CN112098578A - 一种可区分鹿角胶和鹿皮胶的特征肽段及其检测方法 - Google Patents

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Abstract

本发明公开了一种可区分鹿皮胶与鹿角胶的特征肽段及其检测方法,本发明通过大量实验筛选,以鹿角胶在混合胶中占比为横坐标,以A肽1/A肽3、A肽2/A肽3数值为纵坐标作图,鹿角胶占比与A肽1/A肽3呈线性,建立标准曲线方程为y=1.034x+0.0157,R²=0.9908;鹿角胶占比与A肽2/A肽3也呈线性,建立标准曲线方程为y=0.7883x+0.0949,R²=0.9905;鹿角胶掺入比例与A肽1/A肽3、A肽2/A肽3数值相关,根据A肽1/A肽3、A肽2/A肽3的比值确定鹿角胶与鹿皮胶混合比例。该方法专属性强、灵敏度高、操作简单,可用于鹿皮胶与鹿角胶的区分及质量控制。

Description

一种可区分鹿角胶和鹿皮胶的特征肽段及其检测方法
技术领域
本发明涉及一种鹿源特征肽段及其检测方法,具体涉及区分鹿皮胶与鹿角胶,以及鹿角胶中掺有鹿皮胶的样品、掺入鹿皮胶的比例的特征肽段和检测方法。
技术背景
胶类药材包括阿胶、鹿皮胶、鹿角胶、黄明胶等,80%以上的成分为不同类别的胶原蛋白,包括I型胶原α1链(COL1A1)、I型胶原α2链(COL1A2)、II型胶原α1链(COL2A1)、III型胶原α1链(COL3A1)等,其中以COL1A2来源的肽段为主。COL1A2作为高保守蛋白质,广泛存在于不同动物种体内,是构成胶类药材的重要蛋白类成分之一。
鹿角胶与鹿皮胶均来源于梅花鹿或马鹿,两者为名贵胶类中药材,鹿角胶为梅花鹿或马鹿角经水煎煮、浓缩制成的固体胶,鹿皮胶为梅花鹿或马鹿的干燥皮或鲜皮经煎煮、浓缩制成的固体胶。鹿角为马鹿或梅花鹿已骨化的角,价格远高于鹿皮,市场上存在以鹿皮胶掺入鹿角胶以次充好的现象。如何将鹿皮胶与鹿角胶进行区分,着实是胶类药材鉴定研究的难题,给鹿角胶与鹿皮胶鉴别,以及鹿角胶掺入鹿皮胶的伪品鉴别都带来了挑战。
鹿角胶与鹿皮胶从外观上难以区分,且两者均来源于梅花鹿或马鹿,其蛋白质组成相同,因此,通过寻找专属性肽段来区分两者基本不可能。
发明内容:
发明目的:本发明通过大量是实验筛选,研究确定3条鹿源肽段相对含量的比值,从而用来区分鹿皮胶与鹿角胶。该方法专属性强、灵敏度高、操作简单,可用于鹿皮胶与鹿角胶的区分及质量控制。
为实现上述目的,本发明采用如下技术方案:
一种可区分鹿角胶和鹿皮胶的特征肽段,其特征在于,所述的特征肽为:
肽1:
Gly-Ser-Asp-Gly-Ser-Val-Gly-Pro-Val-Gly-Pro-Ala-Gly-Pro-Ile-Gly-Ser-Ala-Gly-Pro-Hyp-Gly-Phe-Hyp-Gly-Ala-Hyp-Gly-Pro-Lys
肽2:
Gly-Ser-Asp-Gly-Ser-Val-Gly-Pro-Val-Gly-Pro-Ala-Gly-Pro-Ile-Gly-Ser-Ala-Gly-Pro-Hyp-Gly-Phe-Pro-Gly-Ala-Hyp-Gly-Pro-Lys
肽3:
Gly-Asp-Asp-Gly-Ala-Thr-Gly-Ala-Ala-Gly-Pro-Hyp-Gly-Pro-Thr-Gly-Pro-Ala-Gly-Pro-Hyp-Gly-Phe-Pro-Gly-Ala-Val-Gly-Ala-Lys。
一种可区分鹿角胶和鹿皮胶的特征肽段的检测方法,其特征在于,包括以下步骤:
(1)将权利要求1所述的3个鹿源特征肽配成混合对照品溶液;
(2)将待检测鹿皮胶与鹿角胶样品,用胰蛋白酶进行酶切后,将酶解液和步骤(1)鹿源特征肽混合对照品溶液注入液质联用仪,以鹿源特征肽对照,采用ESI正离子模式,多反应监测模式,选择的离子对包括:肽1:m/z 864.0(三电荷)→535.4、肽2:m/z 858.7(三电荷)→527.4进行检测、肽3:m/z 845.4(三电荷)→507.4进行检测;以肽1峰面积A肽1与肽3峰面积A肽3的比值或肽2峰面积A肽2与肽3峰面积A肽3的比值确定样品为鹿皮胶或是鹿角胶。
作为优选方案,以上所述的可区分鹿角胶和鹿皮胶的特征肽段的检测方法,所述的酶切方法为:取待检测胶类药材样品10mg,加入5ml磷酸盐缓冲液,超声使样品完全溶解,12000rpm离心20min,取上清液150μl,置于2ml离心管中,以1ml 50mM PBS稀释,加入适量胰蛋白酶,摇匀,充分酶解,加入10%三氟乙酸溶液60μl终止反应,12000rpm离心20min,即得胶类药材酶解液,置于-20℃保存,备用。
作为优选方案,以上所述的可区分鹿角胶和鹿皮胶的特征肽段的检测方法,加入胰蛋白酶的质量浓度为0.1%~10%。
作为优选方案,以上所述的可区分鹿角胶和鹿皮胶的特征肽段的检测方法,酶解方式包括:37℃恒温酶解、微波辅助酶解、超声辅助酶解、酶固定化酶解。
作为优选方案,以上所述的可区分鹿角胶和鹿皮胶的特征肽段的检测方法,液质联用仪检测的液相条件为:色谱柱为1.7μm Waters C18柱,规格为2.1μm×100mm,上样量为2μl,流速0.3ml/min,0~3.5min,10~30%A线性梯度洗脱,3.5~4min,30~10%A线性梯度洗脱,4~6min,10%A洗脱;采用三重四极杆质谱,质谱条件为:m/z 864.0(三电荷)→535.4、m/z 858.7(三电荷)→527.4、m/z 845.4(三电荷)→507.4。
7、根据权利要求2所述的可区分鹿角胶和鹿皮胶的特征肽段的检测方法,其特征在于,鹿角胶的A肽1/A肽3不得低于1.0,A肽2/A肽3不得低于0.5,鹿皮胶的A肽1/A肽3不得高于0.2,A肽2/A肽3不得高于0.5。
作为优选方案,以上所述的可区分鹿角胶和鹿皮胶的特征肽段的检测方法,鹿皮胶与鹿角胶所含比例检测的标准曲线方程的建立:
将鹿角胶与鹿皮胶按0%,10%,20%,30%,40%,50%,60%,70%,80%,90%,100%的比例混合,将每批次混胶样品各取10mg,加入5ml磷酸盐缓冲液,超声使样品完全溶解,12000rpm离心20min,取上清液150μl,置于2ml离心管中,以1ml 50mM PBS稀释,加入质量浓度为1%胰蛋白酶,摇匀,微波酶解30min,酶解后加入10%三氟乙酸溶液60μl终止反应,12000rpm离心20min,即得不同比例混胶样品酶解液,置于-20℃保存,备用;
将不同比例混胶样品酶解液注入液质联用仪,进样量为1μg,液质联用仪检测的液相条件为:色谱柱为1.7μm C18反相色谱柱,规格2.1μm×100mm,流速0.3ml/min,流动相A为乙腈,流动相B为0.1%甲酸,0~3.5min,10~30%A线性梯度洗脱,3.5~4min,30~10%A线性梯度洗脱,4~6min,10%A洗脱;
液质联用仪检测的质谱条件为:电喷雾正离子模式ESI+,质谱参数为:离子源温度500℃;电离电压5500V;脱溶剂温度500℃;离子源气体1,60psi;离子源气体2,60psi;
设置特征肽对应的离子对条件如下:
肽1:m/z 864.0(三电荷)→535.4,DP=166.57,CE=33.95;
肽2:m/z 858.7(三电荷)→527.4,DP=160.35,CE=35.65;
肽3:m/z 845.4(三电荷)→507.4,DP=143.27,CE=31.50。
以鹿角胶在混合胶中占比为横坐标,以A肽1/A肽3、A肽2/A肽3数值为纵坐标作图,鹿角胶占比与A肽1/A肽3呈线性,建立标准曲线方程为y=1.034x+0.0157,R2=0.9908;鹿角胶占比与A肽2/A肽3也呈线性,建立标准曲线方程为y=0.7883x+0.0949,R2=0.9905;鹿角胶掺入比例与A肽1/A肽3、A肽2/A肽3数值相关,可根据A肽1/A肽3、A肽2/A肽3的比值确定鹿角胶与鹿皮胶混合比例。
有益效果:本发明相比现有技术具有以下优点:
本发明通过大量是实验筛选,研究确定3条鹿源肽段相对含量的比值,并建立的线性方程,从而用来区分鹿皮胶与鹿角胶。该方法专属性强、灵敏度高、操作简单,可用于鹿皮胶与鹿角胶的区分及质量控制。从而可以克服现有技术中,鹿角胶与鹿皮胶从外观上难以区分,专属性肽段也难以区分的不足,取得了非常好的技术进步。
附图说明
图1为鹿角胶在混合胶中占比与A肽1/A肽3、A肽2/A肽3数值关系。
图2为肽1的质谱图。
图3为肽2的质谱图。
图4为肽3的质谱图。
具体实施例
下面结合具体实施例对本发明作进一步阐述,但这些实施例不应解释为限制本发明。
实施例1
一种鹿源特征肽,所述的特征肽序列有3个,如序列表1:
肽1:
Gly-Ser-Asp-Gly-Ser-Val-Gly-Pro-Val-Gly-Pro-Ala-Gly-Pro-Ile-Gly-Ser-Ala-Gly-Pro-Hyp-Gly-Phe-Hyp-Gly-Ala-Hyp-Gly-Pro-Lys;
肽2:
Gly-Ser-Asp-Gly-Ser-Val-Gly-Pro-Val-Gly-Pro-Ala-Gly-Pro-Ile-Gly-Ser-Ala-Gly-Pro-Hyp-Gly-Phe-Pro-Gly-Ala-Hyp-Gly-Pro-Lys;
肽3:
Gly-Asp-Asp-Gly-Ala-Thr-Gly-Ala-Ala-Gly-Pro-Hyp-Gly-Pro-Thr-Gly-Pro-Ala-Gly-Pro-Hyp-Gly-Phe-Pro-Gly-Ala-Val-Gly-Ala-Lys。
实施例2鹿皮胶A肽1/A肽3、A肽2/A肽3的测定
取10个批次市售鹿皮胶样品,每批次各取10mg,加入5ml磷酸盐缓冲液,超声使样品完全溶解,12000rpm离心20min,取上清液150μl,置于2ml离心管中,以1ml 50mM PBS稀释,加入1%胰蛋白酶(w/v),摇匀,37℃恒温酶解12h,酶解后加入10%TFA溶液60μl终止反应,12000rpm离心20min,即得鹿皮胶药材酶解液,置于-20℃保存,备用。
将上述10批次的鹿皮胶酶解液注入液质联用仪,进样量为1μg,液质联用仪检测的液相条件为:色谱柱为1.7μm C18反相色谱柱(2.1μm×100mm),流速0.3ml/min,流动相A(乙腈),流动相B(0.1%甲酸),0~3.5min,10~30%A线性梯度洗脱,3.5~4min,30~10%A线性梯度洗脱,4~6min,10%A洗脱。液质联用仪检测的质谱条件为:电喷雾正离子模式(ESI+),质谱参数为:离子源温度500℃;电离电压5500V;脱溶剂温度500℃;离子源气体1,60psi;离子源气体2,60psi。设置特征肽对应的离子对条件如下:
肽1:m/z 864.0(三电荷)→535.4,DP=166.57,CE=33.95;
肽2:m/z 858.7(三电荷)→527.4,DP=160.35,CE=35.65;
肽3:m/z 845.4(三电荷)→507.4,DP=143.27,CE=31.50。
10个批次鹿皮胶A肽1/A肽3、A肽2/A肽3数值见表1,A肽1/A肽3平均值为0.085±0.039,A肽2/A肽3平均值为0.186±0.099。
表1鹿皮胶A肽1/A肽3、A肽2/A肽3结果
Figure BDA0002661318120000041
实施例3鹿角胶A肽1/A肽3、A肽2/A肽3的测定
取10个批次鹿角样品,按照2020版《中国药典》制备鹿角胶方法,获得鹿角胶样品,每批次各取约10mg,加入5ml磷酸盐缓冲液,超声使样品完全溶解,12000rpm离心20min,取上清液150μl,置于2ml离心管中,以1ml 50mM PBS稀释,加入1%胰蛋白酶(w/v),摇匀,超声酶解10min,酶解后加入10%TFA溶液60μl终止反应,12000rpm离心20min,即得鹿角胶酶解液,置于-20℃保存,备用。
将10个批次的鹿角胶酶解液注入液质联用仪,进样量为1μg,液质联用仪检测的液相条件为:色谱柱为1.7μm C18反相色谱柱(2.1μm×100mm),流速0.3ml/min,流动相A(乙腈),流动相B(0.1%甲酸),0~3.5min,10~30%A线性梯度洗脱,3.5~4min,30~10%A线性梯度洗脱,4~6min,10%A洗脱。液质联用仪检测的质谱条件为:电喷雾正离子模式(ESI+),质谱参数为:离子源温度500℃;电离电压5500V;脱溶剂温度500℃;离子源气体1,60psi;离子源气体2,60psi。设置特征肽对应的离子对条件如下:
肽1:m/z 864.0(三电荷)→535.4,DP=166.57,CE=33.95;
肽2:m/z 858.7(三电荷)→527.4,DP=160.35,CE=35.65;
肽3:m/z 845.4(三电荷)→507.4,DP=143.27,CE=31.50。
10个批次鹿角胶A肽1/A肽3、A肽2/A肽3数值见表2,A肽1/A肽3平均值为1.659±0.453,A肽2/A肽3平均值为0.898±0.167。
表2鹿角胶A肽1/A肽3、A肽2/A肽3结果
Figure BDA0002661318120000051
实施例4不同比例鹿皮胶与鹿角胶混合样品中A肽1/A肽3、A肽2/A肽3的测定
将鹿角胶与鹿皮胶按0%,10%,20%,30%,40%,50%,60%,70%,80%,90%,100%的比例混合,将每批次混胶样品各取10mg,加入5ml磷酸盐缓冲液,超声使样品完全溶解,12000rpm离心20min,取上清液150μl,置于2ml离心管中,以1ml 50mM PBS稀释,加入1%胰蛋白酶(w/v),摇匀,微波酶解30min,酶解后加入10%TFA溶液60μl终止反应,12000rpm离心20min,即得不同比例混胶样品酶解液,置于-20℃保存,备用。
将不同比例混胶样品酶解液依次注入液质联用仪,进样量为1μg,液质联用仪检测的液相条件为:色谱柱为1.7μm C18反相色谱柱(2.1μm×100mm),流速0.3ml/min,流动相A(乙腈),流动相B(0.1%甲酸),0~3.5min,10~30%A线性梯度洗脱,3.5~4min,30~10%A线性梯度洗脱,4~6min,10%A洗脱。
液质联用仪检测的质谱条件为:电喷雾正离子模式(ESI+),质谱参数为:离子源温度500℃;电离电压5500V;脱溶剂温度500℃;离子源气体1,60psi;离子源气体2,60psi。设置特征肽对应的离子对条件如下:
肽1:m/z 864.0(三电荷)→535.4,DP=166.57,CE=33.95;
肽2:m/z 858.7(三电荷)→527.4,DP=160.35,CE=35.65;
肽3:m/z 845.4(三电荷)→507.4,DP=143.27,CE=31.50。
不同比例混胶样品的A肽1/A肽3、A肽2/A肽3数值见表3,鹿角胶在混合胶中占比与A肽1/A肽3、A肽2/A肽3数值关系如图1所示。以鹿角胶在混合胶中占比为横坐标,以A肽1/A肽3、A肽2/A肽3数值为纵坐标作图,鹿角胶占比与A肽1/A肽3呈线性,y=1.034x+0.0157,R2=0.9908;鹿角胶占比与A肽2/A肽3也呈线性,y=0.7883x+0.0949,R2=0.9905。表明鹿角胶掺入比例与A肽1/A肽3、A肽2/A肽3数值相关,因此可根据A肽1/A肽3、A肽2/A肽3的比值确定鹿角胶与鹿皮胶混合比例。
表3鹿角胶/鹿皮胶混合样品掺入比例与峰面积关系
Figure BDA0002661318120000061
序列表
<110> 南京中医药大学
<120> 一种可区分鹿角胶和鹿皮胶的特征肽段及其检测方法
<141> 2020-09-01
<160> 3
<170> SIPOSequenceListing 1.0
<210> 1
<211> 30
<212> PRT
<213> 人工序列(Artificial Sequence)
<400> 1
Gly Ser Asp Gly Ser Val Gly Pro Val Gly Pro Ala Gly Pro Ile Gly
1 5 10 15
Ser Ala Gly Pro Xaa Gly Phe Xaa Gly Ala Xaa Gly Pro Lys
20 25 30
<210> 2
<211> 30
<212> PRT
<213> 人工序列(Artificial Sequence)
<400> 2
Gly Ser Asp Gly Ser Val Gly Pro Val Gly Pro Ala Gly Pro Ile Gly
1 5 10 15
Ser Ala Gly Pro Xaa Gly Phe Pro Gly Ala Xaa Gly Pro Lys
20 25 30
<210> 3
<211> 30
<212> PRT
<213> 人工序列(Artificial Sequence)
<400> 3
Gly Asp Asp Gly Ala Thr Gly Ala Ala Gly Pro Xaa Gly Pro Thr Gly
1 5 10 15
Pro Ala Gly Pro Xaa Gly Phe Pro Gly Ala Val Gly Ala Lys
20 25 30

Claims (8)

1.一种可区分鹿角胶和鹿皮胶的特征肽段,其特征在于,所述的特征肽为:
肽1:
Gly-Ser-Asp-Gly-Ser-Val-Gly-Pro-Val-Gly-Pro-Ala-Gly-Pro-Ile-Gly-Ser-Ala-Gly-Pro-Hyp-Gly-Phe-Hyp-Gly-Ala-Hyp-Gly-Pro-Lys
肽2:
Gly-Ser-Asp-Gly-Ser-Val-Gly-Pro-Val-Gly-Pro-Ala-Gly-Pro-Ile-Gly-Ser-Ala-Gly-Pro-Hyp-Gly-Phe-Pro-Gly-Ala-Hyp-Gly-Pro-Lys
肽3:
Gly-Asp-Asp-Gly-Ala-Thr-Gly-Ala-Ala-Gly-Pro-Hyp-Gly-Pro-Thr-Gly-Pro-Ala-Gly-Pro-Hyp-Gly-Phe-Pro-Gly-Ala-Val-Gly-Ala-Lys。
2.一种可区分鹿角胶和鹿皮胶的特征肽段的检测方法,其特征在于,包括以下步骤:
(1)将权利要求1所述的3个鹿源特征肽配成混合对照品溶液;
(2)将待检测鹿皮胶与鹿角胶样品,用胰蛋白酶进行酶切后,将酶解液和步骤(1)鹿源特征肽混合对照品溶液注入液质联用仪,以鹿源特征肽对照,采用ESI正离子模式,多反应监测模式,选择的离子对包括:肽1:m/z 864.0(三电荷)→535.4、肽2:m/z 858.7(三电荷)→527.4进行检测、肽3:m/z 845.4(三电荷)→507.4进行检测;以肽1峰面积A肽1与肽3峰面积A肽3的比值或肽2峰面积A肽2与肽3峰面积A肽3的比值确定样品为鹿皮胶或是鹿角胶。
3.根据权利要求2所述的可区分鹿角胶和鹿皮胶的特征肽段的检测方法,其特征在于,所述的酶切方法为:取待检测胶类药材样品10 mg,加入5 ml磷酸盐缓冲液,超声使样品完全溶解,12000 rpm离心20 min,取上清液150 μl,置于2 ml离心管中,以1 ml 50 mM PBS稀释,加入适量胰蛋白酶,摇匀,充分酶解,加入10% 三氟乙酸溶液60 μl终止反应,12000 rpm离心20 min,即得胶类药材酶解液,置于-20℃保存,备用。
4.根据权利要求3所述的可区分鹿角胶和鹿皮胶的特征肽段的检测方法,其特征在于,加入胰蛋白酶的质量浓度为0.1%~10%。
5.根据权利要求3所述的可区分鹿角胶和鹿皮胶的特征肽段的检测方法,其特征在于,酶解方式包括:37℃恒温酶解、微波辅助酶解、超声辅助酶解、酶固定化酶解。
6.根据权利要求3所述的可区分鹿角胶和鹿皮胶的特征肽段的检测方法,其特征在于,液质联用仪检测的液相条件为:色谱柱为1.7μm Waters C18柱,规格为2.1μm × 100 mm,上样量为2μl,流速0.3ml/min,0~3.5 min,10~30%A线性梯度洗脱,3.5~4 min,30~10%A线性梯度洗脱,4~6 min,10%A洗脱;采用三重四极杆质谱,质谱条件为:m/z 864.0(三电荷)→535.4、m/z 858.7(三电荷)→527.4、m/z 845.4(三电荷)→507.4。
7. 根据权利要求2所述的可区分鹿角胶和鹿皮胶的特征肽段的检测方法,其特征在于,鹿角胶的 A肽1/A肽3不得低于1.0,A肽2/A肽3不得低于0.5,鹿皮胶的A肽1/A肽3不得高于0.2,A肽2/A肽3不得高于0.5。
8.根据权利要求2所述的可区分鹿角胶和鹿皮胶的特征肽段的检测方法,其特征在于,鹿皮胶与鹿角胶所含比例检测的标准曲线方程的建立:
将鹿角胶与鹿皮胶按0%,10%,20%,30%,40%,50%,60%,70%,80%,90%,100%的比例混合,将每批次混胶样品各取10 mg,加入5 ml磷酸盐缓冲液,超声使样品完全溶解,12000 rpm离心20 min,取上清液150 μl,置于2 ml离心管中,以1 ml 50 mM PBS稀释,加入质量浓度为1%胰蛋白酶,摇匀,微波酶解30 min,酶解后加入10% 三氟乙酸溶液60 μl终止反应,12000rpm离心20 min,即得不同比例混胶样品酶解液,置于-20℃保存,备用;
将不同比例混胶样品酶解液注入液质联用仪,进样量为1 μg,液质联用仪检测的液相条件为:色谱柱为1.7μm C18反相色谱柱,规格2.1 μm × 100 mm,流速0.3ml/min,流动相A为乙腈,流动相B为0.1%甲酸,0~3.5 min,10~30%A线性梯度洗脱,3.5~4 min,30~10%A线性梯度洗脱,4~6 min,10%A洗脱;
液质联用仪检测的质谱条件为:电喷雾正离子模式ESI+,质谱参数为:离子源温度500℃;电离电压5500V;脱溶剂温度500℃;离子源气体1,60psi;离子源气体2,60psi;
设置特征肽对应的离子对条件如下:
肽1:m/z 864.0(三电荷)→535.4,DP=166.57, CE=33.95;
肽2:m/z 858.7(三电荷)→527.4,DP=160.35, CE=35.65;
肽3:m/z 845.4(三电荷)→507.4,DP=143.27, CE=31.50;
以鹿角胶在混合胶中占比为横坐标,以A肽1/A肽3、A肽2/A肽3数值为纵坐标作图,鹿角胶占比与A肽1/A肽3呈线性,建立标准曲线方程为y = 1.034x + 0.0157,R² = 0.9908;鹿角胶占比与A肽2/A肽3也呈线性,建立标准曲线方程为y = 0.7883x + 0.0949,R² = 0.9905;鹿角胶掺入比例与A肽1/A肽3、A肽2/A肽3数值相关,可根据A肽1/A肽3、A肽2/A肽3的比值确定鹿角胶与鹿皮胶混合比例。
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Cited By (5)

* Cited by examiner, † Cited by third party
Publication number Priority date Publication date Assignee Title
CN112898400A (zh) * 2021-01-23 2021-06-04 南京中医药大学 一种可区分鹿角胶和鹿皮胶的特征肽段及其检测方法
CN112898384A (zh) * 2021-01-23 2021-06-04 南京中医药大学 一种鹿角特征肽段及其检测方法
CN113173972A (zh) * 2021-04-20 2021-07-27 江阴天江药业有限公司 用于鉴别鹿角或鹿皮配方颗粒的特征肽段及其检测方法
CN113173971A (zh) * 2021-04-20 2021-07-27 江阴天江药业有限公司 用于鉴别含有鹿角或鹿皮的配方颗粒的特征肽段及其检测方法
CN115792243A (zh) * 2022-11-25 2023-03-14 北京同仁堂(辽宁)科技药业有限公司 一种利用专属离子对检测鹿胶的方法及应用

Families Citing this family (5)

* Cited by examiner, † Cited by third party
Publication number Priority date Publication date Assignee Title
CN115248277B (zh) * 2022-06-27 2024-01-09 山东省食品药品检验研究院 刁海龙特征多肽及其应用和鉴别刁海龙的方法
CN116008409B (zh) * 2022-09-30 2023-08-11 山东省食品药品检验研究院 一种鹿角胶特征图谱的构建方法及其应用
CN116675761B (zh) * 2023-04-10 2024-02-27 山东省食品药品检验研究院 绒促性素特征多肽组及其应用
CN117106031B (zh) * 2023-10-20 2024-01-02 山东省食品药品检验研究院 一种驯鹿角、驼鹿角和狍鹿角共有特征肽段及其应用
CN117147881B (zh) * 2023-10-30 2024-01-02 山东省食品药品检验研究院 一种狍鹿角特征肽段及检测狍鹿角的方法和应用

Citations (6)

* Cited by examiner, † Cited by third party
Publication number Priority date Publication date Assignee Title
US20030049715A1 (en) * 2001-08-31 2003-03-13 Welsch Dean J. Peptide biomarker and method of identification
CN109187835A (zh) * 2018-09-17 2019-01-11 南京中医药大学 一种含蛋白质类中药的专属性肽段的鉴别方法
JP2019088213A (ja) * 2017-11-13 2019-06-13 一般財団法人日本皮革研究所 コラーゲン由来材料の動物種を判定する方法
CN110353182A (zh) * 2019-05-07 2019-10-22 金晟中科(吉林)生物科技有限公司 一种鹿胶糕及其制备方法
CN110824083A (zh) * 2019-11-06 2020-02-21 东阿阿胶股份有限公司 一种驴骨胶特征性多肽及其在检测动物皮胶及其制品中驴骨胶成分中的应用
CN111443134A (zh) * 2019-12-26 2020-07-24 北京化工大学 一种羊源性成分的标记肽及在明胶和明胶制品检测中的应用

Family Cites Families (2)

* Cited by examiner, † Cited by third party
Publication number Priority date Publication date Assignee Title
CN107532196B (zh) * 2015-03-30 2021-07-27 国立大学法人神户大学 动物物种的鉴定方法
CN105273061B (zh) * 2015-10-09 2019-01-04 东阿阿胶股份有限公司 一种动物胶中的共有多肽及其在检测中的应用

Patent Citations (6)

* Cited by examiner, † Cited by third party
Publication number Priority date Publication date Assignee Title
US20030049715A1 (en) * 2001-08-31 2003-03-13 Welsch Dean J. Peptide biomarker and method of identification
JP2019088213A (ja) * 2017-11-13 2019-06-13 一般財団法人日本皮革研究所 コラーゲン由来材料の動物種を判定する方法
CN109187835A (zh) * 2018-09-17 2019-01-11 南京中医药大学 一种含蛋白质类中药的专属性肽段的鉴别方法
CN110353182A (zh) * 2019-05-07 2019-10-22 金晟中科(吉林)生物科技有限公司 一种鹿胶糕及其制备方法
CN110824083A (zh) * 2019-11-06 2020-02-21 东阿阿胶股份有限公司 一种驴骨胶特征性多肽及其在检测动物皮胶及其制品中驴骨胶成分中的应用
CN111443134A (zh) * 2019-12-26 2020-07-24 北京化工大学 一种羊源性成分的标记肽及在明胶和明胶制品检测中的应用

Non-Patent Citations (4)

* Cited by examiner, † Cited by third party
Title
GUIFENG ZHANG ET AL.: "Mass spectrometric detection of marker peptides in tryptic digests of gelatin:A new method to differentiate between bovine and porcine gelatin", 《FOOD HYDROCOLLOIDS》 *
RUI LIU ET AL.: "A strategy for identifying species-specific peptide biomarkers in deer-hide gelatin using untargeted and targeted mass spectrometry approaches", 《ANALYTICA CHIMICA ACTA》 *
刘睿 等: "基于"多肽组-修饰组"比较分析鹿皮与鹿皮胶物质基础", 《药学学报》 *
张涛 等: "基于nanoLC-MS/MS法的黄明胶胶原蛋白鉴定研究", 《南京中医药大学学报》 *

Cited By (9)

* Cited by examiner, † Cited by third party
Publication number Priority date Publication date Assignee Title
CN112898400A (zh) * 2021-01-23 2021-06-04 南京中医药大学 一种可区分鹿角胶和鹿皮胶的特征肽段及其检测方法
CN112898384A (zh) * 2021-01-23 2021-06-04 南京中医药大学 一种鹿角特征肽段及其检测方法
CN112898400B (zh) * 2021-01-23 2022-08-23 南京中医药大学 一种可区分鹿角胶和鹿皮胶的特征肽段及其检测方法
CN112898384B (zh) * 2021-01-23 2022-08-26 南京中医药大学 一种鹿角特征肽段及其检测方法
CN113173972A (zh) * 2021-04-20 2021-07-27 江阴天江药业有限公司 用于鉴别鹿角或鹿皮配方颗粒的特征肽段及其检测方法
CN113173971A (zh) * 2021-04-20 2021-07-27 江阴天江药业有限公司 用于鉴别含有鹿角或鹿皮的配方颗粒的特征肽段及其检测方法
CN113173971B (zh) * 2021-04-20 2022-08-23 江阴天江药业有限公司 用于鉴别含有鹿角或鹿皮的配方颗粒的特征肽段及其检测方法
CN113173972B (zh) * 2021-04-20 2022-08-26 江阴天江药业有限公司 用于鉴别鹿角或鹿皮配方颗粒的特征肽段及其检测方法
CN115792243A (zh) * 2022-11-25 2023-03-14 北京同仁堂(辽宁)科技药业有限公司 一种利用专属离子对检测鹿胶的方法及应用

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