CN112898384A - 一种鹿角特征肽段及其检测方法 - Google Patents
一种鹿角特征肽段及其检测方法 Download PDFInfo
- Publication number
- CN112898384A CN112898384A CN202110094227.7A CN202110094227A CN112898384A CN 112898384 A CN112898384 A CN 112898384A CN 202110094227 A CN202110094227 A CN 202110094227A CN 112898384 A CN112898384 A CN 112898384A
- Authority
- CN
- China
- Prior art keywords
- glue
- deer
- pep
- gly
- characteristic peptide
- Prior art date
- Legal status (The legal status is an assumption and is not a legal conclusion. Google has not performed a legal analysis and makes no representation as to the accuracy of the status listed.)
- Granted
Links
Images
Classifications
-
- C—CHEMISTRY; METALLURGY
- C07—ORGANIC CHEMISTRY
- C07K—PEPTIDES
- C07K7/00—Peptides having 5 to 20 amino acids in a fully defined sequence; Derivatives thereof
- C07K7/04—Linear peptides containing only normal peptide links
- C07K7/08—Linear peptides containing only normal peptide links having 12 to 20 amino acids
-
- G—PHYSICS
- G01—MEASURING; TESTING
- G01N—INVESTIGATING OR ANALYSING MATERIALS BY DETERMINING THEIR CHEMICAL OR PHYSICAL PROPERTIES
- G01N30/00—Investigating or analysing materials by separation into components using adsorption, absorption or similar phenomena or using ion-exchange, e.g. chromatography or field flow fractionation
- G01N30/02—Column chromatography
-
- G—PHYSICS
- G01—MEASURING; TESTING
- G01N—INVESTIGATING OR ANALYSING MATERIALS BY DETERMINING THEIR CHEMICAL OR PHYSICAL PROPERTIES
- G01N30/00—Investigating or analysing materials by separation into components using adsorption, absorption or similar phenomena or using ion-exchange, e.g. chromatography or field flow fractionation
- G01N30/02—Column chromatography
- G01N30/04—Preparation or injection of sample to be analysed
- G01N30/06—Preparation
-
- G—PHYSICS
- G01—MEASURING; TESTING
- G01N—INVESTIGATING OR ANALYSING MATERIALS BY DETERMINING THEIR CHEMICAL OR PHYSICAL PROPERTIES
- G01N30/00—Investigating or analysing materials by separation into components using adsorption, absorption or similar phenomena or using ion-exchange, e.g. chromatography or field flow fractionation
- G01N30/02—Column chromatography
- G01N30/62—Detectors specially adapted therefor
- G01N30/72—Mass spectrometers
Landscapes
- Chemical & Material Sciences (AREA)
- Biochemistry (AREA)
- Health & Medical Sciences (AREA)
- Life Sciences & Earth Sciences (AREA)
- General Health & Medical Sciences (AREA)
- Immunology (AREA)
- Analytical Chemistry (AREA)
- General Physics & Mathematics (AREA)
- Physics & Mathematics (AREA)
- Pathology (AREA)
- Organic Chemistry (AREA)
- Biophysics (AREA)
- Genetics & Genomics (AREA)
- Medicinal Chemistry (AREA)
- Molecular Biology (AREA)
- Proteomics, Peptides & Aminoacids (AREA)
- Other Investigation Or Analysis Of Materials By Electrical Means (AREA)
Abstract
本发明公开了一种鹿角特征肽段及其检测方法,本发明通过大量实验筛选,以非标记多肽定量方法、主成分分析及含量比较法,筛选确定一个鹿角特征肽段Pep‑G,其氨基酸序列为:Gly‑Phe‑Hyp‑Gly‑Thr‑Hyp‑Gly‑Leu‑Hyp‑Gly‑Phe‑Lys,可用于区分鹿皮与鹿角。该方法专属性强、灵敏度高、操作简单,可用于鹿皮胶与鹿角胶的区分及质量控制。
Description
技术领域
本发明涉及一种鹿角特征肽段,具体涉及可区分鹿皮胶与鹿角胶的特征肽段及其检测方法。
技术背景
胶类药材包括阿胶、鹿皮胶、鹿角胶、黄明胶等,80%以上的成分为不同类别的胶原蛋白,包括I型胶原α1链(COL1A1)、I型胶原α2链(COL1A2)、II型胶原α1链(COL2A1)、III型胶原α1链(COL3A1)等,其中以COL1A2来源的肽段为主。COL1A2作为高保守蛋白质,广泛存在于不同动物种体内,是构成胶类药材的重要蛋白类成分之一。
鹿角胶与鹿皮胶均来源于梅花鹿或马鹿,两者为名贵胶类中药材,鹿角胶为梅花鹿或马鹿角经水煎煮、浓缩制成的固体胶,鹿皮胶为梅花鹿或马鹿的干燥皮或鲜皮经煎煮、浓缩制成的固体胶。鹿角为马鹿或梅花鹿已骨化的角,价格远高于鹿皮,市场上存在以鹿皮胶掺入鹿角胶以次充好的现象。鹿角胶与鹿皮胶从外观上难以区分,且两者均来源于梅花鹿或马鹿,其蛋白质组成相同,因此,通过寻找专属性肽段来区分两者基本不可能。
本发明筛选寻找特征肽段,在鹿皮胶与鹿角胶中的含量差异显著,可用于区分鹿皮胶与鹿角胶。
发明内容:
发明目的:本发明通过大量是实验筛选,研究确定1条鹿源肽段相对含量的比值,从而用来区分鹿皮胶与鹿角胶。该方法专属性强、灵敏度高、操作简单,可用于鹿皮胶与鹿角胶的区分及质量控制。
为实现上述目的,本发明采用如下技术方案:
一种鹿角特征肽段,该鹿角特征肽段可区分鹿角胶和鹿皮胶,所述的特征肽段为:
Pep-G:
Gly-Phe-Hyp-Gly-Thr-Hyp-Gly-Leu-Hyp-Gly-Phe-Lys
参比肽Pep-R:
Gly-Glu-Hyp-Gly-Glu-Hyp-Gly-Gln-Thr-Gly-Pro-Ala-Gly-Ala-Arg。
一种可区分鹿角胶和鹿皮胶的特征肽段的检测方法,其包括以下步骤:
(1)将Pep-G特征肽及参比肽Pep-R配成混合对照品溶液;
(2)将待检测鹿皮胶与鹿角胶样品,用胰蛋白酶进行酶切后,将酶解液和步骤(1)混合对照品溶液注入液质联用仪,以Pep-G特征肽对照,采用ESI正离子模式,多反应监测模式,选择的离子对包括:Pep-G:m/z 612.2(双电荷)→747.4、m/z 612.2(双电荷)→464.2;Pep-R:m/z 706.8(双电荷)→927.5、706.8(双电荷)→613.8;以Pep-G峰面积AG与Pep-R峰面积AR比值范围确定样品为鹿皮胶或鹿角胶。
作为优选方法,以上所述的可区分鹿角胶和鹿皮胶的特征肽段的检测方法,其特征在于,所述的酶切方法为:取待检测胶类药材样品,加入磷酸盐缓冲液,超声使样品完全溶解,离心,取上清液,置于离心管中,以 PBS稀释,加入适量胰蛋白酶,摇匀,充分酶解,加入三氟乙酸溶液终止反应,离心,即得胶类药材酶解液,冷藏,备用。
作为更加优选方法,以上所述的可区分鹿角胶和鹿皮胶的特征肽段的检测方法,所述的酶切方法为:取待检测胶类药材样品10 mg,加入5 ml磷酸盐缓冲液,超声使样品完全溶解,12000 rpm离心20 min,取上清液150 μl,置于2 ml离心管中,以1 ml 50 mM PBS稀释,加入适量胰蛋白酶,摇匀,充分酶解,加入10% 三氟乙酸溶液60 μl终止反应,12000 rpm离心20 min,即得胶类药材酶解液,置于-20℃保存,备用。
作为优选方法,以上所述的可区分鹿角胶和鹿皮胶的特征肽段的检测方法,加入胰蛋白酶的质量浓度为0.1%~10%。
作为优选方法,以上述的可区分鹿角胶和鹿皮胶的特征肽段的检测方法,酶解方式包括:37℃恒温酶解、微波辅助酶解、超声辅助酶解、酶固定化酶解。
作为优选方法,以上所述的可区分鹿角胶和鹿皮胶的特征肽段的检测方法,液质联用仪检测的液相条件为:色谱柱为1.7μm Waters C18柱,规格为2.1μm × 100 mm,上样量为2μl,流动相A为乙腈,流动相B为0.1%甲酸,流速0.3ml/min,0~3.5 min,10~30%A线性梯度洗脱,3.5~4 min,30~10%A线性梯度洗脱,4~6 min,10%A洗脱;采用三重四极杆质谱,质谱条件为:Pep-G:m/z 612.2(双电荷)→747.4、m/z 612.2(双电荷)→464.2;Pep-R:m/z 706.8(双电荷)→927.5、m/z 706.8(双电荷)→613.8
液质联用仪检测的质谱条件为:电喷雾正离子模式ESI+,质谱参数为:离子源温度500℃;电离电压5500V;脱溶剂温度500℃;离子源气体1,60psi;离子源气体2,60psi。
作为优选方法,以上所述的可区分鹿角胶和鹿皮胶的特征肽段的检测方法,鹿角胶的 AG/AR比值不得低于10.0,鹿皮胶的AG/AR比值不得高于1.0
有益效果:本发明相比现有技术具有以下优点:
本发明通过大量是实验筛选,研究确定1条鹿源肽段Pep-G与参比肽Pep-R相对含量的比值,并规定限度,来区分鹿皮胶与鹿角胶。该方法专属性强、灵敏度高、操作简单,可用于鹿皮胶与鹿角胶的区分及质量控制。从而可以克服现有技术中,鹿角胶与鹿皮胶从外观上难以区分,专属性肽段也难以区分的不足,取得了非常好的技术进步。
附图说明
图1为LFQ肽段的散点图。
图2为Pep-G的质谱图。
图3为Pep-R的质谱图。
图4为Pep-G在鹿皮胶(DCG)与鹿角胶(DHG)中中含量。
具体实施例
下面结合具体实施例对本发明作进一步阐述,但这些实施例不应解释为限制本发明。
实施例1
一种鹿源特征肽,所述的特征肽序列有2个,如序列表1:
Pep-G:
Gly-Phe-Hyp-Gly-Thr-Hyp-Gly-Leu-Hyp-Gly-Phe-Lys
参比肽(Pep-R):
Gly-Glu-Hyp-Gly-Glu-Hyp-Gly-Gln-Thr-Gly-Pro-Ala-Gly-Ala-Arg。
实施例2 Pep-G、Pep-R的确定
取5批次鹿皮胶样品、5批次鹿角胶样品,每批次各取10 mg,加入5 ml磷酸盐缓冲液,超声使样品完全溶解,12000 rpm离心20 min,取上清液150 μl,置于2 ml离心管中,以1ml 50 mM PBS稀释,加入1%胰蛋白酶(w/v),摇匀,37℃恒温酶解12 h,酶解后加入10% TFA溶液60 μl终止反应,Seppak C18脱盐处理,离心浓缩干燥,以纯水复溶,测定多肽浓度,再次离心浓缩干燥,置于-20℃保存,备用。
戴安U3000 NanoRSLC纳升液相系统,色谱柱为5 μm Reprosil C18AQ(75μm ×150 mm),LC-MS/MS质谱系统分析样品。用初始流动相复溶鹿皮胶与鹿角胶酶解样品,调整多肽浓度为1 μg/μl,上样2 μl,流速400 nL/min,流动相A(乙腈/甲酸/水=2/0.2/98,v/v/v),流动相B(乙腈/甲酸/水=80/0.2/20,v/v/v),2~30%B线性梯度洗脱120 min。Thermo Q-Exactive Orbitrap质谱仪用于进行肽段分析,喷雾电压为2.5 kV,离子传输毛细管温度为200℃;质谱一级全扫描范围为m/z 300~2000,分离宽度为3;串联质谱分析采用一级质谱数据依赖的二级质谱扫描模式,依次选取一级质谱中离子强度最高的5个离子进行碰撞诱导解离(CID)二级串联质谱,每个样品重复进样1次。采用Xcalibur(3.0.63)软件进行数据采集。
串联质谱数据用PEAKS 8.5软件进行搜库分析,选择鹿胶原蛋白数据库搜索,检索参数设置为:前体离子误差10;子离子误差1;翻译后修饰(PTM)的设置参数为:脯氨酸的羟基化(+15.99);天门冬酰胺与谷氨酰胺的脱酰胺(+0.98);允许2个位点误切,假阳性率(FDR)≤1%;选择胰蛋白酶酶切(Trypsin),在上述检索条件下所得分值有显著性意义(P <0.05)被认定为有效的鉴定结果。
Label free定量(LFQ)通过比较提取离子色谱(XIC)和PEAK Studio 8.5计算峰面积,计算相对表达水平的变化。采集的LC-MS/MS数据首先通过软件进行校准。以其中一个样品为参照,以总离子流(TIC)对每一个鉴定肽的峰面积进行归一化,对鉴定肽的相对含量进行定量分析。
将肽段的LFQ结果以Fold change(FC)取log2为横坐标,显著性差异P值取−log10为纵坐标,作散点图,取FC > 3,P < 0.01的肽段为鹿皮胶与鹿角胶中显著变化的肽段。如图1所示,Pep-G为离散点,即在鹿皮胶与鹿角胶中含量差异大,且可用来区分鹿皮胶与鹿角胶。Pep-R的相对含量在鹿皮胶与鹿角胶中差异不明显。Pep-1、Pep-R的MS/MS图见图2、图3、。
实施例3 鹿皮胶与鹿角胶AG/AR的测定
取10批次鹿皮胶样品和10批次鹿角胶样品,每批次各取10 mg,加入5 ml磷酸盐缓冲液,超声使样品完全溶解,12000 rpm离心20 min,取上清液150 μl,置于2 ml离心管中,以1 ml 50 mM PBS稀释,加入1%胰蛋白酶(w/v),摇匀,37℃恒温酶解12 h,酶解后加入10%TFA溶液60 μl终止反应,12000 rpm离心20 min,即得鹿皮胶和鹿角胶酶解液,置于-20℃保存,备用。
将上述10批次的鹿皮胶和鹿角胶酶解液注入液质联用仪,进样量为1 μg,液质联用仪检测的液相条件为:色谱柱为1.7μm C18反相色谱柱(2.1 μm × 100 mm),流速0.3ml/min,流动相A(乙腈),流动相B(0.1%甲酸),0~3.5 min,10~30%A线性梯度洗脱,3.5~4 min,30~10%A线性梯度洗脱,4~6 min,10%A洗脱。液质联用仪检测的质谱条件为:电喷雾正离子模式(ESI+),质谱参数为:离子源温度500℃;电离电压5500V;脱溶剂温度500℃;离子源气体1,60psi;离子源气体2,60psi。设置特征肽对应的离子对条件如下:
Pep-1:m/z 612.2(双电荷)→747.4,DP=104.98, CE=33.12;
Pep-R:m/z 706.8(双电荷)→927.5,DP=68.04, CE=40.07。
10个批次鹿角胶和鹿皮胶AG/AR数值见表1和图4,鹿角胶的AG/AR平均值为13.09± 2.93,鹿皮胶的AG/AR平均值为0.46 ± 0.08。
根据结果规定:鹿角胶的 AG/AR不得低于10.0,鹿皮胶的AG/AR不得高于1.0。
表1 鹿皮胶、鹿角胶的A1/AR、A 2/AR结果
序列表
<110> 南京中医药大学
<120> 一种鹿角特征肽段及其检测方法
<160> 2
<170> SIPOSequenceListing 1.0
<210> 1
<211> 12
<212> PRT
<213> 2 Ambystoma laterale x Ambystoma jeffersonianum
<400> 1
Gly Phe Pro Gly Thr Pro Gly Leu Pro Gly Phe Lys
1 5 10
<210> 2
<211> 15
<212> PRT
<213> 2 Ambystoma laterale x Ambystoma jeffersonianum
<400> 2
Gly Glu Pro Gly Glu Pro Gly Gln Thr Gly Pro Ala Gly Ala Arg
1 5 10 15
Claims (9)
1.一种鹿角特征肽段,其特征在于,该鹿角特征肽段可区分鹿角胶和鹿皮胶,所述的特征肽段为:
Pep-G:
Gly-Phe-Hyp-Gly-Thr-Hyp-Gly-Leu-Hyp-Gly-Phe-Lys
参比肽Pep-R:
Gly-Glu-Hyp-Gly-Glu-Hyp-Gly-Gln-Thr-Gly-Pro-Ala-Gly-Ala-Arg。
2.一种可区分鹿角胶和鹿皮胶的特征肽段的检测方法,其特征在于,包括以下步骤:
(1)将权利要求1所述的Pep-G特征肽及参比肽Pep-R配成混合对照品溶液;
将待检测鹿皮胶与鹿角胶样品,用胰蛋白酶进行酶切后,将酶解液和步骤(1)混合对照品溶液注入液质联用仪,以Pep-G特征肽对照,采用ESI正离子模式,多反应监测模式,选择的离子对包括:Pep-G:m/z 612.2(双电荷)→747.4、m/z 612.2(双电荷)→464.2;Pep-R:m/z 706.8(双电荷)→927.5、706.8(双电荷)→613.8;以Pep-G峰面积AG与Pep-R峰面积AR比值范围确定样品为鹿皮胶或鹿角胶。
3.根据权利要求2所述的可区分鹿角胶和鹿皮胶的特征肽段的检测方法,其特征在于,所述的酶切方法为:取待检测胶类药材样品,加入磷酸盐缓冲液,超声使样品完全溶解,离心,取上清液,置于离心管中,以 PBS稀释,加入适量胰蛋白酶,摇匀,充分酶解,加入三氟乙酸溶液终止反应,离心,即得胶类药材酶解液,冷藏,备用。
4.根据权利要求2所述的可区分鹿角胶和鹿皮胶的特征肽段的检测方法,其特征在于,所述的酶切方法为:取待检测胶类药材样品10 mg,加入5 ml磷酸盐缓冲液,超声使样品完全溶解,12000 rpm离心20 min,取上清液150 μl,置于2 ml离心管中,以1 ml 50 mM PBS稀释,加入适量胰蛋白酶,摇匀,充分酶解,加入10% 三氟乙酸溶液60 μl终止反应,12000 rpm离心20 min,即得胶类药材酶解液,置于-20℃保存,备用。
5.根据权利要求4所述的可区分鹿角胶和鹿皮胶的特征肽段的检测方法,其特征在于,加入胰蛋白酶的质量浓度为0.1%~10%。
6.根据权利要求4所述的可区分鹿角胶和鹿皮胶的特征肽段的检测方法,其特征在于,酶解方式包括:37℃恒温酶解、微波辅助酶解、超声辅助酶解、酶固定化酶解。
7.根据权利要求4所述的可区分鹿角胶和鹿皮胶的特征肽段的检测方法,其特征在于,液质联用仪检测的液相条件为:色谱柱为1.7μm Waters C18柱,规格为2.1μm × 100 mm,上样量为2μl,流动相A为乙腈,流动相B为0.1%甲酸,流速0.3ml/min,0~3.5 min,10~30%A线性梯度洗脱,3.5~4 min,30~10%A线性梯度洗脱,4~6 min,10%A洗脱;采用三重四极杆质谱,质谱条件为:Pep-1:m/z 612.2(双电荷)→747.4或612.2(双电荷)→464.2;Pep-R:m/z 706.8(双电荷)→927.5或706.8(双电荷)→613.8。
8.根据权利要求7所述的可区分鹿角胶和鹿皮胶的特征肽段的检测方法,其特征在于,液质联用仪检测的质谱条件为:电喷雾正离子模式ESI+,质谱参数为:离子源温度500℃;电离电压5500V;脱溶剂温度500℃;离子源气体1,60psi;离子源气体2,60psi。
9.根据权利要求2所述的可区分鹿角胶和鹿皮胶的特征肽段的检测方法,其特征在于,鹿角胶的 AG/AR比值不得低于10.0,鹿皮胶的AG/AR比值不得高于1.0。
Priority Applications (1)
Application Number | Priority Date | Filing Date | Title |
---|---|---|---|
CN202110094227.7A CN112898384B (zh) | 2021-01-23 | 2021-01-23 | 一种鹿角特征肽段及其检测方法 |
Applications Claiming Priority (1)
Application Number | Priority Date | Filing Date | Title |
---|---|---|---|
CN202110094227.7A CN112898384B (zh) | 2021-01-23 | 2021-01-23 | 一种鹿角特征肽段及其检测方法 |
Publications (2)
Publication Number | Publication Date |
---|---|
CN112898384A true CN112898384A (zh) | 2021-06-04 |
CN112898384B CN112898384B (zh) | 2022-08-26 |
Family
ID=76117356
Family Applications (1)
Application Number | Title | Priority Date | Filing Date |
---|---|---|---|
CN202110094227.7A Active CN112898384B (zh) | 2021-01-23 | 2021-01-23 | 一种鹿角特征肽段及其检测方法 |
Country Status (1)
Country | Link |
---|---|
CN (1) | CN112898384B (zh) |
Cited By (5)
Publication number | Priority date | Publication date | Assignee | Title |
---|---|---|---|---|
CN114539360A (zh) * | 2022-03-24 | 2022-05-27 | 山东省食品药品检验研究院 | 一种驼鹿源特征多肽及其应用 |
CN114778736A (zh) * | 2022-04-24 | 2022-07-22 | 山东省食品药品检验研究院 | 一种脑灵素制剂中微量鹿茸多肽的鉴别方法及其应用 |
CN115792243A (zh) * | 2022-11-25 | 2023-03-14 | 北京同仁堂(辽宁)科技药业有限公司 | 一种利用专属离子对检测鹿胶的方法及应用 |
CN116143874A (zh) * | 2022-06-01 | 2023-05-23 | 山东省食品药品检验研究院 | 一种鉴别梅花鹿或马鹿源特征多肽及其应用 |
CN117147881A (zh) * | 2023-10-30 | 2023-12-01 | 山东省食品药品检验研究院 | 一种狍鹿角特征肽段及检测狍鹿角的方法和应用 |
Citations (4)
Publication number | Priority date | Publication date | Assignee | Title |
---|---|---|---|---|
CN109187835A (zh) * | 2018-09-17 | 2019-01-11 | 南京中医药大学 | 一种含蛋白质类中药的专属性肽段的鉴别方法 |
CN112098579A (zh) * | 2020-09-01 | 2020-12-18 | 南京中医药大学 | 一种鹿源特征肽段及其检测方法 |
CN112098578A (zh) * | 2020-09-01 | 2020-12-18 | 南京中医药大学 | 一种可区分鹿角胶和鹿皮胶的特征肽段及其检测方法 |
CN112098577A (zh) * | 2020-09-01 | 2020-12-18 | 南京中医药大学 | 一种胶类药材的检测方法 |
-
2021
- 2021-01-23 CN CN202110094227.7A patent/CN112898384B/zh active Active
Patent Citations (4)
Publication number | Priority date | Publication date | Assignee | Title |
---|---|---|---|---|
CN109187835A (zh) * | 2018-09-17 | 2019-01-11 | 南京中医药大学 | 一种含蛋白质类中药的专属性肽段的鉴别方法 |
CN112098579A (zh) * | 2020-09-01 | 2020-12-18 | 南京中医药大学 | 一种鹿源特征肽段及其检测方法 |
CN112098578A (zh) * | 2020-09-01 | 2020-12-18 | 南京中医药大学 | 一种可区分鹿角胶和鹿皮胶的特征肽段及其检测方法 |
CN112098577A (zh) * | 2020-09-01 | 2020-12-18 | 南京中医药大学 | 一种胶类药材的检测方法 |
Non-Patent Citations (2)
Title |
---|
刘睿等: "基于"多肽组-修饰组"比较分析鹿皮与鹿皮胶物质基础", 《药学学报》 * |
刘睿等: "基于"蛋白质/肽组学-修饰组学"研究动物药功效物质基础的思路与方法", 《药学学报》 * |
Cited By (8)
Publication number | Priority date | Publication date | Assignee | Title |
---|---|---|---|---|
CN114539360A (zh) * | 2022-03-24 | 2022-05-27 | 山东省食品药品检验研究院 | 一种驼鹿源特征多肽及其应用 |
CN114778736A (zh) * | 2022-04-24 | 2022-07-22 | 山东省食品药品检验研究院 | 一种脑灵素制剂中微量鹿茸多肽的鉴别方法及其应用 |
CN114778736B (zh) * | 2022-04-24 | 2024-05-14 | 山东省食品药品检验研究院 | 一种脑灵素制剂中微量鹿茸多肽的鉴别方法及其应用 |
CN116143874A (zh) * | 2022-06-01 | 2023-05-23 | 山东省食品药品检验研究院 | 一种鉴别梅花鹿或马鹿源特征多肽及其应用 |
CN116143874B (zh) * | 2022-06-01 | 2023-09-26 | 山东省食品药品检验研究院 | 一种鉴别梅花鹿或马鹿源特征多肽及其应用 |
CN115792243A (zh) * | 2022-11-25 | 2023-03-14 | 北京同仁堂(辽宁)科技药业有限公司 | 一种利用专属离子对检测鹿胶的方法及应用 |
CN117147881A (zh) * | 2023-10-30 | 2023-12-01 | 山东省食品药品检验研究院 | 一种狍鹿角特征肽段及检测狍鹿角的方法和应用 |
CN117147881B (zh) * | 2023-10-30 | 2024-01-02 | 山东省食品药品检验研究院 | 一种狍鹿角特征肽段及检测狍鹿角的方法和应用 |
Also Published As
Publication number | Publication date |
---|---|
CN112898384B (zh) | 2022-08-26 |
Similar Documents
Publication | Publication Date | Title |
---|---|---|
CN112898384B (zh) | 一种鹿角特征肽段及其检测方法 | |
CN112098579B (zh) | 一种区分鹿皮胶或鹿角胶的特征肽段及其检测方法 | |
Waanders et al. | Top-down quantitation and characterization of SILAC-labeled proteins | |
CN112098578B (zh) | 一种可区分鹿角胶和鹿皮胶的特征肽段及其检测方法 | |
US7498568B2 (en) | Real-time analysis of mass spectrometry data for identifying peptidic data of interest | |
Chaurand et al. | Profiling proteins from azoxymethane‐induced colon tumors at the molecular level by matrix‐assisted laser desorption/ionization mass spectrometry | |
Loo et al. | Tandem mass spectrometry of very large molecules. 2. Dissociation of multiply charged proline-containing proteins from electrospray ionization | |
CN112898400B (zh) | 一种可区分鹿角胶和鹿皮胶的特征肽段及其检测方法 | |
Van Pelt et al. | Characterization of a fully automated nanoelectrospray system with mass spectrometric detection for proteomic analyses | |
Lee et al. | Highly informative proteome analysis by combining improved N‐terminal sulfonation for de novo peptide sequencing and online capillary reverse‐phase liquid chromatography/tandem mass spectrometry | |
Arnott et al. | Rapid identification of comigrating gel‐isolated proteins by ion trap‐mass spectrometry | |
CN112285242B (zh) | 一种分离鉴定黄酒中苦味多肽的方法 | |
Yates | [15] Protein structure analysis by mass spectrometry | |
Lakshmanan et al. | Top‐down protein identification of proteasome proteins with nanoLC‐FT‐ICR‐MS employing data‐independent fragmentation methods | |
Reid et al. | Capillary column chromatography improves sample preparation for mass spectrometric analysis: Complete characterization of human α‐enolase from two‐dimensional gels following in situ proteolytic digestion | |
US6863790B1 (en) | Sheathless interface for capillary electrophoresis/electrospray ionization-mass spectrometry using an in-capillary electrode | |
CN111948315A (zh) | 胰岛素或其类似物的序列分析方法及鉴定方法 | |
Govaerts et al. | Hyphenation of liquid chromatography to ion trap mass spectrometry to identify minor components in polypeptide antibiotics | |
Shively et al. | Highlights of protein structural analysis | |
CN117069801A (zh) | 一种尖刺信使蝎和条斑钳蝎共有特征多肽及其筛选方法 | |
CN115572322A (zh) | 一种麋鹿角特征肽段及其检测方法 | |
Liu et al. | Analysis of recombinant and modified proteins by capillary zone electrophoresis coupled with electrospray ionization tandem mass spectrometry | |
WO1998035226A1 (en) | A novel sheathless interface for capillary electrophoresis/electrospray ionization-mass spectrometry using an in-capillary electrode | |
Yang et al. | Combination of continuous digestion by peptidase and spectral similarity comparisons for peptide sequencing | |
Sanz‐Nebot et al. | Separation and identification of peptide mixtures in a synthesis crude of carbetocin by liquid chromatography/electrospray ionization mass spectrometry |
Legal Events
Date | Code | Title | Description |
---|---|---|---|
PB01 | Publication | ||
PB01 | Publication | ||
SE01 | Entry into force of request for substantive examination | ||
SE01 | Entry into force of request for substantive examination | ||
CB03 | Change of inventor or designer information |
Inventor after: Han Shuying Inventor after: Zhao Kexuan Inventor after: Cai Shuo Inventor after: Jiang Mengtong Inventor before: Zhao Kexuan Inventor before: Han Shuying Inventor before: Cai Shuo Inventor before: Jiang Mengtong Inventor before: Liu Rui |
|
CB03 | Change of inventor or designer information | ||
GR01 | Patent grant | ||
GR01 | Patent grant |