CN110894470A - 一种适合工厂化栽培的香菇菌种农香5号及其分子鉴定方法 - Google Patents
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Abstract
本发明提供了一种香菇‘农香5号’及其分子标记鉴定方法,属于香菇领域。本发明以香菇‘808’和香菇‘L26’为亲本进行杂交选育出菌种稳定性好、出菇温度高、出菇时间短、子实体朵形好、潮次之间短,产量高,具有很好地开发应用前景的‘农香5号’香菇菌种。该菌种已于2019年12月5日保藏于中国典型培养物保藏中心,保藏编号CCTCC NO:M 20191018。同时提供了该菌种专一性强、操作简便的分子标记鉴定方法。
Description
技术领域
本发明属于香菇领域,具体涉及一种香菇‘农香5号’及其分子标记鉴定方法。
背景技术
香菇Lentinus edodes又名花菇、冬菇、香信、香蕈等,其营养价值很高,味道鲜美,是被人们广泛所知的一种食用菌,同时也是我国产量最大的食用菌。随着近年香菇产业的不断升级以及环境气候的变化,香菇传统的栽培模式暴露出不稳定、“靠天吃饭”、产量与品质难于保证的问题越来越严重,已较难适应香菇产业日益激烈竞争的要求,以机械化生产、智能化调控、周年化栽培为特征的工厂化生产是香菇产业升级发展方向。
香菇工厂化栽培成功的秘诀有4 点:一是降低病菌的损耗率,二是实现短期高产,三是防止连作障碍,四是采用性能稳定的菌种(木村荣一. 日本的香菇工厂化栽培.食药用菌,2015,23(3):157~161),其中,菌种是关键、是基础。因此,本发明根据香菇工厂化栽培菌种的要求,杂交选育菌龄短、产量高、朵形好、抗逆性好、且稳定的香菇菌种以实现香菇的工厂化栽培。
发明内容
本发明的目的在于提供一种香菇‘农香5号’及其分子标记鉴定方法。
为实现上述目的,本发明采用以下技术方案:
一种香菇(Lentinus edodes)‘农香5号’,该菌株的分类命名为:香菇(Lentinula edodes)农香5号,已于2019年12月5日保藏于中国典型培养物保藏中心,保藏编号CCTCCNO: M 20191018。
本发明的香菇(Lentinus edodes)‘农香5号’,简称‘农香5号’是以香菇‘808’和香菇‘L26’为亲本进行杂交选育而成,其继承了两个亲本的优良性状。‘农香5号’菌种稳定性好,属中高温型,菌龄在75 d出菇,子实体朵形好、潮次之间短,产量高,两潮平均每袋产量在310~350g,具有很好地开发应用前景。
香菇‘农香5号’(CCTCC NO: M 20191018)的母种培养基为马铃薯葡萄糖培养基(PDA):马铃薯200g,葡萄糖20g,琼脂条20g,水1000mL;培养条件为常规的香菇培养,无特殊要求。
本发明还提供了所述香菇‘农香5号’的分子标记鉴定方法,包括菌丝的培养与收集、基因组DNA的提取、特异片段PCR扩增和PCR产物的电泳检测。
所述特异片段PCR扩增是由6对引物分别对‘农香5号’的DNA进行PCR扩增,经电泳检测分别得到单一的标记片段,6对引物序列和用这6对引物分别扩增‘农香5号’的DNA得到的标记片段大小见表1;
表1 特异标记扩增信息
所述PCR产物的电泳检测:经电泳检测,在一个泳道上只有一个片段出现,且片段大小与对应的引物相符(各引物对应的片段大小见表1),是香菇(Lentinus edodes)‘农香5号’的标记。其中电泳条件为:取PCR产物5μL,与1μL上样缓冲液混匀,点样于1.2%的琼脂糖凝胶上,于0.5 X TBE缓冲液中,5V/cm电压下电泳;所述上样缓冲液:0.1%溴酚蓝, 40% 蔗糖。
PCR扩增反应体系:1~1.5 μl 含量80~150 ng的DNA,12.5μl Premix Taq(带染料),1 μl 浓度为10 μmol/L的正向引物, 1 μl 浓度为10 μmol/L的反向引物,9~9.5 μlddH2O,总体积25 μl;
PCR扩增反应程序:94℃预变性5 min;98℃变性10sec,Tm退火30 sec,72℃延伸X, 35个循环;72℃延伸10 min。其中各引物的Tm和72℃延伸X见表2。
表2 特异标记产生PCR扩增反应程序信息
本发明具有以下优点:
1、香菇‘农香5号’含香菇‘808’和香菇‘L26’两个亲本的基因,其‘农香5号’菌种稳定性好,属中高温型品种,能在较高温度下出菇,菌龄短,抗杂性好,子实体朵形好,潮次之间短,产量高等优点,具有很好地开发应用前景。
2、香菇‘农香5号’的分子标记鉴定方法具有真实可靠,一目了然的特点,比经典的形态鉴定误差小,不受环境条件的影响,判断更直观。
3、专一性强:本发明在对香菇基因测序、生物信息分析的基础上,设计香菇‘农香5号’的特异识别性的标记片段。
4、香菇‘农香5号’的分子标记鉴定方法操作简单,检测时间短,经典的形态鉴定需要检测的指标多,时间长且需要综合起来分析。在一般的分子实验室即能完成检测,无需要特殊的仪器设备。
附图说明
图1为香菇‘农香5号’第二潮出菇时子实体形态。
图2为‘农香5号’特异性识别标记电泳图。其中,1~18为泳道编号,1、4、7、10、13、16泳道代表‘808’,2、5、8、11、14、17泳道为‘农香5号’,3、6、9、12、15、18代表‘L26’;泳道1~3的引物为LeP1,标记片段大小为791 bp,是香菇‘808’和‘农香5号’共有;泳道4~6的引物为LeP2,标记片段大小为939 bp,是香菇‘808’和‘农香5号’共有;泳道7~9的引物为LeP3,标记片段大小为1409 bp,是香菇‘808’和‘农香5号’共有;泳道10~12的引物为LeP4,标记片段大小为1742 bp,是香菇是‘农香5号’和‘L26’共有;泳道13~15的引物为LeP5,标记片段大小为803 bp,是香菇‘农香5号’和‘L26’共有;泳道16~18的引物为LeP6,标记片段大小为962bp,是香菇‘农香5号’和‘L26’共有;当6对引物都对‘农香5号’基因组检测时都产生对应大小的标志片段,则为香菇‘农香5号’,M表示分量为DL 2000的DNA MARK。
具体实施方式
为了使本发明所述的内容更加便于理解,下面结合具体实施方式对本发明所述的技术方案做进一步的说明,但是下述的实例仅仅是本发明其中的例子而已,并不代表本发明所限定的权利保护范围,本发明的权利保护范围以权利要求书为准。
实施例1:香菇‘农香5号’的选育
香菇‘农香5号’的选育,包括以下步骤:
(1)对香菇‘L26’、‘L087’、‘L.0344’、‘L0227’进行出菇实验,收集其孢子,并进行孢子萌发实验,获得4个香菇菌株的单孢菌株,每个菌株选择长势良好的单孢菌株各2个,共8个单孢菌株。
(2)选择香菇菌株‘农香2号’、‘808’、‘闽丰1号’、‘Cr33’、‘申香10号’、‘L18’、‘L236’、‘武香1号’、‘L0249’、‘L.0359’10个,分别与8个单菌株进行双-单配对,配对组合数为80,获得63个杂交子。
(3)对63个杂交子在PDA培养基上连续转接3次后,观察其菌丝生长速度,淘汰生长速度较慢的杂交子23个,余下40个杂交子制作菌种作出菇实验。
(4)40个杂交子的出菇性状采用直观法筛选,根据出菇快慢、整齐度、子实体朵形初步筛选出5个杂交子进行下一轮筛选。
(5)经第二轮出菇实验,发现杂交编号为‘LH17’的杂交子具有出菇快、整齐度好、朵形好的优点,其亲本为香菇‘808’和‘L26’。此后,香菇杂交子‘LH17’经多次出菇,性状稳定,周期短,能在较高温度下出菇,出菇时整齐度好、抗逆性较好、产量较高,子实体朵形好,继承了其两个亲本较优的性状。将香菇杂交子‘LH17’命名为‘农香5号’。
香菇‘农香5号’已于2019年12月5日保藏于中国典型培养物保藏中心,地址: 武汉武汉大学,保藏编号CCTCC NO: M 20191018。
所述香菇‘农香2号’由第一发明人刘新锐选育,‘L26’、‘L087’、‘808’、‘闽丰1号’、‘Cr33’、‘申香10号’、‘L18’、‘L236’、‘武香1号’菌株购买于市场,(参考文献有:[1]沈学香,尚晓冬,汪虹,等.十株香菇菌株间的营养体不亲合性[J].食用菌学报,2009,16(2):1-5.[2]谢福泉,谢宝贵,羿红,等.福建省袋栽香菇主要菌株交配型测定及品种鉴别[J].福建农林大学学报(自然科学版),2004,33(4):521-526)
‘L.0344’、‘L0227’‘L0249’、‘L.0359’这四个菌株由第一发明人刘新锐野外采集。
‘L.0344’、‘L.0359’参考文献为:刘新锐,袁滨,谢宝贵,等.三明野生香菇交配型因子分析[J].食药用菌,2014,22(6):326-328.
‘L0227’‘L.0249’参考文献为:刘靖宇,刘新锐,邓优锦,等.双向核迁移在香菇遗传和育种中的应用研究[J].菌物学报,2011,30(5):774-781.
实施例2:
香菇‘农香5号’(CCTCC NO: M 20191018)的工厂化栽培,包括以下步骤:
(1)香菇‘农香5号’菌种制作
将‘农香5号’菌株在PDA培养上活化2次,转接于香菇原种常规培养基,25℃恒温培养至长满原种瓶。待原种长好后,按马求凤方法进行液体菌种制作(马求凤. 香菇菌株“18”液体菌种生产试验及优势分析. 福建热作科技,2017,42(2):21-22),得到‘农香5号’的液体菌种。
(2)香菇‘农香5号’的菌包制作、培养、菌包转色与出菇管理
栽培香菇‘农香5号’的选料、各种原料配方、装袋、消毒灭菌均同常规的香菇,选用菌袋为18cm×35cm规格的聚丙烯塑料袋,装料干重约400克,液体接种按按马求凤方法进行接种(马求凤. 香菇菌株“18”液体菌种生产试验及优势分析. 福建热作科技,2017,42(2):21-22)。
接种后菌包放于有温控系统的菇房进行培养,培养温度控制在24~26 ℃,CO2浓度控制在5000 ppm以下,进行黑暗培养,35~40 d长满菌包。菌丝布满菌包后进行刺孔通氧,菇房温度设置在19~23 ℃,湿度控制在55-70%,100~300勒克斯的白天光照,总菌龄在75~80天时进入出菇管理。
将培养好的‘农香5号’菌包进行振动、拉入11~14 ℃的菇房刺激15 h,刺激后温度设置在17~20 ℃,继续培养1~2 d脱袋,菇房湿度控制在75%~85%,CO2浓度在3000 ppm以下,光照强度500~1 000 勒克斯,只在白天开灯照明,5 d后即长出子实体,达到商品性状时采收。
采收一潮后,清洁菇房,菇房温度设置在23~25 ℃,湿度55%~80%,停止光照,休养10~15 d进行注水,菇房温度设置在17~20 ℃,进入下一潮出菇管理。
香菇‘农香5号’每个菌包第1、2潮合计采收310~350 g的鲜菇,形态特征见图1,子实体单生,菇形圆整,菌盖中间浅褐色,边缘偏白色,表面有绒毛,菌盖直径4.4~6.1 cm,厚度1.6~2.4 cm,菌肉结实、白色,菌柄柱状,粗细均匀,长3.4~4.4 cm,表面有纤毛。香菇‘农香5号’的栽培周期短,出菇温度较高,出菇整齐,产量较高,休养时间短,具有很好地开发应用前景。
香菇工厂化栽培最早在日本,其食用菌品种与技术的研发都位居世界领先地位,日本国内香菇工厂化栽培主要的品种为北研607,705、森SR1、千曲CS-2等,在我国香菇工厂化栽培中,使用较多的是日本森SR1、千曲CS-2品种。
与日本品种相比,‘农香5号’具有以下优点:‘农香5号’菌龄为75~80 d,而日本品种为90~100 d;‘农香5号’最适合出菇温度控制17-20 ℃,日本品种为12-18 ℃;转下一潮时间上(即休养时间),‘农香5号’最短10 d,日本品种在20 d;因此,‘农香5号’在耗能上比日本品种更少。
实施例3:香菇‘农香5号’(CCTCC NO: M 20191018 )的分子标记鉴定方法
香菇‘农香5号’的分子标记鉴定方法,包括以下步骤:
(1)菌丝培养和收集
1、将香菇‘农香5号’、‘808’和‘L26’转接至含100ml PDA液体培养基的250 ml广口三角瓶中,其中香菇‘808’和‘L26’购买于市场;
2、放置在25℃摇床上,转速90~130 r/min培养5~8 d;
3、用纱布过滤培养好的菌丝,蒸馏水冲洗菌丝,滤纸吸干水分;
4、称取0.5~1.3g菌丝,用滤纸包好,保存于-20℃备用。
(2)CTAB法提取基因组DNA
提取香菇‘农香5号’、‘808’和‘L26’等菌株基因组DNA提取的具体操作步骤,按照陶永新等的方法(Tao Y, Xie B, Yang Z, et al. Identification and expressionanalysis of a new glycoside hydrolase family 55 exo-β-1, 3-glucanase-encodinggene in Volvariella volvacea suggests a role in fruiting body development[J].Gene, 2013, 527(1):154-160.)进行,提取的DNA放-20℃保存备用。
(3)香菇‘农香5号’特异标记引物设计
将香菇‘农香5号’、‘808’、‘L26’等菌株的基因组DNA送往北京诺禾致源科技股份有限公司进行全基因组的二代测序,测序数据量为3~4G的clean data,对这些基因组数据进行生物信息分析,寻找杂交子‘农香5号’与亲本‘808’、‘L26’特有的基因,并进行引物设计,引物信息如下:
1、引物LeP1的正向引物序列为5’-GCGGACCTTGTCCGGTATAG-3’,反向引物序列为5’-TCCAGCGAATGGCTTCAAAC-3’,此引物对‘农香5号’与‘808’的基因组能够扩增出791 bp的标记片段,而‘L26’无该标记片段。
2、引物LeP2的正向引物序列为5’- GGGCCATGCCAACGAGTATC -3’,反向引物序列为5’- GCAGGCGATGCGAATTGAAG -3’,此引物对‘农香5号’与‘808’的基因组能够扩增出939 bp的标记片段,而‘L26’无该标记片段。
3、引物LeP3的正向引物序列为5’- TCGGTCTCGCCATCAAGTTC -3’,反向引物序列为5’- CTATCGCAAGTTCGGATTCG -3’,此引物对‘农香5号’与‘808’的基因组能够扩增出约1409bp的标记片段,而‘L26’无该标记片段。
4、引物LeP43的正向引物序列为5’- GGCAGAGGTTGCATCTAAAG -3’,反向引物序列为5’- ACAGATGGCTACTACGAACC -3’,此引物对‘农香5号’与‘L26’的基因组能够扩增出1742bp的标记片段,而‘808’无该标记片段。
5、引物LeP53的正向引物序列为5’- GCGACGTCATAGGTCCTTTG -3’,反向引物序列为5’- CAGTAAGGATCTGGGCTATG -3’,此引物对‘农香5号’与‘L26’的基因组能够扩增出803bp的标记片段,而‘808’无该标记片段。
6、引物LeP63的正向引物序列为5’- AGCGCGGACATGTTAATCAG -3’,反向引物序列为5’- CGACGTCCTATCTGCTAATC -3’,此引物对‘农香5号’与‘L26’的基因组能够扩增出962bp的标记片段,而‘808’无该标记片段。
(4)特异片段PCR扩增
PCR扩增反应体系:1.2 μl 含量100 ng的DNA,12.5μl Premix Taq(带染料),1 μl 浓度为10 μmol/L的正向引物, 1 μl 浓度为10 μmol/L的反向引物,9.3 μl ddH2O;
引物LeP1-PCR扩增反应程序:94℃预变性5 min;98℃变性10sec,57℃退火30sec,72℃延伸50 sec, 35个循环;72℃延伸10 min。
引物LeP2-PCR扩增反应程序:94℃预变性5 min;98℃变性10sec,58℃退火30sec,72℃延伸1min, 35个循环;72℃延伸10 min。
引物LeP3-PCR扩增反应程序:94℃预变性5 min;98℃变性10sec,56℃退火30sec,72℃延伸1min30sec, 35个循环;72℃延伸10 min。
引物LeP4-PCR扩增反应程序:94℃预变性5 min;98℃变性10sec,55℃退火30sec,72℃延伸1min50sec, 35个循环;72℃延伸10 min。
引物LeP5-PCR扩增反应程序:94℃预变性5 min;98℃变性10sec,56℃退火30sec,72℃延伸55sec, 35个循环;72℃延伸10 min。
引物LeP6-PCR扩增反应程序:94℃预变性5 min;98℃变性10sec,55℃退火30sec,72℃延伸1min, 35个循环;72℃延伸10 min。
(5)PCR产物的电泳检测
取PCR产物5 μl,点样于1.2%的琼脂糖凝胶上,同时使用DL 2000的DNA MARK作为片段大小的参照,于0.5×TBE缓冲液中,5V/cm电压下电泳30—40 min,电泳结束后,然后在凝胶成像仪上照相。电泳图如图2所示,引物LeP1、1~3泳道显示的分子量为791 bp,引物LeP2、4~6泳道显示的分子量为939 bp,引物LeP3、7~9泳道显示的分子量为1409 bp,引物LeP4、10~12泳道显示的分子量为1742 bp,引物LeP5、13~15泳道显示的分子量为803 bp,引物LeP6、16~18泳道显示的分子量为962 bp的DNA标记条带,是香菇‘农香5号’的标志;M表示分量为DL 2000的DNA MARK。其中泳道2、5、8、11、14、17代表‘农香5号’,泳道1、4、7、10、13、16代表‘808’,泳道3、6、9、12、15、18代表‘L26’。
(6)试剂与仪器
CTAB抽提液:100 mmol/L Tris-HCl, 2.0% CTAB,20 mmol/L EDTA,1.4 mol/L NaCl,pH 8.0;
CTAB 沉淀液:50 mmol/L Tris-HCl,1.0% CTAB,10 mmol/L EDTA,pH 8.0;
CTAB/NaCl:0.7 mol/L NaCl, 10% CTAB;
氯仿异戊醇:体积比氯仿比异戊醇为24比1;
TE缓冲液:10 mmol/L Tris HCl ,1 mmol/L EDTA;
0.5×TBE:44.5 mmol/L Tris, 50 mmol/L HBO3、1 mmol/L EDTA;
Premix Taq (Ex Taq Version 2.0)带染料的和PCR扩增试剂,均购自大连宝生物公司。
主要仪器:
SW-CJ-1FB型单人水平垂直两用净化工作台:苏州净化设备有限公司
灭菌锅:上海三申
HYG-A全温摇瓶柜:太仓市实验室
冷冻离心机:Sigma 3K30
PCR扩增仪:Eppendorf AG22331 Hamburg
掌型离心机:江苏海门市麒麟医用仪器厂Lx-100手掌型离心机
SDC-6节能型智能恒温槽:宁波新芝生物科技股份有限公司
凝胶成像系统:TANON-2008
以上所述仅为本发明的较佳实施例,凡依本发明申请专利范围所做的均等变化与修饰,皆应属本发明的涵盖范围。
SEQUENCE LISTING
<110> 福建农林大学
<120> 一种适合工厂化栽培的香菇菌种‘农香5号’及其分子鉴定方法
<130> 12
<160> 12
<170> PatentIn version 3.3
<210> 1
<211> 20
<212> DNA
<213> LeP1正向引物
<400> 1
gcggaccttg tccggtatag 20
<210> 2
<211> 20
<212> DNA
<213> LeP1反向引物
<400> 2
tccagcgaat ggcttcaaac 20
<210> 3
<211> 20
<212> DNA
<213> LeP2正向引物
<400> 3
gggccatgcc aacgagtatc 20
<210> 4
<211> 20
<212> DNA
<213> LeP2反向引物
<400> 4
gcaggcgatg cgaattgaag 20
<210> 5
<211> 20
<212> DNA
<213> LeP3正向引物
<400> 5
tcggtctcgc catcaagttc 20
<210> 6
<211> 20
<212> DNA
<213> LeP3反向引物
<400> 6
ctatcgcaag ttcggattcg 20
<210> 7
<211> 20
<212> DNA
<213> LeP4正向引物
<400> 7
ggcagaggtt gcatctaaag 20
<210> 8
<211> 20
<212> DNA
<213> LeP4反向引物
<400> 8
acagatggct actacgaacc 20
<210> 9
<211> 20
<212> DNA
<213> LeP5正向引物
<400> 9
gcgacgtcat aggtcctttg 20
<210> 10
<211> 20
<212> DNA
<213> LeP5反向引物
<400> 10
cagtaaggat ctgggctatg 20
<210> 11
<211> 20
<212> DNA
<213> LeP6正向引物
<400> 11
agcgcggaca tgttaatcag 20
<210> 12
<211> 20
<212> DNA
<213> LeP6反向引物
<400> 12
cgacgtccta tctgctaatc 20
Claims (3)
1.一种香菇(Lentinula edodes)菌株‘农香5号’,其特征在于:该菌株的分类命名为:香菇(Lentinula edodes)农香5号,已于2019年12月5日保藏于中国典型培养物保藏中心,保藏编号CCTCC NO: M 20191018。
2.一种如权利要求1所述的香菇‘农香5号’的分子标记鉴定方法,其特征在于:包括菌丝的培养与收集、基因组DNA的提取、特异片段PCR扩增、电泳检测,显示特异条带;
特异片段PCR扩增引物LeP1~LeP6的具体核苷酸序列为:
引物LeP1的正向序列为5’-GCGGACCTTGTCCGGTATAG-3’,反向序列为5’-TCCAGCGAATGGCTTCAAAC-3’;
引物LeP2的正向序列为5’- GGGCCATGCCAACGAGTATC -3’,反向序列为5’-GCAGGCGATGCGAATTGAAG -3’;
引物LeP3的正向序列为5’- TCGGTCTCGCCATCAAGTTC -3’,反向序列为5’-CTATCGCAAGTTCGGATTCG -3’;
引物LeP4的正向序列为5’- GGCAGAGGTTGCATCTAAAG -3’,反向序列为5’-ACAGATGGCTACTACGAACC -3’;
引物LeP5的正向序列为5’- GCGACGTCATAGGTCCTTTG -3’,反向序列为5’-CAGTAAGGATCTGGGCTATG -3’;
引物LeP6的正向序列为5’- AGCGCGGACATGTTAATCAG -3’,反向序列为5’-CGACGTCCTATCTGCTAATC -3’;
引物LeP1产生一条791 bp的条带,引物LeP2产生一条939 bp的条带,引物LeP3产生一条1409 bp的条带,引物LeP4产生一条1742 bp的条带,引物LeP5产生一条803 bp的条带,引物LeP6产生一条962bp的条带;6个引物同时检测得到对应大小的DNA标记条带,是香菇(Lentinus edodes)‘农香5号’的标记。
3.根据权利要求2所述的香菇(Lentinus edodes)‘农香5号’的分子标记鉴定方法,其特征在于:所述PCR扩增的反应体系:1~1.5 μl含量80~150 ng的DNA,12.5μl Premix Taq,1 μl 浓度为10 μmol/L的正向引物,1 μl 浓度为10 μmol/L的反向引物,9~9.5 μlddH2O,总体积25 μl;
PCR扩增反应程序:94℃预变性5 min;98℃变性10sec,Tm退火30 sec,72 ℃延伸时间X, 35个循环;72 ℃延伸10 min;
其中引物LeP1的Tm为57 ℃,72℃延伸时间X为50 sec;引物LeP2的Tm为58 ℃,72℃延伸时间X为1 min;引物LeP3的Tm为56 ℃,72℃延伸时间X为1 min 30 sec;引物LeP4的Tm为55 ℃,72℃延伸时间X为1 min 50 sec;引物LeP5的Tm为56 ℃,72℃延伸时间X为55 sec;引物LeP6的Tm为55 ℃,72℃延伸时间X为1 min。
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