DE2813949A1 - Verfahren zur kontinuierlichen messung der enzymaktivitaet der biomasse in biologischen reinigungsanlagen und vorrichtung zur ausuebung des verfahrens - Google Patents
Verfahren zur kontinuierlichen messung der enzymaktivitaet der biomasse in biologischen reinigungsanlagen und vorrichtung zur ausuebung des verfahrensInfo
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Description
DIETRICH LEWINSKY HBNZ-JOACHIMHUBER REiNER PRlETSCH
M ö N CH E N 2 1 GOTTHARDSTR.81
10.219
31.3.1973
SOCIETE NATIONALE ELF AQUITAINE S.A.
Tour Aquitaine
92400 COURBEVOIE - Frankreich
Verfahren zur kontinuierlichen Messung der Enzymaktivität der Biomasse in biologischen Reinigungsanlagen
und Vorrichtung zur Ausübung des Verfahrens.
Priorität aus der französichen Patentanmeldung Nr. 77 09955 vom 1. April 1977
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- «är -
Die Erfindung betrifft ein Verfahren zur kontinuierlichen Messung der Enzyxnaktivität in biologischen Reinigungsanlagen
für Stadt- und Industrieabwässer, sowie eine Vorrichtung zur Ausübung des Verfahrens.
Der Wirkungsgrad von Reinigungsanlagen hängt ab von der Aufrechterhaltung einer ausreichenden Stärke der Aktivität
der Mikrobenpopulation oder Biomasse, die während der Behandlung mit den Abwässern in Kontakt steht. Man muß
daher zu jedem Zeitpunkt die fragliche Aktivität mit Hilfe eines schnell arbeitenden Verfahrens bestimmen können. Nur
unter diesen Umständen werden die Änderungen des Grades der Aktivität so rechtzeitig bekannt, daß man die Entwicklung
durch geeignete Maßnahmen beeinflussen kann. Es ist vor allem besonders wichtig, daß man während des Beginns eines
die Herabsetzung der Aktivität einleitenden Vorgangs eingreifen kann, da die Gefahr einer Beeinträchtigung der Biomasse
sonst erheblich wird.
Wenn eine derartige Beeinträchtigung sich als Folge einer massiven Intoxikation der Bakterienpopulation manifestiert,
ist ein längerer Ausfall der Anlage unvermeidlich.
Die bislang angewandten Methoden beruhen auf der Bestimmung der in Suspension befindlichen Materie oder des
in Suspension befindlichen flüchtigen Materials. Diese letztere Messung umfaßt nicht nur die lebenden Mikroorganismen
sondern auch die abgestorbenen Organismen sowie nichtbiologische, in Suspension befindliche flüchtige Substanzen.
Diese Prüfungen sind daher unzureichend, wenn eine genaue Vorstellung über den Zustand der Biomasse und ihre
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Aktivität in einem gegebenen Zeitpunkt ermittelt werden soll.
Respirometrische Verfahren, die von der Bestimmung der
Geschwindigkeit des SauerstoffVerbrauchs ausgehen, liefern
eine unmittelbare Aussage über den lebenden Anteil der Biomasse; ihre direkte Anwendung ist jedoch schwierig
und umständlich, wenn sie in einem kontinuierlich messenden System arbeiten sollen.
Die quantitative Bestimmung von Belebtschlamm-Dehydrogenasen ist im Jahre 1964 auf der Zweiten Konferenz über
die -Forschung auf dem Gebiet der Wasserverunreinigung in Tokio von G. LENHARD, L. NOURSE und H.H. SCHiSTARTS behandelt
worden.
Die Anwendung von farblosem Triphenyltetrazoliumchlorid (abgekürzt TTC), das unter der Wirkung von Dehydrogenasen
zu rotem Triphenylformazan (abgekürzt TF) reduziert wird,
ist von verschiedenen Autoren vorgeschlagen worden, insbesondere von PHILI H. JONES und D. PRASAD in dem Journal
of Water Pollution Control Federation (November 1969, Seite R441 bis R449 - Herausgeber: PETER J. PIECUCH - 3900 Wisconsin
Av., N.W. WASHINGTON D.C. 20016).
Die bisher vorgenommenen Messungen haben jedoch zu widersprüchlichen
Ergebnissen geführt, die insgesamt die Entwicklung der Oxidationsreaktionen der Biomasse nicht exakt
wiedergeben.
In der französischen Patentschrift 2 302 281 vom 28.2.1975 empfehlen Roger BEN-AIM und Jean-Pierre LEGERON im Rahmen
einer Differenzmethode die Anwendung einer begrenzten Menge TTC, um etwaige Wechselwirkungen zwischen dem TTC und dem
TF und der Biomasse selbst zu vermeiden; die quantitative Bestimmung erfolgt dabei unter Lichtabschluß und in Abwe-
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senheit von Substraten, die in der Lage wären, das Reaktionsmilieu
zu verändern. Unter derartigen Arbeitsbedingungen bei diskontinuierlichern Meßvorgang lassen sich die
Messungen nur schwer mit der erforderlichen geringen Verzögerung durchführen, die angesichts der Notwendigkeit,
bei Industrieanlagen schnell eingreifen zu können, erforderlich ist.
Mit der vorliegenden Erfindung sind diese Schwierigkeiten zu überwinden, indem die Enzymaktivität durch die Menge des
unter definierten Bedingungen reduzierten TTC bestimmt wird.
Da nämlich TF wasserunlöslich ist, ist die Menge des reduzierten TTC direkt proportional der Konzentration an
reduzierenden Dehydrogenasen im Verhältnis zu TTC, d.h. an Dehydrogenasen mit einem unter -80 mV liegenden Redox-Potential.
Die Aktivität kann also durch die Menge des unter bestimmten Umständen reduzierten TTC bestimmt werden, wofür das in
Wasser unlösliche TF in ein organisches Lösungsmittel aufgenommen wird, dessen optische Dichte gemessen werden
kann.
Um eine Größe messen zu können, die der Konzentration der Mikroorganismen, d.h. an Dehydrogenasen, proportional
ist, müssen standardisierte Inkubationsbedxngungen festgelegt werden, d.h. Bedingungen, denen der Schlamm der
biologischen Reinigungsanlage unabhängig von ihrer Belastung unterworfen werden kann, insbesondere die Sauerstoffkonzentration,
die Zugabe von reduzierend wirkenden Stoffen, der pH der Fließprobe.
Die Sauerstoffkonzentration im Milieu muß konstant gehalten werden. Das allgemeine Schema einer Atmungskette zeigt
nämlich, daß eine Konkurrenz zwischen dem Coenzym Q und
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dem TTC besteht, um das Flavin-adenin-dinucleotid in reduzierter
Form (abgekürzt FADEU) zu oxidieren. E. KUN und L.G. ABOOD (Science, 144 (1949) 107, "Colorimetric estimation
of succinic deshydrogenases by triphenyltetrazolium chloride") haben diese Konkurrenz nachgewiesen, indem
sie unter aeroben und anaeroben Verhältnissen die Kinetik der Reduktion von TTC durch Bernsteinsäure-Dehydrogenase
•untersucht haben, die aus Rattenleber extrahiert war. Die Dosierung kann daher reproduzierbar nur in dem Umfang
sein, in dem das Verhältnis
oxidiertes Coenzym Q / TTC = konstant.
Diese Bedingung wird erfüllt, wenn unter dem Einfluß von zu einem solchen Ergebnis führenden Zusatzmitteln
der Sauerstoffgehalt zu Beginn der Inkubation auf Null gebracht wird. Während der Inkubation bleibt dann nämlich
der TTC-Anteil sehr groß gegenüber dem Anteil an oxidiertem Coenzym Q. Daher nimmt letzten Endes das TTC Elektronen
auf.
Wir können also die quantitative Bestimmung der Aktivität als die Messung eines Elektronenflusses definieren. Dieser
Elektronenfluß ist proportional der Konzentration von reduziertem liikotinamid-adenin-dinucleotid oder EADH2- Da
die NADtLj'Konzentration von der Konzentration an Enzym
(Dehydrogenase) und an assimilierbarem Substrat (als Substrat bezeichnet - z.B. Lactose) abhängt, ist der Elektronenfluß
nur dann der Dehydrogenasekonzentration proportional,
wenn dieses Substrat im Überschuß vorliegt.
Bei einem Überschuß an Substrat messen wir also ein Aktivitätspotential
, das eine Konzentration von Enzym in dem Schlamm in einem vorgegebenen Seitpunkt, unabhängig
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von der in dem gleichen Seitpunkt bestehenden Substratkonzentration
ausdrückt.
Es ist bekannt, daß die Enzymaktivität mit dem pH zunimmt,
es ist erforderlich, den Wert dieses pH festzuhalten, sei es nur, um der Tatsache entgegenzuwirken, daß die Reduktion
von TTC zu TF mit einem Sauerwerden des Milieus einhergeht. Eine Pufferlösung mit pH =7,5 entspricht dem
pH, der in biologischen Reinigungsanlagen am häufigsten vorkommt.
DAs sind die drei allgemeinen oder Standard-Bedingungen für die Inkubation, die das erfindungsgemäße Verfahren zur
kontinuierlichen Messung der Enzymaktivität der Biomasse kennzeichnen. Die Inkubationszeit und die Bedingungen für
den Abbruch der Inkubation bilden den Gegenstand besonderer Eiqf ehlungen.
Bei einem derartigen Verfahren zur kontinuierlichen Messung der Enzymaktivität in biologischen Reinigungsanlagen werden
ständig Abflußproben genommen, und diese Proben werden unter Standardbedingungen gebracht.
Ein Belebtschlamm stellt ein heterogenes Medium dar, in dem
unterschiedliche Bakterienarten zusammenleben, wobei jede Bakterienart durch eine Mindest-Generationszeit gekennzeichnet
ist, die von 16 Minuten für "Escherichia CoIi" bis zu 5 Std. 30 Minuten für "Rhizobium Japinicum" schwanken
kann. In den meisten Fällen beträgt die Generationszeit jedoch größenordnungsmässig 20 Minuten.
Es scheint daher erforderlich zu sein, eine kürzere Inkubationszeit,
etwa 15 Minuten, zu wählen, um eine Aktivität zu messen, die für eine Bakteriengeneration kennzeichnend
ist.
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Die Maßnahme, TTC durch Sauerstoff als endgültigen Elektronenaufnehmer
zu ersetzen, blockiert den Vorgang der oxidativen Phosphatbildung, der zur Bildung von Adenylpyrophosphorsäure
oder ATP führt, welches Produkt zur Energiespeicherung im Bereich der Zelle dient. Das ATP
wird neuerlich für den Stoffwechsel benutzt, von dem das Wachstum abhängt, und eine längere Inkubationszeit zu
wählen, liefe darauf hinaus, eine Aktivität zu messen, die aus einem gestörten Wachstum resultierte.
In 15 Minuten kann man ein Aktivitätspotential messen, das einer Bakteriengeneration entspricht und ihrer Konzentration
proportional ist.
Das Verfahren wird bei einer Temperatur ausgeübt, die dem Aktivitätsmaximum der in dem Milieu auftretenden Mikroorganismen
entspricht.
Nach dem erfindungsgemäßen Verfahren
wird die Unterteilung der Probe in den Leitungen durch Einführen eines inerten Gases unter Temperaturverhältnissen
vorgenommen, die für die Enzymaktivität einer Bakterienpopulation des untersuchten Abwassers und
während eines vorgegebenen Zeitintervalls optimal sind,
- wird die Probe unter den genannten, für die Enzymaktivität optimalen Temperaturverhältnissen während einer
vorgegebenen Zeit in Umlauf gehalten, die ausreicht, um die Standardbedingungen der Abwesenheit von Sauerstoff
und des Puffermilieus gleichmässig zu verwirklichen ,
- wird der Probe Lactose oder ein anderes Substrat, das von der in der Biomasse enthaltenen Bakterienpopulation
assimiliert wird, sowie ein dosierbarer Redox-Indikator
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zugeführt, der sich durch Reduktion in ein Produkt umwandeln läßt, das beispielsweise auf kolorimetrischem
Wege quantitativ bestimmt werden kann,
und wird die Probe bei der gleichen optimalen Temperatur während einer als Inkubationszeit bezeichneten
vorgegebenen Zeitspanne bewegt.
Nachdem sich herausgestellt hat, daß die enzymatischen Reaktionen durch die Zugabe des zur Extraktion verwendeten
Alkohols nicht vollständig blockiert werden, sind zwei Vorrichtungen mit Erfolg eingesetzt worden; die eine Vorrichtung
nutzt die Wirkung eines Wärmestoßes aus und die andere eine plötzliche Änderung des pH-Wertes, um die
Enzymaktivität der Bakterienpopulation zu beseitigen.
Bei dem gleichen erfindungsgemäßen Verfahren
wird dann das entstandene Produkt mittels eines Lösungsmittels extrahiert und dadurch das genannte entstandene
Produkt in der flüssigen Phase lokalisiert,
wird der Schlamm durch Absitzenlassen abgetrennt,
- und wird schließlich die Farbintensität der flüssigen Phase kolorimetrisch gemessen.
Bei einem solchen Verfahren wird als Redoxindikator vorzugsweise 2,3,5-Triphenyltetrazoliumchlorid verwendet,
das zu Triphenylformazan reduziert wird.
Bei einer bevorzugten Anwendungsweise wird die Probe durch eine Zugabe von Natriumsulfat und Kobaltchlorid unter Standardverhältnisse
eines reduzierenden Milieus mit einem Sau-
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erstoffanteil Null gebracht.
Ganz allgemein wird die Probe unter optimale Temperaturbedingungen
gebracht, die je nach der Art der vorhandenen Bakterienstämme gewählt werden.
Die Enzymaktivität der Bakterienpopulation wird beseitigt, indem entweder die Temperatur auf einen über 65° C liegenden
Wert gebracht und auf diesem Wert eine gewisse Zeit gehalten wird, oder indem der pH (beispielsweise durch
Zugabe von Schwefelsäure) geändert wird.
Bei verschiedenen Ausführungsformen wird das entstandene Produkt extrahiert und in die flüssige Phase der Fließ"
probe mit Hilfe eines Alkohols (z.B. Äthylalkohol) überführt.
Ausserdem handelt es sich bei dem durch die Bakterien
assimilierbaren Substrat, das der Probe vor Inkubationsbeginn zugesetzt wird, um einen Zucker, insbesondere um
Lactose.
Eine erfindungsgemäße Vorrichtung für die kontinuierliche Messung der Enzymaktivität von biologischen Reinigungsanlagen
enthält eine erste Rohrleitung aus einem Material mit sehr gutem Wärmeübergangskoeffizienten, eingetaucht
in ein Bad vorgewählter Temperatur, welche Rohrleitung
einen ersten Abschnitt aufweist,, dessen Länge, Querschnitt
und Windungsweg so beschaffen sind, daß dieser erste Abschnitt eine Misch- und Homogenisiereinrichtung darstellt,
die durch eine Dosierpumpe mit Biomasse, mit Zusatzstoffen zur Reduktion von Sauerstoff und mit unterteilendem inertem
Gas versorgt wird, und welche Rohrleitung einen zweiten zweiten Abschnitt aufweist, dessen Länge, Querschnitt und
Windungsweg so beschaffen sind, daß die von der Probe zum
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Hindurchlaufen benötigte Zeit, die von der Förderleistung der Dosierpumpe abhängt, auf 15 bis 20 Minuten festgelegt
ist.
In der gleichen Vorrichtung befindet sich hinter der ersten Rohrleitung eine zweite Rohrleitung aus einem Material
mit sehr gutem Wärmeübergangskoeffizienten, eingetaucht in ein Bad vorgewählter Temperatur (zwischen 65
und 85 C) , welche zweite Rohrleitung an ihrem Anfang einen Rohransatz zum Einleiten einer Lösungsmittelmenge aufweist,
auf welche zweite Rohrleitung eine Absitζvorrichtung mit
zwei Entnahmeöffnungen folgt, von denen die erste zum Wegführen des extrahierten Schlamms und die zweite für
die Überführung der flüssigen Phase in eine Rohrleitung dient, die in ein kolorimetrisches Meßgerät mündet.
Bei einer zweiten Ausführungsform enthält eine erfindungsgemäße
Vorrichtung für die kontinuierliche Messung der Enzymaktivität von biologischen Reinigungsanlagen eine
erste Rohrleitung aus einem Material mit sehr gutem Wärmeübergangskoeffizienten,
eingetaucht in ein Bad vorgewählter Temperatur, welche Rohrleitung einen ersten Abschnitt
aufweist, dessen Länge, Querschnitt und Windungsweg so beschaffen sind, daß dieser erste Abschnitt eine Misch- und
Homogenisierungseinrichtung darstellt, die durch eine Dosierpumpe mit Biomasse, mit Zusatzstoffen zur Reduktion
von Sauerstoff und mit unterteilendem inertem Gas versorgt wird, und welche Rohrleitung einen zweiten Abschnitt aufweist,
dessen Länge, Querschnitt und Windungsweg so beschaffen sind, daß die von der Probe zum Hindurchlaufen benötigte
Zeit, die von der Förderleistung der Pumpe abhängt, auf 15 bis 20 Minuten festgelegt ist. In der gleichen Vorrichtung
befindet sich hinter der ersten Rohrleitung nach einem ersten Rohransatz für das Einleiten einer die Ak-
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tivität der Bakterien vollständig beseitigenden Substanz ein zweiter Rohransatz für das Einleiten des Lösungsmittels,
auf welchen zweiten Rohransatz eine Absitzvorrichtung mit zwei Entnahmeöffnungen folgt, von denen die erste zum
Wegführen des extrahierten Schlamms und die zweite für die überführung der flüssigen Phase in eine Rohrleitung
dient, die in ein kolorimetrisches Meßgerät mündet.
Zum Erläutern der Erfindung werden anschliessend anhand der Zeichnungen zwei die Erfindung nicht beschränkende, schematisch
dargestellte industriell einsetzbare Anlagen beschrieben.
Fig. IZ Schema einer Meßvorrichtung, bei der die Enzymaktivität
durch einen Wärmestoß beseitigt wird;
Fig. 2 Schema einer Meßvorrichtung, bei der die Enzymaktivität durch Änderung des pH-Werts beseitigt
wird.
Fig. 1 zeigt eine Rohrleitung 1, deren eines Ende la zur
kontinuierlichen Aufnahme von Proben aus einem nicht gezeichneten Zulauf dient; in der Rohrleitung 1 bewegt
sich kontinuierlich eine Biomasse-Probe, und das andere Ende Ib der Rohrleitung 1 ist eine Auslaßöffnung.
Das Ende la der Leitung 1 führt unmittelbar in eine Dosierpumpe 2, etwa eine Schlauchpumpe an sich bekannter
Art; das durch die Schlauchpumpe 2 verlaufende Stück Ic der Leitung 1 besteht aus elastischem Material, beispielsweise
einem Elastomer. Die Dosierpujpe 2 ist mit einem Leitungsteil Id an das folgende Bauteil angeschlossen,
das aus zwei miteinander verbundenen Abschnitten Ie und If besteht; If liegt in Fließrichtung hinter Ie, und
beide Abschnitte tauchen in ein Thermostatbad 3 ein. In das Leitungsstück Id münden mehrere Rohransätze zum Einleiten
verschiedener Zusatzstoffe, insbesondere ein Rohr-
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ansatz 4 zum Einleiten von Na3SO3, ein Ansatzstück 5 zum
Einleiten von C0CI2 und ein Ansatzstück 6 zum Einleiten von Stickstoff oder einem anderen inerten Gas.
Die verschiedenen Rohransätze 4, 5 und 6 stehen durch Leitungen 4', 5' und 6' mit nicht gezeichneten Bevorratungs-
oder Speiseeinrichtungen für die verschiedenen Zusatzstoffe über Zuleitungen in Verbindunden, die durch
ebensoviele Sektionen der Dosierpumpe 2 hindurchlaufen, wodurch jeder dieser Zusatzstoffe mit einer vorbestimmten
Pließgeschwindigkeit und daher mit vorbestimmtem Durchsatz zugeführt wird.
Die Abschnitte Ie und If der Rohrleitung 1 bestehen aus
einem Rohr mit sehr gutem Wärmeübergangskoeffizienten; das Rohr ist beispielsweise aus einer Metallegierung hergestellt,
die im Hinblick auf sehr gute Korrosionsbeständigkeit ausgewählt ist.
Querschnitt, Länge und Windungsweg des Abschnitts Ie der
Leitung 1 sind so gewählt, daß am Ausgang des Abschnitts Ie der Leitung 1 die Mischung hinsichtlich Temperatur, chemischer
Zusammensetzung und biologischem Zustand als homogen angesehen werden kann.
Im übergang zwischen den Abschnitten Ie und If der Leitung
1 befindet sich ein Rohransatz 7 für das Einleiten einer Verbindung, die von den in der Probe vorhandenen Bakterien
der Bakterienpopulation assimiliert werden kann, sowie eines Redox-Indikators. Der Rohransatz 7 steht in Verbindung mit
Behältern, die getrennt die assimilierbare Verbindung und den Redox-Indikator enthalten; das Verbindungsstück 7'
verläuft durch eine Sektion der schon erwähnten Dosierpumpe 2.
Querschnitt, Länge und Windungsweg des Abschnitts If der
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Leitung 1 sind so gewählt, daß die Fließprobe mit der ihr durch die Dosierpumpe aufgezwungenen Geschwindigkeit
und mit den verschiedenen Zusatzstoffen, deren Durchsätze ebenfalls von der Dosierpumpe bestimmt sind, eine vorbestimmte
Zeitspanne für das Durchfließen des Abschnitts If beansprucht.
Das Ende des Abschnitts If der Leitung 1 steht durch ein
Leitungsstück Ig mit einem Leitungsstück lh in Verbindung, das in ein Thermostatbad 8 getaucht ist, in dem eine wesentlich
höhere Temperatur herrscht als in dem Bad 3, so daß jede Enzymaktivität der Bakterienpopulation in der
Fließprobe beseitigt wird.
Das Leitungsstück Ig weist einen Rohransatz 9 zum Einleiten
eines Lösungsmittels für das farbige Produkt auf, in das sich der Redox-Indikator umgewandelt hat. Der Rohransatz
9 steht mit einem nicht gezeichneten Behälter durch ein Leitungsstück 9' in Verbindung, das durch eine Sektion
der genannten Dosierpumpe 2 hindurchläuft. Als Lösungsmittel dienen Alkohole, beispielsweise C2H5OH.
Das Leitungsstück lh, das aus dem gleichen Material besteht wie die Leitungsabschnitte Ie und If, ist hinsichtlich
seines Querschnitts, seiner Länge und seines Windungsweges so gewählt, daß eine bestimmte Durchlaufzeit eingehalten
wird.
Ein Leitungsstück Ii verbindet das Leitungsstück lh mit
einer Entgasungsvorrichtung 10 an sich bekannter Art, von der eine Leitung 11 für die Gasphase in Richtung zum Auslaß
und eine Leitung Ij ausgehen, die zu einer Absitzvorrichtung 12 an sich bekannter Art führt.
Von der Absitzvorrichtung weg verlaufen eine Leitung 13
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für die Entnahme und die Wegführung des Schlamms in einen Auslaß sowie eine Leitung 1m zur Überführung der
flüssigen Phase an den Eingang eines registrierenden Kolorimeters 14 an sich bekannter Art, das aus dem eigentlichen
Kolorimeter 14 und einem getrennten Registriergerät 14' bestehen kann.
Am Ausgang des Kolorimeters geht das Leitungsstück Im
in ein Leitungsstück In über, das als Auslaßleitung Ib aus
der Vorrichtung austritt.
Die Leitung 13 und die Leitungsstücke Im und In verlaufen
zur Aufrechterhaltung eines kontinuierlichen Durchflusses durch ebensoviele Sektionen der Dosierpumpe 2.
In Fig. 2 findet man die gleichen Elemente mit den gleichen Bezugszeichen wieder, abgesehen von dem Leitungsstück lh
und dem Thermostatbad 8, die durch eine mit 81 bezeichnete
Mischvorrichtung ersetzt sind, an der ein Rohransatz 15 für die Zuleitung einer die Enzymaktivität der Mikrobenpopulation
hemmenden Substanz, z.B. Schwefelsäure, und der Rohransatz 9 vorgesehen sind.
Die Vorrichtung arbeitet folgendermaßen: Die Dosierpumpe besitzt so viele getrennte Durchlaßsektxonen, daß die Probe
und die verschiedenen Zusatzstoffe in Bewegung gesetzt und die flüssige Phase sowie der Schlamm hinter der Absitzvorrichtung
12 wieder aufgenommen werden können, um sie in Bewegung zu halten, ferner Sektionen für die zum Kolorimeter
14 zu fördernde flüssige Phase und für den Transport des Schlamms zum Auslaß.
Vor ihrer Einführung in den Eingang des registrierenden Kolorimeters durchläuft die Probe folgende Verfahrensphasen:
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die Probe nimmt solche Mengen der Zusatzstoffe Na^SO-,
und CoCl2 auf, daß der freie Sauerstoff vollständig
beseitigt und der pH beispielsweise bei 7,5 festgehalten wird (gepuffertes Milieu),
die Fließprobe durchläuft einen Leitungsabschnitt 13, der
in ein Thermostatbad eingetaucht ist, in dem eine für die Enzymaktivität optimale Temperatur aufrechterhalten
wird, die im allgemeinen bei beispielsweise 37° C liegt. Am Ende des Fließweges ist die Probe hinsichtlich Temperatur
und chemischer und biologischer Zusammensetzung homogen,
die Probe nimmt dann durch den Rohransatz 7 eine von den Bakterien assimilierbare Kohlenwasserstoffverbindung,
z.B. Lactose, und einen Redox-Indikator auf, wobei als Indikator 2,3,5-Triphenyltetrazoliumchlorid (TTC) gewählt
ist,
die Probe durchsetzt dann im Verlaufe einer vorbestimmten Zeitspanne, beispielsweise während 15 Minuten, einen
Leitungsabschnitt If bei einer Temperatur, die so gewählt ist, daß unter den Milieubedingungen der pH konstant
(gepuffertes Milieu) und die Sauerstoffkonzentration Null bleibt, wobei unter diesen Bedingungen das
TTC schließlich Elektronen aufnimmt, so daß die Dosierung unter reproduzierbaren Bedingungen stattfindet.
Dehydrogenasen reduzieren das 2,3,5-Triphenyltetrazoliumchlorid
(TTC) zu Triphenylformazan (TF) gemäß der Formel
c H C^N-N C6H5 + 2H _^
N=N C6H5 65
(farblos) (rot)
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Am Ende des Leitungsabschnitts If tritt ein Lösungsmittel
für Triphenylformazan, beispielsweise C^Ht-OH, hinzu.
Dann wird die Probe in eine Vorrichtung geleitet, in der die Enzymreaktion abgebrochen wird. Das kann entweder durch
einen Wärmestoß (Fig. 1) erfolgen., oder durch Zugabe einer hemmend wirkenden Verbindung, z.B. von Schwefelsäure
(Fig. 2).
Nach einer Entgasung wird die Probe nun in eine Absitzvorrichtung 12 geleitet, wo der von rotem Triphenylformazan,
das an den Festteilen angelagert war, befreite Schlamm abgetrennt und dem Auslaß zugeführt wird, und die das
während der Inkubationsphase in dem Leitungsabschnitt If durch die Enzymaktivität entstandene gesamte Triphenylformazan
enthaltende flüssige Phase wird an den Eingang des Registrierkolorimeters geführt.
Dieses Bestimmungsverfahren und die den Vorgang ausübende Vorrichtung ermöglichen die Messung der Enzymaktivität
in allen unter aeroben oder anaeroben Bedingungen arbeitenden Fermentationssystemen.
Das Verfahren ist vor allem für die Feststellung der Möglichkeiten
für die laborgesteuerte Aufbereitung von Industrieabwässern einsetzbar.
Wenn die Vorrichtung mit einer Mahlvorrichtung für nichtbiologische Suspensionen ausgestattet wird, kann die Aktivität
einer in einer Belüftungsvorrichtung verwendeten Biomasse kontinuierlich aufgezeichnet werden.
Wenn die Vorrichtung im Zustrom einer Station angeordnet und das zu behandelnde Abwasser und die aufnehmende Bio-
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messe eingespeist werden, können die Umstände, die zu
einer Vergiftung der Biomasse, beispielsweise durch ein giftiges Produkt führen, festgestellt und können vorbeugende
Maßnahmen getroffen werden.
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Claims (1)
1. Verfahren zur kontinuierlichen Messung der Enzymaktivität der Biomasse in biologischen Reinigungsanlagen,
dadurch gekennzeichnet, daß
dadurch gekennzeichnet, daß
- kontinuierlich eine Probe Biomasse entnommen wird,
- die Probe unter Standardbedingungen gleichzeitig einem den Sauerstoffgehalt auf Null senkenden reduzierenden
Medium und einem Puffermedium ausgesetzt wird,
- die Biomassenprobe während einer vorbestimmten Zeitspanne, deren Dauer so gewählt ist, daß die
Standardverhältnisse: Abwesenheit von Sauerstoff und gepuffertes Milieu, in allen Teilen der Probe
verwirklicht sind, unter den genannten, für die Enzymaktivität optimalen Temperaturbedingungen gehalten
wird,
- der Probe eine von der vorliegenden Bakterienpopulation assimilierbare Verbindung und ein quantitativ
bestimmbarer Redox-Indikator zugefügt werden, der sich durch Reduktion in ein quantitativ bestimmbares
Produkt umzuwandeln vermag,
- die Fließprobe während einer als Inkubationszeit bezeichneten vorbestimmten Zeitspanne bei der gleichen
optimalen Temperatur bewegt wird,
- die Enzymaktivität der Bakterienpopulation beseitigt wird,
- das quantitativ bestimmbare Produkt mit Hilfe eines Lösungsmittels extrahiert und auf diese Weise in die
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_ 2 —
flüssige Phase der Probe überführt wird, der Schlamm durch Absitzen von der Probe getrennt
wird,
das quantitativ bestimmbare Produkt in der flüssigen
Phase gemessen wird.
2. Verfahren nach Anspruch 1, dadurch gekennzeichnet, daß als Redox-Indikator 2,3,5-Triphenyltetrazoliumchlorid
gewählt wird, das zu Triphenylformazan reduziert wird.
3. Verfahren nach Anspruch 2, dadurch gekennzeichnet, daß die Probe durch Zugabe von Natriumsulfat und Cobaltchlorid
auf die Standardverhältnisse eines auf den Sauerstoffgehalt Null reduzierenden Milieus gebracht
wird.
4. Verfahren nach Anspruch 2, dadurch gekennzeichnet, daß
- die Probe mit Hilfe eines unter den Bedingungen der gewählten optimalen Temperatur stehenden inerten Gases
bewegt und unterteilt wird,
- die Enzymaktivität der Bakterienpopulation durch einen Wärmestoß beendet wird, indem die Temperatur auf einen
vorbestimmten, über 65° C liegenden Wert gebracht und auf dieser Temperatur während einer weiteren Zeitspanne
gehalten wird.
5. Verfahren nach Anspruch 2, dadurch gekennzeichnet, daß - die Probe mit Hilfe einer unter den Bedingungen der
§09841/088?
gewählten optimalen Temperatur stehenden inerten Gases bewegt und unterteilt wird/
die Enzymaktivität der Bakterienpopulation durch eine Änderung des pH-Werts beseitigt wird.
6. Verfahren nach Anspruch 1, dadurch gekennzeichnet, daß
das entstehende Produkt mit Hilfe eines Alkohols extrahiert und in die flüssige Phase der Fließprobe überführt
wird.
7. Verfahren nach Anspruch 1, dadurch gekennzeichnet, daß
als von den Bakterien assimilierbare Substanz ein Zucker gewählt wird.
8. Verfahren nach Anspruch 7, dadurch gekennzeichnet, daß als von den Bakterien assimilierbarer Zucker Lactose
gewählt wird.
9. Verfahren nach Anspruch 1, dadurch gekennzeichnet, daß das quantitativ bestimmbare Produkt in der flüssigen
Phase kolorimetrisch gemessen wird.
10. Verfahren nach Anspruch 1, dadurch gekennzeichnet, daß das quantitativ bestimmbareProdukt in der flüssigen
Phase nach einer elektrochemischen Methode an dem Redox-Reagens vor oder nach der Reduktion gemessen
wird.
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11. Vorrichtung zur kontinuierlichen Messung der Enzymaktivität der Biomasse in biologischen Reinigungssysteinen,
gekennzeichnet durch eine erste Rohrleitung (1) aus einem Material mit sehr gutem Wärmeübergangskoeffizienten,
eingetaucht in ein Bad (3), dessen Temperatur in Abhängigkeit von der vorliegenden Bakterienpopulation
gewählt ist, welche Rohrleitung (1) einen ersten Abschnitt (Ie) aufweist, dessen Länge, Querschnitt und
Windungsweg so beschaffen sind, daß er eine Misch- und Homogenisierungseinrichtung darstellt, die durch
eine Dosierpumpe (2) mit einer Probe, mit Zusatzstoffen zur Reduktion von Sauerstoff und mit inertem Gas versorgt
wird, und welche Rohrleitung (1) einen zweiten Abschnitt (If) aufweist, dessen Länge, Querschnitt und
Windungsweg so beschaffen sind, daß die von der Probe zum Hindurchlaufen benötigte Zeit, die von der Förderleistung
der Pumpe (2) abhängt, in Abhängigkeit von der Generationszeit der betreffenden Bakterienpopulation
festgelegt ist, und durch eine hinter der ersten Rohrleitung (1) befindliche zweite Rohrleitung aus einem
Material mit sehr gutem Wärmeübergangskoeffizienten, eingetaucht in ein Bad (8), das sich auf einer über 65° C liegenden
vorgewählten Temperatur befindet, welche zweite Rohrleitung an ihrem Anfang einen Rohransatz (9) zum
Einleiten einer Lösungsmittelmenge aufweist, auf welche zweite Rohrleitung eine Absitzvorrichtung (12) mit
zwei Entnahmeöffnungen folgt, von denen die erste zum Wegführen des extrahierten Schlamms und die zweite für
die Überführung der flüssigen Phase der Probe in eine Rohrleitung (Im) dient, die in ein kolorimetrisches Meßgerät
(14) mündet.
41/088?
2813349
12. Vorrichtung zur kontinuierlichen Messung der Enzymaktivität von biologischen Reinigungssystemen,
gekennzeichnet durch eine erste Rohrleitung (1) aus einem Material mit sehr gutem Wärmeübergangskoeffizienten,
eingetaucht in ein Bad (3), dessen Temperatur in Abhängigkeit von der vorliegenden Bakterienpopulation
gewählt ist, welche Rohrleitung einen ersten Abschnitt (Ie) aufweist, dessen Länge, Querschnitt und Windungsweg so beschaffen sind, daß er eine Misch- und Homogenisierungseinrichtung
darstellt, die durch eine Dosierpumpe (2) mit einer Probe, mit Zusatzstoffen zur Reduktion
von Sauerstoff und mit inertem Gas versorgt wird, und welche Rohrleitung (1) einen zweiten Abschnitt (If)
aufweist, dessen Länge, Querschnitt und Windungsweg so beschaffen sind, daß die von der Fließprobe zum Hindurchlaufen
benötigte Zeit, die von der Förderleistung der Pumpe (2) abhängt, in Abhängigkeit von der Generationszeit
der betrachteten Bakterienpopulation festgelegt ist, und durch ein hinter der ersten Rohrleitung befindliches
System von zwei Rohransätzen (9, 15) für das Einleiten einer Lösungsmittelmenge und für das Einleiten
einer die Aktivität der Bakterien in der Probe vollständig beendenden Substanz, auf welches System von
Rohransätzen eine Absitzvorrichtung (12) folgt, die mit zwei Entnahmeöffnungen versehen ist, von denen die erste
zum Wegführen des extrahierten Schlamms und die zweite für die Überführung der flüssigen Phase der Probe in eine
Rohrleitung (Im) dient, die in ein kolorimetrisches Meßgerät (14) mündet.
8098 4 1/0887
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Citations (1)
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