CH634149A5 - Process and device for the continuous measurement of the enzymatic activity of the biomass in biological purification systems - Google Patents

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CH634149A5
CH634149A5 CH350078A CH350078A CH634149A5 CH 634149 A5 CH634149 A5 CH 634149A5 CH 350078 A CH350078 A CH 350078A CH 350078 A CH350078 A CH 350078A CH 634149 A5 CH634149 A5 CH 634149A5
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Patrick Simon
Marcel Dore
Yam-Chin Rouas
Jean-Pierre Dubreuil
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Elf Aquitaine
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    • G01N33/18Water
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    • G01N33/1866Water using one or more living organisms, e.g. a fish using microorganisms
    • CCHEMISTRY; METALLURGY
    • C12BIOCHEMISTRY; BEER; SPIRITS; WINE; VINEGAR; MICROBIOLOGY; ENZYMOLOGY; MUTATION OR GENETIC ENGINEERING
    • C12QMEASURING OR TESTING PROCESSES INVOLVING ENZYMES, NUCLEIC ACIDS OR MICROORGANISMS; COMPOSITIONS OR TEST PAPERS THEREFOR; PROCESSES OF PREPARING SUCH COMPOSITIONS; CONDITION-RESPONSIVE CONTROL IN MICROBIOLOGICAL OR ENZYMOLOGICAL PROCESSES
    • C12Q2304/00Chemical means of detecting microorganisms
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Description

La présente invention concerne un procédé de mesure en continu de l'activité enzymatique dans les stations d'épuration biologique des effluents urbains et industriels et un dispositif pour l'application dudit procédé.
L'efficacité des stations d'épuration est conditionnée par le maintien d'un niveau suffisant de l'activité des populations microbiennes ou biomasse au contact de l'effluent en cours de traitement. Il importe donc de savoir mesurer à tout moment l'activité en question par un procédé à mise en œuvre rapide. C'est à cette condition seulement que les variations du niveau d'activité seront connues à temps pour en corriger l'évolution par des moyens appropriés. Il est notamment primordial d'intervenir lorsqu'un processus de réduction d'activité s'amorce, le risque d'inhibition de la biomasse devenant alors important.
Lorsqu'une telle inhibition se manifeste, conséquence d'une véritable intoxication des populations bactériennes, un arrêt prolongé de la station devient inéluctable.
Les méthodes utilisées jusqu'alors sont fondées sur la détermination des matières en suspension (MES) ou des matières volatiles en suspension (MVS). Cette dernière mesure englobe non seulement les micro-organismes vivants, mais aussi les micro-organismes morts ainsi que les matières en suspension volatiles non biologiques. Ces tests sont donc insuffisants pour donner une idée précise de l'état de la biomasse et de son activité à un instant donné.
Les méthodes respirométriques, par la détermination de la vitesse de consommation de l'oxygène, donnent une information directe sur l'activité de la fraction vivante de la biomasse; elles sont cependant d'une application directe délicate et difficile à programmer dans le cadre d'un système de mesure en continu.
Le dosage des déshydrogénases des boues activées a été envisagé en 1964 à la Seconde Conférence internationale pour la recherche sur la pollution des eaux, à Tokyo, par MM. G. Lenhard, L. Nourse et H.M. Schwartz.
L'emploi du chlorure de triphényltétrazolium, en abrégé TTC, incolore, réduit en triphénylformazan, en abrégé TF, rouge, sous l'action des déshydrogénases, a été préconisé par différents auteurs,
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notamment par Philip H. Jones et D. Prasad dans «Journal of Water Pollution Control Fédération», Novembre 1969, pp. R 441-R 449 (editor: Peter J. Piecuch, 3900 Wisconsin Av., N.W. Washington, D.C. 20016).
Les mesures réalisées jusqu'ici ont cependant conduit à des résultats discordants et, généralement, ne représentant pas de façon exacte l'évolution des réactions d'oxydation de la biomasse.
Dans le brevet français N° 2302281 du 28 février 1975, Roger Ben-Aim et Jean-Pierre Legeron préconisent, dans le cadre d'une méthode différentielle, l'emploi de TTC en proportion limitée pour éviter les interactions éventuelles entre le TTC et le TF et la biomasse elle-même, le dosage étant réalisé à l'abri de la lumière et hors de la présence de substrats qui seraient susceptibles de modifier le milieu réactionnel. Dans de telles conditions opératoires, mesures en discontinu, les mesures peuvent difficilement être obtenues avec les délais compatibles avec la nécessité d'une intervention rapide sur les installations industrielles.
La présente invention permet de surmonter ces difficultés en définissant l'activité enzymatique par la quantité de TTC réduite dans des conditions définies.
En effet, le TF étant insoluble dans l'eau, la quantité de TTC réduite est directement proportionnelle à la concentration en déshydrogénases réductrices vis-à-vis du TTC, c'est-à-dire en déshydrogénases de potentiel redox inférieur à — 80 mV.
L'activité peut donc se définir par la quantité de TTC réduite dans certaines conditions, pour cela, on extrait le TF insoluble dans l'eau dans un solvant organique dont on peut mesurer la densité optique.
Afin de définir une grandeur proportionnelle à la concentration des micro-organismes, c'est-à-dire en déshydrogénases, il est nécessaire de définir les conditions standard d'incubation, c'est-à-dire les conditions qui peuvent être appliquées aux boues du système d'épuration biologique quelle que soit la charge, notamment la concentration en oxygène, l'addition d'éléments réducteurs, le pH de l'effluent.
La concentration en oxygène doit rester constante dans le milieu. En effet, le schéma général d'une chaîne respiratoire montre qu'il existe une compétition entre la coenzyme Q et le TTC, pour l'oxydation de la flavine-adénine-dinucléotide en forme réduite ou en abrégé FADH2. E. Kun et L.G. Abood, dans la revue «Science», pp. 107,144 (1949), «Colorimetrie estimation of succinic deshydro-genases by triphenyltetrazolium chloride», ont montré cette compétition en étudiant en aérobie et en anaérobie la cinétique de la réduction du TTC par la succinate déshydrogénase extraite du foie du rat. Le dosage ne peut donc être reproductible que dans la mesure où le rapport coenzyme Q oxydée/TTC est constant.
Cette condition sera remplie si, par l'effet d'additifs procurant un tel résultat, le pourcentage d'oxygène au début de l'incubation est annulé. En effet, pendant l'incubation, le pourcentage de TTC restera alors très grand par rapport au poui*centage de coenzyme Q oxydée. Le TTC devient alors l'accepteur final d'électrons.
Ainsi, nous pouvons définir le dosage de l'activité comme la mesure d'un flux d'électrons. Ce flux d'électrons est proportionnel à la concentration en nicotinamide-adénine-dinucléotide réduit ou NADH2. Comme la concentration en NADH2 dépend de la concentration en enzyme (déshydrogénases) et en substrat assimilable dit le substrat (par exemple le lactose), ce n'est que lorsque ce substrat est en excès que le flux d'électrons est proportionnel à la concentration en déshydrogénases.
Ainsi, en présence d'un excès de substrat, nous mesurons un potentiel d'activité qui traduit une concentration en enzyme dans les boues à un instant donné, indépendamment de la concentration en substrat à ce même instant.
Il est connu que l'activité enzymatique est fonction croissante du pH ; il est nécessaire de fixer la valeur de ce pH, ne serait-ce que pour pallier le fait que la réduction de TTC en TF s'accompagne d'une acidification du milieu. Une solution tampon de pH=7,5 correspond aux pH les plus couramment rencontrés dans les systèmes d'épuration biologiques.
Telles sont les trois conditions générales et standard d'incubation qui caractérisent le procédé de mesure en continu de l'activité enzymatique de la biomasse suivant l'invention. Le temps d'incubation et les conditions d'arrêt de l'incubation font l'objet de recommandations particulières.
Dans un tel procédé de mesure en continu de l'activité enzymatique dans les systèmes d'épuration biologiques, on prélève de façon continue un échantillon de l'effluent et on place ledit échantillon en condition standard.
Une boue activée représente un milieu hétérogène où cohabitent différentes espèces de bactéries, chacune étant caractérisée par un temps de génération minimal qui peut varier de 16 min. pour Escherichia coli à 5 Vi h pour Rhizobium japonicum. Cependant, dans la majorité des cas, le temps de génération est de l'ordre de 20 min.
Ainsi, il semble nécessaire de choisir un temps d'incubation inférieur, soit 15 min, afin de mesurer une activité caractéristique d'une génération de bactéries.
Le fait de substituer le TTC à l'oxygène comme accepteur final d'électrons bloque le processus de la phosphorisation oxydative génératrice d'adénine triphosphatée ou ATP, produit qui sert au stockage de l'énergie au niveau de la cellule. Cette ATP est réutilisée pour l'anabolisme dont dépend la croissance, et choisir un temps d'incubation plus long reviendrait à mesurer une activité résultant d'une croissance perturbée.
En 15 min, on peut mesurer un potentiel d'activité correspondant à une génération de bactéries et proportionnel à leur concentration.
Le procédé sera mis en œuvre à une température correspondant au maximum d'activité des micro-organismes présents dans le milieu.
Dans le même procédé suivant l'invention:
— on provoque la fragmentation de l'échantillon dans les conduits par injection d'un gaz inerte dans des conditions de température optimale pour l'activité enzymatique d'une population bactérienne de l'effluent considéré et pendant un intervalle de temps donné,
— on fait circuler l'échantillon dans lesdites conditions de température optimale pour l'activité enzymatique pendant un temps déterminé suffisant pour que les conditions standard d'absence d'oxygène et de milieu tamponné soient réalisées de façon homogène,
— on ajoute à l'échantillon un substrat tel que le lactose, assimilable par la population bactérienne présente dans la biomasse, et un indicateur d'oxydoréduction dosable susceptible de se transformer par réduction en un produit dosable, par colorimétrie par exemple, et
— on déplace l'échantillon à la même température optimale pendant un temps déterminé dit temps d'incubation.
Ayant observé que les réactions enzymatiques ne sont pas totalement bloquées par l'addition de l'alcool utilisé pour l'extraction, deux dispositifs ont été utilisés avec succès, l'un utilisant l'effet d'un choc thermique et l'autre une modification brutale de pH, pour mettre fin à,l'activité enzymatique de la population bactérienne.
Dans le même procédé selon l'invention:
— on extrait ensuite le produit résultant à l'aide d'un solvant et, ainsi, on localise ledit produit résultant dans la phase liquide,
— on sépare les boues par décantation, et
— on mesure enfin l'intensité colorimétrique de la phase liquide.
Dans un tel procédé, il est préféré d'utiliser comme indicateur d'oxydoréduction le chlorure de 2,3,5-triphényltétrazolium qui est réduit en triphénylformazan.
Dans un mode préférentiel d'application, on met l'échantillon en conditions standard d'un milieu réducteur, à pourcentage d'oxygène nul, par une addition de sulfate de soude et de chlorure de cobalt.
D'une façon générale, on déplace l'échantillon dans des conditions d'une température optimale choisie en fonction des souches bactériennes présentes.
On met fin à l'activité enzymatique de la population bactérienne soit en portant la température à une valeur supérieure à 65° C et en l'y
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maintenant pendant un certain intervalle de temps, soit par modification du pH (addition d'acide sulfurique par exemple).
Dans diverses réalisations, on extrait le produit résultant et on le localise dans la phase liquide de l'effluent à l'aide d'un alcool tel que l'alcool êthylique.
Egalement, le substrat assimilable par les bactéries ajouté à l'échantillon avant l'incubation est un sucre, notamment le lactose.
Un dispositif suivant l'invention de mesure en continu de l'activité enzymatique des systèmes d'épuration biologiques comprend un premier conduit tubulaire à très bon coefficient de transmission de chaleur, immergé dans un bain à une température choisie, ledit conduit comportant une première partie de longueur, section et tortuosité telles que ladite première partie constitue un mélangeur homogénéiseur alimenté, à l'aide d'une pompe proportionnante, en biomasse, en additifs réducteurs d'oxygène et en gaz inerte de fractionnement, ledit conduit comportant une seconde partie de longueur, section et tortuosité telles que le temps de parcours par l'échantillon, fonction du débit de la pompe proportionnante est fixé entre 15 et 20 min.
Le même dispositif, à la suite du premier conduit tubulaire, comprend un second conduit tubulaire à très bon coefficient de transmission de la chaleur, immergé dans un bain à une température choisie entre 65 et 80° C, le second conduit tubulaire étant pourvu à son début d'un ajutage pour l'arrivée d'un débit de solvant, ledit second conduit tubulaire étant suivi d'un décanteur muni de deux orifices d'évacuation, un premier orifice pour l'évacuation des boues extraites et un second orifice pour le passage de la phase liquide dans un conduit qui aboutit à un appareil de mesure colorimétrique.
Dans un autre mode de réalisation, un dispositif suivant l'invention de mesure en continu de l'activité enzymatique des systèmes d'épuration biologiques comprend un premier conduit tubulaire à très bon coefficient de transmission de la chaleur, immergé dans un bain à une température choisie, ledit conduit comportant une première partie de longueur, section et tortuosité telles que ladite première partie constitue un mélangeur homogénéiseur alimenté, à l'aide d'une pompe proportionnante en biomasse, en additifs réducteurs d'oxygène et en gaz inerte de fractionnement, ledit conduit comportant une seconde partie de longueur, section et tortuosité telles que le temps de parcours par l'échantillon, fonction du débit de la pompe proportionnante, est fixé entre 15 et 20 min. Le même dispositif comprend, à la suite du premier conduit tubulaire, après un premier ajutage pour l'arrivée d'un produit arrêtant toute activité des bactéries, un second ajutage pour l'arrivée du solvant, ledit second ajutage étant suivi d'un décanteur muni de deux orifices d'évacuation, un premier orifice pour l'évacuation des boues extraites et un second orifice pour le passage de la phase liquide dans un conduit qui aboutit à un appareil de mesure colorimétrique.
L'invention sera mieux comprise dans la description des figures suivantes, données à titre non limitatif des schémas d'installations industrielles.
La fig. 1 est un schéma d'un dispositif de mesure avec arrêt de l'activité enzymatique par le moyen d'un choc thermique.
La fig. 2 est un schéma d'un dispositif de mesure avec arrêt de l'activité enzymatique par modification de pH.
En se référant à la fig. 1, on distingue un conduit 1 dont une extrémité la constitue une prise d'échantillon continue, sur un canal non figuré dans lequel se déplace de façon continue un échantillon de biomasse, et dont l'autre extrémité lb est une ouverture de rejet. L'extrémité de la conduite est directement reliée à une pompe proportionnante 2 telle qu'une pompe péristaltique d'un modèle connu en soi, au travers de laquelle le conduit 1 est constitué par un élément le de conduit réalisé en matériau élastique tel qu'un élastomère. La pompe proportionnante 2 est reliée par un élément de conduite ld à un élément suivant, composé de deux parties le et lf connectées, lf à la suite de le, et toutes deux plongées dans un bac thermostatique 3. Dans l'élément de conduite ld débouchent plusieurs ajutages pour l'arrivée de divers additifs, notamment un ajutage 4 pour l'arrivée de Na2S03, un ajutage 5 pour l'arrivée de CoCl2 et un ajutage 6 pour l'arrivée d'un gaz inerte tel que de l'azote.
Ces différents ajutages 4,5 et 6 sont reliés par des conduits 4', 5' et 6' à des moyens, non figurés, de stockage ou d'alimentation pour les différents additifs par le moyen de conduites passant par autant de sections de la pompe proportionnante 2, lesdites sections comportant les moyens appropriés, non figurés, pour procurer à chacun des additifs une vitesse d'écoulement, donc un débit déterminé.
Les parties le et lf du conduit sont faites d'un tube en matériau à très bon coefficient de transmissioncalorifique, par exemple un alliage métallique choisi dans une composition ayant une très bonne résistance à la corrosion.
La partie le du conduit a une section, une longueur et une tortuosité telles que, à l'issue de cette partie le du conduit, le mélange peut être considéré comme homogène au point de vue température, composition chimique et état biologique.
Au passage entre les parties le et lf du conduit débouche un ajutage 7 pour l'arrivée d'un composé assimilable par les bactéries de la population bactérienne présente dans l'échantillon et d'un indicateur d'oxydoréduction. L'ajutage 7 est relié à des récipients contenant séparément le composé assimilable et l'indicateur, par le moyen d'un conduit T passant par une section de la même pompe proportionnante 2.
La partie lf du conduit a une section, une longueur et une tortuosité telles que l'effluent, avec la vitesse qui lui a été imprimée par la pompe proportionnante et avec les débits qui ont été imprimés par la même pompe proportionnante aux différents additifs, met un temps déterminé à parcourir ladite partie lf.
L'extrémité de la partie lf du conduit est reliée par un élément de conduit lg à un élément de conduit lh plongé dans un bac thermostatique 8, dans lequel règne une température notablement plus élevée que dans le bac 3 et interdisant toute activité enzymatique à la population bactérienne de l'effluent.
L'élément de conduit lg comporte un ajutage 9 pour l'arrivée d'un solvant du produit coloré dans lequel s'est transformé l'indicateur d'oxydoréduction. L'ajutage 9 est relié à un récipient, non figuré, par le moyen d'un conduit 9' passant par une section de la même-pompe proportionnante 2. Les solvants utilisés sont choisis parmi les alcools tels que C2HsOH.
L'élément de conduit lh réalisé dans le même matériau que les parties de conduit le et lf, a une section, une longueur et une tortuosité telles que l'effluent met un temps déterminé à le parcourir.
L'élément de conduit lh est relié par un élément de conduit li à un dispositif débulleur 10 d'un modèle connu en soi, d'où sont issus un conduit 11 pour la phase gazeuse orientée vers le rejet et un conduit lj aboutissant à un décanteur 12 d'un modèle connu en soi.
Du décanteur sont issus une conduite 13 pour l'extraction et le transport des boues vers un rejet et un élément de conduite lm pour conduire la phase liquide à l'entrée d'un colorimètre enregistreur 14, d'un modèle connu en soi tant pour le colorimètre proprement dit 14 que pour l'enregistreur éventuellement distinct 14'.
L'élément de conduit lm se poursuit à l'issue du colorimètre par un élément de conduit ln aboutissant au rejet lb.
Le conduit 12 et les éléments de conduite lm et ln, afin d'assurer la continuité du déplacement des effluents transportés, passent par autant de sections de la pompe proportionnante 2.
Sur la fig. 2, on retrouve les mêmes éléments avec les mêmes références numériques, à l'exception de l'élément de conduit 1 h et du bac thermostatique 8 qui ont été remplacés par un dispositif mélangeur de référence 8' muni d'un ajutage 15 pour l'arrivée d'un produit inhibiteur de l'activité enzymatique de la population microbienne, produit tel que de l'acide sulfurique, et de l'ajutage 9.
Le fonctionnement de l'appareil est le suivant. La pompe proportionnante 2 comporte un nombre de sections de passage séparées suffisant pour mettre en mouvement l'échantillon et les différents additifs et reprendre la phase liquide et les boues à la suite du décanteur 11 afin de les mettre en mouvement, pour la phase liquide vers le colorimètre 13 et pour les boues vers le rejet.
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Le traitement de l'échantillon, préalablement à son admission à l'entrée du colorimètre enregistreur, est caractérisé par les phases suivantes:
— l'échantillon reçoit les additifs Na2S03 et CoCl2 dans des proportions telles que l'oxygène libre est entièrement éliminé et que le pH est fixé par exemple à 7,5 (milieu tamponné);
— l'effluent parcourt une partie du conduit le immergée dans un bac thermostatique où se trouve maintenue une température optimale pour l'activité enzymatique, température généralement fixée à 37°C par exemple; à l'issue de ce parcours, l'échantillon est homogène en température et composition chimique et biologique;
— l'échantillon reçoit alors l'addition par l'ajutage 7 d'un composé hydrocarboné assimilable par les bactéries, par exemple du lactose, et d'un indicateur d'oxydoréduction; l'indicateur choisi est le chlorure de 2,3,5-triphényltétrazolium ou TTC;
— l'échantillon parcourt alors une partie de conduit lf pendant un temps déterminé, par exemple 15 min, à la température choisie, dans des conditions de milieu telles que le pH reste constant (milieu tamponné) et la concentration en 02 reste nulle, et dans ces conditions le TTC est l'accepteur final d'électrons, ce qui place le dosage dans des conditions de reproductibilité.
Sous l'action des déshydrogénases, le chlorure de 2,3,5-triphényltétrazolium (TTC) est réduit en triphénylformazan (TF) suivant la réaction:
C6H5-C
+ 2h —> c6h5-c n-nh-c6h5
N=N-CeH5
+H + Cl
(incolore)
A l'issue de son parcours, la partie de conduit lf reçoit l'adjonction d'un solvant du triphénylformazan, par exemple du C2HsOH.
L'échantillon est ensuite orienté sur un dispositif assurant le blocage de la réaction enzymatique. Cela peut être obtenu soit par un choc thermique (fig. 1), soit par l'addition d'un composé inhibiteur tel que l'acide sulfurique (fig. 2).
Après un débullage, l'échantillon est alors dirigé sur un décanteur 12 où les boues, débarrassées du triphénylformazan rouge qui s'était fixé sur les particules solides, sont séparées et envoyées au rejet, et la phase liquide contenant tout le triphénylformazan résultant de l'activité enzymatique pendant le temps d'incubation dans la partie de conduit lf est orientée sur l'entrée du colorimètre enregistreur.
(rouge)
Ce procédé de dosage et le dispositif d'application permettent de mesurer l'activité enzymatique dans tous les systèmes de fermenta-25 tion, aérobie et anaérobie.
Ce procédé est particulièrement adapté à la détermination de la traitabilité des effluents industriels sur pilote de laboratoire.
Lorsqu'on équipe le dispositif d'un moyen de broyage des matières en suspension non biologiques, il permet d'enregistrer en 30 continu l'activité de la biomasse d'un aérateur.
Si le dispositif est placé en amont d'une station et alimenté par l'effluent à traiter et par la biomasse réceptrice, il permet de détecter les possibilités d'inhibition de la biomasse, par exemple par un produit toxique, et de la prévenir.
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1 feuille dessin

Claims (12)

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    REVENDICATIONS
    1. Procédé de mesure en continu de l'activité enzymatique de la biomasse des systèmes d'épuration biologique dans lequel:
    — on prélève de façon continue un échantillon de biomasse,
    — on place ledit échantillon en condition standard à la fois d'un milieu réducteur à pourcentage en oxygène nul et d'un milieu tamponné,
    — on fait circuler l'échantillon de biomasse dans les conditions de température optimale pour l'activité enzymatique pendant un temps déterminé suffisant pour que les conditions standard d'absence d'oxygène et de milieu tamponné soient réalisées de façon homogène,
    — on ajoute à l'échantillon un composé assimilable par la population bactérienne présente et un indicateur d'oxydoréduction dosable susceptible de se transformer par réduction en un produit dosable,
    — on déplace l'effluent à la même température optimale pendant un temps déterminé dit temps d'incubation,
    — on met fin à l'activité enzymatique de la population bactérienne,
    — on extrait le produit dosable à l'aide d'un solvant et, ainsi, on localise ledit produit dosable dans la phase liquide de l'échantillon,
    — on sépare les boues de l'échantillon par décantation, et
    — on mesure le produit dosable dans la phase liquide.
  2. 2. Procédé suivant la revendication 1 dans lequel l'indicateur d'oxydoréduction est le chlorure de 2,3,5-triphényltétrazolium qui est réduit en triphénylformazan.
  3. 3. Procédé suivant la revendication 2 dans lequel on met l'échantillon en conditions standard d'un milieu réducteur, à pourcentage d'oxygène nul, par une addition de sulfate de soude et de chlorure de cobalt.
  4. 4. Procédé suivant la revendication 2 dans lequel:
    — on déplace l'échantillon et on le fractionne à l'aide d'un gaz inerte dans des conditions de température optimale choisies, et
    — on met fin à l'activité enzymatique de la population bactérienne par un choc thermique en portant la température à une valeur déterminée supérieure à 65° C et en le maintenant à cette température pendant un autre intervalle de temps.
  5. 5. Procédé suivant la revendication 2 dans lequel :
    — on déplace l'échantillon et on le fractionne à l'aide d'un gaz inerte dans des conditions de température optimale choisies, et
    — on met fin à l'activité enzymatique de la population bactérienne par une modification de pH.
  6. 6. Procédé suivant la revendication 1 dans lequel on extrait le produit résultant et on le localise dans la partie liquide de l'effluent à l'aide d'un alcool.
  7. 7. Procédé suivant la revendication 1 dans lequel le composé assimilable par les bactéries est constitué par un sucre.
  8. 8. Procédé suivant la revendication 7 dans lequel le sucre assimilable par les bactéries est du lactose.
  9. 9. Procédé suivant la revendication 1 dans lequel on mesure le produit dosable dans la phase liquide par colorimetrie.
  10. 10. Procédé suivant la revendication 1 dans lequel on mesure le produit dosable dans la phase liquide par un procédé électrochimique du réactif d'oxydoréduction, avant ou après réduction.
  11. 11. Dispositif pour la mise en œuvre du procédé suivant la revendication 1 comprenant un premier conduit tubulaire à très bon coefficient de transmission de la chaleur, immergé dans un bain à une température choisie en fonction de la population bactérienne présente, ledit conduit comportant une première partie de longueur, section et tortuosité telles que ladite première partie constitue un mélangeur homogénéiseur alimenté, à l'aide d'une pompe proportionnante, en échantillon, en additifs réducteurs d'oxygène et en gaz inerte, ledit conduit comportant une seconde partie de longueur, section et tortuosité telles que le temps de parcours par l'échantillon, fonction du débit de la pompe proportionnante, est fixé en fonction du temps de génération de la population bactérienne considérée et, à la suite du premier conduit tubulaire, un second conduit tubulaire à
    très bon coefficient de transmission de la chaleur, immergé dans un bain à une température choisie supérieure à 65° C, le second conduit tubulaire étant pourvu à son début d'un ajutage pour l'arrivée d'un débit de solvant, ledit second conduit tubulaire étant suivi d'un décanteur muni de deux orifices d'évacuation, un premier orifice pour l'évacuation des boues extraites et un second orifice pour le passage de la phase liquide de l'échantillon dans un conduit aboutissant à un appareil de mesure.
  12. 12. Dispositif pour la mise en œuvre du procédé suivant la revendication 1 comprenant un premier conduit tubulaire à très bon coefficient de transmission de la chaleur, immergé dans un bain à une température choisie en fonction de la population bactérienne présente, ledit conduit comportant une première partie de longueur, section et tortuosité telles que ladite première partie constitue un mélangeur homogénéiseur alimenté, à l'aide d'une pompe proportionnante, en échantillon, en additifs réducteurs d'oxygène et en gaz inerte, ledit conduit comportant une seconde partie de longueur, section et tortuosité telles que le temps de parcours par l'effluent, fonction du débit de la pompe proportionnante, est fixé en fonction du temps de génération de la population bactérienne considérée et, à la suite du premier conduit tubulaire, un système de deux ajutages pour l'arrivée d'un débit de solvant et pour l'arrivée d'un produit arrêtant toute activité des bactéries dans l'échantillon, ledit système d'ajutage étant suivi d'un décanteur muni de deux orifices d'évacuation, un premier orifice pour l'évacuation des boues extraites et un second orifice pour le passage de la phase liquide de l'échantillon dans un conduit aboutissant à un appareil de mesure colorimétrique.
CH350078A 1977-04-01 1978-03-31 Process and device for the continuous measurement of the enzymatic activity of the biomass in biological purification systems CH634149A5 (en)

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