DE3248427A1 - Verfahren zur gewinnung von tyramin-oxydase - Google Patents
Verfahren zur gewinnung von tyramin-oxydaseInfo
- Publication number
- DE3248427A1 DE3248427A1 DE19823248427 DE3248427A DE3248427A1 DE 3248427 A1 DE3248427 A1 DE 3248427A1 DE 19823248427 DE19823248427 DE 19823248427 DE 3248427 A DE3248427 A DE 3248427A DE 3248427 A1 DE3248427 A1 DE 3248427A1
- Authority
- DE
- Germany
- Prior art keywords
- tyramine
- enzyme
- medium
- oxidase
- activity
- Prior art date
- Legal status (The legal status is an assumption and is not a legal conclusion. Google has not performed a legal analysis and makes no representation as to the accuracy of the status listed.)
- Withdrawn
Links
Classifications
-
- C—CHEMISTRY; METALLURGY
- C12—BIOCHEMISTRY; BEER; SPIRITS; WINE; VINEGAR; MICROBIOLOGY; ENZYMOLOGY; MUTATION OR GENETIC ENGINEERING
- C12N—MICROORGANISMS OR ENZYMES; COMPOSITIONS THEREOF; PROPAGATING, PRESERVING, OR MAINTAINING MICROORGANISMS; MUTATION OR GENETIC ENGINEERING; CULTURE MEDIA
- C12N9/00—Enzymes; Proenzymes; Compositions thereof; Processes for preparing, activating, inhibiting, separating or purifying enzymes
- C12N9/0004—Oxidoreductases (1.)
- C12N9/0012—Oxidoreductases (1.) acting on nitrogen containing compounds as donors (1.4, 1.5, 1.6, 1.7)
- C12N9/0014—Oxidoreductases (1.) acting on nitrogen containing compounds as donors (1.4, 1.5, 1.6, 1.7) acting on the CH-NH2 group of donors (1.4)
- C12N9/0022—Oxidoreductases (1.) acting on nitrogen containing compounds as donors (1.4, 1.5, 1.6, 1.7) acting on the CH-NH2 group of donors (1.4) with oxygen as acceptor (1.4.3)
-
- Y—GENERAL TAGGING OF NEW TECHNOLOGICAL DEVELOPMENTS; GENERAL TAGGING OF CROSS-SECTIONAL TECHNOLOGIES SPANNING OVER SEVERAL SECTIONS OF THE IPC; TECHNICAL SUBJECTS COVERED BY FORMER USPC CROSS-REFERENCE ART COLLECTIONS [XRACs] AND DIGESTS
- Y10—TECHNICAL SUBJECTS COVERED BY FORMER USPC
- Y10S—TECHNICAL SUBJECTS COVERED BY FORMER USPC CROSS-REFERENCE ART COLLECTIONS [XRACs] AND DIGESTS
- Y10S435/00—Chemistry: molecular biology and microbiology
- Y10S435/8215—Microorganisms
- Y10S435/822—Microorganisms using bacteria or actinomycetales
- Y10S435/83—Arthrobacter
Landscapes
- Life Sciences & Earth Sciences (AREA)
- Chemical & Material Sciences (AREA)
- Health & Medical Sciences (AREA)
- Genetics & Genomics (AREA)
- Organic Chemistry (AREA)
- Engineering & Computer Science (AREA)
- Bioinformatics & Cheminformatics (AREA)
- Zoology (AREA)
- Wood Science & Technology (AREA)
- Molecular Biology (AREA)
- Microbiology (AREA)
- Biotechnology (AREA)
- Biomedical Technology (AREA)
- Biochemistry (AREA)
- General Engineering & Computer Science (AREA)
- General Health & Medical Sciences (AREA)
- Medicinal Chemistry (AREA)
- Enzymes And Modification Thereof (AREA)
Description
Hamburg, 23. Dezember 1982
265182
Priorität: Oapan, 28. 12. 1981
Pat.Anm.Nr. 56-209676
Anmelder;
Toyo Jozo Kabushiki Kaisha 632-1, Mifuku, Ohito-cho,
Tagata-gun, Shizuoka-ken, 3apan
Verfahren zur Gewinnung von Tyramin-Oxydase
Die Erfindung betrifft ein Verfahren zur Gewinnung von
Tyramin-Oxydase durch Fermentation.
Tyramin-Oxydase hat eine spezifische Wirkung auf Tyramin
(p-Hydroxyphenylethylamin) und katalysiert eine Reaktion,
bei der aus einem Mol Tyramin, einem Mol Sauerstoff und
-Z-
elnam Mol Wasser ein Mol p-Hydroxybenzylaldehyd, 1 Mol
Wasserstoffperoxid und ein Mol Ammoniak gebildet werden. Dieses Enzym wirkt nicht auf L-Leucyltyramin, und demzufolge
läßt es sich gut verwenden für die klinische Diagnose von Leucinaminopeptidase (LAP) - Aktivität in Serum.
Wenn man ein synthetisches L-Leucyltyramin-Substrat mit
LAP behandelt, wird Tyramin freigesetzt, das durch Tyramin-Oxydase
oxidiert wird; und wenn man den dabei verbrauchten Sauerstoff oder das entwickelte Wasserstoffperoxid oder
Ammoniak mittels üblicher elektrischer, colorimetrischer oder fluorometrischer Analysenmethoden msßtechnisch bestimmt,
kann man auf LAP prüfen. Tyramin-Oxydase greift das synthetische Substrat nicht an, sie wirkt nur auf Tyramin, und infolgedessen
läßt sich LAP-Aktivität exakt messen.
Über Herstellungsverfahren für Tyramin-Oxydase wurde bereits
in J. Bacteriol., 127 (1), 24-31 (1976), Igaku to Seibutsugaku (Medical and Biological Sciences, in Japanisch),
91 (4), 233-236 (1975), J.Bacteriol. 145 (2), 796-802 (1981) und Agr. Biol. Chem. , 31 (8), 897-901 (1967) berichtet.
Gegenstand der vorliegenden Erfindung ist ein Verfahren zur Gewinnung von Tyramin-Oxydase, das dadurch gekennzeichnet
ist, daß man einen Tyramin-Oxydase produzierenden Mikroorganismus
der Gattung Arthrobacter in einem Nährmedium züchtet und aus der Kulturbrühe Tyramin-Oxydase isoliert.
Wie gefunden wurde, läßt sich Tyramin-Oxydase besonders vorteilhaft aus einem solchen Mikroorganismus der Art
B-0813, der aus einer von der Kanogawa Sewage Plant, Toyo Jozo K.K., Ohito-cho, Tagata-gun, Shizuoka-ken, Japan,
gesammelten Bodenprobe isoliert wurde, erfindungsgemäß gewinnen.
Λ-
Taxonomische Eigenschaften des Mikroorganismus Arthrobacter sp. B-0813 FERM-P No« 6240 sind die folgenden.
(I) Morphologische Eigenschaften:
Folgende Beobachtungen wurden nach dem Züchten auf einem Bouillon-Agar-Nährboden bei 30 C während 6-24 Stunden
gemacht.
Jugendliche Zellen, die nach 6-stündiger Bebrütung entstanden
waren, hatten die Gestalt gerader oder leicht gebogener Stäbchen oder kurzer Stäbchen mit runden Kanten,
die einzeln, im Doppel oder als kurze Ketten vorlagen und 0,4 χ 0,5 - 1,2 ,um gross waren.
Ältere Zellen, nach Bebrüten über eine Zeitspanne von 24
Stunden, waren kugelförmig oder bildeten kurze Stäbchen mit runden Kanten;■ sie lagen einzeln, gedoppelt oder
kurzkettig vor und waren 0,4 χ 0,4 - 0,5 ,um gross.
Die Zellen waren polar oder subpolar begeißelt mit beweglichen
Geißeln; keine Sporenbildung, Gram-positiv, manchmal
je nach dar Zuchtungsdauer Gram-negativ, und die Färbung
auf Sä ure festigkeit war negativ.
(II) Wachstum auf verschiedenen Medien:
Folgende Beobachtungen wurden gemacht, wenn auf verschiedenen Medien bei 30 C während 1 - 7 Tagen gezüchtet wurde.
Bouillon-Agar-Platte: rund, glatter Rand, eben, grau-weiß
bis hell-gelb nach wenigen Tagen
Züchtung.
Bouillon-Schrägagar : gutes Wachstum, faserförmiges Wachstum,
Bouillon-Schrägagar : gutes Wachstum, faserförmiges Wachstum,
grau-weiß bis hell-gelb, keine Bildung
von löslichem Pigment.
BCP-Mi lch-Nahrmedi urn; Züchtung während 14 Tagen mit Zusatz
von Bromkresolblauj schwach alkalisch
keine Peptonisatlons-Koagulation.
(III) Physiologische Eigenschaftens
Nitratreduktion: -t-
Denitratreaktion;
MR-Test:
VP-Te st: - -
Indol-Bildung: -
H-S-Bildung:
Stärkehydrolyse: +
Citrat-Nutzung:
Simons-Mediums ■ -5-
Chrystenssen-Medium: +
Nitrat-Nutzung: +
Ammonium-Nutzung: ^
Bildung von löslichem _
Pigment:
Urease: | - | Medium) | 9,5 |
SSR-Medium; | - | Medium: | 42°C |
Chry ste nsse n-Me di um: | + | ||
Oxydase: | 5,5 - | NT (alk | |
Katalase : | 10 - | : 0 | |
Wa chs t ums-p H: | aerob | NH4H2PO4 | |
Wachstums-Tamperatur: | OF-Test (Hugh-Leifson-Medium): | MgSO4.7H2O | |
Natur: | OF-Test (modifiziertes | ||
Modifiziertes | |||
Ig, KCl 0,2 g,
0„2 g, Hefeextrakt Ig,
Agar 3g", BTB (Bromthymolblau,10%) 10 ml, destilliertes Wasser 1000 ml
pH 7,0,
-χ-
Säurebildung aus Zucker (basal-Medium oder modifiziertes Medium wurden benutzt; es wurde keine Gasbildung beobachtet) :
Säurebildung: Cellobiose, D-Fructose , D-Glucose ,
Glycerin, Maltose, D-Mannose, Me Ie zi tose, Trehalose .
Keine Säurebildung: Adonit, L-Arabinose, Dulcit, Mesoerythrit,
Fucose, D-Galactose, Inosit, Inulin,
Lactose, D-Mannit, Raffinose, L-Rhamnose,
Sälicin, L-Sorbose, Sorbit, Stärke,
Saccharose, D-Xylose.
Esculin-Zersetzung:
Cellulose-Zersetzung: -
Guanin- und Cytosin-Gehalte in DNA betrugen 62,7% (Tm-Methode).
Gemäß den zuvor angegebenen taxonomischen Eigenschaften zeigt die Art B-0813; positive Gram-Färbung, Beweglichkeit durch
polare oder subpolare Begeißelung, jugendliche Zellen (nach etwa 6-stündiger Bebrütung) stäbchenförmig oder kurz stäbchenförmig mit abgerundeten Kanten, gerade oder gebogen,
0,4 χ 0,5 - 1,2 ,um groß, alte Zellen (nach mehr als 24 s-tündiger Bebrütung) kurz stäbchenförmig oder kugelförmig,
0,4 χ 0,4 - 0,5 ,um groß, oxidative Zersetzung von Zucker
in einem Pepton-haltigen Medium, positive Katalase , negative
Oxydase und nicht auxotroph. Als Ergebnis, bestimmt gemäß Bergey's Manual of Determinative Bacteriology, 8.Auflage
(19 74) , gahört die Art B-0813 zu der Gattung Arthrobacter
in die Familie der Corynebacteriaceae. De ma nt sprechend
wurde die Art B-0813 als Arthrobacter sp. B-0813 bezeichnet. Dieser Mikroorganismus wurde hinterlegt im Fermentation
Institute, Agency of Industrial Technology and Science, MITI,
Japan, und ist dort der permanenten Kulturkollektion als FERM-P No. 6240 zugeordnet.
Für die Zwecke der vorliegenden Erfindung kann vorteilhaft diese Art, Arthrobacter so. B-O813 FERM-P So. 6 240 verwendet
werden. Beschränkt ist das erfindungsgemiße Verfahren auf diese Art nicht, vielmehr lassen sich beliebige
andere Tyramin-Oxydase produzierende Arten der zuvor angegebenen
Gattung benutzen.
Bei einer vorteilhaften Ausführungsform des erfindungsgemäßen
Verfahrens wurde ein Medium mit 0,8% Sojabohnenöl,
1,0 % Maisquellwasser, 1,0% Fleischextrakt, 0,5% PoIypepton,
0,3% NaCl und 0,15% ß-Phenylethylamin (pH 7,5)
eingesetzt, und darin wurde der Mikroorganismus aerob im Submersverfahren bei 30 C 20 Stunden lang gezüchtet.
Die b-iochemischen Eigenschaften des Enzyms waren die
folgenden.
(1) Enzymatisehe Wirkung:
Wirkung.auf Tyramin; keine Wirkung auf L-Leucyltyramin.
Das Enzym katalysierte eine Reaktion, bei der 1 Mol p-Hydroxybenzylaldehyd, 1 Mol Wasserstoffperoxid und
1 Mol Ammoniak aus 1 Mol Tyramin, 1 Mol Sauerstoff und 1 Mol Wasser gebildet wurden.
(2) P ruf methode für das Enzym:
Zu einem Reaktionsgemisch (0,5 ml) , das aus den nachfolgend aufgeführten Bestandteilen bestand und durch Zugabe von
Wass-er auf 1,0 ml aufgefüllt worden war, wurda Enzymlösung ( 0,05 ml ) zugageben, und das Gemisch wurde 10 Minuten lang
bei 37°C bebrütet. 1% Cetylpyridinchlorid (2,0 ml, pH 7,0) wurde zugegeben, um die Reaktion abzustoppen.
- if -
0,2 M Ph-osphatpuffer (pH 7,5) 0,1 ml
0,2% Phenol 0,1 ml
0,3% 4-Aminoantipyrin 0,1 ml
(500 U/ml) Peroxydase (Meerrettich) 0,1 ml
1 mM Tyramin 0,1 ml (0,1 mM)
Für eine Kontrollprobe wurde anstelle von Enzymlösung Wasser
(0,1 ml) zugegeben.
Die meßtechnische Bestimmung des Reaktionsgemisches erfolgte
bei 490 mn.
Nach folgender Gleichung wurde die Enzym-Aktivität berechnet,
.- 49Onm 3 1
U/ml = χ
... v 1 0,05 (ml) 10 (min.)
Lti
x
2
worin Δ 49Onm der Absorptionswert bei A49Onm während
Minuten und f das Verdünnungsverhältnis bedeuten.
(3) Molekulargewicht:
48000 (Gelfiltrationsmathode mittels perlförmigem Material
zur Gelchromatographie auf Basis modifizierter Agarose (Handelsbezeichnung "Sepharose CL-6B") )
(4) Isoelektrischer Punkt:
pH 4,23 (Elektrophorese unter Verwendung von Ampholite als
Träger) .
(5) Km-We rt:
2/7 χ 1O~ M (Tyramin) .
. 9·
(6) pH-Optimum:
Das pH-Optimum wurde bestimmt durch Untersuchung der Enzym™ Aktivität in Acetat-Puffer, Glycin-HCl-Puffer, Dimethylglutarat-NaOH-Puffer,
Tris-HCl-Puffer, Phosphat-Puffer und
Glycin-NaOH-Puffer. In Fig. 1 ist das pH-Optimum des Enzyms
veranschaulicht, und man erkennt, daß der optimale pH-Wert bei annähernd pH 7,0 liegt.
(7) Temperatur-Optimum:
Für diese Untersuchung wurde der pH-Wert des Reaktionsgemische
s auf pH 7,5 eingestellt, und es wurde bei verschiedenen Temperaturen geprüft. Das Ergebnis ist in Fig. 2 veranschaulicht,
und man erkennt, daß die optimale Temperatur bei annähernd 45 C lag.
(8) pH-Stabilität:
Es wurde zu Puffern verschiedenen pH-Wertes, und zwar
Acetat-Puffer, Dimethylglutaryl-NaOH-Puffer, Phosphat-Puffer
und Tris-HCl-Puffer Enzymlösung zugegeben, dann wurde 60 Minuten lang bei 37 C bebrütet, und anschließend wurde die
verbliebene Aktivität getestet. Die Ergebnisse sind in Fig. veranschaulicht, und man erkennt, daß das Enzym bei pH 6-8
stabil ist.
(9) Wiremstabilität:
In dem bei der Prüfmethode benutzten Reaktionsgemisch wurde das Enzym bei pH 7,5 5 Minuten lang bei 3O-7O°C erwärmt,
und dann wurde die verbliebene Enzym-Aktivität getestet.
Das Ergebnis ist in Fig. 4 veranschaulichtf und man erkennt,
daß das Enzym bis zu 45 C stabil war.
(10) Einwirkung verschiedener Substanzen:
Die Einwirkung verschiedener Substanzen auf die Aktivität von
Tyramin-Oxydase ist in der nachfolgenden Tabelle 1 veranschaulich
Substanz: Zugegebene Menge Relative
Aktivität(%)
NaN.
NaMoO.
KCN NH4Cl
LiCl CoCl2
MnCl2
CaCl2
BaCl2
p-Chlormercuribenzoat (PCMB) EDTA FMN Ce tylpyridinchlorid
FAD
Cetyltrimathylammoniumchlorid 0,025 mM
Cation FB (Handelsname) Laurylbsnzolsulfonat (LBS)
Bridge 35 (Handelsname) Triton X-IOO (Handelsname)
Kontrollprobe (kein Zusatz)
Wie in Tabelle 1 zu erkennen, bewirkt der Zusatz von Flavinmononuclaotid
eine Zunahme der Aktivität des Enzyms.
5 | mM | 98,3 |
ti | Il | 39,7 |
Il | Il | 100,0 |
Il | Il | 96,6 |
Il | Il | 82,8 |
Il | Il | 86,2 |
Il | Il | 82,8 |
Il | Il | 86,2 |
Il | Il | 96,6 |
0 | ,2 mM | 79,3 |
5 | mM | 100,0 |
0 | ,01 mM | 108,8 |
0 | ,025 mM | 0,0 |
0 | ,1 mM | 75,4 |
0 | ,025 mM | 0,0 |
21,3 | ||
0 | ,05 mM | 63,9 |
0 | ,025 mM | 96,7 |
0 | ,025 mM | 96,7 |
0 | 100,0 |
- JÄ -
(11) Substrat-Spezifizität:
Die Substrat-Spazifizität wurde durch Zugabe verschiedener
Substrate in das Reaktionsgemisch gemessen. Die Ergebnisse
sind in der nachfolgenden Tabelle 2 zusammengestellt.
Tabelle 2
Substrat Relative Aktivität (%)
Tyramin 100,0
ß-Phenylethylamin 5 4,7
p-Chlorphenylethylamin 47,9
n-Butylamin 45,3
Methylamin 0,0
Eth-ylamin . 0,0
Benzylamin 0,0
Aminosäuren 0,0
Aminosäuren: L-Tryptophan, Valin, Phenylalanin, Arginin,
Lysin, Histidin, Alanin, Isoleucin, Threonin, Serin, Asparaginsäure, Glutaminsäure,
Methionin, Tyrosin, D-Glutaminsäure, D-Phenylalanin, D-Alanin, DL-Isoleucin,
DL-Valin, DL-Tryptophan,
Aus Tabelle 2 ist ersichtlich, daß das erfindungsgemäß vorteilhaft
verwendbare Enzym spezifische Aktivität auf Tyramin zeigt und gewisse Aktivität auf ß-Phenylethylamin, p-Chlorphenylethylamin
und n-Butylamin hat. Gegenüber sonstigen Aminen und Aminosäuren hat dieses Enzym keine Wirkung.
- ja -
In einen 500 ml fassenden Erlenmeyerkolben wurde ein Medium
(100 ml, pH 7,5) mit 0,8% Sojabohnenöl, 1,0% Maisquellwasser,
0,1% Fleischextrakt, 1,0% Polypepton, 0,3% NaCl und 0,15% ß-Phenylethylamin eingebracht, und es wurde 20 Minuten lang
bei 120 C sterilisiert. Es wurde mit Arthrobacter sp. B-0813
FERM-P No. 6 240 beimpft, und dann wurde 20 Stunden lang bei 30 C bebrütet und so das Impfmaterial für den technischen
Prozess hergestellt.
In einen 30 Liter Rüttel-Fermenter wurde das Nährmedium
(20 Liter) , das die gleichen Bestandteile enthielt und dem zusätzlich 0,2% eines Antischaununittels (Silicon AF-145 ,
Handels-produkt der Firma Asahi Chem.) zugesetzt worden war,
eingefüllt, und es wurde mit dem Impfmaterial aus zwei der zuvor erwähnten Erlenmeyerkolben beimpft. Dann wurde unter
Rühren mit 250 UpM und unter Belüftung mit 20 Liter/Min. 20 Stunden lang aerob bebrütet. Die Tyramin-Oxydase-Aktivität
der Kulturbrühe betrug 1,3 U/ml.
Wenn dem Medium Tyramin oder Butylamin zugesetzt wurden,
konnte, wie beobachtet wurde, im Vergleich zu der ohne Zugabe dieser Amine erzielbaren Ausbeute eine etwa 200-fach
grössere Ausbaute an Enzym erzielt werden. Die Zugabemenge dafür beträgt 0,1 - 0,2%, vorzugsweise 0,15%.
Die Züchtungstemparatur liegt im allgemeinen bei 25 - 35°C,
und die Fermentationszeit beträgt 10 - 30 Stunden.
In dieser Weise gewonnene Kulturbrühe (etwa 20 Liter, 26000 U) wurde 15 Minuten lang mit 5000 UpM zentrifugiert. Das separierte
Material wurde mit 20 mM Phosphatpuffer (pH 7,5) gewaschen,
und man erhielt die Mycel- bzw. Bakterienmasse. Diese
wurde in 20 mM Phosphatpuffer ( pH 7,5, 4 Liter), worin EDTA
(5 mM) und Lysozym (1 mg/ml) enthalten waren, eingegeben, und
die Zellen wurden aufgelöst. Nach der Bakteriolyse wurde
das Lysat 15 Minuten lang mit 5000 UpM zentrifugiert, und
es wurde die überstehende Flüssigkeit gewonnen ο Dazu wurde gesättigte Ammoniumsulfatlösung bis zu einem Verhältnis von
40%V/V gegeben, und der gebildete Niederschlag wurde entfernt. Es wurde weitere gesättigte Ammoniumsulfatlösung zugegeben,
bis 90%V/V, bezogen auf die ursprüngliche überstehende Lösung, erreicht war. Die dabei in der Lösung gebildete
Ausfallung wurde auf eine Schicht aus Diatomeenerde (Handelsbezeichnung
"Radiolite") aufgegossen, die Diatomeenerde, suspendiert in gesättigtem Ammoniumsulfat, wurde durch ein auf
einem Trichter befindliches Filterpapier hindurchfiltriert, und dabai wurde eine 2 cm dicke Schicht aus Diatomeenerde
gebildet. Anschließend wurde die Ausfällung gesammelt und dazu die Oberfläche der Schicht abgekratzt. Die Ausfällung
wurde in 20 mM Phosphatpuffer ( pH 7,5, 500 ml ) gelöst und 15 Minuten lang mit 5000 UpM zentrifugiert. Mittels Ultrafiltrationsmambran
(Handelsbezeichnung XM-50, Produkt der
Firma Amicon Co.) wurde die überstehende Lösung konzentriert, und es wurde über eine Säule aus Ionenaustauscherharz (Handelsbezeichnung
"Sephadex G-25") entsalzt. Das Eluat· wurde auf eine Säule ( 7 χ 34 cm ) aus DEAE-Sepharose CL-6B aufgegeben,
und es wurde mit 20 mM Phosphatpuffer (pH 7,5, 1 Lit.)
und 1,0 M Phosphatpuffer (pH 7,5, 1 Lit.) mit linearem Gradient eluiert. Die bei dar Konzentration von 0,5 - 0,7 M eluierten
Fraktionen wurden gesammelt und durch Ultrafiltrationsmembran XM-50 konzentriert. Die konzentrierte Lösung wurde an einer
Säule aus Sepharose CL-6B mit 20 mM Phosphatpuffer (pH 7,5)
mittels Gelfiltration entsalzt. Das Eluat wurde lyophilisiert,
und es wurde Tyramin-Oxydase in Pulverform erhalten (6,7 g,
0,5 U/mg) .
In der beiliegenden Zeichnung sind biochemische Eigenschaften des erfindungsgemäß gewonnenen Enzyms veranschaulicht.
Es zeigen:
Fig. 1 das pH-rOptimum,
Fig. 1 das pH-rOptimum,
Fig. 2 das Temperatur-Optimum,
Fig. 3 die pH-Stabilität und
Fig. 4 die Wärme-Stabilität.
In allen Figuren ist auf der Ordinate die relative Aktivität
in % abgetragen. Fig. 1 zeigt auf der Abszisse den pH-Wert. Parameter sind die verschiedenen im einzeln benannten Puffer,
Fig. 2 zeigt auf der Abszisse die Temperatur in °C.
Fig. 3 zeigt auf der Abszisse den pH-Wert. Parameter sind
die verschiedenen im einzelnen benannten Puffer. Die Meßwerte wurden nach Bebrüten der Enzymlösung in diesen Puffern bei 37 C während 60 Minuten gewonnen.
Fig. 4 zeigt auf der Abszisse die Temperatur in C.
Die Meßwerte wurden nach Erwärmen der Enzymlösung bei pH 7,5 auf 30-70 C, während 5 Minuten gewonnen.
Fig. 3 zeigt auf der Abszisse den pH-Wert. Parameter sind
die verschiedenen im einzelnen benannten Puffer. Die Meßwerte wurden nach Bebrüten der Enzymlösung in diesen Puffern bei 37 C während 60 Minuten gewonnen.
Fig. 4 zeigt auf der Abszisse die Temperatur in C.
Die Meßwerte wurden nach Erwärmen der Enzymlösung bei pH 7,5 auf 30-70 C, während 5 Minuten gewonnen.
Leerseite
Claims (3)
1. Verfahren zur Gewinnung von Tyramin-Oxydase, dadurch
gekennzeichnet, daß man einen Tyramin-Oxydase produzierenden
Mikroorganismus der Gattung Arthrobacter in einem Nährmedium züchtet und aus der Kulturbrühe Tyramin-Oxydase isoliert.
2. Verfahren nach Anspruch 1, dadurch gekennzeichnet, daß
man als Mikroorganismus der Gattung Arthrobacter einen Mikroorganismus
der Art Arthrobacter sp. B-0813 FERM-P No. 6240
ve rwe nde t.
3. Verfahren nach einem der Ansprüche 1 oder 2 1 dadurch
gekennzeich-net, daß man ein Nährmedium verwendet, das ß-Phenyleth-ylamin enthält.
Applications Claiming Priority (1)
Application Number | Priority Date | Filing Date | Title |
---|---|---|---|
JP56209676A JPS58116679A (ja) | 1981-12-28 | 1981-12-28 | チラミンオキシダ−ゼの製造法 |
Publications (1)
Publication Number | Publication Date |
---|---|
DE3248427A1 true DE3248427A1 (de) | 1983-11-24 |
Family
ID=16576761
Family Applications (1)
Application Number | Title | Priority Date | Filing Date |
---|---|---|---|
DE19823248427 Withdrawn DE3248427A1 (de) | 1981-12-28 | 1982-12-24 | Verfahren zur gewinnung von tyramin-oxydase |
Country Status (4)
Country | Link |
---|---|
US (1) | US4496655A (de) |
JP (1) | JPS58116679A (de) |
DE (1) | DE3248427A1 (de) |
FR (1) | FR2519649B1 (de) |
Families Citing this family (3)
Publication number | Priority date | Publication date | Assignee | Title |
---|---|---|---|---|
US5573955A (en) * | 1995-06-05 | 1996-11-12 | Microgenics Corp. | Reducing tyramine interference in immunoassays for amphetamine and methamphetamine |
JP5326324B2 (ja) * | 2008-04-01 | 2013-10-30 | 東洋紡株式会社 | チラミンオキシダーゼの安定化方法およびその組成物 |
CN108315361B (zh) * | 2018-04-20 | 2021-04-13 | 安徽大学 | 一种利用微生物合成对羟基苯甲醛的方法 |
-
1981
- 1981-12-28 JP JP56209676A patent/JPS58116679A/ja active Granted
-
1982
- 1982-12-24 FR FR8221771A patent/FR2519649B1/fr not_active Expired
- 1982-12-24 DE DE19823248427 patent/DE3248427A1/de not_active Withdrawn
- 1982-12-28 US US06/454,060 patent/US4496655A/en not_active Expired - Fee Related
Also Published As
Publication number | Publication date |
---|---|
JPS58116679A (ja) | 1983-07-11 |
FR2519649B1 (fr) | 1986-03-07 |
US4496655A (en) | 1985-01-29 |
FR2519649A1 (fr) | 1983-07-18 |
JPH0134036B2 (de) | 1989-07-17 |
Similar Documents
Publication | Publication Date | Title |
---|---|---|
DE3686597T2 (de) | Uricase und verfahren zu deren herstellung. | |
EP0599159B1 (de) | Heterogenes Proteingemisch mit alpha-L-rhamnosidase Aktivität, Verfahren zu ihrer Herstellung und ihre Verwendung. | |
DE2716335C2 (de) | Neue Cholinoxydase und Verfahren zu ihrer Herstellung | |
DE2614114B2 (de) | Verfahren zur Herstellung von Kreatininamidohydrolase | |
US4226941A (en) | Process for the optical resolution of d,l-2-amino-4-methylphosphinobutyric acid | |
DE69120489T2 (de) | Hochsensitives Testverfahren für Myo-Inositol und Komposition zur Ausführung davon | |
DE3442856A1 (de) | Neue maltose-dehydrogenase, deren herstellung und deren verwendung fuer analytische untersuchungen | |
DE3785508T2 (de) | Rhodococcus-Bakterie zur Herstellung von Aryl Acylamidase. | |
DE69110386T2 (de) | Glukose Dehydrogenase und Verfahren zu deren Herstellung. | |
DE3600563C2 (de) | ||
DE2842940C2 (de) | Verfahren zur Gewinnung von Sarcosin-Oxidase | |
GB2031896A (en) | A process for the optical resolution of D,L-2-amino-4- methylphosphinobutyric acid | |
DE3603257A1 (de) | Thermostabile bilirubin-oxidase und verfahren zur herstellung derselben | |
DE3629242C2 (de) | Verfahren zur Herstellung von L-Aminosäuren | |
DE3127979A1 (de) | Verfahren zur erzeugung von cholesterase und deren anwendung | |
DE2924470C2 (de) | Lactatoxidase und ihre Herstellung | |
DE3248427A1 (de) | Verfahren zur gewinnung von tyramin-oxydase | |
DE3153683C2 (de) | ||
DE4445084B4 (de) | Neue Kreatinamidinohydrolase und Verfahren zu ihrer Herstellung | |
DE68913128T2 (de) | Verfahren zur Herstellung von L-Alanin-Dehydrogenase und Mikroorganismusstamm des Genus Sporolactobacillus. | |
DE2733273B2 (de) | Endonucleasen und Verfahren zu ihrer Herstellung | |
DE3024915A1 (de) | Verfahren zur gewinnung von kreatinase | |
DE3878421T2 (de) | Verfahren zur herstellung von carnitin. | |
EP0248401A2 (de) | Enzym und Verfahren zu seiner Herstellung | |
DE3880290T2 (de) | Enzym und verfahren zu seiner herstellung. |
Legal Events
Date | Code | Title | Description |
---|---|---|---|
8139 | Disposal/non-payment of the annual fee |