CS226407B2 - Method of determining mb creatinkinase - Google Patents

Method of determining mb creatinkinase Download PDF

Info

Publication number
CS226407B2
CS226407B2 CS80907A CS90780A CS226407B2 CS 226407 B2 CS226407 B2 CS 226407B2 CS 80907 A CS80907 A CS 80907A CS 90780 A CS90780 A CS 90780A CS 226407 B2 CS226407 B2 CS 226407B2
Authority
CS
Czechoslovakia
Prior art keywords
fragments
subunit
monovalent
antibodies
inhibit
Prior art date
Application number
CS80907A
Other languages
English (en)
Inventor
Wolfgang Dr Gruber
Helmut Dr Lenz
Siegfried Dr Looser
Hans Ralf Dr Linke
Original Assignee
Boehringer Mannheim Gmbh
Priority date (The priority date is an assumption and is not a legal conclusion. Google has not performed a legal analysis and makes no representation as to the accuracy of the date listed.)
Filing date
Publication date
Application filed by Boehringer Mannheim Gmbh filed Critical Boehringer Mannheim Gmbh
Publication of CS226407B2 publication Critical patent/CS226407B2/cs

Links

Classifications

    • CCHEMISTRY; METALLURGY
    • C12BIOCHEMISTRY; BEER; SPIRITS; WINE; VINEGAR; MICROBIOLOGY; ENZYMOLOGY; MUTATION OR GENETIC ENGINEERING
    • C12QMEASURING OR TESTING PROCESSES INVOLVING ENZYMES, NUCLEIC ACIDS OR MICROORGANISMS; COMPOSITIONS OR TEST PAPERS THEREFOR; PROCESSES OF PREPARING SUCH COMPOSITIONS; CONDITION-RESPONSIVE CONTROL IN MICROBIOLOGICAL OR ENZYMOLOGICAL PROCESSES
    • C12Q1/00Measuring or testing processes involving enzymes, nucleic acids or microorganisms; Compositions therefor; Processes of preparing such compositions
    • C12Q1/48Measuring or testing processes involving enzymes, nucleic acids or microorganisms; Compositions therefor; Processes of preparing such compositions involving transferase
    • C12Q1/50Measuring or testing processes involving enzymes, nucleic acids or microorganisms; Compositions therefor; Processes of preparing such compositions involving transferase involving creatine phosphokinase
    • GPHYSICS
    • G01MEASURING; TESTING
    • G01NINVESTIGATING OR ANALYSING MATERIALS BY DETERMINING THEIR CHEMICAL OR PHYSICAL PROPERTIES
    • G01N33/00Investigating or analysing materials by specific methods not covered by groups G01N1/00 - G01N31/00
    • G01N33/48Biological material, e.g. blood, urine; Haemocytometers
    • G01N33/50Chemical analysis of biological material, e.g. blood, urine; Testing involving biospecific ligand binding methods; Immunological testing
    • G01N33/70Chemical analysis of biological material, e.g. blood, urine; Testing involving biospecific ligand binding methods; Immunological testing involving creatine or creatinine
    • YGENERAL TAGGING OF NEW TECHNOLOGICAL DEVELOPMENTS; GENERAL TAGGING OF CROSS-SECTIONAL TECHNOLOGIES SPANNING OVER SEVERAL SECTIONS OF THE IPC; TECHNICAL SUBJECTS COVERED BY FORMER USPC CROSS-REFERENCE ART COLLECTIONS [XRACs] AND DIGESTS
    • Y10TECHNICAL SUBJECTS COVERED BY FORMER USPC
    • Y10STECHNICAL SUBJECTS COVERED BY FORMER USPC CROSS-REFERENCE ART COLLECTIONS [XRACs] AND DIGESTS
    • Y10S435/00Chemistry: molecular biology and microbiology
    • Y10S435/962Prevention or removal of interfering materials or reactants or other treatment to enhance results, e.g. determining or preventing nonspecific binding
    • YGENERAL TAGGING OF NEW TECHNOLOGICAL DEVELOPMENTS; GENERAL TAGGING OF CROSS-SECTIONAL TECHNOLOGIES SPANNING OVER SEVERAL SECTIONS OF THE IPC; TECHNICAL SUBJECTS COVERED BY FORMER USPC CROSS-REFERENCE ART COLLECTIONS [XRACs] AND DIGESTS
    • Y10TECHNICAL SUBJECTS COVERED BY FORMER USPC
    • Y10STECHNICAL SUBJECTS COVERED BY FORMER USPC CROSS-REFERENCE ART COLLECTIONS [XRACs] AND DIGESTS
    • Y10S435/00Chemistry: molecular biology and microbiology
    • Y10S435/968High energy substrates, e.g. fluorescent, chemiluminescent, radioactive

Landscapes

  • Life Sciences & Earth Sciences (AREA)
  • Chemical & Material Sciences (AREA)
  • Health & Medical Sciences (AREA)
  • Engineering & Computer Science (AREA)
  • Organic Chemistry (AREA)
  • Molecular Biology (AREA)
  • Immunology (AREA)
  • Zoology (AREA)
  • General Health & Medical Sciences (AREA)
  • Proteomics, Peptides & Aminoacids (AREA)
  • Microbiology (AREA)
  • Urology & Nephrology (AREA)
  • Analytical Chemistry (AREA)
  • Wood Science & Technology (AREA)
  • Physics & Mathematics (AREA)
  • Biochemistry (AREA)
  • Hematology (AREA)
  • Biomedical Technology (AREA)
  • Biotechnology (AREA)
  • Genetics & Genomics (AREA)
  • General Engineering & Computer Science (AREA)
  • Cell Biology (AREA)
  • Bioinformatics & Cheminformatics (AREA)
  • Biophysics (AREA)
  • Food Science & Technology (AREA)
  • Medicinal Chemistry (AREA)
  • General Physics & Mathematics (AREA)
  • Pathology (AREA)
  • Measuring Or Testing Involving Enzymes Or Micro-Organisms (AREA)
  • Enzymes And Modification Thereof (AREA)
  • Peptides Or Proteins (AREA)

Description

Vynález se týká způsobu stanovení kreatinkinázy MB, dále nazývané zkratkou KK-MB, v séru.
V lidském těie se vyskytují dvě podjednotky uvedeného enzymu, podjednotky M a B. Protože aktivní enzym je složen vždy ze dvou podjednotek a protože obě podjednotky se mohou spolu volně kombinovat, jsou možné tři typy enzymů: svalový typ KK-MM, mozkový typ KK-BB a hybridní typ KK-MB, který se vyskytuje hlavně v myokardu, při srdečním infarktu se vylučuje do séra a pak jej tam lze zjistit ve vyšší koncentraci. Aktivita tohoto hybridního enzymu se může kromě celkové aktivity KK v séru použít pro diagnózu srdečního infarktu.
Je známé, že přídavkem specifických protilátek proti podjednotce KK-M lze vyřadit svalový typ isoenzymu KK-MM, vyskytující se v séru, a pak změřit podle některé ze známých metod pro stanovení KK ještě zbylý hybridní enzym KK-MB. Přitom bylo použito jak srážecích, tak též inhibujících protilátek. Nedostatek však spočívá v tom, že se přitom též inhiboval z 80 % hybridní enzym KK-MB (Clin. Chim. Acta, 58, 223-232 /1975//). Bylo sice již známé získávat protilátky, které inhibují svalový typ KK-MM úplně a mozkový typ KK-BB neinhibují vůbec (Immunochemistry, Vol. 6, 681-687 /1969/).
......
Ačkoliv u takových protilátek se podjednotka B v hybridním enzymu KK-MB vůbec neinhibuje a tím spolehlivost metody stanovení zvyšuje, má i tento postup ještě značné nedostatky. Ukázalo se totiž, že i při použití nejčistších antigenů (KK-MM) poskytovala zvířata použitá pro vytváření protilátek převážně sérum, které inhibovalo hybridní enzym KK-MB z více než 55 %, většinou mezi 60 a 90 °/o. Bylo proto třeba u každého zvířete použitého pro imunizaci zkoumat, zda vzniklé ' protilátky proti KK-MB inhibují pouze z 50 % nebo silněji. Nepřihlíží-li se k tím vznikajícím nákladům, vede to k tomu, že největší část získaných sér nelze prakticky použít, protože se vyskytují vždy rozdílné stupně inhibice. Rovněž séra vyrobená z loužičky odstraňují tuto obtíž jen částečně. K tomu dále přistupuje, že množství KK-MB v séru je při srdečním . infarktu neobyčejně malé a u protilátek, jež opět jeho značnou část vyřadí, se spolehlivost metody silně zmenší.
Úkolem vynálezu je odstranit uvedené nedostatky a vytvořit způsob uvedeného druhu, jenž zejména umožňuje použít protilátky inhibující KK-MM úplně, avšak KK-MB pouze z více než 55 % takovým způsobem, že lze stanovit celkovou aktivitu podjednotky B v hybridním enzymu KK-MB.
Předmětem' vynálezu je způsob stanovení kreatinkinázy MB v séru imunologickým vyřazením podjednotky M a měřením podjednotky B, vyznačující se tím, že se k reakční násadě sestávající z protilátek proti podjednotce M přidají monovaientní fragmenty, získané proteolytickým štěpením za redukčních podmínek, čímž se vyřadí podjednotka M, načež se stanoví podjednotka B například pomocí luciferln-luciferinázové reakce.
Je sice známé, že enzymy jsou inhibovány nejen přirozenými protilátkami patřícími k isogamaglobulinové frakci popřípadě ke gamaglobulinům a mající molekulovou hmotnost 130 000 až 210 000, nýbrž též vznikají proteolytickým štěpením těchto protilátek fragmenty, jež sice ztrácejí srážecí schopnost, protože jsou oproti divalentním látkám pouze monovalentní, avšak inhibiční vlastnosti monovalentních fragmentů se liší jen nepatrně od inhibičních vlastností divalentních protilátek (Kontakte 3/78, 10—17). Označují se jako FAB-fragmenty (Biochem. J. 73, 119—126 /1959/, Immunochem 4, 369 /1967//).
S překvapením bylo nyní zjištěno, že k tomu tak v daném případě není, nýbrž z protilátek, jež inhibují KK-MM úplně a KK-MB z více než 55 °/o, zejména z 60 až 90 °/o, se získají monovalentní fragmenty (FAB-fragmenty), inhibující KK-MM stále ještě úplně, to je z 99 až 100 °/o, avšak KK-MB inhibují v rozsahu meze chyby ' pouze z 50 %. Tím se umožňuje používat antiséra získaná z vhodných pokusných zvířat jako ovcí, králíků, slepic a podobně, pro stanovení KK-MB, aniž by bylo nutné nákladnými -analytickými metodami vytřiďovat antiséra, jež inhibují KK-MB z více ' než ·asi 53 %. Spíše je nyní možné séra proteolyticky štěpit za redukčních podmínek bez předcházejícího stanovení jejich ' inhibičních vlastností a pomocí fragmentů ze štěpení pak specificky vyřadit podjednotku KK-M bez ohledu na to, zda je obsažena ve svalovém enzymu KK-MM nebo v hybridním enzymu KK-MB. Výhodně se v rámci vynálezu používají monovalentní fragmenty získané z protilátek, jež inhibují hybridní enzym KK-MB · z více než 55 ' °/o, zejména z 60 až 90 · %, a svalový typ isoenzymu KK-MM inhibují úplně.
Podle další výhodné varianty provedení vynálezu se používají monovalentní fragmenty, z nichž jsou odděleny zbytkové totální protilátky a fragmenty schopné krystalizace (Fk). Oddělení lze provádět podle známých metod, například gelovou chromatografií nebo dialýzou proti roztoku soli a srážením síranem zinečnatým (Immunochem. 14, 99 /1977//).
Monovalentní fragmenty získané známým způsobem, · které, jak uvedeno, se vyčistí od protilátek a fragmentů Fk, lze použít jako takové ve způsobu podle vynálezu. Výhodně se však používá monovalentních fragmentů, jejichž SH— skupiny byly předtím alkylovány. Vhodná jsou alkylační činidla účinná ve vodném prostředí při hodnotách pH, jež nemění terciární strukturu proteinů. Příkladem pro to jsou jodacetát a jodacetamid, přičemž posléze uvedený se používá přednostně, protože je současně schopen inalktivovat proteolytické enzymy použité pro výrobu fragmentů.
Při výrobě antisér potřebných k získání FABTragmentů používaných podle vynálezu se uplatňují obvyklé imunizační metody popsané hojně v literatuře. Odkazuje se například na „Methods of Immunology and Immunochemistry“ sv. 4, str. 313 a dále [1976) zejména str. 336. Obecně záleží při imunizaci na použití co nejčistších antlgenů a na dostatečně dlouhé imunizaci. Obecné metody jsou popsány například v „Immunologische Arbeitsmethoden“, VEB Gustav Fischer Verlag Jena, 1976, 368—370, a „Microbiology“, nakladatelství Harper & Row, New York, 1970, · 458/459. Čisté KK-MM isoenzymy [antigeny) vhodné pro imunizaci lze získat podle aBb 150, 648—678 (1972), přičemž se při isolování a čištění přidává k pufru dithiotreitol pro stabilizaci.
Z antisér se získá obvyklým způsobem isogamaglobulinová (IgG) frakce popřípadě gamaglobulin a poté za redukčních podmínek se štěpí proteolytickým enzymem, atakujícím Hingeho oblast. Příkladem · pro to jsou papain a pepsin. Štěpení je například popsáno v „The Antibody Molecule“, Academie Press New York, 1975, ·322—326. Pro vytvoření redukčních podmínek se obvykle přidávají sloučeniny obsahující SH— skupiny, například cystein, merkaptoethanol a podobné. Inkubace proteolytickým enzymem se zastaví, jakmile je štěpení úplné, vhodně přídavkem známého inaktivačního činidla. Jak již vpředu uvedeno· dává se přednost jodacetamidu. Volné SH— skupiny FAB-tragmentů vzniklých při štěpení se pomocí těchto inaktivačních činidel alkylují. FAB-fragmenty upravené tímto způsobem se hodí v · rámci vynálezu obzvlášť dobře, zejména odstraní-li se ještě zbytkové protilátky a Fk fragmenty. Dochází pak k úplné inhibici KK-MB bez vzniku sraženin a činí prakticky přesně 50 %. Avšak v rámci vynálezu lze použít též FAB--ragmentů, jež nejsou alkylovány nebo vyčištěny od průvodních látek, i když tím vznikne poněkud větší chyba při stanovení, která však leží vždy ještě v rozsahu použitelnosti, to je inhibuje · hybridní enzymy z 50 % + 3 %.
Stanovení jednotky B v hybridním enzymu KK-MB po přídavku monovalentních protilátek se pak provádí podle všeobecně známých metod stanovení KK, vycházejících z kreatinu nebo kreatinfosfátu jako substrátu. Vhodné způsoby jsou popsány například v „Methoden der enzymatischen Analyse“, H. V. Bergmeyer, Verlag Chemie, sv. 1, 3. vydání str. 813—825. Zvlášť vhodný je způsob, používající velmi citlivou metodu a spočívající na luctferinové-luciferázové reakci a ki226407 netickém měření emitovaného množství světla.
Způsob podle vynálezu umožňuje použití antisér proti KK-Mm pro kvantitativní stanovení KK-MB, které byly získány podle některé z imunizačních metod popsaných v literatuře a které dosud nebyly použitelné pro diagnosticky spolehlivý KK-MB test v séru. Rovněž antisér, způsobujících kromě inhibice srážení, lze podle vynálezu použít. Antiséra s příliš velkou inhibicí KK-MB, odpadající ve velmi značné míře i při vybroušených imunizačních metodách, není již třeba vytřiďovat, odpadá nákladná analytika pro rozlišení neupotřebitelných a upotřebitelných antisér. Posléze uvedená skutečnost je obzvlášť významná, protože vytestování inhibice KK-MB antiséra je možné pouze na preparátech KK-MB z čerstvých sér pacientů se srdečním infarktem. Odpadnutí inhibičního testu vede proto ke značnému zjednodušení.
Následující příklady objasňují vynález blíže.
Příklad 1
a) Příprava IgG-frakce
K sérům z ovcí, imunizovaných podle schéma popsaného dříve citovaných „Immunologische Arbeitsmethoden“ humánním KK-MM, se přidá krystalický síran amonný při 0 až 4 °C a pH 7 do 1,8 M. Po odstředění se sraženina rozpustí v pufru 0,1 M TRIS/0,15 . M NaCl, pH 8, a vydatně dialyzuje proti fosforečnanovému pufru 10 mM, pH 7,1. Dialyzát znovu vyčeřený centrifugováním se nanese na sloupec naplněný diethylaminoethylcelulózou. Proteinový filtrát a eluát získaný 15 mM fosfátovým/10 mM NaCl pufrem, pH 7,1 se spojí a obsahují více než 95 % čistého IgG.
c) Čištění FAB-fragmenlů
Po zahuštění na 30 mg/1 ultrafiltrací se směs po štěpení rozdělí gelovou chromatografií (The LKB Instrument Journal 24, (1977), 10 j. FAB-fragmenty . se eluují jako poslední proteinový pík dobře oddělené od IgG a Fk fragmentů. FAB-dirakce se může po zahuštění ultrafiltrací použít přímo k inhibování KK-MM nebo KK-MB. Inhibice KK-MB činí v rozsahu meze chyb 50 %. Inhibice KK-MM činí 99 až 100 %.
Příklad 2
a) Příprava gamaglobullnové frakce z ovčí plasmy
K citrátové plasmě z ovcí imunizovaných 4 až 6 týdnů KK-MM se přidá 25 mM roztoku chloridu vápenatého a nasadí po dobu asi 2 hodin při teplotě místnosti ke koagulaci. Po mechanickém rozdrobení sraženiny se zředí 1 objemem fyziologického roztoku NaCl a k adsorpci lipoproteinu se přidá 2 % silikátového vločkovadla (Aerosil).
Centrifugováním se získá čirá odsazená kapalina. Z této kapaliny se při 0 až 4 °C a pH 7 vysráží 1,8 M roztokem síranu amonného frakce gamaglobulinu a shromáždí centrifugováním. Dialýzou proti pufru 50 mM TRIS/0,1 M NaCl, pH 7,5 a zahuštěním ultrafiltrací se získá preparát vhodný pro enzymatické štěpení.
b) Papainové štěpení
Postupuje se jak popsáno v příkladu lb], avšak s malou obměnou pro gamaglobulinovou frakci. Použije se 1,5 % papainu na gram proteinu gamaglobulinové frakce a inkubační doba činí 20 hodin při 25 °C. Ostatní podmínky jsou stejné.
b) Papainové štěpení
c) Čištění ΡΑΒ--ΓηΚ<^
IgG se podle způsobu popsaného v Immunochem. 4, 369, (1967) inkubuje za redukččních podmínek (10 mM cystein) 1,5 % papainu (hmotn. vztaženo na množství IgG proteinu ) při pH 7,5 po dobu 5 hodin při 37° Celsia. Na konci inkubační fáze se působení enzymu zastaví přebytkem jodacetamidu a po alkylaci volných SH— skupin se inkubuje při pH 7,5 2 hodiny při teplotě místnosti. Stabilizovaná směs po štěpení obsahuje FAB-fragmenty, Fk fragmenty a 10 °/o nerozštěpeného IgG. Výtěžek imunní reaktivity činí více než 75 %.
Alkylovaná směs po štěpení se dialyzuje proti fyziologickému roztoku chloridu sodného, pak se přidá 25 mM roztok síranu zinečnatého (Immunochem. 14, 99, /1977/). Tím se vysráží zbytky nerozštěpených IgG a Fk fragmentů a oddělí centrifugováním. Zbylé FAB-hragmenty jsou po dialýze a zahuštění hotové pro použití v testu KK-MB. Výtěžek činí více než 80 % inhibiční aktivity pro isoenzym KK-MM, vztaženo na výchozí plasmu. KK-MB se inhibuje z 50 % nezávisle od inhibiční hodnoty pro nerozštěpené protilátky. Výsledky získané s různými séry podává následující tabulka.
Ί
Tabulka
Číslo zvířete °/o inhibice enzymové aktivity
KK-MM (600-1000 j./l) KK-MB (200-400 j./l)
Výchozí sérum FAB-fragmenty Výchozí sérum FAB-fragmenty (plasma)
1 99,5 99,5 62 52
2 99,6 99,3 99,7 56 53
3 99,1 64 49
4 98,5 99,3 68 52
pRedmEt

Claims (7)

1. Způsob stanovení kreatinkinázy MB v séru imunologickým vyřazením podjednotky M a měřením podjednotky B, vyznačující se tím, že se к reakční násadě sestávající z protilátek proti podjednotce M přidají monovalentní fragmenty, získané proteolytickým štěpením za redukčních podmínek, čímž se vyřadí podjednotka M, načež se stanoví podjednotka В například pomocí luciferin-luciferinázové reakce.
2. Způsob podle bodu 1 vyznačující se tím, že se použijí monovalentní fragmenty získané z protilátek, inhibující hybrydní enzym kreatinkinázy MB alespoň z 55 % a inhibující úplně isoenzym kreatinkinázy MM.
3. Způsob podle bodu 2 vyznačující se tím, že se použijí monovalentní fragmenty protilátek inhibující hybridní enzym kreatinkinázy MB z 60 až 90 %.
VYNALEZU
4. Způsob podle bodů 1 až 3 vyznačující se tím, že se použijí monovalentní fragmenty, z nichž jsou odděleny zbývající totální protilátky s fragmenty schopné krystalizace.
5. Způsob podle bodů 1 až 4 vyznačující se tím, že se přidají monovalentní fragmenty, jejichž SH-skupiny jsou alkylovány jodacetamidem, jodacetátem nebo N-maleinimidem.
6. Způsob podle bodu 5 vyznačující se tím, že se přidají monovalentní fragmenty alkylované jodacetamidem nebo jodacetátem.
7. Způsob podle bodů 1 až 6 vyznačující se tím, že se podjednotka В stanoví pomocí luciferin-luciferinázové reakce a emitované množství světla se měří kineticky.
CS80907A 1979-03-02 1980-02-11 Method of determining mb creatinkinase CS226407B2 (en)

Applications Claiming Priority (1)

Application Number Priority Date Filing Date Title
DE2908053A DE2908053C2 (de) 1979-03-02 1979-03-02 Verfahren und Reagenz zur Bestimmung der Creatinkinase MB

Publications (1)

Publication Number Publication Date
CS226407B2 true CS226407B2 (en) 1984-03-19

Family

ID=6064229

Family Applications (1)

Application Number Title Priority Date Filing Date
CS80907A CS226407B2 (en) 1979-03-02 1980-02-11 Method of determining mb creatinkinase

Country Status (18)

Country Link
US (1) US4330620A (cs)
EP (1) EP0015508B1 (cs)
JP (1) JPS5820274B2 (cs)
AR (1) AR219440A1 (cs)
AT (1) ATE263T1 (cs)
AU (1) AU515930B2 (cs)
CA (1) CA1160942A (cs)
CS (1) CS226407B2 (cs)
DD (1) DD149421A5 (cs)
DE (2) DE2908053C2 (cs)
DK (1) DK154459C (cs)
ES (1) ES488774A1 (cs)
FI (1) FI72145C (cs)
HU (1) HU181684B (cs)
IE (1) IE49158B1 (cs)
SU (1) SU1336941A3 (cs)
YU (1) YU42965B (cs)
ZA (1) ZA801158B (cs)

Families Citing this family (6)

* Cited by examiner, † Cited by third party
Publication number Priority date Publication date Assignee Title
US4614712A (en) * 1983-02-25 1986-09-30 The Upjohn Company Immunoassays with luciferase labeled ligands or receptors
CA1260828A (en) * 1983-07-04 1989-09-26 Masakazu Iwai Therapeutic and prophylactic agent for gastrointestinal ulcers
JPS60125565A (ja) * 1983-12-12 1985-07-04 Amano Pharmaceut Co Ltd エノラ−ゼサブユニット量の分別定量法
US4810639A (en) * 1985-12-20 1989-03-07 E. I. Du Pont De Nemours And Company Immunoassay for CK-MB using bound and soluble antibodies
JPS63131065A (ja) * 1986-11-20 1988-06-03 Yatoron:Kk 抗体の精製法とアイソザイムの測定法及び試薬
CN110133265B (zh) * 2019-06-10 2022-03-15 天津市宝坻区人民医院 血清中肌酸激酶试剂盒及测定方法

Family Cites Families (6)

* Cited by examiner, † Cited by third party
Publication number Priority date Publication date Assignee Title
DE2128670B2 (de) * 1971-06-09 1977-06-30 Merck Patent Gmbh, 6100 Darmstadt Immunologische isoenzym-bestimmungsmethode
US4001088A (en) * 1974-08-02 1977-01-04 Antonik Alan S Method for the determination of creatine phosphokinase enzyme
DE2548962C2 (de) * 1975-11-03 1985-11-21 Merck Patent Gmbh, 6100 Darmstadt Antikörper gegen die Untereinheit M von Creatinkinase-Isoenzymen
DE2548963C3 (de) * 1975-11-03 1982-03-11 Merck Patent Gmbh, 6100 Darmstadt Verfahren und Mittel zur Bestimmung der Aktivität von Creatinkinase-MB
JPS5344622A (en) * 1976-09-30 1978-04-21 Mochida Pharm Co Ltd Immunologically measuring method
DE2828658C3 (de) * 1978-06-29 1981-10-22 Lkb-Produkter Ab, Stockholm Verfahren zur photometrischen Bestimmung der Untereinheit B der Creatinkinase und Reagens hierfür

Also Published As

Publication number Publication date
DD149421A5 (de) 1981-07-08
YU54280A (en) 1984-10-31
AU5549680A (en) 1981-03-12
FI72145C (fi) 1987-04-13
YU42965B (en) 1989-02-28
EP0015508A1 (de) 1980-09-17
SU1336941A3 (ru) 1987-09-07
IE800221L (en) 1980-09-02
DK154459C (da) 1989-05-22
DK63680A (da) 1980-09-03
EP0015508B1 (de) 1981-09-30
CA1160942A (en) 1984-01-24
DE3060050D1 (en) 1981-12-10
ES488774A1 (es) 1980-09-16
IE49158B1 (en) 1985-08-07
HU181684B (en) 1983-11-28
JPS55120797A (en) 1980-09-17
AR219440A1 (es) 1980-08-15
AU515930B2 (en) 1981-05-07
JPS5820274B2 (ja) 1983-04-22
US4330620A (en) 1982-05-18
DE2908053C2 (de) 1982-08-19
ZA801158B (en) 1981-03-25
FI800577A7 (fi) 1980-09-03
DK154459B (da) 1988-11-14
DE2908053A1 (de) 1980-09-11
FI72145B (fi) 1986-12-31
ATE263T1 (de) 1981-10-15

Similar Documents

Publication Publication Date Title
Jockers-Wretou et al. Quantitation of creatine kinase isoenzymes in human tissues and sera by an immunological method
Cardenas et al. Bovine Pyruvate Kinases: I. PURIFICATION AND CHARACTERIZATION OF THE SKELETAL MUSCLE ISOZYME
Hougie et al. Stuart clotting defect. I. Segregation of an hereditary hemorrhagic state from the heterogeneous group heretofore called “stable factor”(SPCA, proconvertin, factor VII) deficiency
US4067775A (en) Process and composition for determining the activity of creatinekinase-MB
CA2088050A1 (en) Cell necrosis detection through assays for spectrum and breakdown products thereof
KR100202773B1 (ko) 프로트롬빈 활성화 펩타이드 및 그것의 분해생성물에 대한 모노클론 항체 및 면역 분석법
Yamada et al. Occurrence of immunoreactive 80 kDa and non-immunoreactive diacylglycerol kinases in different pig tissues
Väänänen et al. Purification and localization of human carbonic anhydrase: III. Typing of skeletal muscle fibers in paraffin embedded sections
Ma et al. Protein for Lp82 calpain is expressed and enzymatically active in young rat lens
Holmberg et al. Immunologic studies in haemophilia A
DK163688B (da) Immunokemisk enzymbestemmelse af creatinkinase mb
JPH08506181A (ja) 新規抗凝固性補助因子活性
CS226407B2 (en) Method of determining mb creatinkinase
DK150719B (da) Fremgangsmaade og reagens til prothrombinbestemmelse
CN111707837A (zh) 狼疮抗凝物确认试剂盒(凝固法)
US4139415A (en) In vitro method of determining the biological activity of factor Xa inhibitor in blood
EP0360871B1 (en) Method for measuring biological activity of antithrombin iii and reagents for the measurement
Hänsch et al. Effect of aspirin on the complement system in vitro
EP0877939B1 (en) Methods for the detection of alzheimer&#39;s disease
US5221614A (en) Method and reagent for determining the biological activity of antithrombin III by measuring coagulation time
Fukiage et al. Calpain-induced light scattering by crystallins from three rodent species
Arocha-Pinango A comparison of the TRCII and latex-particle tests for the titration of FR-antigen
Kaiser et al. Intrathecal synthesis of IgM and IgA in neurological diseases: comparison of two formulae with isoelectric focusing
Lin et al. An enzyme-linked immunoassay for circulating immune complexes using solid phased goat C1q
JP2508915B2 (ja) 抗SSA/RoおよびSSB/La抗体測定用抗原、その製造法ならびに抗SSA/RoおよびSSB/La抗体の測定法