CN112098577B - 一种胶类药材的检测方法 - Google Patents

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Abstract

本发明公开了一种胶类药材的检测方法,本发明采用胰蛋白酶酶切胶类药材,使专属性多肽从胶原蛋白中释放,而后采用液相色谱‑三重四极杆质谱仪检测,如果检测出与专属性多肽保留时间、母离子‑子离子一致,则判定所述胶类药材样品的物种来源与专属性多肽对应的物种一致;并根据专属性多肽的峰面积比值,可判断掺杂样品的掺伪比例。该方法具有专属性强、灵敏度高、操作简单等优点,可用于胶类药材的鉴别与质量控制。

Description

一种胶类药材的检测方法
技术领域
本发明涉及一种胶类药材的检测方法,具体涉及胶类药材的真伪、掺假样品检测及掺假比例。
背景技术
胶类药材包括阿胶、鹿皮胶、鹿角胶、黄明胶等,80%以上的成分为不同类别的胶原蛋白,包括I型胶原α1链(COL1A1)、I型胶原α2链(COL1A2)、II型胶原α1链(COL2A1)、III型胶原α1链(COL3A1)等,其中以COL1A2来源的肽段为主。COL1A2作为高保守蛋白质,广泛存在于不同动物种体内,是构成胶类药材的重要蛋白类成分之一。
在现有市场上存在假阿胶、假鹿皮胶等胶类药材伪品,并以次充好向市场销售,严重影响了广大人民群众的饮食和用药安全。目前不法企业常以马皮、牛皮、猪皮等掺杂制备阿胶、鹿皮胶、鹿角胶等来以次充好,导致名贵胶类药材的造假事件屡禁不止的原因之一,缺少简单、可行、准确的鉴定技术支持,动物皮经过熬制后,很难鉴别出动物皮的来源。因此,寻找专属性、准确高的方法来快速准确鉴定胶类药材及其制品真伪意义重大。
现代研究表明,通过对胶类药材中胶原蛋白酶切后获得专属性肽段,以专属性肽段来鉴别胶类药材的真伪,如以驴源专属肽段鉴定阿胶的真伪,以鹿源专属肽段鉴定鹿皮胶的真伪等。本发明通过串联质谱方法检测专属离子对,可准确区分鹿皮胶、阿胶、牛皮胶、马皮胶、猪皮胶。该方法为胶类药材质量研究提供了参考与依据,有利于胶类药材及其制品质量标准进一步完善。
发明内容
发明目的:本发明提供了一种检测胶类专属成分的方法,可快速准确判断鹿皮胶、阿胶、牛皮胶、马皮胶、猪皮胶的真伪及掺杂情况,所述方法专属性强、灵敏度高、操作简单,可用于胶类药材的鉴别与质量控制。
技术方案:为实现上述目的,本发明采用如下技术方案:
本发明提出一种检测胶类药材的方法,其特征在于:将待检测的胶类药材样品用胰蛋白酶进行酶切后,将酶解液注入液质联用仪,以待检测的胶类药材酶解液为基质,分别加入不同物种的专属性多肽对照品,采用ESI正离子模式,多反应监测(MRM)模式,对专属性多肽的母离子与子离子进行检测,如果检测出与专属性多肽对照品保留时间、母离子-子离子一致,则判定所述胶类样品的物种来源于专属性多肽的对应物质一致。
本发明所述胶类药材包括鹿皮胶、鹿角胶、黄明胶、阿胶、马皮胶、猪皮胶,以及以这些胶类药材生产制备的含胶类的食品、保健品等。
本发明所述的酶切方法如下进行:取待检测胶类药材样品约10mg,加入5ml磷酸盐缓冲液,超声使样品完全溶解,12000rpm离心20min,取上清液150μl,置于2ml离心管中,以1ml50mMPBS稀释,加入适量胰蛋白酶,加入胰蛋白酶的量介于0.1%~10%(w/v),摇匀,充分酶解,酶解方式包括:37℃恒温酶解、微波辅助酶解、超声辅助酶解、酶固定化酶解,酶解后加入10%TFA溶液60μl终止反应,12000rpm离心20min,即得胶类药材酶解液,置于-20℃保存,备用。
本发明所述的液质联用仪检测的液相条件为:色谱柱为1.7μmC18反相色谱柱(2.1μm ×100mm),流速0.3ml/min,流动相A(乙腈),流动相B(0.1%甲酸),0~5min,5~25%A线性梯度洗脱,5~6min,25~5%A线性梯度洗脱,6~7min,5%A洗脱。液质联用仪检测的质谱条件为:电喷雾正离子模式(ESI+),质谱参数为:离子源温度500℃;电离电压5500V;脱溶剂温度500℃;离子源气体1,60psi;离子源气体2,60psi。选择专属肽对应的离子对进行检测。
本发明专属肽的离子对及质谱条件为:
鹿肽1:m/z724.9(2+)→802.4,去簇电压(DP)=10~150,碰撞能量(CE)=10~50;
鹿肽2:m/z765.2(3+)→554.4,DP=10~150,CE=10~50;
鹿肽3:m/z765.5(3+)→554.4,DP=10~150,CE=10~50;
鹿肽4:m/z765.8(3+)→554.9,DP=10~150,CE=10~50;
鹿肽5:m/z670.9(3+)→531.4,DP=10~150,CE=10~50;
驴肽1:m/z724.8(2+)→818.4,DP=10~150,CE=10~50;
驴肽2:m/z768.0(3+)→694.5,DP=10~150,CE=10~50;
驴肽3:m/z518.5(4+)→556.3,DP=10~150,CE=10~50;
马肽1:m/z524.1(4+)→556.3,DP=10~150,CE=10~50;
牛肽1:m/z746.9(2+)→846.5,DP=10~150,CE=10~50;
牛肽2:m/z755.0(3+)→553.4,DP=10~150,CE=10~50;
猪肽1:m/z739.9(2+)→818.5,DP=10~150,CE=10~50;
猪肽2:m/z736.0(3+)→526.4,DP=10~150,CE=10~50;
本发明鉴别胶类药材的依据为:
检测样品中仅有鹿肽1~鹿肽5中的3个或以上专属肽,则样品为鹿皮胶或鹿角胶;
检测样品中仅有专属肽驴肽1、驴肽2,则样品为驴皮胶或马皮胶;
检测样品中仅有专属肽驴肽1、驴肽2,且同时含有驴肽3,则样品为驴皮胶;
检测样品中仅有专属肽马肽1,则样品为马皮胶;
检测样品中仅有专属肽牛肽1、牛肽2,则样品为牛皮胶;
检测样品中仅有专属肽猪肽1、猪肽2,则样品为猪皮胶;
检测样品中含有鹿肽1~鹿肽5中任意一个专属肽,则样品含有鹿皮胶或鹿角胶;
检测样品中含有驴肽1、驴肽2中任意一个专属肽,则样品含有驴皮胶或马皮胶;
检测样品中含有专属肽驴肽3,则样品含有驴皮胶;
检测样品中含有专属肽马肽1,则样品含有马皮胶;
检测样品中含有专属肽牛肽1、牛肽2中任意一个专属肽,则样品含有牛皮胶;
检测样品中含有专属肽猪肽1、猪肽2中任意一个专属肽,则样品含有猪皮胶。
有益效果:
本发明依据鹿皮胶、阿胶、牛皮胶、马皮胶、猪皮胶所含专属性多肽的质谱离子对信息,可快速准确判断鹿皮胶、阿胶、牛皮胶、马皮胶、猪皮胶的真伪,并可根据专属肽的峰面积比值,可判断掺杂样品的掺伪比例。本发明方法专属性强、灵敏度高、操作简单,可用于胶类药材的鉴别与质量控制。
附图说明
图1为鹿肽1质谱图;
图2为鹿肽2质谱图;
图3为鹿肽3质谱图;
图4为鹿肽4质谱图;
图5为鹿肽5质谱图;
图6为驴肽1质谱图;
图7为驴肽2质谱图;
图8为驴肽3质谱图;
图9为马肽1质谱图;
图10为牛肽1质谱图;
图11为牛肽2质谱图;
图12为猪肽1质谱图;
图13为猪肽2质谱图;
图14为不同专属肽的XIC图;
图15为鹿皮胶样品XIC图;
图16为阿胶样品XIC图;
图17为牛皮胶正品XIC图;
具体实施例
根据下述实施例,可以更好地理解本发明。然而,本领域的技术人员容易理解,实施例所描述的具体的物料配比、工艺条件及其结果仅用于说明本发明,而不应当也不会限制权利要求书中所详细描述的本发明。
实施例1
分别各取鹿、驴、马、牛和猪约10mg,分别加入5ml磷酸盐缓冲液,超声使样品完全溶解,12000rpm离心20min,取上清液150μl,置于2ml离心管中,以1ml 50mM PBS 稀释,加入1%胰蛋白酶(w/v),摇匀,37℃恒温酶解12h,酶解后加入10%TFA溶液60μl 终止反应,12000rpm离心20min,得到鹿、驴、马、牛和猪酶解液,置于-20℃保存。
将鹿、驴、马、牛和猪酶解液依次注入液质联用仪,进样量为1μg,液质联用仪检测的液相条件为:色谱柱为1.7μmC18反相色谱柱(2.1μm×100mm),流速0.3ml/min,流动相A(乙腈),流动相B(0.1%甲酸),0~5min,5~25%A线性梯度洗脱,5~6min,25~5%A 线性梯度洗脱,6~7min,5%A洗脱。液质联用仪检测的质谱条件为:电喷雾正离子模式(ESI+),质谱参数为:离子源温度500℃;电离电压5500V;脱溶剂温度500℃;离子源气体1,60psi;离子源气体2,60psi。得到鹿、驴、马、牛和猪的专属性多肽质谱图为图1至图14。
通过以上质谱图分析可得到如下鹿、驴、马、牛和猪专属肽的离子对信息如表1;
表1
序号 专属肽 MRM离子对 DP CE
1 鹿肽1 m/z724.9(2+)→802.4 10~150 10~50
2 鹿肽2 m/z765.2(3+)→554.4 10~150 10~50
3 鹿肽3 m/z765.5(3+)→554.4 10~150 10~50
4 鹿肽4 m/z765.8(3+)→554.9 10~150 10~50
5 鹿肽5 m/z670.9(3+)→531.4 10~150 10~50
6 驴肽1 m/z724.8(2+)→818.4 10~150 10~50
7 驴肽2 m/z768.0(3+)→694.5 10~150 10~50
8 驴肽3 m/z518.5(4+)→556.3 10~150 10~50
9 马肽1 m/z524.1(4+)→556.3 10~150 10~50
10 牛肽1 m/z746.9(2+)→846.5 10~150 10~50
11 牛肽2 m/z755.0(3+)→553.4 10~150 10~50
12 猪肽1 m/z739.9(2+)→818.5 10~150 10~50
13 猪肽2 m/z736.0(3+)→526.4 10~150 10~50
实施例2鹿皮胶真伪鉴别及掺杂情况
取4个批次市售鹿皮胶样品,每批次各取约10mg,加入5ml磷酸盐缓冲液,超声使样品完全溶解,12000rpm离心20min,取上清液150μl,置于2ml离心管中,以1ml50mM PBS稀释,加入1%胰蛋白酶(w/v),摇匀,37℃恒温酶解12h,酶解后加入10%TFA溶液60 μl终止反应,12000rpm离心20min,即得鹿皮胶药材酶解液,置于-20℃保存,备用。
将鹿皮胶酶解液注入液质联用仪,进样量为1μg,液质联用仪检测的液相条件为:色谱柱为1.7μmC18反相色谱柱(2.1μm×100mm),流速0.3ml/min,流动相A(乙腈),流动相B(0.1%甲酸),0~5min,5~25%A线性梯度洗脱,5~6min,25~5%A线性梯度洗脱, 6~7min,5%A洗脱。液质联用仪检测的质谱条件为:电喷雾正离子模式(ESI+),质谱参数为:离子源温度500℃;电离电压5500V;脱溶剂温度500℃;离子源气体1,60psi;离子源气体2,60psi。设置专属肽对应的离子对条件如下:
鹿肽1:m/z724.9(2+)→802.4,DP=28.79,CE=31.32;
鹿肽2:m/z765.2(3+)→554.4,DP=55.81,CE=25.34;
鹿肽3:m/z765.5(3+)→554.4,DP=70.15,CE=29.13;
鹿肽4:m/z765.8(3+)→554.9,DP=66.10,CE=24.56;
鹿肽5:m/z670.9(3+)→531.4,DP=76.15,CE=24.86;
驴肽1:m/z724.8(2+)→818.4,DP=73.81,CE=35.95;
驴肽2:m/z768.0(3+)→694.5,DP=30.06,CE=27.74;
驴肽3:m/z518.5(4+)→556.3,DP=50.40,CE=22.98;
马肽1:m/z524.1(4+)→556.3,DP=90.02,CE=18.64;
牛肽1:m/z746.9(2+)→846.5,DP=79.96,CE=29.43;
牛肽2:m/z755.0(3+)→553.4,DP=72.97,CE=25.85;
猪肽1:m/z739.9(2+)→818.5,DP=74.65,CE=30.13;
猪肽2:m/z736.0(3+)→526.4,DP=84.44,CE=26.76;
4个批次鹿皮胶的测定结果见表2与图15(图中A为掺牛皮的鹿皮胶;B为鹿皮胶正品),由表中专属肽检测结果可判断:其中2个批次样品为鹿皮胶正品,1个批次为牛皮胶掺杂样品,1个批次为牛皮胶样品。
表2 4个批次鹿皮胶样品检测结果
批次 鹿肽1 鹿肽2 鹿肽3 鹿肽4 鹿肽5 牛肽1 牛肽2 驴肽1 驴肽2 驴肽3 马肽 猪肽1 猪肽2
1 + + + + + - - - - - - - -
2 + + + + + - - - - - - - -
3 + + + + + + + - - - - - -
4 - - - - - + + - - - - - -
+:表示检测到该肽段;-:表示未检测到该肽段
实施例3阿胶真伪鉴别及掺杂情况
取6个批次市售阿胶样品,每批次各取约10mg,加入5ml磷酸盐缓冲液,超声使样品完全溶解,12000rpm离心20min,取上清液150μl,置于2ml离心管中,以1ml 50mM PBS稀释,加入1%胰蛋白酶(w/v),摇匀,超声酶解10min,酶解后加入10%TFA溶液60μl 终止反应,12000rpm离心20min,即得阿胶药材酶解液,置于-20℃保存,备用。
将阿胶酶解液注入液质联用仪,进样量为1μg,液质联用仪检测的液相条件为:色谱柱为1.7μm C18反相色谱柱(2.1μm×100mm),流速0.3ml/min,流动相A(乙腈),流动相B(0.1%甲酸),0~5min,5~25%A线性梯度洗脱,5~6min,25~5%A线性梯度洗脱,6~7min,5%A洗脱。液质联用仪检测的质谱条件为:电喷雾正离子模式(ESI+),质谱参数为:离子源温度500℃;电离电压5500V;脱溶剂温度500℃;离子源气体1,60psi;离子源气体 2,60psi。设置专属肽对应的离子对条件如下:
鹿肽1:m/z724.9(2+)→802.4,DP=28.79,CE=31.32;
鹿肽2:m/z765.2(3+)→554.4,DP=55.81,CE=25.34;
鹿肽3:m/z765.5(3+)→554.4,DP=70.15,CE=29.13;
鹿肽4:m/z765.8(3+)→554.9,DP=66.10,CE=24.56;
鹿肽5:m/z670.9(3+)→531.4,DP=76.15,CE=24.86;
驴肽1:m/z724.8(2+)→818.4,DP=73.81,CE=35.95;
驴肽2:m/z768.0(3+)→694.5,DP=30.06,CE=27.74;
驴肽3:m/z518.5(4+)→556.3,DP=50.40,CE=22.98;
马肽1:m/z524.1(4+)→556.3,DP=90.02,CE=18.64;
牛肽1:m/z746.9(2+)→846.5,DP=79.96,CE=29.43;
牛肽2:m/z755.0(3+)→553.4,DP=72.97,CE=25.85;
猪肽1:m/z739.9(2+)→818.5,DP=74.65,CE=30.13;
猪肽2:m/z736.0(3+)→526.4,DP=84.44,CE=26.76;
6个批次阿胶的测定结果见表3和图16(图中A为掺牛皮的阿胶胶;B为掺马皮的阿胶胶;C为阿胶正品),由表中专属肽检测结果可判断:其中2个批次样品为阿胶正品,1个批次为牛皮胶掺杂样品,1个批次为牛皮胶样品,2个批次为马皮胶样品。
表3 6个批次阿胶样品检测结果
批次 鹿肽1 鹿肽2 鹿肽3 鹿肽4 鹿肽5 牛肽1 牛肽2 驴肽1 驴肽2 驴肽3 马肽 猪肽1 猪肽2
1 - - - - - - - + + + - - -
2 - - - - - - - + + + - - -
3 - - - - - + + + + + - - -
4 - - - - - + + - - - - - -
5 - - - - - - - + + - + - -
6 - - - - - - - + + - + - -
+:表示检测到该肽段;-:表示未检测到该肽段
实施例4黄明胶真伪鉴别
取4个批次市售黄明胶样品,每批次各取约10mg,加入5ml磷酸盐缓冲液,超声使样品完全溶解,12000rpm离心20min,取上清液150μl,置于2ml离心管中,以1ml 50mM PBS稀释,加入1%胰蛋白酶(w/v),摇匀,微波酶解30min,酶解后加入10%TFA溶液60μl 终止反应,12000rpm离心20min,即得黄明胶药材酶解液,置于-20℃保存,备用。
将黄明胶酶解液注入液质联用仪,进样量为1μg,液质联用仪检测的液相条件为:色谱柱为1.7μm C18反相色谱柱(2.1μm×100mm),流速0.3ml/min,流动相A(乙腈),流动相B(0.1%甲酸),0~5min,5~25%A线性梯度洗脱,5~6min,25~5%A线性梯度洗脱, 6~7min,5%A洗脱。液质联用仪检测的质谱条件为:电喷雾正离子模式(ESI+),质谱参数为:离子源温度500℃;电离电压5500V;脱溶剂温度500℃;离子源气体1,60psi;离子源气体2,60psi。设置专属肽对应的离子对条件如下:
鹿肽1:m/z724.9(2+)→802.4,DP=28.79,CE=31.32;
鹿肽2:m/z765.2(3+)→554.4,DP=55.81,CE=25.34;
鹿肽3:m/z765.5(3+)→554.4,DP=70.15,CE=29.13;
鹿肽4:m/z765.8(3+)→554.9,DP=66.10,CE=24.56;
鹿肽5:m/z670.9(3+)→531.4,DP=76.15,CE=24.86;
驴肽1:m/z724.8(2+)→818.4,DP=73.81,CE=35.95;
驴肽2:m/z768.0(3+)→694.5,DP=30.06,CE=27.74;
驴肽3:m/z518.5(4+)→556.3,DP=50.40,CE=22.98;
马肽1:m/z524.1(4+)→556.3,DP=90.02,CE=18.64;
牛肽1:m/z746.9(2+)→846.5,DP=79.96,CE=29.43;
牛肽2:m/z755.0(3+)→553.4,DP=72.97,CE=25.85;
猪肽1:m/z739.9(2+)→818.5,DP=74.65,CE=30.13;
猪肽2:m/z736.0(3+)→526.4,DP=84.44,CE=26.76;
4个批次黄明胶的测定结果见表4和图17,由表中专属肽检测结果可判断:4个批次样品均为黄明胶。
表4 4个批次黄明胶样品检测结果
批次 鹿肽1 鹿肽2 鹿肽3 鹿肽4 鹿肽5 牛肽1 牛肽2 驴肽1 驴肽2 驴肽3 马肽 猪肽1 猪肽2
1 - - - - - + + - - - - - -
2 - - - - - + + - - - - - -
3 - - - - - + + - - - - - -
4 - - - - - + + - - - - - -
+:表示检测到该肽段;-:表示未检测到该肽段
实施例5鹿皮胶中掺牛皮胶的检测
将牛皮胶按照1,5,10,20,50,80%比例掺入到鹿皮胶中,分别取不同比例的混合胶样品10mg,加入5ml磷酸盐缓冲液,超声使样品完全溶解,12000rpm离心20min,取上清液150μl,置于2ml离心管中,以1ml 50mM PBS稀释,加入1%胰蛋白酶(w/v),摇匀,微波酶解30min,酶解后加入10%TFA溶液60μl终止反应,12000rpm离心20min,得到不同比例混合胶酶解液,置于-20℃保存,备用。
将不同比例混合胶酶解液注入液质联用仪,进样量为1μg,液质联用仪检测的液相条件为:色谱柱为1.7μm C18反相色谱柱(2.1μm×100mm),流速0.3ml/min,流动相A(乙腈),流动相B(0.1%甲酸),0~5min,5~25%A线性梯度洗脱,5~6min,25~5%A线性梯度洗脱,6~7min,5%A洗脱。液质联用仪检测的质谱条件为:电喷雾正离子模式(ESI+),质谱参数为:离子源温度500℃;电离电压5500V;脱溶剂温度500℃;离子源气体1,60psi;离子源气体2,60psi。设置专属肽对应的离子对条件如下:
鹿肽3:m/z765.5(3+)→554.4,DP=70.15,CE=29.13;
牛肽2:m/z755.0(3+)→553.4,DP=72.97,CE=25.85;
不同掺杂比例的混胶样品检测结果见表5,以混胶样品中牛皮胶与鹿皮胶相对含量的比值(牛皮胶比例/鹿皮胶比例)为横坐标,以牛肽2峰面积与鹿肽3峰面积的比值(A牛肽2/A鹿肽3)为纵坐标作图,牛皮胶比例/鹿皮胶比例与A牛肽2/A鹿肽3呈线性,y=1.3911x+0.0021,R2 =0.9999。表明鹿皮胶掺入牛皮胶的比例与牛肽2与鹿肽3峰面积相关,因此可根据A牛肽2与 A鹿肽3的比例关系确定鹿皮胶中掺入牛皮胶的比例。
表5牛皮胶/鹿皮胶混合样品掺入比例与峰面积关系
Figure BDA0002661193480000081
实施例6阿胶中掺马皮胶的检测
将马皮胶按照1,5,10,20,50,80,90,95,99%比例掺入到阿胶中,分别取不同比例的混合胶样品10mg,加入5ml磷酸盐缓冲液,超声使样品完全溶解,12000rpm离心20 min,取上清液150μl,置于2ml离心管中,以1ml 50mM PBS稀释,加入1%胰蛋白酶(w/v),摇匀,微波酶解30min,酶解后加入10%TFA溶液60μl终止反应,12000rpm离心20min,得到不同比例混合胶酶解液,置于-20℃保存,备用。
将不同比例混合胶酶解液注入液质联用仪,进样量为1μg,液质联用仪检测的液相条件为:色谱柱为1.7μm C18反相色谱柱(2.1μm×100mm),流速0.3ml/min,流动相A (乙腈),流动相B(0.1%甲酸),0~5min,5~25%A线性梯度洗脱,5~6min,25~5%A线性梯度洗脱,6~7min,5%A洗脱。液质联用仪检测的质谱条件为:电喷雾正离子模式(ESI+),质谱参数为:离子源温度500℃;电离电压5500V;脱溶剂温度500℃;离子源气体1,60psi;离子源气体2,60psi。设置专属肽对应的离子对条件如下:
驴肽3:m/z518.5(4+)→556.3,DP=50.40,CE=22.98;
马肽1:m/z524.1(4+)→556.3,DP=90.02,CE=18.64;
不同掺杂比例的混胶样品检测结果见表6,以混胶样品中马皮胶与阿胶相对含量的比值 (马皮胶比例/阿胶比例)为横坐标,以马肽1峰面积与驴肽3峰面积的比值(A马肽1/A驴肽3) 为纵坐标作图,马皮胶比例/阿胶比例与A马肽1/A驴肽3呈线性,y=0.9242x-0.1753,R2=0.9990。表明阿胶掺入马皮胶的比例与马肽1与驴肽3峰面积相关,因此可根据A马肽1与A驴肽3的比例关系确定阿胶中掺入马皮胶的比例。
表6马皮胶/阿胶混合样品掺入比例与峰面积关系
Figure BDA0002661193480000091
实施例7鹿皮胶与阿胶伪品中掺伪比例的测定
将实施例2中的第3批次鹿皮胶样品(鹿皮胶-3)、实施例3中的第5批次阿胶样品(阿胶-5),分别取10mg,加入5ml磷酸盐缓冲液,超声使样品完全溶解,12000rpm离心20min,取上清液150μl,置于2ml离心管中,以1ml 50mM PBS稀释,加入1%胰蛋白酶(w/v),摇匀,微波酶解30min,酶解后加入10%TFA溶液60μl终止反应,12000rpm离心20min,得到不同伪品胶酶解液,置于-20℃保存,备用。
将不同伪品胶酶解液注入液质联用仪,进样量为1μg,液质联用仪检测的液相条件为:色谱柱为1.7μm C18反相色谱柱(2.1μm×100mm),流速0.3ml/min,流动相A(乙腈),流动相B(0.1%甲酸),0~5min,5~25%A线性梯度洗脱,5~6min,25~5%A线性梯度洗脱, 6~7min,5%A洗脱。液质联用仪检测的质谱条件为:电喷雾正离子模式(ESI+),质谱参数为:离子源温度500℃;电离电压5500V;脱溶剂温度500℃;离子源气体1,60psi;离子源气体2,60psi。设置专属肽对应的离子对条件如下:
鹿肽3:m/z765.5(3+)→554.4,DP=70.15,CE=29.13;
牛肽2:m/z755.0(3+)→553.4,DP=72.97,CE=25.85;
驴肽3:m/z518.5(4+)→556.3,DP=50.40,CE=22.98;
马肽1:m/z524.1(4+)→556.3,DP=90.02,CE=18.64;
结果见表7与表8,根据检测的A牛肽2与A鹿肽3数值,将A牛肽2/A鹿肽3数值代入方程y=1.3911x +0.0021,计算牛皮胶/鹿皮胶数值为1.371,则进一步计算出阿胶中掺入马皮的量为57.8%;根据检测的A马肽1与A驴肽3数值,将A马肽1/A驴肽3数值代入方程y=0.9242x-0.1753,计算马皮胶/阿胶数值为0.612,则进一步计算出阿胶中掺入马皮的量为38.0%。
表7鹿皮胶-3样品检测
Figure BDA0002661193480000101
表8阿胶-5样品检测
Figure BDA0002661193480000102
以上实施例仅为本发明的示例性实施例,不用于限制本发明,本发明的保护范围由权利要求书限定。本领域技术人员可以在本发明的实质和保护范围内,对本发明做出各种修改或等同替换,这种修改或等同替换也应视为落在本发明的保护范围内。

Claims (6)

1.一种胶类药材的检测方法,其特征在于:将待检测的胶类药材样品用胰蛋白酶进行酶切后,将酶解液注入液质联用仪,采用ESI正离子模式,多反应监测模式进行检测,如果检测出与专属性多肽保留时间、母离子-子离子一致,则判定所述胶类药材样品的物种来源与专属性多肽对应的物种一致;并根据专属性多肽的峰面积比值,判断掺杂样品的掺伪比例;具体包括:
取待检测胶类药材样品10 mg,加入5 ml磷酸盐缓冲液,超声使样品完全溶解,12000rpm离心20 min,取上清液150 μl,置于2 ml离心管中,以1 ml 50 mM PBS稀释,加入适量胰蛋白酶,摇匀,充分酶解,加入10% TFA溶液60 μl终止反应,12000 rpm离心20 min,即得胶类药材酶解液,置于-20℃保存,备用;
色谱柱为1.7μm C18反相色谱柱,规格2.1 mm × 100 mm,流速0.3ml/min,流动相A相为乙腈,流动相B为0.1%甲酸,0~5 min,5~25%A线性梯度洗脱,5~6 min,25~5%A线性梯度洗脱,6~7 min,5%A洗脱;
电喷雾正离子模式ESI+,质谱参数为:离子源温度500℃;电离电压5500V;脱溶剂温度500℃;离子源气体1,60psi;离子源气体2,60psi;选择专属肽对应的离子对进行检测;
专属肽的离子对及质谱条件为:
鹿肽1:m/z724.9/2+→802.4, 去簇电压DP=10~150, 碰撞能量CE=10~50;
鹿肽2:m/z765.2/3+→554.4, DP=10~150, CE=10~50;
鹿肽3:m/z765.5/3+→554.4, DP=10~150, CE=10~50;
鹿肽4:m/z765.8/3+→554.9, DP=10~150, CE=10~50;
鹿肽5:m/z670.9/3+→531.4, DP=10~150, CE=10~50;
驴肽1:m/z724.8/2+→818.4, DP=10~150, CE=10~50;
驴肽2:m/z768.0/3+→694.5, DP=10~150, CE=10~50;
驴肽3:m/z518.5/4+→556.3, DP=10~150, CE=10~50;
马肽1:m/z524.1/4+→556.3, DP=10~150, CE=10~50;
牛肽1:m/z746.9/2+→846.5, DP=10~150, CE=10~50;
牛肽2:m/z755.0/3+→553.4, DP=10~150, CE=10~50;
猪肽1:m/z739.9/2+→818.5, DP=10~150, CE=10~50;
猪肽2:m/z736.0/3+→526.4, DP=10~150, CE=10~50。
2.根据权利要求1所述的胶类药材的检测方法,其特征在于,所述胶类药材包括鹿皮胶、鹿角胶、黄明胶、阿胶、马皮胶、猪皮胶,以及以这些胶类药材生产制备的含胶类的食品、保健品。
3.根据权利要求1所述的胶类药材的检测方法,其特征在于,加入胰蛋白酶的量w/v为0.1%~10%。
4.根据权利要求1所述的胶类药材的检测方法,其特征在于,酶解方式包括:37℃恒温酶解、微波辅助酶解、超声辅助酶解或酶固定化酶解。
5.根据权利要求1所述的胶类药材的检测方法,其特征在于,鉴别胶类药材的依据为:
检测样品中仅有鹿肽1~鹿肽5中的3个或以上专属肽,则样品为鹿皮胶或鹿角胶;
检测样品中仅有专属肽驴肽1、驴肽2,则样品为驴皮胶或马皮胶;
检测样品中仅有专属肽驴肽1、驴肽2,且同时含有驴肽3,则样品为驴皮胶;
检测样品中仅有专属肽马肽1,则样品为马皮胶;
检测样品中仅有专属肽牛肽1、牛肽2,则样品为牛皮胶;
检测样品中仅有专属肽猪肽1、猪肽2,则样品为猪皮胶;
检测样品中含有鹿肽1~鹿肽5中任意一个专属肽,则样品含有鹿皮胶或鹿角胶;
检测样品中含有驴肽1、驴肽2中任意一个专属肽,则样品含有驴皮胶或马皮胶;
检测样品中含有专属肽驴肽3,则样品含有驴皮胶;
检测样品中含有专属肽马肽1,则样品含有马皮胶;
检测样品中含有专属肽牛肽1、牛肽2中任意一个专属肽,则样品含有牛皮胶;
检测样品中含有专属肽猪肽1、猪肽2中任意一个专属肽,则样品含有猪皮胶。
6.根据权利要求1所述的胶类药材的检测方法,其特征在于,判断掺杂样品的掺伪比例: A胶专属肽峰面积/B胶专属肽峰面积与A胶比例/B胶比例呈线性关系,测定A胶专属肽峰面积与B胶专属肽峰面积,通过计算确定混合胶中A胶与B胶的比例;
其中,牛皮胶比例/鹿皮胶比例与A牛肽2/A鹿肽3呈线性,线性方程为:y = 1.3911x +0.0021,R² = 0.9999;
马皮胶比例/阿胶比例与A马肽1/A驴肽3呈线性,线性方程为:y = 0.9242x - 0.1753,R² =0.9990。
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* Cited by examiner, † Cited by third party
Publication number Priority date Publication date Assignee Title
CN112898384B (zh) * 2021-01-23 2022-08-26 南京中医药大学 一种鹿角特征肽段及其检测方法
CN113173971B (zh) * 2021-04-20 2022-08-23 江阴天江药业有限公司 用于鉴别含有鹿角或鹿皮的配方颗粒的特征肽段及其检测方法
CN115792243A (zh) * 2022-11-25 2023-03-14 北京同仁堂(辽宁)科技药业有限公司 一种利用专属离子对检测鹿胶的方法及应用

Citations (3)

* Cited by examiner, † Cited by third party
Publication number Priority date Publication date Assignee Title
CN109187835A (zh) * 2018-09-17 2019-01-11 南京中医药大学 一种含蛋白质类中药的专属性肽段的鉴别方法
JP2019088213A (ja) * 2017-11-13 2019-06-13 一般財団法人日本皮革研究所 コラーゲン由来材料の動物種を判定する方法
CN110824083A (zh) * 2019-11-06 2020-02-21 东阿阿胶股份有限公司 一种驴骨胶特征性多肽及其在检测动物皮胶及其制品中驴骨胶成分中的应用

Patent Citations (3)

* Cited by examiner, † Cited by third party
Publication number Priority date Publication date Assignee Title
JP2019088213A (ja) * 2017-11-13 2019-06-13 一般財団法人日本皮革研究所 コラーゲン由来材料の動物種を判定する方法
CN109187835A (zh) * 2018-09-17 2019-01-11 南京中医药大学 一种含蛋白质类中药的专属性肽段的鉴别方法
CN110824083A (zh) * 2019-11-06 2020-02-21 东阿阿胶股份有限公司 一种驴骨胶特征性多肽及其在检测动物皮胶及其制品中驴骨胶成分中的应用

Non-Patent Citations (2)

* Cited by examiner, † Cited by third party
Title
A strategy for identifying species-specific peptide biomarkers in deer-hide gelatin using untargeted and targeted mass spectrometry approaches;Rui Liu et al.;《Analytica Chimica Acta》;20191231;第1092卷;"ABSTRACT",第33-40页第2-4节 *
驴皮特征肽的发现及其在阿胶鉴别中的应用;石峰 等;《药物分析杂志》;20171231;第37卷;2272-2278页 *

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