CN113189176A - Ni/Au复合纳米线阵列及其在无酶葡萄糖传感器电极中的应用 - Google Patents
Ni/Au复合纳米线阵列及其在无酶葡萄糖传感器电极中的应用 Download PDFInfo
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Abstract
本发明提供了制备Ni/Au复合纳米线阵列的方法,该方法包括将阳极氧化铝模板进行导电处理;在阳极氧化铝导电模板内进行Au沉积,然后再进行Ni沉积;去除模板。本发明还公开了该方法得到的纳米线阵列,还公开了该纳米线阵列修饰电极的应用。本专利采用电沉积法将具有不同电负性的贵金属元素及非贵金属元素构建为双层的纳米线结构,明显提高了电极电流,提高了无酶葡萄糖传感器的灵敏度,解决了制约无酶葡萄糖传感器的应用限制问题。
Description
技术领域
本发明属于电化学技术领域。具体涉及一种Ni/Au复合纳米线阵列无酶葡萄糖传感器电极及其制备方法。
背景技术
葡萄糖含量的快速灵敏检测在临床医学检验、食品安全分析以及生物发酵控制等领域都有着十分重要的应用,其中又以血液中葡萄糖含量的检测最为重要。血液中的葡萄糖水平异常会导致许多严重的疾病,最为常见且与人们身体密切相关的有糖尿病。根据国际糖尿病联盟(International Diabetes Federation,IDF)的数据,2015年,全世界共有4.15亿糖尿病患者,几乎每11个人中就有1个糖尿病患者,而糖尿病如果不能有效控制,可导致脑中风、冠心病、失明、肾衰尿毒症、下肢坏死等多种并发症,严重威胁人们的健康。全球每年约有460万人死于糖尿病及其并发症,平均每7秒钟就有1人因糖尿病离世。由此可见,全球糖尿病防控形势已日趋严峻。
因此,作为临床上诊断糖尿病的唯一标准,血液中葡萄糖含量的检测显得尤为重要。目前,葡萄糖含量的检测方法有很多种,如色谱法、光谱法和电化学方法等。其中的电化学葡萄糖传感器因其能够实时检测、可靠性高、成本低及易于操作等优点而被广泛研究。
葡萄糖传感器根据修饰电极中是否含有葡萄糖氧化酶,可以分为酶葡萄糖传感器和无酶葡萄糖传感器两大类。对于酶葡萄糖传感器由于酶易失活,且受环境因素(如温度、湿度及pH等)的影响大,固定困难等问题,导致酶葡萄糖传感器的稳定性和寿命较差。对于无酶葡萄糖传感器而言,电极材料是决定其性能的最重要因素。金属及其氧化物材料,如铂、金、钯、镍、铜、钴等,由于良好的催化性能和生物兼容性,成为无酶葡萄糖传感器理想的电极材料。但是相对于酶催化剂而言,无酶催化剂对葡萄糖氧化的反应动力学较慢、选择性较差,从而导致无酶葡萄糖传感器的灵敏度较差、性能相对较差,这是制约无酶葡萄糖传感器应用的主要问题。因此研究高性能无酶葡萄糖传感器电极材料的生长机理及制备方法,改善电极材料的灵敏度、选择性和稳定性,成为该领域中的研究热点。
发明内容
针对上述问题,本发明创造性的提出了一种Ni/Au复合纳米线阵列无酶葡萄糖传感器电极及其制备方法。该无酶葡萄糖传感器电极采用电沉积法将具有不同电负性的贵金属元素及非贵金属元素构建为双层的纳米线结构,明显提高了电极电流,提高了无酶葡萄糖传感器的灵敏度,解决了制约无酶葡萄糖传感器的应用限制问题。
一种上述的Ni/Au复合纳米线阵列无酶葡萄糖传感器电极的制备方法,该方法包括以下步骤:
(1)Ni/Au复合纳米线阵列的制备
将阳极氧化铝模板进行导电处理;
在阳极氧化铝导电模板内进行Au沉积,然后再进行Ni沉积;
去除沉积了Au和Ni的阳极氧化铝导电模板,得到Ni/Au复合纳米线阵列;
(2)无酶葡萄糖传感器电极的制备
将步骤(1)得到的Ni/Au复合纳米线阵列一端粘到(采用导电银浆(Ted Pella,Inc.)进行粘贴)修饰电极上,进行电位环扫直至循环伏安图稳定,即得到无酶葡萄糖传感器电极。
进一步地,采用磁控溅射Au层的方法对阳极氧化铝模板进行所述导电处理,包括:在阳极氧化铝模板上利用磁控溅射的方法溅射一层金层作为导电层;所述金层的厚度优选为100-200nm。
进一步地,步骤(1)去除阳极氧化铝导电模板后还包括以下步骤:去除沉积了Au和Ni的阳极氧化铝导电模板,然后进行清洗、烘干处理。
进一步地,氧化铝导电模板上沉积Au时以Au/阳极氧化铝为阴极、铂片为阳极、氯金酸溶液为电解液进行Au的沉积;优选地,沉积Au时的电流为0.08-0.12mA·cm-2,如0.08mA·cm-2、0.09mA·cm-2、0.1mA·cm-2、0.11mA·cm-2、0.12mA·cm-2;沉积时间优选为6-10小时,如6小时、7小时、8小时、9小时、10小时;
独立优选地,所用氯金酸溶液的浓度为22-28mmol/L,如22mmol/L、23mmol/L、24mmol/L、25mmol/L、26mmol/L、28mmol/L。
进一步地,在氧化铝导电模板上进行Au沉积还包括以下步骤:Au沉积完成后,将沉积Au的阳极氧化铝模板采用去离子水清洗三次,然后放入烘箱中在60℃条件下烘干0.8-1.2小时,如0.8小时、0.9小时、1.0小时、1.1小时、1.2小时。
进一步地,进行Ni沉积时以Au/阳极氧化铝为阴极,铂片为阳极,硼酸溶液、柠檬酸溶液和硫酸镍溶液的混合溶液为电解液进行Ni的沉积;优选地,Ni沉积时的电流为0.08-0.12mA·cm-2,如0.08mA·cm-2、0.09mA·cm-2、0.1mA·cm-2、0.11mA·cm-2、0.12mA·cm-2;沉积时间优选为6-10小时,如6小时、7小时、8小时、9小时、10小时;
独立优选地,Ni沉积电解液中硼酸的浓度为20g/L硼酸,柠檬酸的浓度为0.8g/L,硫酸镍的浓度独立可选为80g/L。
进一步地,所述去除沉积了Au和Ni的阳极氧化铝导电模板具体为:将沉积了Au和Ni的阳极氧化铝导电模板置于浓度为0.8-1.2mol/L的氢氧化钠溶液中浸泡10-14小时,其中氢氧化钠的浓度可以为0.8mol/L、0.9mol/L、1.0mol/L、1.1mol/L、1.2mol/L,浸泡时间可以为10小时、11小时、12小时、13小时、14小时。
进一步地,将步骤(1)得到的Ni/Au复合纳米线阵列一端粘到修饰电极上之后还包括以下操作:将Ni/Au复合纳米线阵列一端粘到修饰电极上之后,采用烘箱在60℃条件下烘干0.8-1.2小时;并将Ni/Au与修饰电极的边缘密封、再在60℃条件下烘干0.8-1.2小时;然后进行电位扫面。
进一步地,所述电位环扫时的电压范围为-0.8~0.8V;工作时的温度优选为25-30℃。
进一步地,所述电位环扫时的扫速为50mV/S。
进一步地,该过程中烘干均是在60±10℃条件下烘干0.8-1.2小时。
进一步地,所述Ni/Au复合纳米线阵列无酶葡萄糖传感器电极的制备方法,包括以下步骤:
(1)Ni/Au复合纳米线阵列的制备:
①将阳极氧化铝模板导电处理:采用磁控溅射Au层的方法对阳极氧化铝模板的一面进行导电化处理,在阳极氧化铝模板上利用磁控溅射的方法溅射一层厚度为100-200nm之间的金层作为导电层;
②采用导电银浆(Ted Pella,Inc.)将阳极氧化铝模板进行了导电处理的一面连接到导电线上,再用胶水(优选为3mol/L Scotch超强度)将粘有银浆的导电线及其靠近部分密封;
③采用CHI 660E电化学工作站,利用计时电位法(chronopotentiometry)在0.1mA·cm-2的恒定电流下进行Au沉积。电沉积过程中阴极用Au/阳极氧化铝,阳极由铂片组成,使用的电解液为24mmol/L的氯金酸溶液,电沉积时间为8h;沉积完成后用去离子水清洗3次,放入烘箱中在60℃条件下烘干60min;
④采用CHI 660E电化学工作站,利用计时电位法(chronopotentiometry)在0.1mAcm-2的恒定电流下进行Ni沉积。电沉积过程中阴极用Au/阳极氧化铝,阳极由铂片组成,电解液为20g/L硼酸、0.8g/L柠檬酸和80g/L硫酸镍的混合溶液,电沉积时间为8h;
⑤将沉积了Au和Ni的阳极氧化铝在1mol/L的氢氧化钠溶液中浸泡12h去除阳极氧化铝模板,然后用去离子水清洗三次,并再次放入烘箱中在60℃条件下烘干60min;得到Ni/Au纳米线阵列。
(2)无酶葡萄糖传感器电极的制备
⑥将步骤(1)制备的Ni/Au复合纳米线阵列用导电银浆粘到修饰电极中心;所述的修饰电极优选为玻碳电极;然后放入烘箱中在60℃条件下烘干60min,取出;
⑦用环氧树脂将纳米线阵列边缘和玻碳电极表面其他导电部分完全封住;然后放入烘箱中在60℃条件下烘干60min,取出;
⑧电位环扫:将步骤⑦制得的经Ni/Au纳米线阵列修饰的玻碳电极置于1mol/LNaOH中利用电位仪进行电位环扫,直至循环伏安图稳定;即可得到所述工作电极;
所述Ni/Au纳米线阵列修饰的玻碳电极电位环扫时的工作温度优选为25℃-30℃;电位环扫时的扫速为50mV/S;所述Ni/Au纳米线阵列修饰的玻碳电极电位环扫时的电压范围为-0.8~0.8V。
进一步地,采用两种具有电负性差的元素,也可制备出本发明的复合纳米线,在无酶葡萄糖传感器中使用时具有较大的灵敏性及较好的选择性,如Pt/Ni,Pd/Ni,Au/Fe等。
一种由上述Ni/Au复合纳米线阵列无酶葡萄糖传感器电极的制备方法制备得到的Ni/Au复合纳米线阵列无酶葡萄糖传感器电极,该电极包括Ni/Au复合纳米线阵列,所述的Ni/Au复合纳米线阵列为实心圆柱体型,实心圆柱体型包括上层Ni层以及下层Au层;该电极还包括Au层一端粘附的修饰电极。
进一步地,所述Ni/Au复合纳米线阵列直径为10-200nm,长度在20μm以下。
与现有技术相比,本发明具有以下积极有益效果
本发明以阳极氧化铝为导电模板,进行Ni及Au的沉积制备得到Ni层与Au层紧密相连的结构,该结构综合了Ni材料对葡萄糖良好的催化能力、Au材料的高电子转移速率以及Ni和Au之间的协同作用,由此构建的无酶葡萄糖传感器具有高灵敏度、选择性好、响应时间短等优势,电化学测试结果也表明从0.05mM到10mM范围内,此种结构的Ni/Au复合纳米线无酶葡萄糖传感器的电流响应随着浓度变化的线性度良好,灵敏度为5150uA/(mM·cm-2),该灵敏度的提高远远超越了现有技术中无酶葡萄糖传感器的灵敏度。因此,本发明中复合纳米线在Ni对葡萄糖良好的催化能力、Au材料的高电子转移速率、Ni和Au之间的协同作用以及纳米线的高比表面积的综合作用下,明显提高了无酶葡萄糖传感器的灵敏度。该结构不仅提高了灵敏度还明显提高了响应时间,大大扩展了其应用范围。
该Ni/Au复合纳米线制备得到的无酶葡萄糖传感器对于血液中的其他有机物,如抗化学酸、尿酸等具有良好的选择性,可以选择性催化氧化葡萄糖,这将在其高灵敏度的基础上大大提高检测效率,非常明显的克服了其应用中受到的限制。
附图说明
图1为本发明制备的Ni/Au复合纳米线阵列的SEM图之一,
图2为本发明制备的Ni/Au复合纳米线阵列的EDS图谱(图1中对应位置的复合纳米线的EDS图谱),
图3为本发明制备的Ni/Au复合纳米线阵列的背散射图,
图4为本发明制备的Ni/Au复合纳米线阵列的TEM图,
图5为图4中的局部放大图,
图6为循环伏安特性检测结果图,图中(a)表示Ni/Au复合纳米线阵列无酶葡萄糖传感器在10mmol/L葡萄糖+1mol/L氢氧化钠(氮气饱和)下的循环伏安曲线;(b)表示Ni/Au复合纳米线阵列无酶葡萄糖传感器在1M氢氧化钠(氮气饱和)下的循环伏安曲线;(c)表示Ni纳米线阵列无酶葡萄糖传感器在10mmol/L葡萄糖+1mol/L氢氧化钠(氮气饱和)下的循环伏安曲线;(d)表示Ni纳米线阵列无酶葡萄糖传感器在1M氢氧化钠(氮气饱和)下的循环伏安曲线。采用的扫速均为50mV/s;
图7为本发明Ni/Au复合纳米线阵列无酶葡萄糖电极的无酶葡萄糖传感器电流响应特性检测结果,图中,(a)表示Ni/Au复合纳米线阵列无酶葡萄糖传感器和Ni纳米线阵列无酶葡萄糖传感器的I-t曲线,葡萄糖浓度为0-65mmol/L;(b)表示Ni/Au复合纳米线阵列无酶葡萄糖传感器峰值氧化电流和葡萄糖浓度0-65mmol/L之间的拟合曲线;(c)表示Ni/Au复合纳米线阵列无酶葡萄糖传感器的I-t曲线,葡萄糖浓度为0-10mmol/L;(d)表示Ni/Au复合纳米线阵列无酶葡萄糖传感器峰值氧化电流和葡萄糖浓度0-10mmol/L之间的拟合曲线;(e)表示Ni/Au复合纳米线阵列无酶葡萄糖传感器的I-t曲线,葡萄糖浓度为10-65mmol/L;(f)表示Ni/Au复合纳米线阵列无酶葡萄糖传感器峰值氧化电流和葡萄糖浓度10-65mmol/L之间的拟合曲线;
图8为Ni/Au复合纳米线阵列无酶葡萄糖传感器的选择性;
图9为Ni/Au复合纳米线阵列无酶葡萄糖传感器的响应时间;
图10为Ni/Au复合纳米线阵列无酶葡萄糖传感器电极的制备过程示意图,(a)图中透明多孔的部分为阳极氧化铝模板,(b)图为在阳极氧化铝模板中沉积Au层,(c)图为在阳极氧化铝模板中沉积Ni层,(d)图为将Ni/Au复合纳米线阵列的阳极氧化铝模板去掉获得的纳米线阵列;图中Ni/Au复合纳米线阵列下方是磁控溅射的Au层,Au层保证Ni/Au复合纳米线阵列不会散开,也是Ni/Au复合纳米线阵列和玻碳电极之间的电连接。
具体实施方式
下面通过具体实施方式对本发明进行更加详细的说明,以便于对本发明技术方案的理解,但并不用于对本发明保护范围的限制。
本发明提供了一种Ni/Au复合纳米线阵列无酶葡萄糖传感器电极的制备方法,包括以下步骤:
(1)Ni/Au复合纳米线阵列的制备:
①将阳极氧化铝模板导电处理:采用磁控溅射Au层的方法对阳极氧化铝模板的一面进行导电化处理,在阳极氧化铝模板上利用磁控溅射的方法溅射一层厚度为100nm金层作为导电层;②采用导电银浆(Ted Pella,Inc.)将阳极氧化铝模板进行了导电处理的一面连接到导电线上,再用胶水(采用3mol/L Scotch超强度胶)将粘有银浆的导电线及其靠近部分密封;
③采用CHI 660E电化学工作站,利用计时电位法(chronopotentiometry)在0.1mA·cm-2的恒定电流下进行Au沉积。电沉积过程中阴极用Au/阳极氧化铝,阳极由铂片组成,使用的电解液为24mmol/L的氯金酸溶液,电沉积时间为8h;沉积完成后用去离子水清洗3次,放入烘箱中在60℃条件下烘干60min;
④采用CHI 660E电化学工作站,利用计时电位法(chronopotentiometry)在0.1mAcm-2的恒定电流下进行Ni沉积。电沉积过程中阴极用Au/阳极氧化铝,阳极由铂片组成,电解液为20g/L硼酸、0.8g/L柠檬酸和80g/L硫酸镍的混合溶液,电沉积时间为8h;
⑤将沉积了Au和Ni的阳极氧化铝在1M/L的氢氧化钠溶液中浸泡12h去除阳极氧化铝模板,然后用去离子水清洗三次,并再次放入烘箱中在60℃条件下烘干60min;得到Ni/Au纳米线阵列。
(2)无酶葡萄糖传感器电极的制备
⑥将步骤(1)制备的Ni/Au复合纳米线阵列用导电银浆粘到修饰电极中心;所述的修饰电极优选为玻碳电极;然后放入烘箱中在60℃条件下烘干60min,取出;
⑦用环氧树脂将纳米线阵列边缘和玻碳电极表面其他导电部分完全封住;然后放入烘箱中在60℃条件下烘干60min,取出;
⑧电位环扫:将步骤⑦制得的经Ni/Au纳米线阵列修饰的玻碳电极置于1mol/LNaOH中利用电位仪进行电位环扫,直至循环伏安图稳定;即可得到所述工作电极;
其中,Ni/Au纳米线阵列修饰的玻碳电极电位环扫时的工作温度为25℃-30℃;电位环扫时的扫速为50mV/S;所述Ni/Au纳米线阵列修饰的玻碳电极电位环扫时的电压范围为-0.8~0.8V。
通过上述制备方法制备得到的Ni/Au复合纳米线阵列无酶葡萄糖传感器电极,包括Ni/Au复合纳米线阵列,所述的Ni/Au复合纳米线阵列为实心圆柱体型,实心圆柱体型包括上层Ni层以及下层Au层;该电极还包括Au层一端通过导电银浆粘附的修饰电极(优选为玻碳电极)。
该Ni/Au复合纳米线阵列直径可以为10-200nm之间的任意一个数值,长度在20μm以下。
将上述制备的Ni/Au复合纳米线阵列无酶葡萄糖电极按照常规方法制备成为无酶葡萄糖传感器,然后进行以下测试:
1、采用本领域中公知的方法测试其在葡萄糖溶液中的循环伏安曲线,并与现有技术中的无酶葡萄糖传感器在葡萄糖溶液中的循环伏安曲线进行比较,结果如图6所示;由检测结果可以看出,采用本发明的Ni/Au复合纳米线阵列所得无酶葡萄糖传感器效果非常明显的优于现有技术中的无酶葡萄糖传感器。
2、采用本领域中公知的方法对该无酶葡萄糖传感器进行电流响应特性进行检测,结果如图7所示;
3、采用本领域中公知的方法对该无酶葡萄糖传感器的选择性进行检测,结果如图8所示;由于检测结果可以看出,具有明显的选择性。
4、采用本领域中公知的方法对该传感器的响应时间进行检测,结果如图9所示;有检测结果可以看出,本发明制备的Ni/Au复合纳米线阵列无酶葡萄糖电极制备无酶葡萄糖传感器的响应时间为2.5秒,比现有技术中的响应时间明显提高。
Claims (10)
1.制备Ni/Au复合纳米线阵列的方法,该方法包括以下步骤:
1)将阳极氧化铝模板进行导电处理;
2)在上述处理过的阳极氧化铝模板内进行Au沉积,然后再进行Ni沉积;
3)去除沉积Au和Ni用的阳极氧化铝模板,得到Ni/Au复合纳米线阵列。
2.如权利要求1所述的方法,其特征是,步骤2)沉积Au时以Au/阳极氧化铝为阴极、铂为阳极、氯金酸溶液为电解液进行Au的沉积;
优选地,沉积Au时的电流为0.08-0.12mA·cm-2(如为0.1),沉积时间可为6-10小时;
独立优选地,所用氯金酸溶液的浓度为20-28mmol/L(如为24)。
3.如权利要求1所述的方法,其特征是,进行所述Ni沉积时以Au/阳极氧化铝为阴极,铂为阳极,硼酸、柠檬酸和硫酸镍复合溶液为电解液进行Ni的沉积;
优选地,Ni沉积时的电流为0.08-0.12mA·cm-2(如为0.1),沉积时间可为6-10小时;
独立优选地,Ni沉积电解液中硼酸与柠檬酸的质量比为20:0.8,如柠檬酸的浓度为0.8g/L,优选硼酸、柠檬酸和硫酸镍的质量比为20:0.8:80,硫酸镍的浓度独立可选为80g/L。
4.如权利要求1所述的方法,其特征是,采用磁控溅射Au层的方法对阳极氧化铝模板进行所述导电处理,包括:在阳极氧化铝模板上利用磁控溅射的方法溅射一层金层作为导电层;所述金层的厚度优选为100-200nm。
5.任一在先权利要求项所述方法制备得到的复合纳米线阵列。
6.如前一权利要求所述的复合纳米线阵列,其特征是,其包含Ni层与Au层组成的双层结构,该结构可为实心圆柱体型。
7.含任一在先权利要求所述复合纳米线阵列的无酶葡萄糖传感器电极。
8.如前一权利要求所述的电极,其特征是,该电极复合纳米线阵列的Au层一端粘附有修饰电极,优选玻碳电极。
9.如前一权利要求所述的电极,其特征是,该电极的制备包括,将所述复合纳米线阵列一端粘到修饰电极上,进行电位环扫直至循环伏安图稳定。
10.如前一权利要求所述的电极,其特征是,所述电位环扫时的电压范围为-0.8~0.8V,独立优选地,所述电位环扫时的扫速为50mV/S。
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GR01 | Patent grant | ||
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