kieselgelsäule, unter Verwendung von Ethylacetat:
Cyclohexan (1:1 v/v) als Eluiersystem, gereinigt. Man erhielt getrennt 0,9 g des Produktes (Va), F: 117 bis
PMR (CDCl3): inter alia bei 1,23 <f (d, CH3-C-S1)
1 ,95 cf (s, CH3COOC) ,
"
2,07 | 6 | (s, CH3COOC), |
2,43 | 6 | (s, CH3CO), |
5,20 | 6 | (CH-7) und |
5,53 | ά |
/ /TfJ Ί I \
\ν^Χΐ I / |
und 0,9 g des Produktes (Via), F: 83 bis 840C.
Die Verbindung (Va) (0,7 g) wurde in Aceton (45 ml) gelöst
und mit 50 ml einer 0,2N wässrigen Natriumhydroxidlösungbei Raumtemperatur behandelt. Nach 1 Stunde wurde
die Lösung auf den pH-Wert 7 eingestellt und mit Chloroform extrahiert. Nach dem Abdampfen des organischen
. Lösungsmittels im Vakuum erhielt man reines (Ia) in
quantitativer Ausbeute.
F: 162-162°C
FD-MS: m/z 528 (M+').
Analog erhielt man aus der Verbindung (VIa) nach einer
basischen Behandlung unter den vorerwähnten Bedingungen reines (Ha) .
10
10
F: 181-1820C
FD-MS: m/z 510 (M+*)
PMR (CDCl3): inter alia bei 1,40 c!(d, CH3-C-S1) ,
2,42 d(s, CH3CO) ,
5,33 6 (CH-7), 5,58 6 (CH-1') und
5,5-6,0 6(m, CH-21, CH-3').
25' §£§bing-hexg2YrangsYl)_-daunomYcingn_ J[Ib )__und__4-De-
Zu einer Lösung aus 0,74 g 4-Demethoxy-daunomycinon (HIb) in wasserfreiem Methylendichlorid (70 ml) wurden
0,65 g des Halogenzuckers (IV) in 10 ml Methylenchlorid
in Gegenwart von 5 g eines Molekularsiebes (4 A Merck)
zugegeben. Die Mischung wurde mit 0,64 g Silbertrifluormethansulfonat,
gelöst in 15 ml wasserfreiem Diethylether, behandelt. Nach 5 Minuten wurde das Reaktionsgemisch
mit 0,4 ml Kollidin neutralisiert. Nach 1 Stunde bei Raumtemperatur wurde die organische Lösung mit
einergesättigten wässrigen Lösung von Natriumbikarbonat, Wasser, wässriger 0,1N Salzsäure und schliesslich
mit Wasser gewaschen. Die organische Phase wurde abgetrennt und im Vakuum zur Trockne eingedampft. Der erhaltene
Rückstand wurde chromatografisch über einer Kieselgelsäule,
unter Verwendung von Chloroform:Aceton
(96:4 v/v) als Eluiersystem, gereinigt. Man erhielt
O748 g des Produktes (Vb),
(96:4 v/v) als Eluiersystem, gereinigt. Man erhielt
O748 g des Produktes (Vb),
F: 65-66°C
FD-MS: m/z 582 (M+*)
und 0,45 g des Produktes (VIb). Die Verbindung (Vb)
wurde in 20 ml Aceton gelöst· und mit 20 ml 0,2N wässriger Natriumhydroxidlösung bei Raumtemperatur behandelt. Nach 1 Stunde wurde die Lösung auf den pH-Wert eingestellt-und mit Chloroform extrahiert. Nach dem Abdampfen des organischen Lösungsmittels im Vakuum erhielt man reines (Ib) in quantitativer Ausbeute,
wurde in 20 ml Aceton gelöst· und mit 20 ml 0,2N wässriger Natriumhydroxidlösung bei Raumtemperatur behandelt. Nach 1 Stunde wurde die Lösung auf den pH-Wert eingestellt-und mit Chloroform extrahiert. Nach dem Abdampfen des organischen Lösungsmittels im Vakuum erhielt man reines (Ib) in quantitativer Ausbeute,
F: 165-1660C
FD-MS: m/z 4 98 (M+*).
Analog erhielt man aus der Verbindung (VIb) nach basischer Behandlung unter den vorerwähnten Bedingungen
reines (lib).
PMR (CDCl3) inter alia bei 1,39.(CH3-C-S1)#
2,42 6 (s, CH3-CO), 3,50-4,0OcT(Tn, C-H-4 ' und C-H-5 ' ) ,
4,08 S (s, CH3O), 5,33 £ (bs, C-H-7),
5,58 <T(bs, C-H-1 ') ,
5,65 (d, C-H-31), 5,93 S (d, C-H-21) .
Beispiel 5
15
15
Zu einer Lösung von 1,25 g (IIIc), hergestellt gemäss
Beispiel 1, in 100 ml wasserfreiem Methylendichlorid, wurden 2,4 g Quecksilber(II)oxid, 0,75 g Quecksilber-
(Il)bromid, 8 g eines Molekularsiebes (4 A Merck) und
0,85 g des Chlorzuckers (IV) gegeben. Die Mischung wurde bei Raumtemperatur über Nacht gerührt und dann
filtriert. Das Filtrat wurde im Vakuum zur Trockne eingedampft und der Rückstand wurde chromatografisch
über einer Kieselgelsäule, unter Verwendung von Toluol: Aceton (9:1 v/v) als Eluiersystem, gereinigt. Man erhielt
1,2 g des Produktes (Vc),
· 1
- 21 -
F: 55-560C
FD-MS: m/z 866 (M+") ,
sowie 0,15 g des Produktes (VIc), 5
F: 88-89°C.
Die Verbindung (Vc) (0,87 g) wurde in wasserfreiem Möthylendichlorid (10 ml) gelöst und mit 200 ml einer
0,01N Lösung Natriumhydroxid in wasserfreiem Methanol
behandelt. Nach 3 Stunden* bei Raumtemperatur waren die Acetylschutzgruppen entfernt. Das Reaktionsgemisch
wurde mit Essigsäure angesäuert und im Vakuum eingedampft. Das erhaltene öl wurde in 200 ml Tetrahydrofuran
gelöst und mit 0,7 g Tetra-n-butylammoniumfluorid behandelt. Nach 1,5 Stunden war die Hydrolyse der
t-Butyl-diphenyl-silyl-gruppe vollständig erfolgt.
Vom Rückstand wurde im Vakuum das Lösungsmittel abgedampft und der Rückstand wurde chromatografisch über
einer Kieselgelsäule, unter Verwendung von Toluol: Aceton (1:1 v/v) als Eluiersystem, gereinigt, wobei
man reines (Ic) (0,35 g) erhielt
' F: 189-19O0C
■
■
PMR (CDCl3): inter alia bei 1,34 cT(d, CH3-C-S1) ,
4,08 ei (s, CH3O) ,
4,77 6 (s, CH9OH),
.5,30 or(d, CH-7) ,
5,50 6(ä, CH1-').
Analog ergab die Verbindung (VIc) nach Hydrolyse der Schutzgruppen (lic)
F: 205-2070C
5
5
PMR (CDCIo): inter alia bei 1,38 ό(ά, CH^-C-S1),
3,25-4,00 € (m, C-H-4' undC-H-5') ,
4,08 cf (s, CH3O) , 4,76 6 (d, CH2OH) ,
5,36 ei (breites s, C-H-7) ,
5V57 6 (breites s, C-H1'),
5,63 6 (d, C-H-3'), 5,93 (Πα, C-H-2·) .
■ Zu einer Lösung von 0,63 g (IHd) , hergestellt gemäss
Beispiel 2, in 50 ml wasserfreiem Methylendichlorid wurden 1,2 g Quecksilber(II)oxid, 0,4 g Quecksilber-(Il)bromid,
8 g eines Molekularsiebes (4 A Merck) und 0,75 g des Chlorzuckers (IV) gegeben. Die Mischung
wurde über Nacht bei Raumtemperatur gerührt und dann filtriert. Das Filtrat wurde im Vakuum eingedampft
und der Rückstand wurde chromatografisch über einer
It * ■*
η 9 *
- 23 -
Kieselgelsäule, unter Verwendung von Toluol:Aceton
(96:4 v/v) als Eluiersystem, gereinigt. Man erhielt 0,585 g des Produktes (Vd),
F: 212-2130C
FD-MS: m/z 236 (M+')
sowie 0,200 g des. Produktes (VId). Das Produkt (VId) (0,5 g) wurde in wasserfreiem Methylendichlorid
(10 ml) gelöst und mit 150 ml einer 0,01N Lösung Natriummethoxid in wasserfreiem Methanol behandelt.
Nach 3 Stundenbei Raumtemperatur war die Entfernung der Acetylschutzgruppen vervollständigt. Das Reaktionsgemisch wurde mit Essigsäure angesäuert und im Vakuum
zur Trockne eingedampft. Der Rückstand wurde in 100 ml Tetrahydrofuran gelöst und mit 0,5 g Tetra-n-butylammoniumfluorid
behandelt. Nach 2 Stunden war die Hydrolyse der t-Butyl-diphenyl-silyl-gruppe vervollständigt.
Vom Rückstand wurde das Lösungsmittel im Vakuum abgedampft und dann wurde die Reinigung durch
Chromatografie über einer Kieselgelsäule, unter Verwendung von ToluolrAceton (1:1 v/v) als Eluiersystem,
durchgeführt, wobei man 0,2 g reines (Id) erhielt.
F: 204-2060C
FD-MS: m/z 514. (M+*)
PMR (CDCl3): inter alia bei 1,3
<f (d, CH3-C-S1),
4,78 cf (s, CH2OH) ,
5,34 cf (breites s, CH-7) ,
5,54 ei (bs, C-H-1 ') .
Analog ergab die Verbindung (VId) bei der Hydrolyse der Schutzgruppen (lld)
F: 166-1670C
5
5
PMR (CDCl3): inter alia bei 1,39 cf(d, CH3-C-S1) ,
3,96 cT(d, C-H41) ,
4,77 tf(s, CH2OH), 5,35 <£ (breites s, C-H-7) ,
5,55 rf (breites s, C-H-I1Ji
5V71 £(m, CH-31),
5,95 ei (d, C-H-21).
Die Verbindungen (Ilaj und (lic) wurden im Vergleich
zu Daunorubicin (DNR) und Doxorubicin (DX) jeweils in vitro und in vivo zur Bestimmung der Cytotoxizität
und der Antitumoraktivität getestet.
Tabelle 1 zeigt die Wirkung der HeLa-Zellen-Klonungs-•
effizienz in vitro.
25
25
(Ha) ist etwa 25 mal weniger cytotoxisch als DNR und
(lic) ist etwa 5 mal weniger cytotoxisch als DX.
Die erste Untersuchung in citro wurde an CDF-1-Mäusen,
die mit aszitischer P388-Leukämie (10 Zellen/Maus) befallen waren, durchgeführt. Die Ergebnisse werden in
«ft « * A ^ »fc-ΐ »
«A4 ** «* **■· «♦
- 25 -
Tabelle 2 gezeigt. Sowohl (Ha) als auch (lic) wurden
in 10 %-igem Tween 80 suspendiert und intraperir toneal injiziert. Die beiden Verbindungen waren weniger
toxisch und wirksam als die Stammverbindungen DNR und DX. (Ha) war inaktiv bei P388 aszitischer Leukämie
bei den beiden geprüften Dosen, einschliesslich der maximal tolerierten Dosis Mx TD von 100 mg/kg,
während (lic) eine gewisse Antitumoraktivität aufwies/
die jedoch im Vergleich zu DX niedriger war.
Die Verbindungen (Ib) und (Id)> wurden in vitro gegenüber
HeLa-Zellen und P388 Leukämie-Zellen, die empfindlich
(P388) und resistent (P388/DX) gegenüber DX waren, sowie in vitro gegenüber P388 und Gross-Leukämie
untersucht. Die in Tabelle 3 gezeigten Daten geben an, dass (Ib), das hinsichtlich der HeLa-Zellen-Klonungseffizienz
in vitro im Vergleich zu der Stammverbindung DNR und 4-Demethoxy-DNR (4-dm DNR) geprüft wurde,
drei- bzw. sechsmal weniger cytotoxisch ist als DNR bzw. 4-dm DNR, während (Id) beim gleichen Versuch
ebenso cytotoxisch wie DX ist.
Die Verbindung (Ib) wurde in vitro gegenüber P388/DX • geprüft. ';
P388 und P388/DX-Leukämie-Zellen wurden aus einer Mäuse-aszitischenFlüssigkeit geerntet und in vitro
in Suspension wachsen gelassen. Die Cytotoxizitätsprüfungen wurden durchgeführt, indem man die Zellen
verschiedenen Arzneimittelkonzentrationen während 48 Stunden aussetzte; nach der Beendigung der Aussetzungszeit
wurden die Zellen in einer Zellzählvorrichtung
gezählt und der ID50 (Dosis, die eine 50 %-ige Verminderung
der Anzahl im Vergleich zu einer unbehandelten Kontrollprobe ergibt) wurde berechnet.
Tabelle 4 zeigt, dass (Ib) etwa so cytotoxisch ist wie DNR gegenüber P388-Leukämie-Zellen und dass es
sehr aktiv ist gegenüber P388/DX-Leukämie-Zellen. DNR war etwa 500 mal weniger aktiv gegenüber der resistenten
als gegenüber der empfindlichen Linie.
Ergebnisse einer ersten Untersuchung in vivo, die an CDF-1-Mäusen, die von P388 aszitischer Leukämie
befallen waren, durchgeführt wurden und wobei man nach dem Tag der Tumortransplantationsbehandlung i.p.
durchführte, werden in Tabelle 5 gezeigt.
(Ib) ergab eine zweifach grössere Wirksamkeit als DNR und eine um etwa 1,5-fach wenigere Wirksamkeit
als 4-dm DNR; im Vergleich zu Mx TD zeigt die Verbindung eine geringere Aktivität als DNR und 4-dm DNR.
Die Verbindung (Id) war etwa um das 5-fache wirksamer als DX. Die Antileukämieaktivität gegenüber P388-Leukämie
war gut, aber niedriger im Vergleich zu DX.
25' Untersuchungen, die an C3H/Me-Mäusen, denen i.v.
Gross-Leukämie transplantiert worden war und die i.v.
am Tag nach der Tumortransplantation behandelt wurden, werden in Tabelle 6 gezeigt. Sowohl (Ib) als
auch (Id) waren toxischer und wirksamer als die Ausgangsverbindungen. Im Vergleich zu Mx TD zeigte (Ib)
eine grössere Aktivität als DNR und (Id) zeigte eine
- 27 -
gute Antitumoraktivität, die in der gleichen Grössenordnung wie die von DX liegt. Die Verbindungen (Ib)
und (Id) wurden weiterhin auf ihre orale Aktivität gegenüber Gross-Leukämie, die i.v, transplantiert worden
war, im Vergleich zu DNR, DX, welche i.v. verabreicht wurde, und 4-dm DNR, die oral verabreicht wurde,
untersucht.
Die in Tabelle 7 angegebenen Daten zeigen, dass (Ib)
eine gute Antitumoraktivität bei oraler Verabreichung am ersten Tage aufweist, die vmitder vergleichbar ist
von 4-dm DNR (von dem bereits gezeigt wurde, dass diese Verbindung bei oraler Verabreichung aktiv ist) und
von i.v.-infiziertem DNR.
15
15
Die Daten über die Antitumoraktivität von (Id), verabreicht am ersten Tage oder 1, 2 oder 3 Tage nach der
Tumortransplantation werden gleichfalls in Tabelle 7 gezeigt. Bei oraler Verabreichung am Tage 1 war (Id)
bei der Mx TD weniger aktov als DX i.v.. Bei einem unterschiedlichen Behandlungsschema (1, 2, 3) war.die Antitumoraktivität
der Verbindung höher als bei i.v. verabreichtem DX.
- 28 Tabelle 1
Kolonieninhibierungstest gegenüber HeLa-Zellen in vitro
(24 Stunden Behandlung)
Verbindung | Dosis (ng/ml)· |
%* | ID50 (ng/ml) |
DNR | 25 | 12 | |
12,5 | 74 | ~16 | |
6,2 | 106 | ||
Verbindung (Ha) | 400 | 146 | |
100 | 136 | 400 | |
25 | 143 | ||
6,2 | 127 | ||
1,5 | 120 | ||
DX | 25 | 24 | 'viO |
12,5 | 40 | ||
6,2 | 69 | ||
Verbindung (lic) | 400 | 4 | |
100 | 33 | A.50 | |
25 | 65 | ||
6,2 | 68 | ||
1,5 | 86 |
* Anzahl der Kolonien; % der unbehandelten Kontrolle
+ m m
^ * ft A - *
- 29 -
Antituworaktivität gegenüber aszitischer P388-Leukämie
Behandlung i.p. am Tage 1
Verbindung | Dosis (mg/kg) |
T/Ca % |
LTSb | Todesfälle durch Ver giftung0 |
DNR | 2,9 | 160 | 0/10 | 0/10 |
4,4d | 165-170 | 0/10 | 0/20 | |
6,6d | 150-160 | 0/10 | 7/20 | |
Verbindung | (Ua) 75 | 120 | 0/5 | 0/5 |
100 | 90 | 0/10 | 1/10 | |
DX | 4,4d | 220-227 | 2/18 | 0/10 |
6,6e | 227-305 | 2/26 | 0/26 | |
10e | 268-<610 | 7/26 | 3/26 | |
Verbindung | (lic) 17,6 | 118 | 9/8 | 0/8 |
23 | 127 | 0/7 | 0/7 | |
30d | 125-136 | 0/17 | 0/17 | |
45 | 130. | 0/10 | 0/10 | |
67,5 | 140 | 0/10 | 0/10 | |
100 | 150 | 0/7 | 0/7 |
a: mittlere Überlebenszeit % gegenüber nicht-behandel·
ter Kontrolle
b: Langzeit-Überlebende (- 60 Tage)
c: bewertet aufgrund der Autopsie an toten Mäusen
ds Daten aus zwei Versuchen (Bereich)
es Daten ausdrei Versuchen (Bereich)
Kolonieninhibierungstest gegenüber HeLa-Zellen in vitro (24 Stunden Behandlung)
Verbindung | Dosis (ng/ml) |
%* | ID50(ng/ml) |
DNR | 25 | 9 | |
12,5 | 51 | ^■12 | |
6,2 | 83 | ||
4-dm DNR | 25 | 0 | |
12,5 | 18 | ν 6,3 | |
6,2 | 53 | ||
3,1 | 84 | ||
Verbindung (Ib) | 100 | 0 | |
25 | 67 | -v35 | |
6,2 | 87 | ||
1,5 | 107 | ||
DX | 25 | 0 | |
12,5 | 28 | λ/7,5 | |
6,2 | 59 | ||
Verbindung (Id) | 100 | 0 | |
25 | 0 | ^7 | |
6,2 | 59 | ||
1,5 | 106 |
* Anzahl der Kolonien; % der unbehandelten Kontrollen
- 31 -
Wirkung auf die Empfindlichkeit und Doxorubicinempfindlicher
P388-Leukämie in vitro
Verbindung | (Ib) | ID50 | (ng/ml)a | 470 25 |
P388b | P388/DXe | |||
DNR Verbindung |
1,7 1,2 |
800 30 |
||
a: Dosis, die eine 50 %-ige Verminderung der Zellenanzahl
im Vergleich zu einer unbehandelten Kontrolle ergibt
P388-Leukämie-Zellen, empfindlich gegenüber P388-Leukämie-Zellen, resistent gegenüber DX,
Verhältnis zwischen ID50 gegenüber P388
gegenüber P388/DX und
Antitumoraktivität von (Ib) und (Id) gegen aszitische
P388-Leukämie (Behandlung 1 mal täglich i.p.)
Verbindung | Dosis (mg/kg) |
T/Ca % |
LTSb | Todesfälle durch Ver giftung0 |
DNR | 2,9d | 159-194 | 0/18 | 0/8 |
4,4d | 140-184 | 0/18 | 7/18 | |
4-dm DNR | 0,75 | 163 | 0/8 | 0/8 |
Verbindung (Ib) | 1,25 | 140 | 0/8 | 0/8 |
2,5 | 163 | 0/9 | 3/9 | |
5 | 63 | 0/10 | 10/10 | |
DX | 4,4 | 220 | 1/10 | 0/10 |
6,6 | 305 | 0/10 | 0/10 | |
10 | >610 | 5/10 | 0/10 | |
Verbindung (Id) | 1 ,12 | 170 | 0/10 | 0/10 |
1,68 | 185 | 0/10 | 0/10 | |
2,53 | 230 | 1/10 | 2/10 |
a, b, c, d: siehe Tabelle 2
β Λ * Λ
- 33 -
Antitumoraktivität gegenüber i.v. Gross-Leukämie
Behandlung i.v. am Tage 1
Verbindung | Dosis (mg/kg) |
T/Ca % |
Todesfälle durch Ver giftung*3 |
DNR | 15 | 171 | 0/8 |
22,5 | v 171 | 0/8 | |
Verbindung(Ib) | 2,9 | 214 | 0/7 |
4,4 | 100 | 7/8 | |
DX | 10 | 171 | 0/10 |
13 | 200 | 0/10 | |
16,9 | 207 | 3/10 | |
Verbindung (Id) | 1,2 | 171 | 1/10 |
2,16 | 200 | 1/10 | |
3,8 | 114 | 5/9 |
a, b: siehe Tabelle 2
Orale Aktivität von (Ib) und (Id) gegenüber Gross-Leukämie
Verabrei chungs- route |
S | oral | Behandlung Schemaa Verbin dung |
DNR | Dosis (mg/kg) |
T/Cb % |
Todes fälle durch Vergif tung0 |
i.v. | + 1 | 15 | 200 | 0/10 | |||
4-dm DNR | 22,5 | 125 | 6/10 | ||||
oral | oral | + 1 | 3 | 150 | 0/6 | ||
3,6 | 150 | 0/6 | |||||
(Ib) | 4,3 | 216 | 0/3 | ||||
oral | + 1 | 2,9 | 167 | 0/10 | |||
4,4 | 208 | 0/10 | |||||
DX | 6,6 | 116 | 4/9 | ||||
i.v. | + 1 | 10d | 171-171 | 1/20 | |||
13d | 200-200 | 1/20 | |||||
(Id) | 16,9d | 200-207 | 3/13 | ||||
+ 1 | 1/.2 | 171 | 0/9 | ||||
2,1 | 185 | 0/8 | |||||
(Id) | 3,8 | 214 | ■ 3/8 | ||||
1,2,3 | 0,48 | 183 | 0/10 | ||||
0,62 | 208 | 0/10 | |||||
0,8d | 233-258 | 2/20 |
a: Tage nach Tumortransplantation b, c: siehe Tabelle 2
d; Daten aus zwei Versuchen (Bereich)
Claims (1)
- » ♦ H-.HOFFMANN · EITLE & PARTNERPATENT-UND RECHTSANWÄLTEPAtENTANWALTE DIPL.-ING. W, EITLE · DR. RER. NAT. K. HOFFMANN . DIPL.-ΙΝβ. W. LEHNDIPL.-ING. K. FÜCHSLE - DR. RER. NAT. B. HANSEN · DR, RER, NAT, H.-A. BRAUNS · DIPL.-INQ. K, GORQDIPL.-ING. K. KOHLMANN ■ RECHTSANWALT A. NETTE38 455 o/waFARMITALIA CARLO ERBA S.p.A., MAILAND /ITALIENAnthracyclinglykoside, Verfahren zu deren Herstellung und Arzneimitte1, welche diese enthaltenPATENTANSPRÜCHE1./ Anthracyclinglykosid der allgemeinen Formel (I)(DOHworin R1 Wasserstoff oder Hydroxy und R_ Wasserstoff bedeuten.TCi crt^rM=?icn5crc? oi ocjVW «* * U_ ο —2. Anthracyclinglykosid der allgemeinen Formel (II)worin R1 Wasserstoff oder Hydroxy und R- Wasserstoff oder Methoxy bedeuten.
153. Verbindung gemäss Anspruch 1, nämlich 4-Demethoxy-7-0-(2,6-dideoxy-co-L-arabino-hexopyranosy1)-daunomyc inon.4. Verbindung gemäss Anspruch 1, nämlich 4-Demethoxy-7-0-(2,6-dideoxy-oO-L-arabino-hexopyranosyl)-adriamycinon.5. Verbindung gemäss Anspruch 2, nämlich 7-0-(2,3,6-Trideoxy-ot- -L-erythro-hex-2-enopyranosyl) -daunomycinon.6. Verbindung gemäss Anspruch 2, nämlich 4-Demethoxy-7-0- (2,3,6-trideoxy- oc/ -L-erythro-hex-2-enopyranosyl)-daunomycinon.7. Verbindung gemäss Anspruch 2, nämlich^-O-(2,3,6-Trideoxy-Ck-L-erythro-hex-2-enopyranosyl)-adriamycinon.8. Verbindung gemäss Anspruch 2, nämlich 4-Demethoxy-7-0-(2,3,6-trideoxy-oO -L-erythro-hex-2-enopyranosyl) adriamycinon.Verfahren zur Herstellung eines Anthracyclinglykosids der allgemeinen Formel (I) oder (II)O pH08und(D(II)worin R1 Hydroxy und R2 Wasserstoff oder Methoxy bedeuten, dadurch gekennzeichnet , dass man ein Anthracyclinon der allgemeinen Formel (III)■- 4 -OCH2R(III)OH OHworin R Hydroxy und R2 Wasserstoff oder Methoxy bedeuten, in wasserfreiem Dimethylformamxd löst, bei Raumtemperatur mit t-Butylchloro-diphenylsilan in Gegenwart von Imidazo! zu dem 14-t-Butyldiphenylsilylether umsetzt, den Ether in wasserfreiem Methylenchlorid mit 3,4-Di-0-acetyl-2,6~dideoxy-O/-L-arabino-hexapyranosylchlorid der Formel (IV)H3CCOCl:h(IV)OOCCH.in Gegenwart einer Mischung aus Merkuribromid/ Merkurioxid und einem Molekularsieb kondensiert, unter Erhalt einer Mischung der geschützten Glykoside der Formeln (V) und (VI)(V)(VI)worin R t-Butyl-diphenyl-siloxy und R2 Wasserstoff oder Methoxy bedeuten, dass man die Verbindungen (V) und (VI) chromatografisch über einer Kieselgelsäule unter Verwendung des Systems Toluol:Aceton (1:1 v/v) als Eluiermittel trennt und reinigt, dass man die O-Acetyl-Schutzgruppe(n) von jedem Zuckerrest durch Behandeln mit einer katalytischen Menge Natriummethoxid in Methanol entfernt und anschliessend die 14-t-Butyldiphenylsiiyl-Schutzgruppe an jedem Aglykonrest durch Behandeln mit Tetra-n-butylammoniumfluorid und Tetrahydrofuran entfernt, unter Erhalt der reinen Glykoside der Formeln (I) und (II),10. Verfahren zur Herstellung des Anthracyclinglykosids der allgemeinen Formel (I) und der allgemeinen Formel (II)HOOH(Dund·OH(ID.worin R1 Wasserstoff und R2 Wasserstoff oder Methoxy bedeuten, dadurch gekennzeichnet , dass man ein Anthracyclinon der allgemeinen Formel (III)J I XOCH2R OH N I I
OHI H
0(III)worin R Wasserstoff und R2 Wasserstoff oder Methoxy bedeuten, in Methylenchlorid löst, in Gegenwart von Silbertrifluoromethansulfonat und einem Molekularsieb mit 3,4-Di-0-acetyl-2,6-dideoxy-oO L-arabino-hexopyranosyl-chlorid der Formel (IV)H3CCO<?/T-O.C1:η(IV)OOCCH.umsetzt, unter Erhalt einer Mischung der geschützten Glykoside der Formeln (V) und (VI)(V)(VI)worin R Wasserstoff und R« Wasserstoff oder Methoxy bedeuten, dass man die geschützten Glykoside der Formeln (V) und (VI) über einer Kieselgelsäule unter Verwendung des Systems Ethylacetat:Cyclohexan (T;1 v/v) als Eluiermittel trennt und reinigt, dass man die 0-Acetyl-Schutzgruppe(n) von jedem Zuckerrest durch Behandeln mit 0,2 N wässrigem Natriumhydroxid bei Raumtemperatur entfernt, unter Erhalt der reinen Glykoside der Formeln (I) und (II).11. Arzneimittel, gekennzeichnet durch einen Gehalt an einem.Anthracyclinglykosid der allgemeinen Formeln (I) und (II) gemäss Ansprüchen 1 und 2,
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