DE19630557C2

DE19630557C2 - Verfahren zum Nachweis von Antikörpern aus Körperflüssigkeiten durch eine Immunreaktion mit Gewebe-Transglutaminase (tTG) sowie die Verwendung von tTG in Diagnose und Therapie

Info

Publication number: DE19630557C2
Application number: DE19630557A
Authority: DE
Inventors: Detlef Dr Dr Schuppan; Walburga Dieterich; Tobias Ehnis
Original assignee: SCHUPPAN DETLEF PRIV DOZ DR DR
Current assignee: SCHUPPAN DETLEF PRIV DOZ DR DR
Priority date: 1996-07-18
Filing date: 1996-07-18
Publication date: 1998-07-02
Anticipated expiration: 2016-07-19
Also published as: NO990190D0; CA2260769C; HK1021025A1; PT912898E; PL331203A1; CN1138146C; DE59705683D1; PL189091B1; CA2260769A1; SK6799A3; SI9720044A; BR9710500B1; CN1225723A; GR990300020T1; CZ11799A3; IL128042A0; IL128042A; EP0912898B1; HUP0202779A3; SK284410B6

Description

Die Erfindung betrifft ein Verfahren zum Nachweis von Antikörpern aus Körperflüssigkeiten durch eine Immunreaktion mit Gewebe-Transglutaminase (tTG), deren immunreaktiven Sequenzen oder Analoga.

Das Verfahren kann zur Diagnose oder Therapiekontrolle von Erkrankungen dienen, die mit einer Immunreaktion gegen diese Substanzen einhergehen. Gegenstand der Erfindung ist deshalb insbesondere die Verwendung von tTG, deren immunreaktiven Sequenzen oder Analoga zur Diagnose oder Therapiekontrolle von chronisch entzündlichen oder Autoimmunerkrankungen, insbesondere der Sprue oder Zöliakie.

Die vorliegende Erfindung basiert auf der Erkenntnis, daß die Gewebe-Transgluaminase (tTG, EC 2. 3. 2. 13) das Autoantigen der Sprue bzw. der Zöliakie ist.

Die Zöliakie ist eine Erkrankung der Dünndarmschleimhaut mit Erstmanifestation vorwiegend im späten Säuglings- und Kleinkindalter. Tritt das entsprechende Krankheitsbild erst beim Er wachsenen auf, so wird sie als einheimische Sprue bezeichnet. Die Sprue geht mit einer ent zündlichen Veränderung der Mukosa und einer dadurch verursachten generalisierten Malab sorption einher. Sie reagiert meist morphologisch und klinisch auf eine Behandlung mit gluten freier Diät (vgl. Literaturstellen 1, 2).

Bei der als latente Sprue, bzw. Gluten-Sensitivität bezeichneten symptomfreien Ausprägung sollte zwischen einer mukosalen und einer klinischen Latenz unterschieden werden. Während bei der mukosalen Latenz von einer milden Schädigung der Mukosa ausgegangen wird, die durch Zugabe von Gluten verstärkt werden kann, können Personen mit einer klinischen Latenz alle Phasen der Mukosa-Schädigung entwickeln und dennoch symptomfrei bleiben.

Zwischen der Sprue und bestimmten Haupthistokompatibilitätskomplex (MHC)-Antigenen besteht eine enge Assoziation. Die Gene, die für die MHC-Antigene kodieren, sind auf dem kurzen Arm des Chromosoms 6 lokalisiert. Sie werden als humane Lymphozyten (HLA)-Anti gene A, -B, -C und -D bezeichnet. Die HLA-DQ und HLA-DR Allele (MHC II) scheinen eine besondere Rolle bei der Entwicklung der Sprue zu spielen (vgl. Literaturstellen 1, 2).

Als krankheitsauslösende Faktoren sind die Klebereiweiße (Glutene) von Weizen, Gerste, Roggen und z. T. Hafer bekannt, während die von phylogenetisch weniger verwandten Pflan zenarten wie Mais, Reis und Soja nicht pathogen sind. Unter den Glutenen wird den alkohol löslichen Prolaminen, speziell dem α-Gliadin, die Rolle des krankheitsauslösenden Agens zu geschrieben (vgl. Literaturstellen 1, 2). M. Szaboles et al. beschreiben in Acta Paediatrica Hungaria 28 (3-4), S. 215-227 (1984), daß die Glutene aufgrund ihres hohen Glutamingehaltes geeignete Substrate für Transglutaminasen sind.

Die Sprue tritt bevorzugt in Ländern aufs in denen Weizen als wichtige Nahrungsquelle dient (Europa, USA, Australien) und besitzt z. B. eine Inzidenzrate von 0,14/1000 Neugeborener in Dänemark, 0,7/1000 in Spanien, 1/1000 in Italien, 0,45/1000 in Deutschland und 2,42/1000 in Schweden (vgl. Literaturstellen 1, 2, 3).

Neuere Untersuchungen belegen jedoch, daß eine subklinische Ausprägung, d. h. eine morpho logische Veränderung der Mukosa ohne schwerwiegende Symptome, weit häufiger als bislang vermutet auftritt. So zeigte eine 1994 in Italien durchgeführte Studie eine Inzidenz von 3,28/1000 bei Schulkindern (vgl. Literaturstelle 4). Das Risiko einer latenten Sprue bei Verwandten 1. Grades von Sprue-Patienten liegt bei bis zu 50% (vgl. Literaturstelle 5).

Unter mehreren Hypothesen wird eine Interaktion zwischen genetischen Faktoren, Umweltfak toren und dem Immunsystem favorisiert.

In den Seren der Sprue-Patienten kommen Antikörpern der IgA- und der IgG-Klasse vor, die zum einen gegen Gliadin gerichtet sind, zum anderen gegen ein Autoantigen des Endomysiums, einem speziellen Bindegewebe, das u. a. die Kollagene I, III und V, elastische Fasern, nicht kollagene Proteine wie z. B. Fibronektin und Proteoglykane enthält.

Eine Dünndarm-Biopsie weist bei Sprue-Patienten charakteristische Schleimhautläsionen auf. Beginnend mit der Einwanderung intraepithelialer Lymphozyten (IEL) kommt es bei fort schreitender Sprue-Entwicklung zur Hyperplasie der Krypten sowie einer Atrophie der Villi, was zum typischen Erscheinungsbild einer flachen Mukosa führt. Der proximal gelegene Teil des Dünndarms ist dabei stärker betroffen als der distale Bereich (vgl. Literaturstelle 2).

Während bei allen symptomatischen Patienten eine flache Mukosa diagnostiziert wird, können bei der asymptomatisch verlaufenden, Patenten Sprue alle Phasen der Mukosa-Veränderung, vom Einwandern der IEL bis hin zur totalen Villus-Atrophie beobachtet werden (vgl. Literaturstelle 5).

Mit einer vorwiegend latenten Sprue einhergehend tritt gehäuft eine polymorphe Dermatose, die Dermatitis herpetiformis auf, wobei charakteristische subepiderrnale Blaschen mit granulä ren IgA-Ablagerungen in den dermalen Papillenspitzen zu beobachten sind. Dünndarmbiopsien zeigen eine unregelmäßige, mehr oder weniger stark geschädigte Mukosa.

Eine weitere gesicherte Assoziation ist zwischen der Sprue und dem Insulin-abhängigen Dia betes meffitus, Schilddrüsenerkrankungen, sowie einer selektiven IgA-Defizienz zu beobachten. Eine Sprue wurde auch in einigen Patienten mit Sjögrens Syndrom, seltener bei systemischem Lupus erythematosus, Enzephalopathien, Polymyositis und distaler Axonopathie beschrieben. Neben zahlreichen klinischen Begleiterscheinungen der Sprue, wie z. B. einer Anämie, die u. a. einer Vitamin B₁₂-Malabsorption zugeschrieben wird und einem Vitamin K-Mangel, auf den eine erhöhte Blutungsneigung zurückzuführen ist, spielt das stark erhöhte Risiko gastrointesti naler Malignome eine besondere Rolle. Bis zu 15% der Sprue-Patienten entwickeln, meist im Alter über 50 Jahren, neoplastische Erkrankungen, von denen etwa 50% auf intestinale T-Zell- Lymphome und weitere 25% auf Ösophagus-, Oropharynx- und Dünndarm-Tumore entfallen (vgl. Literaturstelle 1).

Die Dünndarm-Biopsie ist der Goldstandard für die Diagnose der Sprue und der Verlaufskon trolle unter glutenfreier Diät. Zunehmend gewinnen aber auch nicht-invasive Methoden der Diagnostik an Bedeutung, die auf immunologischen Markern beruhen. Seren können dabei im ELISA auf IgG- und IgA-Antikörper gegen Gliadin, sowie durch indirekte Immunfluoreszenz auf IgG- und IgA-Antikörper gegen Endomysium getestet werden. Während Antikörper gegen Gliadin nicht spezifisch genug für die Sprue sind, wird für die IgA-AK gegen Endomysium eine hohe Sensitivität und Spezifität (97-100%) berichtet. Für den Immunfluoreszenz-Nachweis werden Ösophagusschnitte von Primaten benötigt (vgl. Literaturstelle 6). Zur Zeit laufen Untersuchungen, die Endomysium-Antikörper auch auf Nabelschnurmaterial nachzuweisen (vgl. Literaturstelle 7). EP 0321988A1 beschreibt den Nachweis von IgA- Endomysiuraautikörpern auf Fasern der glatten Muskulatur.

Die Therapie besteht in der strikten Einhaltung einer lebenslangen glutenfreien Diät, wobei nicht nur Gluten enthaltende Produkte aus Weizen, sondern auch aus Roggen, Gerste und Ha fer ausgeschlossen werden müssen. Dies bedeutet für die Patienten gravierende Einschrän kungen sowohl der Essensgewohnheiten als auch der sozialen Interaktionen.

Sofern die Sprue rechtzeitig diagnostiziert und therapiert wird, besitzt sie eine gute Prognose. Jedoch sind aufgetretene Komplikationen häufig nicht gänzlich reversibel. Wird die Krankheit dagegen nicht erkannt und behandelt, so kann es durch Malabsorption zu schwerwiegenden Krankheitserscheinungen kommen. Letztendlich besteht das erhöhte Risiko einer Entwicklung eines intestinalen Lymphoms, sowie anderer gastrointestinaler Neoplasien.

Bei rechtzeitiger Diagnose und konsequenter Einhaltung einer glutenfreien Diät kann die Er krankung in Remission gehalten und damit auch das erhöhte Malignom-Risiko der Patienten auf den Normalwert gesenkt werden (vgl. Literaturstellen 8, 9). Es ist folglich von großem Interesse, einen geeigneten Nachweistest für die Sprue zu entwickeln. Da der Personenkreis mit einer latenten Sprue ebenfalls zur Risikogruppe gehört, sollten alle in Betracht kommenden Personen (vor allem Verwandte 1. Grades), letztendlich alle Schulkinder, wie dies in Italien zur Zeit erwogen wird, mit einem sensitiven, spezifischen, leicht durchführbaren und preiswerten Test untersucht werden.

Große Screening-Programme scheiterten an folgenden Problemen:

- Die invasiven Duodenal-Biopsien symptomfreier Personen sind unzumutbar und viel zu aufwendig.
- Ein auf Antikörpern gegen Gliadin beruhender ELISA-Nachweis ist aufgrund seiner gerin gen Spezifität kaum brauchbar.
- Der auf Primaten-Ösophagus basierende Immunfluoreszenz-Nachweis von Endomysium- Antikörpern der IgA-Klasse ist als generelle Screeningmethode zu aufwendig. Ferner ist die Beurteilung subjektiv und erlaubt nicht die Erfassung von Sprue-Patienten mit einer IgA-Defizienz (2% der Patienten).

Es existiert bisher kein nicht-invasiver, spezifischer, quantitativer, schnell, leicht und kosten günstig durchzuführender Nachweistest für die Sprue/Zöliakie und deren Therapie-Kontrolle.

Dieses Problem wird durch die Charakterisierung der tTG als Autoantigen der Sprue und die Verwendung von tTG in der Diagnostik und Therapiekontrolle der Sprue gemäß der vorliegenden Erfindung gelöst.

Des weiteren können durch die in den Patentansprüchen aufgeführten immunologischen Verfahren andere Erkrankungen/Symptome diagnostiziert und kontrolliert werden, welche mit einer Immunreaktion gegen tTG einhergehen. Der auf der tTG basierende erfindungsgemäß entwickelte ELISA-Nachweis von IgA-Antikörpern im Serum von Sprue-Patienten eignet sich aufgrund seiner hohen Sensitivität und Spezifität hervorragend zur Diagnostik und Therapie- Kontrolle der Sprue. Dies wird auch bei der Verlaufs-Kontrolle der behandelten Patienten deutlich (Titer-Abfall unter Therapie). Ein Vergleich der vorliegenden ELISA-Daten mit den Immunfluoreszenz-Auswertungen Dritter (Nachweis von IgA anti-Endomysium) zeigt eine gute Übereinstimmung. Unstimmigkeiten treten vor allem bei niedrigen Antikörper-Titern auf, was jedoch eher zu Lasten der bisher als Goldstandard geltenden indirekten Immunfluoreszenz geht. Dies ist u. a. bedingt durch die subjektive Auswertung und die unspezifischen Begleit reaktionen dieser Methode des Standes der Technik.

Der entsprechende, auf Antikörpern anderer Klassen beruhende Nachweis, aufgezeigt am Bei spiel der IgG-Antikörper, eignet sich zum Auffinden von Sprue-Patienten mit einer IgA-Defizi enz sowie zur Untersuchung anderer Erkrankungen, die mit einer Immunreaktion gegen die tTG einhergehen.

Eine weitere Verbesserung wird durch den Einsatz der aufgereinigten tTG aus Meer schweinchen, der humanen tTG, proteolytisch oder gentechnisch erhaltener immunreaktiver Sequenzen oder Analoga sowie synthetischer immunogener tTG-Peptide und Testsystem erwartet.

Die TGn (EC 2.3.2. 13) sind Enzyme, die Ca²⁺-abhängig einen Acyltransfer katalysieren, wobei die γ-Carboxamldgruppen von Peptid-gebundenen Glutaminresten als Acyl-Donoren agieren. Als Acyl-Akzeptoren dienen primär proteingebundene Lysinreste, so daß der Transfer in einer ε-(γ-Glutamyl-) Lysin-Bindung resultiert. Die Substratspezifität der TGn bezüglich der Acyl- Donoren ist sehr hoch (Abhängigkeit von der Aminosäure-Sequenz), wohingegen ein außer gewöhnlich breites Spektrum an Akzeptoren zur Verfügung steht (vgl. Literaturstelle 18). Die entstandenen kovalenten Peptidbindungen sind sehr stabil und proteaseresistent, wodurch sich eine erhöhte Beständigkeit der vernetzten Proteine gegenüber chemischen, enzymatischen oder physikalischen Einflüsse ergibt.

Mit dem weitverbreiteten Vorkommen verschiedener TGn in diversen Organen, Geweben, im Plasma und in interstitiellen Körperflüssigkeiten korreliert auch das Vorkommen von durch Transglutaminase modifizierten Proteinen im Blutgerinnsel, auf Zellmembranen, in der Horn schicht der Epidermis, in Haaren, Nägeln und in der extrazellulären Matrix (vgl. Literaturstelle 19). S.E. Bruce et al. beschreiben in Clinical Science (1985) 68, 573-579 den erstmaligen Nachweis von Transglutaminaseaktivität in humaner jejunaler Mucosa. G. Sharp et al. berichten in Cell Biochemistry and Function, 1988 (6), Heft 2, S. 137-141 über die Lokalisierung von Transglutaminase im Dünndarm von Ratten mittels Immunfluoreszenz. Die beschriebenen Transglutaminasen lassen sich durch ihre physikalischen Eigenschaften, ihre Lokalisation im Körper und ihre Primärstruktur unterscheiden.

Faktor XIII (FXIII), ein im Blut zirkulierendes Plasmaprotein, stellt die am besten charakteri sierte TG dar. Im Plasma liegt FXIII als Tetramer von 320 kDa vor, bestehend aus zwei kata lytischen a-Untereinheiten (je 75 kDa, mit 39% Homologie zur tTG) und zwei vermutlich sta bilisierenden b-Untereinheiten (je 80 kDa). Eine lediglich aus zwei a-Untereinheiten bestehende Variante findet sich u. a. in Plättchen, Makrophagen, Plazenta, Uterus und Prostata. Im Gegen satz zu den anderen TGn wird der als Proenzym vorliegende FXIII durch Thrombin aktiviert, indem ein 4 kDa Peptid am Aminoende der a-Untereinheit abgespalten wird. In Gegenwart von Ca²⁺ dissoziiert das Tetramer in das aktive a-Dimer und die zwei b-Untereinheiten. Die Kal ziumionen binden an die a-Untereinheiten und aktivieren das Enzym zu FXIIIa.

FxIIIa katalysiert die Quervernetzung zahlreicher Plasmaproteine, insbes. der Fibrinmono mere, ein entscheidender Schritt in der Blutgerinnung. Bei der Regulation der Fibrinolyse spielt FXIIIa durch das Vernetzen von α₂-Plasmin-Inhibitor mit der α-Kette des Fibrins eine wichtige Rolle. Ferner kann FXIIIa Fibronektin mit der α-Kette des Fibrins bzw. Kollagenen querver netzen (vgl. Literaturstelle 20).

Aus Epidermis-Zellen konnte die epidermale TG isoliert werden, die als Protransglutaminase mit 72 kDa durch chaotrope Agenzien oder Proteolyse in das aktive 50 kDa-Fragment über führt wird. Ihr wird Bedeutung bei der Quervernetzung von zytoplasmatischen oder Membran proteinen in der Epidermis zugeschrieben. In welchem Verhältnis die epidermale TG zur Haarfollikel-TG steht, die als Dimer aus zwei identischen Untereinheiten von je 27 kDa be steht, bleibt noch zu klären (vgl. Literaturstellen 19, 20).

Eine ebenfalls auf die Haut beschränkte TG konnte aus Keratinozyten gewonnen werden und liegt primär membrangebunden voL Die Membran-Verankerung der TG_K erfolgt über eine posttranslationale (thio-) Veresterung mit Palmitin-/oder Myristinsäure. Milder Trypsinabbau bewirkt eine Entfernung der Peptid-gebundenen Fettsäure, eine Reduktion des Molekularge wichts von 90 auf 80 kDa und die Solubilisierung des Enzyms (vgl. Literaturstelle 19).

Die Gewebe-TG (tTG), das der vorliegenden Erfindung zugrundeliegende Molekül, auch zelluläre, Erythrozyten-, endotheliale, zytoplasmatische, Leber- oder Typ II-TG genannt, ist ein Monomer mit einem Molekulargewicht von 75-85 kDa.

Die komplette Aminosäuresequenz mit 687 Resten wurde von der cDNA abgeleitet. Auf Pro tein-Ebene besteht eine 84%ige Homologie zwischen dem menschlichen Enzym und dem Enzym aus Mausmakrophagen, sowie eine 81%ige Homologie zwischen dem menschlichen und dem Meerschweinchen-Enzym Nukleotidaustausche zwischen den Spezies sind oftmals ohne Auswirkung auf die Aminosäuresequenz. Stark konserviert ist das aktive Zentrum mit einer ausgeprägten Protein-Homologie zwischen den drei Spezies (49 von 51 Resten sind identisch) und einem hohen Grad an Protein-Homologie (75%) zur a-Untereinheit des Faktor XIII (vgl. Literaturstellen 16, 19).

Es liegen weder ein Signalpeptid noch eine Glykosylierung vor, und trotz mehrerer Cystein reste existieren offenbar keine Disulfidbrücken (vgl. Literaturstelle 20). Fluoreszenz- Hybridisierungen lokalisierten das Gen für die humane Gewebe-Transglutaminase auf dem Chromosom 20q12 (vgl. Literaturstelle 21).

Obwohl der Mechanismus der Enzym-Ausschleusung noch unklar ist, gibt es eindeutige Be lege, daß die intrazellulär ubiquitär vorkommende tTG in der extrazellulären Matrix (EZM) wichtige Aufgaben übernimmt. Zudem wird die für die Aktivität der tTG erforderliche Ca²⁺ Konzentration unter physiologischen Bedingungen intrazellulär kaum erreicht, während im Extrazellulärraum dagegen ausreichend hohe Ca²⁺-Konzentrationen vorliegen (vgl. Literaturstelle 22).

Mehrere Untersuchungen belegen eine Assoziation von tTG mit dem EZM-Protein Fibronek tin. Neben Fibronektin (vgl. Literaturstellen 23, 24, 26) konnten auch die EZM-Moleküle Nidogen (vgl. Literaturstelle 27), das N-terminale Prokollagen in-Peptid (vgl. Literarurstelle 28), die Kollagene V und XI (vgl. Literaturstelle 29), Csteonectin (vgl. Literaturstelle 30), ein Mikrofibrillen-assoziiertes Glykoprotein (vgl. Literaturstelle 31), hochmolekulares Dermatan Sulfat-Proteoglykan (vgl. Literaturstelle 32) und das Lektin Galectin 3 (vgl. Literaturstelle 33) als spezifische Substrate für die tTG identifiziert werden.

Hinweise für eine wichtige Rolle der tTG an der Wundheilung kamen u. a. von Immunfluores zenz-Studien an kultivierten WI38-Zellen (embryonalen Lungenfibroblasten), die unter Nor malbediugungen keine extrazelluläre tTG-Aktivität aufiveisen, das Enzym jedoch nach künst licher Wundsetzung extrazellular ablagern. Dem möglicherweise passiven Austritt des Enzyms aus geschädigten Zellen schließt sich eine zunächst nicht-kovalente Bindung an die EZM, ins besondere an Fibronektin und fibrilläre Kollagene an. Dort ist das Enzym einige Stunden katalytisch aktiv (vgl. Literaturstelle 23). Am Rattenmodell wurde, ebenfalls nach künstlicher Wundsetzung, 5 Tage lang eine erhöhte tTG-Aktivität nachgewiesen (vgl. Literaturstelle 34). Auch bei der Inkubation von humanen Erythrozytenlysaten mit Plasma konnte eine starke Affinität der freigesetzten tTG an Fibronektin demonstriert werden (vgl. Literaturstelle 35). Alle Befunde deuten daraufhin, daß die an die EZM gebundene tTG eine zentrale Rolle in der frühren Phase der Wundheilung übernimmt, insbes. zusammen mit Faktor XIIIa bei der Fibrin- Stabilisierung mitwirkt und durch ein Quervernetzen von extrazellulären Proteinen eine Schutzschicht und ein stabiles adhäsives Substrat um die geschädigten Zellen bildet (vgl. Literaturstelle 23). Eine interessante Hypothese sieht in der Bindung der tTG an extrazelluläres Fibronektin bei pathologischen Situationen, in denen es zum Austritt von tTG aus dem Gewebe kommt, eine Schutzreaktion der Zelle, um gefährliche Effekte von Fremdproteinen abzuwehren (vgl. Literaturstelle 35).

Bisher konnten in Vertebraten keine Enzyme nachgewiesen werden, die in der Lage sind, die von der tTG katalysierten, überaus stabilen Quervernetzungen der Proteine zu spalten. In die sem Zusammenhang konnte zunehmend eine Bedeutung der tTG bei der Apoptose, d. h. dem programmierten Zelltod, aufgezeigt werden. Im Gegensatz zur Nekrose (ungeregelte Zellyse) durchlaufen die Zellen bei der Apoptose ein physiologisches Suizid-Programm, das einen akti ven Metabolismus und eine gezielte Proteinsynthese benötigt und immunologisch unauffällig verläuft. Apoptose erfolgt während der Embryonalentwicklung, der Metamorphose, bei Hor mon-induzierten Atrophien, beim Tumorwachstum und der geregelten Immunantwort (Immuntoleranz). Sie reguliert die Zellzahl durch Eliminierung geschädigter oder potentiell schädlicher Zellen. Apoptotische Zellen zeichnen sich durch intakte Crganellen und Plasma membranen, eine sigiurikante Volumenverminderung, typische Chromatinkondensation und letztendlich eine Fragmentierung in die sogenannten Apoptosekörper aus (vgl. Literaturstelle 36). Bei Beginn der Apoptose findet eine Induktion und Aktivierung der tTG mit vermehrter Ausbildung einer unlöslichen Proteinhülle statt. Dieses Phänomen geht auch mit einer Fixierung des Zytoskeletts durch tTG einher und verhindert so das Austreten intrazellulärer Bestandteile in den Extrazellulärraum mit einer konsekutiven Immunantwort (vgl. Literaturstelle 37).

Eine Stimulation der tTG-Transkription und -Expression durch den transformierenden Wachs tumsfaktor β1 (TGF-β1) wurde an Ratten-Hepatomzellen nachgewiesen. Die Induktion der tTG mit einer darauffolgenden gesteigerten Quervernetzung zellulärer Proteine könnte u. a. der durch TGF-β1 verursachten Wachstumssuppression und Apoptose-Induktion zugrunde liegen (vgl. Literaturstelle 38). Interessanterweise spielt TGF-β1 eine zentrale Rolle bei der Wundheilung und Fibrosierung. Eine ebenfalls steigernde Wirkung auf die tTG-RNA und Proteinexpression mit anschließender Apoptose, konnte durch Inkubation von Ratten- Tracheobronchialzellen mit Retinolsäure erreicht werden (vgl. Literaturstelle 39). Humane Leukämiezellen zeigten jedoch zellspezifische Unterschiede in der tTG-Induktion durch Retinolsäure (vgl. Literaturstelle 40).

Ferner war die Expression der zytosolischen tTG umgekehrt mit dem Metastasierungspotential von Hamster-Fibrosarkom und Maus-Melanomzellen korreliert (vgl. Literaturstelle 41). In den metastasierenden Hamster-Fibrosarkomzellen, nicht jedoch im Normalgewebe, wurde eine inaktive Form der tTG nachgewiesen. Die inaktive Variante (ca. 120 kDa) war deutlich größer als die aktive tTG und konnte durch Behandlung mit Trypsin oder Thrombin in die aktive Form überführt werden. Ob es sich hier um eine transkriptionell oder post-transkriptionell fehlgeleitete Expression handeln, ist noch unklar (vgl. Literaturstelle 42). Da aber auch eine positive Korrelation zwischen tTG-Aktivität und Metastasierungs-Potential von humanen Melanom- (vgl. Literaturstelle 43), und Ratten-Kolonkarzinom-Zellen beschrieben wurde, müssen weitere Studien zeigen, ob die Vernetzung der den Tumor umgebenden EZM durch tTG, diesen eventuell auch vor dem Angriff des Immunsystems schützen kann (vgl. Literaturstelle 44).

Interessant ist auch die Aktivitätssteigerung der Pankreas-Phospholipase A₂ (PLA₂) des Schweins durch posttranslationale, tTG-vermittelte kovalente Vernetzung von PLA₂ mit Polyaminen, welche intrazellulär in hohen Konzentrationen vorliegen, vor allem in sich schnell teilenden Zellen. Die durch tTG aktivierte PLA₂ könnte den Membran-Stoffwechsel rasch pro liferierender Zellen und die Arachidonsäure-Kaskade Stimulieren (vgl. Literaturstelle 45).

Desweiteren konnte die tTG als ein neues Mitglied der GTP bindenden Proteine identifiziert werden, wobei jedoch keine Homologien zu den bisherigen bekannten G-Proteinen bestehen. Eine Aktivierung durch den α₁-adrenergen Rezeptor stimuliert die Bindung von GTP an tTG (vgl. Literaturstelle 46).

Ferner werden erfindungsgemäß Wege aufgezeigt, auf denen von tTG abgeleitete Therapieformen eingesetzt werden können. So ist es möglich, tTG, dessen immunreaktive Sequenzen oder Analoge bzw. von tTG abgeleitete immunogene Peptide zur Erzeugung einer oralen Toleranz bei der einheimischen Sprue/Zöliakie oder anderer Erkrankungen/Symtome einzusetzen, die mit einer Immunreaktion gegen tTG einhergehen.

Dies erfolgt durch Stimulation spezifischer Suppressorzellen oder durch Induktion einer klinischen Anergie autoreaktiver Immunzellen.

Die orale Toleranz wird wesentlich durch das Immunsystem des Darmes bestimmt, das eine systernische Immunantwort gegen resorbiertes Antigen verhindert, welches der enzymatischen Verdauung im Darm entging. Neben einer Stimulation der IgA-Sekretion, die eine weitere Aufnahme der Antigene durch die Mukosa verhindern soll, werden insbes. Suppressor-T-Zel len aktiviert, die zur systemischen Toleranz beitragen (vgl. Literaturstelle 47). Orale Toleranz wird zum einen durch die orale Zufuhr des Autoantigens erreicht, zum anderen existiert ein sog. "Bystander-Effekt": sofern das die Krankheit auslösende Autoantigen nicht bekannt ist, kann in einigen Fällen ein anderes Antigen, das im Zielorgan mit dem Immunsystem in Kontakt kommt, zur oralen Therapie verwendet werden. Dieses Antigen ist dann in der Lage, lokal die Anügen-spezifischen Suppressor-T-Zellen zu stimulieren und dadurch eine systemische Immunantwort zu unterdrücken (vgl. Literaturstelle 47). Erst bei höherer Antigen-Dosis wird eine Anergie autoreaktiver T-Zellen ausgelöst (vgl. Literaturstelle 48).

Die orale Toleranz wird in letzter Zeit als praktische Behandlungsmethode von diversen Auto immunerkrankungen gesehen. So sind im Tiermodell bei der experimentellen autoimmunen Thyroiditis (vgl. Literaturstelle 49), der experimentellen autoimmunen Enzephalomyelitis (vgl. Literaturstelle 50), der Kollagen-induzierten Arthritis (vgl. Literaturstelle 51) und der experimentellen Autoimmun-Uveoretinitis (vgl. Literaturstelle 52) durch orale Zufuhr der entsprechenden Antigene (z. T. aus unterschiedlichen Spezies) Erfolge erzielt worden (vgl. Literaturstelle 53). Es konnte gezeigt werden, daß die einmalige orale Zufuhr einer hohen Antigen-Dosis eine Anergie (funktionelle Inaktivität) autoreaktiver CD4⁺ T-Zellen bewirkt, während die mehrmalige Gabe kleinerer Dosen die erwünschte aktive Suppression autoreaktiver T-Zellen zur Folge hat (vgl. Literaturstelle 48).

An Patienten mit rheumatoider Arthritis konnte durch dreimonatige orale Gabe von Kollagen II aus Huhn (0,1 mg im ersten Monat, 0,5 mg in den folgenden 2 Monaten) nach Aussetzen der oralen Antigen-Zufuhr eine zweimonatige nach Absetzen der Therapie anhaftende Antigen spezifische Immunsuppression und damit eine Unterdrückung der Autoimmunerkrankung erreicht werden, was durch eine deutliche Besserung, z. T. sogar ein Abheilen der Erkrankung belegt wurde (vgl. Literaturstelle 54).

Da die tTG das Autoantigen der Sprue darstellt, besteht die Möglichkeit, dieses in seiner Gesamtheit bzw. dessen immunreaktive Epitope (proteolytisch oder gentechnisch hergestellte Sequenzen, Analoga oder synthetische Peptide) zur oralen Therapie einzusetzen. Aufgrund des hohen Homologiegrades zur tTG aus anderen Organismen (z. B. Maus, Meerschweinchen) und der Kreuzreaktivität autoantigener Epitope ist auch eine orale Therapie mit tTG bzw. dessen immunreaktiver Epitope anderer Spezies denkbar.

Aufgrund der erhöhten Immunreaktion anderer Erkrankungen mit der tTG (z. B. andere chro nisch entzündliche Darmerkrankungen, autoimmune Hepatiden) ist auch bei diesen Krankhei ten ein Einsatz der tTG bzw. deren immunreaktiver Epitope zur oralen Therapie erfolgverspre chend.

Die mit der Erfindung erreichten Vorteile bestehen insbesondere in einem nicht-invasiven, hoch spezifischen, gegen das direkt mit der Erkrankung assoziierte Agens gerichteten Nachweistest für die Sprue und deren Therapie-Kontrolle. Darüberhinaus besteht der große Vorteil des ent wickelten Tests in der schnellen, leicht und kostengünstigen Durchführbarkeit und der Stan dardisierbarkeit zwischen verschiedenen Labors. Der Test ermöglicht dadurch ein effizientes Screening der Bevölkerung auf Antikörper, gerichtet gegen die tTG.

Die Möglichkeit der quantitativen Auswertung der Test-Daten ist zudem durch deren Objekti vität gegenüber der subjektiv geprägten Auswertung einer Immunfluoreszenz überlegen. Immunfluoreszenz-Auswertungen werden außerdem, vor allem bei niedrigen Titern, durch unspezifische Begleitreaktionen erschwert. Durch den Einsatz des spezifischen Autoantigens im Testsystem können die bei der Immunfluoreszenz auf Ösophagusmaterial von Primaten bzw. Nabelschnüren unspezifischen Reaktionen weitgehendst ausgeschaltet werden.

Da der Test sowohl auf Antikörper der IgA- als auch anderer Antikörper-Klassen anwendbar ist, werden auch Sprue-Patienten mit einer IgA-Defizienz erfaßt. Der auf Antikörpern gegen tTG beruhende Nachweis eignet sich ebenso zum Auffinden, zur Untersuchung und zur Thera piekontrolle anderer Erkrankungen, die mit einer Immunantwort gegen die tTG einhergehen. Desweiteren besteht durch die Identifizierung der tTG als Autoantigen der Sprue die Möglich keit, dieses in seiner Gesamtheit bzw. dessen immunreaktive Epitope (proteolytisch oder gen technisch hergestellte Sequenzen, Analoga oder synthetische Peptide) zur oralen Therapie der Sprue, sowie anderer Erkrankungen, die durch eine Immunantwort gegen die tTG gekenn zeichnet sind, einzusetzen.

4.1. Ausführungsbeispiele Beispiel 1 Isolierung und Charakterisierung des Autoantigens 1.1. Immunfluoreszenz, APAAP-Färbungen

Die Färbungen wurden auf verschiedenen, in 100% Methanol über 2 min bei -20°C fixierten Zellinien, durchgeführt.

Beim Immunfluoreszenz-Nachweis wurden die Präparate mit Sprue- bzw. Kontrollseren inku biert, gewaschen und mit einem TRITC-markierten anti-human-IgA aus Kaninchen detektiert (vgl. Literaturstelle 10).

APAAP-Markierungen wurden nach Inkubation der Zellen mit den Sprue-Seren, Waschen und der darauffolgenden Detektion mit dem APAAP-Komplex durchgeführt (11).

Dabei zeigten HT1080 (humane Fibrosarkom-Zellen), W138 (humane embryonale Lungen fibroblasten), Hep1 und HepG2 (Hepatokarzinom-Zellen) mit den Patientenseren eindeutig positive, zytoplasmatische Signale, wogegen Normalseren oder auch eine Vorbehandlung mit humanem IgA keine Markierung zeigten. Humane Vorhautfibroblasten, humane Rhab domyosarkom (RD)-/Ratten-Ito-/Ratten-Morris-Hepatom und Hund-MDCK-Zellen zeigten nur sehr schwache bis negative Reaktionen.

1.2. Metabolische Zellmarkierung und Immunpräzipitation des Autoantigens

Die Charakterisierung und Isolierung des Autoantigens wurde aus HT1080 Zellen durchge führt.

Die Zellen wurden in Dulbecco's modifiziertem Eagle Medium (DMEM, Glbco) mit L-Alanyi- L-Glutamine, 10% fötalem Kälberserum (FKS, Gibco), 100 U/ml Penizillin 100 µg/ml Streptomyzin (Seromed) bei 37°C und 8% CO₂ kultiviert. Zur metabolischen Markierung wurden die Zellen in Kulturschalen mit 5 cm² Durchmesser überführt und bei Erreichen einer ∼90%-igen Konfluenz 2 h in Methionin- und FKS-freiem Medium gehalten, bevor dieses gegen 3 ml FKS-freies, ³⁵S- Methionin (0,2 mCi, Expre³⁵S³⁵S, NEN-Dupont) enthaltendes Medium ausgetauscht wurde. Nach 16-20-stündiger Inkubation wurde der Überstand abge nommen. Die Zellen wurden mit Phosphatpuffer (PBS, Seromed) gespült und anschließend in 3 ml Lysepuffer (50 mM Tri-HCl, 150 mM NaCl, 0,5% Triton X-100, 0,5% nichtionisches Detergenz IGEPAL CA-630 [Sigma], Proteaseinhibitor Complete®[Boehringer], pH 7,5) lysiert. Im Anschluß wurde sowohl mit dem Medium als auch dem Zellysat eine Immunpräzi pitation mit CNBr-aktivierter Sepharose 4B (Pharmacia) durchgeführt.

Die Aktivierung und Bindung an die Sepharose erfolgte nach Herstellerangaben. Nach dem Quellen und Waschen in 1 mM HCl, pH 2,5 wurde die CNBr-aktivierte Sepharose in 0,1 M NaHCO₃, 0,5 M NaCl, pH 8,3 , mit einem gegen humanes IgA gerichteten Antikörper aus Kaninchen (Dianova, 2,4 mg Antikörper/ml Sepharose) über Nacht bei 4°C inkubiert. Nicht gebundene Antikörper wurden durch Waschen mit dem Bindungspuffer entfernt, nicht besetzte Bindungsstellen durch Zugabe von 1 M Ethanolamin, pH 9,0, bei Raumtemperatur 2 h abge sättigt. Danach wurde die Sepharose 3×alternierend (je 10×Vol.) mit 0,1 M Natriumacetat, 0,5 M NaCl, pH 4,0 , und 0,1 M Tris-HCl, 0,5 M NaCl, pH 8,0 , gespült. Es folgte eine Inku bation der Sepharose mit Seren von Sprue-Patienten bzw. gesunden Personen (0,5 ml Se rum/ml Sepharose) bei 4°C über Nacht in Bindungspuffer (50 mM Tris-HCl, 150 mM NaCl, 1 mM CaCl₂, 1 mM MgCl₂, pH 8,0). Überschüssige Serum-Antikörper wurden durch 3×Spülen mit Bindungspuffer entfernt.

Je 1 ml HT1080-Medium oder Zellysat (ca 5×10⁴ Zellen) der metabolisch markierten Zellen wurden 30 min bei Raumtemperatur mit 50 µl C14B-Sepharose (Pharmacia) vorirkubiert, um unspezifisch bindende Proteine zu entfernen. Nach Abzentrifugieren (10 000×g, 5 min, 4°C) wurden die Überstände mit je 50 µl der Sepharose, an die zuvor IgA der Patienten bzw. Kon trollpersonen gebunden wurde, über Nacht unter Schütteln bei 4°C inkubiert. Dann wurden die Sepharose-Pellets je 3× mit 1 ml Waschpuffer (10 mM Tris-HCl, 1% IGEPAL CA-630 [Sigma], 0,5% Natriumdesoxycholat, 0,1% Natriumlaurylsulfat, CompleteOR[Boehrnger], pH 8,0) gewaschen, gefolgt von 1 ml 10 mM Tris-HCl, pH 8,0. Danach wurden die Pellets in SDS-Probenpuffer aufgenommen, bei 95°C 5 min unter reduzierenden oder nicht reduzieren den Bedingungen inkubiert, im 10-12,5% SDS-Polyacrylamidgel aufgetrennt (vgl. Literaturstelle 12) und in der Autoradiographie nachgewiesen (Abb. 1).

Das gebundene hochmolekulare Protein aus dem Medium erwies sich bei weiteren Untersu chungen als Fibronektin, welches u. a. unspezifisch an die Scpharose gebunden wird. Eine zellassoziiertes Protein von 85 kDa konnte jedoch mit allen 30 bisher so eingesetzten Sprue-Seren präzipitiert werden, während dies mit 15 Kontrollseren, darunter Normalseren, Seren von Patienten mit Colitis Ulcerosa und Sjögren-Syndrom, nicht möglich war. Hieraus wurde gefolgert, daß dieses Protein das wesentliche Autoantigen der Sprue repräsentiert. Der autoradiographisch sichtbaren 85 kDa-Bande wurde in einer Proteinfärbung der Gele mit Silbernitrat (vgl. Literaturstelle 13) eine scharfe Proteinbande zugewiesen.

1.3. Isolierung und Aufreinigung des 85 kDa Autoantigens

Zur Isolierung größerer Mengen des Autoantigens wurden insgesamt 65 Kulturschalen (je 175 cm²) der HT1080 Zellen (etwa 10⁹ Zellen) kultiviert. Kurz vor Erreichen der Konfluenz wurde das Medium gegen FKS-freies Medium ausgetauscht, gefolgt von einer Inkubation über wei tere 16-20 h im CO₂-Inkubator. Die Lyse bzw. Immunpräzipitation erfolgten wie oben be schrieben. Das Sepharosepellet wurde in insgesamt 4,5 ml SDS-Probenpuffer mit 2% DL- Dithiothreitol (Sigma) 5 min bei 95°C inkubiert, um gebundene Proteine zu lösen und an schließend im analytischen SDS-Polyacrylamidgel überprüft.

Zur weiteren Aufreinigung des Autoantigens wurde das Immunpräzipitat über eine Elutions elektrophorese mit einer Prep Cell (Model 491 BIO-RAD) wie folgt aufgetrennt:
Auf ein Rundgel (Außen-Durchmesser 3 cm), bestehend aus 6,5 cm Trenngel (8% Polyacryl amid, pH 8,8) und 1,5 cm Sammelgel (4% Polyacrylamid, pH 6,8) wurden die 4,5 ml des Proteingemisches aufgetragen und elektrophoretisch aufgetrennt. Die einzelnen Proteine wur den im Elutionspuffer (25 mM Tris-HCl, 0,1 M Glycin, 0,01% SDS, pH 8,3) in Fraktionen a 1,2 ml (0,8 ml/min) gesammelt. Die einierten Fraktionen wurden in der SDS-PAGE kon trolliert und die das gewünschte Protein enthaltenden Fraktionen (etwa 15 ml) vereinigt und mit Hilfe einer Ultrafiltration (Amicon Centriprep-50 bei 1000×g) auf circa 1 ml Gesamtvo lumen aufkonzentriert.

1.4. Protease-Verdau des Autoantigens

Unter mehreren getesteten Proteasen wurde die Endoproteinase Asp-N (sequencing grade, Boehringer Mannheim) als zur Fragrnentierung geeignet ermittelt, da sie ein weitestgehend reproduzierbares Spaltmuster mit relativ gut trennbaren Fragmenten ermöglichte. Die Enzym zu-Substratkonzentration wurde auf 1 : 100 eingestellt und der Verdau über 30 min bei 37°C durchgeführt.

1.5. Transfer auf PDVF-Membran

Nach Verdau des aufgereinigten Antoantigens wurden die Peptidfragmente auf einem präpara tiven 10% Tricine-Gel aufgetrennt (14) (Abb. 2) und bei 4°C im Semi-Dry-Fastblot-Verfahren unter Verwendung graphithaltiger Elektrodenplatten (Fastblot B32/33, Biometra) auf eine PVDF-Membran (Polyvlnylidendifluorid, Immobilon^TM, Millipore) transferiert. Dazu wurden folgende Schichten auf die Anodenplatte gelegt 1.) ein Filterpapier, getränkt in Anodenpuffer 1 (300 mM Tris-HCl, 20% Methanol, pH 10,4), 2.) ein Filterpapier, getränkt in Anodenpuffer 2 (30 mM Tris-HCl, 20% Methanol, pH 10,4), 3.) die PVDF-Membran, akriviert in Methanol und präequilibriert in Anodenpuffer 2, 4.) das Tricine-Gel, 5.) zwei Filterpapiere, getränkt in Kathodenpuffer (25 mM Tris-HCl, 40 mM ε-Amino-n-Capronsäure, 20% Methanol, pH 9,4), 6.) die Kathodenplatte. Der Transfer wurde 35 min bei 180 mA durchgeführt.

Die PVDF-Membran wurde daraufhin in 0,1% Coomassie Blue Serva R-250, 50% Methanol für 5 min gefärbt, mit 50% Methanol, 10% Essigsäure entfärbt, gründlich mit destilliertem Wasser gewaschen und luftgetrocknet. Charakteristische Banden des verdauten Autoantigens bei 10 kDa, 14 kDa, 16 kDa und 25 kDa wurden sorgfältig ausgeschnitten und N-termal an sequenziert.

1.6. Edman-Abbau (vgl. Literaturstelle 15)

Die Sequenzierung in einem Applied Biosystems 4778-Sequenator ergab drei Aminosäure- Sequenzen, welche mit der Swiss-Prot 31 Datenbank (von PC/GENE, IntelliGenetics) vergli chen wurden. Daraus konnte bei minimaler Diskordanz, eine eindeutige Zuordnung der drei Fragmente zur humanen Gewebe-Transglutaminase (tTG, EC 2.3.2. 13, Protein-Glutamin Gamma-Glutamyltransferase) gemacht werden; die Angaben erfolgen im "one letter code", X bedeutet keine Identifizierung:
t-Transglutaminase: 28' REKLVRRRGQPEW 10 kDa-Fragment: REKLVVRRGQPF(S)
t-Transglutaminase: 581' DLYLENPEIKIRILG 14 kDa-Fragment: DLYLENPEIXIXILG
t-Transglutammase: 438' DITHTVKYPE 16 KDa-Fragment: DITLTYQYP(V).

Dem 25 kDa-Fragment konnte keine eindeutige Sequenz zugeordnet werden, da es sich dabei um ein Peptidgemisch handelt.

Beispiel 2 Bestätigung der Gewebe-Transglutaminase (tTG) als Sprue-Autoantigen 2.1. Immunpräzipitation der tTG vom Meerschweinchen

Bei kommerzieller Verfügbarkeit und einer Sequenz-Homologie (< 80%) zur humanen tTG wurde die tTG aus der Leber des Meerschweinchens (Sigma) zunächst gelelektrophoretisch aufgetrennt, um dessen Reinheit zu überprüfen. Die tTG stellt dabei neben mehreren anderen Proteinen mit ca 50% eine der Hauptbanden dar.

Obwohl sich die humane tTG mit 687 Aminosäuren nur geringfügig vom Meerschweinchen protein mit 690 Aminosäuren unterscheidet, besitzen die beiden Proteine ein sehr unterschied liches Laufverhaften im SDS-Polyacrylamidgel. Während das Protein tierischen Ursprungs er wartungsgemäß bei 75-80 kDa erscheint, wandert das humane Protein deutlich weniger schnell und täuscht, wie auch in der Literatur beschrieben, trotz offenbar fehlender N-Glykosylierung ein apparentes Molekulargewicht von 85 kDa vor (vgl. Literaturstelle 16).

Die Reakrivität des menschlichen Auto-Antikörpers aus Sprue-Seren mit der Meerschwein chen-tTG wurde in einer Immunpräzipitation getestet. Dazu wurden 4µg tTG (Sigma) in 500 µl Lysispuffer, 0,5% Rinderserumalbumin mit an 4B-Sepharose gekoppeltem Sprue-IgA bei 4°C über Nacht geschüttelt, gewaschen, in SDS-Probenpuffer unter reduzierenden Bedingungen gekocht und im 10% Polyacrylamidgel aufgetrennt (s. 4.1.2.). Hier zeigte sich eine spezifische Präzipitation der erwarteten Bande (M_r 80 kDa) nicht aber der Verunreinigung.

2.2. Bestätigung der tTG als Autoantigen im Westernblot

Nach Auftrennung von 2 µg der tTG aus Meerschweinchen im SDS-Gel und Transfer auf Nitrozellulose wurde der Blot bei 4°C in PBS, 2% fettarmen Magermilchpulver, 0,3% Tween 20, pH 7,3 über Nacht blockiert. Es folgten eine einstündlge Inkubation mit Sprue-Serum (1/200) in demselben Puffer, drei Waschschritte und eine einstündige Inkubation mit an alkalischer Phosphatase gekoppelten Antikörpern aus Kaninchen gegen humanes IgA (1/500). Die Blots wurden in PBS gewaschen und mit Nitro Blue Tetrazolium und 5-Brom-4-Chlor-3- Indolylphosphat als Substrat entwickelt (vgl. Literaturstelle 17).

Die 75-80 kDa-Bande ergab ein eindeutiges positives Signal mit dem Sprue-Serumni, als weite rer Beweis dafür, daß die Seren von Sprue-Patienten Antikörper der IgA-Klasse gegen die tTG enthaften, während Kontrollseren kein Signal ergaben.

2.3. Bestätigung der tTG als das Endomysium-Autoantigen in der indirekten Immunfluoreszenz

Ösophagus-Gewebeschnitte von Primaten (Euroimmun, Deutschland) wurden zum indirekten Nachweis der IgA-Antikörper gegen Endomysium in Sprue-Seren, bzw. deren Inhibition durch tTG verwendet. Nach Vorinkubation von 10 µl des 1/320 in PBS verdünnten Patientenserums mit 0,5 oder 10 µg tTG aus Meerschweinchen (Sigma) bzw. 10 µg BSA (Sigma) über 1 h bei Raumtemperatur, erfolgte dessen Inkubation mit den Ösophagus-Schnitten 1 h bei Raumtem peratur in feuchter Atmosphäre. Zur Positiv- bzw. Negativ-Kontrolle dienten Sprue-Serum (1/320) bzw. Seren von Gesunden (1/50). Nach dreimaligem Waschen der Schnitte in PBS/ 0,2% BSA und Lufttrocknen wurde die Detektion des Autoantigens mit einem TRITC- markierten, gegen humanes IgA gerichteten, Antikörper aus Kaninchen (Dianova), 1/50 in PBS verdünnt, 1 h bei Raumtemperatur durchgeführt. Überschüssige Antikörper wurden durch sukzessives Waschen mit PBS/0,2% BSA, PBS und destilliertem Wasser entfernt.

Das Patientenserum zeigte eine deutliche Anfärbung der EZM durch die Antikörper der IgA- Klasse, die durch Zugabe von steigenden Konzentrationen an tTG inhibiert wurden, nicht je doch durch Vorinkubation mit BSA. Die Kontrolle mit Serum von Gesunden zeigte keinerlei Anfärbung der Ösophagus-Schnitte.

Beispiel 3 3.1. Entwicklung eines Sprue-spezifischen EISA mit IgA-Antikörpern zur Diagnostik und Verlaufskontrolle der Sprue

In Polystyrol-Mikroplatten (Greiner Labortechnik, 96 Wells) wurde pro Vertiefung 1 µg Meer schweinchen-Transglutaminase (Sigma T-5398) in 100 µl PBS pipettiert und 2 h bei 37°C unter leicht rotierenden Bewegungen inkubiert. Nicht gebundene tTG wurde durch Spülen mit PBS (3×200 µl) entfernt, freie Bindungsstellen der Vertiefungen wurden mit 1% Rinderserum albumin (Sigma) in 250 µl PBS über Nacht bei 4°C blockiert. Nach Waschen mit PBS/0,1% Tween-20 (3×200 µl) wurden die Vertiefungen mit sequentiellen Serum-Verdünnungen in PBS/0,1% Tween-20 (100 µl) für 1 h bei Raumtemperatur unter leicht rotierenden Bewe gungen inkubiert, mit PBS/0,1% Tween-20 (3×200 µl) gewaschen und daraufhin mit einem Peroxidasekonjugierten, gegen humanes IgA gerichteten Antikörper aus Kaninchen (Dianova) (1/400 in 100 µl PBS/0,1% Tween-20) 1 h bei Raumtemperatur inkubiert. Nach Waschen mit PBS (3×) erfolgte eine 30 min Inkubation bei Raumtemperatur im Dunkeln mit je 200 µl 0,1M Citratpuffer, 17,6 mM H₂0₂, 5,5 mM o-Phenylendiaminhydrochlorid (Sigma), pH 4,2 und die anschließende Detektion des gebildeten Farbstoffs im ELISA-Reader (MRX, Dynatech Laboratories) bei 450 nm.

Getestet wurden 20 Seren von Sprue-Patienten vor und nach Therapie mit Gluten-freier Diät, d. h. in der aktiven und weniger aktiven Phase der Erkrankung. Das Testsystem erwies sich als hoch sensitiv, mit einer guten Korrelation der Werte zur aktiven Phase der Sprue. Die Thera pie-Erfolge durch Einhalten einer Diät spiegeln sich in einer Abnahme der IgA-Antikörper ge gen die tTG wider. Die große Spezifität zeigt sich in der geringen Extinktion (Hintergrund- Level) der Kontrollseren von Gesunden, Patienten mit Colitis ulcerosa, Leberzirrhose, diversen Tumoren, Sjögrens Syndrom u.v.m (Abb. 3).

3.2. Entwicklung eines ELISA mit Antikörpern anderer Klassen zur Diagnostik und Verlaufskontrolle der Sprue am Beispiel der IgG-Antikörper

Da ca 2% der Sprue-Patienten eine IgA-Defizienz besitzen, wurden die Seren auf ihre Sensiti vität und Spezifität von IgG-Antikörpern gegen tTG getestet. Die Durchführung des ELISA erfolgte wie unter 3.1. Es wurde lediglich der Peroxidase gekoppelte anti-human IgA Anti körper (Dianova), gegen einen anti-human IgG Antikörper (Dianova) ausgetauscht. Die Werte der Sprue-Patienten entsprachen in ihrer Sensitivität, sowohl vor als auch nach Gluten-freier Diät, in etwa den mit IgA Antikörpern erhaltenen Daten. Kleinere Unterschiede könnten auf eine verzögerte/verlängerte Immunantwort zurückzuführen sein.

Einige Kontrollseren zeigten leicht erhöhte Werte, was früheren Befunden einer Verminderten Spezifität der Endomysium-Antikörper in der indirekten Immunfluoreszenz der IgG-Klasse entspricht (Abb. 4).

3.3. Entwicklung eines ELISA zur Diagnostik und Verlaufskontrolle anderer Erkrankungen, die mit einer Immunreaktion gegen die tTG einhergehen, am Beispiel der IgG-Antikörper

Die Durchführung des ELISA erfolgte wie unter 3.2. beschrieben.

Die Seren von Patienten mit chronisch entzündlichen oder autoimmunen Erkrankungen (Colitis ulcerosa (C.U.), Morbus Crohn, akute Autoimmunhepatitis) zeigten leicht bis mittelgradig er höhte Werte. Inwiefern die genetische Veranlagung (Autoimmunhepatiden sind häufig assozi iert mit dem DQ-Allel, welches auch bei der Sprue von Bedeutung ist) zur spezifischen Aus prägung von gegen die tTG gerichteten IgG-Antikörpern verantwortlich ist, muß weiter unter sucht werden.

Hier ergibt sich jedoch durch Einsatz z. B. des IgG-spezifischen ELISAs für Autoantikörper gegen die tTG ein neuer Ansatz zur Diagnose und Therapiekontrolle voll Patienten mit Erkrankungen, welche mit einer Immunreaktion gegen die tTG einhergehen.

Beispiel 4 4.1. Neue Funktion der Gewebe-Transglutaminase (tTG) in der Quervernetzung von Gliadin

Während der durch die tTG katalysierten Reaktion ein breites Spektrum an Acyl-Akzeptoren zur Verfügung steht, sind nur wenige Moleküle in der Lage als Acyl-Donoren zu fungieren. In einem in vitro Versuch konnte der durch die tTG vermittelte Einbau von radioaktiv markiertem Putrescin in Gliadin und damit die Funktion von Gliadin als Donor-Substrat der tTG nachgewiesen werden. In 160 µl Puffer (0,1 M Tris-HCl, 150 mM NaCl, 5 mM CaCl₂, pH 7,5) wurden 1 µg Substrat (Gliadin bzw. Kotrollproteine wie Albumin), 2 µCi[³H]-Putrescin und 1 µg tTG (aus Meerschweinchen, Sigma) 2 h bei 37°C inkubiert. Die Reaktion wurde durch Zugabe von 100 µl 50%-ige Trichloressigsäure (TCA) gestoppt und die Proteine wurden bei 4°C über Nacht präzipitiert. Nach Zentrifugation wurden die Pellets mit 10%-iger TCA gewa schen, in SDS-Probenpuffer gelöst und einerseits in der SDS-PAGE aufgetrennt, andererseits zur Szintillationszählung verwendet. Während bei den Kontrollen kein Einbau an lutrescin fest zustellen war, zeigte Ghadin sowohl durch die Daten der Szintillationszählung als auch in der SDS-PAGE einen deutlichen Einbau von [³H]-Putrescin in Gliadin, was belegt, daß Gliadin ein exzellentes Substrat für die tTG darstellt.

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Abkürzungsverzeichnis

Abb., Abbildung
AK, Antikörper
APAAP, alkalische Phosphatase-Anti- Alkalische Phosphatase
BSA, Rinderserumalbumin
cm, Zentimeter
DMEM, Bulbecco's modifiziertes Eagle
Medium
EC, Enzymkommission
ELISA, Enzym-linked immunosorbent assay
EZM, Extrazelluläre Matrix
FKS, fötales Kälberserum
h, Stunde(n)
H₂

O₂

, Wasserstoffperoxid
HLA, humane Lymphozyten-Antigene
IEL, intraepitheliale Lymphozyten
Ig, Immunglobulin
kDa, Kilodalton
M, molar
mA, Milliampere
MHC, Haupthistokompatibilitätskomplex
min, Minute(n)
mM, millimolar
Mr, relative molelculare Masse
µg, Mikrogramm
µl, Mikroliter
PAGE, Polyacrylamidgelelektrophorese
PBS, Phosphatpuffer
PLA2, Phospliolipase A2
PVDF, Polyvinylidendifluorid
s., siehe
SDS, Natriumdodecylsulfat
TCA, Trichloressigsäure
TGF, transformierender Wachstumsfaktor
Tris, Tris-(hydroxymethyl)-aminomethan
tTG, Gewebe-Transglutaminase
u. a., unter anderem
z. B., zum Beispiel
z. T., zum Teil.

Claims

1. Verfahren zum Nachweis von Antikörpern aus Körperflüssigkeiten durch eine Immunreaktion mit Gewebe-Transglutaminase (tTG), deren immunreaktiven Sequenzen oder Analoga.

2. Verfahren nach Anspruch 1, dadurch gekennzeichnet, daß humane IgA- und/oder IgG-Antikörper nachgewiesen werden.

3. Verfahren nach Anspruch 1 oder 2, dadurch gekennzeichnet, daß die tTG humanen, tierischen, rekombinanten oder synthetischen Ursprungs ist.

4. Verfahren nach einem der Ansprüche 1 bis 3, dadurch gekennzeichnet, daß der Nachweis in einem an sich bekannten Immunoassay durchgeführt wird, vorzugsweise in einem ELISA.

5. Verwendung von tTG, deren immunreaktiven Sequenzen oder Analoga zur Diagnose oder Therapiekontrolle von Erkrankungen, die mit einer Immunreaktion gegen diese Substanzen einhergehen.

6. Verwendung gemäß Anspruch 5 zur Diagnose oder Therapiekontrolle von chronisch entzündlichen oder Autoimmunerkrankungen.

7. Verwendung gemäß einem der Ansprüche 5 oder 6 zur Diagnose oder Therapiekontrolle der Sprue oder Zöliakie.

8. Verwendung von tTG, deren immunreaktiven Sequenzen oder Analoga zur oralen Therapie von Erkrankungen, die mit einer Immunreaktion gegen diese Substanzen einhergehen.