DE1134994C2 - Verfahren zum Stabilisieren von Co-Enzym A - Google Patents
Verfahren zum Stabilisieren von Co-Enzym AInfo
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Description
BUNDESREPUBLIK DEUTSCHLAND
DEUTSCHES
PATENTAMT
PATENTSCHRIFT 1134
ANMELDETAG: 4. SEPTEMBER 1957
BEKANNTMACHUNG
DER ANMELDUNG
UND AUSGABE DER
AUSLEGESCHRIFT: 23. AUGUST 1962
DER ANMELDUNG
UND AUSGABE DER
AUSLEGESCHRIFT: 23. AUGUST 1962
AUSGABE DER
PATENTSCHRIFT: 7. MARZ 1963
STIMMT ÜBEREIN
MIT AUSLEGESCHRIFT
1134 994 (R 21807 IVd/12 p)
Die vorliegende Erfindung betrifft ein Verfahren zum Stabilisieren des Co-Enzyms A.
Das Co-Enzym A ist instabil, sobald es zuviel Feuchtigkeit aufnimmt oder sobald es Temperaturen
über 4° C ausgesetzt wird, wobei sich die Instabilität verstärkt bemerkbar macht,..wenn beide Bedingungen
gleichzeitig auftreten. Durch Lyophilisation (Gefriertrocknung) kann man verhindern, daß das Co-Enzym
A überschüssige Feuchtigkeit aufnimmt, es war aber bisher trotzdem notwendig, das Produkt bei
Temperaturen unter 4°C aufzubewahren, um seine Zersetzung zu verhindern. Aus diesem Grunde konnte
das Produkt auf vielen an sich wünschenswerten Anwendungsgebieten nicht eingesetzt werden.
Das Co-Enzym A wird im allgemeinen als atypisches Dinucleotid angesehen, in welchem eines der Mononucleotide
möglicherweise durch das Phosphopantothein ersetzt sein kann; in dem letzteren ist Pantothensäure
mit einem Molekül /S-Mercaptoäthylamin durch
Verfahren zum Stabilisieren von Co-Enzym A
Patentiert für:
Michel Robilliart, Paris
Michel Robilliart, Paris
Beanspruchte Priorität:
V. St. v. Amerika vom 5. September 1956 (Nr. 607 991)
V. St. v. Amerika vom 5. September 1956 (Nr. 607 991)
Michel· Robilliart, Paris,
ist als Erfinder genannt worden
ist als Erfinder genannt worden
Peptidbindung verbunden. Es wird angenommen, daß das Co-Enzym A folgende Strukturformel besitzt:
CHo OH
,CH8-CH2
O!
CH2-C — CH — C-N
O CH3
O = P-OH NH2
O C = N
O = P-OH N-C CH
I ^
CH2-CH-CH-CH-CH-N-C-N
O OH
HO —P-OH
O
HO —P-OH
O
C — NH — CH„ — CH„ — SH
/ CH
Das Molekulargewicht des Co-Enzyms A beträgt 767.
Es wird angenommen, daß die Instabilität des Co-Enzyms A von der großen Aktivität der SH-Gruppe
in seinem Molekül herrührt. Es wurde nun überraschenderweise festgestellt, daß man den Co-Enzym-A-Komplex
bei Zimmertemperatur stabilisieren kann, wenn man eine wäßrige Lösung, die Co-Enzym A und
ein wasserlösliches, nicht zerfließliches Salz eines ein- oder zweiwertigen Metalls enthält, lyophilisiert. Es ist
dann möglich, den Co-Enzym-A-Komplex für eine verhältnismäßig lange Zeit aufzubewahren. Man
erhält auf diese Weise ein Produkt, welches im Hinblick auf seine enzymatischen Eigenschaften
stabil ist.
309 51fi/198
Co-Enzym A 1534
Calciumgluconat 448,3
Co-Enzym A 1534
Calciumbenzoat 336,3
Co-Enzym A 1534
Calciumcitrat 570,5
Das Calciumsalz reagiert mit dem Co-Enzym A, indem es vermutlich den Platz des Wasserstoffes der
SH-Gruppe in dem Molekül des Co-Enzyms A einnimmt, wobei folgender allgemeiner Reaktionsverlauf
angenommen werden kann: (Der Ausdruck Co A — SH
stellt das Molekül des Co-Enzyms A dar).
CoA-SH
CoA-SH
Calciumgluconat
CoAS,
CoAS
Ca
Das Reaktionsprodukt des Co-Enzyms A, welches in Form eines stabilisierten Metallsalzes vorliegt, ist
nach der Lyophilisation enzymatisch stabil. Wenn man es jedoch in eine wäßrige Lösung bringt, zersetzt es
sich unter Hydrolyse und bildet das Co-Enzym A zurück. Die Reaktion zwischen dem Co-Enzym A und
dem wasserlöslichen Salz, z. B. Calciumgluconat, geht unter stöchiometrischen Verhältnissen vor sich, d. h.,
wenn man ein in Wasser lösliches Salz eines einwertigen Metalls verwendet, so reagiert nur ein
Molekül Co-Enzym A an Stelle der beiden Moleküle.
Vorzugsweise wird aber das Co-Enzym A mit einem Überschuß des wasserlöslichen Salzes umgesetzt, da
dieser Überschuß des Salzes die Stabilität des erhaltenen Produktes nicht beeinflußt und nach der
Lyophilisation ein Reaktionsprodukt in Form eines Kuchens von gutem Aussehen und vorzüglicher Haltbarkeit
ergibt.
In den folgenden Beispielen wird ein Salzüberschuß angewendet:
Gewichtsteile
Co-Enzym A 0,300 mg
Calciumgluconat 5 mg
Gewichtsteile
Co-Enzym A 0,300 mg
Calciumbenzoat 5 mg
Gewichtsteile *
Co-Enzym A 0,300 mg
Calciumcitrat 5 mg
Das Reaktionsprodukt fällt in Form eines festen, leicht verwendbaren Kuchens an.
Außer den obengenannten Salzen kann man zum Stabilisieren des Co-Enzyms A auch andere nicht
zerfließende und in Wasser lösliche Metallsalze organischer Säuren und Salze von Mineralsäuren verwenden.
Als Beispiel für nicht zerfließende und in Wasser lösliche Salze zweiwertiger Metalle sind z. B.
die Salze des Magnesiums, Cadmiums, Nickelsr Kobalts, Eisens und Mangans zu nennen, doch werden
vorzugsweise die löslichen Calciumsalze organischer
ίο Säuren verwendet, da diese leicht wasserlöslich und
nicht zerfließend sind. Außer den Salzen der Säuren, die weiter oben schon genannt worden sind, kann man
äquivalente Mengen der wasserlöslichen Metallsalze der Essigsäure, Ameisensäure, Milchsäure, Bernsteinsäure,
Weinsäure und anderer organischer Säuren und Mineralsäuren verwenden, und zwar insbesondere die
nicht zerfließenden und wasserlöslichen Salze der Chlorwasserstoffsäure, Schwefelsäure und Salpetersäure.
Vorzugsweise können Natrium- oder Calciumsalze zweibasischer organischer Säuren, wie Gluconsäure,
oder auch der Benzoesäure verwendet werden.
Die Stabilität des Reaktionsproduktes des Co-Enzyms A mit dem Metallsalz läßt sich durch die
Tatsache beweisen, daß das Produkt dieselben spektrophotometrischen und chromatographischen Eigenschaften
wie das reine, durch Kälte stabilisierte Co-Enzym A besitzt.
Die Wirksamkeit des Verfahrens gemäß der Erfindung ergibt sich weiter aus folgenden Versuchen:
Die Wirksamkeit des Verfahrens gemäß der Erfindung ergibt sich weiter aus folgenden Versuchen:
Verwendet wurde ein Co-Enzym A mit zwei Molekülen Wasser, dessen Molekulargewicht zu 803 ermittelt
wurde. Das Produkt besitzt theoretisch 394 Lipman-Einheiten. Der Versuch ergab 373 Lipman-Einheiten.
Das Verhältnis der S Η-Gruppen zu Adenin beträgt theoretisch 1,00. Gemessen wurde ein Wert
von 0,77. Ein Teil dieses Produktes wurde mit Calciumgluconat gemäß Beispiel 4 versetzt. Der andere Teil
blieb ohne Zusatz. Die beiden Proben wurden in Reagenzgläser gebracht und der Luft bei 81°/0 relativer
Feuchtigkeit und einer Temperatur von 25 0C
ausgesetzt. Nach 4 Stunden war die Kontrollprobe vollständig geschmolzen, während das gemäß der
Erfindung stabilisierte Produkt ein weißes Pulver geblieben war, welches offensichtlich einige Feuchtigkeit
aufgenommen hatte und kristallin geworden war. Nach 24stündigem Stehen zeigte die letztere Probe das
Aussehen einer körnigen kristallinen Masse, die sich leicht mit einem Spatel zerteilen ließ. Die Analyse der
beiden Proben nach 24stündiger Lagerung bei 25 0C an der Luft mit 81°/o relativer Feuchtigkeit ergab
folgende Ergebnisse:
Verhältnis von SH-Gruppen zu Adenin
Prozentuale Oxydation
Erfindungsgemäß
stabilisiert
stabilisiert
0,610
19,8%
19,8%
Vergleichsprobe
0,460
39,8%
39,8%
Die prozentuale Oxydation wurde nach folgender Formel berechnet:
ursprüngliches Verhältnis — nach 24 Stunden gemessenes Verhältnis
ursprüngliches Verhältnis
100.
Zum Beweis, daß überraschenderweise auch Eisen- und Kupfersalze erfindungsgemäß verwendet werden
können, wurden drei Proben Co-Enzym A zu je 1000 fi.g
abgewogen. Die erste Probe enthielt einen Zusatz von 350 μg Kupfergluconat, die zweite Probe einen Zusatz
von 200 μg Ferrosulfat, die dritte Probe blieb ohne
Zusatz. Die Kationen befanden sich hierbei etwa in stöchiometrischem Verhältnis zum Co-Enzym A, wobei ein leichter Salzüberschuß vorhanden war. Sämtliche
drei Proben wurden gleichermaßen einer Lyophilisation unterworfen.
Die sorgfältig verschlossenen Proben wurden bei Zimmertemperatur (18 bis 22 0C) 7 Wochen lang aufbewahrt
und dann titriert.
Die Bestimmung der acetylierenden Wirkung geschah sowohl nach der Methode von Kaplan-Lipman
als auch nach der Transacetylase-Methode nach Stadtman (vgl. Method of Biochimical Analysis,
Vol. 2, S. 204).
Die erhaltenen Ergebnisse sind in Mikrogramm Co-Enzym A ausgedrückt. Die Ausgangsverbindung
wies einen Reinheitsgrad von 85 % auf, was 330 Einheiten
je mg Co-Enzym A entspricht.
Datum
7. 11.
20. 12.
20. 12.
20. 12.
Probe
Co-Enzym-A Nr. 418
1000 μg
1000 μg
Co-Enzym A Nr. 418
1000 μg
1000 μg
Co-Enzym A
1000 μg + 350 [Ag
Kupfergluconat
Kupfergluconat
Co-Enzym A
1000 μg + 200 μg
Ferrosulf at
Ferrosulf at
Methode
Kaplan
Kaplan
1008 μg
604 μg
604 μg
915
833
Transacetylase-Methode
926 μg
592
860 μg
910 μg
Methode Kaplan | Transacetylase-Methode |
980 μδ | 916 jig |
Obwohl die Anwendung des Calciumsalzes die besten Ergebnisse liefert, kann eine durchaus befriedigende
Konservierung auch bei ,Zusatz der Kupfer-' bzw. Eisensalze festgestellt werden. Das
ίο Ergebnis der Versuche würde noch auffallender sein,
wenn die Aufbewahrungszeit länger und die Lagerungstemperatur höher gewesen wären.
Im Mittel zeigen die Versuche eine Konservierung von 88,5% der Aktivität, nach der Transacetylase-Methode
gemessen, und von 88 % nach der Methode Kaplan. Der Fehler bei der Dosierung der Proben
wird auf ± 3% geschätzt; der Titrationsfehler ist auf ± 10% zu schätzen.
Claims (3)
1. Verfahren zum Stabilisieren von Co-Enzym A, dadurch gekennzeichnet, daß man eine wäßrige
Lösung, die Co-Enzym A und ein wasserlösliches, nicht zerfließliches Salz eines ein- oder zweiwertigen
Metalls enthält, lyophilisiert.
2. Verfahren nach Anspruch 1, dadurch gekennzeichnet, daß man ein Natrium- oder Calciumsalz
verwendet.
3. Verfahren nach Anspruch 1 und 2, dadurch gekennzeichnet, daß man ein Salz der Gluconsäure
oder der Benzoesäure verwendet.
Unter den gleichen Bedingungen ergibt ein mit Calciumgluconat versetztes Co-Enzym A folgende
Werte:
In Betracht gezogene Druckschriften:
Hοüben—Weyl, Methoden der organischen Chemie, Bd. 9 (1955), S. 43 bis 45;
Hοüben—Weyl, Methoden der organischen Chemie, Bd. 9 (1955), S. 43 bis 45;
Journal of the American Chemical Society, Bd. 76 (1954), S. 3575 bis 3577.
Applications Claiming Priority (1)
Application Number | Priority Date | Filing Date | Title |
---|---|---|---|
US607991A US2917434A (en) | 1956-09-05 | 1956-09-05 | Co-enzyme a and method of conserving the same |
Publications (2)
Publication Number | Publication Date |
---|---|
DE1134994B DE1134994B (de) | 1962-08-23 |
DE1134994C2 true DE1134994C2 (de) | 1963-03-07 |
Family
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Application Number | Title | Priority Date | Filing Date |
---|---|---|---|
DE1957R0021807 Expired DE1134994C2 (de) | 1956-09-05 | 1957-09-04 | Verfahren zum Stabilisieren von Co-Enzym A |
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US (1) | US2917434A (de) |
CH (1) | CH366258A (de) |
DE (1) | DE1134994C2 (de) |
Families Citing this family (3)
Publication number | Priority date | Publication date | Assignee | Title |
---|---|---|---|---|
US3429868A (en) * | 1956-03-12 | 1969-02-25 | Kiyoshi Kominato | Method of preparing a series of prosthetic groups and coenzymes of a new redox-enzyme which are present in plants,animals,or foods and have vitamin-like activity |
US3300476A (en) * | 1963-05-24 | 1967-01-24 | Mack Chem Pharm | Deoxyribonuclease blocking agents |
US4826968A (en) * | 1985-04-26 | 1989-05-02 | Research Corporation | S-alkylated coenzyme A with effect on polyamine acetylase |
-
1956
- 1956-09-05 US US607991A patent/US2917434A/en not_active Expired - Lifetime
-
1957
- 1957-09-02 CH CH5004057A patent/CH366258A/fr unknown
- 1957-09-04 DE DE1957R0021807 patent/DE1134994C2/de not_active Expired
Also Published As
Publication number | Publication date |
---|---|
CH366258A (fr) | 1962-12-31 |
DE1134994B (de) | 1962-08-23 |
US2917434A (en) | 1959-12-15 |
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