CN114058613B - 一种大体积、高灵敏度核酸提取方法 - Google Patents
一种大体积、高灵敏度核酸提取方法 Download PDFInfo
- Publication number
- CN114058613B CN114058613B CN202111372169.6A CN202111372169A CN114058613B CN 114058613 B CN114058613 B CN 114058613B CN 202111372169 A CN202111372169 A CN 202111372169A CN 114058613 B CN114058613 B CN 114058613B
- Authority
- CN
- China
- Prior art keywords
- nucleic acid
- centrifuge tube
- tube
- volume
- magnetic
- Prior art date
- Legal status (The legal status is an assumption and is not a legal conclusion. Google has not performed a legal analysis and makes no representation as to the accuracy of the status listed.)
- Active
Links
- 108020004707 nucleic acids Proteins 0.000 title claims abstract description 75
- 150000007523 nucleic acids Chemical class 0.000 title claims abstract description 75
- 102000039446 nucleic acids Human genes 0.000 title claims abstract description 75
- 238000000605 extraction Methods 0.000 title claims abstract description 30
- 239000011324 bead Substances 0.000 claims abstract description 51
- 239000006228 supernatant Substances 0.000 claims abstract description 27
- 238000002156 mixing Methods 0.000 claims abstract description 25
- 238000000034 method Methods 0.000 claims abstract description 23
- 230000005389 magnetism Effects 0.000 claims abstract description 19
- 239000007788 liquid Substances 0.000 claims abstract description 17
- 239000011259 mixed solution Substances 0.000 claims abstract description 15
- 239000000203 mixture Substances 0.000 claims abstract description 15
- 230000010355 oscillation Effects 0.000 claims abstract description 14
- 238000005406 washing Methods 0.000 claims abstract description 14
- 239000003153 chemical reaction reagent Substances 0.000 claims abstract description 13
- 238000001035 drying Methods 0.000 claims abstract description 10
- 239000006166 lysate Substances 0.000 claims abstract description 10
- 238000007789 sealing Methods 0.000 claims abstract description 10
- 108010067770 Endopeptidase K Proteins 0.000 claims abstract description 8
- 239000000243 solution Substances 0.000 claims description 13
- 239000003480 eluent Substances 0.000 claims description 12
- 238000011534 incubation Methods 0.000 claims description 9
- 238000007664 blowing Methods 0.000 claims description 6
- MWKFXSUHUHTGQN-UHFFFAOYSA-N decan-1-ol Chemical compound CCCCCCCCCCO MWKFXSUHUHTGQN-UHFFFAOYSA-N 0.000 claims description 5
- 239000012153 distilled water Substances 0.000 claims description 2
- YQOKLYTXVFAUCW-UHFFFAOYSA-N guanidine;isothiocyanic acid Chemical compound N=C=S.NC(N)=N YQOKLYTXVFAUCW-UHFFFAOYSA-N 0.000 claims description 2
- NLJMYIDDQXHKNR-UHFFFAOYSA-K sodium citrate Chemical compound O.O.[Na+].[Na+].[Na+].[O-]C(=O)CC(O)(CC([O-])=O)C([O-])=O NLJMYIDDQXHKNR-UHFFFAOYSA-K 0.000 claims description 2
- 229960000999 sodium citrate dihydrate Drugs 0.000 claims description 2
- XLYOFNOQVPJJNP-UHFFFAOYSA-N water Chemical compound O XLYOFNOQVPJJNP-UHFFFAOYSA-N 0.000 claims description 2
- 238000001514 detection method Methods 0.000 abstract description 37
- 230000035945 sensitivity Effects 0.000 abstract description 10
- 230000003612 virological effect Effects 0.000 abstract description 7
- 241000700605 Viruses Species 0.000 abstract description 6
- 230000009286 beneficial effect Effects 0.000 abstract description 4
- 238000011002 quantification Methods 0.000 abstract 1
- 238000012795 verification Methods 0.000 abstract 1
- 239000008280 blood Substances 0.000 description 8
- 210000004369 blood Anatomy 0.000 description 8
- 208000015181 infectious disease Diseases 0.000 description 6
- 239000000126 substance Substances 0.000 description 5
- 238000011330 nucleic acid test Methods 0.000 description 4
- 241000700721 Hepatitis B virus Species 0.000 description 3
- 238000012360 testing method Methods 0.000 description 3
- 238000012546 transfer Methods 0.000 description 3
- 238000003260 vortexing Methods 0.000 description 3
- 239000010836 blood and blood product Substances 0.000 description 2
- 229940125691 blood product Drugs 0.000 description 2
- 238000010276 construction Methods 0.000 description 2
- 238000000703 high-speed centrifugation Methods 0.000 description 2
- 238000000197 pyrolysis Methods 0.000 description 2
- 238000012935 Averaging Methods 0.000 description 1
- 208000029433 Herpesviridae infectious disease Diseases 0.000 description 1
- 101710163270 Nuclease Proteins 0.000 description 1
- 108010061100 Nucleoproteins Proteins 0.000 description 1
- 102000011931 Nucleoproteins Human genes 0.000 description 1
- 238000011109 contamination Methods 0.000 description 1
- 238000004925 denaturation Methods 0.000 description 1
- 230000036425 denaturation Effects 0.000 description 1
- 230000000694 effects Effects 0.000 description 1
- 230000002779 inactivation Effects 0.000 description 1
- 230000002458 infectious effect Effects 0.000 description 1
- 238000013178 mathematical model Methods 0.000 description 1
- 238000012986 modification Methods 0.000 description 1
- 230000004048 modification Effects 0.000 description 1
- 238000003753 real-time PCR Methods 0.000 description 1
- 238000011160 research Methods 0.000 description 1
Classifications
-
- C—CHEMISTRY; METALLURGY
- C12—BIOCHEMISTRY; BEER; SPIRITS; WINE; VINEGAR; MICROBIOLOGY; ENZYMOLOGY; MUTATION OR GENETIC ENGINEERING
- C12N—MICROORGANISMS OR ENZYMES; COMPOSITIONS THEREOF; PROPAGATING, PRESERVING, OR MAINTAINING MICROORGANISMS; MUTATION OR GENETIC ENGINEERING; CULTURE MEDIA
- C12N15/00—Mutation or genetic engineering; DNA or RNA concerning genetic engineering, vectors, e.g. plasmids, or their isolation, preparation or purification; Use of hosts therefor
- C12N15/09—Recombinant DNA-technology
- C12N15/10—Processes for the isolation, preparation or purification of DNA or RNA
- C12N15/1003—Extracting or separating nucleic acids from biological samples, e.g. pure separation or isolation methods; Conditions, buffers or apparatuses therefor
- C12N15/1006—Extracting or separating nucleic acids from biological samples, e.g. pure separation or isolation methods; Conditions, buffers or apparatuses therefor by means of a solid support carrier, e.g. particles, polymers
- C12N15/1013—Extracting or separating nucleic acids from biological samples, e.g. pure separation or isolation methods; Conditions, buffers or apparatuses therefor by means of a solid support carrier, e.g. particles, polymers by using magnetic beads
Landscapes
- Chemical & Material Sciences (AREA)
- Engineering & Computer Science (AREA)
- Health & Medical Sciences (AREA)
- Biomedical Technology (AREA)
- Life Sciences & Earth Sciences (AREA)
- Genetics & Genomics (AREA)
- Bioinformatics & Cheminformatics (AREA)
- Organic Chemistry (AREA)
- Zoology (AREA)
- Wood Science & Technology (AREA)
- Biotechnology (AREA)
- General Engineering & Computer Science (AREA)
- Crystallography & Structural Chemistry (AREA)
- Plant Pathology (AREA)
- Molecular Biology (AREA)
- Microbiology (AREA)
- Biophysics (AREA)
- Physics & Mathematics (AREA)
- Biochemistry (AREA)
- General Health & Medical Sciences (AREA)
- Analytical Chemistry (AREA)
- Measuring Or Testing Involving Enzymes Or Micro-Organisms (AREA)
Abstract
本发明公开了一种大体积、高灵敏度核酸提取方法。本发明的大体积、高灵敏度核酸提取方法,包括向无菌离心管中加入样品;向离心管中加入蛋白酶K试剂、磁珠和裂解液;密封离心管,漩涡振荡混匀,温育,期间不时振荡混匀;将所述离心管放到磁力架上,吸磁弃上清,将磁珠洗涤液加入所述离心管,漩涡振荡以充分混匀;将离心管放置到磁力架上,吸磁弃上清,得到磁珠混合液,将所述磁珠混合液转移至EP管中;将EP管离心,平铺吸磁,弃上清,烘干。本发明的提取方法大大提高了提取的核酸量,有利于提高极低病毒载量样品核酸检测效率,避免漏检。经过验证,本方法检测下限可以达到1IU/ml,大大提高了检测的灵敏度,能够对低病毒载量的标本进行病毒定量。
Description
技术领域
本发明涉及生物技术领域,特别是涉及一种大体积、高灵敏度核酸提取方法。
背景技术
核酸提取是分子生物学研究的重要基础。一般来说,成功的核酸提取需要四个重要的步骤:有效地破坏细胞或组织、核蛋白复合物的变性、核酸酶的失活和远离污染。提取出的核酸的质量、完整性和数量将直接影响所有后续科研的结果。
目前,国内外采供血机构在用的核酸检测(Nucleic Acid Test,NAT)方法及系统都是从几百微升到1ml中提取病毒核酸进行检测,但对于很多病毒载量低的标本,并不能有效提取出足够量的核酸,直接影响检测结果,影响临床用血安全。已有报道的针对低病毒载量标本的核酸提取方法有PEG富集法和超高速离心法。其中PEG富集法需要4℃过夜,而超高速离心法需要在4℃、250 000g条件下离心3h,这两种方法耗时长、对设备要求高,难以普及应用。
另一方面,目前核酸检测方法的检测下限是影响临床用血安全的关键点。以乙型肝炎病毒(hepatitis B virus,HBV)为例,受核酸检测的检测下限限制,目前仍不能完全检出病毒载量极低的HBV献血者,如隐匿性HBV感染(occult hepatits B virus infection,OBI)。OBI是一种特殊形式的HBV感染,OBI患者体内HBV DNA往往处于极低水平,严重威胁着血液安全。Jos Weusten构建了OBI输血残余风险的数学模型显示,约有3.3%的OBI献血者是目前核酸检测无法检测到的,并且20ml该OBI献血者的血液制品即可造成受血者感染;当使用混样核酸检测时,这一比例更是高达8.7%。2016年Ryanne的研究也表明,接受来源于OBI献血者血液制品的受血者HBV感染率约为5%。2018年Daniel报道了3名HBsAg阴性,HBVDNA阴性献血者造成31名受血者中有9人感染的病例,进一步证实了HBV DNA的最小感染病毒载量为3IU,而要达到完全的临床用血安全需要将HBV DNA检测下限提高到0.15IU。这与目前核酸检测4.3IU/mL(盖立复核酸检测系统)和4.1IU/ml(罗氏MP6-NAT核酸检测系统)的检测下限相比,还有较远距离。因此提高NAT检测下限,提高检测灵敏度,对于保证临床用血安全具有重大意义。
发明内容
基于此,本发明的目的在于,提供一种具有能够完全提取大体积标本核酸且灵敏度高等特点的大体积、高灵敏度核酸提取方法。
一种大体积、高灵敏度核酸提取方法,包括:
S1:向离心管中加入样品;
S2:向所述离心管中加入蛋白酶K试剂、磁珠和裂解液;
S3:密封所述离心管,漩涡振荡混匀,温育,期间不时振荡混匀;
S4:将所述离心管放到磁力架上,吸磁弃上清,将磁珠洗涤液加入所述离心管,漩涡振荡以充分混匀;
S5:将步骤S4中混匀后的离心管放置到磁力架上,吸磁弃上清,得到磁珠混合液,将所述磁珠混合液转移至EP管中;
S6:将EP管离心,平铺吸磁,弃上清,烘干;
S7:往EP管内加入预热后的洗脱液,反复吹打,充分悬浮磁珠,保温静置,期间混匀多次;
S8:将EP管放入磁力架上,吸磁,取上清,即为核酸溶液。
本发明的大体积、高灵敏度核酸提取方法,增加了提取核酸标本的体积,大大提高了提取的核酸量,有利于提高核酸检测效率,避免漏检,而且将检测下限提高到1IU/ml,提高检测的灵敏度,能够对低病毒载量的标本进行定量。
进一步优选地,所述裂解液包括按体积分数计的以下组分:柠檬酸钠二水合物0.3%、异硫氰酸胍42.5%、多聚正癸醇5%、DDT 0.9%以及蒸馏水余量。多聚正癸醇的量5%即可达到效果,不需要很多裂解液方案中的12%,节省了成本,同时达到了实验目的。
进一步优选地,步骤S1中离心管的容量为50ml,样品的体积为10ml,步骤S2中蛋白酶K试剂的体积为590-610μl,磁珠的体积为1000-1200μl,裂解液的体积为14-16ml。
进一步优选地,步骤S3中所述密封所述离心管,漩涡振荡混匀,温育,期间不时振荡混匀包括:
密封所述离心管,漩涡振荡混匀1-2min,在70℃下温育15-20min,温育期间不时振荡颠倒混匀,温育后再放到混匀器上摇匀5min。
进一步优选地,步骤S4中所述将所述离心管放到磁力架上,吸磁弃上清,将磁珠洗涤液加入所述离心管,漩涡振荡以充分混匀包括:
将所述离心管放到磁力架上,吸磁1min弃上清,将31-35ml磁珠洗涤液加入所述离心管,漩涡振荡30-60s以充分混匀,以达到试剂和样品充分接触的目的,使得样品中的核酸能够提取完全。
进一步优选地,所述大体积、高灵敏度核酸提取方法还包括:
S41:将步骤S4重复3-4遍,充分洗涤,将未结合的物质完全洗涤下来。
进一步优选地,步骤S5中所述将所述磁珠混合液转移至EP管中包括:
留取490-510μl的所述磁珠混合液并转移至2ml的EP管中。
进一步优选地,步骤S6中所述烘干包括:
将EP管放入56℃的烘干机中烘干2h,期间EP管敞口,其上方盖一次性盖子防止其他物质落入EP管内,烘干结束后,盖上EP管的盖子。
进一步优选地,步骤S7所述往EP管内加入预热后的洗脱液,反复吹打,充分悬浮磁珠,保温静置,期间混匀多次包括:
往EP管内加入65℃预热的洗脱液65μl,移液器反复吹打,充分悬浮磁珠,70℃保温静置5-6min,期间混匀多次。
进一步优选地,所述大体积、高灵敏度核酸提取方法还包括:
S9:立即使用所述核酸溶液或将所述核酸溶液置于-20℃环境中保存。
相对于现有技术,本发明的大体积、高灵敏度核酸提取方法,增加了提取核酸标本的体积,大大提高了提取的核酸量,有利于提高核酸检测效率,避免漏检,而且将检测下限提高到1IU/ml,提高了检测的灵敏度,能够对低病毒载量的标本进行定量;裂解液中仅含有5%的多聚正癸醇,在保证能够达到实验目的的情况下,降低了成本;增加烘干步骤可以将10ml样品中提取到的DNA浓缩到洗脱液内,有利于后续试验的进行,提高后续检测效率;本发明中的大体积、高灵敏度核酸提取方法在保证样品中的核酸完全提取的前提下,合理使用试剂,并对试剂用量进行了优化,节省了成本。本发明的大体积、高灵敏度核酸提取方法具有能够完全提取大体积核酸且提高检测下限、灵敏度高等特点。
需要说明的是,在本发明中所使用的蛋白酶K、磁珠、洗脱液EB和磁珠洗涤液均来源于罗氏试剂。
为了更好地理解和实施,下面结合附图详细说明本发明。
附图说明
图1为本发明提取标准品核酸构建的HBV荧光定量标准曲线。
具体实施方式
在本说明书中提到或者可能提到的上、下、左、右、前、后、正面、背面、顶部、底部等方位用语是相对于其构造进行定义的,它们是相对的概念。因此,有可能会根据其所处不同位置、不同使用状态而进行相应地变化。所以,也不应当将这些或者其他的方位用语解释为限制性用语。
以下示例性实施例中所描述的实施方式并不代表与本公开相一致的所有实施方式。相反,它们仅是与本公开的一些方面相一致的实施方式的例子。
在本公开使用的术语是仅仅出于描述特定实施例的目的,而非旨在限制本公开。在本公开中所使用的单数形式的“一种”、“所述”和“该”也旨在包括多数形式,除非上下文清楚地表示其他含义。还应当理解,本文中使用的术语“和/或”是指并包含一个或多个相关联的列出项目的任何或所有可能组合。
实施例一
一种大体积、高灵敏度核酸提取方法,包括:
S1:向50ml无菌离心管中加入10ml样品;
S2:向所述离心管中加入的590μl蛋白酶K试剂、1100μl磁珠和14ml裂解液;
S3:密封所述离心管,漩涡振荡1min充分混匀,70℃温育17min,温育期间不时振荡颠倒混匀,温育后再放到混匀器上摇匀5min;
S4:将所述离心管放到磁力架上,吸磁1min弃上清,将31ml磁珠洗涤液加入所述离心管,漩涡振荡30-60s以充分混匀;
S41:将步骤S4重复3遍;
S5:将步骤S4中混匀后的离心管放置到磁力架上,吸磁弃上清,得到磁珠混合液,留取490μl所述磁珠混合液并转移至2ml EP管中;
S6:将EP管离心,平铺吸磁,用移液器吸取上清,弃去,EP管敞开盖,使用烘干机在56℃温度下烘干2h,烘干机上面用盖子盖住,防污染;
S7:往EP管内加入65℃预热的洗脱液(EB)65μl,移液器反复吹打,充分悬浮磁珠,盖紧EP管盖,70℃保温静置5min,期间混匀多次使核酸从磁珠上洗脱下来;
S8:将EP管放入磁力架上,吸磁,取上清,即为核酸溶液;
S9:将核酸溶液立即使用或保存于-20℃的容器中。
实施例二
一种大体积、高灵敏度核酸提取方法,包括:
S1:向50ml无菌离心管中加入10ml样品;
S2:向所述离心管中加入的600μl蛋白酶K试剂、1000μl磁珠和15ml裂解液;
S3:密封所述离心管,漩涡振荡1min充分混匀,70℃温育15min,温育期间不时振荡颠倒混匀,温育后再放到混匀器上摇匀5min;
S4:将所述离心管放到磁力架上,吸磁1min弃上清,将33ml磁珠洗涤液加入所述离心管,漩涡振荡30-60s以充分混匀;
S41:将步骤S4重复3遍;
S5:将步骤S4中混匀后的离心管放置到磁力架上,吸磁弃上清,得到磁珠混合液,留取500μl所述磁珠混合液并转移至2ml EP管中;
S6:将EP管离心,平铺吸磁,用移液器吸取上清,弃去,EP管敞开盖,使用烘干机在56℃温度下烘干2h,烘干机上面用盖子盖住,防污染;
S7:往EP管内加入65℃预热的洗脱液(EB)65μl,移液器反复吹打,充分悬浮磁珠,盖紧EP管盖,70℃保温静置5min40s,期间混匀多次使核酸从磁珠上洗脱下来;
S8:将EP管放入磁力架上,吸磁,取上清,即为核酸溶液;
S9:将核酸溶液立即使用或保存于-20℃的容器中。
实施例三
一种大体积、高灵敏度核酸提取方法,包括:
S1:向50ml无菌离心管中加入10ml样品;
S2:向所述离心管中加入的610μl蛋白酶K试剂、1200μl磁珠和16ml裂解液;
S3:密封所述离心管,漩涡振荡1min充分混匀,70℃温育20min,温育期间不时振荡颠倒混匀,温育后再放到混匀器上摇匀5min;
S4:将所述离心管放到磁力架上,吸磁1min弃上清,将35ml磁珠洗涤液加入所述离心管,漩涡振荡30-60s以充分混匀。
S41:将步骤S4重复4遍;
S5:将步骤S4中混匀后的离心管放置到磁力架上,吸磁弃上清,得到磁珠混合液,留取510μl所述磁珠混合液并转移至2ml EP管中;
S6:将EP管离心,平铺吸磁,用移液器吸取上清,弃去,EP管敞开盖,使用烘干机在56℃温度下烘干2h,烘干机上面用盖子盖住,防污染;
S7:往EP管内加入65℃预热的洗脱液(EB)65μl,移液器反复吹打,充分悬浮磁珠,盖紧EP管盖,70℃保温静置6min,期间混匀多次使核酸从磁珠上洗脱下来;
S8:将EP管放入磁力架上,吸磁,取上清,即为核酸溶液;
S9:将核酸溶液立即使用或保存于-20℃的容器中。
相对于现有技术,本发明的大体积、高灵敏度核酸提取方法,增加了提取核酸标本的体积,大大提高了提取的核酸量,有利于提高核酸检测效率,避免漏检,而且将检测下限提高到1IU/ml,提高了检测的灵敏度,能够对低病毒载量的标本进行定量;裂解液中仅含有5%的多聚正癸醇,在保证能够达到实验目的的情况下,降低了成本;增加烘干步骤可以将10ml样品中提取到的DNA浓缩到洗脱液内,有利于后续试验的进行,提高后续检测效率;本发明中的大体积、高灵敏度核酸提取方法在保证样品中的DNA完全提取的前提下,合理使用试剂,并对试剂用量进行了优化,节省了成本。本发明的大体积、高灵敏度核酸提取方法具有能够提取大体积核酸且提高检测下限、灵敏度高等特点。
为验证此方法的有效性,进行了标准品标准曲线的构建,曲线构建良好,证明了该种方法核酸提取完全且有效。
具体操作步骤如下:
将HBV定量试剂盒(广州达安基因股份有限公司)中的HBV标准品分别配置成10000IU/ml、1000IU/ml、100IU/ml、10IU/ml和1IU/ml浓度的标准品,从10ml相应浓度的标准品中提取核酸,用大体积、高灵敏度核酸提取方法(实施例二),每个浓度梯度行双次检测,以两次检测CT值的平均值为Y轴,病毒浓度的对数为X轴,构建荧光定量标准曲线(如图1所示)和回归方程,图1为实时荧光定量PCR仪ABI 7500合成的荧光定量标准曲线。
结果:HBV病毒荧光定量标准曲线回归方程为:
y=-3.485x+41.07(R2=0.999)。
方程中y为CT平均值,x为模板量的对数。
标准曲线回归方程R2大于0.99,说明各浓度CT平均值与模板量的对数之间均具有良好的线性关系。
表1:不同浓度标准品对应平均CT值
10000IU/ml | 1000IU/ml | 100IU/ml | 10IU/ml | 1IU/ml | |
CT平均 | 27.04 | 30.64 | 34.24 | 37.62 | 40.89 |
由上述检测结果可知,本方法可以将检测下限提高到1IU/ml,提高检测的灵敏度,能够对低病毒载量的标本进行定量。
以上所述实施例仅表达了本发明的几种实施方式,其描述较为具体和详细,但并不能因此而理解为对发明专利范围的限制。应当指出的是,对于本领域的普通技术人员来说,在不脱离本发明构思的前提下,还可以做出若干变形和改进,这些都属于本发明的保护范围。
Claims (7)
1.一种大体积、高灵敏度核酸提取方法,其特征在于:包括:
S1:向50ml离心管中加入10ml样品;
S2:向所述离心管中加入590-610μl蛋白酶K试剂、1000-1200μl磁珠和14-16ml裂解液,所述裂解液包括按体积分数计的以下组分:柠檬酸钠二水合物0.3%、异硫氰酸胍42.5%、多聚正癸醇5%、DDT 0.9%以及蒸馏水余量;
S3:密封所述离心管,漩涡振荡混匀,温育,期间不时振荡混匀;
S4:将所述离心管放到磁力架上,吸磁弃上清,将磁珠洗涤液加入所述离心管,漩涡振荡以充分混匀;
S5:将步骤S4中混匀后的离心管放置到磁力架上,吸磁弃上清,得到磁珠混合液,将所述磁珠混合液转移至EP管中;
S6:将EP管离心,平铺吸磁,弃上清,将EP管放入56℃的烘干机中烘干2h;
S7:往EP管内加入预热后的洗脱液,反复吹打,充分悬浮磁珠,保温静置,期间混匀多次;
S8:将EP管放入磁力架上,吸磁,取上清,即为核酸溶液。
2.根据权利要求1所述的大体积、高灵敏度核酸提取方法,其特征在于:步骤S4中所述将所述离心管放到磁力架上,吸磁弃上清,将磁珠洗涤液加入所述离心管,漩涡振荡以充分混匀包括:
将所述离心管放到磁力架上,吸磁1min弃上清,将31-35ml磁珠洗涤液加入所述离心管,漩涡振荡30-60s以充分混匀。
3.根据权利要求2所述的大体积、高灵敏度核酸提取方法,其特征在于:步骤S5中所述将所述磁珠混合液转移至EP管中包括:
留取490-510μl的所述磁珠混合液并转移至2ml的EP管中。
4.根据权利要求3所述的大体积、高灵敏度核酸提取方法,其特征在于:步骤S7所述往EP管内加入预热后的洗脱液,反复吹打,充分悬浮磁珠,保温静置,期间混匀多次包括:
往EP管内加入65℃预热的洗脱液65μl,移液器反复吹打,充分悬浮磁珠,70℃保温静置5-6min,期间混匀多次。
5.根据权利要求1-4任一项所述的大体积、高灵敏度核酸提取方法,其特征在于:所述大体积、高灵敏度核酸提取方法还包括:
S41:将步骤S4重复3-4遍。
6.根据权利要求1-4任一项所述的大体积、高灵敏度核酸提取方法,其特征在于:步骤S3中所述密封所述离心管,漩涡振荡混匀,温育,期间不时振荡混匀包括:
密封所述离心管,漩涡振荡混匀1-2min,在70℃下温育15-20min,温育期间不时振荡颠倒混匀,温育后再放到混匀器上摇匀5min。
7.根据权利要求1-4任一项所述的大体积、高灵敏度核酸提取方法,其特征在于:所述大体积、高灵敏度核酸提取方法还包括:
S9:立即使用所述核酸溶液或将所述核酸溶液置于-20℃环境中保存。
Priority Applications (1)
Application Number | Priority Date | Filing Date | Title |
---|---|---|---|
CN202111372169.6A CN114058613B (zh) | 2021-11-18 | 2021-11-18 | 一种大体积、高灵敏度核酸提取方法 |
Applications Claiming Priority (1)
Application Number | Priority Date | Filing Date | Title |
---|---|---|---|
CN202111372169.6A CN114058613B (zh) | 2021-11-18 | 2021-11-18 | 一种大体积、高灵敏度核酸提取方法 |
Publications (2)
Publication Number | Publication Date |
---|---|
CN114058613A CN114058613A (zh) | 2022-02-18 |
CN114058613B true CN114058613B (zh) | 2023-10-27 |
Family
ID=80278354
Family Applications (1)
Application Number | Title | Priority Date | Filing Date |
---|---|---|---|
CN202111372169.6A Active CN114058613B (zh) | 2021-11-18 | 2021-11-18 | 一种大体积、高灵敏度核酸提取方法 |
Country Status (1)
Country | Link |
---|---|
CN (1) | CN114058613B (zh) |
Citations (14)
Publication number | Priority date | Publication date | Assignee | Title |
---|---|---|---|---|
BE794310A (fr) * | 1972-05-19 | 1973-05-16 | Coates Brothers & Cy Ltd | Matieres polymerisables |
SU682534A1 (ru) * | 1977-01-03 | 1979-08-30 | Предприятие П/Я В-8570 | Способ получени термореактивных олигомеров |
CN102422143A (zh) * | 2009-03-10 | 2012-04-18 | 新加坡科技研究局 | 处理生物样品和/或化学样品的装置 |
CN107090457A (zh) * | 2007-07-17 | 2017-08-25 | 私募蛋白质体公司 | 检测样品的多元分析 |
CN107794260A (zh) * | 2017-11-21 | 2018-03-13 | 苏州吉玛基因股份有限公司 | 一种从大体积无细胞体液中提取游离核酸的方法 |
CN109722431A (zh) * | 2019-01-21 | 2019-05-07 | 上海科华生物工程股份有限公司 | 一种基于磁珠法的无醇病毒核酸提取试剂盒 |
CN109750030A (zh) * | 2019-01-21 | 2019-05-14 | 上海科华生物工程股份有限公司 | 一种基于磁珠法的快速、不加热的核酸提取试剂盒 |
CN110308288A (zh) * | 2019-04-16 | 2019-10-08 | 广州血液中心 | 一种新型血小板交叉配型试剂盒 |
CN111074008A (zh) * | 2020-02-28 | 2020-04-28 | 南京申基医药科技有限公司 | 一种可提高准确率的covid-19新型冠状病毒核酸检测方法 |
CN111187769A (zh) * | 2020-04-01 | 2020-05-22 | 常州天地人和生物科技有限公司 | 一步快速高效提取病毒核酸的方法 |
CN111518876A (zh) * | 2020-05-11 | 2020-08-11 | 润方(北京)生物医药研究院有限公司 | 一种牛血红蛋白制品中牛源基因组dna定量检测方法及其应用 |
GB202011761D0 (en) * | 2019-02-15 | 2020-09-09 | Revolugen Ltd | Purification method |
CN112771164A (zh) * | 2018-06-29 | 2021-05-07 | 宝洁公司 | 用于个人护理应用的适配体 |
CN113564282A (zh) * | 2021-09-01 | 2021-10-29 | 北京化工大学 | 一种集核酸提取和lamp扩增于一体的可视化检测病毒的方法 |
-
2021
- 2021-11-18 CN CN202111372169.6A patent/CN114058613B/zh active Active
Patent Citations (14)
Publication number | Priority date | Publication date | Assignee | Title |
---|---|---|---|---|
BE794310A (fr) * | 1972-05-19 | 1973-05-16 | Coates Brothers & Cy Ltd | Matieres polymerisables |
SU682534A1 (ru) * | 1977-01-03 | 1979-08-30 | Предприятие П/Я В-8570 | Способ получени термореактивных олигомеров |
CN107090457A (zh) * | 2007-07-17 | 2017-08-25 | 私募蛋白质体公司 | 检测样品的多元分析 |
CN102422143A (zh) * | 2009-03-10 | 2012-04-18 | 新加坡科技研究局 | 处理生物样品和/或化学样品的装置 |
CN107794260A (zh) * | 2017-11-21 | 2018-03-13 | 苏州吉玛基因股份有限公司 | 一种从大体积无细胞体液中提取游离核酸的方法 |
CN112771164A (zh) * | 2018-06-29 | 2021-05-07 | 宝洁公司 | 用于个人护理应用的适配体 |
CN109750030A (zh) * | 2019-01-21 | 2019-05-14 | 上海科华生物工程股份有限公司 | 一种基于磁珠法的快速、不加热的核酸提取试剂盒 |
CN109722431A (zh) * | 2019-01-21 | 2019-05-07 | 上海科华生物工程股份有限公司 | 一种基于磁珠法的无醇病毒核酸提取试剂盒 |
GB202011761D0 (en) * | 2019-02-15 | 2020-09-09 | Revolugen Ltd | Purification method |
CN110308288A (zh) * | 2019-04-16 | 2019-10-08 | 广州血液中心 | 一种新型血小板交叉配型试剂盒 |
CN111074008A (zh) * | 2020-02-28 | 2020-04-28 | 南京申基医药科技有限公司 | 一种可提高准确率的covid-19新型冠状病毒核酸检测方法 |
CN111187769A (zh) * | 2020-04-01 | 2020-05-22 | 常州天地人和生物科技有限公司 | 一步快速高效提取病毒核酸的方法 |
CN111518876A (zh) * | 2020-05-11 | 2020-08-11 | 润方(北京)生物医药研究院有限公司 | 一种牛血红蛋白制品中牛源基因组dna定量检测方法及其应用 |
CN113564282A (zh) * | 2021-09-01 | 2021-10-29 | 北京化工大学 | 一种集核酸提取和lamp扩增于一体的可视化检测病毒的方法 |
Non-Patent Citations (1)
Title |
---|
南海深海新颖低温脂肪酶的克隆、表达及酶学性质鉴定;曹莹莹;邓盾;张云;孙爱君;夏方亮;胡云峰;;中国生物工程杂志(03);全文 * |
Also Published As
Publication number | Publication date |
---|---|
CN114058613A (zh) | 2022-02-18 |
Similar Documents
Publication | Publication Date | Title |
---|---|---|
CN101010592B (zh) | 将磁性粒子与流体分离、混合和浓缩的设备和方法及其在提纯方法中的用途 | |
JP5480505B2 (ja) | 生物学的成分の濃縮ユニット及び濃縮方法 | |
JP5301610B2 (ja) | 分析用の流体を取り扱う装置および方法 | |
TWI391492B (zh) | 自動化遺傳物質處理系統及方法 | |
CN111484991B (zh) | 用于病毒核酸高通量全自动化提取的试剂盒及提取方法 | |
CN1980738A (zh) | 用于收集、储存和运输生物样本的设备和方法 | |
Conceição-Neto et al. | NetoVIR: modular approach to customize sample preparation procedures for viral metagenomics | |
CN101838609B (zh) | 加样装置及其应用 | |
EP1202808A1 (en) | Device and method for mixing magnetic particals with a fluid | |
KR20110134817A (ko) | 분석물의 정량적 이송 방법 | |
JP2001510893A (ja) | 粒子群を凝集させ、分離するための磁気ピン | |
CN103153467A (zh) | 用于提取、浓缩和检测分子物类的使用表面张力阀的低资源处理器 | |
CN112553193A (zh) | 一种磁珠法提取全血dna的试剂盒及其使用方法 | |
US20200122134A1 (en) | Efficient capture of magnetic and paramagnetic carriers of biomarkers from a flowing system | |
US20130071946A1 (en) | Suspension Container For Binding Particles For The Isolation Of Biological Material | |
CN116121237A (zh) | 一种磁珠法无醇核酸提取试剂盒及其提取方法 | |
CN103184214B (zh) | 一种乙型肝炎病毒核酸快速提取试剂 | |
CN114058613B (zh) | 一种大体积、高灵敏度核酸提取方法 | |
CN103695419B (zh) | 一种病毒核酸提取试剂 | |
TW201903147A (zh) | 核酸萃取方法及裝置 | |
CN116083418A (zh) | 一种磁珠型核酸提取试剂盒及提取核酸的方法 | |
CN114438074A (zh) | 用于提高针对液体样本的核酸提取量的方法 | |
Kedda et al. | Susceptibility of chacma baboons (Papio ursinus orientalis) to infection by hepatitis B virus | |
CA2428041C (en) | Step-wise process to recover or eliminate biological substances by flotation from underlayered colloidal medium | |
JP2014033663A (ja) | 核酸抽出装置及び核酸抽出方法 |
Legal Events
Date | Code | Title | Description |
---|---|---|---|
PB01 | Publication | ||
PB01 | Publication | ||
SE01 | Entry into force of request for substantive examination | ||
SE01 | Entry into force of request for substantive examination | ||
GR01 | Patent grant | ||
GR01 | Patent grant |