CN111678755B - 一种尿液有形成分分析仪用管型质控物及其制备方法 - Google Patents

一种尿液有形成分分析仪用管型质控物及其制备方法 Download PDF

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Abstract

本发明公开了一种尿液有形成分分析仪用管型质控物及其制备方法,尿液有形成分分析仪用管型质控物包括初始管型模拟物、固化剂、细胞保养液、红细胞和白细胞的一种或两种,利用离心或者水解制备初始管型模拟物,所述初始管型模拟物包括有尾藻细胞、纤细藻细胞或纤维中的任意一种,对所述有尾藻细胞进行去尾,对纤细藻细胞或纤维进行细胞粘附,改变所述初始管型模拟物的形态;然后对形态改进后的所述初始管型模拟物进行分离提纯,得到管型模拟物,其次,向所述管型模拟物中加入固化剂并保存,得到管型模拟物分散液;最后向所述管型模拟物分散液中加入制备剂,得到单项或多项管型质控物,适合广泛推广使用。

Description

一种尿液有形成分分析仪用管型质控物及其制备方法
技术领域
本发明涉及临床体液学检验质量控制技术领域,尤其涉及一种尿液有形成分分析仪用管型质控物及其制备方法。
背景技术
在一定条件下,肾脏滤出的蛋白质以及细胞或碎片在肾小管(远曲)、集合管中凝固后,可形成圆柱形蛋白聚体而随尿液排出,称为管型。尿中出现多量管型表示肾实质有病理性变化,因而在体外诊断尿常规检查中,能精确识别管型对肾脏类疾病诊断具有重要的意义。
目前,在尿液分析领域,自动化尿有形成分分析仪广泛应用于临床,在一定程度上取代了人工镜检,但是由于对尿有形成分分析系统的全面质量控制还很困难,有时得出的结果并不能确认,因此还经常需要进行人工复检,耗时耗力。
每天利用质控物对尿有形分析成分分析系统的质量控制是非常重要的一环,现市场上针对尿有形成分分析仪的商品化质控物常只含有WBC、RBC中的一种或者两种,或者如日本Sysmex公司使用不同直径大小的微粒子作为质控物,并不能对尿有形成分分析仪检测的项目全面控制,特别是对管型成分的控制,一般尿管型的出现意味肾脏出现重大毛病,因而对尿管型的质控具有重大意义,而市场上并没有商品化尿管型质控物。现有人收集人类肾脏疾病患者的阳性尿液,从中提取相关的有形成分,经过固定等处理,配制成多项质控物,但由于阳性样本收集的困难,并且是利用人体尿液可能会对操作者产生污染,因而只适于部分基层医院及个别仪器监控,并不能广泛推广使用。
发明内容
本发明的目的在于提供一种尿液有形成分分析仪用管型质控物及其制备方法,适合广泛推广使用。
为实现上述目的,第一方面,本发明提供了一种尿液有形成分分析仪用管型质控物的制备方法,包括:
利用离心或者水解制备初始管型模拟物,所述初始管型模拟物包括有尾藻细胞、纤细藻细胞或纤维中的任意一种;
对所述初始管型模拟物进行形态改进;
对形态改进后的所述初始管型模拟物进行分离提纯,得到管型模拟物;
向所述管型模拟物中加入固化剂并保存,得到管型模拟物分散液;
向所述管型模拟物分散液中加入制备剂,得到单项或多项管型质控物。
其中,所述利用离心或者水解制备初始管型模拟物,包括:
将各100mL的布氏双尾藻、新月藻、绿草履虫和纤细水绵中的一种或多种均分成两管,分别在500-1500rpm的速度下离心5-15min,得到有尾藻细胞或纤细藻细胞。
其中,所述利用离心或者水解制备初始管型模拟物,还包括:
量取质量分数为30%-70%的硫酸溶液,并在25-55℃下水解棉花、纸、木屑和秸秆中的一种或多种5min-5h后,在500-1500rpm的速度下离心5-15min,得到离心沉淀后,将所述离心沉淀分散于细胞保养液中,再次在500-1500rpm的速度下离心5-15min,得到纤维。
其中,对所述初始管型模拟物进行形态改进,包括:
将所述有尾藻细胞加入氢氧根浓度为0.05-2mol/L的碱溶液中5-60min后,在超声频率为50-50000Hz下超声0.05s-30min,且在搅拌速度为200-1000r/min下搅拌0.5h-5h,其中,所述有尾藻细胞和所述碱溶液的体积比为1:10-1:100。
其中,对所述初始管型模拟物进行形态改进,还包括:
向所述纤细藻细胞或所述纤维加入动物血细胞,再加入固化剂静置12-72h后,并在静置时间内每隔6-18h搅匀一次,再加入溶血剂混匀后静置5-20min,其中,所述纤细藻细胞与动物血细胞的体积比为1:1-1:10,与固化剂的体积比为1:2-1:20,与溶血剂的体积为1:1-1:30;所述纤维与动物血细胞的体积比为1:2-1:20,与固化剂的体积比为1:3-1:30,与溶血剂的体积为1:1-1:30;所述固化剂为质量分数是0.1-2%的甲醛溶液、戊二醛溶液或醋酸溶液中的一种,所述动物血细胞为红细胞、白细胞或血小板中的一种或多种。
其中,对形态改进后的所述初始管型模拟物进行分离提纯,得到管型模拟物,包括:
依次使用孔径为30-50μm和10-20μm的滤膜过滤去除所述形态改进后的所述初始管型模拟物中颗粒,并在500-1500rpm的速度下离心5-10min,得到管型模拟物。
其中,向所述管型模拟物中加入固化剂并保存,得到管型模拟物分散液,包括:
向所述管型模拟物中加入细胞保养液后,加入固化剂固化1-60min,并在500-1500rpm的速度下离心5-10min,将得到的沉淀分散于细胞保养液中,得到管型模拟物分散液,其中,所述管型模拟物与所述细胞保养液的体积比为1:5-1:50;所述管型模拟物与固化剂的体积比为1:5-1:50;所述固化剂为质量分数是0.1-2%的甲醛溶液、戊二醛溶液或醋酸溶液中的一种。
其中,向所述管型模拟物分散液中加入制备剂,得到单项或多项管型质控物,包括:
向所述管型模拟物分散液中加入细胞保养液或红细胞和白细胞的一种或两种,制得单项或多项管型质控物,其中,所述细胞保养液的渗透压为300±40mOsm/kg,pH值为7.3±0.5,包括抗生素0.4-2g/L、多糖0.1-20g/L、牛血清蛋白20-50g/L、氯化钠0.1-10g/L、柠檬酸钠0.1-20g/L和柠檬酸0.001-5g/L。
第二方面,本发明提供一种尿液有形成分分析仪用管型质控物,所述尿液有形成分分析仪用管型质控物包括初始管型模拟物、固化剂、细胞保养液、红细胞和白细胞的一种或两种。
其中,所述初始管型模拟物包括有尾藻细胞、纤细藻细胞或纤维中的任意一种。
本发明的一种尿液有形成分分析仪用管型质控物及其制备方法,包括初始管型模拟物、固化剂、细胞保养液、红细胞和白细胞的一种或两种,利用离心或者水解制备初始管型模拟物,所述初始管型模拟物包括有尾藻细胞、纤细藻细胞或纤维中的任意一种,对所述有尾藻细胞进行去尾,对纤细藻细胞或纤维进行细胞粘附,改变所述初始管型模拟物的形态;然后对形态改进后的所述初始管型模拟物进行分离提纯,得到管型模拟物,其次,向所述管型模拟物中加入固化剂并保存,得到管型模拟物分散液;最后向所述管型模拟物分散液中加入制备剂,得到单项或多项管型质控物,适合广泛推广使用。
附图说明
为了更清楚地说明本发明实施例或现有技术中的技术方案,下面将对实施例或现有技术描述中所需要使用的附图作简单地介绍,显而易见地,下面描述中的附图仅仅是本发明的一些实施例,对于本领域普通技术人员来讲,在不付出创造性劳动的前提下,还可以根据这些附图获得其他的附图。
图1是本发明第一实施例提供的一种尿液有形成分分析仪用管型质控物的制备方法的步骤示意图。
图2是本发明第二实施例提供的一种尿液有形成分分析仪用管型质控物的制备方法的步骤示意图。
图3是本发明第三实施例提供的一种尿液有形成分分析仪用管型质控物的制备方法的步骤示意图。
图4为第一实施例制备的管型质控物的显微镜图。
图5为全自动尿液有形成分仪器URIT-1280、UD-1320分别测试第一实施例制备的管型质控物的测试图。
图6为第二实施例制备的管型质控物的显微镜图。
图7为全自动尿液有形成分仪器URIT-1280测试第二实施例制备的管型质控物的测试图。
图8为第三实施例中制备的管型质控物的显微镜图。
图9为全自动尿液有形成分仪器UD-1320测试第三实施例制备的管型质控物的测试图。
具体实施方式
下面详细描述本发明的实施例,所述实施例的示例在附图中示出,其中自始至终相同或类似的标号表示相同或类似的元件或具有相同或类似功能的元件。下面通过参考附图描述的实施例是示例性的,旨在用于解释本发明,而不能理解为对本发明的限制。
请参阅图1,本发明第一实施例提供的一种尿液有形成分分析仪用管型质控物的制备方法,包括:
S101、利用离心将布氏双尾藻原液制备成初始管型模拟物。
具体的,取100mL布氏双尾藻原液分成两管,每管各50mL,以1000rpm转速离心10min,去除上清,提取纯布氏双尾藻沉淀,每管约有1mL,获得初始管型模拟物。
S102、对所述初始管型模拟物进行形态改进。
具体的,向获得的两管布氏双尾藻沉淀中分别加入50mL氢氧根浓度为1mol/L的氢氧化钠溶液,30min后进行超声处理,超声的频率为10000Hz,超声的时间为1s,获得形态改进后的初始管型模拟物。
S103、对形态改进后的所述初始管型模拟物进行分离提纯,得到管型模拟物。
具体的,使用孔径为50μm的滤膜过滤除去所述形态改进后的初始管型模拟物中的大片段以及大颗粒,再使用孔径为15μm的滤膜过滤余下的小碎片及颗粒,获得符合要求的管型模拟物;再以1000rpm的速度离心10min,去除上清液,得到1.1mL浓缩后的符合要求的管型质控物。
S104、向所述管型模拟物中加入固化剂并保存,得到管型模拟物分散液。
具体的,将获得的1.1mL符合要求的管型模拟物分散于25mL细胞保养液中,然后加入25mL质量分数为2%的甲醛固化剂固化10min,最后以1000rpm的转速离心10min,去上清取沉淀,并将获得的沉淀分散于20mL细胞保养液后保存,获得管型模拟物分散液。
S105、向所述管型模拟物分散液中加入细胞保养液,得到单项管型质控物。
具体的,取所述管型模拟物分散液1mL,加入200mL细胞保养液以调节管型模拟物的浓度,获得单项管型质控物。
在10×40倍光学显微镜下观察上述制备的单项管型质控物,结果如图4所示。利用桂林优利特全自动尿液有形成分仪器URIT-1280、UD-1320分别对上述制备的单项管型质控物进行测试,测试结果如图5所示。可见制备得到的单项管型质控物形态与临床样本相近,且能够被尿液有形成分分析仪识别为管型。
利用桂林优利特全自动尿液有形成分仪器URIT-1280的测试上述制备的单项管型质控物的开瓶稳定性,测试结果见表1。
表1
由表1可知,第一实施例中的方法可以有效去取有尾藻细胞的尾部,模拟管型,通过该方法制得的单项管型质控物在6个月内形态完整,被仪器识别为管型的浓度无显著差异,说明其性能稳定。
请参阅图2,本发明第二实施例提供的一种尿液有形成分分析仪用管型质控物的制备方法,包括:
S201、利用离心将新月藻原液制备成初始管型模拟物。
具体的,取100mL新月藻原液分成两管,每管各50mL,以1500rpm转速离心8min,去除上清,提取纯新月藻沉淀,每管约有1.5mL,获得初始管型模拟物。
S202、对所述初始管型模拟物进行形态改进。
具体的,向获得的两管纯新月藻沉淀中分别加入5mL羊血红细胞,然后再加入6.5mL质量分数是0.25%的戊二醛固化剂,静置72h,期间每隔12h搅匀一次,最后再加入13mL溶血剂,混匀后静置10min,获得形态改进后的初始管型模拟物。
S203、对形态改进后的所述初始管型模拟物进行分离提纯,得到管型模拟物。
具体的,使用孔径为30μm的滤膜过滤除去所述形态改进后的初始管型模拟物中的大片段以及大颗粒,再使用孔径为10μm的滤膜过滤余下的小碎片及颗粒,获得符合要求的管型模拟物;再以1000rpm的速度离心10min,去除上清液,得到1.2mL浓缩后的符合要求的管型质控物。
S204、向所述管型模拟物中加入固化剂并保存,得到管型模拟物分散液。
具体的,将获得的1.2mL符合要求的管型模拟物分散于40mL细胞保养液中,然后加入40mL质量分数是0.5%的戊二醛固化剂固化1min,再以1500rpm的转速离心8min,去上清取沉淀,并将获得的沉淀分散于30mL细胞保养液后保存,获得管型模拟物分散液。
S205、向所述管型模拟物分散液中加入细胞保养液,得到单项管型质控物。
具体的,取所述管型模拟物分散液1mL,加入150mL细胞保养液以调节管型模拟物的浓度,获得单项管型质控物。
在10×40倍光学显微镜下观察上述制备的单项管型质控物,结果如图6所示,利用桂林优利特全自动尿液有形成分仪器URIT-1280对上述制备的单项管型质控物进行测试,测试结果如图7所示,可见制备得到的单项管型质控物形态与临床样本相似,且能够被尿液有形成分分析仪识别为管型。
利用桂林优利特全自动尿液有形成分仪器URIT-1280的测试上述制备的单项管型质控物的开瓶稳定性,检测结果见表2。
表2
测试时间 总颗粒数 识别为管型数目 形态
2018.04.05 7 6 完整
2018.05.09 6 6 完整
2018.06.12 8 6 完整
2018.07.15 7 5 完整
2018.08.20 8 7 完整
2018.09.25 8 7 完整
2018.10.30 7 5 完整
由表2可知,第二实施例中的方法可以有效增加纤细类藻细胞的直径,使得该法制得的管型模拟物能够被仪器识别为管型,同时在初始管型模拟物的形态改进过程中,通过加入溶血剂溶去管型模拟物上不稳定的动物血细胞以提升该模拟物的稳定性,并去除多余的游离动物血细胞。通过该方法制得的单项管型质控物在6个月内形态完整,被仪器识别为管型的浓度无显著差异,说明其性能稳定。
请参阅图3,本发明第三实施例提供的一种尿液有形成分分析仪用管型质控物的制备方法,包括:
S301、利用水解将纸制备成初始管型模拟物。
具体的,配制80mL质量分数为50%的硫酸溶液,分为两份,每份各40mL,待硫酸溶液冷却至室温后,分别加入1g纸,搅拌至肉眼看不见纸屑后,放入37℃的烘箱内水解反应2h,然后以1200rpm的转速离心6min,去上清取沉淀,将该沉淀分散于50mL细胞保养液中,再以1200rpm的转速离心6min,去除上清,再次收集沉淀约1mL,获得初始管型模拟物。
S302、对所述初始管型模拟物进行形态改进。
具体的,向获得的两初始管型模拟物中分别加入6mL羊血红细胞,然后再加入6mL质量分数是1.8%的醋酸固化剂,静置48h,期间每隔12h搅匀一次,最后再加入12mL溶血剂,混匀后静置10min,获得形态改进后的初始管型模拟物。
S303、对形态改进后的所述初始管型模拟物进行分离提纯,得到管型模拟物。
具体的,对获得的形态改进后的初始管型模拟物使用孔径为50μm的滤膜过滤除去所述形态改进后的初始管型模拟物中的大片段以及大颗粒,再使用孔径为10μm的滤膜过滤余下的小碎片及颗粒,获得符合要求的管型模拟物;再以1000rpm的速度离心10min,去除上清,得到1.5mL浓缩后的符合要求的管型质控物。
S304、向所述管型模拟物中加入固化剂并保存,得到管型模拟物分散液。
具体的,将获得的符合要求的管型模拟物分散于20mL细胞保养液中,然后加入40mL质量分数是1%的甲醛固化剂固化5min,最后以1200rpm的转速离心6min,去上清取沉淀,然后将获得的沉淀分散于10mL细胞保养液后保存,获得管型模拟物分散液。
S305、向所述管型模拟物分散液中加入细胞保养液,得到单项管型质控物。
具体的,取所述管型模拟物分散液1mL,加入100mL细胞保养液以调节管型模拟物的浓度,获得单项管型质控物。
在10×40倍光学显微镜下观察上述制备的单项管型质控物,结果如图8所示;利用桂林优利特全自动尿液有形成分仪器UD-1320分别对上述制备的单项管型质控物进行测试,结果如图9所示,可见制备得到的单项管型质控物形态与临床样本相近,且能够被尿液有形成分分析仪识别为管型。
利用桂林优利特全自动尿液有形成分仪器UD-1320的测试上述制备的单项管型质控物的开瓶稳定性,测试结果见表3。
表3
由表3可知,第三实施例中的方法可以有效增加纤维的的直径,使得该法制得的管型模拟物能够被仪器识别为管型,同时在初始管型模拟物的形态改进过程中,通过加入溶血剂溶去管型模拟物上不稳定的动物血细胞以提升该模拟物的稳定性,并去除多余的游离动物血细胞。通过该方法制得的单项管型质控物在6个月内形态完整,被仪器识别为管型的浓度无显著差异,说明其性能稳定。
本发明提供一种尿液有形成分分析仪用管型质控物,所述尿液有形成分分析仪用管型质控物包括初始管型模拟物、固化剂、细胞保养液、红细胞和白细胞的一种或两种。
在本实施方式中,所述尿液有形成分分析仪用管型质控物包括初始管型模拟物、固化剂、细胞保养液、红细胞和白细胞的一种或两种,所述固化剂为质量分数是0.1-2%的甲醛溶液、戊二醛溶液或醋酸溶液中的一种,所述所述细胞保养液的渗透压为300±40mOsm/kg,pH值为7.3±0.5,包括抗生素0.4-2g/L、多糖0.1-20g/L、牛血清蛋白20-50g/L、氯化钠0.1-10g/L、柠檬酸钠0.1-20g/L和柠檬酸0.001-5g/L,原料易得,成本低且无毒害,制备的管型质控物稳定性好、灵敏度高、安全性高,可适于全自动尿有形成分分析仪的质控,弥补了市场尿管型质控物的空缺,能够广泛应用于室间质评。
进一步的,所述初始管型模拟物包括有尾藻细胞、纤细藻细胞或纤维中的任意一种。
在本实施方式中,所述有尾藻细胞和所述纤细藻细胞来源于布氏双尾藻、新月藻、绿草履虫或纤细水绵中的至少一种,所述纤维材料为棉花、纸、木屑、秸秆中的至少一种,原料易得,成本低且无毒害,制备的管型质控物稳定性好、灵敏度高、安全性高,可适于全自动尿有形成分分析仪的质控,弥补了市场尿管型质控物的空缺,能够广泛应用于室间质评。
本发明的一种尿液有形成分分析仪用管型质控物及其制备方法,包括初始管型模拟物、固化剂、细胞保养液、红细胞和白细胞的一种或两种,利用离心或者水解制备初始管型模拟物,所述初始管型模拟物包括有尾藻细胞、纤细藻细胞或纤维中的任意一种,对所述有尾藻细胞进行去尾,对纤细藻细胞或纤维进行细胞粘附,改变所述初始管型模拟物的形态;然后对形态改进后的所述初始管型模拟物进行分离提纯,得到管型模拟物,其次,向所述管型模拟物中加入固化剂并保存,得到管型模拟物分散液;最后向所述管型模拟物分散液中加入制备剂,得到单项或多项管型质控物,适合广泛推广使用。
以上所揭露的仅为本发明一种较佳实施例而已,当然不能以此来限定本发明之权利范围,本领域普通技术人员可以理解实现上述实施例的全部或部分流程,并依本发明权利要求所作的等同变化,仍属于发明所涵盖的范围。

Claims (4)

1.一种尿液有形成分分析仪用管型质控物的制备方法,其特征在于,包括:
利用离心或者水解制备初始管型模拟物,所述初始管型模拟物包括有尾藻细胞、纤细藻细胞或纤维中的任意一种;
对所述初始管型模拟物进行形态改进;
对形态改进后的所述初始管型模拟物进行分离提纯,得到管型模拟物;
向所述管型模拟物中加入固化剂并保存,得到管型模拟物分散液;
向所述管型模拟物分散液中加入制备剂,得到单项或多项管型质控物;
所述利用离心或者水解制备初始管型模拟物,包括:
将各100mL的布氏双尾藻、新月藻、绿草履虫和纤细水绵中的一种或多种均分成两管,分别在500-1500rpm的速度下离心5-15min,得到有尾藻细胞或纤细藻细胞;
所述利用离心或者水解制备初始管型模拟物,还包括:
量取质量分数为30%-70%的硫酸溶液,并在25-55℃下水解棉花、纸、木屑和秸秆中的一种或多种5min-5h后,在500-1500rpm的速度下离心5-15min,得到离心沉淀后,将所述离心沉淀分散于细胞保养液中,再次在500-1500rpm的速度下离心5-15min,得到纤维;
对所述初始管型模拟物进行形态改进,包括:
将所述有尾藻细胞加入氢氧根浓度为0.05-2mol/L的碱溶液中5-60min后,在超声频率为50-50000Hz下超声0.05s-30min,且在搅拌速度为200-1000r/min下搅拌0.5h-5h,其中,所述有尾藻细胞和所述碱溶液的体积比为1:10-1:100;
对所述初始管型模拟物进行形态改进,还包括:
向所述纤细藻细胞或所述纤维加入动物血细胞,再加入固化剂静置12-72h后,并在静置时间内每隔6-18h搅匀一次,再加入溶血剂混匀后静置5-20min,其中,所述纤细藻细胞与动物血细胞的体积比为1:1-1:10,与固化剂的体积比为1:2-1:20,与溶血剂的体积为1:1-1:30;所述纤维与动物血细胞的体积比为1:2-1:20,与固化剂的体积比为1:3-1:30,与溶血剂的体积为1:1-1:30;所述固化剂为质量分数是0.1-2%的甲醛溶液、戊二醛溶液或醋酸溶液中的一种,所述动物血细胞为红细胞、白细胞或血小板中的一种或多种。
2.如权利要求1所述的一种尿液有形成分分析仪用管型质控物的制备方法,其特征在于,对形态改进后的所述初始管型模拟物进行分离提纯,得到管型模拟物,包括:
依次使用孔径为30-50µm和10-20µm的滤膜过滤去除所述形态改进后的所述初始管型模拟物中颗粒,并在500-1500rpm的速度下离心5-10min,得到管型模拟物。
3.如权利要求2所述的一种尿液有形成分分析仪用管型质控物的制备方法,其特征在于,向所述管型模拟物中加入固化剂并保存,得到管型模拟物分散液,包括:
向所述管型模拟物中加入细胞保养液后,加入固化剂固化1-60min,并在500-1500rpm的速度下离心5-10min,将得到的沉淀分散于细胞保养液中,得到管型模拟物分散液,其中,所述管型模拟物与所述细胞保养液的体积比为1:5-1:50;所述管型模拟物与固化剂的体积比为1:5-1:50;所述固化剂为质量分数是0.1-2%的甲醛溶液、戊二醛溶液或醋酸溶液中的一种。
4.如权利要求3所述的一种尿液有形成分分析仪用管型质控物的制备方法,其特征在于,向所述管型模拟物分散液中加入制备剂,得到单项或多项管型质控物,包括:
向所述管型模拟物分散液中加入细胞保养液、红细胞和白细胞的一种或两种,制得单项或多项管型质控物,其中,所述细胞保养液的渗透压为300±40mOsm/kg,pH值为7.3±0.5,包括抗生素0.4-2g/L、多糖0.1-20g/L、牛血清蛋白20-50g/L、氯化钠0.1-10g/L、柠檬酸钠0.1-20g/L和柠檬酸0.001-5g/L。
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