DD270542A1 - Verfahren zur herstellung von 26-desoxylaidlomycin - Google Patents
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Abstract
Die Erfindung betrifft ein Verfahren zur Herstellung von 26-Desoxylaidlomycin, das als Hauptprodukt eines Polyethergemisches bestehend des weiteren aus Laidlomycin auftritt, und das als Kokzidiostatikum und Pansenfermoregulator fuer die Therapie tierischen Parasitenerkrankungen sowie fuer die Tiermast von potentiellem Nutzen ist. Die Erfindung verfolgt das Ziel, das Antibiotikum 26-Desoxylaidlomycin in einem effektiven Prozess als Reinprodukt herzustellen. Die diesem Ziel zugeordnete Aufgabe wird geloest, indem der Mikroorganismus Streptoverticillium olivoreticuli IMET 43 861 auf einem komplexen Medium mit Kohlenstoff- und Stickstoffquellen sowie anorganischen Salzen unter submersen Kultivierungsbedingungen angezogen, 26-Desoxylaidlomycin zunaechst zusammen mit dem aehnlichen Antibiotikum Laidlomycin aus dem Myzel mittels organischer Loesungsmittel extrahiert und anschliessend mit chromatographischen Verfahren bis zur Homogenitaet gereinigt wird.
Description
Hierzu 3 Seiten Zeichnungen
Die Erfindung betrifft ein Verfahren zur Herstellung eines Polyether-Antibiotikums, 26-Desoxylaidlomycin, das als Futtermittelzusatz (Ergotropikum) sowie bei der Behandlung tierischer Parasitenerkrankungen in der Tierproduktion von potentiellem Nutzen ist. Das Anwendungsgebiet der Erfindung liegt somit in der mikrobiologischen Forschung und Industrie.
Streptomyceten und andere Vertreter der Actinomycetales-Familie bilden eine Reihe von Polyetherantibiutika (Carboxy.'säureionophore), von denen einige, so zum Beispiel Monensin A, Salinomycin, Lasalocid, Nigericin, Maduramycin, wogen ihrer Wirkung auf tierische Parasiten (Kokzidien) und wegen ihres guten ergotropen Effektes auf das Wachstum mono- und polygastrischer Tiere Anwendung gefunden haben (J.W. WESTLEY. Adv. Appl. Microbiol. 22,1977,177-223; J.W. WESTLEY, Antibiotics IV, Biosynthesis [J.W. Ed. CORCORAN], Springer-Verlag, Berlin-Heidelberg, New York, 1981, 41-73; J.W. WESTLEY, Polyether Antibiotics, Vol. I, Biology, Marcel Dekker Inc, 1983). Hauptanwendungsgebiete dieser Antibiotika sind die Geflügel- und die Rinderhaltung. Weiterhin wurden für Polyetherantibiotika cardiovaskuläre Effekte und antibiotische Wirkungen gegen Mykoplasmen, Viren, Schadpilze, Nematoden und Leberegel beschrieben.
Die bisher bekannten und in der Praxis eingesetzten Polyetherantibiotika weisen Nachteile auf, wie geringe therapeutische Breite bei der Anwendung und hohe Toxizität für Nulztiere und Pflegepersonal.
Das durch Streptomyces eurocidicus subspec. asterocidicus gebildete Laidlomycin ist bisher nicht in die Anwendung gelangt, da es hinsichtlich der Toxizität gegenüber Monensin A keine Vorteile aufweist (J. W. WESTLEY, 1983, a. a. 0.).
Die Erfindung verfolgt das Ziel, ein neues Polyetherantibiotikum, bezeichnet als 26-Desoxylaidlomycin, bereitzustellen, das al» Ergotropikum sowie als Chemctherapeutikum tierischer, durch Kokzidien verursachter Erkrankungen von potentiellem Nutzen iut.
Der Erfindung liegt die Aufgabe zugrunde, ein technologisch einfaches Verfahren zu beschreiben, .nit dessen Hilfe ein neues Polyetherantibiotikum unter Verwendung eines neuen Mikroorganismus auf fermentativem Wege unter Verwendung eines billigen Nährmediums gewonnen werden kann.
Erfindungsgemäß wird diese Aufgabe dadurch gelöst, daß ein Mikroorganismus der Art Streptoverticillium olivoreticuli, vorzugsweise der Stamm Streptoverticillium olivoreticuli AM 33375, unter aeroben und sterilen Kulturbedingungen in einem flüssigen Medium mit an sich bekönnten Kohlenstoff- und Stickstoffquollen, wie Glucose, Stärke bzw. Sojamehl, und mit an sich bekannten Mineralsalzzusätzen zum Medium submers kultiviert wird. Der Mikroorganismus AM 33375 ist in der Hinterlegungsstelle für Mikroorganismen der DDR, Zentralinstitut für Mikrobiologie und experimentelle Therapie der Akademie der Wissenschaften, DDR - 6900, Jena, Beutenbergstr. 11, unter der Registriernummer IMET 43861 hinterlegt worden.
Die Kultivierung und Erhaltung des eingesetzten Mikroorganismus der Art Streploverticillium olivoreticuli und hierbei insbesondere des Stammes IMET 43861 wird wie folgt vorgenommen:
In Glucose/Gelatine (5%ig) lyophüisierte Myzelfragmente werden auf Agrarnährböden und nachfolgend in flüssige, vorher sterilisierte Nfhrmedien eingeimpft, und das entstandene Myzel wird an sich bekannter Weise bei einer Temperatur zwischen 20°C
und 380C, vorzugsweise 260C, über einen Zeitraum von 2 Tagen bis 6 Tagen, vorzugsweise 4 Tagen, bei einem pH-Wert kultiviert, der zu Beginn der Fermentation zwischen pH 5,5 und pH 8,3 liegt. Als Kohlenstoff- und Stickstoffquelien können die in der Fermentationsindustrie üblichen Einsatzstoffe verwendet werden. Die Fermentation des eingesetzten Stammes der Art Streptoverticillium clivoreticuli kann in Steilbrustflaschen und Rundkolben verschiedenen Inhalts, in Glasfermentoren bzw. VeA-Tanks durchgeführt werden.
Der im Myzel vorhandene Antibiotikum-Anteil wird durch Methanol extrahiert, darüber hinaus werden geringere Mengen des Antibiotikums aus dem Kulturfiltrat bei pH 4,0 durch Extraktion mit organischen Lösungsmitteln, z. B. CHCI3, gewonnen. Die Extrakte werden im Vakuum bei 40 0C bis 60 °C bis nahe zur Trockne eingeengt und in wenig Methanol aufgenommen. Anschließend erfolgt die säulenchromatographische Trennung des Extraktgemisches unter Verwendung von organophilen Dextrangelen und Methanol als Laufmittel. Die durch ihre antibakterielle Aktivität gegenüber dem Testkeim Bncillus subtilis ATCC 6633 im Agrarplatten-Diffusionstest sowie durch ihre orangerote (Laidlomycin, I) bzw. gelbe Anfärbung (26-Desoxylaidlomycin, als freie Säure [II] bzw. Na-SaIz [Ul]) mit 3% Vanillin in konzentrierter H2SO4 erkenntlichen Polyether-enthaltenden Fraktionen werden zusammengegeben, eingeengt und der Säulenchromatographie an Kieselgel 60 (0,063 mm bis 0,2 mm) unter Verwendung von CHCl3/MeOH (97:3, v/v) unterworfen. Dabei werden in der Reihenfolge ihrer Elution gewonnen:
- Laidlomycin (Na-SaIz, I), (Hauptkomponente des Gemisches),
- in geringen Anteilen, 26-Desoxylaidlomycin (II) als freie Säure und
- 26-Desoxylaidlomycin (Na-SaIz, III).
(Kieselgel 60; Benzen/Aceton, 3:5, v/v) und Chromatographie an organophilen Dextrangelen unter Verwendung von Aceton als
2 880, 2 930, 2 9bO, 2 970, 3 350-3 600 (in KBr) Ri-Werte (Kieselgel
60; Fertigplatten): 0.45 (Benzen/Aceton, 3:5; v/v); 0.35 (CHCI3/MeOH; 9:1; v/v).
Tabelle 1 zeigt die antimikrobielle Aktivität von 26-Desoxylaidlomycin (III) im Vergleich zu Laidlomycin (I) bei Verwendung von Bacillus subtilis ATCC 6633 als Testkeim.
NMR-Spektrometrie (Varian XLAA 400, in CHCI3): Tabelle 2 gibt die Zuordnung der Signale des 100 MHz-13C-Spektrums von IM wieder.
Abb. 2 zeigt das Protonenspektrum des 26-Desoxylaidlomycin-Na (III) (400 MHz)., Abb. 3 das 100 MHz "CNMRSpektrum. Die Ergebnisse der kokzidiostatischen Wirksamkeitsprüfung von III (In-vitro-Test, intraallantoisch infizierte Hühnerembryonen mit Eimeria tenella Stamm WCAM-P20) sind in Tabelle 3 enthalten
Die Vorteile der Erfindung werden wie folgt gesehen:
- Gegenüber der chemisch verwandten Polyethersubstanz Ldidlomycin (I), die koproduziert wird, weist 26-Desoxylaidlomycin (III, Abb. 1) eine höhere Aktivität gegenüber grampositiven Bakterien auf.
- Gegenüber bereits kommerziell hergestellten Kokzidiostatika wie z. B. Monensin A ist bei vergleichbarer kokzidiostatischer Aktivität die EmbryotoxizitSt um mehr als den Faktor 10 vermindert.
- Der im Myzel enthaltene Folyetherkomplex, bestehend aus 26-Desoxylaidlomycin und Laidlomycin, kann durch Trocknen des aus Fermentationsansätzen gewonnenen feuchten Myzelrückstandes fixiert und in Form des Myzelpulvers zur Anwendung als Kokzidiostatikum gebracht werden.
a) Glucose 8; Ammoniumtartrat 4; KH2PO4 2; NaCI 5; MgSO4. 7 H2O 1; CaCI2 0.2; MnSO4. 7 H2O 0.01; Agar 15; pH 6,5 bis 7,0
b) Glucose 8; Ammoniumtartrat 4; NaCI 5; MgSO4. 7 H2O 1; CaCI2 0.2; MnSO4. 7 H2O 0 01; Agar 15; pH 6,5 bis 7,0 Inokulumkulturen werden durch Einsaaz von Myzelstücken der Agarkultur oder von gefriergetrockneten I lyzelien als Stammkultur in ein Medium folgender Zusammensetzung erhalten (g/l):
dem Sterilisieren) 6,8 bis 6,9.
stufenweise Maßstabvergrößerung durch Übertragung von Kulturproben in 5 I-Steilbrus!flaschen und jeweils weitere 24 Stunden
(g/l): Glucose 20; Hafermehl 20; Fleischextratk 3; NaCI 3; CaCO3 3; Fe2 (SO4) 0.4; MnCI2.4 H2O 0.6; pH 6,0 (nach dem Sterilisieren).
in Fermenioren 280 UpM. Eine Schaumbildung kann in an sich bekannter Weise durch Zusatz kleiner Mengen an Pclypropylenglykolkontrolliert werden.
Nach Beendigung der Fermentation wird das Myzel durch Separatoren abgetrennt. Aus 20I-Fermentationslösung werden so 0.4 kg bis 1.0 kg Fauchtmyzel erholten, das in 51 Methanol über Nacht bai Räumtemperatur belassen wird. Nach dem Absaugen vom extrahierten Myzel wird der Methanolextrakt im Vakuum bis nahe zur Trockne (Restfeuchte vorhanden) eingeengt. Das Kulturfiltrat wird mit CHCI3 (51) extrahiert und der beim Einengen des CHCI3-Extraktes erhaltene Rückstand ist mit dem Rückstard der Myzelextraktion zu vereinigen.
Der Rückstand der vereinigten Extrakte wird in wenig Methanol gelöst und am eine Säule, gefüllt mit organophilem Dextrangel in Methanol, aufgegeben (1 m x 0.5 m) und mit Methanol eluiert. Bioaktive Fraktionen, nachweisbar durch die antibiotische Aktivität gegenüber Bacillus subtilis ATCC 6633 sowie durch die orangerote bis gelbe Anfärbung beim Tüpfeln auf Kieselgelfolien nach Besprühen mit 9iner 3%igen Lösung von Vanillin in konz. H,SO4, werden zusammengegeben und eingeengt (Ausbeute 0.4 g). Das so erhaltene Rohprodukt wird des weiteren auf eine Säule, gefüllt mit Kieselgel 60 in CHCI3/MeOH (97:3, v/v), aufgegeben und mit dem gleichen Solvens eluiert. Dabei erscheinen der Reihe nach im Eluat Laidlomycin (I), 26-Desoxylaidlomycin (NaSaIz, III) und i-i geringen Mengen die freie Säure II, die jeweils durch dünnLchichtchromatographischen Nachweis (Kieselgelfolien, Benzen/Aceton 3:5-6:2, v/v; Besprühen mit 3% Vanillin in konz. H2SO4) erkannt werden (Ausbeute III: 100 mg; 1:40 mg). Die Feinreinigung der Fraktion des 26-Desoxylaidlomycin-Na (III) und die Abtrennung von geringen Mengen an I sowie von anderen Verunreinigungen erfolgt durch präparative Dünnschichtchromatographie an KieselgRl 60 unter Verwendung von Benzen/Aceton (6:3, v/v) als Laufmittel. Die das Polyetherantibiotikum III enthaltende Zone wird mit Aceton eluiert und das Eluat zur Trockne eingeengt. Anschließend wird das Produkt in wenig Aceton gelöst und auf eine Säule, gefüllt mit organophilem Dextrangel in Aceton (15 cm x 0,5 cm), aufgegeben und mit Aceton eluiert (Ausbeute 50 mg). Das Produkt wird in wenig CHCI3 gelöst und durch tropfenweise Zugabe von Methanol zum Auskristaüisieren gebracht (4"C).
Das nach Beendigung der Fermentation des Stammes Streptovarticillium olivoraticuli IMET 43861 erhaltene Myzel (siehe Beispiel 1) wird unter scnonenden Bedingungen (Ringstromtrockner u. ä.) bei 600C getrocknet. Dabei wird aus 20 I Fermentationsvolumen etwa 0,2 kg Trockenmyzel mit einem Gehalt an Polyether (I, III und II) von insgesamt 300 mg und einem relativen Anteil von Laidlomycin (I) zu 26-Desoxylaidlomycin (Il und III) von 1:2 erhalten.
Tabelle 1 Ί Antimikrobielle Aktivität von 2ß-Desoxyleidlomyein (III) (Hemmzonendurchmesser im Agarplatten-Diffusionstesi, Bacillus subtilis ATCC 6633 als Testkeim; in Klammern die für Laidlomycin ermittelten Werte.)
Konzentration | Hemmzonendurchmesser (mm) | SA-Agarme· |
(pg/Stanzloch) | SA-Agarme- | dium |
dium | +350 mM KCL | |
38 | ||
2.5 | 43 | 35 |
1.25 | 40 | 32 (24) |
0.62 | 39 (34) | 28(16) |
0.31 | 35(31) | 23(0) |
0.15 | 32 (26) | 16(0) |
0.08 | 27(0) | Spuren (0) |
0.015 | 21(0) |
Tabelle 2: 100 MH;. "C-NMR-Signale von 26-Desoxylaidlomycin-Na (III) und deren Zuordnungen (in CHCI3; chemische Verschiebung in ppm)
Atom | I- | Chemische Verschiebung | Multiplizität |
!. | 181.860 | S | |
B | 42.650 | d | |
7 | 75.753 | d | |
8 | 37.782 | d | |
9 | 66.144 | d | |
10 | 35.134 | d | |
11 | 70.940 | d | |
12 | 34.074 | t | |
13 | 107.935 | S | |
14 | 38.821 | t | |
15 | 33.401 | t | |
16 | 85.117 | S | |
17 | 82.141 | d | |
18 | 26.824 | t | |
19 | 30.925 | t | |
20 | 84.273 | S | |
21 | 86.857 | d | |
22 | 34.402 | d | |
23 | 32.652 | t | |
24 | 78.186 | d | |
25 | 73.975 | d | |
26 | 33.059 | d | |
27 | 36.254 | t | |
28 | 40.491 | d | |
29 | 97.750 | S | |
30 | 28.423 | q | |
31 | 17.231 | q | |
32 | 17.512 | q | |
33 | 15.455 | q | |
34 | 23.474 | q | |
35 | 25.879 | q | |
36 | 10.064 | q | |
37 | 10.278 | q | |
15.952 | q | ||
173.541 | S | ||
27.8d2 | t | ||
9.347 | q |
ο Singulett; d Dublett; t Terzett; q Quartett
Tabelle 3: Ergebnisse der Testung von 26-Desoxylaidlomycin auf kokzidiostatische Aktivität gegen Eimeria tenella. Stamm WCAMP20, in intraallantoiscl· infizierten Hühnerembryonen
Konzentration im Test | Gruppen | Letalität | Letalität | Testergebnis |
(pg/Embryo) | stärke | ,m Experi | der Kon | |
ment | trollgruppe | |||
1. Akute Toxizität | ||||
200 | 10 | 10% | _ | |
100 | 10 | 0% | _ | |
33 | 10 | 0% | - | LD50 > 200 pg |
10 | 10 | 0% | - | |
2. Kokzidiostase | ||||
10 | *,9 | 0% | 97% | + + + |
1 | 19 | 79% | 97% | - |
+ + + = ρ < 0,001 (Vierfeldertest nach FISHER)
Claims (5)
1. Verfahren zur Herstellung von 26-Desoxylaidlomycin auf mikrobiologischem Wege gekennzeichnet dadurch, daß der Mikroorganismus Streptoverticillium olivoreticuli AM 33375 (IMET 43861) unter aeroben und sterilen Bedingungen in flüssigen Nährmedien, die eine Kohlenstoff- und eine Stickstoffquelle sowie Mineralsalze enthalten, bei einer Temperatur von 200C bis 300C für die Deuer von 2 Tagen bis 6 Tagen bei einem pH-Wert, der zu Beginn des Fermentationsprozesses zwischen pH 5,5 und pH 8,3 liegt, kultiviert wird und 26-Desoxylaidlomycin aus dem Myzel isoliert und gereinigt wird.
2. Verfahren nach Anspruch 1, gekennzeichnet dadurch, daß das im feuchten Myzel gespeicherte 26-Desoxylaidlomycin mit lipophilen organischen Lösungsmitteln extrahiert wird.
3. Verfahren nach Anspruch 2, gekennzeichnet dadurch, daß das im feuchten Myzel gespeicherte 26-Desoxylaidlomycin mit Methanol extrahiert wird.
4. Verfahren nach Anspruch 1 bis 3, gekennzeichnet dadurch, daß 26-Dexoxylaidlomycin durch an sich bekannte chromatographische Verfahren in reiner Form gewonnen wird.
5. Verfahren nach Anspruch 1, gekennzeichnet dadurch, daß 26-Dexoxylaidlomycin zusammen mit Laidlomycin als Myzeladsorbat durch Trocknen des auf fermentativem Wege erhaltenen Myzels erhalten wird.
Priority Applications (1)
Application Number | Priority Date | Filing Date | Title |
---|---|---|---|
DD31463488A DD270542A1 (de) | 1988-04-12 | 1988-04-12 | Verfahren zur herstellung von 26-desoxylaidlomycin |
Applications Claiming Priority (1)
Application Number | Priority Date | Filing Date | Title |
---|---|---|---|
DD31463488A DD270542A1 (de) | 1988-04-12 | 1988-04-12 | Verfahren zur herstellung von 26-desoxylaidlomycin |
Publications (1)
Publication Number | Publication Date |
---|---|
DD270542A1 true DD270542A1 (de) | 1989-08-02 |
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Family Applications (1)
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---|---|---|---|
DD31463488A DD270542A1 (de) | 1988-04-12 | 1988-04-12 | Verfahren zur herstellung von 26-desoxylaidlomycin |
Country Status (1)
Country | Link |
---|---|
DD (1) | DD270542A1 (de) |
Cited By (1)
Publication number | Priority date | Publication date | Assignee | Title |
---|---|---|---|---|
WO1995007997A1 (en) * | 1993-09-17 | 1995-03-23 | Won Cheol Shin | New antifungal antibiotic, and new bacillus sp. microorganism which can produce the above antibiotic and its manufacturing method |
-
1988
- 1988-04-12 DD DD31463488A patent/DD270542A1/de not_active IP Right Cessation
Cited By (2)
Publication number | Priority date | Publication date | Assignee | Title |
---|---|---|---|---|
WO1995007997A1 (en) * | 1993-09-17 | 1995-03-23 | Won Cheol Shin | New antifungal antibiotic, and new bacillus sp. microorganism which can produce the above antibiotic and its manufacturing method |
GB2296716A (en) * | 1993-09-17 | 1996-07-10 | Won Cheol Shin | New antifungal antibiotic,and new bacillus SP microorganism which can produce the above antibiotic and its manufacturing method |
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