DE1222489B - Verfahren zur Abtrennung von reinem Kanamycin A - Google Patents
Verfahren zur Abtrennung von reinem Kanamycin AInfo
- Publication number
- DE1222489B DE1222489B DEM42620A DEM0042620A DE1222489B DE 1222489 B DE1222489 B DE 1222489B DE M42620 A DEM42620 A DE M42620A DE M0042620 A DEM0042620 A DE M0042620A DE 1222489 B DE1222489 B DE 1222489B
- Authority
- DE
- Germany
- Prior art keywords
- kanamycin
- column
- fractions
- solution
- separation
- Prior art date
- Legal status (The legal status is an assumption and is not a legal conclusion. Google has not performed a legal analysis and makes no representation as to the accuracy of the status listed.)
- Pending
Links
Classifications
-
- C—CHEMISTRY; METALLURGY
- C07—ORGANIC CHEMISTRY
- C07H—SUGARS; DERIVATIVES THEREOF; NUCLEOSIDES; NUCLEOTIDES; NUCLEIC ACIDS
- C07H15/00—Compounds containing hydrocarbon or substituted hydrocarbon radicals directly attached to hetero atoms of saccharide radicals
- C07H15/20—Carbocyclic rings
- C07H15/22—Cyclohexane rings, substituted by nitrogen atoms
- C07H15/222—Cyclohexane rings substituted by at least two nitrogen atoms
- C07H15/226—Cyclohexane rings substituted by at least two nitrogen atoms with at least two saccharide radicals directly attached to the cyclohexane rings
- C07H15/234—Cyclohexane rings substituted by at least two nitrogen atoms with at least two saccharide radicals directly attached to the cyclohexane rings attached to non-adjacent ring carbon atoms of the cyclohexane rings, e.g. kanamycins, tobramycin, nebramycin, gentamicin A2
Landscapes
- Chemical & Material Sciences (AREA)
- Organic Chemistry (AREA)
- Health & Medical Sciences (AREA)
- Life Sciences & Earth Sciences (AREA)
- Engineering & Computer Science (AREA)
- Biochemistry (AREA)
- Biotechnology (AREA)
- General Health & Medical Sciences (AREA)
- Genetics & Genomics (AREA)
- Molecular Biology (AREA)
- Saccharide Compounds (AREA)
- Treatment Of Liquids With Adsorbents In General (AREA)
Description
BUNDESREPUBLIK DEUTSCHLAND,
DEUTSCHES
PATENTAMT
AUSLEGESCHRIFT
Int. CL:
C07c
Nummer: 1222489
Aktenzeichen: M 42620IV b/12 ο
Anmeldetag: 3. September 1959
Auslegetag: 11. August 1966
Die Erfindung betrifft ein Verfahren zur Abtrennung des wertvollen Antibiotikums Kanamycin A aus
rohen Gemischen oder Lösungen, wie sie bei der fermentativen Herstellung von Kanamycin anfallen,
die Kanamycin A, das unerwünschte, etwas stärker toxische Kanamycin B und andere Stoffe enthalten,
die in solchen rohen Gemischen anwesend sein können.
Kanamycin, ein durch Fermentation verschiedener Stämme von Streptomyces kanamyceticus erzeugtes
Antibiotikum, besitzt antibiotische Wirksamkeit gegen verschiedene Arten von grampositiven und
gramnegativen Bakterien. Diese wertvollen antibiotischen Eigenschaften sind auf die Anwesenheit eines
Stoffes zurückzuführen, der als »Kanamycin A« bezeichnet worden ist. Dieser Stoff besitzt die folgende
chemische Struktur:
CH.NH.
HO M
HO
Verfahren zur Abtrennung von reinem
Kanamycin A
Kanamycin A
Anmelder:
Meiji Seika Kaisha, Ltd., Tokio
Vertreter:
Dr. W. Kühl, Patentanwalt,
Hamburg 36, Esplanade 36 a
Als Erfinder benannt:
John William Rothbrock, North Plainfield, N. J.; Irving Putter, Martinsville, N. J. (V. St. A.)
Beanspruchte Priorität:
V. St. v. Amerika vom 12. September 1958
(760 660)
V. St. v. Amerika vom 12. September 1958
(760 660)
NH2
NHa
H8N
OH
Kanamycin A
Kanamycin A tritt in den Fermentationsprodukten im Gemisch mit anderen Formen von Kanamycin,
deren Strukturen noch unbekannt sind, und mit verschiedenen anderen Stoffen auf, zu denen wasserunlösliche
Stoffe, Salze und gefärbte Verunreinigungen gehören. Die Form von Kanamycin, die in der
größten Menge zusammen mit Kanamycin A vorkommt, wird als »Kanamycin Β« bezeichnet. Eine
andere Form von Kanamycin, die als »Kanamycin C« bezeichnet wird, findet sich in verhältnismäßig geringen
Mengen. Während Kanamycin A eine wertvolle antibiotische Wirksamkeit aufweist, hat sich
herausgestellt, daß Kanamycin B zwar ebenfalls antibiotische Eigenschaften besitzt, jedoch etwas stärker
toxisch ist als Kanamycin A. Deshalb ist die Anwesenheit von Kanamycin B als Verunreinigung des Kanamycins
A unerwünscht. Die Toxizität von Kanamyein C, welches noch nicht isoliert wurde, ist unbekannt.
Die chemischen und physikalischen Eigenschaften von Kanamycin A und Kanamycin B sind so ähnlich,
daß die Trennung dieser beiden Verbindungen voneinander äußerst schwierig ist. Die Eigenschaften
von Kanamycin C sind sehr ähnlich denjenigen von Kanamycin B, und die Bezugnahme auf Kanamycin B
in der nachfolgenden Beschreibung bezieht sich auch auf Gemische von Kanamycin B und Kanamycin C.
Die üblichen Trennverfahren sind nur von geringem Wert für die Trennung von Kanamycin A und Kanamycin
B. Durch Kristallisation der Verbindungen selbst oder verschiedener bekannter Salze derselben
lassen sich die Stoffe z. B. nicht in zufriedenstellender Weise voneinander trennen. Kanamycin A und Kanamycin
B sind bereits durch Gegenstromverteilung der Salicylidenderivate des rohen Kanamycingemisches
unter Verwendung eines aus Methanol, Wasser, Chloroform und Benzol im Verhältnis 5:4:2:1 bestehenden
Systems voneinander getrennt worden; dieses Verfahren ist jedoch für die großtechnische
Durchführung nicht zufriedenstellend, weil es um-
609 609/396
3 4
ständliche Verfahrensschritte erfordert, die sich nicht praktisch, mit einer über den oben angegebenen Beleicht
durchführen lassen.· -·.-". ;.. :'. ..;■ reich hinausgehenden Konzentration zu arbeiten,
Ein Zweck der Erfindung ist daher die Schaffung weil die Dichte der stärker konzentrierten Lösungen
eines Verfahrens, welches es gestattet, Kanamycin A so groß ist, daß das leichtere Harz durch die Bevon
Kanamycin B und anderen Stoffen zu trennen, 5 schickungslösung verdrängt wird. Es wurde beobachsich
leicht auf eine Arbeitsweise im großtechnischen tet, daß in diesen Fällen der obere Teil der Harz-Maßstabe
übertragen läßt und sich wirtschaftlich und säule auf der Beschickungslösung schwimmt. In den
verhältnismäßig leicht durchführen läßt. bevorzugten Konzentrationsbereichen verläuft jedoch
Ein weiterer Erfindungszweck ist die Schaffung das chromatographische Verfahren so, daß man hineines
solchen Verfahrens, welches imstande ist, Kana- io reichend dichte Adsorptionsstreifen erhält und das
mycin A in praktisch reiner, für die pharmazeutische Harz durch die Beschickung nicht aus der Säule verAnwendung
geeigneter Form zu isolieren. drängt wird.
Dies wird erfindungsgemäß mittels eines chromato- Es wurde mit hohen Beladungen von etwa 1 g Ka-
graphischen Verfahrens erreicht, bei dem eine Lösung namycin je 25 ecm Harz gearbeitet; im allgemeinen
von Kanamycin A und Kanamycin B langsam durch 15 werden jedoch etwas niedrigere Beladungen bevor-
ein stark basisches Anionenaustauschharz perkoliert zugt. Eine Beladung von 1 g je 50 ecm Harz liefert
wird, worauf das Kanamycin A und das Kanamycin B z. B. eine scharfe Trennung ohne Uberbeladung des
gesondert und selektiv aus dem Harz eluiert werden. Harzes.
Es wird angenommen, daß Kanamycin A und Kana- Die besonderen Harze, die sich als geeignet für
mycin B in einer chromatographischen Säule geson- 20 die chromatographische Trennung des Kanamycins A
derte Streifen bilden, wenn eine diese Verbindungen vom Kanamycin B erwiesen haben, lassen sich als
enthaltende Lösung langsam durch die Säule perko- poröse Anionenaustauschharze von der Art der stark
liert wird. Beim Eluieren erfolgt die Entwicklung basischen quaternären Amine kennzeichnen. Es ist
der Säule derart, daß das beweglichere Kanamycin B eine große Anzahl derartiger Harze bekannt. Beispiele
vor dem weniger beweglichen Kanamycin A bevor- 25 hierfür sind »Amberlite IRA-400«, »Amberlite IRA-
zugt eluiert wird. Durch Auffangen von Fraktionen 401«, »Dowex l-x2«, »Dowex 2-x4« und »Permutit
des Eluates istes also, möglich, das gewünschte Kana- SK« (Handelsnamen). Auch andere Anionenaus-
mycin A vollständig von dem unerwünschten Kana- tauschharze dieses allgemeinen Typs können verwen-
mycin B zu trennen. det werden. Die Korngröße des Harzes ist nicht kri-
Für die Zwecke der Erfindung kann das dem 30 tisch. Mit Harzen einer Korngröße zwischen 0,42
chromatographischen Trennverfahren unterworfene . und 0,074 mm wurden zufriedenstellende Ergebnisse
Känamycingemisch eines der verschiedenen, Kanä- erzielt Alle Harze werden in der Hydroxylform ver-
mycin enthaltenden Gemische sein, die bei den ver- wendet.
schiedeüen Stufen des zur fermentativen Herstellung Nachdem die Harzsäule mit der Beschickungs-
yon Kanamycin dienenden Verfahrens anfallen. Man 35 lösung überschichtet worden und die Lösung in die
kann zwar-das rohe Fermentationsprodukt, welches Harzsäule eingesickert ist, wird das Harz sorgfältig
die verschiedenen Kanamycine und andere Verunrei- mit Lösungsmittel überschichtet und dann die ge-
nigungen enthält, unmittelbar dem chromatographi- wünschte Strömungsgeschwindigkeit innegehalten,
sehen Trennverfahren zuführen; zweckmäßiger ist es um die Säule durch Eluieren des Kanamycins A und
jedoch, zu diesem Zwecke eine gereinigte Lösung zu 40 des Kanamycins B aus dem Harz zu entwickeln, ohne
verwenden, da stark gefärbte Verunreinigungen das das Harzbett aufzurühren.
Harz vergiften können und Salze das Harz in die Als Lösungsmittel für die Entwicklung der Säule
Salzform überführen, die chromatographisch nicht hat sich destilliertes Wasser oder Leitungswasser als
verwendbar ist. zufriedenstellend erwiesen. Man kann auch mit
Zur Herstellung aus einer gereinigten Lösung, für 45 wäßrigen Lösungen organischer Lösungsmittel, z. B.
die hier kein Schutz beansprucht wird, wird die Fer- mit wäßrigen Lösungen von Alkoholen oder Keto-
mentationsflüssigkeit zunächst filtriert, um feste Ver- nen, wie Methanol oder Aceton, arbeiten. So stellt
unreinigungen zu entfernen, und dann werden die Wasser mit einem Zusatz von 5°/o Methanol ein zu-
■Kanamycine an einem sauren Kationenaustauschharz friedenstellendes Lösungsmittel dar. Man kann auch
adsorbiert und mit einer schwachen Base, wie Ammö- 50 höhere Konzentrationen an mit Wasser mischbaren
niak, eluiert, um verschiedene Salze und andere far- organischen Lösungsmitteln verwenden; bei zu hohen
bige Verunreinigungen zu entfernen. Das Eluat von Konzentrationen können jedoch die Kanamycine in
dieser ersten Harzreinigungsstufe wird dann stärker der Säule auskristallisieren.
entfärbt; z.B. mit Aktivkohle. Hierauf werden die Die Strömungsgeschwindigkeit des zur Entwick-Kanamycine
aus dem entfärbten Eluat durch Zusatz 55 lung dienenden Lösungsmittels durch die Harzsäule
von Methanol als Sulfate auskristallisiert. Die so er- kann innerhalb gewisser Grenzen variieren und richtet
haltenen Monosulfate werden in Wasser gelöst und sich nach der Größe der jeweiligen Anlage. Bei zu
durch eine Säule von basischem Antionenaustausch- hohen Strömungsgeschwindigkeiten wird das Gleichharz,
wie »Amberlite IRA-401«, geleitet, wodurch die gewicht zwischen dem Harz und der Lösung nicht
Monosulfatlösüng entfärbt wird und die freien Basen 60 erreicht. Zu niedrige Strömungsgeschwindigkeiten
entstehen. sind zeitraubend. Eine Säule mit einem 76 cm hohen
Die Beschickung enthält vorzugsweise etwa 5 bis Harzbett von 400 ecm »Dowex l-x2« (Handelsname)
50% Gesamtfeststoffe. Unterhalb dieses Feststoff- kann z.B. bei einer Strömungsgeschwindigkeit von
bereiches benötigt man ein so großes Volumen, daß 3,5 ccm/Min. entwickelt werden. Für das gleiche
die Durchführung des Verfahrens unpraktisch wird. 6g System ist eine Strömungsgeschwindigkeit von
Oberhalb dieses Bereiches findet Kristallisation statt. 7 ccm/Min. zu hoch.
Obwohl man bei höheren Konzentrationen eine bes- Beim Eluieren der chromatographischen Säule er-
sere chromatographische Trennung erzielt, ist es nicht hält man zunächst als Vorlauf die Flüssigkeit aus
den Hohlräumen der Harzsäule, die anorganische Hydroxyde enthält. Dann folgt das Kanamycin B,
hierauf ein Gemisch von Kanamycin B und Kanamycin C und schließlich das Kanamycin A, welches
das am wenigsten bewegliche Kanamycin ist.
Der Verlauf der Eluierung kann an einem Papierstreifenchromatogramm
der verschiedenen eluierten Fraktionen unter Zuhilfenahme eines roten Farbstoffes
verfolgt werden (vgl. J. W. Rothrock und Mitarbeiter, »Antibiotics Annual«, 1958/1959, S.798).
Das weniger bewegliche Kanamycin A erscheint dann als roter Fleck mit einem R1-Wert von 0,15 bis 0,22
und das beweglichere Kanamycin B als roter Fleck mit einem Rf-Wert von 0,25 bis 0,40. Die Beweglichkeit
des Kanamycins C liegt etwa in der Mitte zwischen diesen beiden Werten.
Ein typisches Chromatogramm ist in F i g. 1 dargestellt, wo die Eluatfraktionen von 6 bis 19 numeriert
sind und der mit der Bezeichnung »A + B« versehene Streifen durch Entwickeln eines hergestellten
Testgemisches von Kanamycin A und Kanamycin B erhalten wurde. Aus dieser Figur ist ersichtlich, daß
das Kanamycin B in den Fraktionen 8 bis 12 und teilweise in der Fraktion 13 erscheint, während Kanamycin
A in den Fraktionen 14 bis 19 und zum Teil ebenfalls in der Fraktion 13 erscheint. In diesem Beispiel
war die Konzentration an Kanamycin C so niedrig, daß dieser Stoff in dem Chromatogramm
nicht festgestellt werden konnte. Die Fraktionen 14 bis 19 enthalten also Kanamycin A, welches nicht
durch Kanamycin B verunreinigt ist.
Obwohl die Entwicklung von Papierstreifenchromatogrammen eine Möglichkeit an die Hand gibt, zu
bestimmen, wann die Eluierung von Kanamycin A beginnt, ist diese Methode jedoch zur laufenden Betriebskontrolle
des erfindungsgemäßen Verfahrens nicht geeignet, weil die Entwicklung der Papierstreifen
zu lange Zeit benötigt.
Auch die Bestimmung des Gesamtfeststoffgehaltes in dem Eluat als mg Feststoffe je Kubikzentimeter
Eluat, wobei der Gesamtfeststoffgehalt an dem Punkt
ein Minimum erreicht, bei welchem das Kanamycin A in dem Eluat zu erscheinen beginnt, leidet an dem
Nachteil, daß die Zeit zur Gewinnung der gewünschten Werte für die Anwendung im technischen Betrieb
zu lang ist.
Auch die Messung des pH-Wertes ist für diesen Zweck nicht zufriedenstellend. Zwar durchläuft der
pH-Wert des Eluates bei dem Punkt, bei welchem Kanamycin A im Eluat erscheint, ein Minimum,
jedoch sind die Änderungen des pH-Wertes so klein, daß die Genauigkeit der Messung zur Bestimmung
eines scharfen Trennpunktes nicht ausreicht.
Man kann den Verlauf der Eluierung auch durch chemische Analysenmethoden zur Bestimmung von
Kanamycin A verfolgen. Eine derartige Analyse beruht auf der Bildung eines furfurolartigen Stoffes
aus Kanamycin A durch Einwirkung von Schwefelsäure und ist in der obengenannten Arbeit von
J. W. Rothrock und Mitarbeitern auf Seite 798 beschrieben.
Zum Nachweis von Kanamycin A oder Kanamycin B kann man sich auch biologischer Analysenmethoden,
z. B. der Messung der Zone der Wachstumshemmung des Organismus B. subtilis, bedienen,
wie es ebenfalls in der genannten Arbeit von J. W. Rothrock und Mitarbeitern auf Seite 798
beschrieben ist.
In der Praxis beobachtet man, daß die ersten Fraktionen des Eluates der chromatographischen Säule
bereits biologisch aktiv sind, also Kanamycin enthalten, während die späteren Fraktionen auch chemisch
aktiv sind, woraus auf die Anwesenheit von Kanamycin A geschlossen werden kann, welches im Gegensatz
zu Kanamycin B, wie oben beschrieben, bei der chemischen Umsetzung mit Schwefelsäure einen furfurolartigen
Stoff erzeugt. Wegen der Zeitdauer bis
ίο zur Gewinnung des Ergebnisses ist jedoch auch diese
Methode nicht zur Durchführung laufender Betriebsanalysen geeignet.
Für die technische Durchführung des erfindungsgemäßen Verfahrens ist die kontinuierliche Messung
des spezifischen elektrischen Widerstandes die geeigneteste Methode zur laufenden Bestimmung der Zusammensetzung
der Eluatfraktionen. In der spezifischen Widerstandskurve der Eluate treten zwei
Maxima auf, das erste beim Beginn der Eluierung
ao des Kanamycins B und das zweite beim Beginn der Eluierung des Kanamycins A. Die Messung des spezifischen
Widerstandes läßt sich äußerst schnell durchführen und ist innerhalb der bei der Eluierung der
chromatographischen Säule gegebenen Grenzen genau
as genug, um eine scharfe Trennung des Kanamycins A
vom Kanamycin B durch Herausschneiden von Fraktionen zu ermöglichen. Insbesondere ist es mit Hilfe
eines Registriergerätes, welches eine graphische Darstellung des Verlaufs des spezifischen Widerstandes
liefert, möglich, den Punkt zu bestimmen, bei welchem das gewünschte Kanamycin A aus der chromatographischen
Säule eluiert wird, und die nachfolgenden Fraktionen aufzufangen und auf diese Weise
Kanamycin A von Kanamycin B zu trennen.
Ein Diagramm der bei einem derartigen Eluierungsvorgang
erhaltenen Werte für den spezifischen Widerstand ist in F i g. 2 dargestellt, in welcher die
numerierten Fraktionen denjenigen der Papierstreifenchromatogramme der F i g. 1 entsprechen. Diese beiden
Zeichnungen stellen die Auswertung des Ausführungsbeispiels 1 dar. Wie man sieht, ist der spezifische
Widerstand der ersten 0,3 Raumteile, bezogen auf das Füllvolumen der Säule an Ionenaustauscherharz,
an Eluat, d. h. der Flüssigkeit aus den Hohlräumen der Harzkolonne, hoch. Die Fraktionen 4 bis 6
andererseits, die etwa 0,4 Raumteile, bezogen auf das Füllvolumen der Säule an Ionenaustauscherharz, an
Eluat ausmachen, besitzen infolge der Eluierung anorganischer Hydroxyde einen sehr niedrigen spezifisehen
Widerstand. Etwa mit Beginn der Fraktion 7 steigt der spezifische Widerstand steil zu einem Maximum
an, worauf die Eluierung des Kanamycins B beginnt. Die Anwesenheit von Kanamycin B im Eluat
wird durch den Teil der Kurve dargestellt, der sich über dem Buchstaben »B« befindet. Kanamycin B
wird also in etwa 0,7 Raumteilen der Säule in den Fraktionen 8 bis 13 zusammen mit etwas Kanamycin
C eluiert, was sich aus der Schulter bei der Fraktion 12 ergibt. Beginnend mit Fraktion 13 durchläuft
der spezifische Widerstand ein weiteres Maximum, wenn Kanamycin A im Eluat zu erscheinen beginnt.
Die Eluierung des Kanamycins A wird durch den Teil der Kurve dargestellt, der sich über dem Buchstaben
»A« befindet. Kanamycin A wird also in 2,5 Raumteilen, bezogen auf das Füllvolumen der Säule an
Ionenaustauscherharz, in den Fraktionen 13 bis 32 eluiert. Man sieht, daß das Maximum in der Widerstandskurve
bei Fraktion 13 in Fig. 2 mit dem Auf-
treten der die Anwesenheit von Kanamycin A kennzeichnenden Flecke in dem Papierstreifenchromatogramm
der Fig. 1 zusammenfällt. Das Papierstreifenchromatogramm
ist also eine Kontrolle für die Genauigkeit der Methode der Messung des spezifischen
Widerstandes zur Bestimmung der Anwesenheit von Kanamycin A im Eluat.
Zur Verfolgung des Verlaufes der Eluierung kann auch der Brechungsindex herangezogen werden, da
er in Abhängigkeit vom Feststoffgehalt verläuft. Wie aus Tabelle 1 im Ausführungsbeispiel 1 ersichtlich,
entsprechen Höchstwerten an Feststoffgehalt Maxima des Brechungsindex.
Die folgenden Beispiele erläutern die Erfindung.
Vorreinigung der Ausgangslösung für Beispiel 1
35 g rohes kristallines Kanamycinsulfat wurden in 230 ecm destilliertem Wasser zu einer 15%igen Lösung
gelöst. Die dunkelbraune Lösung wurde durch eine dünne Schicht eines Filterhilfsmittels filtriert,
um unlösliche Stoffe zu entfernen. Dann wurde das Filtrat mit einer Geschwindigkeit von 7 ccm/Min.
durch eine Säule mit 245 ecm »Amberlite IRA-401«
(Handelsname) in Hydroxylform perkoliert und die Säule gründlich mit destilliertem Wasser nachgewaschen.
Es wurden 620 ecm eines farblosen Eluates (einschließlich des Waschwassers) aufgefangen
und im Vakuum zu einer Lösung von einem Gesamtfeststoffgehalt von 25°/o eingeengt. Die Ausbeute
der Eluierung betrug 95 %.
Eine 122 cm hohe Säule aus dickwandigem, schwer schmelzbarem Glas von 25,4 mm lichter Weite wurde
senkrecht aufgestellt und bis zu einer Höhe von 76 cm mit einer wäßrigen Aufschlämmung von
400 ecm des Anionenaustauschers »Dowex l-x2« (Handelsname) in Hydroxylform von einer Korngröße
von 0,149 bis 0,297 mm gefüllt. Das Harz wurde in abwärts gerichtetem Strom mit entionisiertem
destilliertem Wasser von einem spezifischen Widerstand von mindestens 45 000 Ohm · cm gewaschen.
Dann wurde die wäßrige Aufschlämmung des Harzes mit 40 ecm der 25%igen Lösung des Gemisches
von Kanamycinbasen überschichtet. Nachdem die Beschickung in das Harz eingesickert war,
wurde das Harz sorgfältig mit entionisiertem, destilliertem Wasser überschichtet, ohne das Harzbett aufzurühren.
Während des ganzen Arbeitsganges wurde eine Strömungsgeschwindigkeit von 3,5 ccm/Min.
innegehalten. Der Eluatstrom wurde durch einen Strömungsmesser und eine Leitfähigkeitszelle in einen
Fraktionsschneider geleitet. An die Zelle war ein Registriergerät angeschlossen, und der spezifische
Widerstand wurde fortlaufend registriert. Die Grenzen wurden auf 6000 bis 45 000 Ohm ■ cm eingestellt.
Das Eluat wurde in Fraktionen von je 50 ecm aufgefangen. Außer der Messung des spezifischen Widerstandes
wurde das Eluat auf seinen Gesamtfeststoff und seine Brechungszahl analysiert, ferner wurden
chemische und biologische Analysen ausgeführt und ein Papierstreifenchromatogramm aufgenommen. Die
entsprechenden Zahlenwerte sind in Tabelle 1 angegeben, das Papierstreifenchromatogramm ist in Fi g. 1
und die Registrierung des spezifischen Widerstandes in F i g. 2 abgebildet.
5 | 1 | Gesamt | Tabelle | 1 | J>recxiungs- zahl |
|
2 | feststoffe | Chemische | Biologische | |||
Fraktion | 3 | mg/ccm | Analyse | Analyse | 1,3322 | |
4 | 0,06 | j»/mg | y/mg | 1,3323 | ||
10 5 | 0,04 | . | 1,3323 | |||
6 | 0,24 | — | — | 1,3334 | ||
7 | 3,20 | — | — | 1,3334 | ||
8 | 5,26 | — | — | 1,3324 | ||
15 9 | 0,50 | — | — | 1,3323 | ||
10 | 0,10 | — | 1,3323 | |||
11 | 0,48 | 81 | 85 | 1,3326 | ||
12 | 3,16 | 90 | 357 | 1,3330 | ||
13 | 6,02 | 50 | 784 | 1,3330 | ||
20 14 | 5,16 | 57 | 824 | 1,3329 | ||
15 | 3,58 | 56 | 861 | 1,3326 | ||
16 | 2,42 | 69 | 728 | 1,3337 | ||
17 | 9,78 | 543 | 791 | 1,3352 | ||
« 18 | 18,68 | 933 | 966 | 1,3352 | ||
25 19 | 19,94 | 1001 | 888 | 1,3352 | ||
20 | 19,12 | 997 | 977 | 1,3352 | ||
21 | 17,80 | 932 | 859 | 1,3348 | ||
22 | 15,66 | 971 | 976 | 1,3346 | ||
3o 23 | 13,10 | 942 | 921 | 1,3343 | ||
24 | 11,56 | 985 | 1053 | 1,3338 | ||
25 | 9,88 | 1009 | 845 | 1,3336 | ||
26 | 8,32 | 984 | 919 | 1,3334 | ||
27 | 7,04 | 1019 | 872 | 1,3331 | ||
35 28 | 6,36 | 1014 | 940 | 1,3330 | ||
29 | 4,50 | 970 | 961 | 1,3329 | ||
30 | 3,64 | 1046 | 968 | 1,3327 | ||
31 | 2,88 | 1073 | 897 | 1,3326 | ||
40 32 | 2,20 | 1076 | 890 | 1,3324 | ||
1,66 | 1084 | 949 | 1,3324 | |||
1,20 | 1035 | 940 | 1,3323 | |||
0,82 | 1060 | 976 | ||||
913 | 875 | |||||
Aus diesen Werten ersieht man, daß die für die Fraktion 13 beobachteten Minima im Gesamtfeststoffgehalt und in der Brechungszahl mit dem starken
Ansteigen des chemischen An'alysenwertes bei der Fraktion 13, dem Erscheinen des Fleckes für Kanamycin
A in dem Chromatogramm der F i g. 1 und dem in F i g. 2 für die Fraktion 13 gekennzeichneten
Maximum des spezifischen Widerstandes zusammenfallen. Damit ist bewiesen, daß die Fraktion 13 den
Beginn der Eluierung von Kanamycin A darstellt und daß in den Fraktionen 14 bis 32 reines Kanamycin A,
nicht verunreinigt durch Kanamycin B oder Kanamycin C, eluiert wurde.
Ähnliche Ergebnisse wurden mit »Dowex 2-x4«, »Amberlite IRA 400« und »Permutit SK« (Handelsnamen) erhalten. Das Harz »Dowex l-x8« lieferte
keine zufriedenstellenden Ergebnisse, vermutlich weil es für diesen Zweck zu stark vernetzt ist.
27 g rohes Kanamycin wurden an 11 des Anionenaustauschers
»Amberlite IRA 401« in Hydroxylform chromatographiert. Das mit Wasser als Eluierungsmittel
gewonnene Eluat wurde in Fraktionen aufgefangen, und es wurden Bestimmungen des Gesamtfeststoffgehaltes sowie chemische und biologische
Analysen ausgeführt. Die Werte sind in Tabelle 2 angegeben.
Probe | Volumen | Gesamt feststoffe |
Che mische Analyse |
Bio logische Analyse |
ecm | mg/cem | y/mg | y/mg | |
Beschickung.. | 500 | 52,0 | 568 | 288 |
Hohlraum ... | 300 | — | — | — |
Fraktion 1 ... | 100 | 0,4 | 0 | 0 |
Fraktion 2 ... | 100 | 1,0 | 0 | 0 |
Fraktion3 ... | 100 | 1,3 | 0 | 0 |
Fraktion 4 ... | 100 | 1,8 | 0 | 0 |
Fraktion 5 ... | 100 | 2,4 | 0 | 104 |
Fraktion 6 ... | 100 | 3,7 | 0 | 379 |
Fraktion 7 ... | 100 | 4,2 | 0 | 477 |
Fraktion 8 ... | 100 | 6,0 | 0 | 333 |
Fraktion 9 ... | 100 | 6,7 | 29,9 | 672 |
Fraktion 10 .. | 100 | 7,3 | 54,8 | 657 |
Fraktion 11 .. | 100 | 6,0 | 50,0 | 833 |
Fraktion 12 .. | 500 | 7,4 | 324 | 1010 |
Fraktion 13 .. | 500 | 6,9 | 855 | 1090 |
Fraktion 14 .. | 1000 | 4,0 | 1423 | 1030 |
Fraktion 15 .. | 1000 | 2,9 | 760 | 1250 |
Fraktion 16 .. | 1000 | 1,3 | 685 | 923 |
IO
15
20
Aus diesen Werten ergibt sich, daß das Minimum an Gesamtfeststoffen in der Fraktion 11 mit dem Ansteigen
des Wertes für die chemische Analyse zwischen den Fraktionen 11 und 12 übereinstimmt, welches
auf die Anwesenheit von Kanamycin A im Eluat zurückzuführen ist.
35
Es wurde nach Beispiel 1 gearbeitet, wobei jedoch das Anionenaustauscherharz »Amberlite IRA 401«
in Hydroxylform sowohl für die Vorreinigung der Kanamycinlösung als auch für die Chromatographie
verwendet wurde. Als Eluierungsmittel diente Wasser mit einem Gehalt von 5% Methanol. Zuerst wurde
Kanamycin B eluiert, hierauf ein Gemisch von Kanamycin A mit abnehmenden Mengen an Kanamycin B
und schließlich reines Kanamycin A, was durch Be-Stimmung des Gesamtfeststoffgehaltes und des spezifischen
Widerstandes sowie durch Entwicklung eines Papierstreifenchromatogramms nachgewiesen wurde.
Beispiel 4 5<>
Es wurde nach Beispiel 3 gearbeitet, wobei jedoch als Eluierungsmittel Wasser mit einem Gehalt von
5% Aceton diente. Die Ergebnisse waren die gleichen wie im Beispiel 3.
Es wurde nach Beispiel 1 gearbeitet, jedoch mit dem Unterschied, daß als Beschickung 40 ecm einer
25°/oigen Lösung von roher, konzentrierter, entfärbter Kanamycinbase verwendet wurden, die vor der
Kristallisation des rohen Kanamycinsulfats erhalten wurde. Die Ergebnisse zeigten, daß Kanamycin A in
den späteren Eluatfraktionen enthalten war, und zwar nicht verunreinigt durch Kanamycin B oder
Kanamycin C, welch letzteres auf einem Papierchromatogramm als Fleck in der Mitte zwischen den
Flecken für Kanamycin A und Kanamycin B nachgewiesen wurde. Ähnliche Ergebnisse wurden mit der
gleichen Beschickung vor der Entfärbung mit Aktivkohle erhalten.
Es wurde nach Beispiel 1 gearbeitet, jedoch mit 60 ecm einer 25%igen Kanamycinlösung als Beschickung.
Die Ergebnisse waren die gleichen wie im Beispiel 1.
Es wurde nach Beispiel 1 gearbeitet, jedoch mit 20 ecm einer 5O°/oigen Kanamycinlösung als Beschickung.
Die Ergebnisse waren wiederum die gleichen wie im Beispiel 1.
Die obigen Beispiele zeigen, daß das neue Verfahren gemäß der Erfindung die quantitative und vollständige
Trennung des Kanamycins A von Kanamycin B und Kanamycin C ermöglicht. Das Verfahren
läßt sich leicht für technische Arbeitsgänge ausgestalten, da man die Bestimmung desjenigen Punktes, bei
dem das Eluat das gewünschte Kanamycin A enthält, unmittelbar durch die laufende Messung des spezifischen
Widerstandes oder der Brechungszahl ermitteln kann.
Claims (3)
1. Verfahren zur Abtrennung von reinem Kanamycin A aus rohen oder vorgereinigten Gemischen,
die neben Kanamycin A im wesentlichen Kanamycin B sowie gegebenenfalls Kanamycin C
und Verunreinigungen enthalten, wie sie bei der mikrobiellen Herstellung von Kanamycin anfallen,
mit Hilfe von Ionenaustauschern, dadurch
gekennzeichnet, daß man eine Säule einer wäßrigen Aufschlämmung eines porösen, stark
basischen Anionenaustauscherharzes mit einer wäßrigen Lösung des Kanamycingemisches überschichtet,
die Lösung sodann durch die Säule leitet, anschließend die Säule mit Wasser oder
einer wäßrigen Lösung eines mit Wasser mischbaren organischen Lösungsmittels eluiert und die
zuerst selektiv eluierte Lösung von Kanamycin B, gegebenenfalls auch Kanamycin C, und die danach
abfließende Lösung von reinem Kanamycin A in getrennten Fraktionen auffängt.
2. Verfahren nach Anspruch 1, dadurch gekennzeichnet, daß man die Trennung der Fraktionen
mit Hilfe der Messung des spezifischen Widerstandes durchführt.
3. Verfahren nach Anspruch 1, dadurch gekennzeichnet, daß man die Trennung der Fraktionen
mit Hilfe der Messung des Brechungsexponenten durchführt.
Hierzu 1 Blatt Zeichnungen
609 609/396 8.66 © Bundesdruckerei Berlin
Applications Claiming Priority (1)
Application Number | Priority Date | Filing Date | Title |
---|---|---|---|
US1222489XA | 1958-09-12 | 1958-09-12 |
Publications (1)
Publication Number | Publication Date |
---|---|
DE1222489B true DE1222489B (de) | 1966-08-11 |
Family
ID=22401580
Family Applications (1)
Application Number | Title | Priority Date | Filing Date |
---|---|---|---|
DEM42620A Pending DE1222489B (de) | 1958-09-12 | 1959-09-03 | Verfahren zur Abtrennung von reinem Kanamycin A |
Country Status (1)
Country | Link |
---|---|
DE (1) | DE1222489B (de) |
-
1959
- 1959-09-03 DE DEM42620A patent/DE1222489B/de active Pending
Similar Documents
Publication | Publication Date | Title |
---|---|---|
DE69921192T2 (de) | Ethanolate des azithromycin, herstllungsverfahren und deren pharmazeutische zusammenstellungen | |
DE3345445C2 (de) | Verfahren zur Reinigung von 4-Demethoxy-daunorubicin und 4-Demethoxy-doxorubicin durch selektive Adsorption an Harzen | |
DE3229142C2 (de) | Verfahren und Vorrichtung zur chromatographischen Untersuchung einer Probenlösung auf Spurenmengen eines Anions | |
DE2719912A1 (de) | Verfahren zur isolierung von 0 geschweifte klammer auf -4,6-dideoxy-4 eckige klammer auf eckige klammer auf 1 s-(1,4,6/5)-4,5,6-trihydroxy-3-hydroxymethyl-2-cyclohexen-1-yl eckige klammer zu -amino eckige klammer zu -alpha-d-glucopyranosyl geschweifte klammer zu -(1- pfeil nach rechts 4)-0- alpha-d-glucopyranosyl-(1- pfeil nach rechts 4)-d-glucopyranose aus kulturbruehen | |
DE3784538T2 (de) | Verfahren zur trennung von glycopeptid-antibiotika. | |
CH370871A (de) | Verfahren zur Gewinnung eines antibiotischen Fermentierungsprodukts aus einer Fermentierungsbrühe | |
DE2846118C3 (de) | Verfahren zur Herstellung von Moranolin | |
DE1019301B (de) | Verfahren zur Reinigung von basischen Streptomyces-Antibiotika | |
DE2755577C2 (de) | Verfahren zur Gewinnung der Benzophenanthridin-Alkaloide, Chelidonin, Chelerythrin und Sanguinarin aus pulverisiertem Pflanzenmaterial | |
DE1222489B (de) | Verfahren zur Abtrennung von reinem Kanamycin A | |
DE2856577C2 (de) | Verfahren zur Gewinnung der Benzophenanthridin-Alkaloide Chelidonin, Chelerythrin und Sanguinarin aus pulverisiertem Pflanzenmaterial | |
AT220291B (de) | Verfahren zum Abtrennen von Kanamycin A aus Gemischen | |
DE2809897A1 (de) | Verfahren zur abtrennung von coformycin und seinen verwandten nucleosiden | |
DE2914807A1 (de) | Verfahren und vorrichtung fuer die chromatographische separierung und quantitative analyse einer vielzahl von ionenarten in einer probenloesung | |
DE3110737C2 (de) | ||
DE2720867C2 (de) | Verfahren zur quantitativen Abtrennung von Uran aus Proben natürlichen Wassers | |
DE933052C (de) | Verfahren zur Gewinnung von Vitamin B und Vitamin-B-gleichen Stoffen | |
DE961565C (de) | Verfahren zur Gewinnung von Vitamin B | |
DE1195010B (de) | Verfahren zur Reinigung von Heparin nach der Chromatographischen Methode | |
DE1518648C3 (de) | Verfahren zur Gewinnung von 1,4,-d -Zuckersäurelacton | |
DE946005C (de) | Verfahren zur Gewinnung von Vitamin B und anderen LLD- und APF-aktiven Substanzen | |
DE835178C (de) | Verfahren zur Herstellung von reinen Vitamin-B-Praeparaten mit Hilfe der chromatographischen Methode | |
DE930651C (de) | Verfahren zur Reinigung und Trennung der Vitamine der B-Gruppe durch Verteilungschromatographie | |
Korkisch et al. | Determination of small amounts of uranium after concentrating through extraction and anionic exchange in a solvent agent system containing tri-n-octylphosphine oxide | |
DE953643C (de) | Verfahren zur Abtrennung und Gewinnung von Vitamin B aus einem Verunreinigungen enthaltenden Vitamin-B-aktiven Konzentrat |