CN115894677A - 一种提高hcp检测抗体覆盖率的抗体组合及其应用 - Google Patents
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Abstract
本发明公开了一种提高HCP检测抗体覆盖率的抗体组合及其应用。所述抗HCP抗体组合使用抗原分别免疫动物后制备得到;所述抗原包括低免疫原性HCP。本发明通过分级HCP免疫的方法进行抗体的制备,通过抗体配比组合优化,使得检测方法获得较高的检测灵敏度,同时满足高覆盖率要求。利用本发明的抗HCP抗体组合可尽可能多地识别含有大量蛋白分子的HCP抗原。
Description
技术领域
本发明属于检测领域,具体涉及一种提高HCP检测抗体覆盖率的方法。
背景技术
在传统化学药物开发难度及成本越来越大的形势下,目前,由于生物技术类药物的诸多优势,其在全球范围内已得到迅猛的发展。生物技术类药物种类较多,包括重组蛋白类药物,例如单抗,重组蛋白疫苗等;细胞及基因治疗药物(cell and gene therapy,CGT),例如CAR-T,溶瘤病毒等;mRNA治疗技术,例如mRNA疫苗等。这些生物技术类药物的生产工艺比较复杂,会引入较多的杂质,对药物的质量产生潜在的负面影响,因此监管层对生物技术类药物的质量控制也提出了更高的要求。
目前生物技术类药物始终需要通过工程类细胞,如细菌、酵母或哺乳动物、昆虫或植物细胞系等,来进行原料的生产。经典的重组蛋白表达技术已在许多生物制药产品中得到广泛的应用,主要采用宿主细胞进行外源蛋白质的表达和修饰。CGT药物生产关键物料,如质粒,也是在大肠杆菌中扩增纯化获取。基因治疗的假病毒载体需要在HEK293等细胞内重新合成组装。在这类产品的生产过程中,宿主细胞来源的蛋白质(host cell proteins,HCP)会不可避免地被引入到生产工艺流程中,从而产生最终药品中HCP的残留风险。科学研究已发现生物制药产品中残留HCP的主要危害是其有诱导机体产生抗HCP抗体的可能性,这些抗体可能会引起患者产生临床症状。此外,HCP可能作为免疫佐剂,诱导产生抗药抗体,影响药物安全性或有效性,因此全球各个国家的监管机构对HCP残留都有严格的限量要求。
目前,HCP的分析检测方法较多,其中HCP ELISA方法由于其操作方便快捷,成本较低,检测通量较高等优点,已被监管机构和企业广泛运用于纯化工艺开发和原液的放行检中。HCP ELISA检测方法原理是采用多克隆抗体的双抗体夹心法,其中关键点之一是采用的多克隆抗体能识别尽可能多的HCP,即高覆盖率,否则会导致漏检的风险。高覆盖率的HCP抗体是HCP ELISA检测方法验证的关键参数之一。由于HCP是多种蛋白质的复合物,分子量从5kDa到250kDa,等电点在3-11区间,常规方法制备的抗体覆盖率往往不够理想,并且直接导致实际样本的检测适用性低,漏检的风险高。
发明内容
为了克服上述样本检测适用性低、覆盖率低,且检测灵敏度、检测效率不高的缺陷,本发明提供一种提高HCP检测抗体覆盖率的方法。
本方法是针对HCP抗原,其含有上千种以上的蛋白分子,如何使获得的多克隆抗体尽可能多地识别这些HCP抗原是目前需要解决的关键问题。从动物产生抗体的免疫学原理来理解,需要合适的抗原量,免疫周期和途径等方面进行优化。并且抗原本身分子量大小也会影响抗体的产生。因此,用总的HCP抗原免疫会导致对某些HCP抗原的免疫反应较弱,无法获得抗体。
本发明通过将低分子量分离,提升对低分子量HCP抗原的免疫反应。通过将HCP抗原中高丰度或高分子的容易产生抗体和HCP抗原分离,加强对免疫原性低的抗原的免疫反应。
为了解决现有技术的缺陷,本发明第一方面提供一种抗HCP抗体组合,使用抗原分别免疫动物后制备得到各抗体的组合;所述抗原包括低免疫原性HCP,优选还包括以下抗原中的一种或多种:宿主细胞总HCP(host cell proteins)、低分子量HCP和高分子量HCP所述宿主细胞为原核细胞或真核细胞;优选所述真核细胞为CHO细胞,所述原核细胞为大肠杆菌,所述大肠杆菌例如为Escherichia coli。
在某些实施例中,所述低免疫原性HCP为所述宿主细胞总HCP经纯化得到的产物,和/或,所述低分子量HCP为分子量小于55KDa例如小于50KDa的HCP,例如分子量为:10KDa≤分子量<55KDa,和/或,所述高分子量HCP为分子量高于55KDa例如高于60KDa的HCP,例如分子量为:55KDa≤分子量≤250KDa;和/或,所述动物为哺乳动物优选羊例如绵羊。
在某些实施例中,所述抗原包括宿主细胞总HCP、低分子量HCP和低免疫原性HCP,或宿主细胞总HCP、低分子量HCP、高分子量HCP和低免疫原性HCP;由此得到的抗HCP抗体组合包括抗低免疫原性HCP抗体、抗总HCP抗体和抗低分子量HCP抗体,或抗低免疫原性HCP抗体、抗总HCP抗体、抗低分子量HCP抗体和抗高分子量HCP抗体。
在某些实施例中,获得所述宿主细胞总HCP的步骤包括:
(1)将宿主细胞例如E.coli BL21的菌溶液与裂解溶液混合例如以1:10的比例混合,混匀,获得混合菌液;所述菌溶液例如利用宿主细胞菌体与水混合而成;
(2)将所述混合菌液破碎后获得破碎菌液;
(3)将所述破碎菌液离心后获得的上清液即为宿主细胞总HCP;或,
所述宿主细胞总HCP通过以下步骤获得:将所述宿主细胞进行浓缩例如使用PEG20000进行浓缩,即得。
优选地,步骤(1)中,所述裂解溶液是由0.2M NaHCO3溶液和蛋白酶抑制剂混合而得,pH为8.0-9.0例如为8.3;
步骤(2)中,所述破碎的压力为1000-1500bar例如1200bar,和/或,所述破碎的温度为10℃;所述破碎使用可细胞破碎仪等本领域常用的破碎仪器。
步骤(3)中,所述离心的速度为10000-15000g例如12000g,和/或,所述离心的温度为4℃。
在某些实施例中,所述低分子量HCP的制备方法为将所述宿主细胞总HCP经分子筛层析获得洗脱液,所述洗脱液即为所述低分子量HCP。
优选地,所述分子筛层析的步骤包括:进行平衡、进样、洗脱和收集洗脱液。
更优选地,所述平衡和洗脱使用的溶液为0.2M NaHCO3溶液,和/或,
所述分子筛层析使用HiLoad 16/600Superdex 200pg层析柱;和/或,
所述洗脱液还进行了浓缩。
在某些实施例中,所述低免疫原性HCP由所述宿主细胞总HCP经FPLC纯化获得。
优选地,所述FPLC的步骤包括:
所述宿主细胞总HCP经过滤例如0.22μm滤膜过滤后上样,洗脱并收集洗脱液,即得所述低免疫原性HCP。
更优选地,所述FPLC的流动相为:流动相A:PBS,pH 7.4,收集流穿液;
切换流动相B:0.075% PBST,pH 7.4;
切换流动相C:0.1M Gly-HCl,pH 2.5。
在某些实施例中,所述FPLC使用偶联抗体纯化柱,制备所述偶联抗体纯化柱的步骤包括:
(a)用酸例如0.1M HCl清洗NHS活化胶;
(b)将所述抗总HCP抗体与所述NHS活化胶混匀,离心去除上清液;所述混匀例如为室温下旋转2h;
(c)加入0.1-0.5M Tris-HCl例如0.1M Tris-HCl,pH8.0,混匀并孵育,使所述抗总HCP抗体与所述NHS活化胶发生偶联;所述混匀例如在室温下旋转2h,所述孵育例如在2-8℃培养15-20h;
(d)用缓冲液例如PBS清洗,将偶联合格例如偶联率>90%的填料进行装柱。
优选地,所述的抗HCP抗体组合由抗总HCP抗体、抗低分子量HCP抗体和抗低免疫原性HCP抗体组成,优选其比例为(1~2):(1~2):1,例如为1:1:1。
本发明第二方面提供一种试剂盒,其包括如本发明第一方面所述的抗HCP抗体组合。优选地,还包括免疫相关的检测试剂,如缓冲液,例如PBS缓冲液。
上述免疫相关的检测试剂包括本领域技术人员常规所用的试剂。
本发明第三方面提供一种检测HCP的方法,所述方法包括:
将如本发明第一方面所述的抗HCP抗体组合或如本发明第二方面所述的试剂盒的抗HCP抗体组合中的各抗体按比例混合后进行检测。优选地,抗总HCP抗体、抗低分子量HCP抗体和抗低免疫原性HCP抗体的比例为(1~2):(1~2):1;更优选地为1:1:1。
适用于本发明的覆盖率的检测方法可为若干种,除了IMBS-2D,还可为2D-WB、IAC-2D、质谱等本领域常规检测覆盖率的方法。
本发明第四方面提供如本发明第一方面所述的抗HCP抗体组合或本发明第二方面所述的试剂盒在检测HCP或者制备检测HCP的诊断剂中的应用。
在符合本领域常识的基础上,上述各优选条件,可任意组合,即得本发明各较佳实例。
本发明所用试剂和原料均市售可得。
本发明的积极进步效果在于:本发明通过分级HCP免疫的方法进行抗体的制备,包括总HCP蛋白,低分子量HCP蛋白(low molecular weight,LMW),低免疫原性HCP蛋白,这3种抗原进行动物免疫,获得高效价的抗体。然后,通过抗体配比组合优化,使得检测方法获得较高的检测灵敏度,同时满足高覆盖率要求。
附图说明
图1为分子筛分离液相层析图。
图2为非还原变性SDS-PAGE(12%胶浓度)电泳结果;M:标准蛋白分子量;1-14:从头收集的各区间HCP组分。
图3为低免疫原性HCP制备液相色谱。
图4为组合抗体覆盖率分析结果。
图5为不同组合抗体2D电泳银染结果。
图6为A3S和A4S抗体IMBS/2D电泳银染结果。
图7为收集的低分子样本的分子量的非还原变性SDS-PAGE(12%胶浓度)电泳结果;Mark:标准蛋白分子量。
图8为收集低分子量(LMW)HCP抗原的图谱。
图9为收集低免疫原性HCP抗原的图谱。
具体实施方式
下面通过实施例的方式进一步说明本发明,但并不因此将本发明限制在所述的实施例范围之中。下列实施例中未注明具体条件的实验方法,按照常规方法和条件,或按照商品说明书选择。
实施例1大肠杆菌分级HCP抗原和抗体制备
1.1总HCP抗原及其相应抗体的制备
(1)配制0.2M NaHCO3溶液,按比例加入100×蛋白酶抑制剂(供应商Roche,货号11697498001),调节pH 8.3作为大肠杆菌表达菌(E.coli-BL21)的裂解溶液。
(2)取适量大肠杆菌表达菌(E.coli-BL21)菌体,置于烧杯中加入适量超纯水解冻,大肠杆菌解冻后以1:10(W/V,单位是g/ml)的比例加入上述裂解溶液,随后在漩涡振荡器中震荡均匀。
(3)将震荡均匀的菌液利用细胞破碎仪破碎,破碎压力为1200bar,循环泵温度控制为10℃,菌液破碎4个循环过程。
(4)将破碎的菌液进行离心(12000g;4℃),取离心上清液即为大肠杆菌表达菌(E.coli-BL21)HCP(总HCP抗原),测定其蛋白浓度(约为10-12mg/mL),并将其分装为5.5mL每管,储存于-80℃冰箱待用。
(5)将总HCP抗原免疫绵羊(方法参见《抗体制备与使用实验指南》第4章多克隆抗体制备),采血测效价,符合要求(效价大于105)后取血清进行抗体的纯化。采用proteinG亲合方法纯化1.1中获得的羊IgG抗体,采用bradford方法测定浓度大于1.0mg/mL。采用SDS-PAGE电泳方法进行染色评价抗体纯度,要求达到90%以上。此步获得总HCP抗体(即大肠杆菌表达菌HCP)。
1.2低分子量(LMW)HCP抗原及其相应抗体的制备
本发明采用分子筛层析方法分离HCP,具体步骤如下:
(1)利用0.2M NaHCO3溶液对HiLoad 16/600Superdex 200pg层析柱进行充分的平衡,流速设定为1mL/min,平衡1.5个CV左右,至基线较平,无明显波动。
(2)取一管储存于-80℃冰箱的上述大肠杆菌表达菌(E.coli-BL21)HCP,用0.22μm一次性针头过滤器进行过滤,取5.5mL打入到蛋白纯化系统FPLC(快速蛋白液相色谱)的5mL样品环中。
(3)执行蛋白纯化系统进样指令,流速设定为1mL/min将样品环中打入的样品打入到HiLoad 16/600Superdex 200pg层析柱中进行分离纯化,进样运行15mL结束进样,继续以1mL/min的流速进行分离纯化,收集92mL-110mL的洗脱液即为低分子量HCP。
(4)待样品运行1.2个CV,谱图回到基线且无明显波动,切换超纯水运行1.2个CV,随后用0.5M NaOH溶液清洗1.5CV,超纯水运行1.2个CV并运行1.2CV的20%乙醇进行保存。
(5)收集HCP利用SDS-PAGE电泳表征其分子量分布,收集低分子量50kd以下的样品,测定浓度0.5mg/ml后用3/5kDa的超滤管进行浓缩,浓度为4-5mg/ml,结果如图1和图2所示。
(6)将(5)收集的抗原进行绵羊动物免疫(方法参见《抗体制备与使用实验指南》第4章多克隆抗体制备),获得相应的抗低分子量HCP抗体。
1.3低免疫原性HCP抗原及其相应抗体的制备
(1)偶联抗体纯化柱制备。
NHS活化胶(中科森辉)用0.1M HCl(预冷)清洗。与步骤(1)中获得的总HCP抗体(2mg/mL)30mL混合,室温旋转混匀2h,离心去除上清液。用0.1M Tris-HCl pH8.0,室温旋转混匀2h,2-8℃过夜(约17h),用1×PBS清洗。采用Bradford方法测定流穿液抗体浓度(即不结合的抗体浓度),计算总体的偶联率>90%。将偶联合格的填料进行装柱,5ml柱体积。
(2)低免疫原性HCP的制备
将1.1中总HCP抗原用1×PBS稀释至2mg/mL,0.22μm滤膜过滤,每次定量环上样5ml。
柱体积5mL,液相条件:1.67ml/min,保留时间为3min。切换流动相A:1×PBS,pH7.4,收集流穿液。切换流动相B:0.075% PBST,pH 7.4。切换流动相C:0.1M Gly-HCl,pH2.5,4CV,洗脱组分收集:20mL。在收集管中事先添加3mL Tris-HCl进行中和。制备过程层析图谱如图3所示,其中左侧的虚线框为流穿峰,收集样本为低免疫原性HCP,右侧的虚线框为洗脱峰,样本为强免疫原性HCP。
(3)抗体制备
将所述低免疫原性HCP用于绵羊动物免疫(方法参见《抗体制备与使用实验指南》第4章多克隆抗体制备),获得相应的抗低免疫原性HCP抗体。
实施例2HCP抗体的配比优化,提升试剂盒检测性能
将上述获得的3种HCP抗体,按1:1:1比例混合。采用湖州申科发明专利“一种评估HCP检测用多克隆抗体覆盖率的方法,CN2019101781059”以及实用新型专利“评估HCP检测用多克隆抗体覆盖率的设备,CN201920298412”(以下简称湖州申科IMBS-2D法)进行该抗体组合的覆盖率水平检测,得到较高覆盖率水平的抗体组合,结果如图4所示,覆盖率大于70%。
通过检测体系,捕获抗体的浓度1-10μg/ml,标记抗体浓度0.1-2μg/ml,进行配对分析,提升试剂盒的检测灵敏度,分析性能验证的结果见表1。
操作步骤如下:
1、试剂盒(湖州申科生物技术有限公司,1301301,以下试剂均同)按要求室温平衡后,取出预包被酶标板。
2、加入各浓度校准品,上述制得的样品;(稀释液稀释)100μl/孔;室温,300-500rpm振荡,1h。
3、洗涤:加入1×缓冲液,340μl/孔,3次。
4、加入生物素偶联抗E.coli HCP-E抗体;(稀释液稀释),100μl/孔;室温,45min。
5、洗涤:加入1×缓冲液,340μl/孔,3次。
6、加SA-HRP;100μl/孔;室温,15min。(稀释液稀释)。
7、洗涤:加入1×缓冲液,340μl/孔,5次。
8、加TMB显色液:100μl/孔;室温,避光15min。
9、加终止液;50μl/孔,避光5min后读数,测450nm和620nm下吸光度。
表1:大肠杆菌HCP检测试剂盒性能验证结果
实施例3不同免疫抗原的抗体配比,提升抗体覆盖率
采用湖州申科的IMBS-2D方法,检测不同免疫原的抗体及组合抗体的覆盖率水平,结果如图5所示,比较总HCP抗体和组合抗体捕获HCP图谱,有三处标示的位点存在显著差异,然而组合抗体2D图谱中标示的方块1和方块3可与抗低免疫原性HCP抗体捕获HCP的2D图谱1和3相匹配,而组合抗体图谱中标示的方块2和方块3也与抗低分子量HCP抗体捕获HCP的2D图谱方块2和方块3相匹配,表明总HCP抗体相较于组合抗体,其捕获HCP丰度偏低,而抗低分子量HCP抗体及抗低免疫原性HCP抗体的加入,提高抗体捕获HCP丰度。
实施例4同种HCP免疫不同批次绵羊的抗体覆盖率
2021年6月,E.coli总HCP经绵羊免疫获得第一批血清,通过Protein G纯化,获得相应抗体,即为A3S抗体;2021年9月,E.coli总HCP经绵羊免疫获得第二批血清,通过Protein G纯化,获得相应抗体,即为A4S抗体。采用湖州申科的IMBS-2D方法,对比A3S和A4S抗体的捕获HCP的覆盖率水平,并用PDQuest(Bio-rad)分析,结果如图6和表2所示,捕获蛋白的总体分布一致,其中A3S图谱有748个点,A4S图谱有820个点,经匹配分析,相同的点有608个,A4S抗体捕获蛋白与A3S抗体的匹配率为81%,表明A4S抗体与A3S抗体的覆盖率水平基本一致。
表2:2D电泳图谱PDQuest分析结果
实施例5CHO分级HCP抗原和抗体制备
5.1总HCP抗原及其相应抗体的制备
取适量CHO细胞培养上清(1mg/mL)130mL,通过PEG20000浓缩12mL,浓度为10mg/mL,即得CHO细胞总HCP。将浓缩后的样本(即CHO细胞总HCP)进行绵羊动物免疫(方法参见《抗体制备与使用实验指南》第4章多克隆抗体制备),获得相应的总HCP抗体。
5.2低分子量(LMW)HCP抗原及其相应抗体的制备
取7mL的上述浓缩后的样本加载到HiLoad 26/600Superdex 200pg层析柱,以3.0mL/min流速运行(实际流速1.5mL/min),出峰后以4ml一管收集,图谱如图8所示,收集230-294mL部分为低分子量HCP,后续将对低分子量部分进行常规浓缩。
并通过12%SDS-PAGE的非还原电泳结果显示,收集的低分子样本的分子量≤55kd,如图7所示。将浓缩后的样本进行绵羊动物免疫(方法参见《抗体制备与使用实验指南》第4章多克隆抗体制备),获得相应的抗低分子量HCP抗体。
5.3低免疫原性HCP抗原及其相应抗体的制备
(1)偶联抗体纯化柱制备。
NHS活化胶与步骤5.1(1)中获得的总HCP抗体混合,室温旋转混匀2h,步骤同1.3(1)。
(2)低免疫原性HCP的制备
将5.1中的CHO细胞总HCP用1×PBS稀释至2mg/mL,0.22μm滤膜过滤,每次定量环上样5ml。制备过程同步骤1.3(2),层析图谱如图9所示,其中左侧的虚线框为流穿峰,收集样本为低免疫原性HCP,右侧的虚线框为洗脱峰,样本为强免疫原性HCP。
(3)抗体制备
将所述低免疫原性HCP用于绵羊动物免疫(方法参见《抗体制备与使用实验指南》第4章多克隆抗体制备),获得相应的抗低免疫原性HCP抗体。
Claims (10)
1.一种抗HCP抗体组合,其特征在于,使用抗原分别免疫动物后制备得到各抗体的组合;所述抗原包括低免疫原性HCP,优选还包括以下抗原中的一种或多种:宿主细胞总HCP、低分子量HCP和高分子量HCP;所述宿主细胞为原核细胞或真核细胞;优选所述真核细胞为CHO细胞,所述原核细胞为大肠杆菌,所述大肠杆菌例如为Escherichia coli。
2.如权利要求1所述的抗HCP抗体组合,其特征在于,所述低免疫原性HCP为所述宿主细胞总HCP经纯化得到的产物,和/或,所述低分子量HCP为分子量小于55KDa例如小于50KDa的HCP,和/或,所述高分子量HCP为分子量高于55KDa例如高于60KDa的HCP;和/或,所述动物为哺乳动物优选羊例如绵羊。
3.如权利要求1或2所述的抗HCP抗体组合,其特征在于,所述抗原包括宿主细胞总HCP、低分子量HCP和低免疫原性HCP,或宿主细胞总HCP、低分子量HCP、高分子量HCP和低免疫原性HCP;由此得到的抗HCP抗体组合包括抗低免疫原性HCP抗体、抗总HCP抗体和抗低分子量HCP抗体,或抗低免疫原性HCP抗体、抗总HCP抗体、抗低分子量HCP抗体和抗高分子量HCP抗体。
4.如权利要求1~3任一项所述的抗HCP抗体组合,其特征在于,获得所述宿主细胞总HCP的步骤包括:
(1)将宿主细胞例如E.coliBL21的菌溶液与裂解溶液混合例如以1:10的比例混合,混匀,获得混合菌液;所述菌溶液例如利用宿主细胞菌体与水混合而成;
(2)将所述混合菌液破碎后获得破碎菌液;
(3)将所述破碎菌液离心后获得的上清液即为宿主细胞总HCP;或,
所述宿主细胞总HCP通过以下步骤获得:将所述宿主细胞进行浓缩例如使用PEG20000进行浓缩,即得;
优选地,步骤(1)中,所述裂解溶液是由0.2M NaHCO3溶液和蛋白酶抑制剂混合而得,pH为8.0-9.0例如为8.3;
步骤(2)中,所述破碎的压力为1000-1500bar例如1200bar,和/或,所述破碎的温度为10℃;
步骤(3)中,所述离心的速度为10000-15000g例如12000g,和/或,所述离心的温度为4℃。
5.如权利要求1~4任一项所述的抗HCP抗体组合,其特征在于,所述低分子量HCP的制备方法为将所述宿主细胞总HCP经分子筛层析获得洗脱液,所述洗脱液即为所述低分子量HCP。
6.如权利要求1~5任一项所述的抗HCP抗体组合,其特征在于,所述低免疫原性HCP由所述宿主细胞总HCP经FPLC纯化获得;
优选地,所述FPLC的步骤包括:
所述宿主细胞总HCP经过滤例如0.22μm滤膜过滤后上样,洗脱并收集洗脱液,即得所述低免疫原性HCP。
7.如权利要求6所述的抗HCP抗体组合,其特征在于,
所述FPLC使用偶联抗体纯化柱,制备所述偶联抗体纯化柱的步骤包括:
(a)用酸例如0.1M HCl清洗NHS活化胶;
(b)将所述抗总HCP抗体与所述NHS活化胶混匀,离心去除上清液;
(c)加入0.1-0.5M Tris-HCl例如0.1M Tris-HCl,pH8.0,混匀并孵育,使所述抗总HCP抗体与所述NHS活化胶发生偶联;所述混匀例如在室温下旋转2h,所述孵育例如在2-8℃培养15-20h;
(d)用缓冲液例如PBS清洗,将偶联合格例如偶联率>90%的填料进行装柱;
优选地,所述的抗HCP抗体组合由抗总HCP抗体、抗低分子量HCP抗体和抗低免疫原性HCP抗体组成,优选其比例为(1~2):(1~2):1,例如为1:1:1。
8.一种试剂盒,其特征在于,其包括如权利要求1~7任一项所述的抗HCP抗体组合;优选地,还包括免疫相关的检测试剂,如缓冲液,例如PBS缓冲液。
9.一种检测HCP的方法,其特征在于,所述方法包括:
将如权利要求1~7任一项所述的抗HCP抗体组合或如权利要求8所述的试剂盒的抗HCP抗体组合中的各抗体按比例混合后进行检测;优选地,抗总HCP抗体、抗低分子量HCP抗体和抗低免疫原性HCP抗体的比例为(1~2):(1~2):1;更优选地为1:1:1。
10.如权利要求1~7任一项所述的抗HCP抗体组合或权利要求8所述的试剂盒在检测HCP或者制备检测HCP的诊断剂中的应用。
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