CN111638366A - G-17、pgi、pgii联合检测装置及其制备方法 - Google Patents
G-17、pgi、pgii联合检测装置及其制备方法 Download PDFInfo
- Publication number
- CN111638366A CN111638366A CN202010370096.6A CN202010370096A CN111638366A CN 111638366 A CN111638366 A CN 111638366A CN 202010370096 A CN202010370096 A CN 202010370096A CN 111638366 A CN111638366 A CN 111638366A
- Authority
- CN
- China
- Prior art keywords
- concentration
- pepsinogen
- colloidal gold
- immune
- polyethylene glycol
- Prior art date
- Legal status (The legal status is an assumption and is not a legal conclusion. Google has not performed a legal analysis and makes no representation as to the accuracy of the status listed.)
- Granted
Links
Images
Classifications
-
- G—PHYSICS
- G01—MEASURING; TESTING
- G01N—INVESTIGATING OR ANALYSING MATERIALS BY DETERMINING THEIR CHEMICAL OR PHYSICAL PROPERTIES
- G01N33/00—Investigating or analysing materials by specific methods not covered by groups G01N1/00 - G01N31/00
- G01N33/48—Biological material, e.g. blood, urine; Haemocytometers
- G01N33/50—Chemical analysis of biological material, e.g. blood, urine; Testing involving biospecific ligand binding methods; Immunological testing
- G01N33/53—Immunoassay; Biospecific binding assay; Materials therefor
- G01N33/543—Immunoassay; Biospecific binding assay; Materials therefor with an insoluble carrier for immobilising immunochemicals
- G01N33/54313—Immunoassay; Biospecific binding assay; Materials therefor with an insoluble carrier for immobilising immunochemicals the carrier being characterised by its particulate form
- G01N33/54346—Nanoparticles
-
- G—PHYSICS
- G01—MEASURING; TESTING
- G01N—INVESTIGATING OR ANALYSING MATERIALS BY DETERMINING THEIR CHEMICAL OR PHYSICAL PROPERTIES
- G01N33/00—Investigating or analysing materials by specific methods not covered by groups G01N1/00 - G01N31/00
- G01N33/48—Biological material, e.g. blood, urine; Haemocytometers
- G01N33/50—Chemical analysis of biological material, e.g. blood, urine; Testing involving biospecific ligand binding methods; Immunological testing
- G01N33/53—Immunoassay; Biospecific binding assay; Materials therefor
- G01N33/543—Immunoassay; Biospecific binding assay; Materials therefor with an insoluble carrier for immobilising immunochemicals
- G01N33/54366—Apparatus specially adapted for solid-phase testing
-
- G—PHYSICS
- G01—MEASURING; TESTING
- G01N—INVESTIGATING OR ANALYSING MATERIALS BY DETERMINING THEIR CHEMICAL OR PHYSICAL PROPERTIES
- G01N33/00—Investigating or analysing materials by specific methods not covered by groups G01N1/00 - G01N31/00
- G01N33/48—Biological material, e.g. blood, urine; Haemocytometers
- G01N33/50—Chemical analysis of biological material, e.g. blood, urine; Testing involving biospecific ligand binding methods; Immunological testing
- G01N33/53—Immunoassay; Biospecific binding assay; Materials therefor
- G01N33/543—Immunoassay; Biospecific binding assay; Materials therefor with an insoluble carrier for immobilising immunochemicals
- G01N33/54366—Apparatus specially adapted for solid-phase testing
- G01N33/54386—Analytical elements
- G01N33/54387—Immunochromatographic test strips
-
- G—PHYSICS
- G01—MEASURING; TESTING
- G01N—INVESTIGATING OR ANALYSING MATERIALS BY DETERMINING THEIR CHEMICAL OR PHYSICAL PROPERTIES
- G01N33/00—Investigating or analysing materials by specific methods not covered by groups G01N1/00 - G01N31/00
- G01N33/48—Biological material, e.g. blood, urine; Haemocytometers
- G01N33/50—Chemical analysis of biological material, e.g. blood, urine; Testing involving biospecific ligand binding methods; Immunological testing
- G01N33/53—Immunoassay; Biospecific binding assay; Materials therefor
- G01N33/558—Immunoassay; Biospecific binding assay; Materials therefor using diffusion or migration of antigen or antibody
-
- G—PHYSICS
- G01—MEASURING; TESTING
- G01N—INVESTIGATING OR ANALYSING MATERIALS BY DETERMINING THEIR CHEMICAL OR PHYSICAL PROPERTIES
- G01N33/00—Investigating or analysing materials by specific methods not covered by groups G01N1/00 - G01N31/00
- G01N33/48—Biological material, e.g. blood, urine; Haemocytometers
- G01N33/50—Chemical analysis of biological material, e.g. blood, urine; Testing involving biospecific ligand binding methods; Immunological testing
- G01N33/53—Immunoassay; Biospecific binding assay; Materials therefor
- G01N33/573—Immunoassay; Biospecific binding assay; Materials therefor for enzymes or isoenzymes
-
- G—PHYSICS
- G01—MEASURING; TESTING
- G01N—INVESTIGATING OR ANALYSING MATERIALS BY DETERMINING THEIR CHEMICAL OR PHYSICAL PROPERTIES
- G01N33/00—Investigating or analysing materials by specific methods not covered by groups G01N1/00 - G01N31/00
- G01N33/48—Biological material, e.g. blood, urine; Haemocytometers
- G01N33/50—Chemical analysis of biological material, e.g. blood, urine; Testing involving biospecific ligand binding methods; Immunological testing
- G01N33/53—Immunoassay; Biospecific binding assay; Materials therefor
- G01N33/574—Immunoassay; Biospecific binding assay; Materials therefor for cancer
- G01N33/57407—Specifically defined cancers
- G01N33/57446—Specifically defined cancers of stomach or intestine
-
- G—PHYSICS
- G01—MEASURING; TESTING
- G01N—INVESTIGATING OR ANALYSING MATERIALS BY DETERMINING THEIR CHEMICAL OR PHYSICAL PROPERTIES
- G01N33/00—Investigating or analysing materials by specific methods not covered by groups G01N1/00 - G01N31/00
- G01N33/48—Biological material, e.g. blood, urine; Haemocytometers
- G01N33/50—Chemical analysis of biological material, e.g. blood, urine; Testing involving biospecific ligand binding methods; Immunological testing
- G01N33/53—Immunoassay; Biospecific binding assay; Materials therefor
- G01N33/574—Immunoassay; Biospecific binding assay; Materials therefor for cancer
- G01N33/57484—Immunoassay; Biospecific binding assay; Materials therefor for cancer involving compounds serving as markers for tumor, cancer, neoplasia, e.g. cellular determinants, receptors, heat shock/stress proteins, A-protein, oligosaccharides, metabolites
-
- G—PHYSICS
- G01—MEASURING; TESTING
- G01N—INVESTIGATING OR ANALYSING MATERIALS BY DETERMINING THEIR CHEMICAL OR PHYSICAL PROPERTIES
- G01N33/00—Investigating or analysing materials by specific methods not covered by groups G01N1/00 - G01N31/00
- G01N33/48—Biological material, e.g. blood, urine; Haemocytometers
- G01N33/50—Chemical analysis of biological material, e.g. blood, urine; Testing involving biospecific ligand binding methods; Immunological testing
- G01N33/58—Chemical analysis of biological material, e.g. blood, urine; Testing involving biospecific ligand binding methods; Immunological testing involving labelled substances
- G01N33/585—Chemical analysis of biological material, e.g. blood, urine; Testing involving biospecific ligand binding methods; Immunological testing involving labelled substances with a particulate label, e.g. coloured latex
- G01N33/587—Nanoparticles
-
- G—PHYSICS
- G01—MEASURING; TESTING
- G01N—INVESTIGATING OR ANALYSING MATERIALS BY DETERMINING THEIR CHEMICAL OR PHYSICAL PROPERTIES
- G01N33/00—Investigating or analysing materials by specific methods not covered by groups G01N1/00 - G01N31/00
- G01N33/48—Biological material, e.g. blood, urine; Haemocytometers
- G01N33/50—Chemical analysis of biological material, e.g. blood, urine; Testing involving biospecific ligand binding methods; Immunological testing
- G01N33/74—Chemical analysis of biological material, e.g. blood, urine; Testing involving biospecific ligand binding methods; Immunological testing involving hormones or other non-cytokine intercellular protein regulatory factors such as growth factors, including receptors to hormones and growth factors
-
- C—CHEMISTRY; METALLURGY
- C07—ORGANIC CHEMISTRY
- C07K—PEPTIDES
- C07K16/00—Immunoglobulins [IGs], e.g. monoclonal or polyclonal antibodies
- C07K16/18—Immunoglobulins [IGs], e.g. monoclonal or polyclonal antibodies against material from animals or humans
- C07K16/26—Immunoglobulins [IGs], e.g. monoclonal or polyclonal antibodies against material from animals or humans against hormones ; against hormone releasing or inhibiting factors
-
- C—CHEMISTRY; METALLURGY
- C07—ORGANIC CHEMISTRY
- C07K—PEPTIDES
- C07K16/00—Immunoglobulins [IGs], e.g. monoclonal or polyclonal antibodies
- C07K16/40—Immunoglobulins [IGs], e.g. monoclonal or polyclonal antibodies against enzymes
-
- G—PHYSICS
- G01—MEASURING; TESTING
- G01N—INVESTIGATING OR ANALYSING MATERIALS BY DETERMINING THEIR CHEMICAL OR PHYSICAL PROPERTIES
- G01N2333/00—Assays involving biological materials from specific organisms or of a specific nature
- G01N2333/435—Assays involving biological materials from specific organisms or of a specific nature from animals; from humans
- G01N2333/575—Hormones
- G01N2333/595—Gastrins; Cholecystokinins [CCK]
-
- G—PHYSICS
- G01—MEASURING; TESTING
- G01N—INVESTIGATING OR ANALYSING MATERIALS BY DETERMINING THEIR CHEMICAL OR PHYSICAL PROPERTIES
- G01N2333/00—Assays involving biological materials from specific organisms or of a specific nature
- G01N2333/90—Enzymes; Proenzymes
- G01N2333/914—Hydrolases (3)
- G01N2333/948—Hydrolases (3) acting on peptide bonds (3.4)
- G01N2333/95—Proteinases, i.e. endopeptidases (3.4.21-3.4.99)
- G01N2333/964—Proteinases, i.e. endopeptidases (3.4.21-3.4.99) derived from animal tissue
- G01N2333/96425—Proteinases, i.e. endopeptidases (3.4.21-3.4.99) derived from animal tissue from mammals
- G01N2333/96427—Proteinases, i.e. endopeptidases (3.4.21-3.4.99) derived from animal tissue from mammals in general
- G01N2333/9643—Proteinases, i.e. endopeptidases (3.4.21-3.4.99) derived from animal tissue from mammals in general with EC number
- G01N2333/96472—Aspartic endopeptidases (3.4.23)
- G01N2333/96475—Aspartic endopeptidases (3.4.23) with definite EC number
- G01N2333/96477—Pepsin (3.4.23.1; 3.4.23.2; 3.4.23.3)
-
- G—PHYSICS
- G01—MEASURING; TESTING
- G01N—INVESTIGATING OR ANALYSING MATERIALS BY DETERMINING THEIR CHEMICAL OR PHYSICAL PROPERTIES
- G01N2800/00—Detection or diagnosis of diseases
- G01N2800/60—Complex ways of combining multiple protein biomarkers for diagnosis
Landscapes
- Health & Medical Sciences (AREA)
- Life Sciences & Earth Sciences (AREA)
- Immunology (AREA)
- Engineering & Computer Science (AREA)
- Chemical & Material Sciences (AREA)
- Molecular Biology (AREA)
- Urology & Nephrology (AREA)
- Biomedical Technology (AREA)
- Hematology (AREA)
- Cell Biology (AREA)
- Medicinal Chemistry (AREA)
- Biochemistry (AREA)
- General Health & Medical Sciences (AREA)
- General Physics & Mathematics (AREA)
- Physics & Mathematics (AREA)
- Analytical Chemistry (AREA)
- Food Science & Technology (AREA)
- Biotechnology (AREA)
- Microbiology (AREA)
- Pathology (AREA)
- Nanotechnology (AREA)
- Endocrinology (AREA)
- Hospice & Palliative Care (AREA)
- Oncology (AREA)
- Organic Chemistry (AREA)
- Investigating Or Analysing Biological Materials (AREA)
- Peptides Or Proteins (AREA)
- Biophysics (AREA)
- Genetics & Genomics (AREA)
- Proteomics, Peptides & Aminoacids (AREA)
Abstract
本发明涉及一种G‑17、PGI、PGII联合检测装置及其制备方法,属于医疗检测设备领域。由固相有高特异性胃泌素17、胃蛋白酶原I、胃蛋白酶原II抗体和羊抗鼠IgG多克隆抗体的硝酸纤维素膜、吸附有胶体金标记胃泌素17、胃蛋白酶原I、胃蛋白酶原II抗体的玻璃纤维膜、样品垫、吸水纸等其它辅料粘贴制成。在保证免疫胶体金释放完全的基础上,有效的提高了反应的灵敏度,同样的阈值下,还可降低免疫胶体金的用量,节约成本,既能同时检测标本中胃泌素17、胃蛋白酶原I、胃蛋白酶原II三种胃功能、胃癌风险标志物,又没有增加生产操作的复杂度。检测试纸灵敏度高、特异性强、操作简便省时、实用性强。
Description
技术领域
本发明涉及医疗检测设备领域,特别涉及一种胃泌素17、胃蛋白酶I、胃蛋白酶II联合检测装置及其制备方法,利用胶体金免疫层析技术以及双抗体夹心法原理定量检测全血、血清、血浆标本中人胃泌素17(G-17)、胃蛋白酶原I(PGI)、胃蛋白酶原II(PGII)的检测装置及其制备方法,可实现胃癌风险标志物的灵敏、特异、快速检测。
背景技术
胃黏膜病变是由多种因素导致,包括药物、酒精、胃酸分泌异常、幽门螺杆菌感染等,其中幽门螺杆菌感染是主要因素;胃黏膜发生损伤后,其功能也会发生变化;胃癌是一组多因素参与的渐进性上皮细胞恶性病变,多由慢性萎缩性胃炎逐步发展而成,约7%的慢性萎缩性胃炎最终进展为原位癌。细胞异常增生和HP感染均可加速萎缩性胃炎的发展速度。我国属于胃癌高发区,每年死于胃癌的居民≥20万。通过根治术联合放化疗虽然可提高胃癌患者五年生存率,但对降低死亡率效果不明显;有研究证明,早期筛查是降低胃癌发病率和死亡率的关键。
胃泌素(gastrin,GAS)是由胃窦及十二指肠和空肠上段粘膜的G细胞分泌的一类胃肠道激素。Edkins于1905年首次在犬的胃窦中发现,后被人们熟知。人血清中的胃泌素主要包括两种异构体:胃泌素-17(gastrin-17,G-17)和胃泌素-34(gastrin-34,G-34),其中胃泌素-17占85%-90%。所以人们通常选择胃泌素-17来代表血清胃泌素水平。生理状态下,胃泌素的主要通过影响胃酸的分泌来发挥作用,一方面,胃泌素可以直接刺激壁细胞分泌胃酸,胃酸将胃蛋白酶原激活为有活性的胃蛋白酶,从而分解蛋白质,同时这些分解产物又会反过来刺激胃泌素的分泌;另一方面,胃泌素也可以作用于肠嗜铬样细胞上的缩胆囊受体,促进肠嗜铬样细胞分泌组胺,进而通过组胺刺激壁细胞分泌胃酸。胃泌素在影响胃酸分泌的同时,也可以使食管下段括约肌的张力降低。最近的一些研究指出胃泌素可以作为胃粘膜功能的标志物:在慢性萎缩性胃炎中的胃泌素-17水平明显高于正常粘膜,也有人认为胃泌素-17的血清水平可能比血清总胃泌素更能准确地反映胃窦萎缩的严重程度。
胃蛋白酶原(pspsinogen,PG)是由胃粘膜中的主细胞分泌的一种蛋白质多肽链。人类的胃蛋白酶原主要分为两种生物化学和免疫学上不同的同工酶(PGI和PGII)。胃蛋白酶原I由胃腺主细胞和颈细胞分,胃蛋白酶原II还可以由贲门腺、幽门腺和近端十二指肠腺分泌。胃蛋白酶原本身并不具有生物活性,可以在胃酸的作用下活化为具有消化功能的胃蛋白酶,从而将机体摄入的蛋白质分解成易吸收的小分子肽类和氨基酸等。绝大多数的胃蛋白酶原被分泌到胃腔当中,仅有少部分可以被吸收入血。我们通常检测血清中的胃蛋白酶原来代表人体的胃蛋白酶水平。据报道,血清中的胃蛋白酶原I和胃蛋白酶原II水平可以准确反映胃粘膜功能和组织学状态。因此,血清胃蛋白酶原又被称为“血清学活检”。通过血清胃蛋白酶原I和胃蛋白酶原II检测结合精细的内窥镜检查可以有效的识别胃部疾病,尤其是可以发现早期的胃粘膜病变。已有的研究表明血清胃蛋白酶原I和胃蛋白酶原II水平在糜烂性胃炎,萎缩性胃炎,胃溃疡,胃癌和其他胃病中存在显著异常,并可以为以上这些疾病提供有价值的筛查方法。
目前,临床仍缺乏统一的早期胃癌筛查方法。肿瘤标志物及相关蛋白检测可有效反应细胞异常增生,适用于癌症早期筛查和术后随访。消化道造影和胸部透视主要用于观察胃溃疡和中晚期胃癌,但对于原位癌的敏感度和准确性较低;胃镜下活检属于创伤性操作且禁忌症较多,开展难度大。胃泌素17、胃蛋白酶原I、胃蛋白酶原II是胃黏膜组织分泌的消化酶,胃底、胃窦等胃黏膜部位病变均可导致其水平改变。胃泌素17、胃蛋白酶原Ⅰ、Ⅱ联合检测应用于早期胃癌筛查中效果显著,可有效提高胃癌确诊率,值得临床应用和推广。
胶体金免疫层析技术(gold immunochromatography assay,GICA)是一种将胶体金标记技术和蛋白质层析技术结合的以微孔滤膜为载体的固相膜免疫分析技术。胶体金免疫层析技术是一种常用的免疫层析检测方法,由于其操作简单、省时、制造成本较低、结果易判读等特点,非常适合于现场检测,广泛用于生物、医药、食品等领域。由于胶体金免疫层析技术是一步完成检测,因此检测过程的干扰因素较多,其灵敏度低是限制胶体金免疫层析应用范围的主要因素,传统的胶体金免疫层析技术的检测限高于ELISA等方法。
在胶体金免疫层析检测中,蛋白质固着于硝酸纤维素膜(NC膜)作为待测样本的捕获试剂。由于检测结果完全取决于捕获试剂在膜上达到良好的吸附效果,因此蛋白质在膜上均一、良好的吸附对胶体金检测结果非常重要。如果NC膜上结合的蛋白量不足或者蛋白结合力不够强,就会出现相当多的问题,在检测结果的检测线上非常明显。如果膜上结合的蛋白量太低,那么在结果中检测线显色较弱而且检测灵敏度降低。如果蛋白不能牢固的吸附于NC膜,那么在蛋白吸附于NC膜以前发生扩散,从而导致检测线较宽、显色较弱而不是鲜艳而清晰,使检测结果难以解释。在极端条件下,如果蛋白与NC膜的物理吸附作用太弱,流过的蛋白检测物和表面活性剂溶液可能将固着的蛋白从NC膜上洗掉,从而显示较宽或者根本不清晰的检测线,难以解释检测结果。
发明内容
本发明提供一种G-17、PGI、PGII联合检测装置及其制备方法,以解决现有技术存在的NC膜吸附蛋白量不足、结合力不强的问题。本发明制备的人胃泌素17、胃蛋白酶原I和胃蛋白酶原II三合一联合检测装置,可实现胃癌风险标志物的灵敏、特异、快速检测,提高了对胃部疾病患者进行胃癌风险的合理综合判定,能够快速、准确进行胃癌早期预警及病情风险判断。
本发明采取的技术方案是:样品垫1、免疫胶体金玻璃纤维膜2、免疫硝酸纤维素膜3、吸收垫4分别粘贴在塑料板5,所述免疫硝酸纤维素膜3的两端分别与吸收垫4、免疫胶体金玻璃纤维膜2搭接,所述免疫胶体金玻璃纤维膜2的另一端与样品垫1搭接;所述免疫硝酸纤维素膜3上设置第一检测线T1、第二检测线T2、第三检测线T3和质控线C;所述的第一检测线T1上固相有高特异性胃泌素17抗体;所述的第二检测线T2上固相有高特异性胃蛋白酶原I抗体;所述的第三检测线T3上固相有高特异性胃蛋白酶原II抗体;所述免疫硝酸纤维素膜3上设置的检测线T1、T2、T3可以纵向排列在同一条免疫硝酸纤维素膜3上,形成一个联合检测装置;所述免疫硝酸纤维素膜3上设置的检测线T1、T2、T3也可以分别设置在三条免疫硝酸纤维素膜3上,并列排列形成一个联合检测装置;所述的质控线C上喷点羊抗鼠IgG多克隆抗体。
一种G-17、PGI、PGII联合检测装置的制备方法,包括下列步骤:
(a)采用柠檬酸三钠还原法制备胶体金;
(b)采用步骤(a)中制得的胶体金标记胃泌素17、胃蛋白酶原I和胃蛋白酶原II抗体,获得免疫胶体金;
(c)采用喷金缓冲液稀释步骤(b)的免疫胶体金获得免疫胶体金溶液,用免疫胶体金溶液喷涂于玻璃纤维垫,制得免疫胶体金玻璃纤维膜;
(d)将硝酸纤维素膜用聚乙二醇丙三醇处理液预处理后,喷点与油酸修饰的硫化锌纳米颗粒结合的胃泌素17、胃蛋白酶原I和胃蛋白酶原II抗体作为检测线,喷点羊抗鼠IgG抗体作为质控线,制得免疫硝酸纤维素膜;
(e)将预处理的样品垫、步骤(c)制备的免疫胶体金玻璃纤维膜、步骤(d)制备的免疫硝酸纤维素膜、吸水纸依次粘贴在胶板上,切裁制得检测试剂条,最后将检测试剂条装入塑料外壳。
本发明步骤(a)所述的采用柠檬酸三钠还原法制备的胶体金颗粒粒径为20~60nm。
本发明步骤(c)所述的喷金缓冲液由Tris-HCL液、蔗糖、海藻糖、牛血清白蛋白BSA组成,pH值8.5,其中Tris-Hcl浓度为0.02mol/L,蔗糖浓度为5~20%,海藻糖浓度为1~5%,牛血清白蛋白BSA浓度为0.5~1%。
本发明步骤(d)所述的将硝酸纤维素膜用聚乙二醇丙三醇处理液预处理是:用聚乙二醇丙三醇处理液浸泡硝酸纤维素膜1h,并慢速振荡摇晃,取出后用蒸馏水清洗3遍,最后在真空干燥箱中干燥。
本发明步骤(d)所述的硫化锌纳米颗粒分别结合胃泌素17、胃蛋白酶原I和胃蛋白酶原II抗体是:以油酸修饰的ZnS作为载体,取1mL胃泌素17、胃蛋白酶原I和胃蛋白酶原II抗体溶液,搅拌1小时后,分别以12000rpm,8500rpm和7000rpm离心10分钟收集,去离子水各洗2遍。
本发明步骤(d)所述的聚乙二醇丙三醇处理液由聚乙二醇丙三醇稀释到浓度为0.5%组成,经0.22μm滤膜过滤,备用。
本发明步骤(d)所述的聚乙二醇丙三醇处理液由聚乙二醇丙三醇和多聚赖氨酸(SIGMA,150KD~300KD)混合组成,其中聚乙二醇丙三醇浓度为0.5%,多聚赖氨酸浓度为0.5%组成,经0.22μm滤膜过滤,备用。
本发明步骤(d)所述的聚乙二醇丙三醇处理液由聚乙二醇丙三醇、多聚赖氨酸(SIGMA,150KD~300KD)、PEG20000混合组成,其中聚乙二醇丙三醇浓度为0.5%,多聚赖氨酸浓度为0.5%组成,PEG20000浓度为0.1%,经0.22μm滤膜过滤,备用。
本发明步骤(d)所述的油酸修饰的硫化锌纳米颗粒制备方法:取油酸无水乙醇溶液15ml加入到15ml浓度为0.3mol/L的醋酸锌水溶液中,40℃水浴搅拌,用氨水调节pH值,再加入15ml浓度为0.3mol/L的硫化钠水溶液,反应5min后,加入5ml SDS水溶液,待混合均匀后,将该反应液倒入90ml水热釜中。水热釜密闭后放入恒温干燥箱内,在一定温度下恒温反应一定时间。待反应结束,降温至50℃,取出产物。用丙酮,去离子水,乙醇洗涤,离心分离,在50℃下真空干燥2h得到粉体ZnS,存放待用。
本发明步骤(e)所述的预处理的样品垫采用的样品垫处理液由Tris-HCL液、牛血清白蛋白BSA、酪蛋白、表面活性剂(烷基酚聚氧乙烯醚)组成,其中Tris-HCL液浓度为0.1mol/L,牛血清白蛋白BSA浓度为0.5~1%,酪蛋白浓度为0.1~0.2%、表面活性剂浓度为0.5~1%。
乙二醇与环氧氯丙烷用碱催化其反应,产物用稀盐酸中和,四氯化碳萃取,减压蒸馏,得到聚乙二醇丙三醇(PEGG),为淡黄色粘稠物。PEGG能与水以任意比例混溶,也能溶于一般的有机溶剂如乙醇、丙酮、四氢呋喃、氯仿,有一定的表面活性。聚乙二醇丙三醇的结构中含有多个羟基可供偶联,活化过程简单,方便NC膜表面固定蛋白。常规条件下,单位面积的NC膜上结合抗体的数量是有限的,采用聚乙二醇丙三醇处理之后,可以让单位面积的NC膜上结合抗体数量增加,进而可以实现更高的检测灵敏度。
在改善NC膜对蛋白吸附基础上,探讨蛋白对NC膜吸附效果也是提高胶体金灵敏度的另一途径。油酸/十二烷基硫酸钠修饰的ZnS不仅具有纳米级的粒径尺寸、且具有良好的水溶性与生物相容性,利用其外表面的功能性基团,在水介质中均匀分散,可与生物大分子相结合。硫化锌纳米颗粒具有较好的稳定性、易于制备、生物相容性较好及较低的免疫原性等优势,在生物医学领域研究较为广泛。但在胶体金免疫层析技术中尚未有报道应用。本研究探讨了硫化锌纳米颗粒对NC膜包被抗体的影响,先将划膜用的抗体先与硫化锌纳米颗粒结合,封闭,离心纯化,去掉未结合的抗体,然后复溶到一定比例,然后划膜,这样一个硫化锌粒子可以结合多个抗体,从而增加了包被抗体效率,灵敏度也会大大提高。
为了提高胶体金免疫层析技术的灵敏度,我们通过对硝酸纤维素膜用聚乙二醇丙三醇处理液进行了预处理,将包被NC的抗体与硫化锌纳米颗粒结合,达到了提高试纸灵敏度的目的。
本发明的有益效果在于:
1、本发明的检测装置结构简单,构思新颖,将胃泌素17、胃蛋白酶原I和胃蛋白酶原II抗体包被于硝酸纤维膜膜上,特异性强,既能同时检测标本中胃泌素17、胃蛋白酶原I和胃蛋白酶原II,又没有增加生产操作的复杂度。
2、免疫胶体金制备步骤中,通过配合合适的喷金缓冲液和样品垫处理液,可保证免疫胶体金释放完全的基础上,有效的提高了反应的灵敏度,同样的阈值下,还可降低免疫胶体金的用量,节约成本。
3、本发明对硝酸纤维素膜进行预处理,对包被硝酸纤维素膜的抗体进行了修饰,提高了检测试纸灵敏度、特异性。
4、本发明的检测装置不需要任何特殊仪器设备,检测成本低。
5、本发明的检测装置操作简便,不需要专业人员操作。实用性强。
附图说明
图1是本发明的结构示意图,图中免疫硝酸纤维素膜上设置的检测线T1、T2、T3纵向排列在同一条免疫硝酸纤维素膜上;
图2是图1的A-A剖视图;
图3是本发明的另一种结构示意图,图中检测线T1、T2、T3分别设置在三条免疫硝酸纤维素膜上,并列排列形成一个联合检测装置;
图4是图3的B-B剖视图;
图5是图3的C-C剖视图;
图6是图3的D-D剖视图。
具体实施方式
实施例1
样品垫1、免疫胶体金玻璃纤维膜2、免疫硝酸纤维素膜3、吸收垫4分别粘贴在塑料板5,所述免疫硝酸纤维素膜3的两端分别与吸收垫4、免疫胶体金玻璃纤维膜2搭接,所述免疫胶体金玻璃纤维膜2的另一端与样品垫1搭接;所述免疫硝酸纤维素膜3上设置第一检测线T1、第二检测线T2、第三检测线T3和质控线C;所述的第一检测线T1上固相有高特异性胃泌素17抗体;所述的第二检测线T2上固相有高特异性胃蛋白酶原I抗体;所述的第三检测线T3上固相有高特异性胃蛋白酶原II抗体;如图1、2所示,所述免疫硝酸纤维素膜3上设置的检测线T1、T2、T3可以纵向排列在同一条免疫硝酸纤维素膜3上,形成一个联合检测装置;如图3、4、5、6所示,所述免疫硝酸纤维素膜3上设置的检测线T1、T2、T3也可以分别设置在三条免疫硝酸纤维素膜3上,并列排列形成一个联合检测装置;所述的质控线C上喷点羊抗鼠IgG多克隆抗体。
本发明的G-17、PGI、PGII联合检测装置的制备方法,包括固相有纯化的高特异性胃泌素17、胃蛋白酶原I和胃蛋白酶原II抗体(检测线T1、T2、T3)和羊抗鼠IgG多克隆抗体(对照线)的硝酸纤维素膜、吸附有胶体金标记胃泌素17、胃蛋白酶原I和胃蛋白酶原II抗体的玻璃纤维膜、样品垫、吸水纸等其它辅料因此粘贴制成,具体如下:
(a)采用柠檬酸三钠还原法制备胶体金
在加热的100ml纯化水中快速加入氯化金,待溶液再次沸腾后,迅速加入柠檬酸三钠,氯化金:柠檬酸三钠1:0.5,继续煮沸,观察溶液颜色由黄色变黑再变紫,最后变成稳定的酒红色后,计时继续加热10分钟即可,胶体金颗粒为20nm;
(b)免疫胶体金制备
1)分别取100毫升20nm胶体金溶液,加入pH调节剂140μl,混匀;静置5min;
2)在20nm胶体金溶液中,按照每毫升胶体金溶液14μg的比例分别加入胃泌素17、胃蛋白酶原I和胃蛋白酶原II,共1.4mg,混匀;静置5min;
3)分别按照0.4%的比例加入胶体金稳定剂0.4毫升,混匀,静置5分钟;
4)10000、12000、14000rpm离心10min,分别收集沉淀,合并三次收集的沉淀;
(c)采用优化的喷金缓冲液稀释免疫胶体金获得免疫胶体金溶液,用免疫胶体金溶液喷涂于玻璃纤维垫,制得免疫胶体玻璃纤维膜;所述的喷金缓冲液包括:浓度为20mMTris-HCL液、蔗糖浓度为5%、海藻糖浓度为1%、BSA浓度为0.5%,pH为8.5;
(d)固相硝酸纤维素膜
1)聚乙二醇丙三醇处理液预处理硝酸纤维素膜
配制聚乙二醇丙三醇处理液:聚乙二醇丙三醇浓度为0.5%,经0.22μm滤膜过滤,备用;
聚乙二醇丙三醇处理液预处理硝酸纤维素膜:将硝酸纤维素膜放入聚乙二醇丙三醇处理液中浸泡1h,并慢速振荡摇晃,取出后用蒸馏水清洗3遍,最后在真空干燥箱中干燥;
2)硫化锌纳米颗粒修饰胃泌素17、胃蛋白酶原I和胃蛋白酶原II抗体
油酸修饰的硫化锌纳米颗粒制备:取油酸无水乙醇溶液15ml加入到15ml浓度为0.3mol/L的醋酸锌水溶液中,40℃水浴搅拌,用氨水调节pH值,再加入15ml浓度为0.3mol/L的硫化钠水溶液,反应5min后,加入5ml SDS水溶液,待混合均匀后,将该反应液倒入90ml水热釜中。水热釜密闭后放入恒温干燥箱内,在一定温度下恒温反应一定时间。待反应结束,降温至50℃,取出产物。用丙酮,去离子水,乙醇洗涤,离心分离,在50℃下真空干燥2h得到粉体ZnS,存放待用。
硫化锌纳米颗粒修饰胃泌素17、胃蛋白酶原I和胃蛋白酶原II抗体:
以油酸修饰的ZnS作为载体,取1mL胃泌素17、胃蛋白酶原I和胃蛋白酶原II抗体溶液,搅拌1小时后,分别以12000rpm,8500rpm和7000rpm离心10分钟收集,去离子水各洗2遍。
3)硝酸纤维素膜检测线与质控线抗体的包被
当喷膜量为1.4μl/cm,将硫化锌纳米颗粒-胃泌素17抗体、硫化锌纳米颗粒-胃蛋白酶原I抗体、硫化锌纳米颗粒-胃蛋白酶原II抗体稀释至1.5mg/ml,质控线羊抗鼠IgG抗体稀释至1mg/ml,分别包被硝酸纤维素膜的检测线与质控线,室温干燥过夜,储存备用;
4)样品垫预处理
将玻璃纤维用样品垫处理液浸泡10min,该样品垫处理液包括:Tris-HCL液浓度为0.1M、牛血清白蛋白BSA浓度为0.5%、酪蛋白浓度为0.1%、表面活性剂浓度为0.5%,37℃烘干备用,经处理后样品垫可提高反应灵敏度;
e、组装
将预处理的样品垫、免疫胶体金玻璃纤维膜、免疫硝酸纤维素膜、吸水纸依次粘贴在胶板上,切裁制得检测试剂条,最后将检测试剂条装入塑料外壳。
f、定量检测:通过胶体金检测仪检测,本联合检测装置检测人胃泌素17最低检测浓度为0.5pg/ml、胃蛋白酶原I最低检测浓度为5ng/ml、胃蛋白酶原II最低检测浓度为5ng/ml。
实施例2:
制备胶体金颗粒为40nm;
喷金缓冲液包括:浓度为20mM Tris-HCL液、蔗糖浓度为12%、海藻糖浓度为3%、BSA浓度为0.7%,pH为8.5;
配制聚乙二醇丙三醇处理液:由聚乙二醇丙三醇和多聚赖氨酸(SIGMA,150KD)混合组成,其中聚乙二醇丙三醇浓度为0.5%,多聚赖氨酸浓度为0.5%,经0.22μm滤膜过滤,备用;
样品垫处理液包括:Tris-HCL液浓度为0.1M、牛血清白蛋白BSA浓度为0.7%、酪蛋白浓度为0.15%、表面活性剂浓度为0.7%;
其余同实施例1。
实施例3:
制备胶体金颗粒为60nm;
喷金缓冲液包括:浓度为20mM Tris-HCL液、蔗糖浓度为20%、海藻糖浓度为5%、BSA浓度为1%,pH为8.5;
配制聚乙二醇丙三醇处理液:由聚乙二醇丙三醇、多聚赖氨酸(SIGMA,150KD)与PEG2000混合组成,其中聚乙二醇丙三醇浓度为0.5%,多聚赖氨酸浓度为0.5%,PEG20000浓度为0.1%,经0.22μm滤膜过滤,备用。
样品垫处理液包括:Tris-HCL液浓度为0.1M、牛血清白蛋白BSA浓度为1%、酪蛋白浓度为0.2%、表面活性剂浓度为1%;
其余同实施例1。
下边通过实验来进一步说明本发明的效果。
实验例1:
1、聚乙二醇丙三醇处理液对硝酸纤维素膜蛋白吸附能力的比较
1.1材料与方法
1.1材料:硝酸纤维素膜,孔径4.5um,购自美国通用电气公司
1.2硝酸纤维素膜处理方法
1.2.1配制聚乙二醇丙三醇处理液
配制三种聚乙二醇丙三醇处理液:聚乙二醇丙三醇组,聚乙二醇丙三醇浓度为0.5%组成;聚乙二醇丙三醇处理液多聚赖氨酸组,聚乙二醇丙三醇浓度为0.5%,多聚赖氨酸浓度为0.5%;聚乙二醇丙三醇、多聚赖氨酸和PEG20000组,,其中聚乙二醇丙三醇浓度为0.5%,多聚赖氨酸浓度为0.5%,PEG20000浓度为0.1%,三组处理液均经0.22μm滤膜过滤,备用。
1.2.2硝酸纤维素膜处理方法
将硝酸纤维素膜放入聚乙二醇丙三醇处理液中浸泡1h,并慢速振荡摇晃,取出后用蒸馏水清洗3遍,最后在真空干燥箱中干燥。
1.3实验方法
分别将未处理和已处理过的硝酸纤维素膜按照上述实施例工艺流程制备胃泌素17、胃蛋白酶原I和胃蛋白酶原II联合检测试纸,测试流程参照试纸说明书,比较硝酸纤维素膜未处理和处理后吸附力和稳定性指标差异。
1.4结果
1.4.1蛋白吸附力比较
取3组处理组和未处理组试纸,分别加入待检样品,通过观察显色情况判断处理后膜对蛋白吸附能力,结果见表1。结果显示,处理后的硝酸纤维素膜在溶液浸润性方面要明显优于未处理膜,处理后膜阳性条带颜色略深,尤其在浓度较低时,提高了反应的灵敏度,表明蛋白吸附能力明显增强,提高了反应灵敏度。聚乙二醇丙三醇-多聚赖氨酸-PEG20000处理组吸附效果明显优于聚乙二醇丙三醇组和聚乙二醇丙三醇-多聚赖氨酸组。
表1硝酸纤维素膜吸附能力比较
1.4.2硝酸纤维素膜稳定性比较
取3组处理组和未处理组试纸,通过37℃加速实验观察显色情况来判断处理后硝酸纤维素膜上吸附蛋白的稳定性,结果见表2。表2结果与表1结果比较发现,处理后硝酸纤维素膜颜色变化与10天前基本一致,稳定性好。
表2硝酸纤维素膜加速稳定性比较(37℃放置10天)
实验例2:
2、油酸修饰的硫化锌纳米颗粒修饰胃泌素17、胃蛋白酶原I和胃蛋白酶原II抗体
2.1材料与方法
2.1.1材料:硝酸纤维素膜,孔径4.5um,购自美国通用电气公司
2.1.2油酸修饰的硫化锌纳米颗粒制备
取油酸无水乙醇溶液15ml加入到15ml浓度为0.3mol/L的醋酸锌水溶液中,40℃水浴搅拌,用氨水调节pH值,再加入15ml浓度为0.3mol/L的硫化钠水溶液,反应5min后,加入5ml SDS水溶液,待混合均匀后,将该反应液倒入90ml水热釜中。水热釜密闭后放入恒温干燥箱内,在一定温度下恒温反应一定时间。待反应结束,降温至50℃,取出产物。用丙酮,去离子水,乙醇洗涤,离心分离,在50℃下真空干燥2h得到粉体ZnS,存放待用。
2.1.3硫化锌纳米颗粒修饰胃泌素17、胃蛋白酶原I和胃蛋白酶原II抗体
以油酸修饰的ZnS作为载体,取1mL胃泌素17、胃蛋白酶原I和胃蛋白酶原II抗体溶液,搅拌1小时后,分别以12000rpm,8500rpm和7000rpm离心10分钟收集,去离子水各洗2遍。
2.2实验方法
分别将硫化锌纳米颗粒修饰的胃泌素17、胃蛋白酶原I和胃蛋白酶原II抗体与未修饰的胃泌素17、胃蛋白酶原I和胃蛋白酶原II抗体按照上述实施例工艺流程制备胃泌素17、胃蛋白酶原I和胃蛋白酶原II联合检测试纸,测试流程参照试纸说明书,比较硫化锌纳米颗粒处理和未处理对蛋白吸附力和稳定性指标差异。
2.3结果
2.3.1蛋白吸附力比较
取硫化锌纳米颗粒处理组和未处理组试纸,分别加入待检样品,通过观察显色情况判断处理后膜对蛋白吸附能力,结果见表3。结果显示,硫化锌纳米颗粒修饰组膜阳性条带颜色略深,尤其在浓度较低时,提高了反应的灵敏度,表明蛋白吸附能力明显增强,提高了反应灵敏度。
表3硫化锌纳米颗粒修饰对蛋白吸附能力比较
2.3.2稳定性比较
取硫化锌纳米颗粒处理组和未处理组试纸,通过37℃加速实验观察显色情况来判断硫化锌修饰后硝酸纤维素膜上吸附蛋白的稳定性,结果见表4。表4结果与表3结果比较发现,处理后硝酸纤维素膜颜色变化与10天前基本一致,稳定性好。
表4加速稳定性比较(37℃放置10天)
以上所述仅为本发明的优选实例而已,并不用于限制本发明,对于本领域的技术人员来说,本发明可以有各种更改和变化。凡对本发明所作的任何修改、等同替换、改进等,均应包含在本发明的保护范围之内。
Claims (10)
1.一种G-17、PGI、PGII联合检测装置,其特征在于:样品垫(1)、免疫胶体金玻璃纤维膜(2)、免疫硝酸纤维素膜(3)、吸收垫(4)分别粘贴在塑料板(5),所述免疫硝酸纤维素膜(3)的两端分别与吸收垫(4)、免疫胶体金玻璃纤维膜(2)搭接,所述免疫胶体金玻璃纤维膜(2)的另一端与样品垫(1)搭接;所述免疫硝酸纤维素膜(3)上设置第一检测线(T1)、第二检测线(T2)、第三检测线(T3)和质控线(C);所述的第一检测线(T1)上固相有高特异性胃泌素17抗体;所述的第二检测线(T2)上固相有高特异性胃蛋白酶原I抗体;所述的第三检测线(T3)上固相有高特异性胃蛋白酶原II抗体;所述免疫硝酸纤维素膜(3)上设置的检测线T1、T2、T3可以纵向排列在同一条免疫硝酸纤维素膜(3)上,形成一个联合检测装置;所述免疫硝酸纤维素膜(3)上设置的检测线T1、T2、T3也可以分别设置在三条免疫硝酸纤维素膜(3)上,并列排列形成一个联合检测装置;所述的质控线(C)上喷点羊抗鼠IgG多克隆抗体。
2.根据权利要求1所述的G-17、PGI、PGII联合检测装置的制备方法,其特征在于:包括下列步骤:
(a)采用柠檬酸三钠还原法制备胶体金;
(b)采用步骤(a)中制得的胶体金标记胃泌素17、胃蛋白酶原I、胃蛋白酶原II抗体,获得免疫胶体金;
(c)采用喷金缓冲液稀释步骤(b)的免疫胶体金获得免疫胶体金溶液,用免疫胶体金溶液喷涂于玻璃纤维垫,制得免疫胶体金玻璃纤维膜;
(d)将硝酸纤维素膜用聚乙二醇丙三醇处理液预处理后,喷点与油酸修饰的硫化锌纳米颗粒结合的胃泌素17、胃蛋白酶原I、胃蛋白酶原II抗体作为检测线,喷点羊抗鼠IgG抗体作为质控线,制得免疫硝酸纤维素膜;
(e)将预处理的样品垫、步骤(c)制备的免疫胶体金玻璃纤维膜、步骤(d)制备的免疫硝酸纤维素膜、吸水纸依次粘贴在胶板上,切裁制得检测试剂条,最后将检测试剂条装入塑料外壳。
3.根据权利要求2所述的G-17、PGI、PGII联合检测装置的制备方法,其特征在于:步骤(a)所述的采用柠檬酸三钠还原法制备的胶体金颗粒粒径为20~60nm。
4.根据权利要求2所述的G-17、PGI、PGII联合检测装置的制备方法,其特征在于:步骤(c)所述的喷金缓冲液由Tris-HCL液、蔗糖、海藻糖、牛血清白蛋白BSA组成,pH值8.5,其中Tris-Hcl浓度为0.02mol/L,蔗糖浓度为5~20%,海藻糖浓度为1~5%,牛血清白蛋白BSA浓度为0.5~1%。
5.根据权利要求2所述的G-17、PGI、PGII联合检测装置的制备方法,其特征在于:步骤(d)所述的将硝酸纤维素膜用聚乙二醇丙三醇处理液预处理是:用聚乙二醇丙三醇处理液浸泡硝酸纤维素膜1h,并慢速振荡摇晃,取出后用蒸馏水清洗3遍,最后在真空干燥箱中干燥;
步骤(d)所述的油酸修饰的硫化锌纳米颗粒分别结合胃泌素17、胃蛋白酶I、胃蛋白酶II抗体是:以油酸修饰的ZnS作为载体,取1mL胃泌素17、胃蛋白酶I、胃蛋白酶II抗体溶液,搅拌1小时后,分别以12000rpm,8500rpm和7000rpm离心10分钟收集,去离子水各洗2遍。
6.根据权利要求2或5所述的G-17、PGI、PGII联合检测装置的制备方法,其特征在于:步骤(d)所述的聚乙二醇丙三醇处理液由聚乙二醇丙三醇稀释到浓度为0.5%组成,经0.22μm滤膜过滤,备用。
7.根据权利要求2或5所述的G-17、PGI、PGII联合检测装置的制备方法,其特征在于:步骤(d)所述的聚乙二醇丙三醇处理液由聚乙二醇丙三醇和多聚赖氨酸SIGMA,150KD~300KD混合组成,其中聚乙二醇丙三醇浓度为0.5%,多聚赖氨酸浓度为0.5%,经0.22μm滤膜过滤,备用。
8.根据权利要求2或5所述的G-17、PGI、PGII联合检测装置的制备方法,其特征在于:步骤(d)所述的聚乙二醇丙三醇处理液由聚乙二醇丙三醇、多聚赖氨酸(SIGMA,150KD~300KD)、PEG20000混合组成,其中聚乙二醇丙三醇浓度为0.5%,多聚赖氨酸浓度为0.5%,PEG20000浓度为0.1%,经0.22μm滤膜过滤,备用。
9.根据权利要求2或5所述的G-17、PGI、PGII联合检测装置的制备方法,其特征在于:步骤(d)所述的油酸修饰的硫化锌纳米颗粒制备方法:取油酸无水乙醇溶液15ml加入到15ml浓度为0.3mol/L的醋酸锌水溶液中,40℃水浴搅拌,用氨水调节pH值,再加入15ml浓度为0.3mol/L的硫化钠水溶液,反应5min后,加入5ml SDS水溶液,待混合均匀后,将该反应液倒入90ml水热釜中,水热釜密闭后放入恒温干燥箱内,在一定温度下恒温反应一定时间,待反应结束,降温至50℃,取出产物,用丙酮,去离子水,乙醇洗涤,离心分离,在50℃下真空干燥2h得到粉体ZnS,存放待用。
10.根据权利要求2所述的G-17、PGI、PGII联合检测装置的制备方法,其特征在于:步骤(e)所述的预处理的样品垫采用的样品垫处理液由Tris-HCL液、牛血清白蛋白BSA、酪蛋白、表面活性剂烷基酚聚氧乙烯醚组成,其中Tris-HCL液浓度为0.1mol/L,牛血清白蛋白BSA浓度为0.5~1%,酪蛋白浓度为0.1~0.2%、表面活性剂浓度为0.5~1%。
Priority Applications (4)
Application Number | Priority Date | Filing Date | Title |
---|---|---|---|
CN202010370096.6A CN111638366B (zh) | 2020-04-30 | 2020-04-30 | G-17、pgi、pgii联合检测装置及其制备方法 |
JP2022537172A JP2023514008A (ja) | 2020-04-30 | 2021-04-16 | G-17、pgi、pgii複合検出装置及びその製造方法 |
PCT/CN2021/087746 WO2021218661A1 (zh) | 2020-04-30 | 2021-04-16 | G-17、pgi、pgii联合检测装置及其制备方法 |
KR1020227021546A KR20220104043A (ko) | 2020-04-30 | 2021-04-16 | G-17, pgi, pgii 연합 검출장치 및 그 제조방법 |
Applications Claiming Priority (1)
Application Number | Priority Date | Filing Date | Title |
---|---|---|---|
CN202010370096.6A CN111638366B (zh) | 2020-04-30 | 2020-04-30 | G-17、pgi、pgii联合检测装置及其制备方法 |
Publications (2)
Publication Number | Publication Date |
---|---|
CN111638366A true CN111638366A (zh) | 2020-09-08 |
CN111638366B CN111638366B (zh) | 2021-02-19 |
Family
ID=72330000
Family Applications (1)
Application Number | Title | Priority Date | Filing Date |
---|---|---|---|
CN202010370096.6A Active CN111638366B (zh) | 2020-04-30 | 2020-04-30 | G-17、pgi、pgii联合检测装置及其制备方法 |
Country Status (4)
Country | Link |
---|---|
JP (1) | JP2023514008A (zh) |
KR (1) | KR20220104043A (zh) |
CN (1) | CN111638366B (zh) |
WO (1) | WO2021218661A1 (zh) |
Cited By (2)
Publication number | Priority date | Publication date | Assignee | Title |
---|---|---|---|---|
CN113004412A (zh) * | 2021-03-23 | 2021-06-22 | 重庆中元汇吉生物技术有限公司 | 胃蛋白酶原i单克隆抗体及其应用 |
WO2021218661A1 (zh) * | 2020-04-30 | 2021-11-04 | 吉林省格瑞斯特生物技术有限公司 | G-17、pgi、pgii联合检测装置及其制备方法 |
Families Citing this family (4)
Publication number | Priority date | Publication date | Assignee | Title |
---|---|---|---|---|
CN114113592B (zh) * | 2021-11-22 | 2023-01-31 | 中国药科大学 | 一种基于巯基苯硼酸功能化金纳米颗粒的侧流层析试纸及其检测方法 |
CN114460310A (zh) * | 2022-04-12 | 2022-05-10 | 天津康博尔生物基因技术有限公司 | 一种彩色乳胶微球及其制备方法与应用 |
CN115015543B (zh) * | 2022-04-17 | 2023-02-28 | 吉林迅准生物技术有限公司 | 一种多项病原体联合检测装置及其制备方法 |
CN117250352B (zh) * | 2023-11-15 | 2024-02-13 | 聚诚(北京)生物科技有限责任公司 | 胃蛋白酶检测试剂盒 |
Citations (3)
Publication number | Priority date | Publication date | Assignee | Title |
---|---|---|---|---|
CN105424931A (zh) * | 2015-04-04 | 2016-03-23 | 吉林双正医疗科技有限公司 | 幽门螺杆菌尿素酶抗体IgM、IgG联合快速检测装置及其制备方法 |
CN205176031U (zh) * | 2015-11-17 | 2016-04-20 | 深圳市金准生物医学工程有限公司 | 一种基于免疫层析技术的胃功能联合检测试剂盒 |
CN109001463A (zh) * | 2018-07-09 | 2018-12-14 | 广州华澳生物科技有限公司 | 一种胃癌风险标志物联合定量检测试纸及制备方法 |
Family Cites Families (11)
Publication number | Priority date | Publication date | Assignee | Title |
---|---|---|---|---|
FI20011908A (fi) * | 2001-09-28 | 2003-03-29 | Biohit Oyj | Menetelmä vatsasyövän osoittamiseksi |
US7371582B2 (en) * | 2002-01-23 | 2008-05-13 | Boditechmed Inc. | Lateral flow quantitative assay method and strip and laser-induced fluorescence detection device therefor |
JP2008547016A (ja) * | 2005-06-23 | 2008-12-25 | ギョン・シク・ソ | ナノ粒子標識、ナノ粒子標識を用いる診断方法、診断キット及び診断装置 |
KR100783768B1 (ko) * | 2007-03-21 | 2007-12-07 | 에이취디알 주식회사 | 질편모충 및 클라미디아 동시진단키트 |
CN102778557B (zh) * | 2011-04-28 | 2016-01-06 | 美艾利尔(上海)诊断产品有限公司 | 生物检测试剂涂膜液 |
US9482616B2 (en) * | 2012-06-06 | 2016-11-01 | Board of Regents of the Nevada System of Higher Education, on behalf the University of Nevada, Reno | Methods, kits and systems for signal amplification for bioassays using zinc nanoparticles |
CN206638677U (zh) * | 2017-04-26 | 2017-11-14 | 江苏扬新生物医药有限公司 | 一种用于术后病人监测的多指标快速检测胶体金试剂盒 |
CN108097340B (zh) * | 2018-02-26 | 2019-03-19 | 北京华科泰生物技术股份有限公司 | 一种用于胃功能疾病筛查的联合检测微流控芯片及其制备方法和用途 |
CN111638370B (zh) * | 2020-04-30 | 2023-03-03 | 吉林省格瑞斯特生物技术有限公司 | 胃功能及胃癌发生风险检测装置及其制备方法 |
CN111638372B (zh) * | 2020-04-30 | 2021-02-19 | 吉林省格瑞斯特生物技术有限公司 | 一种心肌标志物的联合检测装置及其制备方法 |
CN111638366B (zh) * | 2020-04-30 | 2021-02-19 | 吉林省格瑞斯特生物技术有限公司 | G-17、pgi、pgii联合检测装置及其制备方法 |
-
2020
- 2020-04-30 CN CN202010370096.6A patent/CN111638366B/zh active Active
-
2021
- 2021-04-16 WO PCT/CN2021/087746 patent/WO2021218661A1/zh active Application Filing
- 2021-04-16 KR KR1020227021546A patent/KR20220104043A/ko not_active Application Discontinuation
- 2021-04-16 JP JP2022537172A patent/JP2023514008A/ja active Pending
Patent Citations (8)
Publication number | Priority date | Publication date | Assignee | Title |
---|---|---|---|---|
CN105424931A (zh) * | 2015-04-04 | 2016-03-23 | 吉林双正医疗科技有限公司 | 幽门螺杆菌尿素酶抗体IgM、IgG联合快速检测装置及其制备方法 |
CN105445449A (zh) * | 2015-04-04 | 2016-03-30 | 吉林双正医疗科技有限公司 | 唾液尿酸快速半定量检测装置及其制备方法 |
CN105527431A (zh) * | 2015-04-04 | 2016-04-27 | 吉林双正医疗科技有限公司 | B族溶血性链球菌IgG抗体快速检测装置及制备方法 |
CN105548534A (zh) * | 2015-04-04 | 2016-05-04 | 吉林双正医疗科技有限公司 | 心肌标志物的联合检测装置及其制备方法 |
CN105548538A (zh) * | 2015-04-04 | 2016-05-04 | 吉林双正医疗科技有限公司 | 柯萨奇病毒A16和肠道病毒71的IgM抗体联合检测装置及制法 |
CN105588939A (zh) * | 2015-04-04 | 2016-05-18 | 吉林双正医疗科技有限公司 | MPO、H-FABP和cTnT联合检测装置及制备方法 |
CN205176031U (zh) * | 2015-11-17 | 2016-04-20 | 深圳市金准生物医学工程有限公司 | 一种基于免疫层析技术的胃功能联合检测试剂盒 |
CN109001463A (zh) * | 2018-07-09 | 2018-12-14 | 广州华澳生物科技有限公司 | 一种胃癌风险标志物联合定量检测试纸及制备方法 |
Cited By (3)
Publication number | Priority date | Publication date | Assignee | Title |
---|---|---|---|---|
WO2021218661A1 (zh) * | 2020-04-30 | 2021-11-04 | 吉林省格瑞斯特生物技术有限公司 | G-17、pgi、pgii联合检测装置及其制备方法 |
CN113004412A (zh) * | 2021-03-23 | 2021-06-22 | 重庆中元汇吉生物技术有限公司 | 胃蛋白酶原i单克隆抗体及其应用 |
CN113004412B (zh) * | 2021-03-23 | 2021-12-03 | 中元汇吉生物技术股份有限公司 | 胃蛋白酶原i单克隆抗体及其应用 |
Also Published As
Publication number | Publication date |
---|---|
CN111638366B (zh) | 2021-02-19 |
WO2021218661A1 (zh) | 2021-11-04 |
JP2023514008A (ja) | 2023-04-05 |
KR20220104043A (ko) | 2022-07-25 |
Similar Documents
Publication | Publication Date | Title |
---|---|---|
CN111638366B (zh) | G-17、pgi、pgii联合检测装置及其制备方法 | |
CN111638369B (zh) | 胃功能及胃癌发生风险的荧光微球检测装置及其制备方法 | |
CN111638364B (zh) | Gdf15快速定量荧光微球检测装置及其制备方法 | |
KR101597413B1 (ko) | 효소 모방 무기 나노입자를 이용한 고감도 측면유동 면역 발색칩 및 이를 이용한 검출 방법 | |
CN111638372B (zh) | 一种心肌标志物的联合检测装置及其制备方法 | |
CN111638370B (zh) | 胃功能及胃癌发生风险检测装置及其制备方法 | |
CN107677806A (zh) | 基于磁富集的荧光定量高灵敏可视化联检免疫层析试纸条的制备和检测方法 | |
CN111638365B (zh) | Gdf15快速定量检测装置及其制备方法 | |
CN108918894A (zh) | 一种一体化多元肿瘤早期诊断检测膜及其应用 | |
CN111505296B (zh) | 食管癌相关抗体蛋白组合在胶体金试纸条中的应用 | |
CN111551740B (zh) | 幽门螺杆菌尿素酶IgG和IgM抗体联合检测装置及制备方法 | |
CN111579792A (zh) | 流感病毒和2019新型冠状病毒抗体联合检测装置及其制备方法 | |
CN111638363B (zh) | 3-脱氧果糖快速定量荧光检测装置及其制备方法 | |
JP7081861B1 (ja) | LIPに基づいてUMODを修飾した尿中のNeu5Gcを識別する尿路上皮癌の検査用キット、およびその製造方法 | |
CN112255403B (zh) | 一种胃蛋白酶原i和胃蛋白酶原ii联合定量检测试纸的制备方法及其检测方法 | |
CN112595849B (zh) | 用于早期食管癌筛查的血清学检测标志物及其应用 | |
CN111638347B (zh) | Mgo和go快速定量联合检测装置及其制备方法 | |
CN208399511U (zh) | 一种用于脓毒症快速定量检测的胶体金试剂盒 | |
CN117517680B (zh) | 一种提高粪便中血红蛋白和转铁蛋白二联检胶体金免疫层析试剂盒检测准确率的方法 | |
CN112198314B (zh) | 一种用于食管癌前病变恶性进展风险检测或食管癌早期筛查的标志物及其应用 | |
CN115015563B (zh) | MPO、cTnI或cTnT、IMA的联合检测装置及制备方法 | |
EP4141445A1 (en) | Cancer antigen for early cancer detection | |
JPS6362517B2 (zh) | ||
CN116087519A (zh) | 一种用于高危人群贲门腺癌早期筛查的标志物及其应用 | |
CN115267185A (zh) | 幽门螺旋杆菌抗原胶体金检测试剂条 |
Legal Events
Date | Code | Title | Description |
---|---|---|---|
PB01 | Publication | ||
PB01 | Publication | ||
SE01 | Entry into force of request for substantive examination | ||
SE01 | Entry into force of request for substantive examination | ||
GR01 | Patent grant | ||
GR01 | Patent grant |